ES2567780T3 - Método para la producción de proteína TAT-HOXB4H recombinante para su utilización como estimulante de la hematopoyesis in vivo - Google Patents

Método para la producción de proteína TAT-HOXB4H recombinante para su utilización como estimulante de la hematopoyesis in vivo Download PDF

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Abstract

Una composición farmacéutica para la administración in vivo para mejorar la movilización de Células Madre Hematopoyéticas (CMH) desde la médula ósea a la sangre periférica, que comprende una proteína TAT-HOXB4H que tiene la secuencia de aminoácidos de SEQ ID NO: 4, en que la proteína TAT-HOXB4H es producida a través de un método que comprende: (a) proporcionar una célula huésped que comprende un vector que codifica la proteína; (b) expresar la proteína en la célula huésped; (c) recoger una solución impura de la proteína expresada; (d) purificar la proteína de la solución mediante: (i) aplicar la solución a una columna HisTrap; (ii) lavar la columna HisTrap; (iii) eluir la proteína parcialmente purificada de la columna HisTrap para formar una solución de proteína parcialmente purificada; (iv) aplicar la solución de proteína parcialmente purificada a una columna MonoSP; (v) lavar la columna MonoSP; (vi) eluir la proteína purificada de la columna MonoSP; (e) replegar la proteína desnaturalizada eluida utilizando compuestos hidrófobos mediante: (i) la combinación de la proteína desnaturalizada eluida y una solución de compuestos hidrófobos para formar una solución de la proteína y compuestos hidrófobos, en que los compuestos hidrófobos son capaces de proteger la proteína TAT-HOXB4H de la formación de agregados insolubles durante la fase de eliminación de sal de desnaturalización; (ii) la desalación de la solución de la proteína y compuestos hidrófobos para obtener una proteína desalada y una solución de compuesto hidrófobo; (iii) la eliminación de los compuestos hidrófobos de la solución de la proteína desalada utilizando ultrafiltración mediante un tubo de filtro centrífugo o una célula de agitación; y (f) el almacenamiento de la proteína purificada en medio IMDM o en medio DMEM.

Description

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Resulta especialmente ventajoso formular composiciones en forma de unidad de dosificación para facilitar la administración y uniformizar la dosificación. Forma de dosificación unitaria tal como se utiliza en el presente documento se refiere a unidades físicamente discretas adaptadas como dosificaciones unitarias para el sujeto a tratar; cada unidad conteniendo una cantidad predeterminada de compuesto activo calculada para producir el efecto terapéutico deseado en asociación con el vehículo farmacéutico requerido. La especificación para las formas unitarias de dosificación de la invención están dictadas por y dependen directamente de las características exclusivas del compuesto activo y el efecto terapéutico particular a conseguir, y las limitaciones inherentes en la técnica de componer dicho compuesto activo para el tratamiento de individuos.
Las vías habituales de administración incluyen, sin limitación, oral, tópica, parenteral (por ejemplo, sublingual o bucal), sublingual, rectal, vaginal, e intranasal. El término parenteral tal como se utiliza en el presente documento incluye inyecciones subcutáneas, inyección intravenosa, intramuscular, intraesternal, intracavernosa, intratecal, intrameatal, intrauretral o técnicas de infusión. La composición farmacéutica se formula para permitir que los ingredientes activos contenidos en la misma se encuentren biodisponibles después de la administración de la composición a un paciente. Las composiciones que se pueden administrar a un paciente toman la forma de una o más unidades de dosificación, donde por ejemplo, un comprimido puede ser una sola unidad de dosificación, y un contenedor de uno o más compuestos de la invención en forma de aerosol puede contener una pluralidad de unidades de dosificación.
Cuando se administra oralmente una cantidad terapéuticamente eficaz de una proteína TAT-HOXB4H, el agente de unión puede ser en forma de una tableta, cápsula, polvo, solución o elixir. Cuando se administra en forma de comprimido, la composición farmacéutica de la invención puede contener adicionalmente un vehículo sólido como por ejemplo una gelatina o un adyuvante. La tableta, cápsula y polvo contiene aproximadamente desde un 5 a un 95% de agente de unión y preferiblemente aproximadamente desde un 25 a 90% de agente de unión. Los ejemplos son sacarosa, caolín, glicerina, dextrinas de almidón, alginato de sodio, carboximetilcelulosa y etilcelulosa. Pueden encontrarse presentes agentes colorantes y / o aromatizantes. Se puede emplear una cáscara de revestimiento. Cuando se administra en forma líquida, se puede añadir un vehículo líquido como por ejemplo agua, petróleo, aceites de origen animal o vegetal como por ejemplo aceite de cacahuete, aceite mineral, aceite de soja o aceite de sésamo, o aceites sintéticos. La forma líquida de la composición farmacéutica puede contener además solución salina fisiológica, dextrosa u otra solución de sacárido, o glicoles como por ejemplo etilenglicol, propilenglicol o polietilenglicol. Cuando se administra en forma líquida, la composición farmacéutica contiene aproximadamente desde un 0.5 a un 90% en peso del agente de unión, y preferiblemente de aproximadamente 1 a 50% del agente de unión.
Cuando una cantidad terapéuticamente eficaz de la proteína TAT-HOXB4H se administra por inyección intravenosa, cutánea o subcutánea, el agente de unión puede ser en forma de una solución acuosa libre de pirógenos, parenteralmente aceptable. La preparación de dichas soluciones de proteína parenteralmente aceptables, teniendo en cuenta el pH, la isotonicidad, la estabilidad y similares, entra dentro de los conocimientos en la técnica. En algunas realizaciones, la composición farmacéutica para inyección intravenosa, cutánea o subcutánea puede contener, además de agente de unión, un vehículo isotónico como por ejemplo inyección de cloruro sódico, inyección de Ringer, inyección de dextrosa, inyección de dextrosa y cloruro de sodio, inyección de Lactato de Ringer, u otro vehículo tal como es conocido en la técnica. La composición farmacéutica de la presente invención también puede contener estabilizantes, conservantes, tampones, antioxidantes, u otro aditivo conocido por los expertos en la técnica.
En la práctica del método de tratamiento o utilización de la presente invención, se administra una cantidad terapéuticamente eficaz de la proteína TAT-HOXB4H a un sujeto, por ejemplo, un mamífero (por ejemplo, un ser humano). Tal como se utiliza en el presente documento, el término "cantidad terapéuticamente eficaz" significa la cantidad total de cada componente activo de la composición farmacéutica o método que resulta suficiente para mostrar un beneficio significativo del paciente, por ejemplo, mejora de los síntomas, curación, o aumento en la tasa de curación de dichas condiciones. Cuando se aplica a un ingrediente activo individual, administrado solo, el término se refiere a ese ingrediente solo. Cuando se aplica a una combinación, el término se refiere a cantidades combinadas de los ingredientes activos que dan como resultado el efecto terapéutico, si se administra en combinación, en serie o simultáneamente.
La cantidad de proteína TAT-HOXB4H en la composición farmacéutica de la presente invención puede depender de la naturaleza y la gravedad de la afección a tratar, y de la naturaleza de tratamientos anteriores que el paciente ha experimentado, y de la edad y sexo del paciente. En última instancia, el médico tratante puede decidir la cantidad de ingrediente activo con el que tratar a cada paciente individual. Inicialmente, el médico tratante puede administrar dosis bajas de ingrediente activo y observar la respuesta del paciente. Pueden administrarse dosis más grandes de ingrediente activo hasta que se obtenga el efecto terapéutico óptimo para el paciente, y en ese punto la dosis no se incrementa más en general. Se contempla que las diversas composiciones farmacéuticas utilizadas para practicar el método de la presente invención pueden contener aproximadamente entre 1 µg a aproximadamente 1 mg de
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"Transformación", tal como se utiliza en el presente documento, se refiere a la inserción de un polinucleótido exógeno en una célula huésped, independientemente del método utilizado para la inserción: por ejemplo, transformación mediante captación directa, transfección, infección, y similares. Para los métodos particulares de transfección, véase más adelante. El polinucleótido exógeno puede mantenerse como un vector no integrado, por ejemplo, un episoma, o alternativamente, puede integrarse en el genoma del huésped.
En general, el término "proteína" se refiere a cualquier polímero de dos o más aminoácidos individuales (ya sea o no de origen natural) unidos a través de enlaces peptídicos, tal como ocurre cuando el átomo de carbono carboxilo del grupo de ácido carboxílico unido al α -carbono de un aminoácido (o al resto de aminoácido) se convierte en unido covalentemente con el átomo de amino nitrógeno del grupo amino unido al α-carbono de un aminoácido adyacente. Estos vínculos de enlace peptídico, y los átomos que los contienen (es decir, los átomos de α-carbono, los átomos de carbono carboxilo (y sus átomos de sustituyente de oxígeno), y los átomos de amino nitrógeno (y sus átomos de sustituyente de hidrógeno)) forman la "columna vertebral de polipéptido" de la proteína. Además, tal como se utiliza en el presente documento, el término "proteína" se entiende que incluye los términos "polipéptido" y "péptido" (que, a veces, pueden utilizarse indistintamente en la presente memoria). Del mismo modo, en el presente documento los fragmentos de proteínas, análogos, derivados y variantes se pueden denominar "proteínas", y se les considerará como una "proteína" a menos que se indique lo contrario. El término "fragmento" de una proteína se refiere a un polipéptido que comprende menos de todos los residuos de aminoácidos de la proteína. Tal como se puede apreciar, un "fragmento" de una proteína puede ser una forma de la proteína truncada en el extremo amino, el extremo carboxi terminal, y / o internamente (como por ejemplo, por corte y empalme natural), y también puede ser variante y / o derivada. Un "dominio" de una proteína es también un fragmento, y comprende los residuos de aminoácidos de la proteína necesarios para conferir una actividad bioquímica que corresponde a la proteína de origen natural.
"Recombinante" tal como se utiliza en el presente documento para describir una molécula de ácido nucleico, significa un polinucleótido de origen genómico, de cADN, viral, semisintético o sintético que, en virtud de su origen o manipulación no está asociado con todo o con una parte del polinucleótido con el que está asociado en la naturaleza. El término "recombinante" tal como se utiliza con respecto a una proteína o a un polipéptido significa un polipéptido producido mediante la expresión de un polinucleótido recombinante.
Una molécula "aislada", "purificada", "sustancialmente aislada" o "sustancialmente pura" (como por ejemplo un polipéptido o un polinucleótido) es una molécula que se ha manipulado para existir en una concentración mayor de la que se encuentra en la naturaleza. Por ejemplo, una proteína sujeto es aislada, purificada, sustancialmente aislada, o sustancialmente purificada cuando al menos un 50%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% o más de los materiales de la proteína no sujeto con los que está asociada en la naturaleza han sido eliminados. Tal como se utiliza en el presente documento, una molécula "aislada", "purificada", "sustancialmente aislada" o "sustancialmente purificada" incluye moléculas recombinantes.
Un "ratón con SCID" es un modelo de ratón para el síndrome de inmunodeficiencia combinada severa (SCID), que causa graves defectos en el desarrollo del sistema inmunológico. Estos ratones son deficientes en, o carecen completamente de, los linfocitos T y B. La mutación del SCID parece dañar la recombinación de genes del receptor de antígeno, causando una falta de linfocitos T y B funcionales. Otros tipos de células hematopoyéticas parecen desarrollarse y funcionar normalmente. Los ratones con SCID soportan fácilmente la diferenciación de linfocitos normales y pueden reconstituirse con linfocitos normales de singénico o alogénico de ratones, o con linfocitos humanos. Estos ratones también soportan el crecimiento de tumores alogénicos y xenogénicos. Por lo tanto, los ratones con SCID, que permiten el crecimiento diseminado de un cierto número de tumores humanos, en particular los trastornos hematológicos y el melanoma maligno, se pueden utilizar para investigar tumores malignos.
Los términos "sujeto", "individuo", "huésped" y "paciente" se utilizan indistintamente en el presente documento para referirse a un animal vivo, incluyendo un ser humano y un animal no humano. El sujeto puede, por ejemplo, ser un organismo que posee las células inmunes capaces de responder a la estimulación antigénica, y a la transducción de señales de estimulación e inhibición a través de la unión de receptores de superficie celular. El sujeto puede ser un mamífero, como por ejemplo un mamífero humano o no humano, por ejemplo, perros, gatos, cerdos, vacas, ovejas, cabras, caballos, ratas y ratones. El término "sujeto" no excluye a los individuos que son completamente normales con respecto a una enfermedad, o normales en todos los aspectos.
El término "tratamiento" se refiere a una medida terapéutica o preventiva. El tratamiento se puede administrar a un sujeto que tiene un trastorno médico o que en última instancia puede adquirir el trastorno, con el fin de prevenir, curar, retrasar, reducir la gravedad de, o mejorar uno o más síntomas de un trastorno o de un trastorno recurrente, o con el fin para prolongar la supervivencia de un sujeto más allá de lo esperado en ausencia de dicho tratamiento.
El término "cantidad terapéuticamente eficaz" significa la cantidad del compuesto sujeto que puede provocar una respuesta deseada, por ejemplo, una respuesta biológica o médica de un tejido, sistema, animal, o ser humano que se busca, por ejemplo, por parte de un investigador, un veterinario, un doctor en medicina, u otro médico.
Ejemplos
Los siguientes ejemplos específicos se deben interpretarse como meramente ilustrativos, y no limitativo del resto de la descripción en modo alguno.
Ejemplo 1: Construcción del Plásmido pET21b-His-pTAT-HOXB4-His
(a) La modificación del plásmido pET21b que contiene etiqueta His de N y C terminales y péptido de señal TAT.
El vector de expresión pET21b que contiene etiqueta His N-terminal y un péptido de señal TAT se generó mediante la inserción de oligonucleótidos 5'-TATGCACCACCACCACCACCACTACGGCCGCAAGAAACGCCGCCAGCGCCG CCGGCG-3' (sentido) y 5'-CTAGCGGCGCTGGCGGCGTTTCTTGCGGCC GTAGTGGTGGTGGTGGTGGTGCA3'(antisentido) en el plásmido pET21b. La etiqueta His C-terminal ya se encuentra presente en el vector pET21b.
(b) Clonación de HOXB4 en vector de expresión pET21b modificado
Un fragmento de ADN que contiene el marco de lectura abierto (ORF) de HOXB4 y una secuencia de codificación de 6 histidinas adicionales se obtuvo mediante amplificación por PCR utilizando el plásmido MGC54130 (GeneDiscovery, Taipei, Taiwan. Cat. Nº 5533346) como modelo, y el fragmento de cADN HOXB4 generado por PCR se subclonó en el vector de expresión pET21b modificado. La construcción del plásmido y las secuencias de ácido nucleico se muestran en las Figuras 2 y 3.
Ejemplo 2: Expresión de la Proteína Recombinante TAT-HOXB4H en E. coli
El vector de expresión pET21b-His-TAT-HOXB4-His se transformó en cepa de E. coli BL21 (DE3) pLysS (Novagen). Las células transformadas se hicieron crecer durante la noche a 37 °C. Los cultivos cultivados durante una noche se diluyeron a una OD600 inicial de 0.05. Los cultivos se hicieron crecer hasta una OD600 de 0.5 a 37 °C, inducidos con 1 mM de isopropil-beta-D-tiogalactopiranósido (IPTG) a 37 °C durante 3 horas, con agitación vigorosa.
Ejemplo 3: Purificación de la Proteína Recombinante TAT-HOXB4H
A continuación de la inducción, las células fueron cosechadas por centrifugación y se re-suspendieron en Tampón A (8 M de Urea, 20 mM de HEPES, 0.5 mM de DTT y 100 mM de NaCl, pH 8.0). La suspensión celular se pasó tres veces a través de una prensa francesa, y el lisado celular fue aclarado por centrifugación a 20,000 x g durante 30 min a 4 °C, se ajustó el sobrenadante a 10 mM de imidazol y se cargó en las columnas de quelación HisTrap (Amersham Pharmacia). Las proteínas unidas se eluyeron con 50, 100 y 250 mM de imidazol en tampón A. Las fracciones que contenían TAT-HOXB4H se cargaron en una columna MonoSP en Tampón B (4 M de urea, 20 mM de HEPES y 50 mM de NaCl, pH 6.5), eluido con 1.5 M de NaCl y 20 mM de HEPES (pH 8.0).
Ejemplo 4: Re-Naturalización de la Proteína Recombinante TAT-HOXB4H
La proteína TAT-HOXB4H en las fracciones eluidas se solubilizó y se desnaturalizó en una solución que contenía sal desnaturalizante (por ejemplo, hidrocloruro de guanidina) y a continuación se mezcló con tampón de D-PBS-T (0.1% de Triton X-100 en 2× PBS). La relación de la solución de proteína TAT-HOXB4H por tampón D-PBS-T fue de 1:4. La mezcla resultante se añadió a un tubo de filtro centrífugo de 10K (50 ml o 15 ml) pretratado con agua (10 ml o 3 ml), y a continuación se centrifugó a 3000 rpm durante 10 min. En este paso, la sal de desnaturalización se sustituye por tampón de D-PBS-T en el que Triton X100 es capaz de unirse con la región hidrófoba de la proteína HOXB4H.
Esta etapa de ultrafiltración o de intercambio de tampón utilizando un tubo de filtro centrífugo de 10K se realizó diez veces con una solución que contenía diferentes concentraciones de beta-ciclodextrina (dos veces de cada una de 1 mM, 2 mM, 3 mM, 4 mM y 5 mM de beta-ciclodextrina en tampón de almacenamiento IMDM por centrifugación a 1000-2500 x g durante 10 min. Se recogió la muestra restante en el tubo de filtro centrífugo de 10K y se almacenó a -80 °C.
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La homogeneidad de la proteína TAT-HOXB4H purificada se analizó mediante gel de SDS-poliacrilamida seguido por tinción de Coomassie (Figura 5). Tal como se muestra en la Figura 5, la TAT-HOXB4H purificada a partir de HisTrap y MonoSP dio como resultado un rendimiento 3-4 veces superior en comparación con el de la proteína TAT-HOXB4. El plásmido pTAT-HA-HOXB4 fue un obsequio del Dr. Guy Sauvageau, Universidad de Montreal, Canadá. Este plásmido se transformó en BL21(DE3)pLysS (Novagen) y la purificación de la proteína TAT-HOXB4 se realizó tal como se describe en Krosl et al, 2003.
Ejemplo 5: Estabilidad de la Proteína Recombinante TAT-HOXB4H
La estabilidad de la proteína TAT-HOXB4H se midió por análisis en gel de SDS-poliacrilamida. A través de la conservación, la TAT-HOXB4H completa puede ser degradada en fragmentos de 30 kD y 10 kD. Tal como se muestra en la Figura 6, la proteína TAT-HOXB4H producida por el método de esta invención se mantuvo estable incluso después de 16 horas almacenada en PBS a 4 °C.
Además, la estabilidad de la proteína TAT-HOXB4H almacenada a 4 °C y -20 °C en PBS y tampón de almacenamiento IMDM se analizó por electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida al 10% seguido por tinción con Coomassie. Tal como se muestra en la Figura 7, cuando se utilizó IMDM como tampón de almacenamiento, la estabilidad de la proteína TAT-HOXB4H se mantuvo incluso después de 4 semanas.
Ejemplo 6: Efecto de la Proteína Recombinante TAT-HOXB4H sobre la Hematopoyesis en Ratones Balb / c de Tipo Salvaje
Los ratones Balb / c se utilizan para investigar el posible efecto de la proteína TAT-HOXB4H recombinante en la movilización de células madre hematopoyéticas de la médula ósea a la sangre periférica. La proteína recombinante TAT-HOXB4H en solución salina tamponada con fosfato (PBS) se administró por inyección subcutánea cuatro veces al día durante 4 días. Para examinar la respuesta a la dosis, los grupos experimentales (n = 21) recibieron una dosis que oscilaba entre 1 µg, 5 µg, 10 µg, 15 µg. . . hasta 100 µg por kg de peso corporal por ratón. Un grupo separado de ratones de control recibieron solución salina tamponada de fosfato solamente, y otro grupo de ratones de control fueron inyectados por vía subcutánea dos veces al día durante 4 días con una dosis de 5 µg por kg de peso corporal de G-CSF por ratón.
Se recogió la sangre periférica de todos los ratones y se analizó mediante un citómetro de flujo para obtener el porcentaje de células madre CD34+ en células mononucleares (MNC). Los resultados se presentan como la media ± s.d. en la Tabla 1.
Tabla 1
Grupo (Experimental / Control)
El porcentaje cosechado de células CD34+ / MNC en sangre periférica de los ratones tratados se muestra
5 en la Tabla 1. Los grupos experimentales 3-21 tratados con TAT-HOXB4H (que recibieron una dosis de 10 µg o más por kg de peso corporal) mostraron sustancialmente el mismo efecto de movilización que el grupo de control tratado con G-CSF.
La médula ósea de los ratones tratados con TAT-HOXB4H (el Grupo Exp. 3 recibió una dosis de 10 µg
10 por kg de peso corporal), de los ratones tratados con G-CSF, y de los ratones inyectados con PBS fue fenotipado todavía más utilizando anticuerpo conjugado con FITC a CD34+ (Becton Dickinson) y fue analizado mediante un citómetro de flujo. La médula ósea de ratones tratados con TAT-HOXB4H (Figura 8C) parece ser más rica en células madre CD34+ que la médula ósea de ratones inyectados con G-CSF (Figura 8A) y PBS (Figura 8B). Por lo tanto, estos resultados indican que la inyección de proteínas TAT
15 HOXB4H recombinante da como resultado un aumento del número de CMH tanto en la médula ósea como en la sangre periférica en ratones.
Ejemplo 7: Efecto de la Proteína Recombinante TAT-HOXB4H sobre la Hematopoyesis en el Mono Rhesus
Se utilizaron monos rhesus macho adultos para investigar la eficacia de la proteína TAT-HOXB4H
5 recombinante en monos. El grupo experimental I (n = 5) fue inyectado por vía intravenosa con 10 µg por kg de peso corporal de la proteína TAT-HOXB4H recombinante cuatro veces al día durante 4 días. El grupo experimental II (n = 5) fue inyectado por vía intravenosa con 10 µg por kg de peso corporal de TAT-HOXB4H cuatro veces al día y fue inyectado por vía subcutánea con 5 µg por kg de peso corporal de G-CSF durante 4 días. El grupo de control I recibió PBS solamente, y el grupo de control II fue inyectado por
10 vía subcutánea dos veces al día durante 4 días con una dosis de 5 µg por kg de peso corporal de G-CSF. Se recogió la sangre periférica de todos los monos y se analizó mediante un citómetro de flujo para obtener el porcentaje de células madre CD34+ en células mononucleares (MNC). Los resultados se presentan en la Tabla 2.
15 Tabla 2
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Tal como se muestra en la Tabla 2, los monos (grupo experimental I) tratados con TAT-HOXB4H sólo mostraron un efecto de movilización significativamente mejor que los monos tratados con G-CSF (grupo 20 de control II). Los monos tratados con TAT-HOXB4H y G-CSF (grupo experimental II) mostraron un efecto de movilización ligeramente mejor que los monos tratados con G-CSF (grupo de control II).
Las muestras de médula ósea de monos tratados con TAT-HOXB4H, G-CSF o PBS fueron fenotipadas adicionalmente usando anticuerpo conjugado con FITC a CD34+ (Becton Dickinson) y se analizaron
25 mediante un citómetro de flujo. Los especímenes de médula ósea de monos tratados con TAT-HOXB4H (Figura 9C) aparecen como significativamente más ricos en células madre CD34+ que los especímenes de médula ósea de monos inyectados con G-CSF (Figura 9A), TAT-HOXB4H + G-CSF (Figura 9B) y PBS (Figura 9D).
30 Ejemplo 8: Efecto de la Proteína Recombinante TAT-HOXB4H en la Recuperación Hematopoyética en Ratones NOD-SCID
104 células Lin-/ CD34+ humanas fueron inyectadas en ratones irradiados (2,5 Gy) NOD-LtSz-scid / scid (NOD-SCID), junto con 105 células accesorias irradiadas CD34-. Los ratones se dividieron en dos grupos 35 de forma aleatoria: un grupo (n = 28) fue inyectado por vía intravenosa con 10 µg por kg de peso corporal de la proteína TAT-HOXB4H recombinante dos veces al día, y el otro (n = 28) recibió PBS dos veces al día. La presencia de células humanas CD45+ en las células de sangre periférica de todos los ratones se midió periódicamente por citometría de flujo después del trasplante. La recuperación hematopoyética se evaluó como el número de ratones cuyas células CD45+ humanas alcanzaron niveles de > 0.1% en la
40 sangre periférica (PB) después del trasplante. Tal como se muestra en la Figura 10, se observó una mejora en la recuperación hematopoyética en los ratones inyectados con la proteína TAT-HOXB4H recombinante.
Ejemplo 9: Efecto de la Proteína Recombinante TAT-HOXB4H en la Recuperación Hematopoyética 45 en Ratones Balb / c después de Quimioterapia con Cisplatino
Ratones Balb / c de 5 semanas de edad fueron inyectados por vía intravenosa varias veces con cisplatino hasta que el número de células Ly5 (murinas CD45) en la sangre periférica de los ratones disminuyeron a aproximadamente un 10% del número original. Los ratones tratados con cisplatino se dividieron en dos 50 grupos aleatorios: un grupo (n = 28) fueron inyectados por vía intravenosa con 10 µg por kg de peso corporal de la proteína TAT-HOXB4H recombinante dos veces al día, y el otro (n = 28) recibió PBS dos veces por día. La presencia de células Ly5 en las células de sangre periférica de todos los ratones se midió periódicamente por citometría de flujo después del trasplante. La tasa de recuperación hematopoyética se evaluó como el porcentaje del número de células Ly5 en la sangre periférica con
55 respecto al número original. Tal como se muestra en la Figura 11, se observó una mejora en la recuperación hematopoyética en los ratones inyectados con la proteína TAT-HOXB4H recombinante.
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