ES2247635T3 - Anticuerpos anti-tnf/receptor de tnf y metotrexato en el tratamiento de enfermedades autoinmunes. - Google Patents
Anticuerpos anti-tnf/receptor de tnf y metotrexato en el tratamiento de enfermedades autoinmunes.Info
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Abstract
SE DESCRIBEN PROCEDIMIENTOS PARA TRATAR Y/O PREVENIR UNA ENFERMEDAD MEDIADA POR EL TNF EN UN INDIVIDUO. SE EXPONE IGUALMENTE UNA COMPOSICION QUE COMPRENDE METOTREXATO Y UN ANTICUERPO DEL FACTOR DE NECROSIS ANTITUMORAL. LAS ENFERMEDADES MEDIADAS POR EL TNF INCLUYEN LA ARTRITIS REUMATOIDE, LA ENFERMEDAD DE CROHN Y LAS ENFERMEDADES INMUNES AGUDAS Y CRONICAS ASOCIADAS A LOS TRASPLANTES.
Description
Anticuerpos anti-TNF/receptor de
TNF y metotrexato en el tratamiento de enfermedades
autoinmunes.
Los monocitos y macrófagos secretan las citocinas
conocidas como factor de necrosis tumoral alfa (TNF\alpha) y
factor de necrosis tumoral beta (TNF\beta) en respuesta a
endotoxinas u otros estímulos. El TNF\alpha es un homotrímero
soluble de subunidades proteicas de 17 kDa (Smith et al.,
J. Biol. Chem. 262: 6951-6954 (1987)).
Existe también una forma precursora de TNF de 26 kDa unida a
membrana (Kriegler et al., Cell 53:
45-53 (1988)). Para revisiones del TNF, véanse
Beutler et al., Nature 320: 584 (1986); Old,
Science 230: 630 (1986); y Le et al., Lab.
Invest. 56: 234 (1987).
Células distintas de monocitos o macrófagos
pueden producir también TNF\alpha. Por ejemplo, las estirpes
celulares de tumor no monocítico humano producen factor de necrosis
tumoral (TNF) (Rubin et al., J. Exp. Med. 164: 1350
(1986); Spriggs et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA
84: 6563 (1987)). Los linfocitos T de sangre periférica CD4+ y CD8+
y algunas estirpes de células T y B cultivadas (Cuturi et
al., J. Exp. Med. 165: 1581 (1987); Sung et al.,
J. Exp. Med. 168: 1539 (1988); Turner et al., Eur.
J. Immunol. 17: 1807-1814 (1987)) producen
también TNF\alpha.
El TNF causa acciones proinflamatorias que dan
como resultado lesión de tejidos, tales como degradación de
cartílago y hueso e inducción de moléculas de adhesión, induciendo
actividad procoagulante sobre células endoteliales vasculares (Pober
et al., J. Immunol. 136: 1680 (1986)), aumentando la
adherencia de neutrófilos y linfocitos (Pober et al., J.
Immunol. 138: 3319 (1987)) y estimulando la liberación de
factor activador de plaquetas de macrófagos, neutrófilos y células
endoteliales vasculares (Camussi et al., J. Exp. Med.
166: 1390 (1987)).
Evidencias recientes asocian el TNF con
infecciones (Cerami et al., Immunol. Today 9: 28
(1988), trastornos inmunes, patologías neoplásicas (Oliff et
al., Cell 50: 555 (1987)), patologías autoinmunes y
patologías de injerto frente a hospedador (Piguet et al.,
J. Exp. Med. 166: 1280 (1987)). La asociación del TNF con
cáncer y patologías infecciosas está a menudo relacionada con un
estado catabólico del hospedador. Los pacientes de cáncer sufren
pérdida de peso, asociada habitualmente a la anorexia.
El agotamiento extendido que está asociado al
cáncer y a otras enfermedades es conocido como "caquexia" (Kern
et al., J. Parent. Enter. Nutr. 12:
286-298 (1988)). La caquexia incluye pérdida
progresiva de peso, anorexia y erosión persistente de la masa
corporal en respuesta a un crecimiento maligno. El trastorno
fisiológico fundamental puede relacionarse con una reducción de la
ingesta de alimento respecto al gasto de energía. El estado
caquéctico causa la mayoría de la morbilidad y mortalidad por
cáncer. El TNF puede mediar la caquexia en cáncer, patologías
infecciosas y otros estados catabólicos.
El TNF desempeña también un papel fundamental en
la sepsis gram-negativa y en el shock endotóxico
(Michie et al., Br. J. Surg. 76:
670-671 (1989); Debets et al., Second
Vienna Shock Forum, pág. 463-466 (1989); Simpson
et al., Crit. Care Clin. 5: 27-47
(1989)), incluyendo fiebre, malestar, anorexia y caquexia. La
endotoxina activa fuertemente la producción de monocito/macrófago y
la secreción de TNF y otras citocinas (Kornbluth et al.,
J. Immunol. 137: 2585-2591 (1986)). El TNF y
otras citocinas derivadas de monocitos median las respuestas
metabólicas y neurohormonales ante la endotoxina (Michie et
al., New Engl. J. Med. 318; 1481-1486
(1988)). La administración de endotoxina a voluntarios humanos
produce una enfermedad aguda con síntomas similares a la gripe,
incluyendo fiebre, taquicardia, tasa metabólica aumentada y
liberación de hormona del estrés (Revhaug et al., Arch.
Surg. 123: 162-170 (1988)). El TNF en
circulación aumenta en pacientes que sufren sepsis
gram-negativa (Waage et al., Lancet 1:
355-357 (1987); Hammerle et al., Second
Vienna Shock Forum, pág. 715-718 (1989); Debets
et al., Crit. Care Med. 17: 489-497
(1989); Calandra et al., J. Infect. Dis. 161:
982-987 (1990)).
Por tanto, el TNF\alpha se ha implicado en
enfermedades inflamatorias, enfermedades autoinmunes, infecciones
virales, bacterianas y parasíticas, malignidades y/o enfermedades
neurodegenerativas, y es una diana útil para terapia biológica
específica en enfermedades tales como artritis reumatoide y
enfermedad de Crohn. Se han reseñado efectos beneficiosos en
ensayos de etiqueta abierta con un anticuerpo monoclonal quimérico
ante TNF\alpha (cA2), con supresión de la inflamación (Elliott
et al., Arthritis Rheum. 36:
1681-1690 (1993); Elliott et al.,
Lancet 344: 1125-1127 (1994)). Véase también
Van Dullemen et al., Gastroenterology 109:
129-135 (1995). Se han reseñado también resultados
beneficiosos en un ensayo aleatorizado de doble ciego controlado por
placebo con cA2, con supresión de la inflamación (Elliott et
al., Lancet 344: 1105-1110 (1994)).
C. Bologna et al., "Association des
traitements de fond dans la polyarhtrite rhumatoide", La
Presse Médicale, vol. 25, nº 19, 1 de junio de 1996
(01-06-1996), páginas
876-878, XP002048553, París, Francia, sugieren
estudiar las combinaciones que incluyen metotrexato (MTX) con
fármacos diana tales como anticuerpos anti-CD4 o
anti-TNF\alpha o el receptor soluble de
TNF-\alpha.
El documento WO 96/33204 A (Kennedy Institute for
Rheumatology et al.), 24 de octubre de 1996
(24-10-1996) y el documento WO
94/08619 A (The Kennedy Institute of Rheumatology), 28 de abril de
1994 (28-04-1994) se refieren al
tratamiento de trastornos autoinmunes e inflamatorios utilizando un
agente inhibidor de células T CD4+, tal como un anticuerpo
anti-CD4 asociado a un antagonista de TNF, tal como
un anticuerpo anti-TNF o receptor de TNF.
En "Tumor necrosis factor alpha (TNF) blockade
enhances methotrexate (MTX) response in patients with rheumatoid
arthritis (RA)", Sander Oliver; Herborn Gertraud; Rau Rolf,
Arthritis & Rheumatism, 1995, ISSN
0004-3591, vol, 38, Nº 9, supl. PG S266 y
"Supression of tumor necrosis factor (TNF) and
TNF-mediated effector mechanisms by methotrexate
(MTX) in patients with rheumatoid arthritis", Fenner Helmut;
Zueger Stefan; Taylor David; Sander Oliver, Herborn; Gertraud.
Arthritis & Rheumatism 1995, ISSN
0004-3591, vol. 38, nº 9, supl. PG S266, se utilizan
MTX y un antagonista de TNF en el mismo estudio clínico.
El informe científico anual de 1995 del Instituto
de Reumatología Mathilda y Terence Kennedy, puesto a disposición en
febrero-marzo de 1996, dice que estaban en
desarrollo estudios clínicos referentes a la seguridad y eficacia de
la dosificación repetida con el anticuerpo cA2
anti-TNF en combinación, o comparado, con el fármaco
antirreumatoide establecido MTX.
La presente invención está basada en el
descubrimiento de que el tratamiento de pacientes que sufren una
enfermedad mediada por TNF con un antagonista de factor de necrosis
tumoral, tal como un anticuerpo anti-factor de
necrosis tumoral, como terapia coadyuvante de y/o concomitante con
la terapia con metotrexato produce una reducción rápida y sostenida
de los signos y síntomas clínicos de la enfermedad. La presente
invención está también basada en el descubrimiento inesperado y
dramático de que un régimen de dosis múltiples de antagonista de
factor de necrosis tumoral, tal como un anticuerpo
anti-factor de necrosis tumoral, cuando se
administra adjuntamente con metotrexato a un individuo que sufre
una enfermedad mediada por TNF, produce una respuesta clínica
altamente beneficiosa o sinérgica durante una duración
significativamente más larga comparado con la obtenida con un
régimen de dosis única o múltiple del antagonista administrado solo
o con la obtenida con el metotrexato administrado solo. Como
resultado de la invención de la solicitante, se proporciona un
método en la presente memoria para tratar y/o prevenir una
enfermedad mediada por TNF en un individuo, que comprende
coadministrar un anticuerpo anti-TNF o un fragmento
del mismo y metotrexato al individuo en cantidades terapéuticamente
eficaces. En una realización particular, el metotrexato se
administra en forma de una serie de dosis bajas separadas por
intervalos de días o semanas.
Se proporciona también en la presente memoria un
método para tratar y/o prevenir la recurrencia de una enfermedad
mediada por TNF en un individuo, que comprende coadministrar un
anticuerpo anti-TNF o un fragmento del mismo y
metotrexato al individuo en cantidades terapéuticamente eficaces.
Las enfermedades mediadas por TNF incluyen artritis reumatoide,
enfermedad de Crohn y enfermedades inmunes agudas y crónicas
asociadas a un transplante alogénico (por ejemplo, transplante
renal, cardiaco, de médula ósea, de hígado, pancreático, de
intestino delgado, de piel o de pulmón).
Por lo tanto, en una realización, la invención se
refiere a un método de tratamiento y/o prevención de artritis
reumatoide en un individuo, que comprende coadministrar un
anticuerpo anti-TNF o un fragmento del mismo y
metotrexato al individuo en cantidades terapéuticamente eficaces.
En una segunda realización, la invención se refiere a un método de
tratamiento y/o prevención de la enfermedad de Crohn en un
individuo, que comprende coadministrar un anticuerpo
anti-TNF o un fragmento del mismo y metotrexato al
individuo en cantidades terapéuticamente eficaces. En una tercera
realización, la invención se refiere a un método de tratamiento y/o
prevención de otras enfermedades autoinmunes y/o enfermedades
inmunes agudas o crónicas asociadas a un transplante en un
individuo, que comprende coadministrar un anticuerpo
anti-TNF o un fragmento del mismo y metotrexato al
individuo en cantidades terapéuticamente eficaces.
Una realización adicional de la invención se
refiere a composiciones que comprenden un anticuerpo
anti-TNF o un fragmento del mismo y metotrexato.
Además de anticuerpos anti-TNF,
los antagonistas de TNF incluyen un receptor p75 soluble de factor
de necrosis tumoral \alpha humano o un fragmento funcional del
mismo. La invención se define mediante las reivindicaciones.
Las Figuras 1A-1C son un conjunto
de tres gráficas que muestran los resultados frente al tiempo para
el recuento de articulaciones inflamadas en pacientes de artritis
reumatoide (AR) que reciben tratamiento con cA2 (1 mg/kg, 3 mg/kg o
10 mg/kg) con o sin metotrexato. Los resultados para el grupo
placebo (metotrexato solo) se muestran con el grupo de 1 mg/kg. El
número de pacientes con datos en cada visita de evaluación se
muestra en la parte inferior de cada gráfica. Círculo blanco: -
metotrexato (MTX-), círculo negro = + metotrexato (MTX+), cuadrado
=
placebo.
placebo.
Las Figuras 2A-2C son un conjunto
de tres gráficas que muestran los resultados frente al tiempo para
el recuento de articulaciones sensibles en pacientes de artritis
reumatoide (AR) que reciben tratamiento con cA2 (1 mg/kg, 3 mg/kg o
10 mg/kg) con o sin metotrexato. Los resultados para el grupo
placebo (metotrexato solo) se muestran con el grupo de 1 mg/kg. El
número de pacientes con datos en cada visita de evaluación se
muestra en la parte inferior de cada gráfica. Círculo blanco: -
metotrexato (MTX-), círculo negro= + metotrexato (MTX+), cuadrado =
placebo.
Las Figuras 3A-3C son un conjunto
de tres gráficas que muestran los resultados frente al tiempo de la
valoración global de la enfermedad por el médico en pacientes con
AR que reciben tratamiento con cA2 (1 mg/kg, 3 mg/kg o 10 mg/kg) con
o sin metotrexato. Los resultados para el grupo placebo
(metotrexato solo) se muestran con el grupo de 1 mg/kg. El número
de pacientes con datos en cada visita de evaluación se muestra en la
parte inferior de cada gráfica. Círculo blanco: - metotrexato
(MTX-), círculo negro = + metotrexato (MTX+), cuadrado =
placebo.
Las Figuras 4A-4C son un conjunto
de tres gráficas que muestran los resultados frente al tiempo de la
valoración de la enfermedad por el paciente en pacientes con AR que
reciben tratamiento con cA2 (1 mg/kg, 3 mg/kg o 10 mg/kg) con o sin
metotrexato. Los resultados para el grupo placebo (metotrexato
solo) se muestran con el grupo de 1 mg/kg. El número de pacientes
con datos en cada visita de evaluación se muestra en la parte
inferior de cada gráfica. Círculo blanco: - metotrexato (MTX-),
círculo negro = + metotrexato (MTX+), cuadrado = placebo.
Las Figuras 5A-5C son un conjunto
de tres gráficas que muestran los resultados frente al tiempo de la
concentración de proteína C reactiva (PCR) en pacientes con AR que
reciben tratamiento con cA2 (1 mg/kg, 3 mg/kg o 10 mg/kg) con o sin
metotrexato. Los resultados para el grupo placebo (metotrexato
solo) se muestran con el grupo de 1 mg/kg. El número de pacientes
con datos en cada visita de evaluación se muestra en la parte
inferior de cada gráfica. Círculo blanco: - metotrexato (MTX-),
círculo negro = + metotrexato (MTX+), cuadrado = placebo.
Las Figuras 6A-6C son un conjunto
de tres gráficas que muestran los resultados frente al tiempo del
cuestionario de evaluación de la salud (CES) en pacientes con AR que
reciben tratamiento con cA2 (1 mg/kg, 3 mg/kg o 10 mg/kg) con o sin
metotrexato. Los resultados para el grupo placebo (metotrexato solo)
se muestran con el grupo de 1 mg/kg. El número de pacientes con
datos en cada visita de evaluación se muestra en la parte inferior
de cada gráfica. Círculo blanco: - metotrexato (MTX-), círculo
negro = + metotrexato (MTX+), cuadrado = placebo.
Las Figuras 7A-7F son un conjunto
de seis gráficas que muestran la concentración sérica de cA2 en
cada paciente de AR que recibe tratamiento con cA2 (1 mg/kg, 3
mg/kg o 10 mg/kg) con o sin metotrexato, representado frente al
tiempo. Los datos representados son las concentraciones séricas de
cA2 obtenidas justo antes de la administración de cA2 en las
semanas 2, 6, 10 y 14 y después en las semanas 18 y 26. Las escalas
para la concentración sérica de cA2 se condensan con las dosis
mayores de cA2.
Las Figuras 8A y 8B son un conjunto de dos
gráficas que muestran la concentración sérica mediana de cA2 frente
al tiempo en pacientes con AR que reciben 3 mg/kg de cA2 (panel
superior) o 10 mg/kg de cA2 (panel inferior) con o sin metotrexato.
Cuadrado = +metotrexato, círculo o triángulo = -metotrexato.
La presente invención se refiere al
descubrimiento de que los antagonistas de factor de necrosis
tumoral pueden administrarse a pacientes que sufren una enfermedad
mediada por TNF como terapia coadyuvante de y/o concomitante con la
terapia con metotrexato, con un alivio de bueno a excelente de los
signos y síntomas de la enfermedad. La presente invención se
refiere también al descubrimiento de que los antagonistas de factor
de necrosis tumoral pueden administrarse a pacientes que sufren una
enfermedad mediada por TNF en dosis múltiples y como terapia
coadyuvante de y/o concomitante con la terapia con metotrexato, con
una mejora significativa en la duración de la respuesta
clínica.
Como resultado de la invención de la solicitante,
se proporciona en la presente memoria un método para tratar y/o
prevenir una enfermedad mediada por TNF en un individuo, que
comprende coadministrar metotrexato y un antagonista de factor de
necrosis tumoral al individuo en cantidades terapéuticamente
eficaces. El antagonista de TNF y metotrexato pueden administrarse
simultánea o secuencialmente. El antagonista de TNF y metotrexato
pueden administrarse cada uno en dosis únicas o múltiples. Pueden
coadministrarse múltiples antagonistas de TNF con metotrexato.
Pueden utilizarse otros regímenes y agentes terapéuticos en
combinación con la coadministración terapéutica de antagonistas de
TNF y metotrexato u otros fármacos que suprimen el sistema
inmune.
Se proporciona también un método en la presente
memoria para tratar y/o prevenir la recurrencia de una enfermedad
mediada por TNF en un individuo, que comprende coadministrar
metotrexato y un antagonista de TNF al individuo en cantidades
terapéuticamente eficaces.
Como se utiliza en la presente memoria, una
"enfermedad mediada por TNF" designa una patología o enfermedad
relacionada con TNF. Las patologías o enfermedades relacionadas con
TNF incluyen, pero sin limitación, las siguientes:
(A) patologías inmunes y autoinmunes agudas y
crónicas tales como, pero sin limitación, artritis reumatoide (AR),
artritis crónica juvenil (ACJ), tiroiditis, enfermedad de injerto
frente a hospedador (EIFH), escleroderma, diabetes mellitus,
enfermedad de Graves, alergia, enfermedad inmune aguda o crónica
asociada a transplante alogénico tal como, pero sin limitación,
transplante renal, transplante cardiaco, transplante de médula
ósea, transplante de hígado, transplante pancreático, transplante de
intestino delgado, transplante de pulmón y transplante de piel.
(B) infecciones, incluyendo, pero sin limitación,
síndrome de sepsis, caquexia, colapso circulatorio y shock como
resultado de infección bacteriana aguda o crónica, enfermedades
parasíticas y/o infecciosas agudas y crónicas, enfermedades
bacterianas, virales o fúngicas, tales como virus de la
inmunodeficiencia humana (VIH), síndrome de la inmunodeficiencia
adquirida (SIDA) (incluyendo síntomas de caquexia, trastornos
autoinmunes, complejo de demencia por SIDA e infecciones);
(C) enfermedades inflamatorias, tales como
patologías inflamatorias crónicas, incluyendo patologías
inflamatorias crónicas tales como, pero sin limitación,
sarcoidosis, enfermedad inflamatoria crónica del intestino, colitis
ulcerosa y patología o enfermedad de Crohn; patologías
inflamatorias vasculares tales como, pero sin limitación,
coagulación intravascular diseminada, aterosclerosis, patología de
Kawasaki y síndromes de vasculitis tales como, pero sin limitación,
poliarteritis nodular, granulomatosis de Wegener, púrpura de
Henoch-Schönlein, artritis de células gigantes y
vasculitis microscópica de los riñones; hepatitis activa crónica;
síndrome de Sjögren; espondiloartropatías tales como espondilitis
anquilosante, artritis y espondilitis psoriásica, artritis y
espondilitis enteropática, artritis reactiva y artritis asociada a
enfermedad inflamatoria del intestino; y uveitis;
(D) enfermedades neurodegenerativas incluyendo,
pero sin limitación, enfermedades desmielinizantes tales como
esclerosis múltiple y mielitis transversa aguda; miastenia grave;
trastornos extrapiramidales y cerebelares tales como lesiones del
sistema corticoespinal; trastornos de los ganglios basales o
trastornos cerebelares; trastornos del movimiento hipercinéticos
tales como corea de Huntington y corea senil; trastornos del
movimiento inducidos por fármacos tales como los inducidos por
fármacos que bloquean receptores de dopamina del sistema nervioso
central (SNC); trastornos del movimiento hipocinéticos tales como
enfermedad de Parkinson; parálisis supranuclear progresiva;
trastornos cerebelares y espinocerebelares tales como lesiones
estructurales del cerebelo; degeneraciones espinocerebelares
(ataxia espinal, ataxia de Friedreich, degeneraciones corticales
cerebelares, degeneraciones de sistemas múltiples (Mencel,
Dejerine-Thomas, Shi-Drager y
MachadoJoseph)); y trastornos sistémicos (enfermedad de Refsum,
abetalipoprotemia, ataxia, telangiectasia y trastorno multisistémico
mitocondrial); trastornos de la unidad motora tales como atrofias
musculares neurogénicas (degeneración de las células corneales
anteriores tal como esclerosis lateral amiotrófica, atrofia
muscular espinal infantil y atrofia muscular espinal juvenil);
enfermedad de Alzheimer; síndrome de Down en la mediana edad;
enfermedad de cuerpos de Lewy difusos; demencia senil de tipo
cuerpos de Lewy; síndrome de Wernicke-Korsakoff;
alcoholismo crónico; cirrosis biliar primaria; alveolitis
fibrosante criptogénica y otras enfermedades pulmonares fibróticas;
anemia hemolítica; enfermedad de Creutzfeldt-Jakob;
panencefalitis esclerosante subaguda; enfermedad de
Hallerrorden-Spatz y demencia pugilística o
cualquier subconjunto de las mismas;
(E) patologías malignas que implican tumores
secretores de TNF u otras malignidades que implican TNF tales como,
pero sin limitación, leucemias (aguda, mielocítica crónica,
linfocítica crónica y/o síndrome mielodispástico), linfomas (de
Hodgkin y no de Hodgkin tales como linfomas malignos (linfoma de
Burkitt o micosis fungoide));
(F) síndromes caquécticos y otras patologías y
enfermedades que implican TNF en exceso tales como, pero sin
limitación, caquexia por cáncer, enfermedad parasítica e
insuficiencia cardiaca; y
(G) hepatitis inducida por el alcohol y otras
formas de hepatitis crónica.
Véase, por ejemplo, Berkow et al., Eds.,
The Merck Manual, 16ª edición, capítulo 11, pág.
1380-1529, Merck and Co., Rahway, Nueva Jersey,
1992, incorporado a la presente memoria como referencia.
Los términos "recurrencia",
"exacerbación" o "recaída" se definen para abarcar la
reaparición de uno o más síntomas del estado patológico. Por
ejemplo, en el caso de artritis reumatoide, una recurrencia puede
incluir la experiencia de uno o más de articulaciones inflamadas,
rigidez matutina o sensibilidad articular.
En una realización, la invención se refiere a un
método de tratamiento y/o prevención de artritis reumatoide en un
individuo, que comprende coadministrar metotrexato y un antagonista
de TNF al individuo en cantidades terapéuticamente eficaces.
En una segunda realización, la invención se
refiere a un método para tratar y/o prevenir la enfermedad de Crohn
en un individuo, que comprende coadministrar metotrexato y un
antagonista de TNF al individuo en cantidades terapéuticamente
eficaces.
En una tercera realización, la invención se
refiere a un método para tratar y/o prevenir una enfermedad inmune
aguda o crónica asociada a un transplante alogénico en un
individuo, que comprende coadministrar metotrexato y un antagonista
de TNF al individuo en cantidades terapéuticamente eficaces. Como
se utiliza en la presente memoria, un "transplante" incluye
transplante de órgano, tejido o célula, tal como transplante renal,
transplante cardiaco, transplante de médula ósea, transplante de
hígado, transplante pancreático, transplante de intestino delgado,
transplante de piel y transplante de pulmón.
Los beneficios de la terapia de combinación con
metotrexato y antagonistas de TNF incluyen altas tasas de respuesta
clínica durante duraciones significativamente más largas en
comparación con la obtenida con el tratamiento con cada modalidad
terapéutica separadamente. Además, el metotrexato reduce
significativamente la inmunogenicidad de los anticuerpos
anti-TNF, permitiendo así la administración de
múltiples dosificaciones de anticuerpos anti-TNF
con seguridad potenciada. Los resultados descritos en la presente
memoria sugieren que puede utilizarse metotrexato para reducir la
inmunogenicidad de otros anticuerpos o proteínas. Basándose en los
resultados descritos en la presente memoria, puede utilizarse
metotrexato en otras formas de terapia de anticuerpo, tales como
terapia de anticuerpo anti-IL-2.
Este método es particularmente pertinente en terapias distintas de
terapia de anticuerpo anti-CD4.
En una realización adicional, la invención se
refiere a composiciones que comprenden metotrexato y un antagonista
de TNF. Las composiciones de la presente invención son útiles para
tratar un sujeto que tiene una patología o afección asociada a
niveles anormales de una sustancia reactiva con un antagonista de
TNF, en particular TNF en exceso o menor que los niveles presentes
en un sujeto sano normal, cuando dichos niveles en exceso o
reducidos aparecen en un tipo de tejido o localización sistémica,
localizada o particular en el cuerpo. Dichos tipos de tejido pueden
incluir, pero sin limitación, sangre, linfa, sistema nervioso
central (SNC), hígado, riñón, bazo, músculo cardiaco o vasos
sanguíneos, materia blanca o materia gris cerebral o de médula
espinal, cartílago, ligamentos, tendones, pulmón, páncreas, ovario,
testículos, próstata. Pueden localizarse también concentraciones de
TNF aumentadas o reducidas respecto a los niveles normales en
regiones o células específicas en el cuerpo, tales como
articulaciones, conexiones nervio-vaso sanguíneo,
huesos, tendones o ligamentos específicos o sitios de infección,
tales como infecciones bacterianas o virales.
Como se utiliza en la presente memoria, un
"antagonista de factor de necrosis tumoral" reduce, bloquea,
inhibe, anula o interfiere la actividad TNF in vivo. Por
ejemplo, un antagonista de TNF adecuado puede unirse a TNF, e
incluye anticuerpos anti-TNF y moléculas receptoras
que se unen específicamente a TNF. Un antagonista de TNF adecuado
puede prevenir o inhibir también la síntesis y/o liberación de TNF,
e incluye compuestos tales como talidomida, tenidap e inhibidores
de fosfodiesterasa tales como, pero sin limitación, pentoxifilina y
rolipram. Un antagonista de TNF adecuado que puede prevenir o
inhibir la síntesis de TNF y/o la liberación de TNF incluye también
potenciadores del receptor de adenosina A2b y agonistas del receptor
de adenosina A2b (por ejemplo,
5'-(N-ciclopropil)-carboxamidoadenosina,
5'-N-etilcarboxamidoadenosina, ciclohexiladenosina y
R-N'-fenil-2-propiladenosina).
Véase, por ejemplo, Jacobson (documento GB 2289218A). Un
antagonista de TNF adecuado puede prevenir o inhibir también la
señalización de receptor de TNF.
Como se utiliza en la presente memoria, un
"anticuerpo anti-factor de necrosis tumoral"
reduce, bloquea, inhibe, anula o interfiere la actividad TNF in
vivo. Los anticuerpos anti-TNF útiles en los
métodos y composiciones de la presente invención incluyen
anticuerpos monoclonales, quiméricos, humanizados, de superficie
modificada y recombinantes y fragmentos de los mismos, que se
caracterizan por alta afinidad de unión a TNF y baja toxicidad
(incluyendo respuesta de anticuerpo humano
anti-múrido (HAMA) y/o anticuerpo humano
anti-quimérico (HACA)). En particular, un anticuerpo
en el que los componentes individuales tales como la región
variable, la región constante y estructural posean individual y/o
colectivamente una baja inmunogenicidad, es útil en la presente
invención. Los anticuerpos que pueden utilizarse en la invención se
caracterizan por su capacidad de tratar pacientes durante periodos
extensos con un alivio de bueno a excelente de los síntomas y baja
toxicidad. La baja inmunogenicidad y/o alta afinidad, así como
otras propiedades no definidas, pueden contribuir a los resultados
terapéuticos conseguidos.
Es un ejemplo de un anticuerpo monoclonal de alta
afinidad útil en los métodos y composiciones de la presente
invención el anticuerpo monoclonal de múrido (mAb) A2 y los
anticuerpos que inhiban competitivamente in vivo la unión a
TNF\alpha humano de mAb A2 de múrido
anti-TNF\alpha, o un anticuerpo que tenga
sustancialmente las mismas características de unión específicas,
así como fragmentos y regiones de los mismos. Se describe el
anticuerpo monoclonal de múrido A2, y derivados quiméricos del mismo
tales como cA2, en la solicitud de EE.UU. nº 08/192.093 (presentada
el 4 de febrero de 1994), la solicitud de EE.UU. nº 08/192.102
(presentada el 4 de febrero de 1994), la solicitud de EE.UU. nº
08/192.861 (presentada el 4 de febrero de 1994), la solicitud de
EE.UU. nº 08/324.799 (presentada el 18 de octubre de 1994) y Le J.
et al., publicación internacional nº WO 92/16553 (publicada
el 1 de octubre de 1992). Es un segundo ejemplo de anticuerpo
monoclonal de alta afinidad útil en los métodos y composiciones de
la presente invención el mAb de múrido 195 y anticuerpos que inhiban
competitivamente in vivo la unión a TNF\alpha humano de
anti-TNF\alpha de múrido 195, o un anticuerpo
que tenga sustancialmente las mismas características de unión
específica, así como fragmentos y regiones del mismo. Otros
anticuerpos monoclonales de alta afinidad útiles en los métodos y
composiciones de la presente invención incluyen mAb de múrido 114 y
mAb de múrido 199 y anticuerpos que inhiban competitivamente in
vivo la unión a TNF\alpha humano de mAb de múrido 114 o mAb
de múrido 199 anti-TNF, o un anticuerpo que tenga
sustancialmente las mismas características de unión específica que
mAb 114 o mAb 199, así como fragmentos y regiones del mismo. Los
anticuerpos monoclonales de múrido 114, 195 y 199 y el método para
producirlos se describen por Möller A. et al.
(Cytokine 2(3): 162-169 (1990)). Los
métodos preferidos para determinar la especificidad y afinidad de
mAb mediante inhibición competitiva pueden encontrarse en Harlow
et al., "Antibodies: A Laboratory Manual", Cold Spring
Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, Nueva York (1988);
Colligan et al., eds., Current Protocols in
Immunology, Greene Publishing Assoc. y Wiley Interscience,
Nueva York (1992, 1993); Kozbor et al., Immunol.
Today 4: 72-79 (1983); Ausubel et al.,
eds., Current Protocols in Molecular Biology, Wiley
Interscience, Nueva York (1987, 1992, 1993); y Muller, Meth.
Enzymol. 92: 589-601 (1983).
Se describen en la técnica ejemplos adicionales
de anticuerpos monoclonales anti-TNF que pueden
utilizarse en la presente invención (véanse, por ejemplo, la
solicitud de EE.UU. nº 07/943.852 (presentada el 11 de septiembre de
1992), Rathjen et al., publicación internacional nº WO
91/02078 (publicada el 21 de febrero de 1991); Rubin et al.,
publicación de patente OEP 0218868 (publicada el 22 de abril de
1987); Yone et al., publicación de patente OEP 0288088 (26 de
octubre de 1988); Liang et al., Biochem. Biophys. Res.
Comm. 137: 847-854 (1986); Meager et al.,
Hybridoma 6: 305-311 (1987); Fendly et
al., Hybridoma 6: 359-369 (1987);
Bringman et al., Hybridoma 6:
489-507 (1987); Hirai et al., J. Immunol.
Meth. 96: 57-62 (1987); Moller et al.,
Cytokine 2: 162-169 (1990), cuyas referencias
están enteramente incorporadas a la presente memoria como
referencia.
Los anticuerpos quiméricos son moléculas de
inmunoglobulina caracterizadas por dos o más segmentos o porciones
derivados de diferentes especies animales. Generalmente, la región
variable del anticuerpo quimérico deriva de un anticuerpo mamífero
no humano, tal como un mAb de múrido, y la región constante de
inmunoglobulina deriva de una molécula de inmunoglobulina humana.
Preferiblemente, se selecciona una región variable con baja
inmunogenicidad y se combina con una región constante humana que
tiene también baja inmunogenicidad, teniendo también
preferiblemente la combinación baja inmunogenicidad. Se define la
"baja" inmunogenicidad en la presente memoria por elevar
significativamente las respuestas HACA o HAMA en menos de
aproximadamente 75%, o preferiblemente menos de aproximadamente 50%
de los pacientes tratados y/o producir bajas titulaciones en el
paciente tratado (menos de aproximadamente 300, preferiblemente
menos de aproximadamente 100, medidas con un inmunoensayo enzimático
de doble antígeno) (Elliott et al., Lancet 344:
1125-1127 (1994).
Como se utiliza en la presente memoria, el
término "anticuerpo quimérico" incluye inmunoglobulinas
monovalentes, divalentes o polivalentes. Es un anticuerpo quimérico
monovalente un dímero (HL) formado por una cadena H quimérica
asociada mediante puentes disulfuro con una cadena L quimérica. Es
un anticuerpo quimérico divalente un tetrámero (H2L2) formado por
dos dímeros HL asociados mediante al menos un puente disulfuro.
Puede producirse también un anticuerpo quimérico polivalente, por
ejemplo, empleando una región CH que agrega (por ejemplo de una
cadena H de IgM o cadena \mu).
Los anticuerpos comprenden cadenas de
inmunoglobulina pesada (H) y/o ligera (L) individuales. Una cadena
H quimérica comprende una región de unión a antígeno derivada de la
cadena H de un anticuerpo no humano específico de TNF, que está
ligada al menos a una porción de una región C de cadena H humana
(CH), tal como CH1 o CH2. Una cadena L quimérica comprende una
región de unión a antígeno derivada de la cadena L de un anticuerpo
no humano específico de TNF, ligada al menos a una porción de una
región C de cadena L humana (CL).
Se han descrito en la técnica anticuerpos
quiméricos y métodos para su producción (Morrison et al.,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81: 6851-6855
(1984); Boulianne et al., Nature 312:
643-646 (1984); Neuberger et al.,
Nature 314: 268-270 (1985); Taniguchi et
al., solicitud de patente europea nº 171496 (publicada el 19 de
febrero de 1985); Morrison et al., solicitud de patente
europea nº 173494 (publicada el 5 de marzo de 1986); Neuberger
et al., solicitud PCT nº WO 86/01533 (publicada el 13 de
marzo de 1986); Kudo et al., solicitud de patente europea nº
184187 (publicada el 11 de junio de 1986); Morrison et al.,
solicitud de patente europea nº 173494 (publicada el 5 de marzo de
1986); Sahagan et al., J. Immunol. 137:
1066-1074 (1986); Robinson et al.,
publicación internacional nº PCT/US86/02269 (publicada el 7 de mayo
de 1987); Liu et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84:
3439-3443 (1987); Sun et al., Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 84: 214-218 (1987); Better et
al., Science 240: 1041-1043 (1988); y
Harlow y Lane, "Antibodies: A Laboratory Manual", Cold Spring
Harbor Laboratory, Nueva York, 1988).
El anticuerpo quimérico anti-TNF
puede comprender, por ejemplo, dos cadenas ligeras y dos cadenas
pesadas, comprendiendo cada una de las cadenas al menos parte de
una región constante humana y al menos parte de una región variable
(V) de origen no humano que tiene especificidad por el TNF humano,
uniéndose dicho anticuerpo con alta afinidad a un epítopo inhibidor
y/o neutralizante de TNF humano, tal como el anticuerpo cA2. El
anticuerpo incluye también un fragmento o un derivado de dicho
anticuerpo, tal como una o más porciones de la cadena de anticuerpo,
tal como las regiones constantes o variables de cadena pesada, o
las regiones constantes o variables de cadena ligera.
La humanización y modificación de superficie del
anticuerpo puede reducir adicionalmente la inmunogenicidad del
anticuerpo. Véanse, por ejemplo, Winter (patente de EE.UU. nº
5.225.539 y EP 239.400 B1), Padlan et al. (documento EP
519596 A1) y Pedersen et al. (documento EP 592.106 A1).
Los anticuerpos preferidos útiles en los métodos
y composiciones de la presente invención son anticuerpos
anti-TNF quiméricos humano-múrido de
alta afinidad y fragmentos o regiones de los mismos, que tienen
potente actividad inhibidora y/o neutralizante in vivo contra
TNF\alpha humano. Dichos anticuerpos y anticuerpos quiméricos
pueden incluir los generados mediante inmunización utilizando
TNF\alpha recombinante purificado o fragmentos peptídicos del
mismo que comprenden uno o más epítopos.
Es un ejemplo de dicho anticuerpo quimérico cA2 y
anticuerpos que inhiban competitivamente in vivo la unión a
TNF\alpha humano de mAb A2 de múrido
anti-TNF\alpha, mAb cA2 quimérico, o un anticuerpo
que tenga sustancialmente las mismas características de unión
específica, así como fragmentos y regiones de los mismos. El mAb cA2
quimérico se ha descrito, por ejemplo, en la solicitud de EE.UU. nº
08/192.093 (presentada el 4 de febrero de 1994), la solicitud de
EE.UU. nº 08/192.102 (presentada el 4 de febrero de 1994), la
solicitud de EE.UU. nº 08/192.861 (presentada el 4 de febrero de
1994) y la solicitud de EE.UU. nº 08/324.799 (presentada el 18 de
octubre de 1994), y por Le J. et al. (publicación
internacional nº WO 92/16553 (publicada el 1 de octubre de 1992);
Knight, D.M. et al., (Mol. Immunol. 30:
1443-1453 (1993)); y Siegel, S.A. et al.,
(Cytokine 7(1): 15-25, (1995)).
El A2 quimérico anti-TNF consiste
en la región variable de unión a antígeno del anticuerpo IgG1 de
ratón anti-TNF humano neutralizante de alta
afinidad, designado A2, y las regiones constantes de una
inmunoglobulina kappa de IgG1 humana. La región Fc de IgG1 humana
mejora la función efectora de anticuerpo alogénico, aumenta la
semivida sérica en circulación y reduce la inmunogenicidad del
anticuerpo. La avidez y la especificidad de epítopo del A2 quimérico
derivan de la región variable del A2 de múrido. El A2 quimérico
neutraliza el efecto citotóxico tanto de TNF humano natural como
recombinante de manera dependiente de la dosis. A partir de los
ensayos de unión de cA2 y TNF humano recombinante, se calculó que
la constante de afinidad de cA2 era 1,8 x 10^{9} M^{-1}. Pueden
encontrarse los métodos preferidos para determinar la especificidad
y afinidad de mAb mediante inhibición competitiva en Harlow et
al., "Antibodies: A Laboratory Manual", Cold Spring Harbor
Laboratory Press, Cold Spring Harbor, Nueva York, 1988; Colligan
et al., eds., "Current Protocols in Immunology", Greene
Publishing Assoc. y Wiley-Interscience, Nueva York
(1992, 1993); Kozbor et al., Immunol. Today 4:
72-79 (1983); Ausubel et al., eds.,
"Current Protocols in Molecular Biology", Wiley Intersciences,
Nueva York (1987, 1992, 1993); y Muller, Meth. Enzymol. 92:
589-601 (1983).
Como se utiliza en la presente memoria, la
expresión "región de unión a antígeno" designa aquella porción
de una molécula de anticuerpo que contiene los residuos
aminoacídicos que interaccionan con un antígeno y confieren al
anticuerpo su especificidad y afinidad por el antígeno. La región
de anticuerpo incluye los residuos aminoacídicos
"estructurales" necesarios para mantener la conformación
apropiada de los residuos de unión a antígeno. Generalmente, la
región de unión a antígeno será de origen múrido. En otras
realizaciones, la región de unión a antígeno puede derivar e otras
especies animales, tales como oveja, conejo, rata o hámster. Las
fuentes preferidas para codificación de ADN de dicho anticuerpo no
humano incluyen estirpes celulares que producen anticuerpo,
preferiblemente estirpes celulares híbridas conocidas habitualmente
como hibridomas. En una realización, es un hibridoma preferido la
estirpe celular de hibridoma A2.
Un "antígeno" es una molécula o una porción
de molécula capaz de unirse a un anticuerpo que es adicionalmente
capaz de inducir a un animal a producir anticuerpo capaz de unirse
selectivamente a un epítopo de ese antígeno. Un antígeno puede tener
uno o más de un epítopo.
El término "epítopo" pretende indicar
aquella porción del antígeno capaz de ser reconocida por y unirse a
un anticuerpo en una o más de las regiones de unión a antígeno del
anticuerpo. Los epítopos consisten habitualmente en agrupaciones de
moléculas de superficie químicamente activa, tales como aminoácidos
o cadenas laterales de azúcar, y tienen características
estructurales tridimensionales específicas, así como
características de carga específicas. Por "epítopo inhibidor y/o
neutralizante" se pretende un epítopo que, cuando se une a un
anticuerpo, da como resultado la pérdida de actividad biológica de
la molécula que contiene el epítopo in vivo o in
vitro, más preferiblemente in vivo, incluyendo la unión
de TNF a un receptor de TNF. Los epítopos de TNF se han identificado
en los aminoácidos 1 a aproximadamente 20, aproximadamente 56 a
aproximadamente 77, aproximadamente 108 a aproximadamente 127 y
aproximadamente 138 a aproximadamente 149. Preferiblemente, el
anticuerpo se une a un epítopo que comprende al menos
aproximadamente 5 aminoácidos de TNF en los residuos de TNF de
aproximadamente 87 a aproximadamente 107, aproximadamente 59 a
aproximadamente 80 o una combinación de los mismos. Generalmente,
los epítopos incluyen al menos aproximadamente 5 aminoácidos y menos
de aproximadamente 22 aminoácidos abarcados o superpuestos en una o
más de estas regiones.
Por ejemplo, los epítopos de TNF que son
reconocidos por y/o se unen con actividad anti-TNF
a un anticuerpo, y fragmentos y regiones variables de los mismos,
incluyen:
- 59-80:
- Tyr-Ser-Gln-Val-Leu-Phe-Lys-Gly-Gln-Gly-Cys-Pro-Ser-Thr-His-Val-Leu-Leu-Thr-His-Thr-Ile (SEC ID Nº 1); y/o
- 87-108:
- Tyr-Gln-Thr-Lys-Val-Asn-Leu-Leu-Ser-Ala-Ile-Lys-Ser-Pro-Cys-Gln-Arg-Glu-Thr-Pro-Glu-Gly (SEC ID Nº 2).
Los anticuerpos anti-TNF, y
fragmentos y regiones variables de los mismos, que son reconocidos
por y/o se unen con actividad anti-TNF a estos
epítopos bloquean la acción del TNF\alpha sin unirse al supuesto
locus de unión de receptor presentado por Eck y Sprang (J.
Biol. Chem. 264 (29): 17595-17605 (1989)
(aminoácidos 11-13, 37-42,
49-57 y 155-157 de hTNF\alpha).
Rathjen et al., publicación internacional nº WO 91/02078
(publicada el 21 de febrero de 1991), incorporada a la presente
memoria como referencia, dan a conocer ligandos de THF que pueden
unirse a epítopos adicionales de TNF.
Son bien conocidas en la técnica las técnicas de
producción de anticuerpos contra secuencias peptídicas pequeñas que
reconocen y se unen a esas secuencias en forma libre o conjugada o
cuando se presentan como una secuencia nativa en el contexto de una
proteína grande. Dichos anticuerpos pueden producirse mediante
técnicas de hibridoma o recombinantes conocidas en la técnica.
Se han descrito también anticuerpos de múrido que
pueden utilizarse en la preparación de anticuerpos útiles en los
métodos y composiciones de la presente invención en Rubin et
al., documento EP 0218868 (publicado el 21 de abril de 1987);
Yone et al., documento EP 0288088 (publicado el 26 de octubre
de 1988); Liang et al., Biochem. Biophys. Res. Comm.
137: 847-854 (1986); Meager et al.,
Hybridoma 6: 305-311 (1987); Fendly et
al., Hybridoma 6: 359-369 (1987);
Bringman, et al., Hybridoma 6:
489-507 (1987); Hirai et al., J. Immunol.
Meth. 96: 57-62 (1987); Möller et al.,
Cytokine 2: 162-169 (1990).
Las fusiones celulares se consiguen mediante
procedimientos estándar bien conocidos por los expertos en el campo
de la inmunología. Las estirpes celulares asociadas de fusión y los
métodos para fusionar y seleccionar hibridomas y examinar los mAb
son bien conocidos en la técnica. Véanse, por ejemplo, Ausubel,
infra, Harlow infra y Colligan infra.
El mAb de múrido específico de TNF\alpha útil
en los métodos y composiciones de la presente invención puede
producirse en grandes cantidades inyectando células de hibridoma o
transfectoma que secretan al anticuerpo en la cavidad peritoneal de
ratones y, después de un tiempo apropiado, recogiendo el fluido
ascítico que contiene una alta titulación del mAb, y aislando el
mAb del mismo. Para dicha producción in vivo del mAb con un
hibridoma (por ejemplo de rata o humano), las células de hibridoma
se hacen crecer preferiblemente en ratones desnudos irradiados o
atímicos. Como alternativa, los anticuerpos pueden producirse
cultivando células de hibridoma o transfectoma in vitro y
aislando el mAb secretado del medio de cultivo celular o
recombinantemente en células eucarióticas o procarióticas.
En una realización, el anticuerpo utilizado en
los métodos y composiciones de la presente invención es un mAb que
se une a aminoácidos de un epítopo de TNF reconocido por A2, rA2 o
cA2, producido por un hibridoma o por un hospedador recombinante.
En otra realización, el anticuerpo es un anticuerpo quimérico que
reconoce un epítopo reconocido por A2. En aún otra realización, el
anticuerpo es un anticuerpo quimérico designado como A2 quimérico
(cA2).
Como ejemplos de anticuerpos útiles en los
métodos y composiciones de la presente invención, el mAb A2 de
múrido se produce mediante una estirpe celular designada c134A. El
anticuerpo quimérico cA2 se produce por una estirpe celular
designada c168A. c168A fue depositado en la American Type Culture
Collection, Rockville, Maryland, como "Depósito de cultivo seguro
(Culture Safe Deposit)".
Los "derivados" de los anticuerpos,
incluyendo fragmentos, regiones o proteínas codificados por genes
truncados o modificados para proporcionar especies moleculares
funcionalmente similares a los fragmentos de inmunoglobulina, son
también útiles en los métodos y composiciones de la presente
invención. Las modificaciones incluyen, pero sin limitación, la
adición de secuencias genéticas que codifican proteínas citotóxicas
tales como toxinas de planta y bacterianas. Los fragmentos y
derivados pueden producirse a partir de células apropiadas, como es
conocido en la técnica. Como alternativa, pueden unirse
anticuerpos, fragmentos y regiones anti-TNF a
proteínas o compuestos citotóxicos in vitro, proporcionando
anticuerpos citotóxicos anti-TNF que matarían
selectivamente células que tengan TNF en su superficie.
Los "fragmentos" de anticuerpo incluyen, por
ejemplo, Fab, Fab', F(ab')_{2} y Fv. Estos fragmentos
carecen del fragmento Fc del anticuerpo intacto, se eliminan más
rápidamente de la circulación y pueden tener menos unión no
específica a tejido que un anticuerpo intacto (Wahl et al.,
J. Nucl. Med. 24: 316-325 (1983)). Estos
fragmentos se producen a partir de anticuerpos intactos utilizando
métodos bien conocidos en la técnica, por ejemplo, mediante
escisión proteolítica con enzimas tales como papaína (para producir
fragmentos Fab) o pepsina (para producir fragmentos
F(ab')_{2}).
Los anticuerpos recombinantes y/o quiméricos de
múrido-humano o humano-humano que
inhiben TNF pueden producirse utilizando técnicas conocidas basadas
en las enseñanzas proporcionadas en la solicitud de EE.UU. nº
08/192.093 (presentada el 4 de febrero de 1994), la solicitud de
EE.UU. nº 08/192.102 (presentada el 4 de febrero de 1994), la
solicitud de EE.UU. nº 08/192.861 (presentada el 4 de febrero de
1994), la solicitud de EE.UU. nº 08/324.799 (presentada el 18 de
octubre de 1994) y Le J. et al., publicación internacional
nº WO 92/16553 (publicada el 1 de octubre de 1992). Véanse, por
ejemplo, Ausubel et al., eds., "Current Protocols in
Molecular Biology", Wiley Interscience, Nueva York (1987, 1992,
1993) y Sambrook et al., "Molecular Cloning: A Laboratory
Manual", Cold Spring Harbor Laboratory Press, Nueva York (1989).
Véanse también, por ejemplo, Knight, D.M. et al., Mol.
Immunol. 30: 1443-1453 (1993) y Siegel, S.A.,
et al., Cytokine 7 (1): 15-25
(1995).
El ADN que codifica un anticuerpo
anti-TNF puede ser ADN genómico o ADNc que codifica
al menos una de la región constante de cadena pesada (Hc), la
región variable de cadena pesada (Hv), la región variable de cadena
ligera (Lv) y las región constante de cadena ligera (Lc). Es una
alternativa conveniente al uso de fragmentos génicos cromosómicos
como fuente de ADN que codifica el segmento de unión a antígeno de
región V de múrido, el uso de ADNc para la construcción de genes de
inmunoglobulina quimérica, por ejemplo, como reseñan Liu et
al. (Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84: 3439 (1987) y J.
Immunology 139: 3521 (1987)). El uso de ADNc requiere que los
elementos de expresión génica apropiados para la célula hospedadora
se combinen con el gen para conseguir la síntesis de la proteína
deseada. El uso de secuencias de ADNc es ventajoso frente a
secuencias genómicas (que contienen intrones) porque las secuencias
de ADNc pueden expresarse en bacterias u otros hospedadores que
carecen de los sistemas de ayuste de ARN apropiados. Se indica un
ejemplo de dicha preparación a continuación.
Debido a que el código genético está degenerado,
puede utilizarse más de un codón para codificar un aminoácido
particular. Utilizando el código genético, puede identificarse uno
o más oligonucleótidos diferentes, cada uno de los cuales sería
capaz de codificar el aminoácido. La probabilidad de que un
oligonucleótido particular constituya, de hecho, la secuencia de
codificación XXX real puede estimarse considerando las relaciones
de apareamiento anormal de bases y la frecuencia con que se utiliza
realmente un codón particular (para codificar un aminoácido
particular) en células eucarióticas o procarióticas que expresan un
anticuerpo anti-TNF o fragmento. Dichas "normas de
uso de codón" se dan a conocer por Lathe et al., J.
Mol. Biol. 183: 1-12, (1985). Utilizando las
"normas de uso de códon" de Lathe, se identifica un solo
oligonucleótido, o un conjunto de oligonucleótidos, que contiene la
secuencia nucleotídica teórica "más probable" capaz de
codificar secuencias de región variable o constante
anti-TNF.
Aunque ocasionalmente una secuencia aminoacídica
puede codificarse sólo por un único oligonucleótido, frecuentemente
la secuencia aminoacídica puede codificarse por cualquiera de un
conjunto de oligonucleótidos similares. De forma importante,
mientras que todos los miembros de este conjunto contienen
oligonucleótidos que son capaces de codificar el fragmento
peptídico y, por tanto, contener potencialmente la misma secuencia
oligonucleotídica que el gen que codifica el fragmento peptídico,
sólo un miembro del conjunto contiene la secuencia nucleotídica que
es idéntica a la secuencia nucleotídica del gen. Debido a que este
miembro está presente en el conjunto, y es capaz de hibridar con
ADN incluso en presencia de los otros miembros del conjunto, es
posible emplear el conjunto no fraccionado de oligonucleótidos de
la misma manera en que se emplearía un oligonucleótido único para
clonar el gen que codifica la proteína.
El oligonucleótido, o conjunto de
oligonucleótidos, que contiene la secuencia teórica "más
probable" capaz de codificar un anticuerpo
anti-TNF o fragmento que incluye una región
variable o constante, se utiliza para identificar la secuencia de un
oligonucleótido complementario o conjunto de oligonucleótidos que
es capaz de hibridar con la secuencia "más probable", o
conjunto de secuencias. Puede emplearse un oligonucleótido que
contiene dicha secuencia complementaria como sonda para identificar
y aislar la región variable o constante del gen
anti-TNF (Sambrook et al., infra).
Se identifica (utilizando el procedimiento
anteriormente descrito) un oligonucleótido adecuado, o conjunto de
oligonucleótidos, que es capaz de codificar un fragmento de la
región variable o constante anti-TNF (o que es
complementario de dicho oligonucleótido, o conjunto de
oligonucleótidos), se sintetiza y se hibrida por medios bien
conocidos en la técnica frente a ADN o, más preferiblemente, una
preparación de ADNc derivada de células que son capaces de expresar
anticuerpos anti-TNF o regiones variables o
constantes de los mismos. Las moléculas oligonucleotídicas
monocatenarias complementarias de las secuencias de codificación de
la región anti-TNF variable o constante "más
probable" pueden sintetizarse utilizando procedimientos que son
bien conocidos por los expertos en la técnica (Belagaje, et
al., J. Biol. Chem. 254: 5765-5780
(1979); Maniatis et al., en: "Molecular Mechanisms in the
Control of Gene Expression", Nierlich, et al., eds.,
Acad. Press, Nueva York (1976); Wu, et al., Prog. Nucl.
Acid Res. Molec. Biol. 21: 101-141 (1978);
Khorana, Science 203: 614-625 (1979)).
Adicionalmente, la síntesis de ADN puede conseguirse mediante el
uso de sintetizadores automatizados. Se dan a conocer técnicas de
hibridación de ácido nucleico por Sambrook et al.,
"Molecular Cloning: A Laboratory Manual", Cold Spring Harbor
Laboratory Press, Nueva York (1989); y por Haynes, et al.,
en: "Nucleic Acid Hybridization, A Practical Approach", IRL
Press, Washington, DC (1985). Técnicas tales como, o similares a,
las descritas anteriormente han permitido la clonación con éxito de
genes de aldehído deshidrogenasa humana (Hsu, et al.,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82: 3771-3775
(1985)), fibronectina (Suzuki, et al., Bur. Mol. Biol.
Organ. J. 4: 2519-2524 (1985)), el gen receptor
de estrógeno humano (Walter, et al., Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 82: 7889-7893 (1985)), activador de
plasminógeno de tipo tejido (Pennica, et al., Nature
301: 214-221 (1983)) y ADN complementario de
fosfatasa alcalina de placenta humana (Keun, et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 82: 8715-8719 (1985)).
En un modo de clonación alternativo de un
polinucleótido que codifica una región variable o constante
anti-TNF, se prepara una biblioteca de vectores de
expresión clonando ADN o, más preferiblemente, ADNc (de una célula
capaz de expresar un anticuerpo anti-TNF o región
variable o constante) en un vector de expresión. En la biblioteca
se examinan después los miembros capaces de expresar una proteína
que inhiba competitivamente la unión de un anticuerpo
anti-TNF, tal como A2 o cA2, y que tenga una
secuencia nucleotídica que sea capaz de codificar polipéptidos que
tienen la misma secuencia aminoacídica que anticuerpos
anti-TNF o fragmentos de los mismos. En esta
realización, se extrae el ADN, o más preferiblemente ADNc, de una
célula que es capaz de expresar un anticuerpo
anti-TNF o fragmento y se purifica. Se fragmenta el
ADNc purificado (mediante corte, digestión con endonucleasa, etc.)
para producir una agrupación de fragmentos de ADN o ADNc. Los
fragmentos de ADN o ADNc de esta agrupación se clonan después en un
vector de expresión para producir una biblioteca genómica de
vectores de expresión, cuyos miembros contienen cada uno un
fragmento de ADN o ADNc clonado único tal como en una biblioteca de
fago lambda, para expresión en células procarióticas (por ejemplo
bacterias) o células eucarióticas (por ejemplo células de mamífero,
levadura, insecto u hongo). Véanse, por ejemplo, Ausubel,
infra, Harlow, infra, Colligan, infra,
Nyyssonen et al., Bio/Technology 11:
591-595 (1993); Marks et al.,
Bio/Technology 11: 1145-1149 (octubre de
1993). Una vez aislado el ácido nucleico que codifica dichas
regiones anti-TNF variables o constantes, el ácido
nucleico puede expresarse apropiadamente en una célula hospedadora,
junto con otro ácido nucleico que codifica una cadena pesada o
ligera constante o variable, para proporcionar anticuerpos
monoclonales recombinantes que se unen a TNF con actividad
inhibidora. Dichos anticuerpos incluyen preferiblemente una región
variable anti-TNF de múrido o humana que contiene un
residuo estructural que tiene residuos determinantes de la
complementariedad que son responsables de la unión a antígeno.
Los genes humanos que codifican las regiones
constantes (C) de los anticuerpos quiméricos, fragmentos y regiones
de la presente invención pueden derivar de una biblioteca hepática
fetal humana mediante métodos conocidos. Los genes de la región C
humana pueden derivar de cualquier célula humana, incluyendo
aquellas que expresan y producen inmunoglobulinas humanas. La
región CH humana puede derivar de cualquiera de las clases o
isotipos conocidos de las cadenas H humanas, incluyendo gamma,
\mu, \alpha, \delta o \varepsilon, y subtipos de los
mismos, tales como G1, G2, G3 y G4. Puesto que el isotipo de cadena
H es responsable de las diversas funciones efectoras de un
anticuerpo, la elección de la región CH estará guiada por las
funciones efectoras deseadas, tales como fijación de complemento o
actividad en citotoxicidad celular dependiente de anticuerpo (CCDA).
Preferiblemente, la región CH deriva de gamma 1 (IgG1), gamma 3
(IgG3), gamma 4 (IgG4) o \mu (IgM). La región CL humana puede
derivar del isotipo de cadena L humana, kappa o lambda.
Los genes que codifican las regiones C de
inmunoglobulina humana se obtienen a partir de células humanas
mediante técnicas de clonación estándar (Sambrook, et al.,
("Molecular Cloning: A Laboratory Manual", 2ª edición, Cold
Spring Harbor Press, Cold Spring Harbor, Nueva York (1989) y Ausubel
et al., eds., "Current Protocols in Molecular Biology",
Wiley Interscience, Nueva York (1987-1993)). Los
genes de la región C humana están fácilmente disponibles a partir
de clones conocidos que contienen genes que representan las dos
clases de cadenas L, las cinco clases de cadenas H y subclases de
las mismas. Los fragmentos de anticuerpo quimérico, tales como
F(ab')_{2} y Fab, pueden prepararse diseñando un gen de
cadena H quimérico que está apropiadamente truncado. Por ejemplo,
un gen quimérico que codifica una porción de cadena H de un
fragmento F(ab')_{2}, incluiría secuencias de ADN que
codifican el dominio CH1 y la región bisagra de la cadena H,
seguidas por un codón de detención traduccional, proporcionando la
molécula truncada.
Generalmente, los anticuerpos, fragmentos y
regiones de múrido, humanos y quiméricos, se producen clonando
segmentos de ADN que codifican las regiones de unión a antígeno de
cadena H y L de un anticuerpo específico de TNF, y uniendo estos
segmentos de ADN a segmentos de ADN que codifican regiones CH y CL,
respectivamente, para producir genes que codifican inmunoglobulina
de múrido, humana o quimérica. Por tanto, en una realización
preferida, se crea un gen quimérico fusionado que comprende un
primer segmento de ADN que codifica al menos la región de unión a
antígeno de origen no humano, tal como una región V redispuesta
funcionalmente con el segmento de unión (J), ligado a un segundo
segmento de ADN que codifica al menos una parte de una región
C
humana.
humana.
Por lo tanto, el ADNc que codifica las regiones V
y C del anticuerpo y el método de producción de un anticuerpo
quimérico puede implicar diversas etapas, descritas a
continuación:
- 1.
- aislamiento de ARN mensajero (ARNm) a partir de la estirpe celular productora de un anticuerpo anti-TNF y a partir de anticuerpos adicionales opcionales que suministran regiones constantes pesadas y ligeras; clonación y producción de ADNc a partir del mismo;
- 2.
- preparación de una biblioteca de ADNc de longitud completa a partir de ARNm purificado, de la que los segmentos génicos de región V y/o C apropiados de los genes de cadena L y H pueden: (i) identificarse con sondas apropiadas; (ii) secuenciarse y (iii) compatibilizarse con un segmento génico C o V de otro anticuerpo para un anticuerpo quimérico;
- 3.
- construcción de secuencias de codificación de cadena H o L completa mediante ligamiento de los segmentos génicos de la región V específicos clonados con el gen de la región C clonado, como se describe anteriormente;
- 4.
- expresión y producción de las cadenas L y H en hospedadores seleccionados, incluyendo células procarióticas y eucarióticas, para proporcionar anticuerpos múrido-múrido, humano-múrido, humano-humano o humano-múrido.
Una característica común de todos los genes de
cadena H y L de inmunoglobulina y sus ARNm codificados es la región
J. Las regiones J de la cadena H y L tienen diferentes secuencias,
pero existe un alto grado de homología de secuencia (mayor de 80%)
entre cada grupo, especialmente cerca de la región C. Esta homología
es explotada en este método, y pueden utilizarse secuencias
consenso de las regiones J de la cadena H y L para diseñar
oligonucleótidos para uso como cebadores para introducir sitios de
restricción útiles en la región J para el ligamiento posterior de
segmentos de la región V a segmentos de la región C humana.
Los vectores de ADNc de la región C preparados a
partir de células humanas pueden modificarse mediante mutagénesis
dirigida a sitio para disponer un sitio de restricción en la
posición análoga en la secuencia humana. Por ejemplo, puede clonarse
la región C de cadena kappa humana completa (Ck) y la región C de
gamma-1 humana completa (C gamma-1).
En este caso, el método alternativo basado en clones de la región C
genómica como fuente de vectores de la región C no permitiría que
estos genes se expresasen en sistemas bacterianos cuando las
enzimas necesarias para retirar las secuencias participantes
estuvieran ausentes. Los segmentos de región V clonada se escinden y
se ligan con vectores de región C de cadena L o H. Como
alternativa, la región C gamma-1 humana puede
modificarse introduciendo un codón de terminación, generando así una
secuencia génica que codifica la porción de cadena H de una
molécula Fab. Las secuencias de codificación con regiones V y C
ligadas se transfieren después a vehículos de expresión apropiados
para expresión en hospedadores apropiados, procarióticos o
eucarióticos.
Se dice que dos secuencias de ADN de codificación
están "ligadas operativamente" si el ligamiento da como
resultado una secuencia traducible continua sin alteración o
interrupción del marco de lectura de triplete. Una secuencia de ADN
de codificación está ligada operativamente a un elemento de
expresión génica si el ligamiento da como resultado el
funcionamiento apropiado de ese elemento de expresión génica, dando
como resultado la expresión de la secuencia de codificación.
Los vehículos de expresión incluyen plásmidos u
otros vectores. Se prefiere entre estos vehículos que portan una
secuencia de cadena CH o CL humana funcionalmente completa, que
tengan sitios de restricción apropiados introducidos por ingeniería
genética de modo que cualquier secuencia de cadena VH o VL con
extremos cohesivos apropiados pueda insertarse fácilmente en los
mismos. Los vehículos que contienen la secuencia de cadena CH o CL
humana sirven por tanto como intermedios para la expresión de
cualquier cadena H o L completa deseada en cualquier hospedador
apropiado.
Un anticuerpo quimérico, tal como uno de
ratón-humano o humano-humano, se
sintetizará típicamente a partir de genes activados por promotores
génicos cromosómicos nativos de las regiones V de cadena H y L de
ratón utilizadas en los constructos; el ayuste ocurre habitualmente
entre el sitio donante de ayuste en la región J de ratón y el sitio
aceptor de ayuste que precede a la región C humana, y también en las
regiones de ayuste que aparecen en la región C humana; la
poliadenilación y terminación de la transcripción aparecen en
sitios cromosómicos nativos cadena abajo de las regiones de
codificación humanas.
Puede recombinarse una secuencia de ácido
nucleico que codifica al menos un fragmento de anticuerpo
anti-TNF con ADN de vector según técnicas
convencionales, incluyendo terminaciones de extremos romos o
extremos escalonados para ligamiento, digestión con enzimas de
restricción para proporcionar terminaciones apropiadas, relleno de
extremos cohesivos según sea apropiado, tratamiento con fosfatasa
alcalina para evitar uniones indeseables y ligamiento con ligasas
apropiadas. Las técnicas para dichas manipulaciones se dan a
conocer, por ejemplo, por Ausubel, supra, Sambrook,
supra, y son bien conocidas en la técnica.
Una molécula de ácido nucleico, tal como ADN, es
"capaz de expresar" un polipéptido si contiene secuencias
nucleotídicas que contengan información regulatoria transcripcional
y traduccional y dichas secuencias están "operativamente
ligadas" a secuencias nucleotídicas que codifican el polipéptido.
Un ligamiento operativo es un ligamiento en el que las secuencias
de ADN regulatorias y la secuencia de ADN que se busca expresar
están conectadas de tal manera que permitan la expresión génica en
forma de péptidos anti-TNF o fragmentos de
anticuerpo en cantidades recuperables. La naturaleza precisa de las
regiones regulatorias necesarias para la expresión génica puede
variar de organismo a organismo, y es bien conocida en la técnica
análoga. Véanse, por ejemplo, Sambrook et al., "Molecular
Cloning: A Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory
Press, Nueva York (1989); y Ausubel, eds., "Current Protocols in
Molecular Biology", Wiley Intersciences, Nueva York (1987,
1993).
Están disponibles muchos sistemas de vector para
la expresión de genes de cadena H y L de péptido
anti-TNF clonado en células de mamífero (véanse
Glover, ed., "DNA Cloning", vol. II, pág.
143-238, IRL Press, Washington, DC, 1985). Pueden
seguirse diferentes enfoques para obtener anticuerpos H2L2
completos. Es posible coexpresar cadenas H y L en las mismas
células para conseguir la asociación y ligamiento intracelular de
cadenas H y L en anticuerpos H2L2 tetraméricos completos. La
coexpresión puede aparecer utilizando el mismo o diferentes
plásmidos en el mismo hospedador. Los genes para ambas cadenas H y
L pueden disponerse en el mismo plásmido, que se transfecta después
en células, seleccionado directamente así las células que expresan
ambas cadenas. Como alternativa, las células pueden transfectarse
primero con un plásmido que codifica una cadena, por ejemplo la
cadena L, seguido de transfección de la estirpe celular resultante
con un plásmido de cadena H que contiene un segundo marcador
detectable. Las estirpes celulares productoras de moléculas H2L2
mediante cualquier ruta podrían transfectarse con plásmidos que
codifican copias adicionales de péptidos, cadenas H, L o H más L
junto con marcadores detectables adicionales para generar estirpes
celulares con propiedades potenciadas, tales como mayor producción
de moléculas de anticuerpos H2L2 ensamblados o estabilidad
potenciada de las estirpes celulares
transfectadas.
transfectadas.
Las moléculas receptoras (también designadas en
la presente memoria como receptores solubles de TNF) útiles en los
métodos y composiciones de la presente invención son aquellas que
se unen a TNF con alta afinidad (véase, por ejemplo, Feldmann et
al., publicación internacional nº WO 92/07076 (publicada el 30
de abril de 1992), y poseen una baja inmunogenicidad. En
particular, los receptores de TNF de superficie celular de 55 kDa
(TNF-R p55) y de 75 kDa (TNF-R p75)
son útiles en la presente invención. Las formas truncadas de estos
receptores, que comprenden los dominios extracelulares (DEC) de los
receptores o porciones funcionales de los mismos, son también útiles
en la presente invención. Se han detectado formas truncadas de los
receptores de TNF que comprenden los DEC en orina y suero en forma
de proteínas de unión inhibidoras de 30 kDa y 40 kDa (Engelmann, H.
et al., J. Biol. Chem. 265: 1531-1536
(1990)). Las moléculas multiméricas receptoras de TNF y moléculas
de fusión inmunoreceptoras de TNF, y derivados y fragmentos o
porciones de las mismas, son ejemplos adicionales de moléculas
receptoras que son útiles en los métodos y composiciones de la
presente invención. Las moléculas receptoras que pueden utilizarse
en la invención se caracterizan por su capacidad de tratar
pacientes durante periodos extensos con un buen a excelente alivio
de síntomas y baja toxicidad. La baja inmunogenicidad y/o alta
afinidad, así como otras propiedades no definidas, pueden
contribuir a los resultados terapéuticos conseguidos.
Las moléculas multiméricas receptoras de TNF
útiles en la presente invención comprenden todo o una porción
funcional del DEC de dos o más receptores de TNF ligados mediante
uno o más engarces polipeptídicos. Las moléculas multiméricas pueden
comprender adicionalmente un péptido señal de una proteína secretada
para dirigir la expresión de la molécula multimérica. Se han
descrito estas moléculas multiméricas y métodos para su producción
en la solicitud de EE.UU. nº 08/437.533 (presentada el 9 de mayo de
1995).
Las moléculas de fusión inmunoreceptoras útiles
en los métodos y composiciones de la presente invención comprenden
al menos una porción de una o más moléculas de inmunoglobulina o
una porción funcional de uno o más receptores de TNF. Estas
moléculas de fusión inmunoreceptoras pueden ensamblarse como
monómeros o hetero- u homomultímeros. Las moléculas de fusión
inmunoreceptoras pueden ser también monovalentes o multivalentes. Es
un ejemplo de dicha molécula de fusión inmunoreceptora la proteína
de fusión receptor de TNF/IgG.
Se han descrito en la técnica moléculas de fusión
inmunoreceptoras de TNF y métodos para su producción (Lesslauer
et al., Eur. J. Immunol. 21:
2883-2886 (1991); Ashkenazi et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 88: 10535-10539 (1991);
Peppel et al., J. Exp. Med. 174:
1483-1489 (1991); Kolls et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 91: 215-219 (1994);
Butler et al., Cytokine 6(6):
616-623 (1994); Baker et al., Eur. J.
Immunol. 24: 2040-2048 (1994); Beutler et
al., patente de EE.UU. nº 5.447.851 y la solicitud de patente
de EE.UU. nº 08/442.133 (presentada el 16 de mayo de 1995)). Pueden
encontrarse también métodos para producir moléculas de fusión
inmunoreceptoras en Capon et al., patente de EE.UU. nº
5.116.964, Capon et al., patente de EE.UU. nº 5.225.538 y
Capon et al., Nature 337: 525-531
(1989).
Los derivados, fragmentos, regiones y porciones
funcionales de las moléculas receptoras se asemejan funcionalmente
a las moléculas receptoras que pueden utilizarse en la presente
invención (concretamente, se unen a TNF con alta afinidad y poseen
baja inmunogenicidad). Un equivalente funcional o derivado de la
molécula receptora designa la porción de la molécula receptora, o
la porción de secuencia de molécula receptora que codifica la
molécula receptora, que es de suficiente tamaño y secuencia para
asemejarse funcionalmente a las moléculas receptoras que pueden
utilizarse en la presente invención (concretamente, se une a TNF
con alta afinidad y posee baja inmunogenicidad). Un equivalente
funcional de la molécula receptora incluye también moléculas
receptoras modificadas que se asemejan funcionalmente a las
moléculas receptoras que pueden utilizarse en la presente invención
(concretamente, se unen a TNF con alta afinidad y poseen baja
inmunogenicidad). Por ejemplo, un equivalente funcional de la
molécula receptora puede contener un codón "silencioso" o una
o más sustituciones, deleciones o adiciones aminoacídicas (por
ejemplo, sustitución de un aminoácido ácido por otro aminoácido
ácido; o sustitución por un codón que codifica el mismo o diferente
aminoácido hidrofóbico de otro codón que codifica un aminoácido
hidrofóbico). Véase Ausubel et al., "Current Protocols in
Molecular Biology", Greene Publishing Assoc. y
Wiley-Interscience, Nueva York (1989).
Las formulaciones orales e intravenosas
disponibles actualmente de metotrexato incluyen el paquete de dosis
de metotrexato Rheumatrex® (Lederle Laboratories, Wayne, NJ);
comprimidos de metotrexato (Mylan Pharmaceuticals Inc., Morgantown,
WV; Roxane Laboratories, Inc., Columbus, OH); y comprimidos de
metotrexato de sodio para inyección (Immunex Corporation, Seattle,
WA) y metotrexato de sodio LPF® (metotrexato de sodio de inyección)
(Immunex Corporation, Seattle, WA). El metotrexato está también
disponible en Pharmacochemie (Holanda). Pueden utilizarse también
profármacos, homólogos y/o análogos de metotrexato (por ejemplo,
antagonistas de folato) en los métodos y composiciones de la
presente invención. Como alternativa, pueden utilizarse otros
agentes inmunosupresores (o fármacos que suprimen el sistema inmune)
en los métodos y composiciones de la presente invención.
Los antagonistas de TNF, metotrexato y las
composiciones de la presente invención pueden administrarse a un
individuo en una variedad de modos. Las vías de administración
incluyen las vías intradérmica, transdérmica (por ejemplo en
polímeros de liberación lenta), intramuscular, intraperitoneal,
intravenosa, subcutánea, oral, tópica, epidural, bucal, rectal,
vaginal e intranasal. Puede utilizarse cualquier otra vía de
administración terapéuticamente eficaz, por ejemplo, infusión o
inyección intravenosa rápida, absorción a través de recubrimientos
epiteliales o mucocutáneos o mediante terapia génica, en la que se
administra una molécula de ADN que codifica la proteína o péptido
terapéutico al paciente, por ejemplo, mediante un vector que causa
que la proteína o péptido se exprese y secrete a niveles
terapéuticos in vivo. Además, los antagonistas de TNF,
metotrexato y composiciones de la presente invención pueden
administrarse junto con otros componentes de agentes biológicamente
activos, tales como tensioactivos farmacéuticamente aceptables
(por ejemplo, glicéridos), excipientes (por ejemplo, lactosa),
portadores, diluyentes y vehículos. Si se desea, pueden añadirse
también ciertos agentes edulcorantes, aromatizantes y/o
colorantes.
Los antagonistas de TNF y metotrexato pueden
administrarse profiláctica o terapéuticamente a un individuo. Los
antagonistas de TNF pueden administrarse antes de o simultáneamente
con (en la misma o diferentes composiciones) o secuencialmente con
la administración de metotrexato. Por ejemplo, los antagonistas de
TNF pueden administrarse como terapia coadyuvante de y/o
concomitante con la terapia de metotrexato.
Para administración parenteral (por ejemplo,
intravenosa, subcutánea, intramuscular), los antagonistas de TNF,
metotrexato y las composiciones de la presente invención pueden
formularse en forma de una solución, suspensión, emulsión o polvo
liofilizado en asociación con un vehículo parenteral
farmacéuticamente aceptable. Son ejemplos de dichos vehículos agua,
solución salina, solución de Ringer, solución de dextrosa y
albúmina sérica humana al 5%. Pueden utilizarse también liposomas y
vehículos no acuosos tales como aceites no volátiles. El vehículo o
polvo liofilizado puede contener aditivos que mantienen la
isotonicidad (por ejemplo, cloruro de sodio, manitol) y la
estabilidad química (por ejemplo tampones y conservantes). La
formulación se esteriliza mediante técnicas utilizadas
habitualmente.
Los vehículos farmacéuticos adecuados se
describen en "Remington's Pharmaceutical Sciences", A. Osol, un
texto de referencia estándar en este campo de la técnica.
Por ejemplo, se prepara una composición
parenteral adecuada para administración mediante inyección
disolviendo 1,5% en peso de ingrediente activo en una solución de
0,9% de cloruro de sodio.
Los antagonistas de TNF y metotrexato se
administran en cantidades terapéuticamente eficaces; las
composiciones de la presente invención se administran en una
cantidad terapéuticamente eficaz. Como se utiliza en la presente
memoria, una "cantidad terapéuticamente eficaz" es aquella en
la que la administración de antagonista de TNF y metotrexato, o la
administración de una composición de la presente invención, da como
resultado la inhibición de la actividad biológica del TNF respecto a
la actividad biológica del TNF cuando no se administran cantidades
terapéuticamente eficaces de antagonista y metotrexato, o respecto
a la actividad biológica del TNF cuando no se administra una
cantidad terapéuticamente eficaz de la composición. Una cantidad
terapéuticamente eficaz es preferiblemente la cantidad de
antagonista de TNF y metotrexato necesaria para reducir
significativamente o eliminar los signos y síntomas asociados a una
enfermedad mediada por TNF particular. Como se utiliza en la
presente memoria, una cantidad terapéuticamente eficaz no es
necesariamente una cantidad tal que la administración del
antagonista de TNF solo, o la adminis-
tración del metotrexato solo, deba dar necesariamente como resultado la inhibición de la actividad biológica del TNF.
tración del metotrexato solo, deba dar necesariamente como resultado la inhibición de la actividad biológica del TNF.
Una vez se ha administrado una cantidad
terapéuticamente eficaz, puede administrarse al individuo una
cantidad de mantenimiento de antagonista de TNF solo, o metotrexato
solo, o de una combinación de antagonista de TNF y metotrexato. Una
cantidad de mantenimiento es la cantidad de antagonista de TNF,
metotrexato o combinación de antagonista de TNF y metotrexato
necesaria para mantener la reducción o eliminación de los signos y
síntomas asociados a una enfermedad mediada por TNF particular
conseguida por la dosis terapéuticamente eficaz. La cantidad de
mantenimiento puede administrarse en forma de una dosis única, o una
serie de dosis separadas por intervalos de días o semanas.
La dosificación administrada a un individuo
variará dependiendo de una variedad de factores, incluyendo las
características farmacodinámicas de los antagonistas particulares y
su modo y vía de administración; el tamaño, edad, sexo, salud, peso
corporal y dieta del receptor, la naturaleza y extensión de los
síntomas de la enfermedad que se está tratando, el tipo de
tratamiento concurrente, la frecuencia de tratamiento y el efecto
deseado. Los métodos in vitro e in vivo de
determinación de la inhibición del TNF en un individuo son bien
conocidos por los expertos en la técnica. Dichos ensayos in
vitro pueden incluir un ensayo de citotoxicidad de TNF (por
ejemplo, el ensayo WEHI o un radioinmunoensayo ELISA). Los métodos
in vivo pueden incluir ensayos de letalidad en roedores y/o
sistemas de modelo patológico en primates (Mathison et al.,
J. Clin. Invest., 81: 1925-1937 (1988);
Beutler et al., Science 229: 869-871
(1985); Tracey et al., Nature 330:
662-664 (1987); Shimamoto et al., Immunol.
Lett 17: 311-318 (1988); Silva et al.,
J. Infect. Dis. 162: 421-427 (1990); Opal
et al., J. Infect. Dis. 161: 1148-1152
(1990); Hinshaw et al., Circ. Shock 30:
279-292 (1990)).
El antagonista de TNF y el metotrexato pueden
administrarse cada uno en dosis únicas o múltiples dependiendo de
factores tales como la naturaleza y extensión de los síntomas, el
tipo de tratamiento concurrente y el efecto deseado. Por tanto,
pueden utilizarse otros regímenes o agentes terapéuticos (por
ejemplo, regímenes de fármacos múltiples) en combinación con la
coadministración terapéutica de antagonistas de TNF y metotrexato.
En una realización particular, se administra un antagonista de TNF
en dosis múltiples. En otra realización, se administra el
metotrexato en forma de una serie de dosis bajas separadas por
intervalos de días o semanas. El ajuste y manipulación de los
intervalos de dosificación establecidos está bien dentro de la
capacidad de los expertos en la técnica.
Habitualmente, una dosificación diaria de
ingrediente activo puede ser de aproximadamente 0,01 a 100 mg por kg
de peso corporal. Ordinariamente, 1 a 40 mg por kg al día
administrados en dosis divididas 1 a 6 veces al día o en forma de
liberación sostenida son eficaces para obtener los resultados
deseados. Las segundas o posteriores administraciones pueden
administrarse a una dosificación que es la misma, menor o mayor que
la dosis inicial o previa administrada al individuo.
La segunda o posterior administración es
preferiblemente durante o inmediatamente antes de la recaída o
exacerbación de la enfermedad o síntomas de la enfermedad. Por
ejemplo, la segunda y posteriores administraciones puede
administrarse entre aproximadamente un día a 30 semanas desde la
administración previa. Pueden suministrarse 2, 3, 4 ó más
administraciones totales al individuo, según sea necesario.
Las formas de dosificación (composición)
adecuadas para administración interna contienen generalmente de
aproximadamente 0,1 mg a aproximadamente 500 mg de ingrediente
activo por unidad. En estas composiciones farmacéuticas, el
ingrediente activo estará ordinariamente presente en una cantidad de
aproximadamente 0,5-95% en peso basado en el peso
total de la composición.
La presente invención se ilustrará ahora mediante
el siguiente ejemplo, que no se pretende que sea limitante en modo
alguno.
Se realizó un estudio aleatorizado de doble ciego
controlado por placebo para evaluar la seguridad y eficacia de un
anticuerpo monoclonal quimérico anti-TNF (cA2)
después de múltiples infusiones de 1, 3 ó 10 mg/kg de cA2, solo o en
combinación con metotrexato, comparado con múltiples infusiones de
placebo en combinación con metotrexato en el tratamiento de artritis
reumatoide (AR) en pacientes.
Se inscribieron en el estudio ciento un (101)
pacientes de seis centros europeos que habían estado utilizando
metotrexato durante al menos 6 meses, habían estado a una dosis
estable de 7,5 mg/sem durante al menos 4 semanas, y tenían
enfermedad activa (según los criterios del Colegio Americano de
Reumatología) con cambios erosivos según rayos X en manos y pies.
La enfermedad activa se definió mediante la presencia de seis o más
articulaciones inflamadas más al menos tres de cuatro criterios
secundarios (duración de la rigidez matutina \geq 45 minutos;
\geq 6 articulaciones sensibles o dolorosas; velocidad de
sedimentación de eritrocitos (VSE) \geq 28 mm/hora; proteína C
reactiva (PCR) \geq 20 mg/l.
En pacientes que utilizan corticosteroides
(\leq 7,5 mg/día) o fármacos antiinflamatorios no esteroideos
(AINE), las dosis habían sido estables durante 4 semanas antes del
examen. La dosis de corticosteroides permaneció estable durante la
participación en el ensayo. La dosis de AINE permaneció típicamente
estable también durante la participación en el ensayo.
Se suministró el anticuerpo monoclonal quimérico
anti-TNF (cA2) en forma de una solución estéril que
contenía 5 mg de cA2 por ml de solución salina tamponada con
fosfato 0,01 M en cloruro de sodio 0,15 M con 0,01% de polisorbato
80, pH 7,2. Los viales de placebo contenían albúmina sérica humana
al 0,1% en el mismo tampón. Antes del uso, se diluyó la cantidad
apropiada de cA2 o placebo en 300 ml de solución salina estéril por
el farmacéutico, y se administró por vía intravenosa mediante un
filtro en línea de 0,2 \mum durante 2 horas. Las características
de las bolsas de infusión de placebo y cA2 eran idénticas, y los
investigadores y pacientes no sabían cuál infusión se estaba
administrando.
Se distribuyeron aleatoriamente los pacientes en
uno de siete grupos de tratamiento. El número de pacientes en cada
grupo de dosis (o tratamiento) se indica en la Tabla 1. Cada uno de
los 101 pacientes recibió múltiples infusiones de 0, 1, 3 ó 10 mg/kg
de cA2. Las infusiones habían de administrarse en las semanas 0, 2,
6, 10 y 14. Al inicio de la semana 0, los pacientes estaban
recibiendo 7,5 mg/sem de metotrexato (Pharmacochemie, Holanda) o 3
comprimidos de placebo/semana (Pharmacochemie, Holanda). Se
monitorizaron los efectos adversos en los pacientes durante las
infusiones y regularmente después de ellas mediante entrevista,
examen físico y ensayos de laboratorio.
Se eligieron las seis valoraciones primarias de
enfermedad-actividad para permitir el análisis de
la respuesta en pacientes individuales según el índice de Paulus
(Paulus et al., Arthritis Rheumatism 33:
477-484 (1990). Las valoraciones contribuyentes a
este índice fueron las puntuaciones de articulaciones sensibles y
articulaciones inflamadas (60 y 58 articulaciones, respectivamente,
caderas no evaluadas para inflamación, graduadas
0-3), la duración de la rigidez matutina (minutos),
la valoración de paciente y médico de la gravedad de la enfermedad
(en una escala de 5 puntos, en el intervalo desde 1 (sin síntomas)
a 5 (muy grave)), y la velocidad de sedimentación de eritrocitos
(VSE). Se consideró que los pacientes habían respondido si al menos
cuatro de las seis variables mejoraban, definido como una mejora de
al menos un 20% en las variables continuas y al menos dos grados de
mejora o mejora del grado 2 a 1 en las dos valoraciones de gravedad
de la enfermedad (respuestas de Paulus del 20%). Se utilizaron
también mejoras de al menos un 50% en las variables continuas
(respuestas de Paulus del 50%).
Otras valoraciones de
enfermedad-actividad incluyeron la puntuación de
dolor (0-10 cm en una escala análoga visual (EAV)),
una valoración de fatiga (0-10 cm EAV) y de fuerza
de agarre (0-40 kPa, media de tres medidas por mano
mediante un esfigmomanómetro de manguito).
Se midió la VSE en cada sitio de estudio con un
método estándar (Westergen). Se midió la proteína C reactiva (PCR)
mediante nefelometría cinética (inmunoensayo polarizante
fluorescente de Abbott). Véanse también Elliott et al.,
Lancet 344: 1105-1110 (1994); Elliott et
al., Lancet 34: 1125-1127 (1994) y
Elliott et al., Arthritis Rheum. 36(12):
1681-1690 (1993).
Las evaluaciones se realizaron en las semanas 1,
2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 23 y 26.
Se distribuyeron aleatoriamente los 101 pacientes
en uno de siete grupos de tratamiento (o dosis). Los pacientes
inscritos en cada grupo de tratamiento se equilibraron bien para
una demografía de línea base. La duración de la enfermedad y los
recuentos de articulaciones inflamadas y sensibles en la línea base
se equilibraron bien también entre los grupos (Tabla 1). La Tabla 1
muestra la dosis máxima de metotrexato administrada 6 meses antes
de la distribución aleatoria. Las dosis máximas medianas para cada
grupo estaban en el intervalo entre 10 y 15 mg/semana; no hubo
diferencias significativas entre los grupos de tratamiento (p=
0,404).
| Grupos de tratamiento | |||
| Placebo | 1 mg/kg de cA2 | ||
| MTX+ | MTX+ | MTX- | |
| Duración de la enfermedad (años) | |||
| Pacientes evaluados | 14 | 14 | 15 |
| Media \pm DE | 7,6\pm4,0 | 14,3\pm12,1 | 7,6\pm6,0 |
| Mediana | 6,9 | 11,4 | 5,2 |
| Intervalo IQ | (4,3, 11,5) | (3,3, 24,7) | (3,4, 9,0) |
| Intervalo | (1,8, 14,2) | (0,7, 37,3) | (2,5, 21,3) |
| \begin{minipage}[t]{48mm}Número de articulaciones inflamadas, conjunto de articulaciones Paulus (0-58)\end{minipage} | |||
| Pacientes evaluados | 14 | 14 | 15 |
| Media \pm DE | 18,1\pm8,6 | 16,9\pm7,8 | 21,2\pm11,2 |
| Mediana | 16,5 | 15,5 | 20,0 |
| Intervalo IQ | (12,0, 25,0) | (10,0, 25,0) | (10,0, 33,0) |
| Intervalo | (6,0, 38,0) | (6,0, 29,0) | (7,0, 40,0) |
| \begin{minipage}[t]{48mm}Número de articulaciones sensibles, conjunto de articulaciones Paulus (0-60)\end{minipage} | |||
| Pacientes evaluados | 14 | 14 | 15 |
| Media \pm DE | 31,5\pm14,2 | 19,1\pm10,7 | 29,9\pm17,1 |
| Mediana | 27,0 | 16,0 | 30,0 |
| Intervalo IQ | (22,0, 44,0) | (13,0, 30,0) | (14,0, 45,0) |
| Intervalo | (8,0, 52,0) | (2,0, 39,0) | (6,0, 58,0) |
| \begin{minipage}[t]{48mm}Dosis máxima de DTX los 6 meses previos (mg/kg)\end{minipage} | |||
| Pacientes evaluados | 14 | 14 | 15 |
| Media \pm DE | 13,8\pm3,9 | 11,6\pm3,5 | 12,8\pm5,6 |
| Mediana | 15,0 | 11,3 | 12,5 |
| Intervalo IQ | (10,0, 15,0) | (10,0, 12,5) | (10,0, 15,0) |
| Intervalo | (7,5, 20,0) | (7,5, 20,0) | (7,5, 30,0) |
| MTX= metotrexato. |
| Grupos de tratamiento | ||
| 3 mg/kg de cA2 | ||
| MTX+ | MTX- | |
| Duración de la enfermedad (años) | ||
| Pacientes evaluados | 15 | 14 |
| Media \pm DE | 12,1 \pm 9,0 | 7,8 \pm 4,3 |
| Mediana | 11,9 | 7,7 |
| Intervalo IQ | (4,3, 16,4) | (4,6, 9,8) |
| Intervalo | (0,7, 30,5) | (1,4, 17,4) |
| \begin{minipage}[t]{58mm}Número de articulaciones inflamadas, conjunto de articulaciones Paulus (0-58)\end{minipage} | ||
| Pacientes evaluados | 15 | 14 |
| Media \pm DE | 17,7 \pm 5,9 | 19,7 \pm 9,9 |
| Mediana | 16,0 | 17,0 |
| Intervalo IQ | (13,0, 22,0) | (11,0, 32,0) |
| Intervalo | (10,0, 29,0) | (8,0, 34,0) |
| \begin{minipage}[t]{58mm}Número de articulaciones sensibles, conjunto de articulaciones Paulus (0-60)\end{minipage} | ||
| Pacientes evaluados | 15 | 14 |
| Media \pm DE | 24,5 \pm 14,4 | 31,2 \pm 11,7 |
| Mediana | 21,0 | 31,0 |
| Intervalo IQ | (12,0, 32,0) | (23,0, 39,0) |
| Intervalo | (10,0, 52,0) | (9,0, 52,0) |
| \begin{minipage}[t]{58mm}Dosis máxima de DTX los 6 meses previos (mg/kg)\end{minipage} | ||
| Pacientes evaluados | 14 | 13 |
| Media \pm DE | 11,6 \pm 3,3 | 11,7 \pm 4,8 |
| Mediana | 10,0 | 10,0 |
| Intervalo IQ | (10,0, 15,0) | (7,5, 12,5) |
| Intervalo | (7,5, 17,5) | (7,5, 25,0) |
| MTX= metotrexato |
| Grupos de tratamiento | ||||
| 10 mg/kg de cA2 | Todos los | Valor de p del efecto | ||
| pacientes | del tratamiento | |||
| MTX+ | MTX- | |||
| \begin{minipage}[t]{38mm}Duración de la enfermedad (años)\end{minipage} | ||||
| \begin{minipage}[t]{38mm}Pacientes evaluados\end{minipage} | 14 | 15 | 101 | 0,634 |
| Media \pm DE | 11,1 \pm 7,4 | 9,7 \pm 7,4 | 10,0 \pm 7,8 | |
| Mediana | 10,7 | 7,6 | 7,6 | |
| Intervalo IQ | (4,5, 15,5) | (4,9, 14,9) | (4,3, 14,4) | |
| Intervalo | (1,4, 24,1) | (1,1, 24,3) | (0,7, 37,3) | |
| \begin{minipage}[t]{38mm}Número de articulaciones inflamadas, conjunto de articulaciones Paulus (0-58)\end{minipage} | ||||
| \begin{minipage}[t]{38mm}Pacientes evaluados\end{minipage} | 14 | 15 | 101 | 0,643 |
| Media \pm DE | 21,1 \pm 8,2 | 17,8 \pm 8,7 | 18,9 \pm 8,7 | |
| Mediana | 19,5 | 17,0 | 18,0 | |
| Intervalo IQ | (15,0, 31,0) | (11,0, 21,0) | (12,0, 25,0) | |
| Intervalo | (10,0, 34,0) | (7,0, 41,0) | (6,0, 41,0) | |
| \begin{minipage}[t]{38mm}Número de articulaciones sensibles, conjunto de articulaciones Paulus (0-60)\end{minipage} | ||||
| \begin{minipage}[t]{38mm}Pacientes evaluados\end{minipage} | 14 | 15 | 101 | 0,135 |
| Media \pm DE | 26,5 \pm 12,0 | 26,2 \pm 11,7 | 27,0 \pm 13,5 | |
| Mediana | 25,5 | 23,0 | 25,0 | |
| Intervalo IQ | (21,0, 38,0) | (17,0, 35,0) | (15,0, 38,0) | |
| Intervalo | (8,0, 44,0) | (11,0, 48,0) | (2,0, 58,0) | |
| \begin{minipage}[t]{38mm}Dosis máxima de DTX los 6 meses previos (mg/kg)\end{minipage} | ||||
| \begin{minipage}[t]{38mm}Pacientes evaluados\end{minipage} | 14 | 15 | 99 | 0,404 |
| Media \pm DE | 12,7 \pm 5,0 | 12,5 \pm 3,0 | 12,4 \pm 4,2 | |
| Mediana | 10,0 | 12,5 | 12,5 | |
| Intervalo IQ | (10,0, 15,0) | (10,0, 15,0) | (10,0, 15,0) | |
| Intervalo | (7,5, 25,0) | (7,5, 20,0) | (7,5, 30,0) | |
| MTX= metotrexato |
El análisis primario preespecificado en este
ensayo fue la comparación del tiempo total de respuesta clínica
durante el periodo de seguimiento de 26 semanas. Los resultados del
análisis primario se muestran en la Tabla 2. La duración de la
respuesta de todos los grupos tratados con cA2, con la excepción
del grupo de 1 mg/kg que no recibe metotrexato, mejoró
significativamente (p < 0,001) comparada con el grupo placebo que
recibía metotrexato solo.
\newpage
Las tasas de respuesta a Paulus del 20% se
muestran en la Tabla 3. Los retirados se consideraron como sin
respuesta posteriormente a su retirada del estudio. Con la excepción
del grupo de 1 mg/kg que no recibe metotrexato, todos los grupos
tratados con cA2 demostraron beneficio clínico durante 14 semanas
cuando recibieron la última dosis de cA2. Se observó un beneficio
clínico sostenido durante 26 semanas (la última visita de
seguimiento) en pacientes que recibieron 3 ó 10 mg/kg de cA2 con
metotrexato. Aproximadamente la mitad de los pacientes que
recibieron 3 mg/kg de cA2 con metotrexato demostraron un beneficio
clínico continuado a las 26 semanas.
\vskip1.000000\baselineskip
| Grupos de tratamiento | |||
| Pacientes con cualquier respuesta | Placebo | 1 mg/kg de cA2 | |
| MTX+ | MTX+ | MTX- | |
| (n= 14) | (n= 14) | (n= 15) | |
| 21% | 93% | 80% | |
| (3/14) | 13/14 | 12/15 | |
| Valor de p frente a MTX solo | <0,001 | 0,006 | |
| Tiempo después de la infusión | |||
| 1 semana | 0% | 31% | 53% |
| (0/14) | (4/13) | (8/15) | |
| 2 semanas | 7% | 64% | 57% |
| (1/14) | (9/14) | (8/14) | |
| 4 semanas* | 0% | 79% | 33% |
| (0/14) | 11/14 | (5/15) | |
| 6 semanas | 0% | 71% | 27% |
| (0/14) | 10/14 | (4/15) | |
| 8 semanas* | 14% | 64% | 20% |
| (2/14) | (9/14) | (3/15) | |
| 10 semanas | 7% | 71% | 20% |
| (1/14) | 10/14 | (3/15) | |
| 12 semanas* | 7% | 57% | 13% |
| (1/14) | (8/14) | (2/15) | |
| 14 semanas | 0% | 71% | 7% |
| (0/14) | 10/14 | (1/15) | |
| 16 semanas* | 14% | 64% | 7% |
| (2/14) | (9/14) | (1/15) | |
| 18 semanas | 21% | 50% | 13% |
| (3/14) | (7/14) | (2/15) | |
| 20 semanas | 7% | 54% | 13% |
| (1/14) | (7/13) | (2/15) | |
| 22 semanas | 7% | 46% | 0% |
| (1/14) | (6/13) | (0/15) | |
| 26 semanas* | 7% | 21% | 7% |
| (1/14) | (3/14) | (1/15) | |
| *Visitas de evaluación preespecificadas para análisis. |
| Grupos de tratamiento | |||||
| 3 mg/kg de cA2 | 10 mg/kg de cA2 | ||||
| MTX+ | MTX- | MTX+ | MTX- | Valor de p del efecto | |
| n= 15 | n= 14 | n= 13 | n= 15 | del tratamiento | |
| Pacientes con cual- | 80% | 79% | 85% | 80% | <0,001 |
| quier respuesta | 12/15 | 11/14 | 11/13 | 12/15 | |
| Valor de p frente a | 0,002 | 0,002 | 0,001 | 0,004 | |
| MTX solo | |||||
| Tiempo después de infusión | |||||
| 1 semana | 27% | 43% | 31% | 60% | |
| (4/15) | (6/14) | (4/13) | (9/15) | ||
| 2 semanas | 27% | 43% | 62% | 53% | |
| (4/15) | (6/14) | (8/13) | (8/15) | ||
| 4 semanas* | 40% | 64% | 54% | 53% | 0,002 |
| (6/15) | (9/14) | (7/13) | (8/15) | ||
| 6 semanas | 47% | 50% | 54% | 47% | |
| (7/15) | (7/14) | (7/13) | (7/15) | ||
| 8 semanas* | 60% | 71% | 69% | 40% | 0,003 |
| (9/15) | 10/14 | (9/13) | (6/15) | ||
| 10 semanas | 67% | 64% | 69% | 53% | |
| 10/15 | (9/14) | (9/13) | (8/15) | ||
| 12 semanas* | 67% | 64% | 62% | 60% | <0,001 |
| (10/15) | (9/14) | (8/13) | (8/13) | ||
| 14 semanas | 60% | 57% | 77% | 53% | |
| (9/15) | (8/14) | 10/13 | (8/15) | ||
| 16 semanas* | 67% | 64% | 54% | 67% | <0,001 |
| 10/15 | (9/14) | (7/13) | 10/15 | ||
| 18 semanas | 71% | 69% | 62% | 57% | |
| 10/14 | (9/13) | (8/13) | (8/14) | ||
| 20 semanas | 53% | 43% | 54% | 53% | |
| (8/15) | (6/14) | (7/13) | (8/15) | ||
| 22 semanas | 47% | 36% | 54% | 33% | |
| (7/15) | (5/14) | (7/13) | (5/15) | ||
| 26 semanas* | 47% | 21% | 54% | 33% | 0,013 |
| (7/15) | (3/14) | (7/13) | (5/15) | ||
| *Visitas de evaluación preespecificadas para análisis. |
Se muestran las tasas de respuesta a Paulus del
50% en la Tabla 4. La magnitud del beneficio clínico del
tratamiento con cA2 fue sustancial. La mayoría de los pacientes
respondieron al tratamiento con cA2 según el criterio de Paulus del
50%.
| Grupos de tratamiento | |||
| Placebo | 1 mg/kg de cA2 | ||
| MTX+ | MTX+ | MTX- | |
| (n =14) | (n= 14) | (n= 15) | |
| Pacientes con cualquier | 14,3% | 85,7% | 40,0% |
| respuesta | (2/14) | (12/14) | (6/15) |
| Valor de p frente a MTX solo | <0,001 | 0,079 | |
| Tiempo después de infusión | |||
| 1 semana | 0,0% | 7,7% | 26,7% |
| (0/14) | (1/13) | (4/15) | |
| 2 semanas | 0,0% | 21,4% | 28,6% |
| (0/14) | (3/14) | (4/14) | |
| 4 semanas* | 0,0% | 57,1% | 13,3% |
| (0/14) | (8/14) | (2/15) | |
| 6 semanas | 0,0% | 57,1% | 0,0% |
| (0/14) | (8/14) | (0/15) | |
| 8 semanas* | 7,1% | 50,0% | 0,0% |
| (1/14) | (7/14) | (0,15) | |
| 10 semanas | 0,0% | 57,1% | 0,0% |
| (0/14) | (8/14) | (0/15) | |
| 12 semanas* | 7,1% | 50,0% | 6,7% |
| (1/14) | (7/14) | (1/15) | |
| 14 semanas | 0,0% | 57,1% | 6,7% |
| (0/14) | (8/14) | (1/15) | |
| 16 semanas* | 0,0% | 64,3% | 6,7% |
| (0/14) | (9/14) | (1/15) | |
| 18 semanas | 7,1% | 50,0% | 6,7% |
| (1/14) | (7/14) | (1/15) | |
| 20 semanas | 7,1% | 53,8% | 0,0% |
| (1/14) | (7/13) | (0/15) | |
| 22 semanas | 0,0% | 38,5% | 0,0% |
| (0/14) | (5/13) | (0/15) | |
| 26 semanas* | 0,0% | 21,4% | 6,7% |
| (0/14) | (3/14) | (1/15) | |
| *Visitas de evaluación preespecificadas para análisis. |
| Grupos de tratamiento | |||||
| 3 mg/kg de cA2 | 10 mg/kg de cA2 | ||||
| MTX + | MTX- | MTX+ | MTX- | Valor de p del efecto | |
| (n= 15) | (n= 14) | (n= 13) | (n= 15) | del tratamiento | |
| Pacientes con cual- | 73,3% | 64,3% | 76,9% | 66,7% | <0,001 |
| quier respuesta | (11/15) | (9/14) | (10/13) | (10/15) | |
| Valor de p frente | 0,001 | 0,008 | 0,002 | 0,009 | |
| MTX solo | |||||
| Tiempo después de infusión | |||||
| 1 semana | 0,0% | 35,7% | 7,7% | 26,7% | |
| (0/15) | (5/14) | (1/13) | (4/15) | ||
| 2 semanas | 6,7% | 28,6% | 15,4% | 20,0% | |
| (1/15) | (4/14) | (2/13) | (3/15) | ||
| 4 semanas* | 13,3% | 28,6% | 46,2% | 40,0% | 0,006 |
| (2/15) | (4/14) | (6/13) | (6/15) | ||
| 6 semanas | 26,7% | 42,9% | 38,5% | 33,3% | |
| (4/15) | (6/14) | (5/13) | (5/15) | ||
| 8 semanas* | 40,0% | 50,0% | 69,2% | 33,3% | <0,001 |
| (6/15) | (7/14) | (9/13) | (5/15) | ||
| 10 semanas | 40,0% | 50,0% | 69,2% | 40,0% | |
| (6/15) | (7/14) | (9/13) | (6/15) | ||
| 12 semanas* | 60,0% | 35,7% | 61,5% | 40,0% | <0,001 |
| (9/15) | (5/14) | (8/13) | (6/15) | ||
| 14 semanas | 40,0% | 35,7% | 61,5% | 40,0% | |
| (6/15) | (5/14) | (8/13) | (6/15) | ||
| 16 semanas* | 60,0% | 50,0% | 53,8% | 40,0% | <0,001 |
| (9/15) | (7/14) | (7/13) | (6/15) | ||
| 18 semanas | 71,4% | 46,2% | 61,5% | 57,1% | |
| (10/14) | (6/13) | (8/13) | (8/14) | ||
| 20 semanas | 53,3% | 35,7% | 46,2% | 40,0% | |
| (8/15) | (5/14) | (6/13) | (6/15) | ||
| 22 semanas | 46,7% | 14,3% | 53,8% | 26,7% | |
| (7/15) | (2/14) | (7/13) | (4/15) | ||
| 26 semanas* | 40,0% | 14,3% | 46,2% | 20,0% | 0,008 |
| (6/15) | (2/14) | (6/13) | (3/15) | ||
| *Visitas de evaluación preespecificadas para análisis. |
Proporcionalmente a las tasas de respuesta
clínica mostradas en las Tablas 2-4, la mayoría de
los pacientes en los grupos de tratamiento que demuestran la
eficacia del tratamiento con cA2 recibieron todos 5 infusiones de
cA2 (Tabla 5). La razón principal para que los pacientes no
recibieran el régimen de dosis completo fue debido a la falta de
eficacia en el grupo placebo (metotrexato solo) y en el grupo de 1
mg/kg que no recibía metotrexato. Los 15 pacientes del grupo de 3
mg/kg que recibieron metotrexato completaron el régimen de dosis de
5 infusiones.
| Grupos de tratamiento | ||||||||
| Placebo | 1 mg/kg de cA2 | 3 mg/kg de cA2 | 10 mg/kg de cA2 | |||||
| MTX+ | MTX+ | MTX- | MTX+ | MTX- | MTX+ | MTX- | Valor de p del efecto | |
| n= 14 | n= 14 | n= 15 | n= 15 | n= 14 | n= 14 | n= 15 | del trat. | |
| Pacientes con infusiones completas* | ||||||||
| 5 | 6 | 12 | 8 | 15 | 12 | 12 | 12 | 0,003 |
| infusiones | 42,86% | 85,71% | 53,33% | 100,0% | 85,71% | 85,71% | 80,00% | |
| 4 | 0 | 1 | 0 | 0 | 1 | 1 | 0 | |
| infusiones | 0,00% | 7,14% | 0,00% | 0,00% | 7,14% | 7,14% | 0,00% | |
| 3 | 2 | 1 | 6 | 0 | 0 | 1 | 1 | |
| infusiones | 14,29% | 7,14% | 40,00% | 0,00% | 0,00% | 7,14% | 6,67% | |
| 2 | 5 | 0 | 1 | 0 | 1 | 0 | 2 | |
| infusiones | 35,71% | 0,00% | 6,67% | 0,00% | 7,14% | 0,00% | 13,33% | |
| 1 | 1 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | |
| infusión | 7,14% | 0,00% | 0,00% | 0,00% | 0,00% | 0,00% | 0,00% | |
| * \begin{minipage}[t]{150mm} Los pacientes se cuentan sólo una vez para el primer grupo para el que se califican (5 infusiones > 4 infusiones, etc...). Los pacientes se contaron sólo si habían completado la infusión entera.\end{minipage} | ||||||||
Los resultados de las medidas de recuentos de
articulaciones inflamadas y sensibles y las valoraciones globales
por médico y paciente se muestran en las Figuras
1-4. Se reseñaron los resultados medianos en la
Figuras 1-4 para cada visita de evaluación basada
sólo en los pacientes con los datos recogidos. Es decir, no se
utilizó el enfoque avanzado a la última observación realizada para
pacientes que se retiraron. En lugar de ello, el número de pacientes
con datos que comprende cada punto de la gráfica se reseñó en la
parte inferior de las figuras.
A pesar del número de retiradas en el grupo de
placebo y el grupo de 1 mg/kg que no recibe metotrexato, los
resultados en las Figuras 1-4 demuestran que el
tratamiento con cA2 en combinación con metotrexato reduce
profundamente la actividad patológica para todas las medidas
tradicionales de actividad patológica, aproximándose a la remisión
completa en muchos pacientes.
Los resultados para un marcador sérico de
actividad inflamatoria utilizado habitualmente, proteína C reactiva
(PCR) se muestran en la Figura 5. El tratamiento con cA2 produjo una
rápida reducción de la concentración de PCR, que se mantuvo durante
26 semanas en los pacientes que recibieron 3 ó 10 mg/kg de cA2.
Los resultados del cuestionario de evaluación de
la salud (CES) se muestran en la Figura 6. Esta medida de la calidad
de vida/incapacidad demostró la mejora frente al tiempo
correspondiente con la mejora clínica observada en pacientes
tratados con cA2. En los pacientes tratados con 3 mg/kg de cA2 y
metotrexato, el CES se redujo de 2,0 en la línea base a 1,1 a las 22
semanas.
Se obtuvieron las concentraciones séricas de cA2
en todos los pacientes de este estudio. Se muestra la concentración
sérica en cada paciente representada frente al tiempo según el grupo
de dosis de cA2 en la Figura 7. Los datos representados son las
concentraciones séricas de cA2 obtenidas justo antes de la
administración de cA2 en las semanas 2, 6, 10 y 14 y después en las
semanas 18 y 26. Estos tiempos de muestreo se seleccionaron para
demostrar mejor la estabilidad de la concentración de cA2 durante el
régimen de dosis múltiples y la reducción de la concentración sérica
de cA2 después de administrar la última dosis. Con fines de
presentación de datos, se condensan las escalas de la concentración
de cA2 para cada gráfica a medida que se aumentó la dosis de
cA2.
Se observaron diferencias sustanciales para la
concentración sérica de cA2 frente al tiempo en los grupos de dosis
de 1 mg/kg según si los pacientes recibieron metotrexato. La mayoría
de los pacientes que recibieron 1 mg/kg de cA2 con metotrexato
demostraron concentraciones mensurables de cA2 durante 18 semanas,
aunque parecía que había una tendencia a que la concentración se
redujera con el tiempo. En marcado contraste, la mayoría de los
pacientes que recibieron 1 mg/kg de cA2 sin metotrexato no fueron
capaces de mantener concentraciones séricas mensurables de cA2
frente al tiempo. Como se discute en la presente memoria, la
incapacidad de mantener el cA2 sérico en estos pacientes estaba
asociada a una alta tasa de formación de anticuerpo
neutralizante.
En contraposición con los grupos de 1 mg/kg, los
pacientes que recibieron 3 mg/kg de cA2 o 10 mg/kg de cA2 fueron
capaces de mantener las concentraciones séricas de cA2 durante el
régimen de dosis múltiples. Sin embargo, incluso en estos grupos de
dosis, había evidencia de que el tratamiento concomitante con
metotrexato estaba asociado a altas concentraciones séricas de cA2.
Como se muestra en la Figura 8, la concentración sérica mediana de
cA2 en ambos grupos de 3 y 10 mg/kg que reciben metotrexato fue
mayor que en los correspondientes grupos que no reciben
metotrexato.
Se recogieron muestras séricas durante 26 semanas
de todos los pacientes, y se analizaron los anticuerpos
antiquiméricos humanos (HACA) contra cA2. Los resultados de las
respuestas HACA para cada grupo de tratamiento con cA2 se muestran
en la Tabla 6. Debe observarse que en diversos pacientes en el grupo
de 3 mg/kg, y en la mayoría de los pacientes en el grupo de 10
mg/kg, el cA2 seguía presente en la muestra de 26 semanas y podría
interferir potencialmente con la detección de HACA en el ensayo. Sin
embargo, podría razonarse también que si estuvieran presentes
anticuerpos neutralizantes a las 26 semanas, entonces no debería
estar presente cA2. Por lo tanto, al presentar los datos en la Tabla
6, los resultados para la tasa de respuesta inmune se muestran sin
incluir los pacientes con cA2 sérico a las 26 semanas e incluyendo
los pacientes con cA2 sérico a las 26 semanas, suponiendo que si
estaba presente cA2 a las 26 semanas, el paciente no tenía una
respuesta HACA positiva.
| 1 mg/kg | 3 mg/kg | 10 mg/kg | ||||
| MTX+ | MTX- | MTX+ | MTX- | MTX+ | MTX- | |
| Respuestas HACA sin incluir | 2/13 | 8/15 | 0/10 | 3/12 | 0/2 | 1/10 |
| pacientes con cA2 sérico | 15,4% | 53,3% | 0% | 25,0% | 0% | 10% |
| a las 26 semanas | ||||||
| Respuestas HACA incluyendo | 2/13 | 8/15 | 0/15 | 3/14 | 0/14 | 1/15 |
| pacientes con cA2^{1} sérico | 15,4% | 53,3% | 0% | 21,4% | 0% | 6,7% |
| a las 26 semanas | ||||||
| ^{1} \begin{minipage}[t]{155mm} Los pacientes con una concentración sérica de cA2 mensurable a las 26 semanas se consideraron negativos para respuesta HACA para este análisis\end{minipage} | ||||||
Los resultados de la Tabla 6 demuestran que el
tratamiento concomitante con metotrexato suprime la respuesta inmune
ante cA2, posibilitando conseguir una farmacocinética estable en un
régimen de dosis múltiples de cA2. Se encontró también este efecto
después del tratamiento combinado de anticuerpo
anti-CD4/anti-TNF en ratones con
artri-
tis inducida por colágeno, y se describió en la solicitud de EE.UU. nº 08/607.419, presentada el 28 de febrero de 1996.
tis inducida por colágeno, y se describió en la solicitud de EE.UU. nº 08/607.419, presentada el 28 de febrero de 1996.
Dos de 86 pacientes (recibiendo la mayoría de los
pacientes 5 tratamientos) experimentaron reacciones
multisistemáticas relacionadas con la infusión con retratamiento.
Las reacciones multisistemáticas relacionadas con la infusión
incluyen dolor de cabeza, fiebre, sofocos faciales, prurito,
mialgia, náusea, opresión torácica, disnea, vómitos, eritema,
incomodidad abdominal, diaforesis, escalofríos, hipertensión, mareo,
hipotensión, palpitaciones y somnolencia.
Pueden aparecer reacciones de hipersensibilidad,
como se describe en la presente memoria, siempre que se administran
materiales que contienen proteína, tal como cA2. Por tanto, no está
claro si estos síntomas representan un evento inmunológico o
factores físicos tales como la velocidad de infusión y la agregación
de inmunoglobulina. Los investigadores han reseñado que los síntomas
se solucionan en algunos pacientes reduciendo la velocidad de
infusión. Los informes de la bibliografía previa indican que se han
observado síntomas vasomotores en pacientes que reciben terapia de
inmunoglobulina intravenosa (Berkman et al., Ann. Intern
Med. 112: 278-292 (1990); Ochs et al.,
Lancet 2: 1158-1159 (1980)).
Un paciente desarrolló hipotensión durante las
tres infusiones de 10 mg/kg de cA2. El paciente no presentó signos
clínicos de hipotensión y no requirió tratamiento médico pero, para
mantener los criterios de seguridad predefinidos, se interrumpió el
esquema de tratamiento de este paciente.
Una paciente tratada con 3 infusiones de 10 mg/kg
de cA2 y con 7,5 mg/semana de metotrexato desarrolló síntomas de
sepsis como resultado de neumonía estafilocóccica 2 semanas después
de su última visita del estudio, y 14 semanas después de su última
infusión con cA2. Seis días después de desarrollar los síntomas, fue
admitida en el hospital y tratada. Murió un día después. (Esta
paciente no había procedido con la cuarta infusión por razones no
relacionadas con la sepsis). Los pacientes con AR que desarrollan
infecciones tienen un resultado peor del esperado. Wolfe y
colaboradores han reseñado una relación observado:esperado para
muerte debida a neumonía de 5,307 y una relación de
observado:esperado para muerte debida a infecciones (excluyendo
neumonía) de 6,213 en pacientes con AR a partir de la base de datos
ARAMIS (Wolfe et al., Arthritis Rheumatism 4:
481-494 (1994)).
Un paciente experimentó una grave infección
postoperatoria después de cirugía de cataratas 9 semanas después de
la quinta y última infusión de 3 mg/kg de cA2 (con 7,5 mg/semana de
metotrexato), que condujo a la extirpación del ojo. Este paciente
estaba recibiendo prednisolona (7 mg/día). La incidencia de
endoftalmitis después de la extracción de cataratas se ha reseñado
que está entre 0,072 y 0,093% (Kattan et al.,
Ophtalmology, 98(9): 1147-1148 (1991),
y puede elevarse en pacientes que reciben terapia con
corticosteroides.
Ocho de los 87 pacientes (9%) desarrollaron
anticuerpos de ADN bicatenario (bc) después de múltiples infusiones
de cA2. Las medidas se realizaron en la línea base, la semana 8, 16
y 26 (12 semanas después de la última infusión). En estos pacientes
con anticuerpos contra ADN-bc, había una tendencia
hacia un nivel menor de anticuerpos en la última evaluación, siendo
negativos dos pacientes.
Una paciente desarrolló disnea, dolor torácico
pleurítico y un rebrote de actividad artrítica en la semana de
estudio 14 (4 semanas después de la cuarta infusión de 3 mg/kg de
cA2). Los síntomas se solucionaron y recibió la quinta dosis de cA2.
Los síntomas volvieron 3 semanas después. El examen de las muestras
de sangre en serie reveló que el ensayo de anticuerpos antinucleares
y anticuerpos anti-ADN bc era negativo antes del
tratamiento, pero se volvió positivo en la semana 6 del estudio. Los
síntomas de la paciente respondieron a prednisolona oral
20-30 mg diarios. El diagnóstico de trabajo fue
lupus sistémico eritematoso (LSE). La paciente no tiene actualmente
síntomas de LSE, pero tiene AR activa.
Hasta la fecha, aunque se han detectado
anticuerpos contra ADN-bc en pacientes tratados con
cA2, generalmente representan aumentos transitorios y sólo un
paciente ha sido sintomático. En pacientes que han tenido suficiente
seguimiento, los anticuerpos anti-ADN bc se han
solucionado con la interrupción del tratamiento.
En resumen, el tratamiento con cA2 es bien
tolerado. Las reducciones de la actividad patológica producidas por
cA2 son significativas, como apoyan los descubrimientos de una baja
tasa de respuesta a placebo. Se obtienen altas tasas de respuesta
clínica con un régimen de dosis múltiples de 3 mg/kg de cA2 en
combinación con 7,5 mg/semana de metotrexato, y pueden mantenerse
durante 26 semanas. Este régimen de dosis se considera preferible al
régimen de 1 mg/kg más metotrexato debido a que se obtiene una mejor
farmacocinética, virtualmente no se detectó respuesta inmune y la
respuesta clínica se sostiene mejor después del último tratamiento
con cA2. El beneficio clínico obtenido aumentando el régimen de
dosis a 10 mg/kg de cA2 más metotrexato es similar al observado con
el régimen de 3 mg/kg de cA2 más metotrexato.
Por tanto, los resultados de este estudio indican
que el tratamiento con un régimen de dosis múltiples de cA2 como
terapia coadyuvante de y/o concomitante con la terapia de
metotrexato en pacientes con AR cuya enfermedad está controlada
incompletamente por metotrexato, produce una respuesta clínica
altamente beneficiosa o sinérgica que puede sostenerse durante 26
semanas. El beneficio producido por cA2 generalmente supera
reducciones del 50% de las medidas tradicionales de artritis
reumatoide (articulaciones inflamadas y sensibles, valoraciones
globales de la enfermedad por paciente y médico) y consigue casi la
remisión clínica en muchos pacientes. En consecuencia, los
resultados de este estudio indican que el tratamiento con múltiples
infusiones de cA2 como terapia coadyuvante de y/o conco-
mitante con la terapia de metotrexato es un enfoque terapéutico importante y eficaz para tratar la AR en pacientes.
mitante con la terapia de metotrexato es un enfoque terapéutico importante y eficaz para tratar la AR en pacientes.
Se realizó un estudio aleatorizado de doble ciego
controlado por placebo para evaluar los efectos de una infusión
única de placebo, 5, 10 ó 20 mg/kg de cA2 en combinación con
metotrexato administrado una dosis de 10 mg/semana, en el
tratamiento de artritis reumatoide (AR) en pacientes.
Se inscribieron en el estudio veintiocho (28)
pacientes de AR de tres centros en los Estados Unidos que, a pesar
de recibir tres meses de terapia con metotrexato administrado a una
dosis estable de 10 mg/semana durante al menos 4 semanas antes del
examen, tenían todavía enfermedad activa según los criterios del
Colegio Americano de Reumatología. La enfermedad activa se definió
por la presencia de seis o más articulaciones inflamadas más al
menos tres de cuatro criterios secundarios (duración de la rigidez
matutina \geq 45 minutos; \geq 6 articulaciones sensibles o
dolorosas; velocidad de sedimentación de eritrocitos (VSE) \geq 28
mm/hora; proteína C reactiva (PCR) \geq 20 mg/l.
Se permitió a los pacientes que tomaban AINE y
corticosteroides (prednisona) en el examen continuar a dosis
estables (7,5 mg/día).
Se suministró el anticuerpo monoclonal quimérico
anti-TNF (cA2) en forma de una solución estéril que
contenía 5 mg de cA2 por ml de solución salina tamponada con fosfato
0,01 M en cloruro de sodio 0,15 M con 0,01% de polisorbato 80, pH
7,2. Los viales de placebo contenían albúmina sérica humana al 0,1%
en el mismo tampón. Antes del uso, se diluyó la cantidad apropiada
de cA2 o placebo en 300 ml de solución salina estéril por el
farmacéutico, y se administró por vía intravenosa mediante un filtro
en línea de 0,2 \mum durante 2 horas. Las características de las
bolsas de infu-
sión de placebo y cA2 eran idénticas, y los investigadores y pacientes no sabían cuál infusión se estaba administrando.
sión de placebo y cA2 eran idénticas, y los investigadores y pacientes no sabían cuál infusión se estaba administrando.
Se distribuyeron aleatoriamente los pacientes en
uno de cuatro grupos de tratamiento (7 pacientes por grupo). Cada
uno de los 28 pacientes recibió una dosis única de 0, 5, 10 ó 20
mg/kg de cA2, y se siguieron durante 12 semanas. Los pacientes
continuaron el tratamiento con metotrexato (Pharmacochemie, Holanda)
administrado a 10 mg/semana durante el estudio. Se monitorizaron los
efectos adversos en los pacientes durante las infusiones y
regularmente después de ellas mediante entrevista, examen físico y
ensayos de laboratorio.
La medida primaria de la respuesta clínica se
definió mediante la definición preliminar de respuesta del CAR
(Felson et al., Arthritis Rheumatism 38(6):
727-735 (1995)). Se consideró que los pacientes
tenían respuesta si tenían un 20% de reducción del recuento de
articulaciones inflamadas y sensibles y habían experimentado una
reducción del 20% en 3 de las 5 valoraciones siguientes: valoración
de dolor del paciente (EAV), valoración global de actividad
patológica por el paciente (EAV), valoración global de actividad
patológica por el médico (EAV), valoración de la función física por
el paciente (CES) y un reactivo de fase aguda (VSE). La VSE se midió
en cada sitio de estudio con un método estándar (Westergen).
Las evaluaciones se realizaron el día 3, y las
semanas 1, 2, 4, 6, 8, 10 y 12.
Se distribuyeron aleatoriamente los 28 pacientes
en uno de cuatro grupos de tratamiento (o dosis).
Las tasas de respuesta clínica frente al tiempo
mediante el criterio del 20% del CAR en cada uno de los grupos de
tratamiento se muestran en la Tabla 7.
| Placebo | Dosis de cA2 | Pacientes tratados con cA2 | |||
| 5 mg/kg | 10 mg/kg | 20 mg/kg | |||
| Pacientes evaluados | 7 | 7 | 7 | 7 | 21 |
| Pacientes con cualquier | 1 (14,3%) | 6 (85,7%) | 5 (71,4%) | 6 (85,7%) | 17 (81,0%) |
| respuesta | |||||
| 1 semana | 0 (0,0%) | 4 (57,1%) | 2 (28,6%) | 5 (71,4%) | 11 (52,4%) |
| 2 semanas | 0 (0,0%) | 4 (57,1%) | 5 (71,4%) | 5 (71,4%) | 14 (66,7%) |
| 4 semanas | 1 (14,3%) | 3 (42,9%) | 5 (71,4%) | 5 (71,4%) | 13 (61,9%) |
| 6 semanas | 0 (0,0%) | 3 (42,9%) | 5 (71,4%) | 4 (57,1%) | 12 (57,1%) |
| 8 semanas | 1 (14,3%) | 3 (42,9%) | 4 (57,1%) | 4 (57,1%) | 11 (52,4%) |
| 10 semanas | 1 (14,3%) | 1 (14,3%) | 4 (57,1%) | 3 (42,9%) | 8 (38,1%) |
| 12 semanas | 1 (14,3%) | 2 (28,6%) | 4 (57,1%) | 3 (42,9%) | 9 (42,9%) |
El beneficio clínico del tratamiento con cA2 fue
evidente en la primera visita de evaluación en la semana uno. Aunque
cada una de las 3 dosis de cA2 produjo respuestas clínicas en la
mayoría de pacientes tratados, la duración de la respuesta clínica
pareció estar mejor sostenida durante 12 semanas en los grupos que
recibían 10 ó 20 mg/kg de cA2. La respuesta clínica se consiguió
mucho más frecuentemente entre pacientes que recibían cA2 comparado
con placebo. Es decir, 17/21 (81%) pacientes en los 3 grupos de cA2
consiguieron una respuesta, comparado con sólo 1/7 (14%) pacientes
tratados con placebo. La magnitud de la respuesta clínica fue
notable. El recuento medio de articulaciones sensibles entre
pacientes tratados con cA2 se redujo de 30,1 en la línea base a 13,3
en la semana 12, y la PCR se redujo de 3,0 en la línea base a 1,1 en
la semana 12.
La duración de la respuesta clínica parecía ser
dependiente de la dosis. 2/6 (33%) de los pacientes que respondían
tratados con 5 mg/kg de cA2 sostuvieron una respuesta durante 12
semanas de seguimiento, comparado con 7/11 (64%) de los pacientes
que respondían que recibieron 10 ó 20 mg/kg. El tratamiento en todos
los grupos fue generalmente bien tolerado.
En resumen, los resultados de este estudio
indican que el tratamiento con cA2 como terapia coadyuvante de y/o
concomitante con la terapia de metotrexato es eficaz en la reducción
de los signos y síntomas de artritis reumatoide en pacientes cuya
enfermedad está controlada incompletamente por metotrexato. Además,
la respuesta clínica conseguida mediante este enfoque puede
sostenerse durante más de 12 semanas después de un tratamiento
único. En consecuencia, los resultados de este estudio indican que
el tratamiento con cA2 como terapia coadyuvante de y/o concomitante
con la terapia de metotrexato es un enfoque terapéutico importante y
eficaz para tratar AR en pacientes.
Se realizó un estudio de etiqueta abierta para
evaluar los efectos de infusiones repetidas de cA2 10 mg/kg en
combinación con metotrexato administrado a una dosis de 10 mg/semana
en el tratamiento de artritis reumatoide en pacientes.
Como se describe en el ejemplo 2, se realizó un
estudio de cA2 de 12 semanas aleatorizado de doble ciego controlado
por placebo en pacientes de AR que tenían enfermedad activa a pesar
de recibir tres meses de terapia con metotrexato administrado a una
dosis estable de 10 mg/sem durante al menos 4 semanas antes del
examen.
En la semana 12, se ofreció a pacientes que
hubieran completado el periodo de evaluación de 12 semanas y no
hubieran experimentado eventos adversos que prohibieran infusiones
adicionales de cA2, 3 infusiones de etiqueta abierta de cA2
adicionales, administradas a una dosis de 10 mg/kg a intervalos de 8
semanas (semanas 12, 20, 28). Se inscribieron en este estudio
veintitrés (23) pacientes del estudio de 12 semanas.
Se evaluaron 11/23 pacientes que entraron en este
estudio de etiqueta abierta en 1 de 3 centros en los Estados Unidos,
y se siguieron hasta 40 semanas después de la entrada inicial. Los
pacientes continuaron el tratamiento con metotrexato administrado a
10 mg/sem durante el estudio. Los tratamientos repetidos con cA2
fueron generalmente bien tolerados. Tres pacientes tuvieron síntomas
transitorios relacionados con la infusión (urticaria,
somnolencia).
La medida primaria de respuesta clínica se
definió mediante la definición preliminar de respuesta del CAR
(Felson et al., Arthritis Rheumatism 38(6),
727-735 (1995). Se consideró que los pacientes
tenían respuesta si tenían un 20% de reducción del recuento de
articulaciones inflamadas y sensibles, y habían experimentado una
reducción del 20% en 3 de las 5 valoraciones siguientes: valoración
de dolor por el paciente (EAV), valoración global de actividad
patológica por el paciente (EAV), valoración global de actividad
patológica por el médico (EAV), valoración de la función física por
el paciente (CES) y reactivo de fase aguda (VSE). La VSE se midió en
cada sitio de estudio con un método estándar (Westergen).
De seis pacientes que habían recibido todos cA2
durante el estudio de doble ciego descrito en el ejemplo 2 y
respondido durante las 12 semanas de ese estudio, cuatro pacientes
sostuvieron una respuesta durante el seguimiento de 40 semanas. De
los dos pacientes restantes, un paciente sigue respondiendo en la
semana 28, y un paciente entró recientemente en este ensayo de
etiqueta abierta. Para los 4 pacientes que completaron las 40
semanas de seguimiento y el paciente en la semana 28, los recuentos
finales de articulaciones sensibles fueron 2 y los recuentos de
articulaciones inflamadas 1, comparado con una media de 23 y 29,
respectivamente, en la entrada en el estudio de doble ciego descrito
en el ejemplo 2. Para 4 de estos 5 pacientes, las VSR fueron de 18
mm/h y la PCR 0,7, comparado con una media de 27 y 3,9,
respectivamente, a la entrada en el estudio de doble ciego descrito
en el ejemplo 2.
De los dos pacientes que habían recibido cA2
durante el estudio de doble ciego descrito en el ejemplo 2 y
respondido sólo hasta la semana 10 de ese estudio, un paciente
respondió durante 36 semanas y un paciente sigue respondiendo en la
semana 20.
De los tres pacientes que no respondieron durante
el estudio de doble ciego descrito en el ejemplo 2 (2 recibieron
placebos, 1 recibió 5 mg/kg de cA2), dos de estos pacientes
experimentaron una respuesta clínica transitoria, y un paciente
sigue respondiendo en la semana 20.
En resumen, los resultados preliminares de este
estudio sugieren que la terapia coadyuvante y/o concomitante
repetida con cA2 en pacientes de AR cuya enfermedad está
incompletamente controlada por metotrexato puede dar como resultado
una mejora clínica sustancial para una mayoría de los pacientes.
Además, la respuesta clínica conseguida por este enfoque puede
sostenerse durante hasta 40 semanas de seguimiento. En consecuencia,
los resultados de este estudio indican que el tratamiento repetido
con cA2 como terapia coadyuvante de y/o concomitante con la terapia
de metotrexato es un enfoque terapéutico importante y eficaz para
tratar AR en pacientes.
Claims (29)
1. Uso de un anticuerpo monoclonal
anti-factor de necrosis tumoral \alpha humano o
fragmento del mismo para la fabricación de un medicamento para
realizar terapia coadyuvante con metotrexato de una enfermedad
mediada por el factor de necrosis tumoral humano en un individuo, en
el que el anticuerpo anti-factor de necrosis tumoral
\alpha humano o fragmento del mismo (a) se une a un epítopo en
factor de necrosis tumoral \alpha humano, (b) inhibe la unión de
factor de necrosis tumoral \alpha humano a receptores de
superficie celular de factor de necrosis tumoral \alpha humano, y
(c) se administra a una dosis de 0,01-100
mg/kg/día.
2. El uso de la reivindicación 1 en un régimen
terapéutico para tratar artritis reumatoide en un individuo, en el
que en el régimen terapéutico (a) el medicamento que contiene
metotrexato ha de administrarse a intervalos de semanas, y (b) el
medicamento que contiene el anticuerpo anti-factor
de necrosis tumoral \alpha humano, o fragmento de anticuerpo, ha
de administrarse múltiples veces, estando separada cada
administración (1) por un intervalo de semanas de la administración
anterior.
3. Uso de un anticuerpo monoclonal
anti-factor de necrosis tumoral \alpha humano o
fragmento del mismo para la fabricación de un medicamento para
realizar terapia coadyuvante con metotrexato en un individuo que
sufre artritis reumatoide, en el que en la terapia coadyuvante el
medicamento que contiene el anticuerpo anti-factor
de necrosis tumoral \alpha humano o fragmento de anticuerpo ha de
administrarse al individuo múltiples veces, (i) estando separada
cada una de dichas administraciones por un intervalo de semanas de
la administración anterior, y (ii) suministrándose
0,01-100 mg/kg/día del anticuerpo
anti-factor de necrosis tumoral \alpha humano o
fragmento del mismo.
4. El uso de la reivindicación 3, en el que el
anticuerpo anti-factor de necrosis tumoral \alpha
humano o fragmento del mismo (a) se une a un epítopo en factor de
necrosis tumoral \alpha humano y (b) inhibe la unión de factor de
necrosis tumoral \alpha humano a receptores de superficie celular
de factor de necrosis tumoral \alpha humano.
5. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
1-4, en el que cada administración del medicamento
que contiene metotrexato suministra 0,01-100
mg/kg/día de metotrexato.
6. El uso de la reivindicación 1, en el que cada
administración del medicamento que contiene el anticuerpo
anti-factor de necrosis tumoral \alpha humano o
fragmento de anticuerpo está separada por un intervalo de un día a
treinta semanas de la administración anterior.
7. El uso de la reivindicación 1, en el que la
enfermedad mediada por el factor de necrosis tumoral es una
enfermedad degenerativa o espondilitis anquilosante.
8. El uso de la reivindicación 1, en el que la
enfermedad mediada por el factor de necrosis tumoral es artritis
reumatoide.
9. El uso de la reivindicación 1, en el que la
enfermedad mediada por el factor de necrosis tumoral se selecciona
de artritis crónica juvenil, artritis de células gigantes, artritis
psoriásica, artritis enteropática, artritis reactiva y artritis
asociada a enfermedad inflamatoria del intestino.
10. El uso de la reivindicación 1, en el que la
enfermedad mediada por el factor de necrosis tumoral es la
enfermedad de Crohn.
11. El uso de la reivindicación 1, en el que la
enfermedad mediada por el factor de necrosis tumoral es una
enfermedad inmune aguda o crónica asociada a transplante.
12. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
1-11, en el que el anticuerpo
anti-factor de necrosis tumoral á humano o fragmento
del mismo es un anticuerpo.
13. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
1-12, en el que el anticuerpo
anti-factor de necrosis tumoral á humano o fragmento
del mismo es un anticuerpo quimérico.
14. El uso de la reivindicación 13, en el que el
anticuerpo quimérico se une a uno o más aminoácidos del factor de
necrosis tumoral \alpha humano seleccionados del grupo de
aminoácidos consecutivos aproximadamente en las posiciones
87-108 o aproximadamente en las posiciones
59-80.
15. El uso de las reivindicaciones 13 ó 14, en el
que el anticuerpo quimérico se une al epítopo reconocido por
cA2.
16. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
1-15, en el que el anticuerpo es cA2.
17. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
1-12, en el que el anticuerpo es un anticuerpo
humanizado.
18. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
1-17, en el que el medicamento que contiene el
factor de necrosis tumoral \alpha humano o fragmento de anticuerpo
se administra mediante infusión.
19. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
2-4, en el que se administran 7,5 mg de metotrexato
semanalmente empezando en la semana 0, y el anticuerpo
anti-TNF\alpha es cA2 y se administra mediante
infusión en las semanas 0, 2, 6, 10 y 14 a dosificaciones de uno de
1, 3 ó 10 mg/kg.
20. El uso de la reivindicación 19, en el que la
dosificación es 3 mg/kg.
21. Uso de un receptor p75 soluble humano de
factor de necrosis tumoral \alpha humano o fragmento funcional del
mismo para la fabricación de un medicamento para realizar terapia
coadyuvante con metotrexato de una enfermedad mediada por el factor
de necrosis tumoral \alpha humano en un individuo, en el que el
receptor p75 soluble humano de factor de necrosis tumoral \alpha
humano o fragmento funcional del mismo (a) se une a un epítopo en
factor de necrosis tumoral \alpha humano, (b) inhibe la unión de
factor de necrosis tumoral \alpha humano a receptores de
superficie celular de factor de necrosis tumoral \alpha humano, y
(c) se administra a una dosificación de 0,01-100
mg/kg/día.
22. El uso de la reivindicación 21, en el que la
enfermedad mediada por el factor de necrosis tumoral \alpha humano
se selecciona de enfermedad autoinmune, enfermedad inmune aguda o
crónica, enfermedad inflamatoria y enfermedad neurodegenerativa y
espondilitis anquilosante.
23. El uso de la reivindicación 21, en el que la
enfermedad mediada por el factor de necrosis tumoral humano es
artritis reumatoide.
24. El uso de la reivindicación 21, en el que la
enfermedad mediada por el factor de necrosis tumoral se selecciona
de artritis crónica juvenil, artritis de células gigantes, artritis
psoriásica, artritis enteropática, artritis reactiva y artritis
asociada a enfermedad inflamatoria del intestino.
25. El uso de la reivindicación 21, en el que la
enfermedad mediada por el factor de necrosis tumoral humano es la
enfermedad de Crohn.
26. El uso de la reivindicación 21, en el que la
enfermedad mediada por el factor de necrosis tumoral humano es
enfermedad inmune aguda o crónica asociada a transplante.
27. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
21-26, en el que el receptor soluble humano p75 de
factor de necrosis tumoral \alpha es una molécula multimérica.
28. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
21-27, en el que el receptor p75 soluble humano de
factor de necrosis tumoral \alpha es una proteína de fusión
soluble inmunoreceptora de factor de necrosis tumoral \alpha.
29. El uso de la reivindicación 28, en el que la
proteína de fusión soluble inmunoreceptora de factor de necrosis
tumoral \alpha es una proteína de fusión receptor p75 soluble de
factor de necrosis tumoral \alpha/IgG.
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