EP1675939A2 - Verfahren und bioreaktor zum kultivieren und stimulieren von dreidimensionalen, vitalen und mechanisch widerstandsf higen zel ltransplantaten - Google Patents

Verfahren und bioreaktor zum kultivieren und stimulieren von dreidimensionalen, vitalen und mechanisch widerstandsf higen zel ltransplantaten

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Publication number
EP1675939A2
EP1675939A2 EP04790613A EP04790613A EP1675939A2 EP 1675939 A2 EP1675939 A2 EP 1675939A2 EP 04790613 A EP04790613 A EP 04790613A EP 04790613 A EP04790613 A EP 04790613A EP 1675939 A2 EP1675939 A2 EP 1675939A2
Authority
EP
European Patent Office
Prior art keywords
bioreactor
graft
chamber
reactor
mini
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
EP04790613A
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Ronny Schulz
Augustinus Bader
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
BADER, AUGUSTINUS
Original Assignee
Bionethos Holding GmbH
Universitaet Leipzig
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bionethos Holding GmbH, Universitaet Leipzig filed Critical Bionethos Holding GmbH
Publication of EP1675939A2 publication Critical patent/EP1675939A2/de
Withdrawn legal-status Critical Current

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Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M21/00—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses
    • C12M21/08—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses for producing artificial tissue or for ex-vivo cultivation of tissue
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00—Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C12M25/14—Scaffolds; Matrices
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M29/00—Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
    • C12M29/10—Perfusion
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M35/00—Means for application of stress for stimulating the growth of microorganisms or the generation of fermentation or metabolic products; Means for electroporation or cell fusion
    • C12M35/04—Mechanical means, e.g. sonic waves, stretching forces, pressure or shear stimuli

Definitions

  • the invention relates to methods and an arrangement for GMP-compliant production of three-dimensional, vital and mechanically resistant cell cultures, preferably cartilage cell constructs, which can be cultured and stimulated in a novel manner in a closed mini-bioreactor simultaneously, sequentially or according to a time-controlled sequence.
  • These grafts grown in this way are available as tissue replacement material for the therapy of e.g. Connective and supporting tissue defects, direct joint trauma, rheumatism and degenerative joint diseases are available and can, e.g. in the case of knee osteoarthritis an alternative to conventional (operative) therapeutic approaches such as microfracturing or tapping.
  • Tissue engineering which is primarily concerned with the in vitro reproduction of autologous cell material, the body tries to grow functional cell and tissue replacement structures that can be inserted into the defective tissue in a transplant step.
  • cell cultures eg articular cartilage cells
  • chondrocytes e.g chondrocytes
  • the aim of these additive factors is, for example, to stimulate the special ability of cartilage cells to synthesize sufficient extracellular matrix components (EZM) to increase the mass ratio of 1% chondrocytes to 99% extracellular matrix components, as is the case in functional articular cartilage (Stockwell RA: The cell density of human articular and costal cartilage. J Anat. 1967; 101 (4): 753-763; Hamerman D, Schubert M: Diarthrodial joints, an essay. Amer J Med. 1962 33 : 555-590).
  • EMM extracellular matrix components
  • the dynamic cultivation scheme can guarantee a higher gas input and thus mechanically stimulates the cell aggregates depending on the selected medium perfusion flow, by means of a resulting shear force in the ⁇ Pa.
  • this passive system does not allow maximum gas exchange through the diffusion-permeable cover and the nutrient medium to the cell layer on the bottom.
  • a bioreactor device is also known from US Pat. No. 5,928,945, in which adherent cartilage cells are exposed to defined flows or shear forces in a growth chamber and consequently an increased type II synthesis of collagen was detected.
  • bioreactors which exert various mechanical loading processes on explants, cell samples or cell / polymer scaffolds.
  • their structure is based on the implementation of mechanical pressure stamps or the like. because they create uniaxial pressure on cartilage grafts to mimic the main form of stress on human cartilage. Many of these printing systems show great similarities in design.
  • Res Exp Med (Berl). 1993, 193 (3): 137-142 developed system consists of a titanium housing, which is covered on the inside with a polyethylene layer.
  • the test specimen with a maximum diameter of 10 mm can be placed in a container at the bottom of the chamber and covered with about 7 ml of artificial nutrient medium. Since the model does not have a perfusion system for the artificial culture medium, only batches of pressure can be generated with short cultivation times.
  • the load system which exerts corresponding pressure on the test specimen, consists of a porous pressure crucible that passes through the chamber closure and is moved either by simple weights or by an air cylinder with a pressure piston, which is attached above the chamber.
  • Lee DA, Bader DL Compressive strains at physiological frequencies influence the metabolism of chondrocytes seeded in agarose.
  • J Orthop Res. 1997; 15 (2): 181-188 published system which is actuated by a drive, is able to apply pressure to 24 test specimens simultaneously.
  • the drive is mounted on a frame that runs around the incubator and transfers the power down to the loading plate inside the sterile box.
  • the steel loading plate has 24 steel pins with a plexiglass notch of 11 mm in diameter.
  • the drive provides various loads that are made dependent on the degree of deformation.
  • This system is used for the cultivation of bovine chondrocyte / agarose scaffolds over a period of two days. Static and additional cyclic (0.3 to 3 Hz) loads with a maximum voltage amplitude of 15% are generated.
  • the disadvantage of a variety of pressure stimulation reactors is that the cell culture constructs during a Pressure load cannot be perfused with nutrient medium and therefore the effect of multiple cell irritation cannot be investigated. Furthermore, this lack of nutrients prevents an optimal metabolic exchange and the maximum synthesis of, for example, extracellular matrix components in cartilage cells.
  • Pressure and perfusion systems such as are described, for example, in US Pat. No. 6,060,306 and DE Patent 198 08 055, enable simultaneous multiple stimulation with parameters such as perfusion flow, the shear forces induced thereby and a uniaxial pressure load.
  • a disadvantage of reactors that enable pressure stimulation is above all that the pressure mediators, usually driven by servomotors or the like, usually plungers, pistons, etc. into the bioreactor room, where an autologous graft is preferably located, and then exert a defined pressure load on the cell construct.
  • the introduction of this pressure applicator into the sterile system makes the construction of closed pressure application reactors extremely difficult, so that these systems have an increased complexity.
  • the use of these (potentially non-sterile) systems is therefore only possible in basic research, since applications of these devices and methods in the medical field conflict with the guidelines of the existing pharmaceutical law.
  • the object of the invention is to provide a method and a bioreactor for the production of three-dimensional, vital and mechanically resistant cell cultures, in which cultivation and stimulation can take place in a close temporal connection or at the same time.
  • the bioreactor is intended to enable GMP-compliant graft cultivation under guaranteed sterile conditions.
  • the method and the bioreactor according to the invention combine the cultivation and stimulation of GMP-compliant, three-dimensional, vital and mechanically resistant cell cultures, preferably cartilage cell constructs, in one reactor.
  • the stimulation and cultivation can be carried out simultaneously, in succession or according to a time-controlled sequence.
  • These grafts bred in this way are available as Tissue replacement material for the treatment of, for example, connective and supporting tissue defects, direct joint trauma, rheumatism and degenerative joint diseases are available.
  • the essential feature of the method according to the invention and the bioreactor according to the invention is that there is a transplant in a closed reactor space which can be exposed to in vivo adaptive stimuli in several respects.
  • this closed bioreactor there is a magnetic, piston-like pressure temperature1 above the graft, which acts as a stress applicator on the cell culture.
  • the stamp is controlled contactlessly through the bioreactor room and thereby a directed uniaxial pressure stimulation on the tissue graft is brought about.
  • the contactless control of the mini actuator is carried out by externally arranged control magnets, whose aligned (electro) magnetic field causes a change in the position of the stamp in the bioreactor and results in organotypical dynamic or static pressure stimulation.
  • the method and the bioreactor have the advantage already mentioned that the cell cultures can also be stimulated during the cultivation. Above all, the cultivation or regeneration of connective and support tissue structures and functional tissue systems (cartilage, bones, etc.) is possible.
  • the apparatus enables the cultivation of cell transplants, in particular be synchronized, perfused and pressurized and are therefore characterized by an increased production of matrix components (e.g. cartilage cell cultures). Because of his
  • this device minimizes the number of operations and thus reduces the risk of infection
  • Design features of the bioreactor according to the invention ensure a closed bioreactor circuit and consequently strictly autologous cultivation or
  • Another area of application for the bioreactor is pharmaceutical active ingredient testing for the characterization of proliferation and differentiation-relevant substances or combinations of substances on transplants.
  • Fig. 7 Scheme of the technical device for construct perfusion and media mixing in Single-chamber bioreactor
  • Fig. 8 Scheme of the technical device for construct perfusion and media mixing in the bicameral bioreactor
  • Fig. 9 Fixation scheme of the graft in the bioreactor
  • Fig. 10 Magnet systems for controlling the mini-actuator.
  • Fig. 11 Stimulation scheme in the two-chamber reactor
  • FIG. 1 the use of the bioreactor for synchronous cultivation and stimulation of three-dimensional cell transplants is shown using the example of cartilage tissue transplantation.
  • the patient is the first (I) healthy cell material
  • the cells obtained are separated, counted and, depending on this, either sown using standard methods of tissue engineering in monolayer bottles (II) and reproduced strictly autologously or immediately sent to construct manufacture (III).
  • the cells are inserted into a three-dimensional graft structure made of biocompatible or resorbable carrier material (e.g. hydrogels, agaroses, collagens, hydroxylapatites, polymer complexes, etc.).
  • the suspended cells eg chondrocytes
  • the biogenic support structure eg agarose
  • a seed flask placed in a seed flask and hardened, for example, in a cylindrical graft shape (eg cartilage-agarose matrix).
  • a cylindrical graft shape eg cartilage-agarose matrix.
  • This seeding flask with the internal spatial cell graft is inserted into the bioreactor (IV), the graft is pressed out and positioned in the bioreactor.
  • the GMP-suitable cultivation and stimulation of this cell construct is then carried out either simultaneously, successively or in a time-controlled manner in the newly developed closed bioreactor apparatus (V).
  • the cell transplant can be brought to an increased differentiation and expression of organotypic markers with this multiple in vivo-like stimulation (stimuli such as shear force, perfusion, deformation, mechanical stress).
  • FIG. 2 illustrates an embodiment of the bioreactor system (with the two-chamber bioreactor) for autologous cultivation and multiple stimulation of cell transplants in a closed reactor structure using a GMP-compliant procedure.
  • the entire device for ensuring the optimal temperature, air humidity and composition is in a temperature-controlled manner and gas adjustable incubator.
  • the bioreactor 1 and the medium in the incubator and the other technical components are arranged outside the incubator for control purposes.
  • the bioreactor 1 itself and the components used therein are biologically and chemically inert and autoclavable.
  • the bioreactor body and the screw-on lid are made of non-magnetic (e.g. plastics) or weakly magnetic materials (e.g. vanadium-4 steel).
  • the culture medium is fed from the medium reservoir 2 through the hose system 4 with the 3-way valve 6 and the 4-way valve 7 into the bioreactor 1 by means of the circulation pump 5.
  • This culture medium can be enriched with autologous additive factors (for example growth factors, mediators, etc.) obtained from patient blood from the supplement reservoir 3.
  • the medium is fed to the bioreactor 1 and thus to the transplant 11 either in batch, fed-batch or in a continuous process.
  • the medium passes through the hose system 4 into the medium reservoir 2, which is equipped with measuring probes for checking the physicochemical parameters, such as pH, pC0 2 and p0 2 . If the medium is considered to be used up, it can be discharged via the hose system 4 into an external, sealed-off waste container. In both cases it is possible to use the valve device 7 to derive a sterile medium sample from the reactor circuit into a sampling section 8 for further analysis.
  • the graft 11 to be cultivated and stimulated lies in the medial position on the reactor floor.
  • a second, smaller chamber can be located below the graft 11.
  • This flow space is about the Hose system 4 is supplied with medium and can be filled with a highly porous but thin sintered material 16.
  • This lower chamber can be sealed off by a thin clear glass pane 17 and serve as a microscope opening for inverse microscopes.
  • This mini-actuator 14 which is designed as a magnetic stamp, acts as a pressure applicator without contact and is controlled by the control magnet or the coil 15.
  • FIG. 3 shows a possible embodiment of the bioreactor 1 consisting of a culture chamber which is used to implement the contactlessly controllable mini-actuator 14.
  • the bioreactor 1 which is designed as a single-chamber bioreactor, consists of a body and the bioreactor closure 21, which is additionally sealed by a squeeze ring 20.
  • Biosensors 9 are embedded in the cover construction, which serve for the on-line measurement of, for example, glucose and lactate concentrations, among other medium components.
  • In the reactor space there is a precisely fitted mini-actuator 14 above the graft 11, which rests on a special reactor floor with a clear glass pane 17 inserted.
  • a sampling section 8 is integrated into at least one of the outlets 19 via a 3-way valve 6.
  • FIG. 4 outlines a further embodiment of a bioreactor 1 consisting of two chamber spaces, the upper one containing the pressure stamp 14 and the lower one serving for the flow below the transplant 11.
  • This embodiment does not differ in function, property and requirement of components 1, 6, 8, 9, 14, 19-21 from the bioreactor 1 described in Example 3.
  • In the apparatus there are at least one inlet and outlet 19 in the upper one and lower reactor chamber let in to achieve a valve-controlled flow to the respective chamber and the graft 11.
  • the dimension of the lower chamber is such that its diameter is less than that of the graft 11.
  • This chamber accommodates a flat, precisely fitting disc made of porous sintered material 16, so that inverse microscopy through the closing glass disc 17 and the membrane 18 to the transplant 11 can take place without being impaired.
  • This disk of sintered material 16 in the lower reactor chamber fulfills another important function in the present apparatus. It prevents an undesired pressing of the gel-like cell construct 11 into the chamber space when the graft 11 is mechanically loaded by the pressure stamp 14.
  • the use of a fluid-permeable membrane 18 between the sintered material 16 and the graft 11 is provided in order to prevent the carrier material from being mixed with the sintered material 16.
  • FIGS. 5 show the structure, the geometry and the differing shapes of the mini-actuator 14, which slides vertically in the reactor space (here exemplarily in the two-chamber model) and transmits axial compressive forces to the graft 11 lying on the reactor floor.
  • This magnetic pressure applicator 14 is contactless according to the invention (see FIG. 5a) by externally arranged ones
  • FIG. 5b shows the characteristic structure of this pressure unit 14. It has an extremely powerful permanent magnet 22, preferably made of a neodymium-iron-boron compound even with the slightest magnetic and electromagnetic fields moved in the respective field direction.
  • This permanent magnet 22 is encapsulated in a lacquered or galvanized form in a biologically inert plastic — the enveloping body 23.
  • This, preferably cylindrical, envelope body 23 slides with its precisely fitting outer diameter with little friction and exactly vertically in the bioreactor cylinder.
  • other organotypical negative shapes can also be embossed as a stamp surface 24 on the underside of the plastic enveloping body 23 in order to reproduce in-vivo adaptive positive shapes (including curvatures, arches, etc.).
  • FIG. 5 c shows a further exemplary embodiment of the mini actuator 14, which is likewise constructed from a strong permanent magnet 22 and an enveloping body 23 with an individual stamp surface 24.
  • this model has so-called flow channels 33 at the edge of its envelope 23. This enables media to flow around the mini-actuator 14 in the bioreactor space and lower actuating forces are required to overcome the media resistance.
  • the enveloping body 23 must have at least 3 guide lugs with a precisely fitting outer diameter D2 in order to ensure a planar positioning of the entire mini-actuator 14 on the transplant 11.
  • FIG. 5d shows a modified pressure stamp 14 based on FIG. 5b, which has an extension web 34 to create a spatial distance between the permanent magnet 22 and the cell culture construct 11.
  • the reason for this spacing of the permanent magnet 22 in the upper cylinder head from the graft 11 is the minimization any field influences on cell cultures 11.
  • FIG. 5e shows a mini-actuator 14 based on FIG. 5d, which has at least 3 flow channels 33 and 3 guide lugs with an outer diameter D2.
  • FIG. 6 shows the method and the device for producing and sowing three-dimensional, preferably cylindrical, cell matrix constructs.
  • FIG. 6a cell matrix seed
  • increased see FIG. 1, II
  • freshly isolated see FIG. 1, III
  • prepared cells 12 are mixed with the biogenic carrier structure 13, suspended until homogeneous and with the target volume of the cell matrix in injected the plunger 25.
  • the precisely fitting seed piston 25 corresponds in its inner diameter D1 to the future outer diameter of the graft 11 and in its outer diameter D2 to the inner diameter of the bioreactor 1.
  • FIG. 6b stamp insert shows the stamp insert 26 in the seed piston 25.
  • stamp insert shows the stamp insert 26 in the seed piston 25.
  • the precisely fitting planar punch 26 with the outer diameter D1 is inserted into the hollow piston cylinder on the flat sliding plate 27.
  • the underside of this stamp 26 can be organotypically analogous to the stamp surface 24 of the mini actuator 14 Structures.
  • FIG. 6c shows the attachment of the stamp 26 on the transplant 11 in the seed piston 25.
  • the stamp 26 is placed on the cell structure with a slight pressure in order to counteract meniscus formation or curvature of the matrix top of the transplant 11, e.g. to get a cylindrical graft shape. If an in vivo adaptive surface is to be imprinted on the graft 11, this stamp attachment 26 must take place during the curing or polymerization phase.
  • the attached stamp 26 is lifted after the graft 11 has been shaped and the, preferably hydrophobic, sliding plate 27 located at the bottom of the seed piston 25 is removed.
  • the, preferably hydrophobic, sliding plate 27 located at the bottom of the seed piston 25 is removed.
  • an inert film or an inert polymer fleece is used to line the surfaces.
  • FIG. 6e shows the sowing of a cylindrical construct using the example of the two-chamber bioreactor.
  • the precisely fitting seed piston 25 is implemented in the bioreactor 1, then the cell construct 11 is introduced medially into the prepared reactor by means of a pressure stamp 26 and the sowing device is removed from the bioreactor 1.
  • This prepared bioreactor 1 contains the porous sintered material 16 and optionally a diffusion-permeable membrane 18.
  • inlets and outlets with an integrated Luer coupling 19 open into the bioreactor 1. These can differ both in their position and position for flow optimization, i.e. also e.g. Enter the bioreactor body 1 tangentially.
  • the number of inlets and outlets 19 leading into bioreactor 1 is at least two.
  • a sampling section 8 can be installed at each flowing Luer connector 19, e.g. a 3-way valve 6 at each flowing Luer connector 19, e.g. a 3-way valve 6 a sampling section 8 can be installed.
  • the medium diffuses primarily into the upper and lateral edge areas of e.g. cylindrical tissue graft 11 and supplies the cell culture and others. with nutrients and at the same time removes metabolic end products from the carrier matrix.
  • FIG. 7b shows a continuous supply of nutrient medium from the medium reservoir 2 with an optional one behind it
  • Supplement reservoir 3 (not shown) by means of a meterable circulation pump 5 through the hose system 4 into at least one inlet 19 of the bioreactor 1.
  • the medium used can, as shown here, in The circuit remains in that it enters the medium reservoir 2 and from there is used again for the continuous perfusion of the graft 11. Otherwise it can be completely removed from the circuit.
  • the graft 11 is then cultivated in a batch or fed-batch process.
  • a targeted, continuous supply of culture medium into the reactor space can significantly improve the inflow and throughflow of the graft 11 in comparison to the static scheme of FIG. 7a. Due to the induced perfusion, deeper construct regions are flushed out with medium. As a result, the metabolism is optimized, which can lead to increased cell differentiation. Furthermore, this design of the flow of the construct exerts a shear force stimulation on the embedded cells.
  • FIGS. 8 show a bicameral bioreactor which allows an optimized flow, diffusion and perfusion of the graft and thus helps to improve the quality of the tissue replacement.
  • FIG. 8a A variant with static cultivation and diffusion is shown in FIG. 8a.
  • the inlets and outlets 19 opening into the bioreactor 1 are at least two, at least one each having to open into the lower and upper reactor chambers.
  • the two inlets and outlets 19 per chamber listed here can differ in terms of their position, position and thickness for flow optimization.
  • the sampling section 8 can be installed on each outflow-oriented Luer connector 19 of both chambers, for example with a 3-way valve 6 or the like.
  • the chamber newly created in this construction below the graft 11 during the static cultivation phase leads to a diffusion of the culture medium from the porous sintered material into the regions of the support structure near the bottom, resulting in an improved metabolism in the entire graft 11 results.
  • FIG. 8b shows the continuous supply of nutrient medium from the medium reservoir 2 with an optional supplementary reservoir 3 (not shown) arranged behind it by means of a meterable circulation pump 5 or the like. through the hose system 4 into at least one inlet 19 of the lower and upper chamber of the bioreactor 1. The medium is discharged through at least one outlet 19 per chamber into the hose system 4, at which at least one point via a 3-way valve 6 uncoupled sampling section 8 can be integrated.
  • the used medium can remain in the circuit by entering the medium reservoir 2 and from there being used again for the continuous perfusion of the transplant 11. Otherwise it can be completely removed from the circuit.
  • the graft 11 is cultivated in a batch or fed-batch process.
  • the integration of a second chamber according to the invention, here below the transplant 11, shows its positive properties, above all when the biological construct is subjected to a targeted flow. Accordingly, if the 3- Directional valve 6 of the media flow from the medium reservoir 2 into the lower chamber, an induced upward perfusion of the graft 11 takes place with the lower drain closed, since the medium can only leave the reactor space through the upper drain.
  • FIG 9 shows the fixation scheme of the graft 11 in the bioreactor 1 either in the single-chamber or two-chamber version.
  • FIG. 9a shows the graft 11 to be stimulated, which is fixed medially above the clear glass 17 in the single-chamber bioreactor 1.
  • FIG. 9b shows the use of at least 3 of these fixation walls 28 in the two-chamber bioreactor in order to achieve a horizontal fixation of the graft 11 in the various flow conditions and to enable ideal vertical perfusion and mechanical pressurization.
  • FIGS. 10 (shown on the single-chamber bioreactor) represent characteristic devices and apparatus arrangements for the contactlessly controllable stimulation method of the mini-actuator 14 on the transplant 11.
  • FIG. 10a magnetic control effect of magnetic attraction
  • FIG. 10a shows the characteristic device and the principle for contactless control of the magnetic
  • Permanent magnets in the mini actuator 14 take place according to the predominant magnetic field direction, which is generated by externally arranged control magnets 15.
  • Control magnet 15 e.g. is at least one permanent magnet or at least one coil, a defined one
  • Mini actuator 14 triggers.
  • the control magnet 15 shows the principle of magnetic attraction.
  • the magnetic repulsion represents the second magnetic control effect between the magnetic control system 15 and the mini actuator 14.
  • FIG. 10c (control of the mini-actuator 14 by means of a control magnet guide plate) represents an embodiment of a permanent magnetic control system.
  • a control magnet guide plate represents an embodiment of a permanent magnetic control system.
  • an arrangement of several permanent magnets 32 of different sizes, polarities and thus field strength and direction works on a linearly controlled guide plate 31 which is positioned here as an example above the prototype reactor.
  • a linear rail 29 drives a guide rail 30 with the permanent magnets 32 inserted in the magnet holder 31. This mobile phase of the magnet system makes movement of the bioreactor 1 unnecessary.
  • control system in FIG. 10d (control of the mini actuator 14 by means of rotating permanent magnets) is based also on a control of the magnetic pressure stamp 14 by means of a permanent magnet arrangement on a rotating disc.
  • an actuator 29 drives a magnet holder 31 with fitted permanent magnets 32 of alternating polarities in a rotating manner.
  • This rotating magnet holder can be occupied, for example, with four alternately polarized magnets 32 and, as a result, causes two complete pressurizations on the graft 11 during a full revolution.
  • the combination of this magnet occupation of the rotating disc with the rotational speed of the servomotor 29 results in a higher frequency magnetic field change and consequently a highly dynamic one Stimulation scheme for the graft 11.
  • the front view illustrates both magnetic effects of the rotation system using two bioreactors 1.
  • the embodiment of this device is suitable for a large number of bioreactors 1, as long as they can be placed exactly above or below the control magnet center.
  • FIG. 10e represents a magnet device based on a coil arrangement.
  • This magnet coil system works with an induction coil 35, which is fixed here above the bioreactor 1, producing a defined electromagnetic field which is distributed over the supplied electrical power can be regulated continuously and thus enables any positions of the mini-actuator 14 in the bioreactor body. By reversing the polarity of the current direction, the existing field direction and the electromagnetic effect are reversed.
  • the iron core coil 35 used builds up its electrical field perpendicular to the coil winding and acts on it static permanent magnets of the mini actuator 14 attracting and repelling one.
  • An automated station of this system consists of a powerful coil 35 with low heat development with a connected adjustable transformer, the performance of which is monitored by means of a multimeter.
  • a microcontroller ensures the activation of a relay, which switches the current in the desired direction, the desired effect of an intermittent pressure application on the cell construct.
  • FIG. 11 shows the entire stimulation scheme of the novel GMP-capable bioreactor 1.
  • the mechanical pressure stimulation, the perfusion and the shear force-induced flow in the three-dimensional graft 11 run in parallel.
  • the cell construct 11 is stimulated only via a directed flow of media, which leads to a perfusion of the construct with exerting a shear force on the
  • FIG. 11 b perfusion stimulation and stamp attachment shows the second step of multiple stimulation of tissue replacement materials 11 in the bioreactor 1. First, as in this example, the flow conditions are modified.
  • the nutrient medium flow is directed only into the lower reactor chamber, from where it perfuses through the graft 11, brings about the mass transfer and can leave the upper reactor chamber via a drain.
  • the control magnet system here an iron core coil 35 with low power induction
  • the magnetic mini-actuator 14 is attached to the cylindrical tissue replacement 11, for example.
  • This stamp attachment with 0% construct deformation marks a reversal point of the mini-actuator 14 at one dynamic high-frequency deformation of the cell matrix 11.
  • FIG. 11c perfusion stimulation and mechanical stress
  • the stamping device After the pressure loading protocol has been processed, the stamping device is returned to its initial state, the cell culture is perfused, for example, continuously and the transplant 11 is removed, for example if the extracellular matrix is sufficiently synthesized.

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Abstract

Der Bioreaktor (1) besteht aus einem Grundkörper, der mit einem Reaktorverschluss (21) druckdicht und steril verbunden ist und mindestens einen Reaktorraum bildet, in dem eine Ablagefläche für ein Transplantat (11) sowie ein Mini-Aktuator (14) implementiert sind. Weiterhin ist der Bioreaktor (1) mit wenigstens zwei Schlauchkupplungsanschlüssen (19) für die Mediumzufuhr und Mediumabfuhr bzw. zur Begasung versehen ist.

Description

BESCHREIBUNG
Verfahren und Bioreaktor zum Kultivieren und Stimulieren von dreidimensionalen, vitalen und mechanisch widerstandsfähigen Zelltransplantaten
Die Erfindung betrifft Verfahren und eine Anordnung zur GMP- gerechten Herstellung von dreidimensionalen, vitalen und mechanisch widerstandsfähigen Zellkulturen, vorzugsweise Knorpelzellkonstrukten, die hierbei auf neuartige Weise in einem abgeschlossenen Mini-Bioreaktor gleichzeitig, aufeinanderfolgend oder nach einem zeitlich gesteuertem Ablauf kultiviert und stimuliert werden können. Diese so gezüchteten Transplantate stehen als Gewebeersatzmaterial zur Therapierung von z.B. Binde- und Stützgewebsdefekten, direkten Gelenkstraumata, Rheumatismus und degenerativen Gelenkserkrankungen zur Verfügung und können wie z.B. bei der Kniegelenksarthrose eine Alternative zu den herkömmlichen (operativen) Therapieansätzen wie z.B. der Mikrofrakturierung bzw. der Anbohrung sein.
Beim Tissue Engineering, das sich vor allem der in-vitro Vermehrung von körpereigenem, so genannten autologem Zellmaterial widmet, versucht man funktioneile Zeil- und Gewebeersatzstrukturen zu züchten, die in einem Transplantationsschritt in das defekte Gewebe eingebracht werden können.
Hierzu werden im Labor routinemäßig Zellkulturen (z.B. Gelenksknorpelzellen) vermehrt. Die eigentliche Vermehrung dieser Zellen (z.B. Chondrozyten) erfolgt in einer Monolayerkultur auf dem Boden einer beschichteten Zellkulturflasche bzw. -schale nach Standardprotokollen, welche auch den Zusatz von gewebespezifischen Wachstumsfaktoren, Mediatoren und Induktoren beinhalten. Das Ziel dieser additiven Faktoren ist es, beispielsweise die besondere Fähigkeit von Knorpelzellen anzuregen, ausreichende extrazelluläre Matrixkomponenten (EZM) zu synthetisieren, um bei der in-vitro Vermehrung das Massenverhältnis von 1 % Chondrozyten zu 99 % extrazellulärer Matrixbestandteile, wie es im funktionellem Gelenksknorpel gegeben ist, zu erreichen (Stockwell RA: The cell density of human articular and costal cartilage. J Anat . 1967; 101 (4) : 753-763 ; Hamerman D, Schubert M: Diarthrodial joints, an essay. Amer J Med. 1962 33:555- 590) .
Da dies durch die einfache Zugabe von Mediumsupplementen nicht möglich erscheint, wird versucht, diese Knorpelzellen auf unterschiedlichste Art und Weise zu Reizen bzw. zu Stimulieren, um geeigneten autologen (hyalinen) Knorpelersatz mit hohem Differenzierungsgrad im Labor anzüchten zu können.
Die beschriebene Vermehrung von Zellkulturen und Züchtung von Gewebeersatzstrukturen ist mit einer Reihe von Nachteilen verbunden.
Diese passive Kultivierung von Knorpelzellkulturen in einer zweidimensionalen Oberflächenkultur auf einer einfachen Kulturschale, welche mit Nährmedium bedeckt ist, zeigt dabei keine aktive Stimulierung der differenzierungsfähigen Knorpelzellen.
Aus Minuth, W. W. , Kloth S., Aigner J. , Steiner P.: MINUSHEET-Perfusionskultur : Stimulierung eines gewebetypischen Milieus. Bioscope 1995; 4:20-25 ist ein Konzept bekannt, das versucht diesen Nachteil zu umgehen, indem man das Patientenzellmaterial in eine künstliche Trägerstruktur einbringt, die dem Knorpelgewebe in seinen biophysikalischen Eigenschaften ähnelt und eine netzwerkartige Verbindung zwischen den vielschichtig angeordneten Zellen zulässt und dann eine Perfusionskultivierung in einem geeigneten Bioreaktor durchführt. Eine Vielzahl von Experimenten zeigt eine erhöhte Differenzierungsfähigkeit der Zellen durch vermehrt synthetisierter EZM an, welches auf diese dreidimensionale Kultivierung von Chondrozyten in unterschiedlichsten biokompatiblen und bioresorbierbaren Matrizes, wie z.B. den Hydrogelen, Alginaten, Agarosen (Benya and Shaffer: Dedifferentiated chondrocytes reexpress the differentiated collagen phenotype when cultured in agarose gels. Cell. 1982;30:215-224.) variabler Konzentrationen zurückzuführen ist . Diese dabei erzeugte spatiale Dimension simuliert somit die originären Verhältnisse der Chondrozyten im lebenden Gewebe, wie z.B. in dem Knie- und Hüftgelenk, und stellt somit eine vorteilhafte Adaption von in-vivo Verhältnissen dar.
Bei der adhärenten Oberflächenkultivierung der Zellen gestaltet sich die ausreichende Versorgung mit Mediumsupplementen relativ einfach, da sich diese Nährstoffe unmittelbar über bzw. an den Zellen befinden und einen ungehinderten Stoffaustausch über Diffusion zulassen. Bei der Verwendung von dreidimensionalen Matrizes mit darin eingebetteten Zellen in einem statischen Kultivierungsschema hingegen kommt es zur Ausbildung von Konzentrationsgefällen bzw. -gradienten, welche den Stofftransport in mediale Konstruktregionen limitieren können und somit einem optimalen Nährstoffangebot an den Zellverbänden entgegensteht. Diese Beeinträchtigung bei der Züchtung von Zellmaterial in räumlichen Trägermatrizes wird durch die Induzierung von Mediumperfusion bzw. -transfusion durch das Konstrukt begegnet . Dieser aktive Prozess durch diese Trägerstruktur stellt eine homogene Nährstoffversorgung an den Zellen sicher und führt zu einem stetigen Metabolitenabtransport von den Chondrozyten. Darüber hinaus kann das dynamische Kultivierungsschema einen höheren Gaseintrag gewährleisten und stimuliert so die Zellverbände in Abhängigkeit von der gewählten Mediumperfusionsströmung, durch eine dadurch hervorgerufene Scherkraft im μPa mechanisch. (Raimondi, M. T. , F. Boschetti, et al . : Mechanobiology of engineered cartilage cultured under a quantified fluid-dynamic environment. Biomechan Model Mechanobiol . 2002;1:69 - 82)
Ein weiterer Nachteil bei der Vermehrung von Zellen und einer Transplantatsherstellung besteht in der nicht gegebenen absoluten Sterilität des Systems „Zellkulturflasche". Selbst routinemäßige Arbeitsabläufe, wie z.B. der Medienwechsel, die Zelleinsaat aber auch die Zellernte sind mit erhöhter Infektionsgefahr für die darin befindliche Zellkultur verbunden, da das dazugehörige Kulturgefäß geöffnet werden muss und durch die Arbeit in einer Laminar Flow-Workbench keine 100%-ige Sterilität der Arbeitsumgebung im Sinne der „Grundregeln der Weltgesundheitsorganisation für die Herstellung von Arzneimitteln und die Sicherung ihrer Qualität" (Good Manufacturing Practice - Richtlinie der WHO) garantiert werden kann.
Weiterhin ist durch dieses passive System kein maximaler Gasaustausch durch den diffusionsdurchlässigen Deckel, sowie dem Nährmedium zu dem am Boden befindlichen Zelllayer möglich.
Um diese gegebenen Nachteile der Kulturflaschen zu umgehen, wird in den letzten Jahren verstärkt die Entwicklung von automatisierten, abgeschlossen Bioreaktorensystemen zur Generierung von Gewebeersatzstrukturen forciert. Sie können so (Freed und Vunjak-Novakovic : Microgravity tissue engineering. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 1997;33:381-385) den Vorteil einer sterilen, kontrollierbaren Kultivierung und Stimulierung von dreidimensionalen Transplantaten bieten. Durch die Kombination des Tissue Engineerings mit den Möglichkeiten der Verfahrens- und Biotechnologie ist die Steuerung und die Kontrolle ausgewählter Kultivierungsparameter wie z.B. der Begasung mit C02 bzw. 02, Temperaturregelung, Kulturmedienaustausch, Probennahme etc. in den Bioreaktorsystemen gegeben. (Obradovic, Carrier, Vunjak-Novakovic and Freed: Gas exchange is essential for bioreactor cultivation of tissue engineered cartilage. Biotechnol Bioeng. 1999;63:197-205). Bei der Konstruktion von Bioreaktoren gilt es stets, ein gut durchdachtes System zu schaffen, in dem künstlich Prozesse reguliert werden können. Wenn es darum geht, ein bestimmtes Gewebe zu züchten, muss das System des Bioreaktors in der Lage sein, die physiologischen Bedingungen und Prozesse in vivo möglichst genau nachzustellen. Jedes Bioreaktorsystem wirkt mit mindestens einer Art eines mechanischen Reizes auf das gezüchtete Material .
Die Verknüpfung der positiven Eigenschaften einer gesteuerten Bioreaktorkultivierung autologer Gewebeersatzmaterialien in einer biogenen Matrix unter Perfusionsstimulierung mit Kulturmedium stellt daher die logische Konsequenz zur Gewährleistung einer automatisierten, sterilen bzw. GMP- geeigneten Transplantatskultivierung zur Züchtung von z.B. vitalen Knorpelzellen mit erhöhter EZM-Syntheseleistung dar.
Aus der DE 4306661A1 und aus Sittinger M, Bujia J, Minuth WW, Hammer C, Burmester GR: Engineering of cartilage tissue using bioresorbable polymer carriers in perfusion culture. Biomaterials. 1994 ; 15 (6) : 451-456 ist ein Perfusionsreaktor bekannt, bei dem die Zellen in eine Polymerschicht eingebettet sind und zudem von einer Agarosekapsel umgeben werden. Dieser zylindrische Glasreaktor wird mit künstlichen Nährmedium, bei einer Fliessgeschwindigkeit von 0,016 ml/min durchströmt. Der Reaktor selbst befindet sich in einem entsprechenden Gewebebrutkasten mit standardisierten Bedingungen. Sterile Filter am Nährbodenspeicher ermöglichen einen Gasaustausch mit der äußeren Umgebung.
Weiterführende Experimente mit diesem Reaktortypen von Bujia J, Rotter N, Minuth W, Burmester G, Hammer C, Sittinger M: Cultivation of human cartilage tissue in a 3-dimensional perfusion culture chamber: characterization of collagen synthesis. Laryngorhinootologie . 1995;74(9): 559-563 und Kreklau B, Sittinger M, Mensing MB, Voigt C, Berger G, Burmester GR, Rahmanzadeh R, Gross U: Tissue engineering of biphasic Joint cartilage transplants. Biomaterials. 1999;20 (18) :1743-1749 verwendeten Copolyτnergewebe aus Vicryl- und Polydioxanonschichten, die mit Poly-L-Lysin oder kollagenen Fasern des Typs II getränkt sind. Menschliche Chondrozyten wurden in diese Schichten eingebettet und zwei Wochen lang unter Perfusion kultiviert. Unter Verwendung eines Zwei-Phasen-Modells aus einem Copolymer einer polyglycolischen Säure und einer poly-L-lactischen Säure (Ethicon) , das an einem Kaizium-Carbonat-Produkt befestigt war, wurde die Zeitspanne auf 70 Tage erhöht.
Ein weiteres, dem o. g. Perfusionsbioreaktor sehr ähnliches System wurde von Mizuno S, Allemann F, Glowacki J: Effects of medium perfusion on matrix production by bovine chondrocytes in three-dimensional collagen sponges . J Biomed Mater Res. 2001;56 (3) .368-375 konstruiert. Im Gegensatz zum bereits beschriebenen Reaktor, besitzt dieser einen geschlossenen Bereich für das künstliche Nährmedium. Der Hauptanteil des kultivierten Materials befindet sich in einer zylindrischen Glassäule, die 1 cm breit und 10 cm lang ist. Die Säule ist mit zahlreichen Zeil -/Polymergerüsten gefüllt, die jeweils eine Größe von 7 x 15 mm haben und nicht zusätzlich verkapselt sind. Das künstliche Nährmedium wird mit einer Fliessgeschwindigkeit von 300 μl/min von einem Speicher aus durch die Säule und das gesamte System geleitet. Mit Hilfe dieses Systems werden Rinderchondrozytengerüste in kollagenen Schwämmen hinsichtlich ihrer Reaktion auf Perfusion über einen Kultivierungszeitraum von 15 Tagen untersucht.
Aus dem US-Patent 5,928,945 ist ebenfalls eine Bioreaktorvorrichtung bekannt, bei der adhärente Knorpelzellen in einer Wachstumskammer definierten Strömungen bzw. Scherkräften ausgesetzt werden und demzufolge eine verstärkte Kollagen Typ II-Synthese detektiert wurde.
Parallel zur Entwicklung von Perfusionsbioreaktoren befassten sich Forschergruppen mit der Konstruktion von Bioreaktoren, welche diverse mechanische Belastungsvorgänge auf Explantate, Zellproben oder Zeil-/Polymergerüste ausüben. Bei der Konstruktion von Bioreaktoren zur Knorpelzellstimulation richtet sich deren Aufbau auf die Implementierung von mechanischen Druckstempeln o.a. aus, da diese uniaxialen Druck auf Knorpeltransplantate erzeugen, um die wichtigste Form der Belastung auf das menschliche Knorpelgewebe zu imitieren. Bei vielen dieser Drucksysteme werden große Ähnlichkeiten in der Konstruktion deutlich.
Die Druckkammer eines von Steinmeyer J, Torzilli PA, Burton- Wurster N, Lust G: A new pressure chamber to study the biosynthetic response of articular cartilage to mechanical loading. Res Exp Med (Berl) . 1993 , 193 (3) : 137-142 entwickelten Systems besteht aus einem Titangehäuse, das im Innern mit einer Polyethylen-Schicht bedeckt ist. Das Versuchsexemplar mit einem maximalen Durchmesser von 10 mm kann in einem Behälter am Boden der Kammer platziert und mit etwa 7 ml künstlichem Nährmedium bedeckt werden. Da das Modell kein Perfusionssystem des künstlichen Kulturmedium besitzt, sind nur schubweise Druckerzeugungen bei kurzen Kultivierungszeiten möglich. Das Lastensystem, das entsprechenden Druck auf das Versuchsexemplar ausübt, besteht aus einem durch den Kammerverschluss führenden, porösen Drucktiegel und wird entweder durch einfache Gewichte oder einen Luftzylinder mit Druckkolben, der über der Kammer befestigt ist, bewegt. Auch das von Lee DA, Bader DL: Compressive strains at physiological frequencies influence the metabolism of chondrocytes seeded in agarose. J Orthop Res. 1997 ; 15 (2) : 181- 188 veröffentlichte System, das durch einen Antrieb in Gang gesetzt wird, ist in der Lage, auf 24 Versuchsexemplare gleichzeitig Druck auszuüben. Der Antrieb ist auf einem Rahmen, der um den Brutkasten herumführt, montiert und überträgt die Kraft hinunter zur Ladeplatte innerhalb der sterilen Box. Die Ladeplatte aus Stahl besitzt 24 Stahlbolzen mit einer Plexiglaseinkerbung von 11 mm Durchmesser. Der Antrieb sorgt für verschiedene Belastungen, die vom Grad der Verformung abhängig gemacht werden. Dieses System wird für die Kultivierung von Rinder-Chondrozyten/-Agarose-Gerüste über einen Zeitraum von zwei Tagen verwendet. Statische und zusätzliche zyklische (0,3 bis 3 Hz) Belastungen mit einer maximalen Spannungsamplitude von 15 % werden erzeugt.
Der Nachteil, einer Vielzahl von Druckstimulationsreaktoren ist, dass die Zellkulturkonstrukte während einer Druckbelastung nicht mit Nährmedium perfundiert werden können und somit nicht der Effekt einer multiplen Zellreizung untersucht werden kann. Weiterhin steht diese fehlende Nährstoffversorgung einem optimalen Stoffwechselaustausch sowie der maximalen Synthese von z.B. extrazellulären Matrixbestandteilen bei Knorpelzellen entgegen.
Druck- und Perfusionssysteme, wie sie beispielsweise in dem US-Patent 6,060,306 und dem DE-Patent 198 08 055 beschrieben werden, ermöglichen eine gleichzeitige Mehrfachstimulierung mit Parametern wie Perfusionsströmung, den dadurch induzierten Scherkräften und einer uniaxialen Druckbelastung. Nachteilig bei Reaktoren die eine Druckstimulation ermöglichen ist vor allem, dass die durch Stellmotoren o.ä angetriebenen Druckmediatoren, zumeist Stößel, Kolben u.a. in den Bioreaktorraum, in dem sich vorzugsweise ein autologes Transplantat befindet, hereingeführt werden und dann eine definierte Druckbelastung auf das Zellkonstrukt ausüben. Durch das Einbringen dieses Druckapplikators in das sterile System gestaltet sich die Konstruktion von abgeschlossenen Druckapplikationsreaktoren äußerst schwierig, so dass diese Systeme eine erhöhte Komplexität aufweisen. Ein Einsatz dieser (potentiell unsterilen) Systeme ist deshalb nur in der Grundlagenforschung gegeben, da eine Anwendungen dieser Vorrichtungen und Verfahren im medizinischen Bereich den Richtlinien des bestehenden Arzneimittelgesetzes entgegenstehen .
Somit unterliegen sämtliche Bioreaktorapparaturen die der Züchtung, aber auch einer Stimulierung von autologen Gewebeersatzstrukturen dienen der Good Manufacturing Practice-Richtlinie der WHO („Grundregeln der Weltgesundheitsorganisation für die Herstellung von Arzneimitteln und die Sicherung ihrer Qualität") , weiterhin dem deutschen Arzneimittelgesetz (AMG) , der „pharmazeutischen Inspektions-Convention" sowie der GMP-Richtlinie 91/356/EWG. Das Risiko einer Infektion bzw. die nicht vollständig zu garantierende Sterilität der Systeme geben daher keinen Anlass zur Erteilung einer Herstellungserlaubnis nach § 13 des AMG.
Die Aufgabe der Erfindung besteht darin, ein Verfahren und einen Bioreaktor zur Herstellung von dreidimensionalen, vitalen und mechanisch widerstandsfähigen Zellkulturen zu schaffen, bei dem im engen zeitlichen Zusammenhang oder gleichzeitig kultiviert und stimuliert werden kann. Der Bioreaktor soll eine GMP-gerechte Transplantatkultivierung unter garantiert sterilen Bedingungen ermöglichen.
Die Aufgabe wird erfindungsgemäß durch das im Anspruch 1 beschriebene Verfahren und den im Anspruch 13 beschriebenen Bioreaktor gelöst. Vorteilhafte Ausgestaltungen des Verfahrens werden in den Ansprüchen 2 bis 12 ausgeführt; die weitere Ausgestaltung des Bioreaktors wird in den Ansprüchen 14 bis 57 ausgeführt.
Das erfindungsgemäße Verfahren und der erfindungsgemäße Bioreaktor verbinden die Kultivierung und Stimulierung von GMP-gerecht hergestellten, dreidimensionalen, vitalen und mechanisch widerstandsfähigen Zellkulturen, vorzugsweise Knorpelzellkonstrukten in einem Reaktor. Hierbei kann die Stimulierung und Kultivierung gleichzeitig, aufeinander folgend oder nach einem zeitlich gesteuerten Ablauf durchgeführt werden. Diese so gezüchteten Transplantate stehen als Gewebeersatzmaterial zur Therapierung von z.B. Binde- und Stützgewebsdefekten, direkten Gelenkstraumata, Rheumatismus und degenerativen Gelenkserkrankungen zur Verfügung.
Das wesentlich Merkmal des erfindungsgemäßen Verfahrens und des erfindungsgemäßen Bioreaktors ist, dass sich in einem abgeschlossenen Reaktorraum ein Transplantat befindet, welches in mehrfacher Hinsicht in-vivo-adaptiven Stimulis ausgesetzt werden kann. Dazu zählt eine Perfundierung des spatialen Zellkulturkonstruktes mit einem konditionierten Nährmedium, welches einerseits organotypische Scherkräfte an den Zellmembranen hervorruft und darüber hinaus einen erhöhten Stoffwechselaustausch erlaubt. In diesem geschlossenen Bioreaktor befindet sich oberhalb des Transplantats ein magnetischer, kolbenähnlicher Druckstempe1 , der als Belastungsapplikator auf die Zellkultur fungiert. Der Stempel wird kontaktlos durch den Bioreaktorraum gesteuert und dabei eine gerichtete uniaxiale Druckstimulierung auf das Gewebetransplantat herbeigeführt . Die berührungslose Kontrolle des Mini-Aktuators erfolgt durch extern angeordnete Kontrollmagneten, deren ausgerichtetes (Elektro-) magnetisches Feld eine Positionsänderung des Stempels im Bioreaktor bewirkt und eine organotypische dynamische bzw. statische Druckstimulierung nach sich zieht.
Das Verfahren und der Bioreaktor haben den bereits aufgeführten Vorteil, dass während der Züchtung auch eine Stimulierung der Zellkulturen erfolgen kann. Es ist vor allem die Züchtung bzw. Regeneration von Binde- sowie Stützgewebsstrukturen und funktioneilen Gewebesystemen (Knorpel, Knochen etc.) möglich.
Die Apparatur ermöglicht bei einer sterilen Verfahrensweise die Züchtung von Zelltransplantaten die, insbesondere synchron, perfundiert und druckbelastet werden und sich demnach durch eine erhöhte Produktion von Matrixbestandteilen (z.B. Knorpelzellkulturen) auszeichnen. Aufgrund seines
Automatisierungsgrades minimiert diese Vorrichtung die Zahl der Arbeitsgänge und mindert so das Infektionsrisiko der
Zellkultur. Weiterhin garantiert die automatisierte Züchtung und Stimulierung der Transplantate definierte und reproduzierbare Prozessabläufe. Aufgrund der
Konstruktionsmerkmale des erfindungsgemäßen Bioreaktors ist ein abgeschlossener Bioreaktorkreislauf gewährleistet und demzufolge eine streng autologe Kultivierung bzw.
Stimulierung von Gewebeersatzstrukturen unter Einhaltung der
GMP-Richtlinien möglich.
Für den Bioreaktor ergibt sich als weiteres Einsatzgebiet die pharmazeutische Wirkstofftestung für die Charakterisierung von proliferations- sowie differenzierungsrelevanten Stoffen bzw. Stoffkombinationen auf Transplantate.
Im Folgenden wird das erfindungsgemäße Verfahren und der erfindungsgemäße Bioreaktor in Ausführungsbeispielen erläutert. Die dazugehörigen Abbildungen zeigen:
Fig. 1 Verfahren zur Herstellung von Transplantaten Fig. 2 Schema GMP-Bioreaktorsystem
Fig. 3 Schema Einkammerbioreaktor
Fig. 4 Schema Zweikammerbioreaktor
Fig. 5 Aufbau und Ausführungsformen des Mini-
Aktuators Fig. 6: Schema der Konstruktherstellung und
Konstrukteinsaat im Bioreaktor
Fig. 7: Schema der technischen Einrichtung zur Konstruktperfundierung und Mediendurchmischung im Einkammerbioreaktor Fig. 8: Schema der technischen Einrichtung zur Konstruktperfundierung und Mediendurchmischung im Zweikammerbioreaktor Fig. 9: Fixierungsschema des Transplantates im Bioreaktor
Fig. 10: Magnetsysteme zur Steuerung des Mini-Aktuators Fig. 11: Stimulationsschema im Zweikammerreaktor
Beispiel 1
Verfahren zur Herstellung von Transplantaten
In der Figur 1 wird am Beispiel der Knorpelgewebstransplantation der Einsatz des Bioreaktors zur synchronen Kultivierung und Stimulierung von dreidimensionalen Zelltransplantaten dargestellt.
Dazu wird dem Patienten als erstes (I) gesundes Zellmaterial
(z.B. artikularer Knorpel) und Blut minimalinvasiv entnommen. Über enzymatische Verdauung werden die gewonnenen Zellen vereinzelt, ausgezählt und in Abhängigkeit davon entweder über Standardmethoden des Tissue Engineerings in Monolayerflaschen (II) ausgesät und streng autolog vermehrt oder aber sofort der Konstrukthersteilung zugeführt (III) . Hierbei werden die Zellen in eine dreidimensionale Transplantatsstruktur, die aus biokompatiblen bzw. resorbierbaren Trägermaterial (z.B. Hydrogele, Agarosen, Kollagene, Hydroxylapatite, Polymerkomplexe etc.) besteht, eingebracht. Dazu werden die suspendierten Zellen (z.B. Chondrozyten) mit der biogenen Stützstruktur (z.B. Agarose) vermischt, in einem Einsaatkolben eingebracht und z.B. in einer zylindrischen Transplantatsform (z.B. Knorpel-Agarose- Matrix) ausgehärtet. Diese in-vivo adaptive, dreidimensionale Struktur führt vor allem bei Zellen des Binde- und Stützgewebes (z.B. Chondrozyten) zu einer (Re-) Differenzierung und einhergehend damit zu einer Synthese gewebstypischer Substanzen und Matrixbestandteile (z.B. Kollagene, Proteoglykane) .
Dieser Einsaatkolben, mit dem innen liegenden spatialen Zelltransplantat, wird in den Bioreaktor eingeführt (IV) , das Transplantat herausgepresst und im Bioreaktor positioniert. Anschließend erfolgt die GMP-geeignete entweder gleichzeitige, aufeinander folgende oder zeitlich gesteuertem Kultivierung und Stimulierung dieses Zellkonstruktes in der neu entwickelten geschlossenen Bioreaktorapparatur (V) . In dieser Phase kann das Zelltransplantat mit dieser multiplen in-vivo ähnlichen Reizung (Stimuli wie Scherkraft, Perfusion, Deformation, mechanische Belastung) zu einer erhöhten Differenzierung und Expression von organotypischen Markern gebracht werden.
Nach kurzer Zeit hat sich ein hochvitales, matrixreiches Zellkulturkonstrukt in dem Bioreaktor regeneriert. Dieses autologe Transplantat wird entnommen (VI) , gegebenenfalls an die Geometrie des Gewebsdefektes angepasst und anschließend in das defekte Binde- oder Stützgewebe transplantiert . Beispiel 2 Schema des Bioreaktorsystem
Figur 2 veranschaulicht eine Ausführungsform des Bioreaktorsystems (mit dem Zweikammerbioreaktor) zur autologen Kultivierung und multiplen Stimulierung von Zelltransplantaten in einer abgeschlossenen Reaktorstruktur mit GMP-gerechter Verfahrensweise.
In diesem Ausführungsbeispiel befindet sich die gesamte Vorrichtung zur Gewährleistung der optimalen Temperatur, Luftfeuchtigkeit und -Zusammensetzung in einem temperierbaren und gasregulierbaren Inkubator. Ebenso ist auch ein getrennter Aufbau möglich, bei der der Bioreaktor 1 und das Medium im Inkubator und die weiteren Technikkomponenten zur Kontrolle außerhalb des Inkubators angeordnet sind. Der Bioreaktor 1 selbst und die darin eingesetzten Bauteile sind biologisch sowie chemisch inert und autoklavierbar . Darüber hinaus besteht der Bioreaktorkorpus und der verschraubbare Deckel aus nicht- (z.B. Kunststoffe) bzw. schwach-magnetische Materialien (z.B. Vanadium-4-Stahl) . Das Kulturmedium wird aus dem Mediumreservoir 2 durch das Schlauchsystem 4 mit dem 3 -Wege-Ventil 6 und dem 4-Wege- Ventil 7 mittels der Umwälzpumpe 5 in den Bioreaktor 1 geführt. Dieses Kulturmedium kann mit, aus Patientenblut gewonnenen, autologen additiven Faktoren (z.B. Wachstumsfaktoren, Mediatoren etc.) aus dem Supplementenreservoir 3 angereichert werden. Das Medium wird entweder im Batch, Fed-Batch oder im kontinuierlichen Verfahren dem Bioreaktor 1 und somit dem Transplantat 11 zugeführt . Das Medium gelangt dann bei geschlossenem Kreislauf über das Schlauchsystem 4 in das Mediumreservoir 2 , welches mit Messsonden zur Kontrolle der physikochemischen Parameter, wie z.B. pH, pC02 und p02, ausgestattet ist. Wird das Medium als verbraucht angesehen, kann es über das Schlauchsystem 4 in ein externes, abgeriegeltes Abfallgefäß abgeleitet werden. In beiden Fällen besteht die Möglichkeit über die VentilVorrichtung 7 eine sterile Mediumprobe aus dem Reaktorkreislauf in eine Probennahmestrecke 8 zur weiteren Analyse abzuleiten. Im Bioreaktor 1 liegt das zu kultivierende und stimulierende Transplantat 11 in medialer Position auf dem Reaktorboden. Unterhalb des Transplantates 11 kann sich eine zweite, kleinere Kammer befinden. Dieser Strömungsraum wird über das Schlauchsystem 4 mit Medium versorgt und kann mit einem stark porösen jedoch dünnen Sintermaterial 16 ausgefüllt sein. Diese untere Kammer kann durch eine dünne Klarglasscheibe 17 abgeriegelt sein und als Mikroskopieröffnung für inverse Mikroskope dienen.
Innerhalb der oberen Kammer des Bioreaktor 1 befindet sich neben den, im Bioreaktordeckel eingelassenen Biosensoren 9 der Mini-Aktuator 14. Dieser als magnetischer Stempel ausgeführte Mini-Aktuator 14 wirkt als Druckapplikator kontaktlos, und wird durch den Kontrollmagneten bzw. die Spule 15 gesteuert.
Beispiel 3
Schema Einkammerbioreaktor
Figur 3 zeigt eine mögliche Ausführungsform des Bioreaktors 1 bestehend aus einer Kulturkammer, die der Implementierung des kontaktlos steuerbaren Mini-Aktuators 14 dient.
Der als Einkammerbioreaktor ausgeführte Bioreaktor 1 besteht aus einem Korpus und dem Bioreaktorverschluss 21, der zusätzlich über einen Quetschring 20 abgedichtet ist. In der Deckelkonstruktion sind Biosensoren 9 eingelassen, die der on-1ine-Messung von z.B. Glukose- und Laktatkonzentrationen u.a. Mediumbestandteilen dienen. In dem Reaktorraum befindet sich ein passgenau eingelassener Mini-Aktuator 14 oberhalb des Transplantates 11, welches auf einem speziellen Reaktorboden mit eingesetzter Klarglasscheibe 17 ruht. Zur Mediumversorgung des Transplantates 11 führen mindestens je ein Zu- und Ablauf über Luer-Anschlüsse 19 in den Bioreaktor 1. An mindestens einen der Abläufe 19 wird über ein 3 -Wege-Ventil 6 eine Probennahmestrecke 8 integriert. Beispiel 4
Schema Zweikammerbioreaktor
Figur 4 skizziert eine weitere Ausführungsform eines Bioreaktors 1 bestehend aus zwei Kammerräumen, wobei die obere den Druckstempel 14 beinhaltet und die untere der Anströmung unterhalb des Transplantates 11 dient. Diese Ausführungsform unterscheidet sich in Funktion, Eigenschaft und Anforderung der Bauteile 1, 6, 8, 9, 14, 19-21 nicht von dem im Beispiel 3 beschriebenen Bioreaktor 1. In der Apparatur sind mindestens jeweils ein Zu- und Ablauf 19 in die obere und untere Reaktorkammer eingelassen, um eine ventilgeregelte Anströmung der jeweiligen Kammer und des Transplantates 11 zu erreichen.
Die untere Kammer ist in ihrer Dimension so gestaltet, dass ihr Durchmesser geringer als der des Transplantates 11 ist. Diese Kammer nimmt eine flache passgenaue Scheibe aus porösem Sintermaterial 16 auf, so dass eine inverse Mikroskopierung durch die abschließende Glasscheibe 17 und die Membran 18 zum Transplantat 11 unbeeinträchtigt erfolgen kann. Diese Scheibe aus gesintertem Material 16 in der unteren Reaktorkammer erfüllt in der vorliegenden Apparatur eine weitere wichtige Funktion. Sie verhindert, bei mechanischer Belastung des Transplantates 11 durch den Druckstempel 14 ein nicht erwünschtes Hereinpressen des gelartigen Zellkonstruktes 11 in den Kammerraum. In Abhängigkeit der verwendeten Stützmatrix und seiner Viskosität ist die Verwendung einer fluiddurchlässigen Membran 18 zwischen dem Sintermaterial 16 und dem Transplantat 11 vorgesehen, um eine Vermengung des Trägermaterials mit dem Sintermaterial 16 zu verhindern. Beispiel 5
Aufbau und Ausführungsformen des Mini-Aktuators 14
Die Figuren 5 zeigen den Aufbau, die Geometrie und differierende Formen des Mini-Aktuators 14, welcher passgenau im Reaktorraum (hier exemplarisch im Zweikammermodell) vertikal gleitet und axiale Druckkräfte auf das auf dem Reaktorboden liegende Transplantat 11 überträgt. Dieser magnetische Druckapplikator 14 wird erfindungsgemäß (siehe Fig. 5a) berührungslos durch extern angeordnete
Kontrollmagneten 15 in seiner vertikalen Position im
Bioreaktor 1 gesteuert . Eine absolut senkrechte Kompression kann einerseits durch die mediale Positionierung des Transplantates 11 im Bioreaktor 1 sichergestellt werden. Andererseits muss eine passgenaue Dimensionierung des Druckstempel -Außendurchmessers D2 an den Bioreaktor- Innendurchmesser D2 erfolgen. Dies ermöglicht eine vertikale Führung des Mini-Aktuators 14 im Bioreaktor 1, ohne ein Verkanten bzw. eine Schrägstellung des Stempels zu bewirken. Bei sämtlichen Bioreaktormodellen ist dieser Durchmesser D2 größer zu dimensionieren als der Außendurchmesser Dl des Transplantates 11. Figur 5b stellt den charakteristischen Aufbau dieser Druckeinheit 14 dar. Er besitzt einen extrem leistungsfähigen Permanentmagneten 22, vorzugsweise aus einer Neodym-Eisen- Bor-Verbindung, der sich bereits bei geringsten magnetischen und elektromagnetischen Feldern nach der jeweiligen Feldrichtung bewegt. Dieser Permanentmagnet 22 ist in einer lackierten oder galvanisierten Form in einen biologisch inerten Kunststoff -dem Hüllkörper 23- eingekapselt. Dieser, vorzugsweise zylindrische, Hüllkörper 23 gleitet mit seinem passgenauen Außendurchmesser reibungsarm und exakt senkrecht im Bioreaktorzylinder. Auf der Unterseite des plastischen Hüllkörpers 23 können neben ebener Fläche auch andere organotypische Negativformen als Stempelfläche 24 aufgeprägt sein, um in-vivo adaptive Positivformen (u.a. Wölbungen, Bögen etc.) nachzustellen.
Die hier vorliegende neuartige Aktuatorgeometrie, ohne etwaige Strömungskanäle 33 im Hüllkörper 23, ermöglicht darüber hinaus eine Pumpfunktion bedingt durch eine zyklische Magnetfelderzeugung. Durch die bestehenden Druck- und Ventilverhältnisse im Bioreaktor 1 wird durch eine Aufwärtsbewegung des Mini-Aktuators 14 Medium in den Reaktorraum angesaugt. Durch Abwärtsbewegung bzw. Druckkompression auf das Transplantat 11 wird dieses Medium aus dem Bioreaktor 1 herausgepresst . Figur 5c zeigt eine weitere exemplarische Ausführungsform des Mini-Aktuators 14, der ebenfalls aus einem starken Permanentmagneten 22 und einem Hüllkörper 23 mit individueller Stempelfläche 24 aufgebaut ist. Dieses Modell weist zur Strömungsoptimierung am Rand seines Hüllkörpers 23 so genannte Strömungskanäle 33 auf. Hierdurch ist eine Medienumströmung des Mini-Aktuators 14 im Bioreaktorraum möglich und es werden geringere Stellkräfte zur Überwindung des Medienwiderstandes benötigt. Der Hüllkörper 23 muss mindestens 3 Führungsnasen mit einem passgenauen Außendurchmesser D2 aufweisen, um eine planare Positionierung des gesamten Mini-Aktuators 14 auf dem Transplantat 11 sicherzustellen.
Figur 5d stellt einen modifizierten Druckstempel 14 basierend auf Figur 5b dar, welcher zur Schaffung einer räumlichen Distanz von Permanentmagneten 22 und Zellkulturkonstrukt 11 einen Verlängerungssteg 34 aufweist. Ursache dieser Distanzierung des Permanentmagneten 22 in dem oberen Zylinderkopf zu dem Transplantat 11 ist die Minimierung etwaiger Feldeinf lüsse auf Zellkulturen 11 .
Figur 5e zeigt einen Mini -Aktuator 14 basierend auf Figur 5d, welcher mindestens 3 Strömungskanäle 33 und 3 Führungsnasen mit einem Außendurchmesser D2 aufweist .
Beispiel 6
Schema der Konstruktherstellung und Konstrukteinsaat im
Bioreaktor 1
Die Figuren 6 stellen das Verfahren und die Vorrichtung zur Herstellung und Einsaat von dreidimensionalen, vorzugsweise zylindrischen, Zellmatrixkonstrukten dar.
In der Figur 6a (Zellmatrixeinsaat) werden vermehrte (siehe Fig. 1, II) oder frisch isolierte (siehe Fig. 1, III) und präparierte Zellen 12 mit der biogenen Trägerstruktur 13 vermengt, bis zur Homogenität suspendiert und mit dem Zielvolumen der Zellmatrix in den Einsaatkolben 25 eingespritzt.
Der passgenaue Einsaatkolben 25 entspricht in seinem Innendurchmesser Dl dem zukünftigen Außendurchmesser des Transplantates 11 sowie in seinem Außendurchmesser D2 dem Innendurchmesser des Bioreaktor 1.
In der Figur 6b (Stempeleinsatz) ist der Stempeleinsatz 26 in dem Einsaatkolben 25 dargestellt. Während des Aushärtens bzw. des Polymerisierens der jeweiligen Zellmatrix im Reaktorkolben 25 wird auf der ebenen Schiebeplatte 27 der passgenaue planare Stempel 26 mit dem Außendurchmesser Dl in den Kolbenhohlzylinder eingeführt.
Die Unterseite dieses Stempels 26 kann analog zu der Stempelfläche 24 des Mini-Aktuators 14 mit organotypischen Strukturen geprägt sein.
In der Figur 6c (Stempelaufsatz) ist der Aufsatz des Stempels 26 auf das Transplantat 11 in dem Einsaatkolben 25 aufgezeigt. Der Stempel 26 wird auf das Zellgerüst mit leichtem Anpressdruck aufgesetzt, um einer Meniskusbildung bzw. Wölbung der Matrixoberseite des Transplantates 11 entgegen zu wirken, um z.B. eine zylindrische Transplantatsform zu erhalten. Soll eine in-vivo adaptive Oberfläche auf das Transplantat 11 aufgeprägt werden, so muss dieser Stempelaufsatz 26 während der Aushärte- bzw. Polymerisationsphase erfolgen.
In der Figur 6d (Entfernen der Schiebeplatte) wird der aufgesetzte Stempel 26 nach der Formgebung des Transplantates 11 abgehoben und die sich am Boden des Einsaatkolbens 25 befindliche, vorzugsweise hydrophobe, Schiebeplatte 27 entfernt. Um zu verhindern, dass ein gelartiges Zellkonstrukt 11 an die Schiebeplatte 27 und den Einsaatkolben adhäriert, wird z.B. eine inerte Folie bzw. ein inertes Polymervlies zum Auskleiden der Oberflächen verwendet .
Die Figur 6e (Konstrukteinsaat im Bioreaktor) zeigt die Einsaat eines zylindrischen Konstruktes am Beispiel des Zweikammerbioreaktors. Hierbei wird der passgenaue Einsaatkolbens 25 in den Bioreaktor 1 implementiert, dann mittels Druckstempel 26 das Zellkonstrukt 11 medial in den präparierten Reaktor eingebracht und die Einsaatvorrichtung aus dem Bioreaktor 1 entfernt. Dieser präparierte Bioreaktor 1 beinhaltet das poröse Sintermaterial 16 und gegebenenfalls eine diffusionsdurchlässige Membran 18. Beispiel 7
Schema der technischen Einrichtung zur Konstruktperfundierung und Mediendurchmischung im Einkammerbioreaktor
In den Figuren 7 ist die Konstruktion und der Aufbau des Einkammerreaktorkorpus und deren Auswirkung auf die Diffusion und Perfusion im Transplantat 11 dargestellt.
In der in der Figur 7a dargestellten Ausführungsform münden vier Zu- und Abläufe mit integrierter Luer-Kupplung 19 in den Bioreaktor 1. Diese können zur Strömungsoptimierung sowohl in ihrer Lage und Position differieren, also auch z.B. tangential in den Bioreaktorkorpus 1 eintreten. Die Zahl der in den Bioreaktor 1 führenden Zu- bzw. Abläufe 19 beträgt mindestens zwei. An jedem abfließend gerichteten Luer- Anschluss 19 kann mit z.B. einem 3 -Wege-Ventil 6 eine Probennahmestrecke 8 installiert werden.
Bei einer statischen Kultivierungsweise im Bioreaktor diffundiert das Medium vor allem in die oberen und seitlichen Randbereiche des z.B. zylindrischen Gewebetransplantates 11 und versorgt die Zellkultur u.a. mit Nutrienten und führt gleichzeitig StoffWechselendprodukte aus der Trägermatrix ab.
Die Figur 7b zeigt eine kontinuierliche Zufuhr von Nährmedium aus dem Mediumreservoir 2 mit dahinter liegendem fakultativem
Supplementenreservoir 3 (nicht dargestellt) mittels einer dosierbaren Umwälzpumpe 5 durch das Schlauchsystem 4 in mindestens einen Zulauf 19 des Bioreaktors 1.
Der Abfluss des Mediums erfolgt durch mindestens einen Ablauf 19 in das Schlauchsystem' 4, an dem an mindestens einer Stelle über ein 3 -Wege-Ventil 6 eine abgekoppelte Probennahmestrecke
8 integriert sein kann.
Das verbrauchte Medium kann, wie hier dargestellt, im Kreislauf verbleiben, indem es in das Mediumreservoir 2 gelangt und von da aus wieder zur erneuten kontinuierlichen Perfundierung des Transplantates 11 herangezogen wird. Anderenfalls kann es aus dem Kreislauf vollständig entnommen werden. Die Kultivierung des Transplantates 11 erfolgt dann im Batch- bzw. Fed-Batch-Verfahren.
Eine gezielte kontinuierliche Zufuhr von Kulturmedium in den Reaktorraum kann die An- und Durchströmung des Transplantates 11 im Vergleich zum statischen Schema der Figur 7a deutlich verbessern. Durch die induzierte Perfundierung werden tiefere Konstruktregionen mit Medium durchgespült . Demzufolge wird der Stoffaustausch optimiert, was eine erhöhte Zelldifferenzierung nach sich ziehen kann. Weiterhin wird durch diese Ausführung der Konstruktanströmung eine Scherkraftstimulierung auf die eingebetteten Zellen ausgeübt.
Beispiel 8
Schema der technischen Einrichtung zur Konstruktperfundierung und Mediendurchmischung im Zweikammerbioreaktor
Die Figuren 8 zeigen einen Zweikammerbioreaktor, welcher eine optimierte Strömung, Diffusion und Perfusion des Transplantates zulässt und so die Qualität des Gewebeersatzes verbessern hilft.
In der Figur 8a wird eine Variante mit statischer Kultivierung und Diffusion dargestellt. Die in den Bioreaktor 1 mündenden Zu- bzw. Abläufe 19 sind mindestens zwei, wobei mindestens je einer in der unteren und oberen Reaktorkammer münden muss. Die hier aufgeführten zwei Zu- bzw. Abläufe 19 pro Kammer können zur Strömungsoptimierung sowohl in ihrer Lage, Position und Dicke differieren. Die Probennahmestrecke 8 kann an jedem abfließend gerichteten Luer-Anschluss 19 beider Kammern mit z.B. einem 3 -Wege-Ventil 6 o.a. installiert werden.
Neben einer Mediendiffusion in die oberen und seitlichen Transplantatsbereiche führt die in dieser Konstruktion neu eingerichtete Kammer unterhalb des Transplantates 11 während der statischen Kultivierungsphase zu einer Diffusion des Kulturmediums aus dem porösen Sintermaterial in die bodennahen Regionen der Trägerstruktur, so dass daraus eine verbesserter Stoffwechsel im gesamten Transplantat 11 resultiert .
Die Figur 8b zeigt die kontinuierliche Zufuhr von Nährmedium aus dem Mediumreservoir 2 mit dahinter angeordneten fakultativen Supplementenreservoir 3 (nicht dargestellt) mittels einer dosierbaren Umwälzpumpe 5 o.a. durch das Schlauchsystem 4 in mindestens einen Zulauf 19 der unteren und oberen Kammer des Bioreaktors 1. Der Abfluss des Mediums erfolgt durch mindestens einen Ablauf 19 je Kammer in das Schlauchsystem 4, an dem an mindestens einer Stelle über ein 3 -Wege-Ventil 6 eine abgekoppelte Probennahmestrecke 8 integriert sein kann.
Das verbrauchte Medium kann wie hier dargestellt im Kreislauf verbleiben, indem es in das Mediumreservoir 2 gelangt und von da aus wieder zur erneuten kontinuierlichen Perfundierung des Transplantates 11 herangezogen wird. Anderenfalls kann es aus dem Kreislauf vollständig entnommen werden. Die Kultivierung des Transplantates 11 erfolgt im Batch- bzw. Fed-Batch- Verfahren. Die erfindungsgemäße Integration einer zweiten Kammer, hier unterhalb des Transplantates 11, zeigt seine positiven Eigenschaften vor allem bei einer gezielten Anströmung des biologischen Konstruktes auf. Wird demzufolge mittels des 3- Wege-Ventils 6 der Medienstrom aus dem Mediumreservoir 2 in die untere Kammer geschalten, erfolgt eine induzierte aufwärtsgerichtete Perfundierung des Transplantates 11 bei geschlossenem unteren Ablauf, da das Medium den Reaktorraum nur durch den oberen Ablauf verlassen kann.
Analog zu diesem Schema lässt sich durch eine Umschaltung der 3 -Wege-Ventile 6 eine Transplantatsdurchströmung von der oberen zur unteren Kammer durch das Konstrukt 11 erwirken. Resultat dieser aufgezeigten Vorrichtung ist neben der voll- ständigen Perfundierung eine weitere Zellstimulation über eine induzierte Scherkraft, die auf die Zellen wirkt und über den Volumenstrom der Umwälzpumpe 5 eingestellt werden kann. Möglich ist auch eine partielle bzw. totale Öffnung der 3- Wege-Ventile 6, um einen schnelleren Mediumaustausch im Bioreaktor 1 zu erzielen.
Beispiel 9
Fixierungsschema des Transplantates 11 im Bioreaktor 1
Die Figuren 9 zeigen das FixierungsSchema des Transplantates 11 im Bioreaktor 1 entweder in der Einkammer- oder Zweikämmerausführung .
Die Figur 9a zeigt das zu stimulierende Transplantat 11, das medial oberhalb des Klarglases 17 im Einkammerbioreaktor 1 fixiert ist. Mit mindestens 3 dieser Fixierwände 28 soll eine durch einströmendes Medium hervorgerufene, horizontale Bewegung des Transplantates 11 am Reaktorboden verhindert werden, um eine optimale Perfusion und Druckstimulation durchführen zu können. Diese im Reaktor 1 eingelassenen, biokompatiblen Fixierwände 28 müssen in ihrer Höhe unterhalb der zu applizierenden Druckamplitude auf das Transplantat 11 dimensioniert werden.
In der Figur 9b ist der Einsatz von mindestens 3 dieser Fixierwände 28 im Zweikammerbioreaktor skizziert, um eine horizontale Fixierung des Transplantats 11 bei den verschiedenen Strömungsverhältnissen zu erreichen und eine ideale senkrechte Perfundierung sowie eine mechanische Druckbeaufschlagung zu ermöglichen.
Beispiel 10
MagnetSysteme zur Steuerung des Mini-Aktuators 14
Die Figuren 10 stellen (dargestellt am Einkammerbioreaktor) charakteristische Vorrichtungen und Apparaturanordnungen für das kontaktlos steuerbare Stimulationsverfahren des Mini- Aktuators 14 auf das Transplantat 11 dar.
In der Figur 10a (Magnetischer Steuerungseffekt Magnetanziehung) sind die charakteristische Vorrichtung und das Prinzip zur berührungslosen Kontrolle des magnetischen
Mini-Aktuators 14 im Bioreaktor 1 zur Druckdeformation des
Transplantates 11 aufgeführt. Die Ausrichtung der
Permanentmagneten im Mini-Aktuator 14 erfolgt nach der vorherrschenden Magnetfeldrichtung, die durch extern angeordneten Kontrollmagneten 15 erzeugt wird. Durch diesen
Kontrollmagneten 15, der z.B. mindestens ein Permanentmagnet oder mindestens eine Spule ist, wird ein definiertes
(elektro-) magnetisches Feld generiert, welches mit seinen Feldlinien in den gesamten Bioreaktorraum 1 herein reicht und eine feldrichtungsabhängige Bewegung des Druckstempels des
Mini-Aktuators 14 auslöst. In dem Beispiel der Figur 10a wird durch den, hier exemplarisch oberhalb angeordneten, Kontroll- magneten 15 das Prinzip der Magnetanziehung aufgezeigt. In dem in der Figur 10b (Magnetischer Steuerungseffekt - Magnetabstoßung) dargestellten Ausführungsbeispiel wird durch die Magnetabstoßung der zweite magnetische Steuerungseffekt zwischen dem magnetischen Kontrollsystems 15 und dem Mini- Aktuator 14 dargestellt. Durch einen Wechsel der Magnetfeldrichtung des Kontrollmagneten 15 ändert sich die Bewegungsrichtung des Mini-Aktuators 14, welcher nun abwärtsgerichtet auf das Transplantat 11 gesteuert wird. Durch Erhöhung der Leistung bzw. magnetische Flussdichte ausgehend vom Kontrollmagneten 15 verstärkt sich auch die Druckbelastung des Transplantates 11 bis zum Zielwert der in- vivo adaptiven Stimulation.
Die Figuren lOc-lOe zeigen Anordnungen von Steuerungselementen, mit denen es möglich ist, den Mini- Aktuator 14 zyklisch und mit hoher Frequenz in einem abgeschlossenen Bioreaktor 1 zu steuern. Die Figur 10c (Steuerung des Mini-Aktuators 14 mittels einer Kontrollmagnetführungsplatte) stellt eine Ausführungsform eines permanentmagnetischen Steuerungssystems dar. In dieser Magnetfeldvariante arbeitet eine Anordnung von mehreren Permanentmagneten 32 unterschiedlicher Größe, Polung und somit Feldstärke sowie -richtung auf einer linear gesteuerten Führungsplatte 31, die hier beispielhaft oberhalb des Reaktorprototyps positioniert ist.
Hierbei wird durch einen Linearmotor 29 eine Führungsschiene 30 mit den in der Magnethalterung 31 eingesetzten Permanentmagneten 32 angetrieben. Diese mobile Phase des Magnetsystems macht eine Bewegung des Bioreaktors 1 unnötig.
Das Steuerungssystem in Figur lOd (Steuerung des Mini- Aktuators 14 mittels rotierenden Permanentmagneten) basiert ebenfalls auf einer Steuerung des magnetischen Druckstempels 14 mittels einer Dauermagnetenanordnung auf einer rotierenden Scheibe .
Hierbei treibt ein Stellmotor 29 eine Magnethalterung 31 mit eingepassten Permanentmagneten 32 alternierender Polungen in rotierender Weise an. Diese rotierende Magnethalterung kann beispielsweise mit vier alternierend gepolten Magneten 32 besetzt sein und bewirkt infolge dessen bei einer vollen Umdrehung zwei komplette Druckbeaufschlagungen auf das Transplantat 11. Die Kombination dieser Magnetbesetzung der Rotationsscheibe mit der Umdrehungsgeschwindigkeit des Stellmotors 29 ergibt eine höher frequente Magnetfeldänderung und demzufolge ein hochdynamisches Stimulationsschema auf das Transplantat 11. Die Vorderansicht verdeutlicht beide Magneteffekte des Rotationssystems anhand zweier Bioreaktoren 1. Die Ausführungsform dieser Vorrichtung ist für eine Vielzahl von Bioreaktoren 1 geeignet, solange diese exakt ober- bzw. unterhalb des Kontrollmagnetmittelpunktes platziert werden können.
Die Figur lOe (Steuerung des Mini-Aktuators 14 mittels Eisenkernspule 35) stellt eine Magnetvorrichtung basierend auf einer Spulenanordnung dar. Dieses Magnetspulensystem arbeitet mit einer Induktionsspule 35, die hier oberhalb des Bioreaktors 1 fixiert wird, unter Erzeugung eines definierten Elektromagnetfeldes, welches sich über die zugeführte elektrische Leistung stufenlos regeln lässt und somit jegliche Positionen des Mini-Aktuators 14 im Bioreaktorkorpus ermöglicht. Durch eine Umpolung der Stromrichtung erfolgt eine Umkehrung der vorhandenen Feldrichtung und des elektromagnetischen Effektes. Die verwendete Eisenkernspule 35 baut senkrecht zur Spulenwicklung ihr elektrisches Feld auf und wirkt auf den statischen Permanentmagneten des Mini-Aktuators 14 anziehend sowie abstoßend ein.
Eine automatisierte Station dieses Systems besteht aus einer leistungsfähigen Spule 35 mit geringer Wärmeentwicklung mit einem angeschlossenen regulierbaren Transformator, dessen Leistung mittels eines Multimetermessgerätes überwacht wird. Darüber hinaus gewährleistet der Einsatz einer Mikrocontrollers die Ansteuerung eines Relais, welches den Strom in gewünschter Richtung schaltet, den gewünschten Effekt einer intermittierenden Druckapplizierung auf das Zellkonstrukt .
Beispiel 11 Stimulationsschema im Zweikammerreaktor
Die Figuren 11 zeigen das gesamte Stimulationsschema des neuartigen GMP-fähigen Bioreaktors 1. Hierbei laufen die mechanische Druckstimulation, die Perfusion und die scherkraftinduzierte Strömung in dem dreidimensionalen Transplantat 11 parallel ab.
In der Figur 11a (Perfusionsstimulierung ohne mechanische Belastung) erfolgt eine Stimulierung des Zellkonstruktes 11 nur über eine gerichtete Medienanströmung, die zu einer Konstruktperfundierung mit einer Scherkraftausübung auf die
Zellmembran im μPa-Bereich führt. Dargestellt ist in diesem Verfahrensbeispiel eine kontinuierliche Nährmedienzufuhr in zwei Zuläufe 19, so dass jede Reaktorkammer versorgt wird, sich zuerst ein Konzentrationsausgleich im Transplantat 11 einstellt und hiernach, in Abhängigkeit der gewählten Volumenströme, sich eine obere- und untere Perfusionszone im Konstrukt ausbildet. Dieses verbrauchte Medium verlässt über zwei weitere Abläufe 19 den Reaktorraum. Während dieser Strömungsstimulierung erfolgt hier keine Druckbeaufschlagung, da der Druckstempel 14 vom Kontrollmagnetsystem 15 in eine obere Position im Bioreaktor 1 gehalten wird. In der Figur 11b (Perfusionsstimulierung und Stempelaufsatz) ist der zweite Schritt einer multiplen Stimulierung von Gewebeersatzmaterialien 11 in dem Bioreaktor 1 aufgezeigt. Zuerst werden, wie in diesem Beispiel, die Strömungsverhältnisse modifiziert. Über die 3 -Wege-Ventile 6 wird der Nährmedienstrom nur in die untere Reaktorkammer geleitet, von wo es durch das Transplantat 11 perfundiert, den Stoffaustausch herbeiführt und den oberen Reaktorraum über ein Abfluss verlassen kann. Durch eine Umpolung des KontrollmagnetSystems, hier einer Eisenkernspule 35 bei geringer Leistungsinduktion, kommt es zum Aufsatz des magnetischen Mini-Aktuators 14 auf den z.B. zylindrischen Gewebeersatz 11. Dieser Stempelaufsatz mit einer 0%-igen Konstruktdeformation markiert einen Umkehrpunkt des Mini- Aktuators 14 bei einer dynamischen hochfrequenten Deformation der Zellmatrix 11. Im nächsten Schritt des Stimulationsverfahrens wird, wie in Figur 11c (Perfusionsstimulierung und mechanische Belastung) dargestellt, die von der Spule 35 ausgehende Magnetfeldstärke erhöht. Das Resultat dieser erhöhten magnetischen Flussdichte ist eine verstärkte Kompression des Transplantates 11 auf die gewünschte Zieldeformation, die vorzugsweise in-vivo-ähnliche Prozesse imitiert. Nach dieser erfolgten Druckstimulation kann in intermittierender Verfahrensweise ein Wechsel zwischen Zellreizung und Stempelaufsatzes herbeigeführt werden. Auch eine statische Kompression des Ersatzmaterials ist mit dem aufgeführten Apparatur und dem dargelegten Verfahren möglich. Grundsätzlich kann während dieser mechanischen Belastung eine gerichtete Konstruktperfusion durch die Trägermatrix eingeführt werden, welche den Zellen benötigte Nutrienten liefert und Metaboliten abführt, die vor allem während stoffwechselaktiver Phasen, wie z.B. bei der Proliferation und der Differenzierung (extrazelluläre Matrixsynthese) , ausgetauscht werden.
Nachdem das Druckbelastungsprotokoll abgearbeitet wurde, führt man die Stempelvorrichtung in den Ausgangszustand zurück, perfundiert die Zellkultur z.B. weiter kontinuierlich und entnimmt, z.B. bei ausreichend synthetisierter extrazellulärer Matrix, das Transplantat 11.
Bezugs zeichenliste
Bioreaktor Mediumreservoir Supplementenreservoir Schlauchsystem Umwälzpumpe 3 -Wege-Ventil 4 -Wege-Ventil Probennahmestrecke Biosensoren Glu/Lac Messsonden pH, pC02 , pθ2 Transplantat Zellen/Gewebe Stützmatrix Mini-Aktuator Kontrollmagnet poröses Sintermaterial Klarglas Durchlässige Membran Schlauchkupplung/Luer-Anschluss Quetschring Reaktorverschluss Permanentmagnet Hüllkörper Stempelflache Einsaatkolben Stempel Schiebeplatte Fixierwand Stellmotor Führungsschiene Magnethalterung Permanentmagnet Strömungskanäle Verlängerungssteg Spule

Claims

Patentansprüche
1. Verfahren zum Kultivieren und Stimulieren von dreidimensionalen, vitalen und mechanisch widerstandsfähigen Zelltransplantaten in einem GMP- geeigneten Bioreaktor, mit den Verfahrensschritten a) das dem Organismus entnommene, mit an sich bekannten Methoden zur Bioreaktorkultivierung aufbereitete Explantatszellen (12) und aus handelsüblichen biokompatiblen, -resorbierbaren oder autologen oder homologen Materialien bestehende Trägermatrizes (13) nach deren Mischung als Zellmatrixsuspension b) in einen, gegebenenfalls folierten, Einsaatkolben (25) mit beliebigen, dem späteren Transplantat angepassten Querschnitt eingebracht wird und dort aushärtet bzw. polymerisiert , c) gegebenenfalls hierbei mittels eines passgenauen, inerten, gegebenenfalls strukturierten oder folierten Stempels (26) mit minimalen Druck belastet wird, d) der Einsaatkolben mit dem Transplantat (11) in den Kammerraum des Bioreaktorkorpus eingeführt wird, e) wo das Transplantat (11) aus dem Einsaatkolben (25) auf dem Bioreaktorboden medial aufgebracht und der Biorektor (1) nach Entfernung des Einsaatkolbens verschlossen wird, f) wo das Transplantat durch den Eintrag von Perfusionsströmung weiter kultiviert wird und g) nach Abschluss der Kultivierung das Gewebeersatzmaterial zur weiteren Verwendung entnommen wird, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass das Transplantat in der Phase der Kultivierung auf der dem Bioreaktorboden gegenüberliegenden Oberfläche durch Druck belastet wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass das Transplantat durch einen den Druck vermittelnden Stempel belastet wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1 und 2, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass sowohl die Durchmischung des Bioreaktorraumes durch den Eintrag von Perfusionsströmung als auch der einen Druck auf das Transplantat vermittelnden Stempel in Abhängigkeit von den Kultivierungsbedingungen zeitlich und in der Menge bzw. Stärke steuerbar sind.
4. Verfahren nach Anspruch 1 bis 3, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass das Transplantat intervallartig mit konditionierten Nährmedium durchströmt wird und zyklisch mit dem Druck vermittelnden Stempel belastet wird.
5. Verfahren nach Anspruch 1 bis 4, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass die Druckbelastung des Transplantates während der Perfundierung erfolgt.
6. Verfahren nach Anspruch 1 bis 5, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass das Transplantat in Abhängigkeit von der Verwendung mit statischen, vorzugs- weise mit in-vivo-ähnlichen Druckbelastungen bzw. Konstruktdeformationen gereizt wird oder kontinuierlich mit intermittierenden bzw. dynamischen Druckkräften belastet wird.
Verfahren nach Anspruch 1 bis 6, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass die mechanischen Belastungen mit einer Frequenz von mehr als 0,1 Hz erfolgen.
Verfahren nach Anspruch 1 bis 7, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass die mechanische Druckstimulierung die Form einer symmetrischen oder unsymmetrischen Cosinus- oder Sinushalbwelle aufweist.
9. Verfahren nach Anspruch 1 bis 8, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass der aus einem magnetischen Material bestehende Druckstempel durch ein außerhalb des Bioreaktors erzeugtes (elektro-) magnetisches Feld längs zur Oberfläche des Transplantates im Bioreaktor bewegt wird.
10. Verfahren nach Anspruch 1 bis 9, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass das magnetische Feld durch mindestens einen Permanentmagneten erzeugt wird.
11. Verfahren nach Anspruch 1 bis 10, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass sich mindestens zwei Permanentmagneten mit alternierender Polung auf einer mobilen Halterung oberhalb des Bioreaktors angeordnet sind und zyklisch von einem Stellmotor angetrieben, ihre Position wechseln, wodurch der Druckstempel alternierend auf das Transplantat drückt .
12. Verfahren nach Anspruch 1 bis 8, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t, dass die Spule eines Elektromagneten hochfrequent ihre Stromrichtung und Spannung und somit Feldrichtung und magnetische Flussdichte über den Bioreaktor ändert, wodurch der Druckstempel alternierend auf das Transplantat drückt .
13. Bioreaktor zum Kultivieren und Stimulieren von dreidimensionalen, vitalen und mechanisch widerstandsfähigen Zelltransplantaten in einem GMP- geeigneten Bioreaktor, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Bioreaktor (1) aus einem Grundkörper mit einem Reaktorverschluss (21) druckdicht und steril verbunden ist und mindestens einen Reaktorraum bildet, in dem eine Ablagefläche für ein Transplantat (11) sowie ein Mini- Aktuator (14) implementiert und der Bioreaktor (1) mit wenigstens zwei Schlauchkupplungsanschlüssen (19) für die Mediumzufuhr und Mediumabfuhr bzw. zur Begasung versehen ist .
14. Vorrichtung nach Anspruch 13, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die Zellkulturkonstrukte (11) direkt oder indirekt auf dem Bioreaktorboden eines Einkammerbioreaktors (1) kultivierbar und stimulierbar sind.
15. Vorrichtung nach Anspruch 13, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die Zellkulturkonstrukte (11) direkt oder indirekt, zumindest partiell, auf einer Bodenfläche der oberen Reaktionskammer eines Zweikammerbioreaktors zur Züchtung und Stimulierung liegt, während sich unterhalb dieses Transplantates (11) ein zweiter Reaktorraum befindet.
16. Vorrichtung nach Anspruch 14 oder 15, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Bioreaktor (1) mit einem Transplantatseinsatz auf dem Boden der oberen Reaktorkammer versehen ist, in den die Zellkonstrukte (11) einlegbar sind.
17. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 13 bis 16, d a d u r c h g e k e n n z e i- c h n e t , dass der Behälter des Bioreaktors (1) einen hohlzylinderförmigen Korpus aufweist, der auf der Oberseite von einem Reaktorverschluss (21) abgeschlossen ist.
18. Vorrichtung nach Anspruch 13 bis 17, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der oder die Reaktorverschlusseinheit (21) und der Bioreaktor (1) durch eine Gewindeverbindung und wenigstens einem Dichtring (20) miteinander dergestalt verbunden sind, dass entweder die Gewindeverbindung zwischen dem Reaktorverschluss (21) und dem Behälter (1) durch ein Innengewinde in dem Behälter (1) und ein damit zusammenarbeitendes Außengewinde in dem Reaktorverschluss (21) oder die Gewindeverbindung zwischen dem Reaktorverschluss (21) und dem Behälter (1) durch ein Außengewinde in dem Behälter (1) und ein damit zusammenarbeitendes Innengewinde in dem Reaktorverschluss (21) hergestellt ist.
19. Vorrichtung nach Anspruch 13 bis 18, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der als Deckel ausgeführte Reaktorverschluss (21) mit Biosensoren (9) und/oder Messsonden (10) versehen ist.
20. Vorrichtung nach Anspruch 13 bis 19, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Deckel (21) mit einer Probennahmestrecke (10) versehen ist.
21. Vorrichtung nach Ansprüche 13 bis 20, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Grundkörper des Bioreaktors (13) in der Ausführung als Einkammerbioreaktor mit mindestens je einer Zu- und Ablaufbohrung für die Einrichtung von Schlauchkupplungsanschlüssen (19) versehen ist.
22. Vorrichtung nach Ansprüche 13 bis 20, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Grundkδrper des Bioreaktors (1) in der Ausführung als Zweikammerbioreaktor mit mindestens zwei Bohrungen für die Einrichtung von Schlauchkupplungsanschlüssen (19) versehen ist.
23. Vorrichtung nach Anspruch 22, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass im Zweikammerbioreaktor mindestens je ein Schlauchkupplungsanschluss (19) in den unteren und oberen Reaktionsraum eingelassen ist.
24. Vorrichtung nach Anspruch 21 bis 23, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die in die Bioreaktorkammern mündenden Zulaufanschlüsse (19) und Ablaufanschlüsse (19) mit einem 3-Wege-Ventil (6) oder mit einem 4-Wege-Ventil (7) mit Rückschlagsfunktion versehen sind.
25. Vorrichtung nach Anspruch 24, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass an mindestens einer der Ablaufanschlüsse (19) mit einer Probennahmestrecke (10) versehen sind.
26. Vorrichtung nach mindestens einem der Ansprüche 13 bis 25, d a d u r c h g e- k e n n z e i c h n e t , dass zur Überwachung der Transplantatherstellung der Bioreaktor (1) am Reaktorboden vollständig oder teilweise aus einem transparenten Material, vorzugsweise einer Klarglasscheibe (17) besteht.
27. Vorrichtung nach Anspruch 13 bis 26, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass über dem Reaktorboden des Bioreaktors (1) eine Folie, Vlies oder Membrane (18) aus einem antistatischen oder inerten Material zur Auflage des Transplantates (11) angeordnet ist und dieses Material vorzugsweise weitmaschig, licht-, fluid- und gasdurchlässig ist.
28. Vorrichtung nach mindestens einem der Ansprüche 13 bis 27, d a d u r c h g e- k e n n z e i c h n e t , dass die obere Reaktorkammer des Bioreaktors (1) bei Ausführung als Zweikammerreaktor in ihrer Grundfläche der Transplantatsgrundfläche entspricht, während die Abmaße der unteren Kammer unter denen des Transplantates (11) liegen, so dass bei einer mediale Zellkulturauflage dieses Konstrukt größtenteils über der unteren Kammer liegt und teilweise auf dem Reaktorboden der oberen Kammer.
29. Vorrichtung nach Anspruch 28, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass den Raum der unteren Reaktorkammer eine flache Scheibe (16) aus biologisch inertem, lichtdurchlässigem, weitporigem Material ausfüllt, vorzugsweise aus porösem Sintermaterial, so dass ein ebener Reaktorbodenabschluss aus dieser Scheibe (16) und dem Boden der oberen Reaktorkammer gebildet wird.
30. Vorrichtung nach Anspruch 28 und 29, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass oberhalb der durch die Scheibe (16) ausgefüllten unteren Reaktorkammer auf dem sich in der oberen Reaktorkammer bildenden Reaktorboden des Zweikammerbioreaktors (1) eine Folie, Vlies oder Membrane (18) aus einem antistatischen oder inerten Material zur Auflage des Transplantates (11) angeordnet ist und dieses Material vorzugsweise weitmaschig', licht-, fluid- und gasdurchlässig ist.
31. Vorrichtung nach Anspruch 28 bis 30, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die Komponenten, welche sich im Zweikammerbioreaktor (1) unterhalb des Transplantates (11) befinden, wie die transparente Scheibe (17) , die untere Kammer mit eingelegtem porösen Material (16) und eine weitmaschige Membrane (18) , eine Gesamthöhe innerhalb der Brennweite von handelsüblichen Mikroskop- und Kameraobjektiven nicht überschreiten.
32. Vorrichtung nach Anspruch 13, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass ein magnetischer, vorzugsweise kolbenähnlicher, Mini-Aktuator (14) in dem Bioreaktor (1) angeordnet ist, der von einem oder mehreren extern angeordneten Kontroll- und Steuermagneten (15) durch den Bioreaktor (1) gesteuert bewegt wird.
33. Vorrichtung nach Anspruch 13 bis 32, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Mini-Aktuator (14) im Einkammerbioreaktor (1) oberhalb der Membran (18) und dem Transplantat (11) im Bioreaktorraum angeordnet ist.
34. Vorrichtung nach Anspruch 13 bis 32, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Mini-Aktuator (14) im Zweikammerbioreaktor (1) oberhalb des porösen Materials (16) , der Membran (18) und dem Transplantat (11) in dem oberen Reaktorraum angeordnet ist.
35. Vorrichtung nach den Ansprüchen 32 bis 34, d a d u r c h g e k e n n z e i c h - n e t , dass der zu implementierende magnetische Mini-Aktuator (14) aus einem magnetischen Kernkörper (22) , vorzugsweise aus einem Permanentmagneten, aufgebaut ist, der in einem biologisch inertem Hüllkörper (23) , vorzugsweise Kunststoff, eingekapselt ist.
36. Vorrichtung nach Anspruch 32 bis 35, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der magnetische Kernkörper (22) so ausgerichtet ist, dass das sich zwischen den Polen ausbildende Feld senkrecht zum Transplantat (11) verläuft, so dass der magnetische Nordpol des gesamten Mini-Aktuators (14) aufwärts ausgerichtet ist.
37. Vorrichtung nach Anspruch 32 bis 36, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der den Kernmagneten (22) umgebende biokompatible Hüllkörper (23) in seiner äußeren Form der Querschnittsform der Reaktorkammer des Bioreaktors (1) entspricht.
38. Vorrichtung nach Anspruch 32 bis 37, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die Gesamthöhe des Hüllkörpers (23) so gewählt ist, das es bei einer Implementierung des Mini-Aktuators (14) in den Reaktorraum zu einer senkrecht ausgerichteten Führung des Druckstempels des Mini-Aktuators (14) auf das Transplantat (11) kommt.
39. Vorrichtung nach Anspruch 32 bis 38, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der kolbenförmige Mini- Aktuator (14) aus mehr als einem Hüllkörperzylinder besteht, so dass ein Hüllkörperzylinder, vorzugsweise der obere, den eingekapselten Permanentmagneten beinhaltet und ein weiterer Zylinder der Stempelaufprägung (24) dient, wobei die räumlich getrennten Zylinder über einen Steg (34) oder eine funktionsgleiche Verbindung miteinander verbunden sind.
40. Vorrichtung nach Anspruch 32 bis 39, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die durch den Hüllkörper (23) gebildete planare Stempelfläche (24) an der Unterseite des Mini-Aktuators (14) senkrecht zu der Führungsrichtung im Bioreaktorraum (1) verläuft.
41. Vorrichtung nach Anspruch 32 und 40, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass auf die Stempelfläche (24) des Mini-Aktuators (14) organotypische Negativformen, wie z.B. eine Wölbung, aufgeprägt sind.
42. Vorrichtung nach Anspruch 32 und 41, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die planare oder geformte Stempelfläche (24) eine Prägung in Form einer Gitterstruktur zur Vergrößerung der Stempeloberfläche aufweist, vorzugsweise mit kleinmaschiger Struktur.
43. Vorrichtung nach Anspruch 32 bis 42, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Hüllkörper (24) des Mini-Aktuators (14) mit Bohrungen und/oder .Strömungskanälen (33) so versehen ist, dass über mindestens 3 Stellen des Außendurchmessers eine passgenaue, vertikale Führung des Mini-Aktuators (14) weiter gewährleistet ist.
44. Vorrichtung nach Anspruch 32 bis 43, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die Stempelfläche (24) des Mini-Aktuators (14) mit mindestens einer Führungsnase versehen ist, welche in ihrer passgenau eingelassenen Führungsschiene im Bioreaktorkorpus vertikal gleitet.
45. Vorrichtung nach Anspruch 32 bis 44, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der außerhalb des Bioreaktors (1) angeordneter Kontroll- und Steuerungsmagnet (15) mit dem von ihm ausgehenden (elektro- ) magnetischen Feld eine gerichtete Bewegung des implementierten Mini-Aktuators (14) , mit seinem nach oben ausgerichteten magnetischen Nordpol des Permanentmagneten (22), hervorruft.
46. Vorrichtung nach Anspruch 32 bis 45, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Kontroll- und Steuerungsmagnet (15) in einer senkrechten Achse zum Druckstempel (14) medial, vorzugsweise oberhalb des Druckstempels (14) , angeordnet ist und in Abhängigkeit von der Polung den Mini-Aktuator (14) auf und ab bewegt, woraus eine Veränderung des Druckes auf das Transplantat (11) folgt.
47. Vorrichtung nach Anspruch 32, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Kontroll- und Steuermagnet (15) aus mindestens zwei Permanentmagneten (32) mit unterschiedlicher senkrechter Magnetpolrichtung besteht, die in eine quaderförmige Magnethalterung (31) eingesetzt sind und durch einen Stellmotor (29) und einer Führungsschiene (30) über den Bioreaktor (1) zyklisch in ihrer horizontalen Position versetzt werden.
48. Vorrichtung nach Anspruch 32, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Kontroll- und Steuermagnet (15) aus mindestens zwei Permanentmagneten (32) mit unterschiedlicher senkrechter Magnetpolrichtung besteht, die in eine scheibenförmige Magnethalterung (31) eingesetzt sind und durch den Rotationsantrieb eines Stellmotors (29) zyklisch über den Bioreaktor (1) hinweggeführt werden.
49. Vorrichtung nach Anspruch 32, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die in ihrer horizontalen Position fest fixierten Bioreaktoren über eine vertikale Bewegung an die Magnethalterung (31) mit den Permanentmagneten (32) mittels Schrittmotor herangeführt werden, um den jeweiligen Feldeffekt zu steigern und höhere Druckkräfte auf das Transplantat (11) zu generieren.
50. Vorrichtung nach Anspruch 49, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass mindestens zwei Bioreaktoren (11) in einer Station so angeordnet werden, dass ihre Mini- Aktuatoren (14) von nur einem permanentmagnetischen Kontrollsystem kontaktlos angetrieben werden.
51. Vorrichtung nach Anspruch 32, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Kontroll- und Steuermagnet (15) als Elektromagnet mit mindestens einer Induktionsspule (35) ausgeführt ist, deren Feld mit an sich bekannten Mitteln stufenlos regelbar ist.
52. Vorrichtung nach Anspruch 32 und 51, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die Induktionsspule (35) hochfrequent mit veränderbarer Frequenz angesteuert wird, um hochdynamische Magnetfeldänderungen und Bewegungen des Mini-Aktuators (14) auf das Transplantat (11) hervorzurufen .
53. Vorrichtung nach Anspruch 13 bis 52, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass ein, vorzugsweise zylindrischer, Einsaatkolben (25) mit einem Innendurchmesser, der dem Außendurchmesser des Transplantates entspricht, vorgesehen ist zum Einspritzen der Zellen (12) und der Trägermatrix (13) auf eine bewegliche Schiebeplatte (27) .
54. Vorrichtung nach Anspruch 13 bis 53, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass die bewegliche Schiebeplatte (27) und der Innenraum des Einsaatkolbens (25) mit einer inerten Membrane, Folie bzw. Polymervlies überzogen sind.
55. Vorrichtung nach Anspruch 53 und 54, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass in den Einsaatkolben (25) ein passgenauer Stempel (26) mit einer planaren Stempelfläche oder einer organotypischen Negativform leicht auf die Zellsuspension aufgesetzt ist.
56. Vorrichtung nach Anspruch 53 bis 55, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass der Außendurchmesser des Einsaatkolbens (25) passgenau dem Innendurchmesser des Bioreaktors (1) entspricht.
57. Vorrichtung nach Anspruch 13 bis 56, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dass am Reaktorboden des Bioreaktors (1) mindestens 3 Fixierwände (28) eingelassen sind, die in ihren Abmaßen einer Transplantatseinlage entgegen kommen und die Druckkompression nicht behindern.
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Families Citing this family (28)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE102005049905A1 (de) * 2005-10-17 2007-04-19 Medizinische Hochschule Hannover Verfahren und Vorrichtung zur Herstellung eines Gelenkersatzes
JP4981374B2 (ja) 2006-07-10 2012-07-18 パーパス株式会社 細胞又は組織の培養装置及び培養方法
JP5433129B2 (ja) 2006-07-10 2014-03-05 パーパス株式会社 細胞又は組織の培養方法
ITMI20071945A1 (it) * 2007-10-09 2009-04-10 Milano Politecnico Bioreattore per la generazione e la stimolazione meccanica complessa di tessuto biologico ingegnerizzato.
DE102008015633B4 (de) * 2008-03-25 2010-07-01 Nova Tissue Gmbh Perfundierbarer Bioreaktor zur Herstellung und/oder Kultivierung eines menschlichen oder tierischen Blutgefäßes und/oder eines menschlichen oder tierischen Gewebes
EP2288688A2 (de) * 2008-03-25 2011-03-02 Novatissue Gmbh Perfundierbarer bioreaktor zur herstellung von menschlichen oder tierischen geweben
AT506826B1 (de) * 2008-05-23 2010-03-15 Greiner Bio One Gmbh Bioreaktor und verfahren zum kultivieren von zellen und geweben
DE102008050424B4 (de) 2008-10-08 2010-11-25 Universität Leipzig Verfahren und Vorrichtung zur homogenen Verteilung einer zellulären Suspension in porösem Trägermaterial für die Herstellung von vitalem biologischem Ersatzgewebe
EP2184347A3 (de) 2008-11-06 2011-05-18 Georg N. Duda Neue Komponenten und neues Bioreaktorsystem für die Kultur und mechanische Stimulation von biologischem Material
ITMI20090388A1 (it) * 2009-03-13 2010-09-14 Istituto Ortopedico Galeazzi S P A Bioreattore per la coltura di cellule o tessuti biologici, relativo metodo e sis tema multistazione
DE102009050498B4 (de) 2009-10-23 2015-08-06 Universität Leipzig Perfundierbarer Bioreaktor zur Herstellung von menschlichen und tierischen Geweben
JP5908846B2 (ja) 2009-12-29 2016-04-26 ダブリュー・アール・グレース・アンド・カンパニー−コーンＷ Ｒ Ｇｒａｃｅ ＆ Ｃｏ−Ｃｏｎｎ 所望の程度の隠蔽性を有する膜を形成するための組成物、並びにそれを製造及び使用する方法
DE102010026369B4 (de) 2010-07-07 2015-07-30 Zellwerk Gmbh Verfahren und Druck-Drehbett-Bioreaktor zur dynamischen Expansion und/oder Differenzierung von Stammzellen oder primären Zellen humanen und tierischen Ursprungs
KR101313769B1 (ko) 2011-02-28 2013-10-01 주식회사 셀루메드 동종 연조직 이식체 배양 장치
WO2012118304A2 (ko) * 2011-02-28 2012-09-07 주식회사 코리아본뱅크 동종 연조직 이식체 배양 장치
RU2482180C2 (ru) * 2011-07-14 2013-05-20 Алексей Вячеславович Ковалев Биореактор для выращивания тканеинженерных конструкций
EP2755599B1 (de) * 2011-09-12 2020-04-01 Organovo, Inc. Plattform für veränderte implantierbare gewebe und organe sowie herstellungsverfahren dafür
DE102012101078A1 (de) * 2012-02-09 2013-10-17 Fraunhofer-Gesellschaft zur Förderung der angewandten Forschung e.V. Stimulationszelle und Verfahren zur in vitro Stimulation von Zellen oder Geweben
WO2014132101A2 (en) * 2012-10-18 2014-09-04 Yongxin Zhang Bioreactor system and methods for alternative cell culture between static and dynamic
ITFI20130220A1 (it) * 2013-09-20 2015-03-21 Azienda Ospedaliero Universitaria P Isana Apparato e processo per la preparazione di una protesi tissutale biomimetica della membrana timpanica
ITUB20160272A1 (it) * 2016-01-22 2017-07-22 Univ Degli Studi Di Palermo Bioreattore a perfusione autosufficiente monouso per crescite cellulari 3D
RU2612904C1 (ru) * 2016-04-15 2017-03-13 Евгений Александрович Тоневицкий Способ и микрофлюидный чип для культивирования клеток или клеточной модели
FR3081168B1 (fr) * 2018-05-21 2022-03-11 Univ Bordeaux Systeme de culture cellulaire en bioreacteur
DE102018122745B3 (de) * 2018-09-17 2019-12-19 Naturin Viscofan Gmbh Vorrichtung zur Medienzufuhr oder -abfuhr, Kulturgefäß mit einer solchen Vorrichtung und Verfahren zur Kultivierung von mikrobiologischen Systemen unter Verwendung eines solchen Kulturgefäßes
RU190863U1 (ru) * 2019-02-15 2019-07-15 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии имени Р.Р. Вредена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена" Минздрава России) Устройство для совмещения клеточной культуры и биодеградируемого носителя
CN111705034A (zh) * 2020-06-30 2020-09-25 山东省医药生物技术研究中心（山东省病毒研究所） 一种高效促进软骨细胞增殖的方法
CN111996120A (zh) * 2020-09-25 2020-11-27 南通纺织丝绸产业技术研究院 一种带有微电流刺激功能的细胞培养装置
AT523906B1 (de) * 2020-10-02 2022-01-15 Inncellys Gmbh Inkubationskammer

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE4306661C2 (de) * 1993-03-03 1995-04-20 Michael Dipl Biol Sittinger Verfahren zum Herstellen eines Implantates aus Zellkulturen
WO1996039992A1 (en) * 1995-06-07 1996-12-19 Advanced Tissue Sciences, Inc. Apparatus and method for sterilizing, seeding, culturing, storing, shipping, and testing replacement cartilage tissue constructs
DE19808055B4 (de) * 1998-02-27 2007-02-08 Adamietz, Peter, Dr.rer.nat. Verfahren und Apparatur zur Herstellung von dreidimensionalen Gewebezellkulturen
DE19962456A1 (de) * 1999-12-22 2001-07-12 Biotechnologie Ges Mittelhesse Verfahren und Apparatur zur Herstellung, Untersuchung und mechanischen Stimulation dreidimensionaler Gewebezellkulturen
US7585323B2 (en) * 2000-05-05 2009-09-08 Medlden, Llc In vitro mechanical loading of musculoskeletal tissues
DE10061704A1 (de) * 2000-12-12 2002-06-20 Hans Joerg Bauer Verfahren und Vorrichtung zur Herstellung von biologischem Gewebe in einer Wachstumskammer
JP2003061642A (ja) * 2001-08-30 2003-03-04 Takagi Ind Co Ltd 細胞・組織培養装置
DE10201259A1 (de) * 2002-01-15 2003-08-28 Augustinus Bader Vorrichtung zum Züchten oder Kultivieren von Zellen in einem dosenartigen Behälter

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
See references of WO2005040332A3 *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2370534C2 (ru) 2009-10-20
RU2006117360A (ru) 2007-11-27
DE10349484A1 (de) 2005-05-25
WO2005040332A2 (de) 2005-05-06
CN1898375A (zh) 2007-01-17
WO2005040332A3 (de) 2005-06-30
JP2007508830A (ja) 2007-04-12
CA2543374A1 (en) 2005-05-06

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