EP0071704A2 - Oberflächenreiche Systeme zur Fixierung von nucleophile Gruppen enthaltenden Substraten - Google Patents

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EP0071704A2
EP0071704A2 EP82104288A EP82104288A EP0071704A2 EP 0071704 A2 EP0071704 A2 EP 0071704A2 EP 82104288 A EP82104288 A EP 82104288A EP 82104288 A EP82104288 A EP 82104288A EP 0071704 A2 EP0071704 A2 EP 0071704A2
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rich
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latex
rich systems
carrier material
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EP82104288A
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EP0071704A3 (en
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Werner Dr. Siol
Dieter Dr. Krämer
Norbert Dr. Sütterlin
Cornelia Feil
Gerhard Dr. Markert
Erwin Dr. Schuster
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Roehm GmbH Darmstadt
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Roehm GmbH Darmstadt
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Definitions

  • the invention relates to surface-rich systems for fixing substrates containing nucleophilic groups, in particular for immobilizing biologically relevant, i.e. substances and functional units capable of interacting with biological systems, preferably of biological origin.
  • Japanese laid-open specification 77 143 821 describes the immobilization of enzymes or microbes by a process in which a film is produced from an aqueous polymer dispersion and an enzyme on a glass plate. They are used in the form of an optionally shredded film.
  • DE-OS 21 12 740 describes a flow-through reactor which has a macroporous reaction core, the polymer surface of which has adsorption-promoting nitrile, acid amide or ureide groups.
  • crosslinking is carried out e.g. made by means of a dialdehyde.
  • a process for the production of carrier-fixed macromolecular compounds in which a macromolecular compound A is first reacted with a compound B, which has at least one for coupling with the macromolecular Compound A has a functional function and at least one further function capable of polymerization, then a molecular sieve material having a degree of crosslinking which excludes the macromolecular compound A is added in the swollen state and the polymerizable group of the coupling product AB in the molecular sieve material is optionally polymerized together with further monomers.
  • polymer latices according to the patent claims are particularly suitable for the covalent immobilization of biologically relevant substances and functional units.
  • the biologically relevant substances and functional units which are generally capable of interacting with biological systems, are preferably of biological origin, which may have been modified compared to the native form.
  • the structure of the polymer latex according to the invention in its reactive form can therefore be represented in a highly schematic form as follows: where X stands for the functional groups for covalent fixation, preferably those which meet the conditions mentioned above.
  • R represents a "spacer" between functional and polymerizable units. Size and type of the spacer are comparatively uncritical. Typical representatives of such spacers are, for example, alkylene groups from C1 to C 20 , preferably C 2 to C 12 ', and also other units originally (ie before installation) containing bifunctional groups, with a link via amide at both the polymer-terminated and the functional end. , Ester, ether, thioether, urea, urethane, sulfonamide and similar groups can be done.
  • the spacer brings the distance of the functional groups X from the main polymer chain in the range from 0.5 to 4 nm.
  • the group R can be completely absent, ie n can have the value 0 or 1.
  • X usually has the meaning of a group that can be attacked by the nucleophiles in question, i.e. an activated group; preferably the meaning of a sulfonic acid halide, a thioisocyanate group, an activated ester, a thiocarbonyldioxy, carbonylimidoyldioxy, haloethoxy, haloacetoxy, oxirane, aziridine, formyl, keto, acryloyl or anhydride group.
  • an activated group preferably the meaning of a sulfonic acid halide, a thioisocyanate group, an activated ester, a thiocarbonyldioxy, carbonylimidoyldioxy, haloethoxy, haloacetoxy, oxirane, aziridine, formyl, keto, acryloyl or anhydride group.
  • the chlorides and bromides come as sulfonic acid halides
  • the fluoro, chloro and bromo compounds come as haloacetoxy
  • the ester components of the activated esters are those of hydroxylamine compounds, such as N-hydroxysuccinimide or N-hydroxyphthalimide, of (by means of electron-attracting groups) activated phenols, such as of Halogenphenols, such as trichlorophenol or of nitrophenols, of heterocyclic lactams, such as pyridone.
  • Such radical-polymerizable units are, for example, vinyl groups, where Z 'is, for example, the meaning in which R is hydrogen or methyl or CH 2 - COOR 2 , CH 2 -CONHR 2 or CH 2 -CON (R 2 ) 2, where R 2 is an alkyl radical having 1 to 4 carbon atoms.
  • the other units involved in the construction of the polymer latexes are, by definition, those which give the latex the properties to be required, namely the hydrophilicity and the appropriate hardness.
  • T amax 60 to 200 ° C, in particular -20 to 140 ° C can be used as a guide for the desired hardness in the anhydrous state.
  • the monomers involved in the construction of the polymer latex should expediently not themselves contain any strongly nucleophilic groups (such as, for example, -NH 2 , -SH).
  • the components of the polymer latex can also be crosslinked. Y is a symbol for this networking.
  • the constituents primarily responsible for the non-hydrophobic or hydrophilic character of the polymer latex are designated as B, further constituents, the selection of which must be matched primarily to the resulting hardness of the overall polymer, are referred to as A, In the sense of the distinction made, the monomers of type A belong to the non-hydrophilic or hydrophobic type.
  • the index p for the monomeric component B in the formula scheme given above serves to clarify the The fact that the monomers A to be used primarily for the appropriate hardness of the overall polymer must be proportionally matched to component B, so that p can assume a value from 0 to a value which corresponds to a proportion of B in the total polymer of 95% by weight * corresponds.
  • the conditions mentioned for the polymer latex to be used according to the invention are met, for example, by copolymers of the methacrylate and / or acrylate type, the qualitative and quantitative proportions being such that the criteria set out in the claim for the polymer latex are met. *, preferably 0-60% by weight,
  • non-hydrophobic or hydrophilic constituents are optionally substituted methacrylamides and acrylamides of the general formula I. in which R1 is hydrogen or methyl and R 3 and R 4 independently of one another are hydrogen or an alkyl radical having 1 to 4 carbon atoms, i.e. unsubstituted amides and the amides formed with primary and secondary amines and compounds in which R 3 and R 4 together with the nitrogen atom form an optionally one or more additional heteroatoms, in particular nitrogen or oxygen-containing, optionally alkyl-substituted ring.
  • R1 is hydrogen or methyl
  • R 3 and R 4 independently of one another are hydrogen or an alkyl radical having 1 to 4 carbon atoms, i.e. unsubstituted amides and the amides formed with primary and secondary amines and compounds in which R 3 and R 4 together with the nitrogen atom form an optionally one or more additional heteroatoms, in particular nitrogen or oxygen-containing, optionally alkyl-substitute
  • acrylic acid amide furthermore (meth) acrylic acid morpholide (special case in which the nitrogen via R 3 and R 4 is part of a ring) and N-vinylpyrrolidone-2.
  • hydroxyl-containing monomers of the acrylate or methacrylate type in particular hydroxyl-containing esters or amides of acrylic and methacrylic acid, and alkoxyalkyl ester and / or amides of acrylic and methacrylic acid to give the hydrophilic monomers of type B, for example representatives of the general formula II wherein R 1 is hydrogen or methyl, R 2 is hydrogen or an alkyl group having 1 to 4 carbon atoms, Q is oxygen or a group -NR , where R represents hydrogen or an alkyl group having 1 to 4 carbon atoms, n is an integer from 1 to 3, preferably 2, and m is an integer from 1 to 25, with the proviso that when Q is oxygen, n is not the same Should be 1.
  • Monomers type B also include sulfoethyl acrylates and sulfoethyl methacrylates, as well as sulfoethyl acrylamides and sulfoethyl methacrylamides.
  • Polymerizable acids such as (meth) acrylic acid, itaconic acid or maleic acid or polymerizable tert. Can also be incorporated into the shell of the latex as hydrophilic groups.
  • Amines such as 2-N, N-dimethylaminoethyl (meth) acrylamide or - (meth) acrylic acid ester or 3-N, N-
  • Dimethylaminopropyl (meth) acrylamide or ester Dimethylaminopropyl (meth) acrylamide or ester.
  • these acidic or basic groups should always be present in one particle at the same time (e.g. methacrylic acid and 2-N, N-dimethylaminoethyl (methacrylate).
  • the proportion of component A in the total polymer can vary within relatively wide limits, for example from 0 to 99% by weight, preferably 20 to 99% by weight, based on the total polymer, because in coordination with the other constituents.
  • the polymer latices according to the invention may also contain crosslinking monomers (Y in the schematic representation, where the index m can be zero or one; i.e. the crosslinker may be missing).
  • crosslinking monomers include understood such monomers that contain two or more reactive double bonds in the molecule, e.g. di- or polyols esterified with acrylic acid or preferably methacrylic acid, as well as allyl compounds such as e.g. Allyl methacrylate, triallyl cyanurate and others
  • Ethylene glycol dimethacrylate, 1,4-butanediol dimethacrylate, triglycol dimethacrylate, trimethylolpropane trimethacrylate For example, Ethylene glycol dimethacrylate, 1,4-butanediol dimethacrylate, triglycol dimethacrylate, trimethylolpropane trimethacrylate.
  • crosslinking agent - if present - depends on the hydrophilicity of the overall polymer. With increasing hydrophilicity of the latex particle, an increasing proportion of crosslinking agent can also appear to be advantageous.
  • It is generally between 0 and 50% by weight, preferably between 0.2 and 15% by weight, based on the total polymer.
  • the proportion of functional monomers in the overall polymer can vary within wide limits, depending on the specific monomers used. For example, while at least 0.1% of the monomer Z'-RX is required for the covalent fixation of the substrate carrying nucleophilic groups, the maximum content of this monomer is very strongly dependent on the monomers used themselves.
  • 0.1% by weight, based on the total polymer can thus be regarded as a reference for the lower limit, 99.9% by weight, preferably 1 to 50% by weight, for the upper limit.
  • the latex dispersions can be prepared according to the known rules of emulsion polymerization, for example based on DE-OS 18 04 159, DE-OS 19 10 488 and DE-OS 19 10 532, the desired size of the latex particles being determined by the Emulsifier concentration is set at the beginning of the polymerization.
  • the emulsifier concentration at the beginning of the emulsion polymerization is between 0.005 and 0.5% by weight, based on the total polymerization batch.
  • the size of the latex particles should be between 0.03 and 6 u, preferably between 0.03 and 1 u.
  • the known anionic and nonionic emulsifiers can be used as emulsifiers, for example fatty alcohol sulfates and sulfonates, phosphates and phosphonates, alkali salts of long-chain fatty acids, long-chain sarcosides and oxyethylated fatty alcohols, substituted phenols, some of which may be sulfated and other emulsifiers used in emulsion polymerization ( Houben-Weyl, Methods of Organic Chemistry, Vol. XIV / I, pp. 133-560, G. Thieme-Verlag, 1961).
  • cationic surfactants are only recommended insofar as they are derived from tertiary or quaternary ammonium salts. Polymerizable emulsifiers can also be used.
  • the initiators which are generally used in emulsion polymerizations can also be used (cf. J. Brandrup, EH Immergut, "Polymer Handbook", second edition, J. Wiley &Sons; H. Rauch-Puntigam, Th. Völker, "acrylic and methacrylic compounds ", Springer publishing house 1967).
  • Peroxides, hydroperoxides, peracids and azo compounds may be mentioned, e.g. Potassium peroxydisulfate, hydrogen peroxide etc.
  • the concentration of the initiators is usually in the customary range, for example from 0.01 to 1.0% by weight, based on the monomers.
  • the solids content of the dispersion can be between 10 and 60% by weight, depending on the particle size and the hydrophilicity of the particles.
  • the synthesis of the latex particles must be carried out so gently that the functional groups mentioned from the monomers Z'-RX are largely retained, because only in this way can subsequent covalent fixation of molecules with NH, -SH and -COOH groups be possible is.
  • the easiest way to synthesize the latex particles in the neutral pH range is to buffer the system (e.g. with phosphate buffer). If necessary, buffering by adding salt can be dispensed with entirely, e.g. if other parts of the recipe can act as buffer substances, e.g. when using alkali salts of long-chain phosphoric acid esters as emulsifiers or when using the sodium salt of 4,4'-azobis (cyanovaleric acid).
  • buffer the system e.g. with phosphate buffer.
  • buffering by adding salt can be dispensed with entirely, e.g. if other parts of the recipe can act as buffer substances, e.g. when using alkali salts of long-chain phosphoric acid esters as emulsifiers or when using the sodium salt of 4,4'-azobis (cyanovaleric acid).
  • Points 2 and 3 contain the lowest possible thermal load on the latex particles carrying reactive groups.
  • the following restriction applies: Since the content of reactive groups on the latex surface is particularly important, it is entirely possible to produce only the outer shell of the latex particle with the aid of the reactive groups mentioned above.
  • a core-shell structure can be used, the latex core being produced completely free of reactive monomers, then the restrictions for gentle latex production naturally only apply to the shell.
  • the polymerization is carried out either at low temperatures (for example ⁇ 50 ° C.) using a redox system (care must be taken, however, that parts of the redox system do not destroy the reactive groups, for example bisulfite or the oxirane groups), or else thermally decaying initiators or with the help of a redox system at temperatures up to 90 ° C.
  • the polymerization time should not exceed 8 hours.
  • the latex contains reactive groups, which should enable a covalent fixation of> NH-, -SH- or -OH groups containing molecules, the presence of such groups in the latex is only possible to a minor extent. This applies in particular to the> NH and -SH groups. The presence of OH groups in the latex is less critical.
  • the polymer latices according to the invention are preferably applied to suitable supports.
  • Inert (generally non-water-soluble) carriers are particularly suitable, in particular solid carriers, preferably with the largest possible surface area.
  • porous bodies are particularly suitable as carriers, e.g. also foamed materials, sponges, further fiber structures, fleeces etc. Both inorganic and organic carrier materials are suitable.
  • carriers based on silicon dioxide or silicate in particular also finely divided silicon dioxide, for example in the form of gels or as aerosi® carriers based on aluminum oxide and / or other metal oxides and on the basis of clays such as fillers, bleaching earth, etc and ceramics.
  • finely divided inorganic pigments such as titanium dioxide, barite, also chalk, talc, gypsum.
  • a honeycomb cordierite-based material Mg 2 A1 4 Si 5 0 18 ) appears suitable.
  • the fabrics mentioned offer particularly interesting aspects when used as fabrics, e.g. Nonwovens, wadding or (unsized paper or corresponding three-dimensional macroporous bodies are used.
  • the reactive latex particles described above can be applied in a manner known per se by impregnation, spraying or other techniques onto surface-rich structures, e.g. Paper, wadding, fleece etc. inorganic carrier materials can also be applied.
  • the latex is film-forming at the application temperature
  • the latex is not film-forming at the application and / or the application temperature
  • the ratio of latex (solid substance): carrier substance can range from 1: 100 to 100: 1, depending on the surface properties of the carrier material.
  • Carriers can be completely dispensed with.
  • the individual latex particles are not connected to one another by film formation, they can be linked to one another or to the carrier by covalent bonds.
  • this bond can e.g. by reaction of the oxirane ring with the OH groups of adjacent latex particles or with OH groups of the carrier material.
  • this covalent linkage of the latex particles can be achieved through the use of multifunctional nucleophiles, e.g. Polyamines.
  • the fixation of the latex particles to the carrier or to each other can also be done via secondary valence bonds or by cementing with minor amounts of a soft, film-forming substance, e.g. with latex particles lower glass temperature.
  • These soft latex particles can also contain functional groups.
  • a particularly preferred embodiment consists in using the functionally and / or morphologically defined biologically active units themselves for the purpose of failure, e.g. a protein to be bound, e.g. an enzyme that can be used as a multifunctional crosslinker. This method is particularly applicable to particularly small latex particles.
  • the surface-rich structures are used as catalysts (e.g. after fixing enzymes) depending on the type of carrier material specified (e.g. in a fixed bed).
  • the spray-dried dispersions or those precipitated with salt or in the presence of enzymes are preferably used in a batch or in a fluidized bed.
  • the high porosity and very high catalytic activity of these materials are offset by only low mechanical strength.
  • the substrate to be bound containing nucleophilic groups was not already present during the agglomeration of the latex particles, these substrates are reacted with the surface-rich, reactive structures under the usual conditions (eg binding of the enzyme trypsin to an oxirane-containing group Carrier in a unimolar phosphate buffer (pH 7.5) in 72h at 23 ° C).
  • biologically active units or substances can serve as substrates.
  • Proteins in general, especially enzymes, blood components and blood constituents (blood factors), e.g. Albumins, immunoglobulins, blood clotting factors, cell membrane proteins, peptide hormones and the like.
  • High molecular biogenic substrates which may be labeled with dyes, e.g. for use in diagnostics. In addition to use as a catalyst, use in (affinity) chromatography and in general in the field of diagnostics is also possible.
  • a dye eg pH or redox-sensitive
  • This can be used, for example, in the presence of a substrate corresponding reaction partners, for example an enzyme, can be detected by a color change.
  • the reactive latex can be applied to paper strips or test sticks made of any carrier material.
  • test strips or test sticks reacted with the reagent e.g. an enzyme substrate and possibly also with a dye
  • the reagent e.g. an enzyme substrate and possibly also with a dye
  • the actual test can be carried out at a given time by simply immersing the test strip or stick in a medium (e.g. urine, blood serum, etc.) containing the reaction partner (e.g. an enzyme).
  • a medium e.g. urine, blood serum, etc.
  • the reaction partner e.g. an enzyme
  • the surface-rich system can generally be used as a bioaffine indicator.
  • the reactive latices can be used in two different versions.
  • the latex When used in a fixed bed, the latex is generally fixed to one of the carrier materials described above.
  • the reaction with the catalyst can take place before or after this fixation.
  • Enzymes are the most interesting because of their high specificity and selectivity (but it is also possible to use groups with a simpler structure and a non-specific effect (e.g. quaternary ammonium compounds or imidazole, among others, heterocycles to catalyze hydrolysis)).
  • the reactive surface-rich structures according to the invention are suitable for immobilizing all classes of enzymes, for example for fixing oxidoreductases, transferases, hydrolases, lyases, isomerases and ligases.
  • carrier-free latex aggregates which can be used as powder, slurry or in another coarsely dispersed form, are primarily used in addition to crushed carrier-catalyst combinations which are also suitable for the fixed bed.
  • the reaction with the enzyme substrate can take place on the original latex itself or after its agglomeration. Otherwise, the same catalysts can be used as described above in the case of fixed bed catalysis.
  • the surface-rich systems according to the invention are suitable for fixing therapeutically usable enzymes, which e.g. can be used orally (e.g. proteases and / or lipases and / or amylases).
  • the use of the latex-support combinations according to the invention in (affinity) chromatography is carried out completely analogously to that described for the catalyst application. Only the reactive molecules to be bound to the reactive latex are oriented to the specific intended use.
  • One possible application of the surface-rich systems according to the present invention is as a bioaffine sorbent.
  • Overlaps can certainly occur, for example in the way that a bound enzyme that can be used as a catalyst is used in the chromatographic purification of an enzyme inhibitor.
  • the carriers offer a particularly interesting application for removing traces of toxic substances (e.g. blood wash, water treatment, etc.).
  • the reactive surface-rich system can also be used.
  • the removal of nucleophilic contaminants from aqueous medium is possible, e.g. the removal of toxic amines, mercaptans and other pollutants from aqueous media.
  • the surface-rich system according to the invention can be reacted with multifunctional substances which have at least one nucleophilic group (for fixation on the latex) and at least one further functional group which is suitable for specific interaction with substances or functional units located in an aqueous medium.
  • Groups with the specific interaction mentioned can be, for example, complexing agents; may be mentioned e.g. the reaction product of aminodiacetic acid with an oxirane-containing latex and the like.
  • the peptide to be synthesized can be built up on the surface-rich system, but the surface-rich system can also take up activated reactants, for example coupling-active amino acids or coupling agents, for example carbodiimides which are difficult to convert into solution. In the latter case, the peptide to be built up remains dissolved in the aqueous phase.
  • Latex-drug combination as well as the loose aggregated latex-drug combination (column) can be used.
  • a solution is made in a polymerization vessel equipped with a reflux condenser, stirrer and thermostat and heated to 80 ° C.
  • An emulsion made from: is also dripped into this template at 80 ° C. within 4 hours. The mixture is then stirred for a further 2 hours at 80 ° C, then cooled to room temperature and filtered. A coagulate-free dispersion is obtained. Solids content approx. 30%, pH value: 7.3, viscosity 2 mPa.s.
  • a solution is made in a polymerization vessel equipped with a reflux condenser, stirrer and thermostat Heated to 80 ° C.
  • An emulsion made from: is also dripped into this template at 80 ° C. within 4 hours. The mixture is then stirred for a further 90 minutes at 80 ° C., then it is cooled to room temperature and filtered. A readily filterable, coagulate-free dispersion is obtained. Solids content approx. 30%, pH value: 7.1, viscosity 1 mPa.s.
  • a solution is made in a polymerization vessel equipped with a reflux condenser, stirrer and thermostat submitted and heated to 80 ° C.
  • An emulsion made from: is dripped into this template at 80 ° C. within 3 hours. The mixture is then stirred for a further 30 minutes at 80 ° C., then it is cooled to room temperature and filtered. A readily filterable, coagulate-free dispersion is obtained, solids content: 19.4%, pH value: 7.7, viscosity 2 mPa.s.
  • Example 3 The procedure is as in Example 3, but an emulsion with modified monomer composition is metered in.
  • Monomer composition Excipients, polymerization time and polymerization temperature as described in Example 3.
  • the result is a readily filterable, coagulate-free dispersion.
  • the enzyme activity was determined by alkalimetric titration at 37 ° C. and pH 7.5, with RNA as the substrate.
  • Example 5 The procedure is as in Example 5, but the enzyme used is 100 mg of bovine trypsin 2 , Merck, Article No. 24579).
  • the enzyme activity was determined by alkalimetric titration at 37 ° C. and pH 7.5 (BAEE) and pH 8.0 (casein).
  • Example 6 The procedure is as in Example 6, but the ratio of enzyme / latex is varied.
  • the enzyme activity is determined by measurement at 37 ° C. and pH 7.8. (Substrate: Penicillin Potassium G).
  • Example 5 The procedure is as in Example 5, but the latex according to Example 3 is used to crosslink the enzyme.
  • Example 1 100 ml of the dispersion according to Example 1 are diluted with 500 ml of distilled water. This approximately 5% dispersion is used to impregnate a piece of paper measuring approximately 100 cm 2 (Whatman Medium flow). It is then pressed, left at room temperature for one hour and then dried at 80 ° C. for 30 minutes. The paper treated in this way contains 20 g of polymer solid per m 2 . At temperatures below -15 ° C, this reactive paper can be stored for at least 12 months.
  • ribonuclease 1 100 mg ribonuclease 1 is dissolved in 2 ml 0.05 M phosphate buffer (pH 7.5). With this solution, the paper treated with the latex containing oxirane groups is soaked and then left to stand at 23 ° C. for 72 hours. It is then pressed off and washed three times with 1N NaCL and twice with 0.05 M phosphate buffer solution (pH 7.5).
  • Example 14 The procedure is as in Example 14, but a more concentrated dispersion is used to impregnate the paper (100 ml of the dispersion according to Example 1, diluted with 200 ml of distilled water).
  • Drying conditions 12 hours at 25 ° C in a forced air drying cabinet.
  • 100 ml of the dispersion according to Example 1 is diluted with 200 ml of distilled water, a cotton wool (thickness 2 mm) is sprayed with it, then it is dried for 12 hours at room temperature.
  • Polymer solid / m 2 cotton 39 g activity measurement (3rd use, enzyme RNase) 2,1-U / g wet cotton
  • the paper is washed twice more with 1N NaCl solution. When a substrate is present, the paper changes color from yellow to orange.
  • the result is a network that can be easily cleaned by centrifugation.
  • Substrate Penicillin potassium (2%), 37 ° C
  • the activities of the immobilized Escherichia coli are therefore quite comparable to those of the non-immobilized Escherichia coli:

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Abstract

Die Erfindung betrifft oberflächenreiche Systeme mit reaktiven Einheiten zur Fixierung von nucleophile Gruppen enthaltenden Substraten, wobei die reaktiven Einheiten Bestandteile eines Polymerlatex sind, der selbst zu einem oberflächenreichen System aggregiert und/oder an einem oberflächenreichen Trägermaterial fixiert ist, und deren Verwendung.

Description

  • Die Erfindung betrifft oberflächenreiche Systeme zur Fixierung von nucleophile Gruppen enthaltenden Substraten, insbesondere zur Immobilisierung von biologisch relevanten, d.h. primär zur Wechselwirkung mit biologischen Systemen befähigten Substanzen und funktionalen Einheiten, vorzugsweise biologischen Ursprungs.
  • Die Immobilisierung von Bio(makro)molekülen an Trägermolekülen ist eines der am intensivsten bearbeiteten Themen sowohl im Bereich der reinen Forschung als auch im Bereich der Biotechnologie.
  • Unter dem speziellen Aspekt der Immobilisierung von Enzymen kann man die vorgeschlagenen bzw. praktizierten Fixierungstechniken wie folgt unterscheiden:
    • 1) Kovalente Bindung an eine feste Trägerphase (solid phase)
    • 2) Kovalente Bindung an lösliche Polymere
    • 3) Physikalische Adsorption an eine feste Trägerphase
    • 4) Vernetzung an festen Oberflächen
    • 5) Vernetzung mit bifunktionellen Reagentien
    • 6) Einschluß in einer Gelphase
    • 7) Einkapselung
  • (Vgl. R.D. Fall in "Enzyme Engineering" Vol. II, ed. E.K. Pyl & L.B. Wingard, Plenum Press. 1974, US-PS 3 650 900 Melrose, Rev. Pure and Appl. Chem. 21, 83-119 (1971).
  • Am eingehendsten wurde bisher die unter 1) genannte Technik der kovalenten Bindung an eine feste Trägerphase bearbeitet.
  • Die einschlägige Literatur läßt jedoch keinen Zweifel an der Tatsache, daß die vielfältigen Aufgaben, die man mit Hilfe der Fixierung von Bio-Makromolekülen zu lösen hoffte, wie z.B. Reinigung, Trennung und Bindung von Enzymen, Fixierung von Mikroorganismen, Affinitätschromatographie, Immunreaktionen, Aufgaben der klinischen Diagnostik usw. nicht mit einer einzigen Methodik gelöst werden können. Auch in Fällen, wo auf spezifische Probleme zugeschnittene Lösungen vorliegen, z.B. bei der Immobilisierung bestimmter Enzyme an bestimmten Trägern, stößt die Ubertragung vom Labormaßstab in den technischen Maßstab oft auf schwer zu überwindende Hindernisse.
  • Es hat daher nicht an Versuchen gefehlt, zu Lösungen zu kommen, die die Bedürfnisse der Technik besser befriedigen.
  • Die japanische Offenlegungsschrift 77 143 821 beschreibt die Immobilisierung von Enzymen oder Mikroben durch ein Verfahren, in dem aus einer wäßrigen Polymerdispersion und einem Enzym auf einer Glasplatte ein Film hergestellt wird. Die Anwendung geschieht in Form einer, gegebenenfalls zerkleinerten Folie.
  • Die Lösungen des Standes der Technik weisen schwerwiegende Nachteile auf. In der Regel ist die Oberflächenkonzentration der fixierten, biologisch wirksamen Substanzen zu gering. Die reaktiven Oberflächen können auch nicht beliebig durch Zerkleinern der polymeren Träger erhöht werden, da kleine Teilchen die Tendenz zur Instabilität besitzen und vielfach nicht mehr technisch sinnvoll einzusetzen sind. Zwar ist es bekannt (siehe oben), makromolekulare Verbindungen durch Adsorption an Träger zu binden, jedoch ist deren Verwendbarkeit beschränkt, da sie sich leicht wieder eluieren lassen.
  • In der DE-OS 21 12 740 wird ein Durchflußreaktor beschrieben, der einen makroporigen Reaktionskern, dessen polymere Oberfläche adsorptionsfördernde Nitril-, Säureamid- bzw. Ureidgruppen aufweist.
  • Nach erfolgter physikalischer Adsorption der Enzyme an der festen Trägerphase wird eine Vernetzung z.B. mittels eines Dialdehyds vorgenommen.
  • Aus der DE-OS 22 60 184 ist ein Verfahren zur Herstellung von trägerfixierten makromolekularen Verbindungen bekannt, bei dem eine makromolekulare Verbindung A zuerst mit einer Verbindung B umgesetzt wird, die wenigstens eine zur Kupplung mit der makromolekularen Verbindung A befähigte Funktion und wenigstens eine weitere zur Polymerisation befähigte Funktion aufweist, dann ein Molekularsiebmaterial eines die makromolekulare Verbindung A ausschließenden Vernetzungsgrads in entquollenem Zustand zugesetzt und die polymerisationsfähige Gruppe des Kupplungsprodukts AB im Molekularsiebmaterial gegebenenfalls zusammen mit weiteren Monomeren polymerisiert wird.
  • Es wurde nun gefunden, daß oberflächenreiche Systeme mit reaktiven Einheiten zur Bindung von nucleophile Gruppen enthaltenden Substraten besonders vorteilhafte Lösungen darstellen, wenn die reaktiven Einheiten zur Bindung der die nucleophilen Gruppen enthaltenden Substrate Bestandteile eines Polymerlatex sind, der selbst zu einem oberflächenreichen System aggregiert und/oder an einem oberflächenreichen Trägermaterial fixiert ist.
  • Es wurde weiter gefunden, daß sich zur kovalenten Immobilisierung von biologisch relevanten Substanzen und funktionalen Einheiten Polymerlatices gemäß den Patentansprüchen besonders eignen.
  • Der Polymerlatex:
    • Bei der Synthese der erfindungsgemäßen Polymerlatices ist von bestimmendem Einfluß die beabsichtigte Verwendung bei der Herstellung reaktiver oberflächenreicher Gebilde. Der Polymerlatex kann daher von unterschiedlichem Aufbau sein, abhängig davon, ob der Latex zur Erzeugung eines dünnen, reaktiven Films auf einem an sich oberflächenreichen Gebilde verwendet werden soll, oder ob der Latex durch einen locker agglomerierten Aufbau die Gesamtoberfläche des gebildeten Systems gegenüber der Oberfläche des Trägermaterials noch erheblich vergrößern soll. Falls die Erzeugung eines dünnen, reaktiven Films auf dem Trägermaterial angestrebt wird, kann der Latex bei einer Temperatur oberhalb der minimalen Filmbildungstemperatur (MFT = DIN 53787 ) auf den Träger aufgebracht werden. Soll der Latex hingegen die Oberfläche des Trägermaterials noch vergrößern, so sind insbesondere kleine, (beispielsweise im Bereich von 0,03 bis 3 ym) in sich starre Latex-Teilchen, die unter den Anwendungsbedingungen nicht verfilmen, von Vorteil. Gegebenenfalls können die nicht-filmbildenden Latexteilchen durch Zusatz von untergeordneten Mengen - vorzugsweise bis zu 30 Gew.-% - eines filmbildenden Latex miteinander und mit dem Träger verbunden werden.
  • Substrate:
    • Die erfindungsgemäßen, oberflächenreichen Systeme sind allgemein zur Fixierung von Substraten geeignet, die nucleophile Gruppen aufweisen. Sie eignen sich besonders zur Fixierung von funktional und/oder morphologisch definierten, biologisch relevanten, insbesondere biologisch wirksamen Einheiten oder Substanzen.
  • Bei den biologisch relevanten Substanzen und funktionalen Einheiten, die in der Regel zur Wechselwirkung mit biologischen Systemen befähigt sind, handelt es sich vorzugsweise um solche biologischen Ursprungs, die gegebenenfalls gegenüber der nativen Form modifiziert sein können.
  • Eine besonders wichtige Rolle spielen dabei Makromoleküle, insbesondere Proteine.
  • Reaktive Einheiten / nucleophile Gruppen:
    • Im allgemeinen besitzen die zur Wechselwirkung mit biologischen Systemen befähigten Substanzen bzw. Strukturen ihrerseits kopplungsfähige Gruppen, die mit den (reaktiven Einheiten der Polymerlatices) reagieren und eine kovalente Bindung eingehen können; in der Regel sind dies nucleophile Gruppen. Vorzugsweise finden solche an sich bekannten reaktiven Einheiten (funktionellen Gruppen) Anwendung, die in wäßriger Lösung mit stärkeren Nucleophilen als Wasser reagieren und vom Wasser in dem physiologisch sinnvollen pH-Bereich, d.h. insbesondere im Bereich von 5,0 bis 9,0, insbesondere von 6,5 bis 8,0 nicht oder nur in untergeordnetem Maße angegriffen werden. Die Auswahl der funktionellen Gruppen trägt der Tatsache Rechnung, daß das zu fixierende Material, insbesondere das Material biologischen Ursprungs als nucleophile Gruppe im allgemeinen die (freie) Aminogruppe, daneben gegebenenfalls noch phenolische-,. Hydroxy- oder Thiolgruppen aufweist. Die erfindungsgemäßen Polymerlatices können ganz allgemein aus radikalisch polymerisierbaren Vinylverbindungen hergestellt werden:
      • Vorzugsweise aus Monomeren auf der Basis von Acrylsäure-und/oder Methacrylsäurederivatenund/oder Styrol und/oder Vinylestern, insbesondere Vinylacetat.
  • Der Aufbau des erfindungsgemäßen Polymerlatex in seiner reaktiven Form kann daher in stark schematisierter Form wie folgt dargestellt werden:
    Figure imgb0001
     wobei X für die funktionellen Gruppen zur kovalenten Fixierung steht, vorzugsweise solchen, die die vorstehend genannten Bedingungen erfüllen. R stellt dabei einen "Abstandshalter" (Spacer) zwischen funktionellen und polymerisierbaren Einheiten dar. Größe und Typ des Abstandshalters sind vergleichsweise unkritisch. Typische Vertreter von derartigen Abstandshaltern sind beispielsweise Alkylen- gruppen von C1bis C20, vorzugsweise C2 bis C12' darüber hinaus andere ursprünglich (d.h. vor dem Einbau) bifunktionelle Gruppen enthaltende Einheiten, wobei sowohl am polymerständigen als am funktionalen Ende eine Verknüpfung über Amid-, Ester-, Äther-, Thioäther-, Harnstoff-, Urethan-, Sulfonamid- und ähnliche Gruppen erfolgen kann. Im allgemeinen bringt der Abstandshalter eine Distanz der funktionellen Gruppen X von der Polymerhauptkette im Bereich von 0,5 - 4 nm. In einer Reihe von Beispielen kann die Gruppe R ganz fehlen, d.h. n kann den Wert 0 oder 1 besitzen.
  • X hat in der Regel die Bedeutung einer von den in Frage kommenden Nucleophilen angreifbaren Gruppe, d.h. einer aktivierten Gruppe; vorzugsweise die Bedeutung einer Sulfonsäurehalogenid-, einer Thioisocyanatgruppe, eines aktivierten Esters, einer Thiocarbonyldioxy-, Carbonyl-imidoyldioxy-, Haloethoxy-, Haloacetoxy-, Oxiran-, Aziridin-, Formyl-, Keto-, Acryloyl- oder Anhydridgruppe.
  • Als Sulfonsäurehalogenide kommen die Chloride und Bromide, als Haloacetoxy die Fluoro-, Chloro- und Bromoverbindungen, als Esterkomponente der aktivierten Ester solche von Hydroxylaminverbindungen, wie des N-Hydroxysuccinimids oder des N-Hydroxyphthalimids, von (mittels elektronenanziehenden Gruppen) aktivierten Phenolen, wie von Halogenphenolen, wie Trichlorphenol oder von Nitrophenolen, von heterocyclischen Lactamen, wie Pyridon infrage.
  • * wobei gegebenenfalls Kohlenstoffatome durch Atherbrücken ersetzt sein können.
  • Besonders bevorzugt sind Oxiran-, Keto-, Formyl-, Sulfonsäurechlorid-, Thioisocyanatgruppen sowie aktivierte Carbonsäureester sowie Carbonsäureanhydride. Bei den Monomeren des Typs Z'-(R)n X stellt demnach Z' eine (radikalisch) polymerisationsfähige Einheit und n 0 oder 1 dar.
  • Solche radikalisch polymerisationsfähige Einheiten sind z.B. Vinylgruppen, wobei Z' beispielsweise die Bedeutung
    Figure imgb0002
    besitzt, worin R für Wasserstoff oder Methyl bzw. für CH2 - COOR2, CH2-CONHR2 oder CH2-CON (R2)2 steht, wobei R2 einen Alkylrest mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen bedeutet.
  • Desweiteren kann Z' sich von der Maleinsäure ableiten:
    Figure imgb0003
    Als reaktionsfähige und zugleich polymerisierbare Einheiten sind ferner Maleinsäureanhydrid und Itaconsäureanhydrid anzusprechen sowie Acrolein, Methacrolein, Methylvinylketon und aktivierte Vinylester. Besonders bevorzugt sind Derivate der (Meth)-acrylsäure und des Maleinimids sowie Maleinsäure und Itaconsäureanhydrid.
  • Zur Verdeutlichung des Formelschemas Z'-R-X seien die folgenden Beispiele aufgeführt:
  • Figure imgb0004
  • (Polymerisierbarer aktivierter Ester mit Spacer)
    Figure imgb0005
    (Glycidylacrylat)
    Figure imgb0006
    (2-(Chloroacetoxy)-äthylmethacrylat)
    Figure imgb0007
    (2,4,5-Trichlorphenylmethacrylat) R = 0
    Figure imgb0008
    (2-Bromäthylmethacrylat)
    Figure imgb0009
    (Allylglycidyläther)
    Figure imgb0010
    (Anlagerungsprodukt von Methacrylsäure an 1,4-Butandioldiglycidylether)
    Figure imgb0011
    (Anlagerungsprodukt von Acrylsäure-2-Hydroxyethylester an 1,6-Hexandiisothiocyanat)
    Figure imgb0012
    (Chloressigsäurevinylester)
    Figure imgb0013
    (4-Maleinndo-buttersäure-pentachlorphenylester)
    Figure imgb0014
    ((4-Methylsulfinylphenyl)-methacrylat)
    Figure imgb0015
    (Propargylacrylat)
  • Bei den übrigen, am Aufbau der Polymerlatices beteiligten Einheiten (A und B in der schematischen Darstellung), handelt es sich definitionsgemäß um solche, die dem Latex die zu fordernden Eigenschaften, nämlich ggf.. die Hydrophilie und die zweckmäßige Härte verleihen. Als Anhalt für die erwünschte Härte im wasserfreien Zustand kann gelten Tamax 60 bis 200°C, insbesondere -20 bis 140°C (nach DIN 53445). Andererseits sollten die am Aufbau des Polymerlatex beteiligten Monomeren selbst zweckmäßigerweise keine stark nucleophilen Gruppen (wie z.B. -NH2, -SH) enthalten. Weiter können die Bestandteile des Polymerlatex vernetzt sein. Für diese Vernetzung steht Y als Symbol.
  • Die Härte bzw. die sonstigen relevanten Eigenschaften der Polymerisate aus den individuellen Monomeren ist bekannt, desgleichen der Beitrag zu den Eigenschaften von Copolymerisaten [vgl. US-PS 2 795 564, H. Rauch-Puntigam, T. Völker in "Acryl- und Methacrylverbindungen", Springer-Verlag, Berlin 1967, S.303-304, T.G. Fox Bull.Am.Phys.Soc. 1, 123 (1956)].
  • Im Sinne der schematischen Darstellung seien die in erster Linie für den nicht-hydrophoben bzw. hydrophilen Charakter des Polymerlatex verantwortlichen Bestandteile als B, weitere Bestandteile, deren Auswahl in erster Linie auf die resultierende Härte des Gesamtpolymerisats abgestimmt werden muß, als A bezeichnet, d.h. die Monomeren des Typs A gehören im Sinne der getroffenen Unterscheidung dem nicht-hydrophilen bzw. hydrophoben Typ an.
  • Der Index p für den monomeren Bestandteil B in dem vorstehend angegebenen Formelschema dient zur Klarstellung des Sachverhalts, daß die primär für die zweckmäßige Härte des Gesamtpolymerisats einzusetzenden Monomeren A anteilmäßig auf die Komponente B abzustimmen ist, so daß p einen Wert von 0 bis zu einem Wert annehmen kann, der einem Anteil von B am Gesamtpolymerisat von 95 Gew.-%* entspricht. Die für den erfindungsgemäß zu verwendenden Polymerlatex genannten Bedingungen werden z.B. durch Copolymerisate vom Methacrylat- und/oder Acrylattyp erfüllt, wobei der qualitative und der quantitative Anteil so zu bemessen ist, daß die im Anspruch aufgestellten Kriterien für den Polymerlatex erfüllt sind.
    *,vorzugsweise 0 - 60 Gew.-%,
  • Als nicht hydrophobe bzw. hydrophile Bestandteile kommen z.B. gegebenenfalls substituierte Methacrylamide und Acrylamide der allgemeinen Formel I
    Figure imgb0016
    worin R1 Wasserstoff oder Methyl und R3 und R4 unabhängig voneinander Wasserstoff oder einen Alkylrest mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen bedeuten, also unsubstituierte Amide sowie die mit primären und sekundären Aminen gebildeten Amide sowie Verbindungen, bei denen R3 und R4 zusammen mit dem Stickstoffatom einen, gegebenenfalls ein oder mehrere zusätzliche Heteroatome, insbesondere Stickstoff oder Sauerstoff enthaltenden, gegebenenfalls alkylsubstituierten Ring bilden, infrage. Besonders genannt seien (Meth)-acrylsäureamid, N-Methyl- (bzw. Isopropyl-oder -Butyl)-(meth)-acrylsäureamid, N,N-Dimethyl-(meth)-
  • acrylsäureamid, desweiteren (Meth)acrylsäuremorpholid (Sonderfall, in dem der Stickstoff über R3 und R4 Teil eines Rings ist) und N-Vinylpyrrolidon-2.
  • Ferner* hydroxygruppenhaltige Monomere des Acrylat- oder des Methacrylattyps, insbesondere hydroxygruppenhaltige Ester oder Amide der Acryl- und der Methacrylsäure sowie Alkoxyalkylester- und/oder Amide der Acryl- und der Methacrylsäure zu den hydrophilen Monomeren des Typs B, z.B. Vertreter der allgemeinen Formel II
    Figure imgb0017
    worin R1 Wasserstoff oder Methyl, R2 Wasserstoff oder eine Alkylgruppe mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen, Q Sauerstoff oder eine Gruppe -NR
    Figure imgb0018
    , worin R
    Figure imgb0019
    für Wasserstoff oder eine Alkylgruppe mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen steht, n eine ganze Zahl von 1 bis 3, vorzugsweise 2, und m eine ganze Zahl von 1 bis 25 bedeutet, mit der Maßgabe, daß, wenn Q für Sauerstoff steht, n nicht gleich 1 sein soll. Besonders genannt sei das Hydroxy- äthylacrylat, Hydroxyäthylmethacrylat, 2-Hydroxyäthyl(meth)-acrylamid, 2-Hydroxypropyl(meth)acrylamid, Monoester der (Meth)-acrylsäure des Glycerins und anderer Polyole.
    * gehören
  • Weiter fallen unter den Monomerentyp B Sulfoäthylacrylate und Sulfoäthylmethacrylate sowie Sulfoäthylacrylamide und Sulfoäthylmethacrylamide. Ebenfalls als hydrophile Gruppen in die Schale des Latex eingebaut werden können polymerisierbare Säuren, wie (Meth)acrylsäure, Itaconsäure oder Maleinsäure oder polymerisierbare tert. Amine, wie 2-N,N-Dimethylamino- äthyl-(meth)acrylamid bzw. - (meth) acrylsäureester oder 3-N,N-
  • Dimethylaminopropyl-(meth)acrylamid bzw. -ester. Zur Vermeidung einer einseitigen Aufladung der Latex- teilchen sollten diese sauren bzw. basischen Gruppen stets gleichzeitig in einem Teilchen vorhanden sein (z.B. Methacrylsäure und 2-N,N-Dimethylaminoäthyl-(methacrylat).
  • Als Monomere des Typs A kommen nicht oder höchstens begrenzt wasserlösliche Monomere in Frage, wobei der qualitative und der quantitative Anteil so zu bemessen ist, daß das nachstehend aufgeführte Kriterium der Härte des resultierenden Polymerisats erfüllt wird:
    • a) Ester der Acryl- und/oder der Methacrylsäure, mit C1 G20-koholen, insbesondere der Methyl-, Äthyl- sowie die Propyl- und Butylester der Methacrylsäure, sowie der Methyl-, Äthyldie Propyl- und Butylester und 2-Athylhexylester der Acrylsäure,
    • b) copolymerisierbare Monomeren vom Typ der Vinylester, insbesondere Vinylacetat, Vinylpropionat, Vinylbutyrat und Vinylisobutyrat.
  • Der Anteil der Komponente A am Gesamtpolymerisat kann, weil in Abstimmung mit den übrigen Bestandteilen, innerhalb relativ weiter Grenzen schwanken, beispielsweise von 0 bis 99 Gew.-%, vorzugsweise 20 bis 99 Gew.-%, bezogen auf das Gesamtpolymerisat.
  • Neben den oben beschriebenen Monomerkomponenten können die erfindungsgemäßen Polymerlatices noch vernetzende Monomere enthalten (Y in der schematischen Darstellung, wobei der Index m Null oder eins sein kann; d.h. der Vernetzer kann fehlen).
  • Unter "vernetzenden Monomeren" werden wie üblich z.B. solche Monomere verstanden, die zwei oder mehrere reaktive Doppelbindungen im Molekül enthalten, wie z.B. mit der Acrylsäure oder vorzugsweise der Methacrylsäure veresterte Di- oder Polyole sowie Allylverbindungen, wie z.B. Allylmethacrylat, Triallylcyanurat u.a.
  • Genannt seien z.B. Ethylenglykoldimethacrylat, 1,4-Butandioldimethacrylat, Triglykoldimethacrylat, Trimethylolpropantrimethacrylat.
  • Der Anteil an Vernetzer - falls vorhanden - richtet sich nach der Hydrophilie des Gesamtpolymerisats. Mit zunehmender Hydrophilie des Latexteilchens kann auch ein zunehmender Anteil an Vernetzer als vorteilhaft erscheinen.
  • Er beträgt im allgemeinen zwischen 0 und 50 Gew.-%, vorzugsweise zwischen 0,2 und 15 Gew.-%, bezogen auf das Gesamtpolymerisat.
  • Der Anteil der funktionellen Monomeren am Gesamtpolymerisat kann - in Abhängigkeit von den konkret verwendeten Monomeren - in weiten Grenzen schwanken. Während z.B. zur kovalenten Fixierung des nucleophile Gruppen tragenden Substrats wenigstens 0,1 % des Monomeren Z'-R-X erforderlich ist, ist der Maximalgehalt dieses Monomeren sehr stark von-dem eingesetzten Monomeren selbst abhängig. Für den Fall, daß das reaktive Monomere selbst eine gewisse Hydrophilie aufweist, bzw. unter den Herstellungsbedingungen der Polymerdispersion zu einem gewissen Maße zu einer hydrophilen Verbindung hydrolysiert, so kann der Anteil dieses Monomeren Z-R-X bis zu 99,9 Gew.-% betragen (z.B. im Falle des Glycidyl-methacryllates, Rest = 0,1 = Vernetzer, z.B. Butandiol-1,4-dimethacrylat).
  • Als Anhalt für die untere Grenze kann somit 0,1 Gew.-%, bezogen auf das Gesamtpolymerisat, angesehen werden, als Anhalt für die obere Grenze 99,9 Gew.-%, vorzugsweise 1 bis 50 Gew.-%.
    • Herstellung der Polymer-Latices
  • Die Herstellung der Latex-Dispersionen kann nach den bekannten Regeln der Emulsionspolymerisation erfolgen, beispielsweise in Anlehnung an DE-OS 18 04 159, DE-OS 19 10 488 und DE-OS 19 10 532, wobei die gewünschte Größe der Latex-Teilchen durch die Emulgatorkonzentration zu Beginn der Polymerisation eingestellt wird. Im allgemeinen liegt die Emulgatorkonzentration zu Beginn der Emulsionspolymerisation zwischen 0,005 und 0,5 Gew.-%, bezogen auf den gesamten Polymerisationsansatz. Die Größe der Latex- Teilchen soll zwischen 0,03 und 6 u liegen, vorzugsweise zwischen 0,03 und 1 u. Als Emulgatoren können die bekannten anionischen und nichtionischen Emulgatoren verwendet werden, beispielsweise Fettalkoholsulfate und -sulfonate, -phosphate und phosphonate, Alkalisalze langkettiger Fettsäuren, langkettige Sarkoside sowie oxäthylierte Fettalkohole, substituierte Phenole, die zum Teil sulfiert sein können sowie andere in der Emulsionspolymerisation verwendete Emulgatoren (Houben-Weyl, Methoden der Organischen Chemie, Bd. XIV/I, S. 133-560, G. Thieme-Verlag, 1961).
  • Die Verwendung kationischer Tenside empfiehlt sich nur insoweit als sich diese von tertiären oder quartären Ammoniumsalzen ableiten. Desweiteren können auch einpolymerisierbare Emulgatoren verwendet werden.
  • Als Initiatoren können ebenfalls die allgemein bei Emulsionspolymerisationen üblichen verwendet werden (vgl. J. Brandrup, E.H. Immergut, "Polymer Handbook", second Edition, J. Wiley & Sons; H. Rauch-Puntigam, Th. Völker, "Acryl- und Methacrylverbindungen", Springer-Verlag 1967). Genannt seien Peroxide, Hydroperoxide, Persäuren und Azoverbindungen, z.B. Kaliumperoxidisulfat, Wasserstoffperoxid u.a.m.
  • Die Konzentration der Initiatoren liegt in der Regel im üblichen Bereich, beispielsweise bei 0,01 bis 1,0 Gew.-%, bezogen auf die Monomeren.
  • Der Feststoffgehalt der Dispersion kann je nach Teilchengröße und Hydrophilie der Teilchen zwischen 10 und 60 Gew.-% liegen.
  • Die Synthese der Latex-Teilchen muß so schonend durchgeführt werden, daß die genannten funktionalen Gruppierungen aus den Monomeren Z'-R-X weitgehend erhalten bleiben, weil nur so eine nachfolgende kovalente Fixierung von Molekülen mit NH-, -SH- und -COOH-Gruppen möglich ist.
  • Dabei ist anzumerken, daß der Erhalt der funktionalen nucleophil angreifbaren Gruppen aus den Monomeren Z'-R-X in bzw. an der Oberfläche der Latex-Teilchen um so schwieriger ist, je hydrophiler der Aufbau der Latex-Teilchen ist.
  • Dies soll am folgenden Beispiel belegt werden:
    • Bei völlig übereinstimmender Herstellung (Synthesetemperatur: 80°C, pH: 7,0, 4 Std. Polymerisationsdauer (Emulsionszulauf). (Zugabe des reaktiven Monomeren Glycidylmethacrylat jeweils nur in der 4. Stunde des insgesamt 4 Std. dauernden Zulaufs), 1 Std. Nacherhitzen bei 80°C findet man den folgenden Oxirangruppengehalt in der Dispersion:
      Figure imgb0020
  • Für eine schonende Herstellung der Latex-Teilchen sind die folgenden Punkte maßgeblich:
    • 1.) Herstellung der Dispersion in einem pH-Bereich, in dem die Reaktionsgeschwindigkeit des Wassers mit den reaktiven Gruppen am geringsten ist (in der Regel ist dies ein pH von etwa 7).
    • 2.) Herstellung bei möglichst niedriger Temperatur.
    • 3.) Möglichst kurze Polymerisationsdauer.
    • 4.) Abwesenheit von starken Nucleophilen im Latex-Teilchen.
  • Zu 1.) Die Synthese der Latex-Teilchen im neutralen pH-Bereich ist am einfachsten durch eine Pufferung des Systems (z.B. mit Phosphat-Puffer) möglich. Gegebenenfalls kann auf eine Pufferung durch Salzzusatz völlig verzichtet werden, z.B. wenn andere Teile der Rezeptur als Puffersubstanzen wirken können, so z.B. bei Verwendung von Alkalisalzen langkettiger Phosphorsäureester als Emulgatoren oder bei Einsatz des Natriumsalzes der 4,4'-Azobis (cyanovaleriansäure).
  • Zu 2. und 3.) Punkt 2 und 3 beinhalten eine möglichst geringe thermische Belastung der reaktiven Gruppen tragenden Latex-Teilchen. Dabei gilt jedoch folgende Einschr-änkung: Da vor allem der Gehalt an reaktiven Gruppen auf der Latexoberfläche von Bedeutung ist, ist es durchaus möglich nur die äußere Hülle des Latex-Teilchen unter Zuhilfenahme der oben genannten reaktiven Gruppen herzustellen. So ist z.B. ein Kern-Schale-Aufbau anwendbar, wobei der Latex-Kern völlig frei von reaktiven Monomeren hergestellt wird, dann gelten naturgemäß die Einschränkungen für eine schonende Latex-Herstellung nur für die Schale.
  • Die Polymerisation wird entweder bei niedrigen Temperaturen (z.B. < 50°C) mit Hilfe eines Redox-systems durchgeführt (wobei jedoch darauf zu achten ist, daß Teile des Redox-Systems die reaktiven Gruppen nicht zerstören, z.B. Bisulfit die Oxirangruppen) oder aber mit thermisch zerfallenden Initiatoren oder mit Hilfe eines Redox-Systems bei Temperaturen bis zu 90°C. Die Polymerisationsdauer sollte 8 Std. nicht überschreiten.
  • Zu 4.) Da der Latex reaktive Gruppen enthält, die eine kovalente Fixierung von >NH-, -SH-, oder -OH-Gruppen haltigen Molekülen ermöglichen soll, ist die Anwesenheit von solchen Gruppen im Latex nur in untergeordnetem Maße möglich. Dies gilt insbesondere für die >NH- und die -SH-Gruppen. Die Anwesenheit von OH-Gruppen im Latex ist weniger kritisch.
    • Herstellung der oberflächenreichen Gebilde
  • Die erfindungsgemäßen Polymerlatices werden bevorzugt auf geeignete Träger aufgebracht.
  • In erster Linie eignen sich inerte (im allgemeinen nicht-wasserlösliche) Träger, insbesondere feste Träger, vorzugsweise mit möglichst großer Oberfläche. Unter praktischen Gesichtspunkten bieten sich insbesondere poröse Körper als Träger an, z.B. auch geschäumte Materialien, Schwämme, weiter Faserstrukturen, Vliese usw. Geeignet sind sowohl anorganische als organische Trägermaterialien.
  • Genannt seien beispielsweise Träger auf Siliciumdioxid- bzw. Silikatbasis, insbesondere auch feinverteiltes Siliciumdioxid, z.B. in Form von Gelen bzw. als aerosi® ferner Träger auf der Basis von Aluminiumoxid und/oder anderen Metalloxiden und auf Basis von Tonen, wie z.B. Füllerden, Bleicherden usw. und Keramik. Ferner fein verteilte anorganische Pigmente, wie Titandioxid, Baryt, ferner Kreide, Talkum, Gips. Bimsstein, Glas, Aktivkohle, rostfreier Stahl usw. Außerdem geeignet erscheint z.B. ein wabenförmig aufgebautes Material auf Cordierit-Basis (Mg2A14Si5018).
  • Als Träger organischer Herkunft bieten sich sowohl (modifizierte) Naturprodukte als auch synthetische Materialien polymerer Natur an. Aus dem Bereich der Naturprodukte sind insbesondere Fasereiweißstrukturen, wie z.B. Wolle und solche auf Kohlehydratbasis (Cellulose, z.B. Zellstoff, Stärke, insbesondere vernetzte Dextrane, usw.) zu nennen. Ebenso eignen sich Materialien auf der Basis synthetischer Polymerer, wie z.B. Polyamide, Polyester, Polyurethan, Polyacrylnitril, Polyimidschäumen.
  • Die genannten Stoffe bieten besonders interessante Aspekte, wenn sie als Flächengebilde, wie z.B. Vliese, Watten oder (nicht geleimtes Papier oder entsprechende dreidimensionale makroporöse Körper zur Anwendung kommen.
  • Die oben beschriebenen, reaktiven Latex-Teilchen können in an sich bekannter Weise durch Tränken, Sprühen oder andere Techniken auf oberflächenreiche Gebilde, wie z.B. Papier, Watte, Vlies u.v.a. auch anorganische Trägermaterialien aufgebracht werden.
  • Dabei kommen zwei verschiedene Bindungsmechanismen zur Anwendung:
    • ∝.) Der Latex ist bei der Auftragungstemperatur filmbildend
  • In diesem Falle wählt man eine Latexmasse, die kleiner ist als die Masse des Trägermaterials (fest/ fest), um die Gesamtoberfläche des Trägermaterials nicht zu verkleinern.
    • β.) Der Latex ist bei der Auftragungs- und/oder der Anwendungstemperatur nicht filmbildend
  • In diesem Fall kann je nach Cberflächenbeschaffenheit des Trägermaterials das Verhältnis Latex (Festsubstanz) : Trägersubstanz von 1 : 100 bis 100 : 1 reichen.
  • Gegebenenfalls kann in diesem Falle auf einen festen Träger völlig verzichtet werden. Dazu ist es erforderlich den Latex durch Sprühtrocknung, Gefriertrocknung oder durch Ausfällen (z.B. durch Natriumsulfat) bzw. durch weitere Methoden, wie Koagulation infolge von Hitzeeinwirkung, Ausfrieren, Einwirkung von Lösungsmitteln, zu agglomerieren, so daß eine möglichst große innere Oberfläche erhalten bleibt.
  • Sofern die Verbindung der einzelnen Latex-Teilchen untereinander nicht durch Filmbildung erfolgt, kann ihre Verknüpfung untereinander bzw. zum Träger durch kovalente Bindungen geschehen. Im Falle der Oxirangruppen enthaltenden Latex-Teilchen kann diese Bindung z.B. durch Reaktion des Oxiranrings mit den OH-Gruppen benachbarter Latex-Teilchen bzw. mit OH-Gruppen des Trägermaterials erfolgen. Gegebenenfalls kann diese kovalente Verknüpfung der Latex-Teilchen durch den Einsatz von multifunktionellen Nucleophilen, z.B. Polyaminen, verstärkt werden. Die Fixierung der Latexteilchen auf den Träger oder zueinander kann jedoch auch über Nebenvalenzbindungen oder durch Verkitten mit untergeordneten Mengen einer weichen, filmbildenden Substanz, z.B. mit Latexteilchen niedrigerer Glastemperatur erfolgen. Diese weichen Latexteilchen können ebenfalls funktionelle Gruppen enthalten.
  • Eine besonders bevorzugte Ausführungsform besteht darin, zum Ausfällen die funktional und/oder morphologisch definierten biologisch wirksamen Einheiten selbst einzusetzen, z.B. kann man ein zu bindendes Protein, z.B. ein Enzym, selbst als multifunktionellen Vernetzer einsetzen. Dieses Verfahren ist vor allem bei besonders kleinen Latex-Teilchen anwendbar.
  • Der Einsatz der oberflächenreichen Gebilde als Katalysatoren (z.B. nach Fixierung von Enzymen) erfolgt je nach Art des vorgegebenen Trägermaterials (z.B. im Festbett).
  • Der Einsatz der sprühgetrockneten bzw. mit Salz oder in Gegenwart von Enzymen ausgefällten Dispersionen erfolgt vorzugsweise im Batch oder im Fließbett. Der hohen Porosität und sehr hohen katalytischen Aktivität dieser Materialien steht eine nur geringe mechanische Festigkeit gegenüber.
  • Für den Fall, daß das zu bindende nucleophile Gruppen enthaltende Substrat nicht bereits bei der Agglomeration der Latex-Teilchen anwesend war, erfolgt die Umsetzung dieser Substrate mit den oberflächenreichen, reaktiven Gebilden unter den üblichen Bedingungen (z.B. Bindung des Enzyms Trypsin an einen oxiran-gruppenhaltigen Träger in einem unimolaren Phosphatpuffer (pH 7,5) in 72h bei 23°C). Als Substrate können allgemein funktional und/oder morphologisch definierte, biologisch wirksame Einheiten oder Substanzen dienen. Genannt seien z.B. Proteine allgemein, insbesondere Enzyme, Blutbestandteile und Blutinhaltsstoffe (Blutfaktoren), z.B. Albumine, Immunoglobuline, Faktoren der Blutgerinnung, Zellmembranproteine, Peptidhormone u.ä. Weiterhin seien erwähnt hochmolekulare, biogene Substrate, die gegebenenfalls durch Farbstoffe markiert sein können, z.B. zur Anwendung in der Diagnostik. Neben dem Einsatz als Katalysator ist vor allem auch ein Einsatz in der (Affinitäts)-Chromatographie und allgemein im Bereich der Diagnostik möglich.
  • Bei dem Einsatz - z.B. als Diagnosepapier - kann es von Vorteil sein, einen - (z.B. pH- oder Redox-sensitiven) Farbstoff physikalisch oder kovalent mit einzulagern. Damit kann z.B. bei gleichzeitiger Anwesenheit eines Substrats der entsprechende Reaktionspartner, z.B. ein Enzym, durch eine Farbänderung nachgewiesen werden.
  • Zum Zwecke der Diagnose kann der reaktive Latex auf Papierstreifen oder Teststäbchen aus beliebigem Trägermaterial aufgebracht werden.
  • Die mit dem Reagenz (z.B. einem Enzymsubstrat und gegebenenfalls zusätzlich mit einem Farbstoff) umgesetzten Teststreifen oder Teststäbchen sind dann im trockenen Zustand unter Einhaltung bestimmter Temperaturbedingungen beliebig lagerfähig.
  • Der eigentliche Test kann zu gegebener Zeit durch einfaches Eintauchen des Teststreifens oder Stäbchens in ein den Reaktionspartner (z.B. ein Enzym) enthaltendes Medium (z.B. Urin, Blutserum etc.) erfolgen. Neben diesen spezifischen Diagnoseanwendungen kann das oberflächenreiche System ganz generell als bioaffiner Indikator Verwendung finden. Bei einer Verwendung als Katalysator, z.B. als Biokatalysator, können die reaktiven Latices in zwei prinzipiell verschiedenen Versionen zum Einsatz kommen.
  • Bei Anwendung im Festbett wird der Latex im allgemeinen an eines der oben beschriebenen Trägermaterialien fixiert. Die Umsetzung mit dem Katalysator kann vor oder nach dieser Fixierung stattfinden. Am interessantesten sind wegen ihrer hohen Spezifität und Selektivität Enzyme (es können aber auch einfacher aufgebaute und unspezifisch wirkende Gruppen (z.B. quartäre Ammoniumverbindungen oder Imidazol u.a. Heterocyclen zur Katalyse einer Hydrolyse) zur Anwendung kommen).
  • Die erfindungsgemäßen reaktiven oberflächenreichen Gebilde sind zur Immobiliserung aller Klassen von Enzymen geeignet, beispielsweise zur Fixierung von Oxidoreduktasen, Transferasen, Hydrolasen, Lyasen, Isomerasen und Ligasen.
  • Im Falle einer Verwendung im Fließbett sind neben zerkleinerten,auch für das Festbett geeigneten Träger-Katalysator-Kombinationen in erster Linie trägerfreie Latexaggregate einsetzbar, die als Pulver, Aufschlämmung oder in einer anderen grobdispersen Form zur Anwendung kommen können. Die Umsetzung mit dem Enzymsubstrat kann am Originallatex selbst oder nach dessen Agglomeration erfolgen. Im übrigen sind dieselben Katalysatoren einsetzbar wie sie weiter oben im Falle der Festbettkatalyse beschrieben worden sind.
  • Falls für eine chemische Reaktion mehrere Enzyme in das Reaktionsgeschehen eingreifen müssen, besteht häufig das Problem, daß diese Enzyme nicht nebeneinander existenzfähig sind. Im Falle der kovalenten Bindung an die beanspruchten Trägermaterialien lassen sich solche Unverträglichkeiten häufig herabsetzen oder ganz ausschließen. So ist es bei dem erfindungsgemäßen Verfahren durchaus möglich zwei oder mehrere, verschiedene Enzyme zu fixieren.' Es kann aber auch vorteilhaft sein, Enzymkombinationen direkt im Zellverband zur Anwendung zu bringen, d.h. ganze Mikroorganismen zu immobilisieren. Dies kann besonders vorteilhaft mit den beanspruchten, reaktiven Latices geschehen. Durch Menge und Teilchengröße der Latices ist die Substratzugänglichkeit eines solchen Systems besonders gut zu steuern.
  • So eignen sich die erfindungsgemäßen, oberflächenreichen Systeme zur Fixierung von therapeutisch verwendbaren Enzymen, die z.B. oral angewendet werden können (z.B. Proteasen und/oder Lipasen und/oder Amylasen).
  • Auf diese Weise können demzufolge auch noch höhermolekulare Substrate umgesetzt werden.
  • Für eine solche Einbettung oder Fixierung kommen besonders in Frage:
    • 1.) Viren, prokariotische und eukariotische Zellen und deren Untereinheiten, siehe 2.), sowie Zellhybride, wie sie z.B. zur Herstellung von monoclonalen Antikörpern benutzt werden.
    • 2.) Außerdem eignen sich die erfindungsgemäßen reaktiven oberflächenreichen Gebilde zur Immobilisierung von Zellorganellen, insbesondere Mitochondrien, Mikrosomen, Membranteilen, Zellkernen und deren Untereinheiten.
  • Die Anwendung der erfindungsgemäßen Latex-Trägerkombinationen in der (Affinitäts)chromatographie erfolgt völlig analog wie bei der Katalysatoranwendung beschrieben. Lediglich, die an den reaktiven Latex zu bindenden reaktiven Moleküle sind auf den spezifischen Verwendungszweck ausgerichtet. Eine Anwendungsmöglichkeit der oberflächenreichen Systeme gemäß der vorliegenden Erfindung ist die Anwendung als bioaffines Sorbens.
  • Dabei können durchaus überschneidungen auftreten, etwa in der Art, daß ein gebundenes Enzym, das als Katalysator eingesetzt werden kann, Anwendung findet in der chromatographischen Reinigung eines Enzyminhibitors.
  • Eine besonders interessante Einsatzmöglichkeit bieten die Träger bei der Beseitigung von Spuren toxischer Stoffe (z.B. Blutwäsche, Wasseraufbereitung etc.). Es kann aber auch das reaktive oberflächenreiche System eingesetzt werden. In diesem Falle ist die Entfernung von nucleophilen Verunreinigungen aus wäßrigem Medium möglich, z.B. die Entfernung von toxischen Aminen, Mercaptanenund anderen Schadstoffen aus wäßrigen Medien. Darüber hinaus kann das erfindungsgemäße, oberflächenreiche System mit multifunktionellen Substanzen umgesetzt werden, die mindestens eine nucleophile Gruppe (zur Fixierung am Latex) und mindestens eine weitere funktionelle Gruppe aufweisen, die zur spezifischen Wechselwirkung mit in wäßrigem Medium befindlichen Substanzen oder funktionellen Einheiten geeignet ist. Gruppen mit der genannten spezifischen Wechselwirkung können beispielsweise Komplexbildner sein; genannt sei z.B. das Umsetzungsprodukt der Aminodiessigsäure mit einem oxiranhaltigen Latex u.ä.
  • Weitere Einsatzmöglichkeiten der erfindungsgemäßen reaktiven oberflächenreichen Systeme liegen in der Anwendung als stationäre Phase in der präparativen organischen Chemie. So kann z.B. ein auf diese Weise erhaltener S-S-Brückenhaltiger Latex als schonendes Oxidationsmittel verwendet werden, wobei die Entfernung des entstehenden Mercaptans entfällt.
  • Von ganz besonderem Interesse ist die Anwendung als stationäre Phase in der präparativen Peptidsynthese. Dabei kann einerseits das zu synthetisierende Peptid an dem oberflächenreichen System aufgebaut werden, es kann aber auch das oberflächenreiche System aktivierte Reaktionspartner, z.B. Kupplungsaktive Aminosäuren oder Kupplungsagentien, z.B. nur schwer in Lösung überzuführende Carbodiimide aufnehmen. Im letzten Falle bleibt das aufzubauende Peptid in der wäßrigen Phase gelöst.
  • Prinzipiell sind für chromatographische Zwecke sowohl die an feste Träger gebundene. Latex-Wirkstoff-Kombination als auch die lose aggregierte Latex-Wirkstoff-Kombination (Säule) einsetzbar.
  • Die nachstehenden Beispiele stellen eine Auswahl zur Erläuterung des erfindungsgemäßen Immobilisierungsprinzips dar.
    • Beispiel 1
  • Herstellung einer oxirangruppenhaltigen Dispersion
  • In einem Polymerisationsgefäß, ausgestatt mit Rückflußkühler, Rührer und Thermostat wird eine Lösung aus
    Figure imgb0021
    und auf 80°C erwärmt.
  • In diese Vorlage tropft man ebenfalls bei 80°C innerhalb von 4 Stunden eine Emulsion, hergestellt aus:
    Figure imgb0022
    Anschließend wird noch weitere 2 Stunden bei 80°C gerührt, danach wird auf Raumtemperatur abgekühlt und filtriert. Man erhält eine koagulatfreie Dispersion. Feststoffgehalt ca. 30 %, pH-Wert: 7,3, Viskosität 2 mPa.s.
    • Beispiel 2 Herstellung einer oxirangruppenhaltigen Dispersion
  • In einem Polymerisationsgefäß, ausgestattet mit Rückflußkühler, Rührer und Thermostat wird eine Lösung aus
    Figure imgb0023
    80°C erwärmt.
  • In diese Vorlage tropft man ebenfalls bei 80°C innerhalb von 4 Stunden eine Emulsion, hergestellt aus:
    Figure imgb0024
    Anschließend wird noch 90 Min. bei 80°C gerührt, danach wird auf Raumtemperatur abgekühlt und filtriert. Man erhält eine gut filtrierbare koagulatfreie Dispersion. Feststoffgehalt ca. 30 %, pH-Wert: 7,1, Viskosität 1 mPa.s.
    • Beispiel 3
  • Herstellung einer oxirangruppenhaltigen Dispersion
  • In einem Polymerisationsgefäß, ausgestattet mit Rückflußkühler, Rührer und Thermostat wird eine Lösung aus
    Figure imgb0025
    vorgelegt und auf 80°C erwärmt.
  • In diese Vorlage tropft man bei 80°C innerhalb von 3 Std. eine Emulsion, hergestellt aus:
    Figure imgb0026
    Anschließend wird noch weitere 30 Min. bei 80°C gerührt, danach wird auf Raumtemperatur abgekühlt und filtriert. Man erhält eine gut filtrierbare, koagulatfreie Dispersion, Feststoffgehalt: 19,4 %, pH-Wert: 7,7, Viskosität 2 mPa.s.
    • Beispiel 4
  • Herstellung einer oxirangruppenhaltigen Dispersion
  • Man verfährt wie in Beispiel 3, dosiert jedoch eine Emulsion mit veränderter Monomerzusaimnensetzung zu.
  • Monomerzusammensetzung:
    Figure imgb0027
    Hilfsstoffe, Polymerisationsdauer und Polymerisationstemperatur wie in Beispiel 3 beschrieben.
  • Es resultiert eine gut filtrierbare, koagulatfreie Dispersion.
  • Feststoffgehalt: 19,7 %, pH-Wert: 7,6, Viskosität: 1 mPa.s.
    • Beispiel 5
  • Immobilisierung des Enzyms Ribonuclease durch Umsetzung mit Latex gemäß Beispiel 4
  • 100 mg Ribonuclease 1aus Pankreas, Merck, Artikel Nr. 24570) werden in 1 ml 0,05 M Phosphatpuffer pH 7,5 gelöst. Zu dieser Lösung gibt man unter Rühren 1 ml der Dispersion gemäß Beispiel 2. Anschließend wird 3 Tage bei 23°C stehengelassen.
  • Zur Aufarbeitung wird dreimal in jeweils 50 ml 1MNaCl-Lösung aufgeschlämmt und anschließend zentrifugiert. Danach wird dieser Waschvorgang noch zweimal mit 50 ml 0,05 M. Phosphatpuffer wiederholt.
  • Ausbeute: 1,1 g Feuchtsubstanz.
  • Die Ermittlung der Enzymaktivität erfolgte durch alkalimetrische Titration bei 37°C und pH 7,5, mit RNA als Substrat.
    Figure imgb0028
    • Beispiel 6 Immobilisierung des Enzyms Trypsin durch Umsetzung mit dem Latex gemäß Beispiel 4
  • Man verfährt wie im Beispiel 5, verwendet jedoch als Enzym 100 mg Trypsin2 vom Rind, Merck, Artikel Nr. 24579).
  • Die Ermittlung der Enzymaktivität erfolgte durch alkalimetrische Titration bei 37°C und pH 7,5 (BAEE) und pH 8,0 (Casein).
    Figure imgb0029
    • Beispiele 7 - 11 Imnobilisierung des Enzyms Trypsin durch Umsetzung mit dem Latex gemäß Beispiel 4
  • Man verfährt wie im Beispiel 6, variiert jedoch das Verhältnis Enzym/Latex.
    • Aktivität:
  • Figure imgb0030
    • Beispiel 12 Immobilisierung des Enzyms PC-Amidase durch Umsetzung mit dem Latex gemäß Beispiel 4
  • Man verfährt wie im Beispiel 5, verwendet jedoch als Enzym 100 mg Penicillin-Amidase (Escherichia coli) 3)
  • Die Ermittlung der Enzymaktivität erfolgt durch Messung bei 37°C und pH 7,8. (Substrat: Penicillin-Kalium G).
    • Aktivitätsmessung
  • Figure imgb0031
    • Beispiel 13
  • Immobilisierung des Enzyms Ribonuclease durch Umsetzung mit dem Latex gemäß Beispiel 3
  • Man verfährt wie im Beispiel 5, verwendet jedoch zur Vernetzung des Enzyms den Latex gemäß Beispiel 3.
    • Aktivitätsmessung
  • Figure imgb0032
    • Beispiel 14 Fixierung des Enzyms RNAse an ein durch Tränken mit einer oxirangruppenhaltigen Dispersion aktiviertes Papier
  • 100 ml der Dispersion gemäß Beispiel 1 werden mit 500 ml destilliertem Wasser verdünnt. Mit dieser etwa 5 %igen Dispersion tränkt man ein- ca. 100 cm2 großes Stück Papier (Whatman Medium flow). Anschließend wird abgepreßt, eine Stunde bei Raumtemperatur belassen und danach 30 min bei 80°C getrocknet. Das so behandelte Papier enthält 20 g Polymerisatfeststoff pro m2. Bei Temperaturen unter -15°C kann dieses reaktive Papier wenigstens 12 Monate gelagert werden.
    • Fixierung des Engzyms Ribonuclease
  • 100 mg Ribonuclease 1)rerden in 2 ml 0,05 M Phosphat- puffer (pH 7,5) gelöst. Mit dieser Lösung tränkt man das mit dem oxirangruppenhaltigen Latex behandelte Papier und läßt anschließend 72 Std. bei 23°C stehen. Danach wird abgepreßt und dreimal mit 1n NaCL- und zweimal mit 0,05 M. Phosphatpufferlösung (pH 7,5) gewaschen.
    • Aktivitätsmessung (3. Verwendung): 2 U/g Feuchtpapier Bedingungen: 37°C, pH 7,5 (aus Pankreas, Merck, Artikel Nr. 24570) Beispiel 15
  • Man verfährt wie im Beispiel 14, verwendet jedoch das Enzym Trypsin. 2)
  • Aktivitätsmessung (3. Verwendung):*) 2,5 U/g Feuchtpapier *) Substrat BAEE, pH 7,5, 37°C
    • Beispiel 16
  • Man verfährt wie im Beispiel 14, verwendet jedoch zum Tränken des Papiers eine konzentriertere Dispersion (100 ml der Dispersion gemäß Beispiel 1, verdünnt mit 200 ml destilliertem Wasser).
  • Trocknungsbedingungen: 12 Std. bei 25°C im Umlufttrockenschrank.
  • Polymerisatfeststoff/m2 Papier = 33 g Anschließend Fixierung des Enzyms Trypsin wie im Beispiel 14 für das Enzym RNAse beschrieben.
  • Aktivitätsmessung (3. Verwendung): 4,1 U/g Feuchtpapier Substrat BAEE, pH 7,5, 37°C
    • Beispiel 17
  • Man verfährt wie im Beispiel 16, verwendet zur Tränkung den Latex gemäß Beispiel 2 (Verdünnung wie im Beispiel 16: 100 ml Dispersion in 200 ml destilliertem Wasser). Polymerisatfeststoff/m2 Papier = 27 g
  • Aktivitätsmessung (3. Verwendung): 7 U/g Feuchtpapier Substrat BAEE, pH 7,5, 37°C
    • Beispiel 18
  • 100 ml der Dispersion gemäß Beispiel 1 wird mit 200 ml destilliertem Wasser verdünnt, damit wird eine Watte (Dicke 2 mm) besprüht, anschließend wird 12 Std. bei Raumtemperatur getrocknet.
  • Polymerisatfeststoff/m2 Watte = 39 g Aktivitätsmessung (3. Verwendung, Enzym RNase) 2,1-U/g Feuchtwatte
  • Messbedingungen wie im Beispiel 14 beschrieben.
    • Beispiel 19
  • Man verfährt wie im Beispiel 14: Tränkung des Papiers mit der oxirangruppenhaltigen Dispersion gemäß Beispiel 1, Trocknung, Umsetzung mit dem Enzym Ribonuclease. 1) Das 72 Std. mit Enzymlösung behandelte Papier wird jedoch ohne weitere Reinigung 24 Std. zusätzlich mit einer 0,005 %igen Lösung von 4'-Amino=azobenzol-2-carbonsäure in 0,05 M. Phosphatpufferlösung behandelt, anschließend wird dreimal mit 1n NaCl- und zweimal mit 0,05 M. Phosphatpufferlösung (pH 7,5) gewaschen.
  • Zur Verwendung als Indikator (Substratnachweis) wird das Papier noch zweimal mit 1n NaCl-Lösung gewaschen. Bei Anwesenheit eines Substrats zeigt das Papier Farbumschlag von gelb nach orange.
  • Aktivität des Teststreifens bei pH 7,5 (37°C) : 1,5 U/g Feuchtgewicht
    • Beispiel 20
  • Immobilisierung von Escherichia coli durch Umsetzung mit dem Latex gemäß Beispiel 4.
  • Zu 10 ml einer 20 %igen Zellsuspension von Escherichia coli in physiologischer Kochsalzlösung werden 10 ml der Dispersion gemäß Beispiel 4 gegeben. Anschließend läßt man 24 Stunden bei Raumtemperatur stehen.
  • Es resultiert ein Netzwerk, das sich gut durch Zentrifugation reinigen läßt.
    • Aktivitäten
  • Substrat: Penicillin-Kalium ( 2 %ig), 37°C
    Figure imgb0033
    Damit sind die Aktivitäten des immobilisierten Escherichia coli durchaus vergleichbar mit denen des nicht immobilisierten Escherichia coli:
    Figure imgb0034

Claims (47)

1. Oberflächenreiche Systeme mit reaktiven Einheiten zur Bindung von nucleophilen Gruppen enthaltenden Substraten,
dadurch gekennzeichnet,
daß die reaktiven Einheiten zur Bindung der die nucleophilen Gruppen enthaltenden Substrate Bestandteil eines Polymer latex sind, der selbst zu einem oberflächenreichen System aggregiert und/oder an einem oberflächenreichen Trägermaterial fixiert ist.
2. Oberflächenreiche Systeme gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Aggregation der Polymerlatices zu einem oberflächenreichen System durch Sprühtrocknung unterhalb der minimalen Filmbildungstemperaiur (MFT) des individuellen Polymerlatex vorgenommen wird.
3. Oberflächenreiche Systeme gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Aggregation der Polymerlatices zu einem oberflächenreichen System durch Gefriertrocknung erfolgt.
4. Oberflächenreiche Systeme gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Aggregation der Polymerlatices zu einem oberflächenreichen System durch thermische Koagulation, Ausgefrieren oder durch Fällen mit Elektrolyten oder Lösungsmitteln erfolgt.
5. Oberflächenreiche Systeme gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Aggregation der Polymer- latices zu einem oberflächenreichen System durch Ausfällen mit dem die nucleophilen Gruppen enthaltenden Substrat erfolgt.
6. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 und 5, dadurch gekennzeichnet, daß das die nucleophilen Gruppen enthaltende Substrat Protein-Charakter hat.
7. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 und 5, dadurch gekennzeichnet, daß die zum Ausfällen benutzten, nucleophilen Gruppen enthaltenden Substrate aus funktional und/oder morphologisch definierten, biologisch wirksamen Einheiten bestehen.
8. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1, 5, 6 und 7, dadurch gekennzeichnet, daß das die nucleophilen Gruppen enthaltende Substrat ein Enzym ist.
9. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 und 8, dadurch gekennzeichnet, daß das die nucleophilen Gruppen enthaltende Substrat aus mehreren, unterscheidbaren Enzymen besteht.
10. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 und 7, dadurch gekennzeichnet, daß die zum Ausfällen benutzte, nucleophile Gruppen enthaltenden Substrate aus Mikroorganismen oder deren Untereinheiten, Viren, eukariotischen oder prokariotischen Zellen und/oder deren Untereinheiten oder Zellhybriden oder Zellorganellen, wie Mitochondrien, Mikrosomen, Membranteile, Zellkerne oder deren Untereinheiten, bestehen.
11. Oberflächenreiche Systeme gemäß Anspruch 1 und 2 - 4, dadurch gekennzeichnet, daß bei der Aggregation der Polymerlatices zu einem oberflächenreichen Gebilde ein oder mehrere Arten der die nucleophilen Gruppen enthaltenden Substrate bereits anwesend sind.
12. Oberflächenreiche Systeme gemäß Anspruch 1, dadurch hergestellt, daß auf ein oberflächenreiches Trägermaterial eine Latex-Dispersion aufgebracht wird, deren Latexteilchen als Bestandteile reaktive Gruppen zur Bindung der die nucleophilen Gruppen enthaltenden Substrate aufweisen und der Latex am Trägermaterial fixiert wird.
13. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 und 12, dadurch gekennzeichnet, daß der auf das oberflächenreiche Trägermaterial aufzubringende Latex filmbildend ist und durch einfaches Auftrocknen auf dem oberflächenreichen Trägermaterial fixiert wird.
14. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 und 12, dadurch gekennzeichnet, daß der zu fixierende Latex an sich nicht filmbildend ist und durch Beifügung geringfügiger Mengen eines filmbildenden Latex oder mittels der reaktiven Einheiten bzw. weiterer funktioneller Gruppen oder reaktiver Verbindungen am Trägermaterial fixiert wird.
15. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 und 12, dadurch gekennzeichnet, daß das oberflächenreiche Trägermaterial im wesentlichen aus organischem Material aufgebaut ist.
16. Oberflächenreiche Systeme gemäß Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, daß das organische Material aus Vinylpolymeren, Kohlehydraten, Proteinen, Polyaminosäuren, Polyamiden oder Polyestern aufgebaut ist.
17. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 12, 15 und 16, dadurch gekennzeichnet, daß das oberflächenreiche Trägermaterial ein Faservlies darstellt.
18. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 12, 15 und 16, dadurch gekennzeichnet, daß das oberflächenreiche Trägermaterial eine Watte darstellt.
19. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 12, 15 und 16, dadurch gekennzeichnet, daß das oberflächenreiche Trägermaterial geschäumt ist.
20. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 und 12, dadurch gekennzeichnet, daß das oberflächenreiche Trägermaterial aus anorganischem Material aufgebaut ist.
21. Oberflächenreiche Systeme gemäß Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet, daß das anorganische Trägermaterial in Vliesform oder in Form eines porösen Körpers vorliegt.
22. Oberflächenreiche Systeme gemäß Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet, daß das anorganische Material aus Siliciumdioxid bzw. Silikaten,Glas, Aluminiumoxid und/ oder andere Metalloxiden,Tonen,Sand, Keramik, Kohle, nicht-rostendem Stahl, besteht.
23. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 22, dadurch gekennzeichnet, daß der Polymer latex aus radikalisch polymerisierbaren Monomeren aufgebaut ist.
24. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 und 23, dadurch gekennzeichnet, daß der Polymerlatex auf Basis von Acrylsäure- und/oder Methacrylsäurederivaten und/oder Styrol und/oder Vinylacetat aufgebaut ist.
25. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 24, dadurch gekennzeichnet, daß die reaktiven Einheiten als Bestandteile eines Polymerlatex solche sind, die mit den nucleophile Gruppen enthaltenden Substraten in wäßriger Lösung und im pH-Bereich von 5 - 10 unter Ausbildung einer kovalenten Bindung reagieren.
26. Oberflächenreiche Systeme gemäß Anspruch 25, dadurch gekennzeichnet, daß die reaktiven Einheiten Oxiran-, Keto-, Formyl-, Sulfonsäurehalogenid-, Thioisocyanatgruppen, aktivierte Carbonsäureester und/oder Carbonsäureanhydride oder aktivierte Doppelbindungen darstellen.
27. Oberflächenreiche Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 26, dadurch gekennzeichnet, daß sie zusätzlich noch einen, gegebenenfalls pH- oder redoxsensitiven Farbstoff enthalten.
28. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4 und 12, dadurch gekennzeichnet, daß man die am Trägermaterial fixierten Latices mit einem nucleophile Gruppen enthaltenden Substrat umsetzt.
29. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4 und 13 bis 28 zur Fixierung von funktional und/oder morphologisch definierten, biologisch wirksamen Einheiten.
30. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4 und 13 bis 29 zur Immobilisierung von Proteinen.
31. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4 und 13 bis 30 zur Bindung von Enzymen.
32. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4, 13 bis 30 zur Bindung von Blutproteinen und Blutfaktoren.
33. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß Anspruch 32, zur Bindung von Albumin, Immunoglobulinen, Faktoren der Blutgerinnung, Zellmembranproteinen und Peptidhormonen.
34. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4, 13 bis 30, zur Immobilisierung von hochmolekularen, biogenen Substraten.
35. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4, 13 bis 30 und 34, zur Immobilisierung von mit Farbstoffen kovalent markierten, hochmolekularen, biogenen Substraten.
36. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 35, als Katalysatorsysteme.
37. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 36, als Biokatalysatoren, insbesondere mit Enzymwirkung.
38. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 35, als bioaffine Indikatoren, beispielsweise als immobilisierte Substrate.
39. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 35, als bioaffine Sorbentien.
40. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4 und 13 bis 30, zur Entfernung von nucleophile Gruppen enthaltenden Verunreinigungen aus wäßrigen Medien.
41. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4, zur Umsetzung mit bi- oder multifunktionellen Substanzen, die mindestens eine nucleophile Gruppe zur Fixierung am Latex und mindestens eine weitere funktionelle Gruppe aufweisen, die zur spezifischen Wechselwirkung mit in wäßrigem Medium befindlichen Substanzen oder funktionellen Einheiten geeignet ist.
42. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß Anspruch 41, dadurch gekennzeichnet, daß die weitere funktionelle Gruppe eine komplexierende Wirkung ausübt.
43. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4 und 42, als stationäre Phase in der präparativen organischen Chemie.
44. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1 bis 4 und 43 zur Peptidsynthese.
45. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 1, 5 bis 9 und 31, dadurch gekennzeichnet, daß das gebundene Enzym zu therapeutischen Zwecken verwendet wird.
46. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß Anspruch 45 zur oralen Applikation.
47. Verwendung der oberflächenreichen Systeme gemäß den Ansprüchen 45 und 46 zur Bindung von Proteasen und/oder Lipasen und/oder Amylasen.
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