EA032726B1 - Рекомбинантная эукариотическая клетка для продукции янтарной кислоты, которая содержит nad(h)-зависимую фумаратредуктазу - Google Patents

Рекомбинантная эукариотическая клетка для продукции янтарной кислоты, которая содержит nad(h)-зависимую фумаратредуктазу Download PDF

Info

Publication number
EA032726B1
EA032726B1 EA201000837A EA201000837A EA032726B1 EA 032726 B1 EA032726 B1 EA 032726B1 EA 201000837 A EA201000837 A EA 201000837A EA 201000837 A EA201000837 A EA 201000837A EA 032726 B1 EA032726 B1 EA 032726B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
leu
gly
succinic acid
ala
seq
Prior art date
Application number
EA201000837A
Other languages
English (en)
Other versions
EA201000837A1 (ru
Inventor
Рене Вервал
Лиан Ву
Роббертус Антониус Дамвельд
Корнелис Мария Якобус Сагт
Original Assignee
ДСМ АйПи АССЕТС Б.В.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by ДСМ АйПи АССЕТС Б.В. filed Critical ДСМ АйПи АССЕТС Б.В.
Publication of EA201000837A1 publication Critical patent/EA201000837A1/ru
Publication of EA032726B1 publication Critical patent/EA032726B1/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • C12P7/44Polycarboxylic acids
    • C12P7/46Dicarboxylic acids having four or less carbon atoms, e.g. fumaric acid, maleic acid
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/80Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi
    • C12N15/81Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi for yeasts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/80Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi
    • C12N15/81Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi for yeasts
    • C12N15/815Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi for yeasts for yeasts other than Saccharomyces
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/001Oxidoreductases (1.) acting on the CH-CH group of donors (1.3)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/88Lyases (4.)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/52Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Cosmetics (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
  • Fuel Cell (AREA)

Abstract

Изобретение касается улучшенной рекомбинантной эукариотической клетки для продукции янтарной кислоты. Указанную рекомбинантную клетку выбирают из клеток дрожжей и мицелиальных грибов, и она включает последовательность нуклеотидов, кодирующую NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу, которая катализирует преобразование фумаровой кислоты в янтарную кислоту, причем указанная NAD(H)-зависимая фумаратредуктаза активна в цитозоле. Изобретение также касается способа получения янтарной кислоты, в котором используется эукариотическая клетка по изобретению.

Description

Область техники, к которой относится изобретение
Настоящее изобретение относится к рекомбинантной эукариотической клетке, включающей нуклеотидную последовательность, кодирующую фумаратредуктазу, и способ продукции янтарной кислоты, в котором применяют рекомбинантную эукариотическую клетку.
Сведения о предшествующем уровне техники
Янтарная кислота является потенциальным предшественником для многих химических веществ. Например, янтарную кислоту можно превратить в 1,4-бутандиол (BDO), тетрагидрофуран и гаммабутиролактон. Другим продуктом, который получают из янтарной кислоты, является полиэфирный полимер, который изготавливают с помощью присоединения янтарной кислоты и BDO.
Янтарную кислоту преимущественно производят с помощью нефтехимических способов путем гидрирования бутана. Эти способы считают дорогостоящими и губительными для окружающей среды. Ферментативная продукция янтарной кислоты может быть привлекательным альтернативным способом производства янтарной кислоты, в котором в качестве источника углерода можно использовать возобновляемое сырье. Известно много различных бактерий, таких как Escherichia coli, и бактерий рубца Actinobacillus, Anaerobiospirillum, Bacteroides, Mannheimia или Succinimonas, sp., продуцирующих янтарную кислоту. Проектирование метаболических путей для этих штаммов бактерий улучшает выход янтарной кислоты и/или продуктивность или уменьшает образование побочных продуктов.
WO2007/061590 раскрывает дрожжи, не содержащие пируватдекарбоксилазу, для продукции яблочной кислоты и/или янтарной кислоты, которые трансформированы ферментом пируваткарбоксилазой или фосфоенолпируваткарбоксилазой, ферментом малатдегидрогеназой и белком, транспортирующим яблочную кислоту (МАЕ).
Несмотря на усовершенствования, которые были достигнуты в ферментативной продукции янтарной кислоты, остается необходимость в улучшенных микроорганизмах, используемых для ферментативной продукции янтарной кислоты.
Сущность изобретения
Целью настоящего изобретения является альтернативный микроорганизм для продукции янтарной кислоты.
Цель достигают в соответствии с изобретением с помощью рекомбинантной эукариотической клетки, выбираемой из группы, состоящей из дрожжей и мицелиальных грибов, включающих нуклеотидную последовательность, кодирующую NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу, которая катализирует превращение фумаровой кислоты в янтарную кислоту, причем NAD(H)-зависимая фумаратредуктаза активна в цитозоле после экспрессии нуклеотидной последовательности, кодирующей NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу.
Неожиданно было обнаружено, что рекомбинантная эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением продуцирует повышенное количество янтарной кислоты по сравнению с количеством янтарной кислоты, продуцируемой эукариотической клеткой дикого типа. Предпочтительно эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением продуцирует по меньшей мере в 1,2 раза, предпочтительно по меньшей мере в 1,5 раза, предпочтительно по меньшей мере в 2 раза больше янтарной кислоты, чем эукариотическая клетка дикого типа, которая не включает нуклеотидную последовательность, кодирующую NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу. Соответственно изобретением также предусмотрен способ получения янтарной кислоты, включающий ферментацию эукариотической клетки по изобретению в подходящей для ферментации среде и извлечение янтарной кислоты.
Используемый в этом документе термин рекомбинантная эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением определяют как клетку, которая содержит или которая трансформирована или генетически модифицирована с помощью нуклеотидной последовательности, или которая содержит полипептид, который не встречается естественным образом в эукариотической клетке, или которая содержит дополнительную копию или копии эндогенной последовательности нуклеиновой кислоты. Эукариотическую клетку дикого типа в этом документе определяют как родительскую клетку для рекомбинантной клетки.
Нуклеотидная последовательность, кодирующая NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу, которая катализирует превращение фумаровой кислоты в янтарную кислоту, может быть гетерологичной или гомологичной нуклеотидной последовательностью, или последовательностью, которая кодирует гетерологичную или гомологичную NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу, и которую можно дополнительно генетически модифицировать с помощью мутации, разрушения или делеции. Методы рекомбинантных ДНК хорошо известны в этой области техники, например, в книге Sambrook and Russel (2001) Molecular Cloning: A Laboratory Manual (3rd edition), Cold Spring Harbor Laboratory Press.
Термин гомологичный используют для того, чтобы указать на соответствие между определенной молекулой (рекомбинантной) нуклеиновой кислоты или полипептида и определенным организмом хозяина или клеткой хозяина, этот термин означает, что в природе молекулу нуклеиновой кислоты или полипептида продуцирует клетка-хозяина или организмы тех же видов, предпочтительно того же самого сорта или штамма.
Термин гетерологичный используют в отношении нуклеиновой кислоты (ДНК или РНК) или бел
- 1 032726 ка, который имеет отношение к нуклеиновой кислоте, или белка, который не встречается в естественных условиях как часть организма, клетки, генома или последовательности ДНК или РНК, в которой он находится, или который обнаружен в клетке или месте расположения или местах расположения в геноме или последовательности ДНК или РНК, которые отличаются от тех, которые обнаружены в естественных условиях. Гетерологичные нуклеиновые кислоты или белки не являются эндогенными в отношении клетки, в которую они введены, но их получают из другой клетки или синтетическим путем или рекомбинантными способами.
МЛП^Ю-зависимая фумаратредуктаза в соответствии с настоящим изобретением использует NAD(H) в качестве кофактора, тогда как большинство эукариотических клеток включают FADH2зависимую фумаратредуктазу, в которой кофактором является FADH2. Считают полезным, если эукариотическая клетка включает нуклеотидную последовательность, кодирующую NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу, так как NAD(H)-зависимая фумаратредуктаза обеспечивает клетку дополнительными возможностями для окисления NAD(H) в NAD+ и оказывает влияние на окислительно-восстановительный баланс в клетке.
Предпочтительно клетка экспрессирует нуклеотидную последовательность, кодирующую фермент, который катализирует образование янтарной кислоты, где нуклеотидная последовательность предпочтительно кодирует NЛD(H)-зависимую фумаратредуктазу, включающую аминокислотную последовательность, которая имеет по меньшей мере 40%, предпочтительно по меньшей мере 45, 50, 55, 60, 65, 70, 75, 80, 85, 90, 95, 97, 98, 99% идентичности последовательности с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 1, и/или SEQ ID NO: 3, и/или SEQ ID NO: 4, и/или SEQ ID NO: 6. Предпочтительно нуклеотидная последовательность кодирует NЛD(H)-зависимую фумаратредуктазу, включающую аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 1, и/или SEQ ID NO: 3, и/или SEQ ID NO: 4, и/или SEQ ID NO: 6.
Идентичность последовательности в этом документе определяют как соответствие между двумя или более аминокислотными последовательностями (полипептида или белка) или двумя или более последовательностями нуклеиновых кислот (полинуклеотидными последовательностями), которое определено путем сравнения последовательностей. Обычно идентичности последовательностей или сходство сравнивают по всей длине последовательностей, которые сопоставляют. В этой области техники термин идентичность также означает степень родства последовательностей между аминокислотными или нуклеотидными последовательностями в зависимости от ситуации, которую определяют из совпадения между участками таких последовательностей.
Разработаны предпочтительные методы определения идентичности, чтобы определить наибольшее совпадение между анализируемыми последовательностями. Методы для определения идентичности и сходства систематизированы в общедоступных компьютерных программах. Предпочтительные методы с использованием компьютерных программ для определения идентичности и сходства между двумя последовательностями включают программы BLASTP и BLASTN, которые общедоступны в NCBI и других источниках (BLAST Manual, Altschul, S., et al., NCBI NLM NIH Bethesda, MD 20894). Предпочтительными параметрами для сравнения аминокислотных последовательностей с помощью BLASTP являются: gap open 11.0, gap extend 1, матрица Blosum 62.
Нуклеотидные последовательности, кодирующие ферменты, экспрессируемые в клетке настоящего изобретения, также могут быть определены по их способности гибридизоваться с нуклеотидными последовательностями, кодирующими NЛD(H)-зависимую фумаратредуктазу, имеющую последовательность SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 3, SEQ ID NO: 4 и/или SEQ ID NO: 6, в умеренных или в предпочтительно жестких условиях гибридизации. Жесткие условия гибридизации в этом документе определяют как условия, которые обеспечивают возможность последовательности нуклеиновой кислоты, состоящей по меньшей мере из приблизительно 25, предпочтительно из приблизительно 50 нуклеотидов, 75 или 100 и наиболее предпочтительно из приблизительно 200 или более нуклеотидов, гибридизоваться при температуре около 65°С в растворе, включающем примерно 1 М соль, предпочтительно 6 х SSC (хлорид натрия, цитрат натрия) или любой другой раствор, имеющий сравнимую ионную силу, и которые обеспечивают промывание при 65°С раствором, включающим примерно 0,1 М соль, или менее предпочтительно 0,2 х SSC, или любым другим раствором, имеющим сравнимую ионную силу. Предпочтительно гибридизацию проводят в течение ночи, т.е. в течение по меньшей мере 10 ч, и предпочтительно промывание проводят по меньшей мере в течение 1 ч с помощью по меньшей мере двух смен промывающего раствора. Эти условия обычно обеспечивают специфическую гибридизацию последовательностей, имеющих идентичность последовательностей, которая составляет около 90% или более.
Умеренные условия в этом документе определяют как условия, которые обеспечивают, чтобы последовательности нуклеиновых кислот, состоящие по меньшей мере из 50 нуклеотидов, предпочтительно из примерно 200 или более нуклеотидов, гибридизовались при температуре около 45°С в растворе, включающем примерно 1 М соль, предпочтительно 6 х SSC или любой другой раствор, имеющий сравнимую ионную силу, и которые обеспечивают промывание при комнатной температуре раствором, включающим примерно 1 М соль, предпочтительно 6 х SSC или любой другой раствор, имеющий срав
- 2 032726 нимую ионную силу. Предпочтительно гибридизацию проводят в течение ночи, т.е. в течение по меньшей мере 10 ч, и предпочтительно промывание проводят по меньшей мере в течение 1 ч с помощью по меньшей мере двух смен промывающего раствора. Эти условия обычно обеспечивают специфическую гибридизацию последовательностей, имеющих идентичность последовательностей, которая составляет до 50%. Специалист в этой области техники сможет модифицировать эти условия гибридизации, чтобы специфически идентифицировать последовательности, различающиеся по идентичности в диапазоне от 50 до 90%.
Для повышения вероятности того, что введенный фермент (ферменты) экспрессируется/экспрессируются в активной форме в эукариотической клетке настоящего изобретения, соответствующую кодирующую нуклеотидную последовательность можно приспособить таким образом, чтобы оптимизировать частоту использования кодона для выбранной эукариотической клетки-хозяина. В этой области техники известны несколько способов оптимизации кодонов. Предпочтительный способ оптимизации частоты использования кодонов нуклеотидных последовательностей для эукариотической клетки представляет собой технологию оптимизации пары кодонов, раскрытую в WO2008/000632. Оптимизация пары кодонов представляет собой метод для продуцирования полипептида в клетке-хозяина, где нуклеотидные последовательности, кодирующие полипептид, были модифицированы с учетом частоты использования их кодонов, в частности пар кодонов, которые используют для того, чтобы добиться улучшенной экспрессии нуклеотидной последовательности, кодирующей полипептид, и/или усовершенствованной продукции полипептида. Пары кодонов определяют как набор двух расположенных последовательно триплетов (кодонов) в кодирующей последовательности.
Термин ген, используемый в этом документе, относится к последовательности нуклеиновой кислоты, содержащей матрицу для полимеразы нуклеиновых кислот, в эукариотах - РНК-полимеразу II. Гены транскрибируются в мРНК, которые затем транслируются в белок.
Термин нуклеиновая кислота, используемый в этом документе, включает отсылку к дезоксирибонуклеотидному или рибонуклеотидному полимеру, например полинуклеотиду как в одноцепочечной, так и в двухцепочечной форме, и, за исключением ограниченных случаев, охватывает известные аналоги, обладающие основными свойствами природных нуклеотидов, так как они гибридизуются с одноцепочечными нуклеиновыми кислотами так же, как и встречающиеся в природе нуклеотиды (например, пептид-нуклеиновые кислоты). Полинуклеотид может быть полноразмерным или подпоследовательностью нативного или гетерологичного структурного или регуляторного гена. Если специально не указано, термин включает отсылку к специфической последовательности, а также к последовательности, комплементарной ей.
Термины полипептид, пептид и белок используют в этом документе взаимозаменяемо при отсылке к полимеру, состоящему из аминокислотных остатков. Термины применяют в отношении аминокислотных полимеров, в которых один или более аминокислотных остатков представляют собой искусственный химический аналог соответствующей встречающейся в природе аминокислоты, а также в отношении полимеров, состоящих из встречающихся в природе аминокислот. Обязательным свойством таких аналогов встречающихся в природе аминокислот является то, что если они включены в белок, то белок специфически реагирует с антителами, которые известны для того же белка, но полностью состоящего из встречающихся в природе аминокислот. Термины полипептид, пептид и белок также охватывают модификации, без ограничения включающие гликозилирование, присоединение липидов, сульфатирование, гамма-карбоксилирование остатков глутаминовой кислоты, гидроксилирование и ADP-рибозилирование.
Термин фермент, используемый в этом документе, определяют как белок, который катализирует (био)химическую реакцию в клетке.
Обычно нуклеотидная последовательность, кодирующая фермент, функционально связана с промотором, который вызывает достаточно хорошую экспрессию соответствующей нуклеотидной последовательности в эукариотической клетке в соответствии с настоящим изобретением, чтобы обеспечивать способность клетки продуцировать янтарную кислоту.
Используемый в этом документе термин функционально связанный относится к присоединению полинуклеотидных элементов (или кодирующих последовательностей или последовательности нуклеиновой кислоты) с целью создания функциональной зависимости. Последовательность нуклеиновой кислоты является функционально связанной, если ее помещают в функциональную зависимость от другой последовательности нуклеиновой кислоты. Например, промотор или энхансер являются функционально связанными с кодирующей последовательностью, если они влияют на транскрипцию кодирующей последовательности.
Используемый в этом документе термин промотор относится к фрагменту нуклеиновой кислоты, который функционирует для того, чтобы контролировать транскрипцию одного или более генов, фрагмент локализован перед сайтом инициации транскрипции гена в 3'-5'-направлении относительно транскрипции и структурно определяется по присутствию участка связывания ДНК-зависимой РНКполимеразы, участков инициации транскрипции и любых других последовательностей ДНК, известных специалистам в этой области техники. Конститутивный промотор - это промотор, который активен в
- 3 032726 большинстве условий, относящихся к окружающей среде или развитию. Индуцибельный промотор это промотор, который активен в условиях регулирования окружающей среды или развития.
Промотор, который можно было бы использовать для того, чтобы добиться экспрессии нуклеотидной последовательности, кодирующей фермент, например ПЛП(П)-зависимую фумаратредуктазу или любой другой фермент, введенный в эукариотическую клетку настоящего изобретения, может не быть природным в отношении экспрессируемой нуклеотидной последовательности, кодирующей фермент, т.е. является промотором, гетерологичным в отношении нуклеотидной последовательности (кодирующей последовательности), с которой он функционально связан. Предпочтительно промотор является гомологичным, т.е. эндогенным для клетки-хозяина.
Подходящие промоторы в этом контексте включают как конститутивные, так и индуцибельные природные промоторы, а также сконструированные промоторы, которые хорошо известны специалисту в этой области техники. Подходящими промоторами в эукариотических клетках-хозяина могут быть GAL7, GAL10 или GAL 1, CYC1, HIS3, ADH1, PGL, РН05, GAPDH, ADC1, TRP1, URA3, LEU2, ENO, TPI и ЛОХ1. Другие подходящие промоторы включают PDC, GPD1, PGK1, TEF1 и TDH.
Обычно нуклеотидная последовательность, кодирующая фермент, включает терминатор. Любой терминатор, который является функциональным в эукариотической клетке, может использоваться в настоящем изобретении. Предпочтительные терминаторы получают из природных генов клетки-хозяина. Подходящие терминаторные последовательности хорошо известны в этой области техники. Предпочтительно такие терминаторы используют совместно с мутациями, которые предотвращают нонсенсопосредованное разрушение мРНК в клетке-хозяина в соответствии с изобретением (смотри, например, Shirley et al., 2002, Genetics 161:1465-1482).
В предпочтительном воплощении нуклеотидную последовательность, кодирующую NAD(H)зависимую фумаратредуктазу, можно суперэкспрессировать, чтобы достичь достаточно хорошей продукции янтарной кислоты клеткой.
Существуют различные средства, доступные в этой области техники, для суперэкспрессии нуклеотидных последовательностей, кодирующих ферменты в эукариотической клетке настоящего изобретения. В частности, нуклеотидную последовательность, кодирующую фермент, можно суперэкспрессировать путем увеличения количества копий гена, кодирующего фермент в клетке, например путем введения дополнительных копий гена в геном клетки, путем экспрессирования гена из центромерного вектора, из эписомального мультикопийного экспрессионного вектора или с помощью введения (эписомального) экспрессионного вектора, который включает множественные копии гена. Предпочтительно суперэкспресию фермента в соответствии с изобретением достигают с помощью (сильного) конститутивного промотора.
Изобретение также относится к нуклеотидной конструкции, включающей одну или несколько нуклеотидных последовательностей, выбираемых из группы, состоящей из SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 9 или SEQ ID NO: 10.
Конструкция нуклеиновой кислоты может быть плазмидой, например низкокопийной плазмидой или высококопийной плазмидой. Эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением может включать единственную копию, но предпочтительно включает много копий нуклеотидной последовательности, кодирующей NЛD(П)-зависимую фумаратредуктазу, например, путем использования множественных копий нуклеотидной конструкции.
Конструкция нуклеиновой кислоты может поддерживаться эписомально и, таким образом, включает последовательность для автономной репликации, такую как аутосомная репликационная последовательность. Если эукариотическая клетка происходит из грибов, то в основе подходящей эписомальной конструкции нуклеиновой кислоты могут быть, например, дрожжевые плазмиды 2μ или pKD1 (Gleer et al., 1991, Biotechnology 9: 968-975) или плазмиды ЛМЛ (Fierro et al., 1995, Curr Genet. 29:482-489). Альтернативно, каждую конструкцию нуклеиновой кислоты можно ввести в одной или в нескольких копиях в геном эукариотической клетки. Интегрирование в клеточный геном может происходить случайным образом с помощью негомологичной рекомбинации, но предпочтительно конструкцию нуклеиновой кислоты можно вводить в клеточный геном с помощью гомологичной рекомбинации, как хорошо известно в этой области техники.
Нуклеотидная последовательность, кодирующая NAD(П)-зависимую фумаратредуктазу, может быть гетерологичной или гомологичной нуклеотидной последовательностью. Предпочтительно NADHзависимая фумаратредуктаза является гетерологичным ферментом, который может иметь любое подходящее происхождение, например может происходить из бактерий, грибов, простейших или растений. Предпочтительно клетка в соответствии с изобретением включает гетерологичную NЛD(П)-зависимую фумаратредуктазу, предпочтительно имеющую происхождение из Trypanosoma sp., например из Trypanosoma brucei.
В предпочтительном воплощении нуклеотидная последовательность, кодирующая NAD(H)зависимую фумаратредуктазу, экспрессируется в цитозоле. Неожиданно цитозольная активность фермента привела к повышенному продуцированию янтарной кислоты эукариотической клеткой.
В случае если нуклеотидная последовательность, кодирующая NAD(П)-зависимую фумаратредук
- 4 032726 тазу, включает сигнал, направляющий фермент в пероксисомы или митохондрии, может быть необходимым модифицировать или удалить некоторое количество аминокислот (или соответствующие нуклеотидные последовательности в кодирующей нуклеотидной последовательности), чтобы предотвратить направление фермента в пероксисомы или митохондрии. Присутствие сигнала, направляющего фермент в пероксисомы, можно, например, определить с помощью метода, раскрытого в работе Schluter et al, Nucleic acid Research 2007, 35, D815-D822.
Предпочтительно для проявления активности фермента в цитозоле после экспрессии кодирующей нуклеотидной последовательности NAD(H)-зависимая фумаратредуктаза утрачивает сигнальную последовательность, направляющую ее в пероксисомы или митохондрии.
Предпочтительно клетка экспрессирует нуклеотидную последовательность, кодирующую фермент, который катализирует образование янтарной кислоты, где нуклеотидная последовательность предпочтительно кодирует NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу, предпочтительно фумаратредуктазу, включающую аминокислотную последовательность, которая имеет по меньшей мере 40%, предпочтительно по меньшей мере 45, 50, 55, 60, 65 70, 75, 80, 85, 90, 95, 97, 98, 99% идентичности последовательности с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 3 и/или SEQ ID NO: 6. Предпочтительно нуклеотидная последовательность кодирует NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу, включающую аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 3 и/или SEQ ID NO: 6.
Эукариотическая клетка, выбираемая из группы, состоящей из дрожжей и мицелиальных грибов, предпочтительно принадлежит одному из родов Saccharomyces, Aspergillus, Penicillium, Pichia, Kluyveromyces, Yarrowia, Candida, Hansenula, Humicola, Rhizopus, Torulaspora, Trichosporon, Brettanomyces, Zygosaccharomyces, Pachysolen или Yamadazyma. Наиболее предпочтительной эукариотической клеткой является Saccharomyces cervisiae, Saccharomyces uvarum, Saccharomyces bayanus, Aspergillus niger, Penicillium chrysogenum, Pichia stipidis, Kluyveromyces marxianus, K. lactis, K. thermotolerans, Yarrowia lipolytica, Candida sonorensis, C. glabrata, Hansenula polymorpha, Torulaspora delbrueckii, Brettanomyces bruxellensis, Rhizopus orizae или Zygosaccharomyces bailii.
Кроме нуклеотидной последовательности, кодирующей NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу, которая катализирует превращение фумаровой кислоты в янтарную кислоту, рекомбинантная эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением может включать дополнительные генетические модификации, например мутации, делеции или повреждения, в гомологичных нуклеотидных последовательностях и/или трансформацию нуклеотидными последовательностями, которые кодируют гомологичные или гетерологичные ферменты, которые катализируют реакцию в клетке, приводящую к увеличению потока в направлении янтарной кислоты. Может быть, например, полезным вводить, генетически модифицировать и/или суперэкспрессировать гетерологичные и/или гомологичные нуклеотидные последовательности, кодирующие i) фермент, который катализирует превращение фосфоенолпирувата или пирувата в оксалоацетат; ii) малатдегидрогеназу, которая катализирует превращение ОАА в яблочную кислоту; или iii) фумаразу, которая катализирует превращение яблочной кислоты в фумаровую кислоту.
Эукариотическую клетку можно трансформировать или генетически модифицировать с помощью любой подходящей нуклеотидной последовательности, кодирующей фермент, катализирующий реакцию превращения молекулы C3 с тремя углеродными атомами в молекулу С4 с четырьмя углеродными атомами, такую как превращение фосфоенолпирувата (PEP, C3) в оксалоацетат (ОАА, С4) и пирувата (C3) в ОАА или яблочную кислоту (С4). Подходящими ферментами являются PEP-карбоксикиназа (ЕС 4.1.1.49, ЕС 4.1.1.38) и PEP-карбоксилаза (ЕС 4.1.1.31), которые катализируют превращение PEP в ОАА; пируваткарбоксилаза (ЕС 6.4.1.1.), которая катализирует реакцию превращения пирувата в ОАА; или маликфермент (ЕС 1.1.1.38), который катализирует реакцию превращения пирувата в яблочную кислоту.
Предпочтительно эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением суперэкспрессирует нуклеотидную последовательность, кодирующую пируваткарбоксилазу (PYC), предпочтительно пируваткарбоксилазу, которая активна в цитозоле после экспрессии нуклеотидной последовательности, кодирующей PYC, например PYC, включающей аминокислотную последовательность в соответствии с SEQ ID NO: 41. Предпочтительно суперэкспрессируют эндогенную или гомологичную пируваткарбоксилазу. Неожиданно было обнаружено, что суперэкспрессия эндогенной пируваткарбоксилазы приводила к повышенному уровню продукции янтарной кислоты эукариотической клеткой в соответствии с настоящим изобретением.
В другом предпочтительном воплощении эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением дополнительно включает нуклеотидную последовательность, кодирующую гетерологичную PEP-карбоксикиназу (ЕС 4.1.1.49), катализирующую реакцию превращения фосфоенолпирувата в оксалоацетат. Неожиданно было обнаружено, что эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением, которая дополнительно включает гетерологичную PEP-карбоксикиназу, продуцировала повышенное количество янтарной кислоты по сравнению с эукариотической клеткой, которая не включает гетерологичную PEP-карбоксикиназу. Предпочтительно PEP-карбоксикиназа происходит из бактерий, более предпочтительно фермент, обладающий PEP-карбоксикиназной активностью, происходит из Escherichia coli, Mannheimia sp., Actinobacillus sp. или Anaerobiospirillum sp., более предпочтительно из Mannheimia succiniciproducens, Actinobacillus succinogenes или Anaerobiospirillum succiniciproducens.
- 5 032726
Предпочтительно PEP-карбоксикиназа активна в цитозоле после экспрессии нуклеотидной последовательности, кодирующей PEP-карбоксикиназу, так как было обнаружено, что это приводит к повышению продукции янтарной кислоты. В одном воплощении PEP-карбоксикиназу Actinobacillus succinogenes (PCKa) модифицировали для того, чтобы заменить EGY в положении 120-122 на аминокислотную последовательность DAF. Предпочтительно эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением включает PEP-карбоксикиназу, которая имеет по меньшей мере 80, 85, 90, 95 или 99% идентичности последовательности с SEQ ID NO: 14 или SEQ ID NO: 17, предпочтительно PEP-карбоксикиназу, включающую SEQ ID NO: 14 или SEQ ID NO: 17. Неожиданно было обнаружено, что сопутствующая (супер)экспрессия PYC и PEP-карбоксикиназы, как было описано в этом документе, приводила по меньшей мере к 1,5-ному увеличению продукции янтарной кислоты.
В другом предпочтительном воплощении клетка в соответствии с настоящим изобретением дополнительно включает нуклеотидную последовательность, кодирующую малатдегидрогеназу (MDH), которая после экспрессии нуклеотидной последовательности активна в цитозоле. Цитозольная MDH может быть любой подходящей гомологичной или гетерологичной малатдегидрогеназой. MDH может быть MDH3 S. cerevisiae или MDH1 S. cerevisiae. Предпочтительно для локализации фермента в цитозоле MDH не содержит сигнальную последовательность, направляющую ее в пероксисомы или митохондрии.
Альтернативно, MDH является MDH2 S. cerevisiae, которую модифицировали таким образом, чтобы она не инактивировалась в присутствии глюкозы и была активна в цитозоле. Известно, что после добавления глюкозы к клеткам, истощенным по глюкозе, транскрипция MDH2 подавляется и Mdh2p разрушается. Mdh2p, у которой удалены первые 12 N-концевых аминокислотных остатков, менее восприимчива к распаду, индуцированному глюкозой (Minard and McAlister-Henn, J. Biol Chem. 1992? Aug 25; 267(24):17458-64). Предпочтительно эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением включает нуклеотидную последовательность, кодирующую малатдегидрогеназу, которая имеет по меньшей мере 70%, предпочтительно по меньшей мере 75, 80, 85, 90, 92, 94, 95, 96, 97, 98, 99% идентичности последовательности с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 19 или SEQ ID NO: 21. Предпочтительно малатдегидрогеназа включает SEQ ID NO: 19 или SEQ ID NO: 21. Предпочтительно активность малатдегидрогеназы повышается путем суперэкспрессии кодирующей нуклеотидной последовательности с помощью методов, известных в этой области техники.
Предпочтительно эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением дополнительно включает нуклеотидную последовательность, кодирующую фермент, который катализирует превращение яблочной кислоты в фумаровую кислоту, который может быть гетерологичным или гомологичным ферментом, например фумаразой (FUM). Нуклеотидная последовательность, кодирующая гетерологичный фермент, который катализирует превращение яблочной кислоты в фумаровую кислоту, может быть любого подходящего происхождения, предпочтительно он может происходить из микроорганизмов, предпочтительно из дрожжей, например из Saccharomyces cerevisiae, или мицелиальных грибов, например Rhizopus oryzae. Предпочтительно эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением включает нуклеотидную последовательность, кодирующую фумаразу, которая имеет по меньшей мере 70%, предпочтительно по меньшей мере 75, 80, 85, 90, 92, 94, 95, 96, 97, 98 или 99% идентичности последовательности с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 23. Предпочтительно фумараза включает SEQ ID NO: 23. Предпочтительно фермент, обладающий фумаразной активностью, после экспрессии нуклеотидной последовательности, кодирующей фермент, обладающий фумаразной активностью, активен в цитозоле. Неожиданно было обнаружено, что эукариотическая клетка, дополнительно включающая фермент, обладающий фумаразной активностью, как было описано в этом документе, продуцировала повышенное количество янтарной кислоты.
В другом воплощении эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением включает нуклеотидную последовательность, кодирующую белок, транспортирующий дикарбоновые кислоты, предпочтительно белок, транспортирующий яблочную кислоту (МАЕ). Белок, транспортирующий дикарбоновые кислоты, может быть гомологичным или гетерологичным белком. Предпочтительно белок, транспортирующий дикарбоновые кислоты, является гетерологичным белком. Белок, транспортирующий дикарбоновые кислоты, может происходить из любого подходящего организма, предпочтительно из Schizosaccharomyces pombe. Предпочтительно белок, транспортирующий дикарбоновые кислоты, является белком, транспортирующим яблочную кислоту (МАЕ), который имеет по меньшей мере 80, 85, 90, 95 или 99% идентичности последовательности с SEQ ID NO: 36. Предпочтительно МАЕ включает SEQ ID NO: 36. Неожиданно было обнаружено, что эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением, дополнительно включающая транспортер дикарбоновых кислот, например транспортер яблочной кислоты, как было описано в этом документе, продуцировала повышенное количество янтарной кислоты по сравнению с эукариотической клеткой, не включающей белок, транспортирующий дикарбоновые кислоты.
Настоящее изобретение также относится к применению транспортера дикарбоновых кислот, предпочтительно белка, транспортирующего яблочную кислоту, в эукариотической клетке для повышения продукции янтарной кислоты. Предпочтительно транспортер яблочной кислоты происходит из Schizosaccharomyces pombe.
- 6 032726
В предпочтительном воплощении эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением представляет собой клетку дрожжей, включающую нуклеотидные последовательности, кодирующие МЛПда-зависимую фумаратредуктазу, малатдегидрогеназу, гетерологичную фумаразу, гетерологичную PEP-карбоксикиназу и гетерологичный транспортер дикарбоновых кислот, и суперэкспрессирует пируваткарбоксилазу (PYC), как было описано, в том числе в предпочтительных воплощениях, указанных выше. Неожиданно было обнаружено, что дрожжи настоящего изобретения, включающие нуклеотидные последовательности, кодирующие ферменты, описанные в этом документе, продуцировали повышенное количество янтарной кислоты по сравнению с дрожжами, включающими лишь какую-либо одну из нуклеотидных последовательностей.
В другом предпочтительном воплощении эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением включает ферменты, которые превращают NAD(H) в NAD', с активностью, сниженной по сравнению с активностями этих ферментов в клетке дикого типа.
Предпочтительно клетка в соответствии с настоящим изобретением представляет собой клетку, в которой по меньшей мере один ген, кодирующий алкогольдегидрогеназу, не является функциональным. Термин ген алкогольдегидрогеназы, который не является функциональным в этом документе применяют для описания эукариотической клетки, которая включает алкогольдегидрогеназу с активностью, сниженной по сравнению с клеткой, в которой все гены, кодирующие алкогольдегидрогеназу, являются функциональными. Ген может становиться нефункциональным при помощи методов, известных в этой области техники, например с помощью мутации, разрушения или делеции, например с помощью метода, раскрытого в работе Gueldener et. al. 2002, Nucleic Acids Research, Vol. 30, No. 6, e23. Предпочтительно эукариотическая клетка представляет собой клетку дрожжей, например Saccharomyces cerevisiae, в которой один или несколько генов adhl и/или adh2, кодирующих алкогольдегидрогеназу, инактивированы.
Предпочтительно клетка в соответствии с настоящим изобретением дополнительно включает по меньшей мере один ген, кодирующий глицерол-3-фосфатдегидрогеназу, который не является функциональным. Термин ген глицерол-3-фосфатдегидрогеназы, который не является функциональным, в этом документе применяют для описания эукариотической клетки, которая включает глицерол-3фосфатдегидрогеназу с активностью, сниженной, например, с помощью мутации, разрушения или делеции гена, кодирующего глицерол-3-фосфатдегидрогеназу, в результате чего уменьшается образование глицерина по сравнению с клеткой дикого типа. Неожиданно было обнаружено, что эукариотическая клетка, включающая алкогольдегидрогеназу и/или глицерол-3-фосфатдегидрогеназу со сниженной активностью и NЛD(H)-зависимую фумаразу, обеспечивала повышенную продукцию янтарной кислоты по сравнению с клеткой, в которой один или несколько генов, кодирующих алкогольдегидрогеназу и/или глицерол-3-фосфатдегидрогеназу, не являются инактивированными.
Настоящее изобретение также относится к способу продукции янтарной кислоты, включающему ферментацию в эукариотической клетке, включающей по меньшей мере один ген, кодирующий алкогольдегидрогеназу, который не является функциональным, и/или по меньшей мере один ген, кодирующий глицерол-3-фосфатдегидрогеназу, который не является функциональным.
В другом предпочтительном воплощении рекомбинантная эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением включает по меньшей мере один ген, кодирующий сукцинатдегидрогеназу, которая не является функциональной. Термин сукцинатдегидрогеназа, которая не является функциональной, в этом документе применяют для описания эукариотической клетки, которая включает сукцинатдегидрогеназу с активностью, сниженной с помощью мутации, разрушения или делеции по меньшей мере одного гена, кодирующего сукцинатдегидрогеназу, в результате чего увеличивается продукция янтарной кислоты по сравнению с клеткой дикого типа. Эукариотическая клетка, включающая ген, кодирующий сукцинатдегидрогеназу, которая не является функциональной, может быть клеткой Aspergillus niger, предпочтительно клеткой Aspergillus niger, в которой один или несколько генов, кодирующих сукцинатдегидрогеназу, таких как sdhA и sdhB, не являются функциональными, например, в результате делеции этих генов.
Предпочтительно эукариотическая клетка в соответствии с изобретением является клеткой дрожжей, предпочтительно клеткой Saccharomyces cerevisiae, предпочтительно клеткой Saccharomyces cerevisiae, включающей одну или несколько нуклеотидных последовательностей, выбираемых из SEQ ID NO: 9 и SEQ ID NO: 10. Эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением также может быть клеткой мицелиальных грибов, предпочтительно клеткой A. niger, предпочтительно клеткой А. niger, включающей одну или несколько нуклеотидных последовательностей, выбираемых из SEQ ID NO: 7 и SEQ ID NO: 8.
Предпочтительно эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением, включающая любую одну из генетических модификаций, описанных в этом документе, способна к продуцированию по меньшей мере 0,3, 0,5, 0,7 г/л янтарной кислоты, предпочтительно по меньшей мере 1 г/л янтарной кислоты, предпочтительно по меньшей мере 1,5, предпочтительно по меньшей мере 2 или 2,5, 4,5, предпочтительно по меньшей мере 8, 10, 15 или 20 г/л янтарной кислоты, но обычно меньше 200 или меньше 150 г/л.
Предпочтительная эукариотическая клетка в соответствии с настоящим изобретением может быть
- 7 032726 способной к росту на любом подходящем источнике углерода, известным в этой области техники, и способной превращать его в янтарную кислоту. Эукариотическая клетка может быть способной непосредственно превращать растительную биомассу, целлюлозы, гемицеллюлозы, пектины, рамнозу, галактозу, фукозу, мальтозу, мальтодекстрины, рибозу, рибулозу или крахмал, производные крахмала, сахарозу, лактозу и глицерин. Вследствие этого, предпочтительный организм хозяина экспрессирует ферменты, такие как целлюлаза (эндоцеллюлаза и экзоцеллюлаза) и гемицеллюлаза (например, эндо- и экзоксиланазы, арабиназы), необходимые для превращения целлюлозы в мономеры глюкозы и гемицеллюлозы в мономеры ксилозы и арабинозы, пектиназы, способные превращать пектины в глюкуроновую кислоту и галактуроновую кислоту, или амилазы, чтобы превращать крахмал в мономеры глюкозы.
Предпочтительно клетка способна превращать источник углерода, выбираемый из группы, состоящей из глюкозы, фруктозы, галактозы, ксилозы, арабинозы, сахарозы, раффинозы, лактозы и глицерина.
В другом аспекте настоящее изобретение относится к способу получения янтарной кислоты, включающему ферментацию эукариотической клетки в соответствии с настоящим изобретением, в которой получают янтарную кислоту.
Было установлено полезным применять эукариотическую клетку в соответствии с изобретением в способе продукции янтарной кислоты, так как большинство эукариотических клеток не нуждаются в стерильных условиях для того, чтобы размножаться, и нечувствительны к бактериофаговым инфекциям.
Предпочтительно янтарную кислоту, которую получают с помощью способа в соответствии с настоящим изобретением, затем превращают в требуемый продукт. Требуемый продукт, например, может быть полимером, таким как полибутиленоянтарная кислота (PBS), противогололедное средство или поверхностно-активное средство.
Способ в соответствии с настоящим изобретением может осуществляться в аэробных и анаэробных условиях. Предпочтительно способ осуществляют в анаэробных условиях или в микроаэрофильных условиях или в условиях с ограниченным содержанием кислорода. Способ анаэробной ферментации в этом документе определяют как способ ферментации, осуществляемый в отсутствие кислорода или в котором, по существу, не потребляется кислород, т.е. потребляется предпочтительно менее чем 5, 2,5 или 1 ммоль/л/ч, и где органические молекулы служат как донорами электронов, так и акцепторами электронов.
Способ ферментации при пониженном содержании кислорода представляет собой способ, в котором потребление кислорода ограничено транспортом кислорода из газовой фазы в жидкость. Степень ограничения поступления кислорода определяется количеством и композицией поступающего потока газа, а также фактическими характеристиками используемого оборудования для ферментации для смешивания/переноса массы. Предпочтительно в способе в условиях пониженного содержания кислорода скорость потребления кислорода составляет по меньшей мере 5,5, более предпочтительно по меньшей мере 6 и еще более предпочтительно по меньшей мере 7 ммоль/л/ч.
Способ продукции янтарной кислоты в соответствии с настоящим изобретением можно осуществлять при любом подходящем значении рН в диапазоне от 1 до 9. Предпочтительно рН питательной среды для ферментации составляет диапазон от 2 до 7, предпочтительно диапазон от 3 до 5. Было установлено полезным обеспечивать выполнение способа в соответствии с настоящим изобретением при низких значениях рН, так как это предотвращает бактериальное загрязнение. Кроме того, так как при продуцировании янтарной кислоты снижается рН среды, для поддержания рН на требуемом уровне может понадобиться небольшое количество раствора для титрования.
Подходящая температура, при которой осуществляют способ в соответствии с настоящим изобретением, составляет диапазон от 5 до 60°С, предпочтительно диапазон от 10 до 50°С, более предпочтительно диапазон от 15 до 35°С, более предпочтительно диапазон от 18 до 30°С. Специалисту в этой области техники известно, какие оптимальные температуры являются подходящими для ферментации в эукариотической клетке.
Предпочтительно янтарную кислоту извлекают из питательной среды для ферментации с помощью подходящего метода, известного в этой области техники, например с помощью кристаллизации и осаждения солями аммония.
Предпочтительно янтарную кислоту, которую получают с помощью способа в соответствии с настоящим изобретением, затем превращают в фармацевтический, косметический, пищевой, кормовой или химический продукт. Янтарную кислоту можно затем превратить в полимер, такой как полибутиленсукцинат (PBS), или другие подходящие полимеры, полученные из него.
Настоящее изобретение также относится к питательной среде для ферментации, включающей янтарную кислоту, получаемую с помощью способа в соответствии с настоящим изобретением.
Изобретение относится к способу продукции янтарной кислоты с помощью дрожжей или мицелиальных грибов в качестве продуцентов янтарной кислоты, в соответствии с чем для увеличения продукции янтарной кислоты используют фумаратредуктазу Trypanosoma, где предпочтительно фумаратредуктаза активна в цитозоле.
Г енетические модификации.
Стандартные генетические методы, такие как суперэкспрессия ферментов в клетках-хозяина, гене
- 8 032726 тическая модификация клеток-хозяина или методы гибридизации, известны в этой области техники и описаны, например, в работах Sambrook and Russel (2001) Molecular Cloning: A Laboratory Manual (3rd edition), Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor Laboratory Press, или F. Ausubel et al, eds., Current protocols in molecular biology, Green Publishing and Wiley Interscience, New York (1987). Методы трансформации, генетическая модификация и т.п. для клеток грибов известны, например, из ЕР-А-0 635 574, WO 98/46772, WO 99/60102 и WO 00/37671, WO90/14423, ЕР-А-0481008, ЕР-А-0635 574 и US 6,265,186.
Приведенные ниже примеры предназначены только в иллюстративных целях и не должны рассматриваться как ограничение настоящего изобретения.
Краткое описание чертежей
Фиг. 1 - карта вектора pGBTOP-11, используемого для экспрессии фумаратредуктазы в A. niger.
Фиг. 2 - карта плазмиды pGBS414SUS-07, кодирующей митохондриальную фумаратредуктазу m1(FRDm1) Trypanosoma brucei, для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 3 - карта плазмиды of pGBS414SUS-08, кодирующей гликосомальную фумаратредуктазу (FRDg) Trypanosoma brucei, для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 4 - карта плазмиды pDEL-SDHA.
Фиг. 5 - карта плазмиды pGBTOPAn1 для суперэкспрессии FRDm1 в A. niger.
Фиг. 6 - схема замен в sdhA.
Фиг. 7 - карта плазмиды pGBS416FRD-1, кодирующей митохондриальную фумаратредуктазу m1 (FRDm1) Trypanosoma brucei, для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 8 - карта плазмиды pGBS416FRE-1, кодирующей гликосомальную фумаратредуктазу (FRDg) Trypanosoma brucei, для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 9 - карта плазмиды pGBS414PPK-1, содержащей PEP-карбоксикиназу Actinobacillus succinogenes (PCKa) для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Синтетическую генную конструкцию (промотор TDH1-PCKa-терминатор TDH1) клонировали в экспрессионный вектор pRS414. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 10 - карта плазмиды pGBS414PPK-2, содержащей PEP-карбоксикиназу Actinobacillus succinogenes (PCKa) и митохондриальную фумаратредуктазу m1 Trypanosoma brucei (FRDm1), для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Синтетические генные конструкции (промотор TDH1-PCKa-терминатор TDH1) и (промотор TDH3-FRDm1-терминатор TDH3) клонировали в экспрессионный вектор pRS414. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 11 - карта плазмиды pGBS414PPK-3, содержащей PEP-карбоксикиназу Actinobacillus succinogenes (PCKa) и гликосомальную фумаратредуктазу Trypanosoma brucei (FRDg), для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Синтетические генные конструкции (промотор TDH1-PCKa-терминатор TDH1) и (промотор TDH3-FRDg-терминатор TDH3) клонировали в экспрессионный вектор pRS414. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 12 - карта плазмиды pGBS414PEK-1, содержащей PEP-карбоксикиназу Mannheimia succiniciproducens (PCKm), для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Синтетическую генную конструкцию (промотор TDHLPCKm-терминатор TDH1) клонировали в экспрессионный вектор pRS414. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 13 - карта плазмиды pGBS414PEK-2, содержащей PEP-карбоксикиназу Mannheimia succiniciproducens (PCKm) и митохондриальную фумаратредуктазу m1 Trypanosoma brucei (FRDm1), для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Синтетические генные конструкции (промотор TDH1-PCKmтерминатор TDH1) и (промотор TDH3-FRDm1-терминатор TDH3) клонировали в экспрессионный вектор pRS414. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 14 - карта плазмиды pGBS414PEK-3, содержащей PEP-карбоксикиназу Mannheimia succiniciproducens (PCKm) и гликосомальную фумаратредуктазу Trypanosoma brucei (FRDg), для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Синтетические генные конструкции (промотор TDH1-PCKm-терминатор TDH1) и (промотор TDH3-FRDg-терминатор TDH3) клонировали в экспрессионный вектор pRS414. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 15 - карта плазмиды pGBS415FUM-2, содержащей фумаразу Rhizopus oryzae (FUMR) и цитоплазматическую малатдегидрогеназу Saccharomyces cerevisiae, укороченную на первые 12 аминокислот (дельта12N MDH2), для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Синтетические генные конструкции (промотор TDH1-FUMR-терминатор TDH1) и (промотор TDH3-MDH3-терминатор TDH3) клонировали в экспрессионный вектор pRS415. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 16 - карта плазмиды pGBS415FUM-3, содержащей фумаразу Rhizopus oryzae (FUMR) и пероксисомальную малатдегидрогеназу Saccharomyces cerevisiae (MDH3), для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Синтетические генные конструкции (промотор TDH1-FUMR-терминатор TDH1) и (промотор
- 9 032726
ТПНЗ-МПНЗ-терминатор TDH3) клонировали в экспрессионный вектор pRS415. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 17 - уровни янтарной кислоты в штаммах SUC-101 (О, контроль с пустым вектором), SUC148 (, суперэкспрессия PCKa, MDH3, FUMR, FRDm1), SUC-149 (□, PCKa, MDH3, FUMR, FRDg), SUC150 (♦, PCKm, MDH3, FUMR, FRDm1), SUC-151 (O, PCKm, MDH3, FUMR, FRDg), SUC-152 (·, PCKa, MDH3, FUMR), SUC-154 (X, PCKm, MDH3, FUMR) и SUC-169 (A, PCKm, дельта12NMDH2, FUMR, FRDm1). Все суперэкспрессированные гены были оптимизированы по кодоновым парам для экспрессии в S. cerevisiae. Все данные представлены в виде средних значений для 3 независимых экспериментов по выращиванию SUC-148, 149, 150, 151, 152, 154 и SUC-169 и в виде средних значений для 6 независимых экспериментов по выращиванию SUC-101.
Фиг. 18 - карта плазмиды pRS416MAE-1, содержащей малатпермеазу Schizosaccharomyces pombe (SpMAE1), для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Синтетическую генную конструкцию (промотор Eno1-МАЕ1-терминатор Eno1) клонировали в экспрессионный вектор pRS416. CPO означает оптимизированную кодоновую пару.
Фиг. 19 - уровни янтарной кислоты в штаммах SUC-101 (О, контроль с пустым вектором), SUC169 (A, PCKm, дельта12NMDH2, FUMR, FRDm1) и SUC-194 PCKm, дельта12NMDH2, FUMR, FRDm1, SpMAE1). Все суперэкспрессированные гены были оптимизированы по кодоновым парам для экспрессии в S. cerevisiae. Все данные представлены в виде средних значений для 3 независимых экспериментов по выращиванию SUC-169 и SUC-194 и в виде средних значений для 6 независимых экспериментов по выращиванию SUC-101.
Фиг. 20 - уровни янтарной кислоты в штаммах SUC-103 (О, делеционный мутант adh1/2 и gpd1; контроль с пустым вектором), SUC-201 (□, делеционный мутант adh1/2 и gpd1; PCKa, MDH3, FUMR, FRDg) и SUC-200 (, делеционный мутант adh1/2 и gpd1; PCKa, MDH3, FUMR, FRDg, SpMAE1). Все суперэкспрессированные гены были оптимизированы по кодоновым парам для экспрессии в S. cerevisiae.
Фиг. 21 - карта плазмиды pGBS426PYC-2, содержащей пируваткарбоксилазу Saccharomyces cerevisiae, для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Нуклеотидную последовательность, кодирующую PYC2, получали методом ПЦР, используя геномную ДНК штамма CEN.PK113-5D в качестве матрицы, и продукт ПЦР клонировали в экспрессионный вектор p426GPD.
Фиг. 22 - карта плазмиды pGBS414FRE-1, кодирующей гликосомальную фумаратредуктазу (FRDg) Trypanosoma brucei, для экспрессии в Saccharomyces cerevisiae. Синтетическую генную конструкцию (промотор TDH3-FRDg-терминатор TDH3) клонировали в экспрессионный вектор pRS414.
Фиг. 23 - уровни янтарной кислоты в штаммах SUC-226 (□, PCKa, MDH3, FUMR, FRDg), SUC-227 (A, PYC2, PCKa, MDH3, FUMR, FRDg), SUC-228 (, PYC2, MDH3, FUMR, FRDg) и SUC-230 (O, MDH3, FUMR, FRDg). Данные представлены в виде средних значений для 3 независимых экспериментов по выращиванию.
Сведения, подтверждающие возможность осуществления изобретения
Примеры.
Пример 1. Клонирование фумаратредуктаз Trypanosoma brucei в Aspergillus niger.
1.1. Экспрессионные конструкции.
Митохондриальную фумаратредуктазу m1 (FRDm1) [E.C. 1.3.1.6] Trypanosoma brucei, номер доступа в GenBank 60460035, анализировали на присутствие сигнальной последовательности с помощью программы SignalP 3.0 (http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/) Bendtsen, J. et al. (2004) Mol. Biol., 340:783795 и TargetP 1.1 (http://www.cbs.dtu.dk/services/TargetP/) Emanuelsson, O. et al. (2007) Nature Protocols 2, 953-971. В N-концевой половине белка была идентифицирована предполагаемая последовательность, направляющая в митохондрии, включающая возможный участок расщепления между положениями 25 и 26 (D-S).
Было показано, что рекомбинантный белок FRDm1, лишенный 68 N-концевых остатков, был релокализован в цитозоле проциклических трипаносом (Coustou et al., J Biol Chem. 2005 Apr 29; 280(17): 16559-70). Эти результаты указывают на то, что предполагаемый N-концевой сигнальный мотив FRDm1 необходим для направления белка в митохондрии. Из SEQ ID NO: 1 удаляли первые 68 аминокислот (соответствует нуклеотидной последовательности SEQ ID NO: 2) и вставляли новую аминокислоту метионин, что приводило к получению SEQ ID NO: 3. SEQ ID NO: 3 подвергали обработке с помощью метода оптимизации пар кодонов, раскрытого в WO2008/000632 для A. niger. Полученную последовательность SEQ ID NO: 7 помещали позади конститутивной промоторной последовательности GPDA SEQ ID NO: 11, в которой последовательности из 10 последних нуклеотидов заменяли на оптимальную последовательность Козака CACCGTAAA. Добавляли подходящие сайты рестрикции. Стоп-кодон ТАА в SEQ: ID NO: 7 заменяли на ТААА. Полученную последовательность синтезировали в Sloning (Puchheim, Germany). Фрагмент клонировали по сайтам рестрикции SnaBI и SfiI в вектор pGBTOP11 для экспрессии в A. niger (фиг. 1), используя подходящие сайты рестрикции. Полученную плазмиду, включающую FRDm1, назвали pGBTOPAn1 (фиг. 5).
Аналогичным образом гликосомальную фумаратредуктазу (FRDg) [E.C. 1.3.1.6] Trypanosoma brucei, код доступа в GenBank 23928422, анализировали на присутствие последовательности, направляющей
- 10 032726 белок в пероксисомы у мицелиальных грибов, с помощью PTSl-предиктора http://mendel.imp.ac.at/mendeljsp/sat/pts1/PTS1predictor.jsp с предсказывающей функцией, специфичной для грибов. Из белка с последовательностью SEQ ID NO: 4 удаляли С-концевые аминокислоты в положениях 1140-1142 (SKI) (соответствует нуклеотидной последовательности SEQ ID NO: 5), в результате получали SEQ ID NO: 6. SEQ ID NO: 6 подвергали обработке с помощью метода оптимизации пар кодонов, раскрытого в РСТ/ЕР2007/05594 для A. niger. Стоп-кодон ТАА в SEQ ID NO: 8 заменяли на ТААА. Полученную последовательность SEQ ID NO: 8 помещали позади конститутивной промоторной последовательности GPDA SEQ ID NO: 11 и вводили подходящие сайты рестрикции. Полученную последовательность синтезировали в Sloning (Puchheim, Germany). Фрагмент клонировали по сайтам рестрикции SnaBI и SfiI в вектор pGBTOP11 для экспрессии в A. niger (фиг. 1), используя подходящие сайты рестрикции.
1.2. Трансформация A. niger.
A. niger WT-1.
Этот штамм A. niger CBS513.88 включает делеции генов, кодирующих глюкоамилазу (glaA), амилазу грибов и кислую амилазу. A. niger WT 1 был сконструирован с помощью метода MARKER-GENE FREE, описанного в ЕР 0635574 В1.
Экспрессионные конструкции были ко-трансформированы в штамм A. niger WT-1 в соответствии с методом, описанным Tilburn, J. et al. (1983) Gene 26, 205-221 и Kelly, J. & Hynes, M. (1985) EMBO J., 4, 475-479 со следующими модификациями.
Споры проращивали и культивировали в течение 16 ч при 30°С во встряхиваемой колбе, помещенной в ротационный шейкер при 300 об/мин, в минимальной среде для Aspergillus (100 мл). Минимальная среда для Aspergillus в 1 л содержит: 6 г NaNO3, 0,52 г KCl, 1,52 г KH2PO4, 1,12 мл 4 М KOH, 0,52 г MgSO4-7H2O, 10 г глюкозы, 1 г казаминовых кислот, 22 мг ZnSO4-7H2O, 11 мг Н3ВО3, 5 мг FeSO4-7H2O, 1,7 мг CoC12-6H2O, 1,6 мг CuSO4-5H2O, 5 мг MnCl2-2H2O, 1,5 мг Na2MoO4-2H2O, 50 мг EDTA, 2 мг рибофлавина, 2 мг тиамина-HCl, 2 мг никотинамида, 1 мг пиридоксина-HCl, 0,2 мг пантотеновой кислоты, 4 г биотина, 10 мл раствора пенициллина (5000 МЕд/мл) и стрептомицина (5000 мкг/мл) (Gibco).
Для получения протопластов вместо хеликазы применяли Novozym 234™ (Novo Industries).
После образования протопластов (60-90 мин) добавляют KC-буфер (0,8 М KCl, 9,5 мМ лимонная кислота, рН 6,2) до конечного объема 45 мл, суспензию протопластов центрифугируют в течение 10 мин при 3000 об/мин при 4°С в бакет-роторе. Протопласты вновь суспендируют в 20 мл KC-буфера и последовательно добавляют 25 мл STC-буфера (1,2 М сорбит, 10 мМ Tris-HCl, pH 7,5, 50 мМ CaCl2). Суспензию протопластов центрифугируют в течение 10 мин при 3000 об/мин при 4°С в бакет-роторе, промывают в STC-буфере и ресуспендируют в STC-буфере в концентрации 10 протопластов/мл.
К 200 мкл суспензии протопластов добавляют фрагмент ДНК, растворенный в 10 мкл ТЕ-буфера (10 мМ Tris-HCl, pH 7,5, 0,1 мМ EDTA) и 100 мкл раствора PEG (20% PEG 4000 (Merck), 0,8 М сорбит, 10 мМ Tris-HCl pH 7,5, 50 мМ CaCl2).
После инкубации суспензии ДНК-протопластов в течение 10 мин при комнатной температуре медленно добавляют 1,5 мл раствора PEG (60% PEG 4000 (Merck), 10 мМ Tris-HCl pH 7,5, 50 мМ CaCl2) при повторяющемся перемешивании пробирок. После инкубации в течение 20 мин при комнатной температуре суспензию разводят 5 мл 1,2 М сорбита, перемешивают, переворачивая пробирки, и центрифугируют в течение 10 мин при 4000 об/мин при комнатной температуре. Протопласты аккуратно ресуспендируют в 1 мл 1,2 М сорбита и высевают на твердую селективную среду для регенерации, состоящей из минимальной среды для Aspergillus, не содержащей рибофлавина, тиамина-HCl, никотинамида, пиридоксина, пантотеновой кислоты, биотина, казаминовых кислот и глюкозы. В случае ацетамидной селекции среда содержит 10 мМ ацетамида в качестве единственного источника азота и 1 М сахарозу в качестве вещества, обеспечивающего осмотичность среды, и в качестве источника углерода. Альтернативно, протопласты высевают на PDA (картофельно-декстрозный агар, Oxoid), дополненный 1-50 мкг/мл флеомицина и 1 М сахарозой в качестве вещества, обеспечивающего осмотичность среды. Содержимое чашек для регенерации делают твердым с помощью 2%-ного агара (агар № 1, Oxoid L11). После инкубации в течение 6-10 дней при 30°С конидиоспоры трансформантов переносят в чашки, содержащие селективную среду для Aspergillus (минимальная среда, содержащая ацетамид в качестве единственного источника азота в случае ацетамидной селекции или PDA, дополненную 1-50 мкг/мл флеомицина в случае флеомициновой селекции) с 2%-ной глюкозой и 1,5%-ной агарозой (Invitrogen), и инкубируют в течение 5-10 дней при 30°С. Выделяют отдельные трансформанты и эту стадию селективной очистки повторяют еще раз, после чего сохраняют очищенные трансформанты.
1.3. Выращивание A. niger в колбах на качалке.
В общей сложности для каждой конструкции отбирают 10 трансформантов и наличие конструкции подтверждают с помощью ПЦР, используя праймеры, специфичные для конструкций. Затем споры инокулируют в 100 мл минимальной обогащенной среды для Aspergillus, включающей 100 г/л глюкозы. Штаммы выращивают в термостате при 250 об/мин в течение 4 дней при 34°С. Супернатант культуральной среды анализируют на образование щавелевой кислоты, яблочной кислоты, фумаровой кислоты и
- 11 032726 янтарной кислоты с помощью ВЭЖХ и сравнивают с нетрансформированным штаммом.
1.4 Анализ ВЭЖХ.
Для определения органических кислот и сахаров в различных типах образцов проводят ВЭЖХ. Принцип разделения на колонке Phenomenex Rezex-RHM-Monosaccharide основан на механизмах гельфильтрации, ионообменной хроматографии и ионного обмена с использованием обращенной фазы. Обнаружение проводят с помощью дифференциального индекса рефракции и ультрафиолетовых детекторов.
Пример 2А. Клонирование фумаратредуктаз Trypanosoma brucei в Saccharomyces cerevisiae.
2A. 1. Экспрессионные конструкции.
Митохондриальную фумаратредуктазу m1 (FRDm1) [E.C. 1.3.1.6] Trypanosoma brucei, код доступа в GenBank 60460035, анализировали на присутствие сигнальной последовательности и проводили оптимизацию кодонов, как описано в разделе 1.1 для экспрессии в S. cerevisiae. Полученную последовательность SEQ ID NO: 9 помещали позади последовательности конститутивного промотора TDH3 SEQ ID NO: 12 и перед последовательностью терминатора TDH3 SEQ ID NO: 13 и вводили подходящие сайты рестрикции. Стоп-кодон TGA в SEQ ID NO: 9 заменяли на TAAG. Полученную последовательность синтезировали в Sloning (Puchheim, Germany). Экспрессионную конструкцию pGBS414SUS-07 получали после рестрикции BamHI/NotI вектора pRS414 для экспрессии в S. cerevisiae (Sirkoski R.S. and Hieter P., Genetics, 1989, 122(1):19-27) и последующего лигирования в этот вектор фрагмента рестрикции BamHI/NotI, состоящего из синтетической конструкции гена фумаратредуктазы (фиг. 2). Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli DH10B (Invitrogen), что приводило к получению конструкции pGBS414SUS-07 для экспрессии в дрожжах (фиг. 2).
Аналогичным образом гликосомальную фумаратредуктазу (FRDg) [E.C. 1.3.1.6] Trypanosoma brucei, код доступа в GenBank 23928422, анализировали на присутствие последовательности, направляющей белок в пероксисомы, и проводили оптимизацию кодонов, как было описано в разделе 1.1 для экспрессии в S. cerevisiae. Полученную последовательность SEQ ID NO: 10 помещали позади последовательности конститутивного промотора TDH3 SEQ ID NO: 12 и перед последовательностью терминатора TDH3 SEQ ID NO: 13 и вводили подходящие сайты рестрикции. Стоп-кодон TGA в SEQ ID NO: 10 заменяли на TAAG. Полученную последовательность синтезировали в Sloning (Puchheim, Germany). Экспрессионную конструкцию pGBS414SUS-08 создавали после рестрикции BamHI/NotI вектора pRS414 для экспрессии в S. cerevisiae (Sirkoski R.S. and Hieter P., Genetics, 1989, 122(1): 19-27) и последующего лигирования в этот вектор фрагмента рестрикции BamHI/NotI, состоящего из синтетической конструкции гена фумаратредуктазы (фиг. 3). Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli DH10B (Invitrogen), что приводило к получению конструкции pGBS414SUS-08 для экспрессии в дрожжах (фиг. 3).
Конструкции pGBS414SUS-07 и pGBS414SUS-08 независимо трансформировали в штаммы S. cerevisiae CEN.PK113-6B (MATA ura3-52 leu2-112 trp1-289), RWB066 (MATA ura3-52 leu2-112 trp1-289 adh1::lox adh2::Kanlox) и RWB064 (MATA ura3-52 leu2-112 trp1-289 adh1::lox adh2::lox gpd1::Kanlox). Трансформированные смеси высевали на дрожжевой минимальной азотистой среде (YNB) без АК (Difco) + 2% глюкозы, дополненной подходящими аминокислотами. Трансформанты инокулировали в среду Verduyn, включающую глюкозу, дополненную подходящими аминокислотами (Verduyn et al., 1992, Yeast. Jul;8(7):501-17), и выращивали в колбах на качалке в аэробных, анаэробных условиях и условиях с ограниченным содержанием кислорода. Среду для анаэробного выращивания дополняли 0,01 г/л эргостерола и 0,42 г/л Tween 80, растворенных в этаноле (Andreasen and Stier, 1953, J. cell. Physiol, 41, 23-36; Andreasen and Stier, 1954, J. Cell. Physiol, 43: 271-281). Все культуры дрожжей выращивали при 30°С на термостатируемой качалке при 250-280 об/мин. В различные моменты времени инкубирования отбирали аликвоты культур, центрифугировали и среду анализировали с помощью ВЭЖХ на образование щавелевой кислоты, яблочной кислоты, фумаровой кислоты и янтарной кислоты, как было описано в разделе 1.4.
Пример 2В. Клонирование фумаратредуктаз Trypanosoma brucei в Saccharomyces cerevisiae.
2В.1. Экспрессионные конструкции.
Так же, как было описано в примере 2А.1, митохондриальную фумаратредуктазу Trypanosoma brucei (FRDm, SEQ ID NO: 9) лигировали в вектор pRS416 для экспрессии в S. cerevisiae (Sirkoski R.S. and Hieter P., Genetics, 1989, 122(1):19-27). Лигированную смесь использовали для трансформации клеток Е. coli TOP10 (Invitrogen), что приводило к получению конструкций для экспрессии в дрожжах и pGBS416FRD-1 (фиг. 7).
Аналогичным образом гликосомальную фумаратредуктазу (FRDg, SEQ ID NO: 10) Trypanosoma brucei лигировали в вектор pRS416 для экспрессии в S. cerevisiae. Лигированную смесь использовали для трансформации клеток Е. coli TOP10 (Invitrogen), что приводило к получению конструкции pGBS416FRE-1 для экспрессии в дрожжах (фиг. 8).
- 12 032726
2В.2. Трансформация и эксперименты по выращиванию в микротитровальных планшетах (MTP's).
Конструкции pGBS416FRD-1 и pGBS416FRE-1 независимо трансформировали в штамм S. cerevisiae CEN.PK113-5D (MATA ura3-52). В качестве отрицательного контроля штамм CEN.PK 113-5D трансформировали пустым вектором pRS416. Трансформированные смеси высевали на дрожжевой минимальной азотистой среде (YNB) без АК (Difco) + 2% глюкозы. Отдельные трансформанты в приведенном ниже количестве инокулировали в двойных повторах в 250 мкл среды Verduyn, включающей 2% глюкозы, в MTP's с 96 глубокими лунками и предварительно культивировали при 30°С, 550 об/мин и влажности 80% на термостатируемой качалке для планшетов Infors: 12 трансформантов pGBS416FRD-1 (FRDm1), 12 трансформантов pGBS416FRE-1 (FRDg) и 24 контрольных трансформантов с пустым вектором pRS416. Через 3 дня 25 мк прекультуры, находящейся в лунках планшетов МТР, переносили в новые планшеты МТР с 96 глубокими лунками, содержащими среду Verduyn, содержащую глюкозу и CaCO3 (конечные концентрации: 10% глюкозы, 1% мас./об. CaCO3, в конечном объеме 250 мкл). Через 3 и 7 дней роста при 30°С, 550 об/мин и влажности 80% на термостатируемой качалке для планшетов Infors планшеты МТР центрифугировали в течение 2 мин при 2000 об/мин с помощью Multimek 96 (Beckman) и собирали 200 мкл супернатанта. Супернатант анализировали с помощью ВЭЖХ, как было описано в примере 1.4, на присутствие янтарной кислоты. Результаты приведены в табл. 1.
Таблица 1
Эффект введения митохондриальной (FRDm1) и гликосомальной фумаратредуктазы (FRDg) T. brucei в S. cerevisiae на уровень продукции янтарной кислоты через 3 и 7 дней инкубации
S. cerevisiae, включающие плазмиду: Янтарная кислота (мг/л) через 3 дня Янтарная кислота (мг/л) через 7 дней
«Пустой» вектор pRS416 138±18(п=48) 203±48 (п=48)
pGBS416FRD-l (FRDml) 340±65 (п=24) 399±72 (п=24)
pGBS416FRE-l (FRDg) 489±30 (п=24) 516±57 (п=24)
Результаты, приведенные в табл. 1, показывают, что введение и суперэкспрессия митохондриальной фумаратредуктазы (FRDm1) T. brucei приводили к увеличению уровня продукции янтарной кислоты (в 2,47 раза, р=6,96Е-14, критерий Стьюдента, через 3 дня инкубации; и в 1,97 раза, р=8,63Е-14, критерий Стьюдента через 7 дней инкубации).
Аналогичным образом, введение и суперэкспрессия гликосомальной фумаратредуктазы (FRDg) T. brucei приводили к увеличению уровня продукции янтарной кислоты (в 3,55 раза, р=5,08Е-32, критерий Стьюдента, через 3 дня инкубации; и повышение в 2,55 раза, р=8,63Е-25, критерий Стьюдента через 7 дней инкубации).
Пример 2С. Экспрессия PEP-карбоксикиназы Actinobacillus succinogenes или Mannheimia succiniciproducens и малатдегидрогеназы Saccharomyces cerevisiae и фумаразы Rhizopus oryzae и фумаратредуктазы Trypanosoma brucei в Saccharomyces cerevisiae.
2C.1. Последовательности генов.
Фосфоенолпируваткарбоксикиназа.
Фосфоенолпируваткарбоксикиназу [Е.С. 4.1.1.49] Actinobacillus succinogenes, код доступа в GenBank 152977907, анализировали на присутствие сигнальной последовательности с помощью программы SignalP 3.0 (http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/) Bendtsen, J. et al. (2004) Mol. Biol., 340:783-795 и TargetP 1.1 (http://www.cbs.dtu.dk/services/TargetP/) Emanuelsson, O. et al. (2007) Nature Protocols 2, 953-971. Анализ, описанный в работе Schluter et al., (2007) NAR, 35, D815-D822, выявил предполагаемую сигнальную последовательность PTS2 в положениях 115-123. Последовательность A. succinogenes модифицировали, чтобы иметь сходство с белковой последовательностью Mannheimia succiniciproducens, с помощью замены аминокислот EGY в положении 120-122 на DAF, что приводило к получению аминокислотной последовательности SEQ ID NO: 14 (нуклеотидная последовательность SEQ ID NO: 15). SEQ ID NO: 14 подвергали обработке с помощью метода оптимизации пар кодонов, как было описано в WO2008/000632 для S. cerevisiae. Стоп-кодон ТАА в полученной последовательности SEQ ID NO: 16 заменяли на TAAG. Эту последовательность SEQ ID NO: 16, содержащую стоп-кодон TAAG, помещали позади конститутивной последовательности промотора TDH1 SEQ ID NO: 25 и перед последовательностью терминатора TDH1 SEQ ID NO: 26, и вводили подходящие сайты рестрикции. Полученную последовательность SEQ ID NO: 29 синтезировали в Sloning (Puchheim, Germany).
Аналогичным образом, фосфоенолпируваткарбоксикиназу [Е.С. 4.1.1.49] Mannheimia succiniciproducens, код доступа в GenBank 52426348, анализировали на присутствие сигнальной последовательности, как было описано в работе Schluter et al., (2007) NAR, 35, D815-D822. Последовательность, как видно из SEQ ID NO: 17, не требовала модификаций. SEQ ID NO: 17 подвергали обработке с помощью метода оптимизации пар кодонов, как было описано в WO2008/000632 для S. cerevisiae. Стоп-кодон ТАА в полученной последовательности SEQ ID NO: 18 заменяли на TAAG. SEQ ID NO: 18, содержащую стопкодон TAAG, помещали позади конститутивной последовательности промотора TDH1 SEQ ID NO: 25 и перед последовательностью терминатора TDH1 SEQ ID NO: 26. Вводили подходящие сайты рестрикции. Полученную синтетическую конструкцию (SEQ ID NO: 30) синтезировали в Sloning (Puchheim, Germany).
- 13 032726
Малатдегидрогеназа.
Цитоплазматическая малатдегидрогеназа (Mdh2p) [E.C. 1.1.1.37], код доступа в GenBank 171915, регулируется с помощью катаболитной репрессии углеродом: после добавления глюкозы к клеткам, дефицитным по глюкозе, транскрипция MDH2 репрессируется и Mdh2p разрушается. Mdh2p с делецией 12 N-концевых аминокислот менее чувствительна к деградации, индуцируемой глюкозой (Minard and McAlister-Henn, J Biol Chem. 1992 Aug 25; 267(24):17458-64). Чтобы предотвратить деградацию Mdh2, индуцируемую глюкозой, удаляли нуклеотиды, кодирующие первые 12 аминокислот, и вводили новую аминокислоту метионин (SEQ ID NO: 19) для суперэкспрессии Mdh2 в S. cerevisiae. SEQ ID NO: 19 подвергали обработке с помощью метода оптимизации пар кодонов, как было описано в WO2008/000632 для S. cerevisiae. Стоп-кодон ТАА в полученной SEQ ID NO: 20 заменяли на TAAG. SEQ ID NO: 20, содержащую модифицированный стоп-кодон TAAG, кодирующую дельта12NMDH2, помещали позади конститутивной последовательности промотора TDH3 SEQ ID NO: 12 и перед последовательностью терминатора TDH3 SEQ ID NO: 13, и вводили подходящие сайты рестрикции. Полученную синтетическую конструкцию (SEQ ID NO: 31) синтезировали в Sloning (Puchheim, Germany).
Пероксисомальную малатдегидрогеназу (Mdh3p) [E.C. 1.1.1.37], код доступа в GenBank 1431095, анализировали на присутствие сигнальной последовательности, направляющей белок в мицелиальных грибах в пероксисомы, с помощью PTS1-предиктора http://mendel.imp.ac.at/mendeIjsp/sat/pts1/PTS1predictor.Jsp с предсказывающей функцией, специфичной для грибов. Из белка MDH3 удаляли С-концевые аминокислоты в положениях 341-343 (SKL), в результате получали SEQ ID NO: 21. SEQ ID NO: 21 подвергали обработке с помощью метода оптимизации пар кодонов, раскрытого в РСТ/ЕР2007/05594 для A. niger. Стоп-кодон TGA в полученной последовательности SEQ ID NO: 22 заменяли на TAAG. Полученную последовательность SEQ ID NO: 22, содержащую TAAG в качестве стоп-кодона, синтезировали позади конститутивной последовательности промотора TDH3 SEQ ID NO: 27 (600 пар оснований против хода транскрипции относительно инициирующего кодона) и перед последовательностью терминатора TDH3 SEQ ID NO: 28 (300 пар оснований по ходу транскрипции относительно стоп-кодона), и вводили подходящие сайты рестрикции. Полученную последовательность SEQ ID NO: 32 синтезировали в Sloning (Puchheim, Germany).
Фумараза.
Фумаразу [Е.С. 4.2.1.2] Rhizopus oryzae (FumR), код доступа в GenBank 469103, анализировали на присутствие сигнальной последовательности с помощью программы SignalP 3.0 (http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/) Bendtsen, J. et al. (2004) Mol. Biol., 340:783-795 и TargetP 1.1 (http://www.cbs.dtu.dk/services/TargetP/) Emanuelsson, O. et al. (2007) Nature Protocols 2, 953-971. Предполагаемую последовательность, направляющую белок в митохондрии, идентифицировали в первых 23 аминокислотах белка. Чтобы предотвратить потенциальное направление белка в митохондрии в S. cerevisiae, из FumR удаляли первые 23 аминокислоты и вновь вводили аминокислоту метионин, что приводило к получению SEQ ID NO: 23. SEQ ID NO: 23 подвергали обработке с помощью метода оптимизации пар кодонов, как было описано в WO2008/000632 для S. cerevisiae, что приводило к получению SEQ ID NO: 24. Стоп-кодон ТАА в SEQ ID NO: 24 заменяли на TAAG. SEQ ID NO: 24, содержащую TAAG в качестве стоп-кодона, синтезировали позади конститутивной последовательности промотора TDH1 SEQ ID NO: 25 и перед последовательностью терминатора TDH1 SEQ ID NO: 26 и вводили подходящие сайты рестрикции. Полученную синтетическую конструкцию SEQ ID NO: 33 синтезировали в Sloning (Puchheim, Germany).
Фумаратредуктаза.
Последовательности генов митохондриальной фумаратредуктазы (FRDm1) и гликосомальной фумаратредуктазы (FRDg) T. brucei конструировали и синтезировали, как описано в разделе 2A.1.
2C.2. Создание экспрессионных конструкций.
Экспрессионные конструкции pGBS414PPK-1 (фиг. 9), pGBS414PPK-2 (фиг. 10) и pGBS414PPK-3 (фиг. 11) были получены после рестрикции BamHI/NotI вектора pRS414 для экспрессии в S. cerevisiae (Sirkoski R.S. and Hieter P., Genetics, 1989, 122(1):19-27) и последующего лигирования в этот вектор фрагмента рестрикции BamHI/NotI, состоящего из синтетической конструкции гена фосфоенолпируваткарбоксикиназы (происходящей из Actinobacillus succinogenes) (SEQ ID NO: 29). Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), что приводило к получению конструкции pGBS414PPK-1 для экспрессии в дрожжах. Затем pGBK414PPK-1 расщепляли рестриктазами AscI и NotI. Для получения pGBS414PPK-2 рестрикционный фрагмент AscI/NotI, состоящий из синтетической генной конструкции митохондриальной фумаратредуктазы Т. brucei (FRDm1) (SEQ ID NO: 34), лигировали в расщепленный рестриктазами вектор pGBS414PPK-1. Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), приводящей к получению конструкции pGBS414PPK-2 для экспрессии в дрожжах (фиг. 10). Для получения pGBS414PPK-3 рестрикционный фрагмент AscI/NotI, состоящий из синтетической генной конструкции гликосомальной фумаратредуктазы Т. brucei (FRDg) (SEQ ID NO: 35), лигировали в расщепленный рестриктазами вектор pGBS414PPK-1. Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), приводящей к получению конструкции pGBS414PPK3 для экспрессии в дрожжах (фиг. 11).
- 14 032726
Экспрессионные конструкции pGBS414PEK-1 (фиг. 12), pGBS414PEK-2 (фиг. 13) и pGBS414PEK-3 (фиг. 14) получали после рестрикции BamHI/NotI вектора pRS414 для экспрессии в S. cerevisiae (Sirkoski R.S. and Hieter P., Genetics, 1989, 122(1):19-27) и последующего лигирования в этот вектор фрагмента рестрикции BamHI/NotI, состоящего из синтетической генной конструкции фосфоенолпируваткарбоксикиназы (происходящей из Mannheimia succiniciproducens) (SEQ ID NO: 30). Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), приводящей к получению конструкции pGBS414PEK-1 для экспрессии в дрожжах. Затем pGBK414PEK-1 расщепляли рестриктазами AscI и NotI. Для получения pGBS414PEK-2 фрагмент рестрикции AscI/NotI, состоящий из синтетической генной конструкции митохондриальной фумаратредуктазы Т. brucei (FRDm1) (SEQ ID NO: 34), лигировали в вектор pGBS414PEK-1, расщепленный рестриктазами. Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), приводящей к получению конструкции pGBS414PEK-2 для экспрессии в дрожжах (фиг. 13). Для получения pGBS414PEK-3 фрагмент рестрикции AscI/NotI, состоящий из синтетической генной конструкции гликосомальной фумаратредуктазы Т. brucei (FRDg) (SEQ ID NO: 35), лигировали в вектор pGBS414PEK-1, расщепленный рестриктазами. Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen) приводящей к получению конструкции pGBS414PEK3 для экспрессии в дрожжах (фиг. 14).
Экспрессионные конструкции pGBS415FUM-2 (фиг. 15) и pGBS415FUM-3 (фиг. 16) получали после рестрикции BamHI/NotI вектора pRS415 для экспрессии в S. cerevisiae (Sirkoski R.S. and Hieter P., Genetics, 1989, 122(1): 19-27) и последующего лигирования в этот вектор фрагмента рестрикции BamHI/NotI, состоящего из синтетической генной конструкции фумаразы (происходящей из Rhizopus oryzae) (SEQ ID NO: 33). Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), приводящей к получению конструкции pGBS415FUM-1 для экспрессии в дрожжах. Затем pGBK415FUM-1 расщепляли рестриктазами AscI и NotI. Для получения pGBS415FUM-2 фрагмент рестрикции AscI/NotI, состоящий из синтетической генной конструкции цитоплазматической малатдегидрогеназы S. cerevisiae (дельта12NMDH2) (SEQ ID NO: 31), лигировали в вектор pGBS415FUM-1, расщепленный рестриктазами. Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), приводящей к получению конструкции pGBS415FUM-2 для экспрессии в дрожжах (фиг. 15). Для получения pGBS415FUM-3 фрагмент рестрикции AscI/NotI, состоящий из синтетической генной конструкции пероксисомальной малатдегидрогеназы S. cerevisiae (MDH3) (SEQ ID NO: 32), лигировали в вектор pGBS415FUM-1, расщепленный рестриктазами. Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), приводящей к получению конструкции pGBS415FUM-3 для экспрессии в дрожжах (фиг. 16).
2C.3. Штаммы S. cerevisiae.
Различные комбинации плазмид pGBS414PPK-1, pGBS414 PPK-2, pGBS414PPK-3, pGBS414PEK-1, pGBS414PEK-2, pGBS414PEK-3, pGBS415FUM-2, pGBS415-FUM-3 были трансформированы в штамм S. cerevisiae CEN.PK113-6B (MATA ura3-52 leu2-112 trp1-289), что приводило к получению дрожжевых штаммов, указанных в табл. 2. Кроме указанных плазмид для получения прототрофных штаммов дрожжей был трансформирован pRS416 (пустой вектор). Экспрессионные векторы были трансформированы в дрожжи с помощью электропорации. Трансформированные смеси высевали на чашки с минимальной азотистой средой (YNB) без АК (Difco) + 2% глюкозы.
Таблица 2
Штаммы дрожжей, сконструированные для примера 2С
Название Основа Плазмиды Гены
SUC-148 CEN.PK113-6B pGBS414PPK-2 pGBS415FUM-3 pRS416 («пустой» вектор) РСКа, FRDml FUMR, MDH3
SUC-149 CEN.PK113-6B pGBS414PPK-3 pGBS415FUM-3 pRS416 («пустой» вектор) РСКа, FRDg FUMR, MDH3
SUC-150 CEN.PK113-6B pGBS414PEK-2 pGBS415FUM-3 pRS416 («пустой» вектор) PCKm, FRDml FUMR, MDH3
SUC-151 CEN.PK113-6B pGBS414PEK-3 pGBS415FUM-3 pRS416 («пустой» вектор) PCKm, FRDg FUMR, MDH3
SUC-152 CEN.PK113-6B pGBS414PPK-l pGBS415FUM-3 pRS416 («пустой» вектор) PCKa FUMR, MDH3
SUC-154 CEN.PK113-6B pGBS414PEK-l pGBS415FUM-3 pRS416 («пустой» вектор) PCKm FUMR, MDH3
SUC-169 CEN.PK113-6B pGBS414PEK-2 PCKm, FRDml
pGBS415FUM-2 pRS416 («пустой» вектор) FUMR, A12NMDH2
SUC-101 CEN.PK113-6B pRS414 («пустой» вектор) pRS415 («пустой» вектор) pRS415 («пустой» вектор)
- 15 032726
2С.4. Эксперименты по выращиванию и продукции янтарной кислоты.
Трансформанты инокулировали в 20 мл среды для предварительного культивирования, состоящей из среды Verduyn (Verduyn et al., 1992, Yeast. Jul; 8(7):501-17), включающей 2% галактозу (мас./об.), и выращивали в аэробных условиях в колбах объемом 100 мл на термостатируемой качалке при 30°С при 250 об/мин. Через 72 ч культуру центрифугировали в течение 5 мин при 4750 об/мин. Для измерения уровня янтарной кислоты с помощью ВЭЖХ использовали 1 мл суспензии, как было описано в разделе 1.4. Оставшийся супернатант декантировали и осадок (клетки) ресуспендировали в 1 мл среды для продуцирования. Среда для продуцирования состоит из среды Verduyn с 10% галактозы (мас./об.) и 1% CaCO3 (мас./об.). Ресуспендированные клетки инокулировали в 50 мл среды для продуцирования в колбах объемом 100 мл и выращивали на термостатируемой качалке при 30°С при 100 об/мин. В различные временные точки из культуры отбирали образец объемом 1 мл и с помощью ВЭЖХ измеряли уровень янтарной кислоты, как было описано в разделе 1.4 (фиг. 17).
Штаммы, трансформированные пустыми векторами (контрольный штамм), продуцировали до 0,3 г/л янтарной кислоты. Суперэкспрессия PEP-карбоксикиназы М. succiniciproducens (PCKm), пероксисомальной малатдегидрогеназы (MDH3) S. cerevisiae и фумаразы R. oryzae (FUMR) приводила к продукции 0,9 г/л янтарной кислоты. Суперэкспрессия PEP-карбоксикиназы A. succinogenes (PCKa), MDH3 и FUMR приводила к небольшому увеличению продукции янтарной кислоты до 1,0 г/л.
Эти результаты показывают, что S. cerevisiae, как было описано выше, увеличивают продукцию янтарной кислоты примерно в 3 раза.
Дополнительная суперэкспрессия митохондриальной фумаратредуктазы (FRDm1) Т. brucei также повышает уровень продукции янтарной кислоты; суперэкспрессия PCKa, MDH3, FUMR, FRDm1 приводила к продукции 2,6 г/л янтарной кислоты, а суперэкспрессия PCKm, MDH3, FUMR и FRDm1 приводила к продукции 2,7 г/л янтарной кислоты. Суперэкспрессия дельта12NMDH2 в комбинации с PCKm, FUMR и FRDm1 приводила к продукции 2,7 г/л янтарной кислоты, что указывает на то, что сходные уровни янтарной кислоты продуцировались при использовании и укороченной MDH2, и MDH3. Дополнительная суперэкспрессия гликосомальной фумаратредуктазы (FRDg) Т. brucei приводила к еще более сильному увеличению уровня продукции янтарной кислоты; суперэкспрессия PCKa, MDH3, FUMR и FRDg приводила к продукции 3,9 г/л янтарной кислоты, тогда как суперэкспрессия PCKm, MDH3, FUMR и FRDg приводила к небольшому снижению продукции до 3,6 г/л янтарной кислоты.
Результаты демонстрируют, что добавление NAD(H)-зависимой фумаратредуктазы, как раскрыто в этом документе, в S. cerevisiae, включающее генетическую модификацию PCKa/m, MDH3 и FUMR, значительно повышало уровень продукции янтарной кислоты.
Суперэкспрессия FRDg оказывала более позитивный эффект на уровень продукции янтарной кислоты в S. cerevisiae по сравнению с суперэкспрессией FRDm1 в S. cerevisiae.
Пример 2D. Влияние суперэкспрессии транспортера дикарбоновых кислот на продукцию янтарной кислоты в клетках S. cerevisiae, продуцирующих янтарную кислоту.
2D.1. Последовательности генов.
Малатпермеазу Schizosaccharomyces pombe (SEQ ID NO: 36), код доступа в GenBank 119368831, подвергали обработке с помощью метода оптимизации пар кодонов, как было описано в WO2008/000632 для S. cerevisiae, что приводило к получению SEQ ID NO: 37. Стоп-кодон ТАА в SEQ ID NO: 37 заменяли на TAAG. SEQ ID NO: 37, содержащую TAAG в качестве стоп-кодона, помещали позади конститутивной последовательности промотора ENO1 SEQ ID NO: 38 и перед последовательностью терминатора ENO1 SEQ ID NO: 39, и вводили подходящие сайты рестрикции. В промоторе ENO1 Т в положении 596 (-5) заменяли на А, чтобы получить оптимальную последовательность Козака. Полученную последовательность SEQ ID NO: 40 синтезировали в Sloning (Puchheim, Germany).
2D.2. Создание экспрессионных конструкций.
Экспрессионные конструкции pGBS416MAE-1 (фиг. 18) получали после рестрикции BamHI/NotI вектора pRS416 для экспрессии в S. cerevisiae (Sirkoski R.S. and Hieter P., Genetics, 1989, 122(1):19-27) и последующего лигирования в этот вектор фрагмента рестрикции BamHI/NotI, состоящего из синтетической генной конструкции малатного транспортера Schizosaccharomyces pombe (SEQ ID NO: 40). Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), приводящей к получению конструкции pGBS416MAE-1 для экспрессии в дрожжах.
2D.3. Штаммы S. cerevisiae.
Плазмиды pGBS414PEK-2, pGBS415FUM-2 и pGBS416MAE-1 (описанные в разделе 2С.2.) были трансформированы в штамм S. cerevisiae CEN.PK113-6В (MATA ura3-52 leu2-112 trp1-289) для получения штамма SUC-194, суперэкспрессирующего PCKm, дельта12NMDH2, FUMR, FRDm1 и SpMAE1. Все гены были оптимизированы по парам кодонов для экспрессии в S. cerevisiae.
Экспрессионные векторы были трансформированы в дрожжи с помощью электропорации. Трансформированные смеси высевали на чашки с минимальной азотистой средой (YNB) без АК (Difco) + 2% глюкозы. Штамм SUC-101 описан в табл. 2.
- 16 032726
Таблица 3
Штаммы дрожжей, сконструированные для примера 2D.
Название Основа Плазмиды Гены
SUC-132 CEN.PK113-6B pGBS414PEK-2 pGBS415FUM-2 pRS416 («пустой» вектор) PCKm, FRDml FUMR, A12NMDH2
SUC-194 CEN.PK113-6B pGBS414PEK-2 PGBS415FUM-2 PRS416MAE-1 PCKm, FRDml FUMR, A12NMDH2 SpMAEl
2D.4. Эксперименты по выращиванию и продукция янтарной кислоты в штаммах CEN.PK дикого типа.
Параметры роста и анализ образцов проводили, как было описано в примере 2С.4 со следующими модификациями: предварительное культивирование проводили с использованием 2% глюкозы (мас./об.) в качестве источника углерода. В среде для продуцирования в качестве источника углерода использовали 10% глюкозы (мас./об.).
Штаммы, трансформированные пустыми векторами (контрольный штамм), продуцировали до 0,3 г/л янтарной кислоты. Дополнительная суперэкспрессия SpMAE1 в штамме SUC-194, суперэкспрессирующем PCKm, дельта12NMDH2, FUMR и FRDm1, приводила к увеличению уровня продукции янтарной кислоты до 4,6 г/л, тогда как штамм SUC-132, суперэкспрессирующий PCKm, дельта12NMDH2, FUMR и FRDm1, в результате продуцировал 2,7 г/л янтарной кислоты.
Результаты показывают, что введение малатного транспортера в S. cerevisiae, включающее генетические модификации, описанные в этом документе, дополнительно повышало продукцию янтарной кислоты по меньшей мере в 1,5 раза.
Пример 2Е. Влияние транспортера дикарбоновых кислот в S. cerevisiae, включающих делецию генов алкогольдегидрогеназы 1 и 2 (adh1, adh2) и гена глицерол-3-фосфатдегидрогеназы 1 (gpd1), на уровень продукции янтарной кислоты.
2Е.1. Последовательности генов.
Описано в разделе 2D.1.
2Е.2. Создание экспрессионных конструкций.
Описано в разделе 2D.2.
2Е.З. Штаммы S. cerevisiae.
Плазмиды pGBS414PPK-3, pGBS415FUM-3 и pGBS416MAE-1 (описанные в разделе 2С.2.) были трансформированы в штамм S. cerevisiae RWB064 (MATA ura3-52 leu2-112 trp1-289 adh1::lox adh2::lox gpd1::Kanlox) для получения штамма SUC-201, суперэкспрессирующего PCKa, MDH3, FUMR, FRDg и SpMAE1. Все гены были оптимизированы по парам кодонов для экспрессии в S. cerevisiae.
Таблица 4
Штаммы дрожжей, сконструированные для примера 2Е
Название Основа Плазмиды Гены
SUC-200 CEN.PK113-6B adhl::lox adh2::lox gpdl::Kanlox pGBS414PPK-3 pGBS415FUM-3 pGBS416MAE-l PCKa, FRDg FUMR, MDH3 SpMAEl
SUC-201 CEN.PK113-6B adhl::lox adh2::lox gpdl::Kanlox pGBS414PPK-3 pGBS415FUM-3 pRS416 («пустой» вектор) PCKa, FRDg FUMR, MDH3
SUC-103 CEN.PK113-6B adhl::lox adh2::lox gpdl::Kanlox pRS414 («пустой» вектор) pRS415 («пустой» вектор) pRS415 («пустой» вектор)
2Е.4. Эксперименты по выращиванию и продукции янтарной кислоты в штаммах CEN.PK, делетированных по генам алкогольдегидрогеназы 1 и 2 (adh1, adh.2), и гену глицерол-3-фосфатдегидрогеназы 1 (gpd1).
Параметры роста и анализ образцов проводили, как описано в примере 2С.4, со следующими модификациями: предварительное культивирование проводили, используя 2% галактозы (мас./об.) в качестве источника углерода. В среду для продуцирования во временных точках t=0, 3 и 7 дней добавляли 5% галактозы (мас./об.).
Штамм SUC-103, трансформированный пустыми векторами (контрольный штамм), продуцировал 0,9 г/л янтарной кислоты после выращивания в течение 10 дней на среде для продуцирования (фиг. 20). Суперэкспрессия PCKa, MDH3, FUMR и FRDg в штамме RWB064 приводила к увеличению уровня продукции янтарной кислоты до 2,5 г/л (штамм SUC-201, фиг. 20). Дополнительная суперэкспрессия SpMAE1 помимо PCKa, MDH3, FUMR и FRDg в штамме RWB064 приводила к дальнейшему повышению уровня продукции янтарной кислоты до 11,9 г/л (штамм SUC-200, фиг. 20).
Результаты демонстрируют, что суперэкспрессия малатного транспортера в S. cerevisiae, включаю
- 17 032726 щих делецию генов алкогольдегидрогеназы и глицерол-3-фосфатдегидрогеназы, приводила к значительному увеличению уровня продукции янтарной кислоты. Кроме того, было показано, что делеция генов adh1, adh2 и gpd1 (SUC 103) приводила к увеличению уровня продукции янтарной кислоты по сравнению со штаммом дикого типа (SUC 101, табл. 2).
Пример 2F. Клонирование фосфоенолпируваткарбоксикиназы Actinobacillus succinogenes, пируваткарбоксилазы Saccharomyces cerevisiae, малатдегидрогеназы Saccharomyces cerevisiae, фумаразы Rhizopus oryzae в Saccharomyces cerevisiae и фумаратредуктазы Trypanosoma brucei.
2F.1. Последовательности генов.
Последовательности генов PEP-карбоксикиназы A. succinogenes, малатдегидрогеназы S. cerevisiae, фумаразы R. oryzae и фумаратредуктазы Т. brucei были описаны в разделе 2F.1. Цитоплазматическая пируваткарбоксилаза Saccharomyces cerevisiae (Рус2р) [Е.С. 6.4.1.1.] SEQ ID NO: 41, код доступа в GenBank 1041734, кодируется нуклеотидной последовательностью SEQ ID NO: 42. Геномную ДНК штамма S. cerevisiae CEN.PK113-5D (MATA ura3-52) применяли в качестве матрицы для амплификации последовательности (SEQ ID NO: 42), кодирующей PYC2, используя праймеры P1 (SEQ ID NO: 43) и Р2 (SEQ ID NO: 44) и набор Phusion DNA polymerase (Finnzymes, Finland) в соответствии с инструкциями фирмыпроизводителя. В праймеры были введены подходящие сайты рестрикции в целях дальнейшего клонирования.
2F.2. Создание экспрессионных конструкций.
Экспрессионную конструкцию pGBS426PYC-2 (фиг. 21) получали после рестрикции SpeI/XhoI вектора p426GPD для экспрессии в S. cerevisiae (Mumberg et al., Gene. 1995 Apr 14; 156(1):119-22) и последующего лигирования в этот вектор рестрикционного фрагмента SpeI/XhoI, состоящего из амплифицированной нуклеотидной последовательности PYC2 (SEQ ID NO: 42). Лигированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), приводящей к получению конструкции pGBS426PYC-2 для экспрессии в дрожжах (фиг. 21). Конструирование экспрессионных векторов pGBS414PPK-3 и pGBS415FUM-3 описано в разделе 2С.2. Экспрессионную конструкцию pGBS414FRE-1 создавали после рестрикции BamHI/NotI вектора pRS414 для экспрессии в S. cerevisiae (Sirkoski R.S. and Hieter P., Genetics, 1989, 122(1): 19-27) и последующего лигирования в этот вектор фрагмента рестрикции BamHI/NotI, состоящего из синтетической генной конструкции гликосомальной фумаратредуктазы (происходившей из Trypanosoma brucei) (SEQ ID NO: 35). Дотированную смесь использовали для трансформации Е. coli TOP10 (Invitrogen), приводящей к получению конструкции pGBS414FRE-1 для экспрессии в дрожжах (фиг. 22).
2F.3. Штаммы S. cerevisiae.
Штаммы SUC-226, SUC-227, SUC-228 и SUC-230 получали с помощью трансформации различных комбинаций плазмид pGBS414FRE-1, pGBS414PPK-3, pGBS415FUM-1, pGBS426PYC-2 и p426GPD в штамм CEN.PK113-6B (MATA ura3-52 leu2-112 trp1-289), как указано в табл. 5.
Таблица 5
Штаммы дрожжей, сконструированные для примера 2F
Название Основа Плазмиды Гены
SUC-226 CEN.PK113-6B pGBS414PPK-3 PGBS415FUM-3 p426GPD («пустой» вектор) РСКа, FRDg FUMR, MDH3
SUC-227 CEN.PK113-6B pGBS414PPK-3 pGBS415FUM-3 PGBS426PYC-2 РСКа, FRDg FUMR, MDH3 PYC2
SUC-228 CEN.PK113-6B pGBS414FRE-l pGBS415FUM-3 PGBS426PYC-2 FRDg FUMR, MDH3 PYC2
SUC-230 CEN.PK113-6B pGBS414FRE-l PGBS415FUM-3 p426GPD («пустой» вектор) FRDg FUMR, MDH3
2F.4. Эксперименты по выращиванию и продукции янтарной кислоты.
Параметры роста и анализ образцов проводили, как было описано в примере 2С.4 со следующими модификациями: предварительное культивирование проводили, используя 2% глюкозы (мас./об.) в качестве источника углерода. В среде продуцирования в качестве источника углерода использовали 10% глюкозы (мас./об.).
Как показано на фиг. 23, штамм SUC-230, суперэкспрессирующий MDH3, FUMR и FRDg, продуцировал до 3,0 г/л янтарной кислоты. Дополнительная суперэкспрессия PCKa повышала продукцию янтарной кислоты до 3,4 г/л (штамм SUC-226), а дополнительная суперэкспрессия PYC2 повышала продукцию янтарной кислоты до 3,7 г/л (штамм SUC-228). Неожиданно было обнаружено, что совместная суперэкспрессия и PCKa и PYC2 (SUC-227) приводила к повышению уровня продукции янтарной кислоты в 1,5 раза до 5,0 г/л по сравнению с эффектами суперэкспрессии только PCK или только PYC. Эти результаты демонстрируют синергический эффект совместной суперэкспрессии как PEP-карбоксикиназы A. succino
- 18 032726 genes (PCKa), так и пируваткарбоксилазы S. cerevisiae (PYC2) на уровень продукции янтарной кислоты в S. cerevisiae.
Пример 3. Инактивация генов, кодирующих сукцинатдегидрогеназу в Aspergillus niger.
3.1. Идентификация.
Геномная ДНК Aspergillus niger, штамм CBS513.88, была секвенирована и проанализирована. Были идентифицированы два гена с транслируемыми белками, аннотируемыми как гомологи белков сукцинатдегидрогеназы, которые были названы sdhA и sdhB соответственно. Локусы последовательностей sdhA (An16g07150) и sdhB (An02g12770) доступны в базе данных Genbank с кодами доступа 145253004 и 145234071 соответственно. Векторы для замены генов sdhA и sdhB были спроектированы в соответствии с известными принципами и сконструированы в соответствии с обычными процедурами клонирования (смотри фиг. 6). Векторы включают приблизительно 1000 п.н., фланкирующих участки sdh ORFs для гомологичной рекомбинации в предопределенном геномном локусе. Кроме того, они содержат бинаправленный селективный маркер amdS A. nidulans, управляемый промотором gpd, между прямыми повторами. Основная схема этих делеционных векторов ранее была описана в ЕР635574В и WO 98/46772.
3.2. Инактивация гена sdhA в Aspergillus niger.
Получали линейную ДНК делеционного вектора pDEL-SDHA (фиг. 4) и использовали ее для трансформации Aspergillus niger CBS513.88, как описано в книге Biotechnology of Filamentous fungi: Technology and Products. (1992) Reed Publishing (USA); Chapter 6: Transformation, p. 113-156. Эту линейную ДНК можно интегрировать в геном в локусе sdhA, заменяя, таким образом, ген sdhA на ген amdS, как показано на фиг. 6. Селекцию трансформантов проводили на ацетамидной среде и колонии очищали в соответствии со стандартными методами, как было описано в ЕР635574В. Споры высевали на чашках с фторацетамидной средой для селекции штаммов, которые утратили маркер amdS. В растущих колониях с помощью ПЦР выявляли интеграцию в локусе sdhA и подходящие штаммы анализировали с помощью блоттинга по Саузерну на наличие делеции гена sdhA. Делецию гена sdhA определяли по уменьшению размера фрагментов ДНК примерно на 2,2 т.п.н. (4,6 т.п.н. во фрагменте дикого типа по сравнению с 2,4 т.п.н. при успешной делеции SDHA), охватывая локус целиком, и гибридизовали с соответствующими зондами. Приблизительно у 9 штаммов из примерно 96 исходных трансформантов было обнаружено удаление геномного гена sdhA.
В качестве типичного штамма с инактивированным геном sdhA отбирали штамм dSDHA. Продукцию янтарной кислоты штаммом dSDHA определяли в микротитровальных планшетах, как описано в примере 4.
Пример 4. Клонирование FRDm Trypanosoma brucei в Aspergillus niger dSDHA.
A. niger, штамм dSDHA, описанный в примере 3.2., был трансформирован с помощью экспрессионной конструкции pGBTOPAn1 (фиг. 5), включающей усеченную митохондриальную фумаратредуктазу m1 (FRDm1, SEQ ID NO:7), как было описано в примере 1.1. ДНК Е. coli удаляли с помощью расщепления рестриктазой NotI. Трансформанты A. niger отбирали с помощью Qpix и переносили в микротитровальные планшеты МТР, содержащие селективную среду для Aspergillus. Через 7 дней инкубации при 30°С биомассу переносили в микротитровальные планшеты (МТР), содержащие PDA, вручную или с помощью устройства для сбора колоний. Через 7 дней инкубации при 30°С биомасса образовывала споры. Эти споры ресуспендировали с помощью Multimek 96 (Beckman) в 100 мкл минимальной обогащенной среды для Aspergillus, содержащей 10% глюкозы. Затем 2 МТР со 170 мкл минимальной обогащенной среды для Aspergillus, содержащей 10% глюкозы и 1% CaCO3 инокулировали 30 мкл суспензии спор. Аналогичным образом штаммы A. niger dSDHA и CBS513.88 инокулировали в МТР. Такие МТР инкубировали в течение 5 дней при 34°С и 80% влажности. Через 5 дней с помощью Multimek 96 (Beckman) собирали 160 мкл среды и с помощью ВЭЖХ определяли янтарную кислоту, как описано в примере 1.4. Результаты приведены в табл. 6.
Таблица 6
Влияние делеции сукцинатдегидрогеназы (SDHA) и вставки митохондриальной фумаратредуктазы (FRDm1) T. brucei в A. niger на уровень продукции янтарной кислоты
Штамм A. niger Янтарная кислота, мг/л
CBS513.88 38
dSDHA 50
dSDHA, + gGBTOPAnl (FRDml) 583
Табл. 6 ясно демонстрирует повышенную продукцию янтарной кислоты А. niger, включающую митохондриальную фумаратредуктазу Т. brucei.
- 19 032726
Перечень последовательностей <110> ДСМ АЙПи АССЕТС Б.В.
ВУ, Лиан
ДАМВЕЛЬД, Роббертус, Антониус
ВЕРВАЛ, Рене
САГТ, Корнелис, Мария, Якобус <120> Рекомбинантная эукариотическая клетка для продукции янтарной кислоты, которая содержит NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу <130> 26345W0 <140> 26345WO <141> 2008-11-14 <160>44 <170> Patentin version 3.2 <210> 1 <211>1232 <212> белок <213> Trypanosoma brucei <400>1
Met Leu Ser Thr Lys Gln Leu Leu Leu Arg Ala Thr Ser Ala Leu Val
1 5 10 15
Ala Gly Ser Ser Gly Val Ala Arg Asp Ser Pro Ser Leu Val Gly Asp
20 25 30
Pro Cys Asp Ser Val Ser Pro Thr Arg Val Val Trp Gly Arg Phe Phe
35 40 45
Lys Ser Leu Ala Pro Pro Ala Pro Ser Val Val Ser cys Gln Lys Arg
50 55 60
Phe Thr Ser His Gly Ala Asp Gly Ile Ser Ser Ala Ser Ile Val Val
65 70 75 80
Thr Asp Pro Glu Ala Ala Ala Lys Lys Arg Asp Arg Met Ala Arg Glu
85 90 95
Leu Leu Ser Ser Asn Ser Gly Leu cys Gln Glu Asp Glu Pro Thr Ile
- 20 032726
100 105 110
lie Asn Leu Lys Gly Leu Glu His Thr He Pro Tyr Arg Leu Ala Vai
115 120 125
Vai Leu cys Asn Ser Arg Ser Thr Gly Glu Phe Glu Ala Lys Ala Ala
130 135 140
Glu lie Leu Arg Lys Ala Phe His Met Vai Asp Tyr Ser Leu Asn cys
145 150 155 160
Phe Asn Pro Glu Ser Glu Leu Ser Arg Vai Asn Ser Leu Pro Vai Gly
165 170 175
Glu Lys His Gin Met Ser Glu Asp Leu Arg His Vai Met Glu Cys Thr
180 185 190
lie Ser Vai His His Ser Ser Gly Met Gly Phe Asp Pro Ala Ala Gly
195 200 205
Pro lie He Ser Arg Leu Arg Gly Ala Met Arg Asp His Asn Asp Met
210 215 220
Ser Asp lie Ser Vai Thr Glu Ala Glu Vai Glu Leu Phe Ser Leu Ala
225 230 235 240
Gin Ser Phe Asp Vai Asp Leu Glu Glu Gly Thr He Ala Arg Lys His
245 250 255
Ser Glu Ala Arg Leu Asp Leu Gly Gly Vai Asn Lys Gly Tyr Thr Vai
260 265 270
Asp Tyr Vai Vai Asp His Leu Arg Ala Ala Gly Met Pro Asn Vai Leu
275 280 285
Phe Glu Trp Gly Gly Asp He Arg Ala Ser Gly Arg Asn He Lys Gly
290 295 300
Asn Leu Trp Ala Vai Ala He Lys Arg Pro Pro Ser Vai Glu Glu Vai
- 21 032726
305 310 315 320
Не Arg Arg Ala Lys Gly Lys Met Leu Lys Met Gly Glu Glu Glu Gln
325 330 335
Glu Glu Lys Asp Asp Asp Ser Pro Ser Leu Leu His Val Val Glu Leu
340 345 350
Asp Asp Glu Ala Leu cys Thr Ser Gly Asp Tyr Glu Asn Val Leu Tyr
355 360 365
His Pro Lys His Gly Val Ala Gly Ser He Phe Asp Trp Gln Arg Arg
370 375 380
Gly Leu Leu Ser Pro Glu Glu Gly Ala Leu Ala Gln Val Ser Val Lys
385 390 395 400
cys Tyr Ser Ala Met Tyr Ala Asp Ala Leu Ala Thr Val cys Leu Val
405 410 415
Lys Arg Asp Ala Val Arg He Arg Tyr Leu Leu Glu Gly Trp Arg Tyr
420 425 430
Val Arg Ser Arg Val Thr Asn Tyr Phe Ala Tyr Thr Arg Gln Gly Glu
435 440 445
Arg Leu Ala His Met His Glu He Ala Gln Glu Thr Arg Glu Leu Arg
450 455 460
Glu lie Arg He Ala Gly Ser Leu Pro Ser Arg He Val He Val Gly
465 470 475 480
Gly Gly Leu Ala Gly Leu Ser Ala Ala He Glu Ala Ala Ser cys Gly
485 490 495
Ala Gln Val He Leu Met Glu Lys Glu Gly Arg He Gly Gly Asn Ser
500 505 510
Ala Lys Ala Thr Ser Gly He Asn Gly Trp Gly Thr Arg Thr Gln Ala
- 22 032726
515 520 525
Lys Ser Asp lie Leu Asp Gly Gly Lys Tyr Phe Glu Arg Asp Thr Phe
530 535 540
Leu Ser Gly Val Gly Gly Thr Thr Asp Pro Ala Leu Val Lys Val Leu
545 550 555 560
Ser Val Lys Ser Gly Asp Ala He Gly Trp Leu Thr Ser Leu Gly Val
565 570 575
Pro Leu Ser Val Leu Ser Gin Leu Gly Gly His Ser Phe Lys Arg Thr
580 585 590
His Arg Ala Pro Asp Lys Thr Asp Gly Thr Pro Leu Pro He Gly His
595 600 605
Thr He Met Arg Thr Leu Glu Asp His He Arg Asn Asn Leu Ser Glu
610 615 620
Arg Val Thr He Met Thr His Val Ser Val Thr Glu Leu Leu His Glu
625 630 635 640
Thr Asp Thr Thr Pro Asp Gly Ala Ser Glu Val Arg Val Thr Gly Val
645 650 655
Arg Tyr Arg Asp Leu Ser Asp Val Asp Gly Gin Pro Ser Lys Leu Leu
660 665 670
Ala Asp Ala Val Val Leu Ala Thr Gly Gly Phe Ser Asn Asp Arg Glu
675 680 685
Glu Asn Ser Leu Leu Cys Lys Tyr Ala Pro His Leu Ala Ser Phe Pro
690 695 700
Thr Thr Asn Gly Pro Trp Ala Thr Gly Asp Gly Val Lys Leu Ala Thr
705 710 715 720
Ser Val Gly Ala Lys Leu Val Asp Met Asp Lys Val Gin Leu His Pro
- 23 032726
725 730 735
Thr Gly Leu Ile Asp Pro Lys Asp Pro Ala Asn Thr Thr Lys lie Leu
740 745 750
Gly Pro Glu Ala Leu Arg Gly Ser Gly Gly Ile Leu Leu Asn Lys Gln
755 760 765
Gly Lys Arg Phe Val Asn Glu Leu Asp Leu Arg Ser Val Val Ser Lys
770 775 780
Ala lie Asn Thr Gln Gly Asn Glu Tyr Pro Gly Ser Gly Gly cys Tyr
785 790 795 800
Phe Ala Tyr Cys Val Leu Asn Glu Asp Ala Thr Asn Leu Phe cys Gly
805 810 815
Gly Ala Leu Gly Phe Tyr Gly Lys Lys Leu Gly Leu Phe Gln Arg Ala
820 825 830
Glu Thr Val Glu Glu Leu Ala Lys Leu Ile Gly cys Asp Glu Gly Glu
835 840 845
Leu Arg Asp Thr Leu Glu Lys Tyr Glu Thr cys Ser Lys Ala Lys Val
850 855 860
Ala cys Pro Val Thr Gly Lys Val Val Phe Pro cys Val Val Gly Thr
865 870 875 880
Arg Gly Pro Tyr Asn Val Ala Phe Val Thr Pro Ser Ile His Tyr Thr
885 890 895
Met Gly Gly cys Leu Ile Ser Pro Ala Ala Glu Val Leu Gln Glu Tyr
900 905 910
Lys Gly Leu Asn Ile Leu Glu Asn His Arg Pro Ile Arg cys Leu Phe
915 920 925
Gly Ala Gly Glu Val Thr Gly Gly Val His Gly Gly Asn Arg Leu Gly
- 24 032726
930 935 940
Gly Asn Ser Leu Leu Glu Cys Val Val Phe Gly Lys He Ala Gly Asp
945 950 955 960
Arg Ala Ala Thr He Leu Gin Lys Arg Glu lie Ala Leu Ser Lys Thr
965 970 975
Ser Trp Thr Ser Val Val Val Arg Glu Ser Arg Ser Gly Glu Gin Phe
980 985 990
Gly Thr Gly Ser Arg Val Leu Arg Phe Asn Leu Pro Gly Ala Leu Gin
995 1000 1005
Arg Thr 1010 Gly Leu Asn Leu Gly 1015 Glu Phe Val Ala He 1020 Arg Gly Glu
Trp Asp 1025 Gly Gin Gin Leu Val 1030 Gly Tyr Phe Ser Pro 1035 He Thr Leu
Pro Glu 1040 Asp Leu Gly Thr He 1045 Ser Leu Leu Val Arg 1050 Ala Asp Lys
Gly Thr 1055 Leu Lys Glu Trp He 1060 Cys Ala Leu Arg Pro 1065 Gly Asp Ser
Val Glu 1070 He Lys Ala Cys Gly 1075 Gly Leu Arg He Asp 1080 Gin Asp Pro
Val Lys 1085 Lys Cys Leu Leu Phe 1090 Arg Asn Arg Pro He 1095 Thr Arg Phe
Ala Leu 1100 Val Ala Ala Gly Thr 1105 Gly Val Ala Pro Met 1110 Leu Gin Val
He Arg 1115 Ala Ala Leu Lys Lys 1120 Pro Tyr Val Asp Thr 1125 Leu Glu Ser
He Arg Leu He Tyr Ala Ala Glu Glu Tyr Asp Thr Leu Thr Tyr
- 25 032726
1130 1135 1140
Arg Ser lie Leu Gln Arg Phe Ala Glu Glu Phe Pro Asp Lys Phe
1145 1150 1155
Val Cys Asn Phe Val Leu Asn Asn Pro Pro Glu Gly Trp Thr Gly
1160 1165 1170
Gly Val Gly Phe Val Asn Lys Lys Ser Leu Gln Lys Val Leu Gln
1175 1180 1185
Pro Pro Ser Ser Glu Pro Leu lie Val Val Cys Gly Pro Pro Val
1190 1195 1200
Met Gln Arg Asp Val Lys Asn Glu Leu Leu Ser Met Gly Tyr Asp
1205 1210 1215
Lys Glu Leu Val His Thr Val Asp Gly Glu Ser Gly Thr Leu
1220 1225 1230
<210> 2
<211> 3698 <212> ДНК <213> Trypanosoma brucei
<400> 2 atgctctcaa cgaagcaact tctccttcga gccacatctg cattagtggc gggaagctct 60
ggagttgcgc gagacagccc ttcgcttgtc ggcgaccctt gcgactcggt ttcaccaacg 120
cgggtcgtat gggggcgctt cttcaaatcc ctagcgccac ccgctccctc ggttgtttca 180
tgtcaaaagc gttttacgtc ccatggcgcc gatggtattt cctcggcttc gattgttgtc 240
actgacccgg aggcggcagc aaagaagcgt gaccgcatgg cgcgcgagtt gctctcaagt 300
aatagtggtc tttgtcaaga agatgaaccc actatcatta acttaaaggg gttggagcac 360
acgattccgt acaggctcgc cgtggttctt tgtaactcgc gctctacagg tgaattcgaa 420
gcaaaggcag ctgagatttt gcgaaaggca tttcacatgg tggactactc cctcaattgt 480
ttcaatcctg aaagcgagtt gtcgcgtgtc aactctctgc cggtgggtga gaagcatcaa 540
atgtcggagg atctccggca cgtgatggag tgcaccatca gtgtacatca ctccagcgga 600
- 26 032726
atgggcttcg acccggcggc aggtccaatt atcagccgac ttcggggggc aatgagggac 660
cacaacgaca tgtccgacat ttccgtaacg gaagccgagg tagagctctt ctccttagcg 720
caaagttttg acgtggacct cgaggaggga acaatagctc gcaagcactc tgaagcgagg 780
cttgatcttg gtggtgtgaa caaaggctac acagttgatt atgtagtgga tcatcttcgt 840
gcggccggta tgccaaacgt gctctttgag tggggcgggg atattcgagc gtcgggtagg 900
aacatcaaag gaaacctatg ggcagttgct atcaaacgac cgccatctgt ggaggaggtg 960
attcggcgcg ccaaagggaa aatgttaaaa atgggggagg aggagcagga agagaaggac 1020
gatgattctc catccctgct tcatgtggtg gagcttgatg atgaagccct ttgcaccagt 1080
ggtgactacg aaaacgtttt gtatcatcca aagcatggag tggcggggag catttttgac 1140
tggcagcgaa gggggctact atctcctgag gaaggggcac tcgctcaagt gtctgtgaaa 1200
tgttatagcg caatgtacgc tgatgctctg gcaacagtgt gccttgtgaa gcgtgatgct 1260
gtgaggattc gctacttatt agagggctgg cgttacgttc gaagtcgtgt gacgaattac 1320
tttgcctata cccgtcaggg cgagcggtta gcacatatgc acgagatagc gcaagaaaca 1380
cgggagctac gtgaaatacg gattgccggg agtttgccct ccagaattgt tattgtgggt 1440
ggaggtctag cgggcctttc agcggccatc gaagccgcaa gttgtggtgc acaagtcata 1500
ctcatggaaa aggaaggaag aatcgggggg aacagcgcaa aggctacatc aggtattaat 1560
gggtggggga cgcgtacgca ggcaaagtca gatattctcg acggtggaaa gtattttgag 1620
cgtgacactt ttctctctgg cgttggcggt actaccgatc ctgccctcgt caaagtgctc 1680
tcagttaaga gtggggacgc aattggttgg cttacttctc ttggtgtgcc actcagtgtc 1740
ctctcgcaac ttggtggcca cagtttcaag cgaacccacc gtgccccgga caaaacggac 1800
gggacacccc taccaattgg tcatacgatc atgagaaccc tcgaggatca catccgtaac 1860
aacctctctg agcgagtaac gattatgaca catgtgtccg tgaccgagtt attgcacgaa 1920
accgatacaa cacctgatgg cgcctccgaa gtgcgtgtta cgggtgtaag atacagggac 1980
ctctccgatg tggatggcca gccatcaaaa ttgcttgcgg atgccgtcgt tcttgcaact 2040
ggtggtttct ccaatgaccg tgaagaaaat tcactgctct gcaagtatgc gcctcacctg 2100
gccagttttc caacgacaaa tggcccctgg gcgaccggtg acggggttaa actcgcaaca 2160
- 27 032726
tcggttggtg caaagcttgt ggatatggat aaggttcagc tacaccccac agggcttatc 2220
gatccaaagg atcccgcgaa cacaacgaag attctcggcc cggaggcact ccgaggttca 2280
ggtgggatat tactcaacaa gcaaggaaag cgcttcgtga atgaacttga cctccgctct 2340
gttgtatcca aggcaattaa tacgcagggt aatgaatacc ctggatccgg tggatgttac 2400
tttgcgtact gcgtgctcaa cgaagatgca acaaacctct tctgtggcgg tgcactgggg 2460
ttctacggaa agaagcttgg tttgttccag cgtgctgaga ctgtggaaga gttggccaaa 2520
ctgattggct gtgacgaagg tgaattacgg gatacgcttg aaaagtatga aacttgcagc 2580
aaggccaaag ttgcgtgccc tgtgacgggg aaggtagtat tcccttgtgt ggtgggtaca 2640
agggggccgt acaatgttgc ttttgtcacg ccttccattc attacacaat gggtggctgc 2700
ctcatttcac cggctgctga agttcttcag gagtacaaag gtttaaatat tctggaaaac 2760
catagaccga ttcgatgctt gtttggtgcc ggtgaagtga cgggtggtgt gcacggtggt 2820
aaccgccttg gtggtaattc gctcttggaa tgtgtggtat tcgggaaaat tgcgggtgac 2880
cgtgccgcaa caatacttca aaaacgtgag atagccctct ccaagacgag ttggacttcc 2940
gttgttgtac gtgagtcccg ctccggcgaa cagttcggga ccggctctcg tgttcttcgt 3000
tttaacctac ctggggcgct gcagcgcaca ggtctcaatc tgggcgaatt tgtggccatc 3060
cgtggcgagt gggacggcca acaacttgtt ggttacttca gtccaattac actaccagag 3120
gaccttggca ctatctccct tctggttcgt gccgacaagg gcacattgaa ggaatggatc 3180
tgcgccttgc gaccgggcga ctccgtcgaa atcaaagcgt gtggaggtct tcgtattgat 3240
caagacccgg taaagaagtg tctgctgttt cgtaaccggc ctattacgcg gtttgctctt 3300
gtcgcggcag ggactggtgt cgcgcccatg ttgcaggtta ttcgtgcggc actcaagaag 3360
ccttacgtgg acacgttgga aagcatccgt cttatatacg ccgcagaaga gtacgacaca 3420
ttgacgtatc gctcaatttt gcagcggttt gcggaagagt tccccgacaa gttcgtctgc 3480
aacttcgttc ttaacaaccc acccgaaggg tggacaggtg gagtggggtt tgtcaacaaa 3540
aaatccctgc agaaggtgct gcaaccgcca tcgagtgagc cgctgattgt tgtgtgtgga 3600
ccgcccgtga tgcagcgcga cgtgaagaat gagttactga gcatgggtta tgacaaagag ctcgttcata cggttgacgg cgagtcggga acgctgta 3660 3698
- 28 032726 <210> 3 <211> 1164 <212> белок <213> Искусственная последовательность <220>
<223> FRDm Trypanosoma без 68 aa нацеливающего сигнала <400> 3
Met Ala Asp Gly lie Ser Ser Ala Ser lie Val Val Thr Asp Pro Glu
1 5 10 15
Ala Ala Ala Lys Lys Arg Asp Arg Met Ala Arg Glu Leu Leu Ser Ser
20 25 30
Asn Ser Gly Leu Cys Gin Glu Asp Glu Pro Thr He He Asn Leu Lys
35 40 45
Gly Leu Glu His Thr He Pro Tyr Arg Leu Ala Val Val Leu cys Asn
50 55 60
Ser Arg Ser Thr Gly Glu Phe Glu Ala Lys Ala Ala Glu He Leu Arg
65 70 75 80
Lys Ala Phe His Met Val Asp Tyr Ser Leu Asn cys Phe Asn Pro Glu
85 90 95
Ser Glu Leu Ser Arg Val Asn Ser Leu Pro Val Gly Glu Lys His Gin
100 105 110
Met Ser Glu Asp Leu Arg His Val Met Glu Cys Thr He Ser Val His
115 120 125
His Ser Ser Gly Met Gly Phe Asp Pro Ala Ala Gly Pro He He Ser
130 135 140
Arg Leu Arg Gly Ala Met Arg Asp His Asn Asp Met Ser Asp He Ser
145 150 155 160
- 29 032726
Val Thr Glu Ala Glu Val Glu Leu Phe Ser Leu Ala Gln Ser Phe Asp
165 170 175
Val Asp Leu Glu Glu Gly Thr Ile Ala Arg Lys His Ser Glu Ala Arg
180 185 190
Leu Asp Leu Gly Gly Val Asn Lys Gly Tyr Thr Val Asp Tyr Val Val
195 200 205
Asp His Leu Arg Ala Ala Gly Met Pro Asn Val Leu Phe Glu Trp Gly
210 215 220
Gly Asp Ile Arg Ala Ser Gly Arg Asn Ile Lys Gly Asn Leu Trp Ala
225 230 235 240
Val Ala Ile Lys Arg Pro Pro Ser Val Glu Glu Val Ile Arg Arg Ala
245 250 255
Lys Gly Lys Met Leu Lys Met Gly Glu Glu Glu Gln Glu Glu Lys Asp
260 265 270
Asp Asp Ser Pro Ser Leu Leu His Val Val Glu Leu Asp Asp Glu Ala
275 280 285
Leu cys Thr Ser Gly Asp Tyr Glu Asn Val Leu Tyr His Pro Lys His
290 295 300
Gly Val Ala Gly Ser Ile Phe Asp Trp Gln Arg Arg Gly Leu Leu Ser
305 310 315 320
Pro G1U Glu Gly Ala Leu Ala Gln Val Ser Val Lys Cys Tyr Ser Ala
325 330 335
Met Tyr Ala Asp Ala Leu Ala Thr Val Cys Leu Val Lys Arg Asp Ala
340 345 350
Val Arg Ile Arg Tyr Leu Leu Glu Gly Trp Arg Tyr Val Arg Ser Arg
355 360 365
- 30 032726
Val Thr 370 Asn Tyr Phe Ala Tyr 375 Thr
Met 385 His Glu Ile Ala Gln 390 Glu Thr
Ala Gly Ser Leu Pro 405 Ser Arg Ile
Gly Leu Ser Ala 420 Ala Ile Glu Ala
Leu Met Glu 435 Lys Glu Gly Arg Ile 440
Ser Gly 450 Ile Asn Gly Trp Gly 455 Thr
Leu 465 Asp Gly Gly Lys Tyr 470 Phe Glu
Gly Gly Thr Thr Asp 485 Pro Ala Leu
Gly Asp Ala Ile 500 Gly Trp Leu Thr
Leu Ser Gln 515 Leu Gly Gly His Ser 520
Asp Lys 530 Thr Asp Gly Thr Pro 535 Leu
Thr 545 Leu Glu Asp His Ile 550 Arg Asn
Met Thr His Val Ser 565 Val Thr Glu
Arg Gln Gly Glu Arg Leu Ala His
380
Arg Glu Leu 395 Arg Glu Ile Arg Ile 400
Val Ile 410 Val Gly Gly Gly Leu 415 Ala
Ala 425 Ser cys Gly Ala Gln 430 Val Ile
Gly Gly Asn Ser Ala 445 Lys Ala Thr
Arg Thr Gln Ala 460 Lys Ser Asp Ile
Arg Asp Thr 475 Phe Leu Ser Gly Val 480
Val Lys 490 Val Leu Ser Val Lys 495 Ser
Ser 505 Leu Gly Val Pro Leu 510 Ser Val
Phe Lys Arg Thr His 525 Arg Ala Pro
Pro Ile Gly His 540 Thr Ile Met Arg
Asn Leu Ser 555 Glu Arg Val Thr lie 560
Leu Leu 570 His Glu Thr Asp Thr 575 Thr
- 31 032726
Pro Asp Gly Ala 580 Ser Glu Val Arg Val Thr Gly Val Arg Tyr Arg Asp
585 590
Leu Ser Asp Val Asp Gly Gin Pro Ser Lys Leu Leu Ala Asp Ala Val
595 600 605
Val Leu Ala Thr Gly Gly Phe Ser Asn Asp Arg Glu Glu Asn Ser Leu
610 615 620
Leu Cys Lys Tyr Ala Pro His Leu Ala Ser Phe Pro Thr Thr Asn Gly
625 630 635 640
Pro Trp Ala Thr Gly Asp Gly Val Lys Leu Ala Thr Ser Val Gly Ala
645 650 655
Lys Leu Val Asp Met Asp Lys Val Gin Leu His Pro Thr Gly Leu Ile
660 665 670
Asp Pro Lys Asp Pro Ala Asn Thr Thr Lys Ile Leu Gly Pro Glu Ala
675 680 685
Leu Arg Gly Ser Gly Gly Ile Leu Leu Asn Lys Gin Gly Lys Arg Phe
690 695 700
Val Asn Glu Leu Asp Leu Arg Ser Val Val Ser Lys Ala Ile Asn Thr
705 710 715 720
Gin Gly Asn Glu Tyr Pro Gly Ser Gly Gly cys Tyr Phe Ala Tyr cys
725 730 735
Val Leu Asn Glu Asp Ala Thr Asn Leu Phe cys Gly Gly Ala Leu Gly
740 745 750
Phe Tyr Gly Lys Lys Leu Gly Leu Phe Gin Arg Ala Glu Thr Val Glu
755 760 765
Glu Leu Ala Lys Leu Ile Gly Cys Asp Glu Gly Glu Leu Arg Asp Thr
770 775 780
- 32 032726
Leu Glu Lys Tyr Glu Thr cys Ser Lys Ala Lys Vai Ala cys Pro Vai
785 790 795 800
Thr Gly Lys Vai Vai Phe Pro cys Vai Vai Gly Thr Arg Gly Pro Tyr
805 810 815
Asn Vai Ala Phe Vai Thr Pro Ser He HiS Tyr Thr Met Gly Gly cys
820 825 830
Leu He Ser Pro Ala Ala Glu Vai Leu Gin Glu Tyr Lys Gly Leu Asn
835 840 845
He Leu Glu Asn His Arg Pro He Arg cys Leu Phe Gly Ala Gly Glu
850 855 860
Vai Thr Gly Gly Vai His Gly Gly Asn Arg Leu Gly Gly Asn Ser Leu
865 870 875 880
Leu Glu Cys Vai Vai Phe Gly Lys He Ala Gly Asp Arg Ala Ala Thr
885 890 895
lie Leu Gin Lys Arg Glu He Ala Leu Ser Lys Thr Ser Trp Thr Ser
900 905 910
Vai Vai Vai Arg Glu Ser Arg Ser Gly Glu Gin Phe Gly Thr Gly Ser
915 920 925
Arg Vai Leu Arg Phe Asn Leu Pro Gly Ala Leu Gin Arg Thr Gly Leu
930 935 940
Asn Leu Gly Glu Phe Vai Ala He Arg Gly Glu Trp Asp Gly Gin Gin
945 950 955 960
Leu Vai Gly Tyr Phe Ser Pro He Thr Leu Pro Glu Asp Leu Gly Thr
965 970 975
He Ser Leu Leu Vai Arg Ala Asp Lys Gly Thr Leu Lys Glu Trp He
980 985 990
- 33 032726
Cys Ala Leu Arg Pro Gly Asp Ser Val Glu lie Lys Ala Cys Gly Gly
995 10001005
Leu Arg 1010 lie Asp Gln Asp Pro 1015 Val Lys Lys Cys Leu 1020 Leu Phe Arg
Asn Arg Pro He Thr Arg Phe Ala Leu Val Ala Ala Gly Thr Gly
1025 1030 1035
Val Ala Pro Met Leu Gln Val He Arg Ala Ala Leu Lys Lys Pro
1040 1045 1050
Tyr Val Asp Thr Leu Glu Ser He Arg Leu He Tyr Ala Ala Glu
1055 1060 1065
Glu Tyr Asp Thr Leu Thr Tyr Arg Ser He Leu Gln Arg Phe Ala
1070 1075 1080
Glu Glu Phe Pro Asp Lys Phe Val cys Asn Phe Val Leu Asn Asn
1085 1090 1095
Pro Pro Glu Gly Trp Thr Gly Gly Val Gly Phe Val Asn Lys Lys
1100 1105 1110
Ser Leu Gln Lys Val Leu Gln Pro Pro Ser Ser Glu Pro Leu He
1115 1120 1125
Val Val cys Gly Pro Pro Val Met Gln Arg Asp Val Lys Asn Glu
1130 1135 1140
Leu Leu Ser Met Gly Tyr Asp Lys Glu Leu Val His Thr Val Asp
1145 1150 1155
Gly Glu Ser Gly Thr Leu
1160 <210>4 <211>1142 <212> белок <213> Trypanosoma brucei
- 34 032726 <400> 4
Met Val Asp Gly Arg Ser Ser Ala Ser He Val Ala Val Asp РГО Glu
1 5 10 15
Arg Ala Ala Arg Glu Arg Asp Ala Ala Ala Arg Ala Leu Leu Gin Asp
20 25 30
Ser Pro Leu His Thr Thr Met Gin Tyr Ala Thr Ser Gly Leu Glu Leu
35 40 45
Thr Val Pro Tyr Ala Leu Lys Val Val Ala Ser Ala Asp Thr Phe Asp
50 55 60
Arg Ala Lys Glu Val Ala Asp Glu Val Leu Arg Cys Ala Trp Gin Leu
65 70 75 80
Ala Asp Thr Val Leu Asn Ser Phe Asn Pro Asn Ser Glu Val Ser Leu
85 90 95
Val Gly Arg Leu Pro Val Gly Gin Lys His Gin Met Ser Ala Pro Leu
100 105 110
Lys Arg Val Met Ala Cys cys Gin Arg Val Tyr Asn Ser Ser Ala Gly
115 120 125
cys Phe Asp Pro Ser Thr Ala Pro Val Ala Lys Ala Leu Arg Glu He
130 135 140
Ala Leu Gly Lys Glu Arg Asn Asn Ala cys Leu Glu Ala Leu Thr Gin
145 150 155 160
Ala cys Thr Leu Pro Asn Ser Phe Val He Asp Phe Glu Ala Gly Thr
165 170 175
lie Ser Arg Lys His Glu His Ala Ser Leu Asp Leu Gly Gly Val Ser
180 185 190
Lys Gly Tyr He Val Asp Tyr Val He Asp Asn He Asn Ala Ala Gly
- 35 032726
195 200 205
Phe Gin Asn Vai Phe Phe Asp Trp Gly Gly Asp cys Arg Ala Ser Gly
210 215 220
Met Asn Ala Arg Asn Thr Pro Trp Vai Vai Gly He Thr Arg Pro Pro
225 230 235 240
Ser Leu Asp Met Leu Pro Asn Pro Pro Lys Glu Ala Ser Tyr He Ser
245 250 255
Vai He Ser Leu Asp Asn Glu Ala Leu Ala Thr Ser Gly Asp Tyr Glu
260 265 270
Asn Leu He Tyr Thr Ala Asp Asp Lys Pro Leu Thr cys Thr Tyr Asp
275 280 285
Trp Lys Gly Lys Glu Leu Met Lys Pro Ser Gin Ser Asn He Ala Gin
290 295 300
Vai Ser Vai Lys Cys Tyr Ser Ala Met Tyr Ala Asp Ala Leu Ala Thr
305 310 315 320
Ala Cys Phe He Lys Arg Asp Pro Ala Lys Vai Arg Gin Leu Leu Asp
325 330 335
Gly Trp Arg Tyr Vai Arg Asp Thr Vai Arg Asp Tyr Arg Vai Tyr Vai
340 345 350
Arg Glu Asn Glu Arg Vai Ala Lys Met Phe Glu He Ala Thr Glu Asp
355 360 365
Ala Glu Met Arg Lys Arg Arg He Ser Asn Thr Leu Pro Ala Arg Vai
370 375 380
lie Vai Vai Gly Gly Gly Leu Ala Gly Leu Ser Ala Ala He Glu Ala
385 390 395 400
Ala Gly Cys Gly Ala Gin Vai Vai Leu Met Glu Lys Glu Ala Lys Leu
- 36 032726
405 410 415
Gly Gly Asn Ser Ala Lys Ala Thr Ser Gly Ile Asn Gly Trp Gly Thr
420 425 430
Arg Ala Gln Ala Lys Ala Ser Ile Val Asp Gly Gly Lys Tyr Phe Glu
435 440 445
Arg Asp Thr Tyr Lys Ser Gly Ile Gly Gly Asn Thr Asp Pro Ala Leu
450 455 460
Val Lys Thr Leu Ser Met Lys Ser Ala Asp Ala Ile Gly Trp Leu Thr
465 470 475 480
Ser Leu Gly Val Pro Leu Thr Val Leu Ser Gln Leu Gly Gly His Ser
485 490 495
Arg Lys Arg Thr His Arg Ala Pro Asp Lys Lys Asp Gly Thr Pro Leu
5Θ0 505 510
Pro Ile Gly Phe Thr Ile Met Lys Thr Leu Glu Asp His Val Arg Gly
515 520 525
Asn Leu Ser Gly Arg Ile Thr lie Met Glu Asn Cys Ser Val Thr Ser
530 535 540
Leu Leu Ser Glu Thr Lys Glu Arg Pro Asp Gly Thr Lys Gln Ile Arg
545 550 555 560
Val Thr Gly Val Glu Phe Thr Gln Ala Gly Ser Gly Lys Thr Thr Ile
565 570 575
Leu Ala Asp Ala Val Ile Leu Ala Thr Gly Gly Phe Ser Asn Asp Lys
580 585 590
Thr Ala Asp Ser Leu Leu Arg Glu His Ala Pro His Leu Val Asn Phe
595 600 605
Pro Thr Thr Asn Gly Pro Trp Ala Thr Gly Asp Gly Val Lys Leu Ala
- 37 032726
610 615 620
Gln Arg Leu Gly Ala Gln Leu Vai Asp Met Asp Lys Vai Gln Leu His
625 630 635 640
Pro Thr Gly Leu He Asn Pro Lys Asp Pro Ala Asn Pro Thr Lys Phe
645 650 655
Leu Gly Pro Glu Ala Leu Arg Gly Ser Gly Gly Vai Leu Leu Asn Lys
660 665 670
Gln Gly Lys Arg Phe Vai Asn Glu Leu Asp Leu Arg Ser Vai Vai Ser
675 680 685
Lys Ala lie Met Glu Gln Gly Ala Glu Tyr Pro Gly Ser Gly Gly Ser
690 695 700
Met Phe Ala Tyr cys Vai Leu Asn Ala Ala Ala Gln Lys Leu Phe Gly
705 710 715 720
Vai Ser Ser His Glu Phe Tyr Trp Lys Lys Met Gly Leu Phe Vai Lys
725 730 735
Ala Asp Thr Met Arg Asp Leu Ala Ala Leu He Gly Cys Pro Vai Glu
740 745 750
Ser Vai Gln Gln Thr Leu Glu Glu Tyr Glu Arg Leu Ser He Ser Gln
755 760 765
Arg Ser Cys Pro lie Thr Arg Lys Ser Vai Tyr Pro cys Vai Leu Gly
770 775 780
Thr Lys Gly Pro Tyr Tyr Vai Ala Phe Vai Thr Pro Ser He His Tyr
785 790 795 800
Thr Met Gly Gly cys Leu He Ser Pro Ser Ala Glu He Gln Met Lys
805 810 815
Asn Thr Ser Ser Arg Ala Pro Leu Ser His Ser Asn Pro He Leu Gly
820 825 830
Leu Phe Gly Ala Gly Glu Val Thr Gly Gly Val His Gly Gly Asn Arg
835 840 845
Leu Gly Gly Asn Ser Leu Leu Glu cys Val Val Phe Gly Arg He Ala
850 855 860
Gly Asp Arg Ala Ser Thr He Leu Gln Arg Lys Ser Ser Ala Leu Ser
865 870 875 880
Phe Lys Val Trp Thr Thr Val Val Leu Arg Glu Val Arg Glu Gly Gly
885 890 895
Val Tyr Gly Ala Gly Ser Arg Val Leu Arg Phe Asn Leu Pro Gly Ala
900 905 910
Leu Gln Arg Ser Gly Leu Ser Leu Gly Gln Phe He Ala He Arg Gly
915 920 925
Asp Trp Asp Gly Gln Gln Leu He Gly Tyr Tyr Ser Pro He Thr Leu
930 935 940
Pro Asp Asp Leu Gly Met He Asp He Leu Ala Arg Ser Asp Lys Gly
945 950 955 960
Thr Leu Arg Glu Trp He Ser Ala Leu Glu Pro Gly Asp Ala Val Glu
965 970 975
Met Lys Ala cys Gly Gly Leu Val He Glu Arg Arg Leu Ser Asp Lys
980 985 990
His Phe Val Phe Met Gly His He He Asn Lys Leu Cys Leu He A)
995 1000 1005
Gly Gly Thr Gly Val Ala Pro Met Leu Gln He lie Lys Ala Ala 1010 1015 1020
Phe Met Lys Pro Phe He Asp Thr Leu Glu Ser Val His Leu lie
- 39 032726
1025 10301035
Туг Ala Ala Glu Asp Val Thr Glu Leu Thr Tyr Arg Glu Val Leu
1040 1045 1050
Glu Glu Arg Arg Arg Glu Ser Arg Gly Lys Phe Lys Lys Thr Phe
1055 1060 1065
Val Leu Asn Arg Pro Pro Pro Leu Trp Thr Asp Gly Val Gly Phe
1070 1075 1080
Ile Asp Arg Gly Ile Leu Thr Asn His Val Gln Pro Pro Ser Asp
1085 1090 1095
Asn Leu Leu Val Ala Ile Cys Gly Pro Pro Val Met Gln Arg Ile
1100 1105 1110
Val Lys Ala Thr Leu Lys Thr Leu Gly Tyr Asn Met Asn Leu Val
1115 1120 1125
Arg Thr Val Asp Glu Thr Glu Pro Ser Gly Ser Ser Lys Ile
1130 1135 1140
<210>5 <211>3429 <212> ДНК <213> Trypanosoma brucei <400> 5
atggtagacg ggcgatcttc tgcatcaatt gttgccgttg atcccgaaag ggctgcgcgt 60
gagcgcgacg cagcagcgcg tgcccttctt caagacagtc cgctacacac gaccatgcaa 120
tatgcaacgt ctggtcttga gcttaccgtt ccctatgcac ttaaggtggt tgccagtgct 180
gacaccttcg atcgcgctaa ggaggttgcc gatgaggtgc tacgctgcgc atggcaactc 240
gccgacaccg tgttgaacag tttcaacccg aacagtgagg tttcactcgt gggtcgcctg 300
cctgtggggc agaagcacca aatgtctgct ccactcaagc gtgtgatggc atgctgccag 360
cgtgtgtata actcatcggc tggatgtttt gatccctcca cagcacccgt cgcaaaggcg 420
ctgcgtgaga ttgcactggg gaaggagcgg aacaatgctt gtctggaggc acttactcaa 480
- 40 032726
gcgtgtacgc ttcccaacag ttttgtgatc gatttcgaag ctggaactat cagccgtaag 540
cacgagcatg cgtctctgga cctaggtggg gttagcaaag gttatatcgt tgattatgtc 600
attgataata tcaatgctgc tggatttcaa aacgtttttt ttgactgggg tggagactgc 660
cgtgcgagtg gtatgaatgc gcgcaatacc ccgtgggttg ttggtataac tcgccctccg 720
tcccttgata tgctccctaa cccgccaaag gaggcgtcgt atatcagcgt tatctctctc 780
gacaacgagg cccttgccac gagtggcgat tatgaaaact taatatacac cgctgatgat 840
aaacccctta cctgcactta tgactggaag gggaaggaac tgatgaaacc ttctcagtcc 900
aatatcgcgc aggtatcggt taaatgttat agcgccatgt acgctgacgc gcttgcgact 960
gcgtgtttca taaagcggga tcccgcgaag gttcgacagc tgctggacgg ttggcgttac 1020
gtgcgtgata cagtgagaga ttacagggtc tacgttcgtg aaaatgagcg agtagcgaag 1080
atgtttgaga tcgccacaga ggatgcggaa atgaggaaga ggcggatcag caacacactt 1140
cccgctcgtg tcattgtggt gggcggtggt cttgcgggtt tgtccgcggc catcgaagct 1200
gcaggatgcg gtgctcaggt tgtgcttatg gagaaggagg cgaagctcgg aggcaacagc 1260
gccaaggcga catctggtat caacggatgg ggcacacgtg ctcaggcgaa ggcaagcatt 1320
gtggatggtg ggaaatactt cgagcgtgac acatacaagt ctggtatcgg gggtaacacc 1380
gatcctgccc ttgtgaagac actttctatg aaaagtgctg acgctattgg gtggctgacc 1440
tcgttgggtg taccgctgac ggtattgtca cagcttgggg gtcacagccg caagcgcaca 1500
catcgggcac cggataagaa agatggtaca cctctaccta tcggatttac aatcatgaaa 1560
accctcgagg atcacgtgcg tggtaacctt tctggccgca tcaccataat ggaaaactgc 1620
agtgtaacgt cgttgctcag tgagacgaag gaacggccag atggcactaa acagatacga 1680
gttactggtg tggagttcac gcaggctggc agtgggaaga cgaccatact tgcagatgct 1740
gtcatccttg ccactggtgg attttctaac gacaaaactg cagactccct gcttcgtgag 1800
cacgccccgc acttggtcaa cttccctacg acgaatggcc cgtgggcgac aggtgatggc 1860
gtgaaacttg cacagcgact tggcgctcaa ctggtggata tggacaaggt ccagttgcat 1920
ccgacaggcc tcatcaaccc gaaggatcca gcgaacccta caaagttcct tggacctgag 1980
gcgctacgtg gatccggtgg cgttttgttg aacaagcaag gcaagcgctt cgttaatgaa 2040
- 41 032726
cttgacctcc gttctgtggt atcgaaagcc atcatggaac agggtgcgga atatcctgga 2100
tcgggtggta gcatgttcgc ctactgtgtg ttgaatgctg cggcgcagaa gctctttggt 2160
gtcagctcac acgagttcta ctggaagaag atgggtctct tcgtgaaggc tgacaccatg 2220
agggacctcg ctgcactcat tgggtgccca gtggaatctg tgcagcagac gctggaggag 2280
tacgagcggc tctccatatc acagcgttcc tgccccatca cgcgcaaaag cgtctatccg 2340
tgcgtgctcg gcactaaggg cccctactac gtcgccttcg tgacaccttc gattcactac 2400
acaatgggtg gatgtctcat ctcgccttct gctgaaatac aaatgaagaa cacatcatca 2460
cgcgctccac tgagtcacag caacccaatc ctcgggttat ttggtgccgg tgaggtaacg 2520
ggtggtgtgc acggtgggaa ccggttgggc ggcaattcgc tgcttgagtg cgtcgtgttt 2580
gggagaattg cgggtgatcg ggcctcgacc atccttcaga ggaagtcctc agcactttcc 2640
ttcaaggtgt ggacgaccgt ggtgctgcgt gaagtacgcg aaggtggtgt gtacggtgct 2700
gggtcccgcg tgcttcgctt taatttaccc ggggcgctgc aacggtctgg tctgagcctc 2760
ggccaattta tcgcaattcg tggtgattgg gacggtcagc agttgatcgg ttattacagt 2820
cccatcacgc tgccagatga tcttggcatg atcgatatac tcgcccgcag tgataagggg 2880
acgctgaggg agtggatttc cgctctggag ccgggtgacg ctgtggagat gaaggcatgc 2940
ggtggtctgg tgattgagcg ccgcttaagc gataagcact ttgtgttcat gggacacatt 3000
atcaacaagc tttgtctaat tgctggtgga acgggtgtgg caccgatgct gcaaataatc 3060
aaagcagcct ttatgaaacc cttcattgac acattggaga gcgttcatct catctatgcc 3120
gcggaggacg tgacggagtt gacgtatcgc gaggtgctgg aggagcgccg tcgtgagtca 3180
cgtggaaagt tcaagaaaac gtttgtcctc aaccggcccc cgcccctatg gactgatggt 3240
gttggcttca tcgaccgggg catcctcaca aatcatgtgc agccgccatc tgacaacctg 3300
ctggtggcca tatgcggacc accggtaatg cagcgcattg taaaggcgac cctgaagact 3360
ttgggctaca acatgaacct tgtgaggact gtggatgaaa cggagccgag cggctcatcc 3420
aaaatttga 3429
<210> б <211> 1139
- 42 032726 <212> белок <213> Искусственная последовательность <220>
<223> FRDg без 3 аа С-концевого нацеливающего сигнала <400> б
Met Vai Asp Gly Arg Ser Ser Ala Ser Ile Vai Ala Vai Asp Pro Glu
1 5 10 15
Arg Ala Ala Arg Glu Arg Asp Ala Ala Ala Arg Ala Leu Leu Gin Asp
20 25 30
Ser Pro Leu His Thr Thr Met Gin Tyr Ala Thr Ser Gly Leu Glu Leu
35 40 45
Thr Vai Pro Tyr Ala Leu Lys Vai Vai Ala Ser Ala Asp Thr Phe Asp
50 55 60
Arg Ala Lys Glu Vai Ala Asp Glu Vai Leu Arg cys Ala Trp Gin Leu
65 70 75 80
Ala Asp Thr Vai Leu Asn Ser Phe Asn Pro Asn Ser Glu Vai Ser Leu
85 90 95
Vai Gly Arg Leu Pro Vai Gly Gin Lys His Gin Met Ser Ala Pro Leu
100 105 110
Lys Arg Vai Met Ala cys cys Gin Arg Vai Tyr Asn Ser Ser Ala Gly
115 120 125
Cys Phe Asp Pro Ser Thr Ala Pro Vai Ala Lys Ala Leu Arg Glu Ile
130 135 140
Ala Leu Gly Lys Glu Arg Asn Asn Ala cys Leu Glu Ala Leu Thr Gin
145 150 155 160
Ala cys Thr Leu Pro Asn Ser Phe Vai Ile Asp Phe Glu Ala Gly Thr
165 170 175
- 43 032726
lie Ser Arg Lys His Glu His Ala Ser Leu Asp Leu Gly Gly Vai Ser
180 185 190
Lys Gly Tyr lie Vai Asp Tyr Vai Ile Asp Asn Ile Asn Ala Ala Gly
195 200 205
Phe Gin Asn Vai Phe Phe Asp Trp Gly Gly Asp cys Arg Ala Ser Gly
210 215 220
Met Asn Ala Arg Asn Thr Pro Trp Vai Vai Gly Ile Thr Arg Pro Pro
225 230 235 240
Ser Leu Asp Met Leu Pro Asn Pro Pro Lys G1U Ala Ser Tyr Ile Ser
245 250 255
Vai Ile Ser Leu Asp Asn Glu Ala Leu Ala Thr Ser Gly Asp Tyr Glu
260 265 270
Asn Leu Ile Tyr Thr Ala Asp Asp Lys Pro Leu Thr cys Thr Tyr Asp
275 280 285
Trp Lys Gly Lys Glu Leu Met Lys Pro Ser Gin Ser Asn Ile Ala Gin
290 295 300
Vai Ser Vai Lys cys Tyr Ser Ala Met Tyr Ala Asp Ala Leu Ala Thr
305 310 315 320
Ala Cys Phe Ile Lys Arg Asp Pro Ala Lys Vai Arg Gin Leu Leu Asp
325 330 335
Gly Trp Arg Tyr Vai Arg Asp Thr Vai Arg Asp Tyr Arg Vai Tyr Vai
340 345 350
Arg Glu Asn Glu Arg Vai Ala Lys Met Phe Glu Ile Ala Thr Glu Asp
355 360 365
Ala Glu Met Arg Lys Arg Arg lie Ser Asn Thr Leu Pro Ala Arg Vai
370 375 380
- 44 032726
Ile Val Val Gly Gly Gly Leu Ala Gly Leu Ser Ala Ala Ile Glu Ala
385 390 395 400
Ala Gly cys Gly Ala Gin Val Val Leu Met Glu Lys Glu Ala Lys Leu
405 410 415
Gly Gly Asn Ser Ala Lys Ala Thr Ser Gly lie Asn Gly Trp Gly Thr
420 425 430
Arg Ala Gin Ala Lys Ala Ser Ile Val Asp Gly Gly Lys Tyr Phe Glu
435 440 445
Arg Asp Thr Tyr Lys Ser Gly Ile Gly Gly Asn Thr Asp Pro Ala Leu
450 455 460
Val Lys Thr Leu Ser Met Lys Ser Ala Asp Ala lie Gly Trp Leu Thr
465 470 475 480
Ser Leu Gly Val Pro Leu Thr Val Leu Ser Gin Leu Gly Gly His Ser
485 490 495
Arg Lys Arg Thr His Arg Ala Pro Asp Lys Lys Asp Gly Thr Pro Leu
500 505 510
Pro Ile Gly Phe Thr lie Met Lys Thr Leu Glu Asp His Val Arg Gly
515 520 525
Asn Leu Ser Gly Arg Ile Thr lie Met Glu Asn Cys Ser Val Thr Ser
530 535 540
Leu Leu Ser Glu Thr Lys Glu Arg Pro Asp Gly Thr Lys Gin Ile Arg
545 550 555 560
Val Thr Gly Val Glu Phe Thr Gin Ala Gly Ser Gly Lys Thr Thr Ile
565 570 575
Leu Ala Asp Ala Val Ile Leu Ala Thr Gly Gly Phe Ser Asn Asp Lys
580 585 590
- 45 032726
Thr Ala Asp 595 Ser Leu Leu Arg Glu His Ala Pro His Leu Val Asn Phe
600 605
Pro Thr Thr Asn Gly Pro Trp Ala Thr Gly Asp Gly Val Lys Leu Ala
610 615 620
Gin Arg Leu Gly Ala Gin Leu Val Asp Met Asp Lys Val Gin Leu His
625 630 635 640
Pro Thr Gly Leu He Asn Pro Lys Asp Pro Ala Asn Pro Thr Lys Phe
645 650 655
Leu Gly Pro Glu Ala Leu Arg Gly Ser Gly Gly Val Leu Leu Asn Lys
660 665 670
Gin Gly Lys Arg Phe Val Asn Glu Leu Asp Leu Arg Ser Val Val Ser
675 680 685
Lys Ala lie Met Glu Gin Gly Ala Glu Tyr Pro Gly Ser Gly Gly Ser
690 695 700
Met Phe Ala Tyr cys Val Leu Asn Ala Ala Ala Gin Lys Leu Phe Gly
705 710 715 720
Val Ser Ser His Glu Phe Tyr Trp Lys Lys Met Gly Leu Phe Val Lys
725 730 735
Ala Asp Thr Met Arg Asp Leu Ala Ala Leu He Gly Cys Pro Val Glu
740 745 750
Ser Val Gin Gin Thr Leu Glu Glu Tyr Glu Arg Leu Ser He Ser Gin
755 760 765
Arg Ser cys Pro He Thr Arg Lys Ser Val Tyr Pro cys Val Leu Gly
770 775 780
Thr Lys Gly Pro Tyr Tyr Val Ala Phe Val Thr Pro Ser He His Tyr
785 790 795 800
- 46 032726
Thr Met Gly Gly cys Leu Ile Ser Pro Ser Ala Glu Ile Gin Met Lys
805 810 815
Asn Thr Ser Ser Arg Ala Pro Leu Ser His Ser Asn Pro Ile Leu Gly
820 825 830
Leu Phe Gly Ala Gly Glu Val Thr Gly Gly Val His Gly Gly Asn Arg
835 840 845
Leu Gly Gly Asn Ser Leu Leu Glu cys Val Val Phe Gly Arg Ile Ala
850 855 860
Gly Asp Arg Ala Ser Thr lie Leu Gin Arg Lys Ser Ser Ala Leu Ser
865 870 875 880
Phe Lys Val Trp Thr Thr Val val Leu Arg Glu Val Arg Glu Gly Gly
885 890 895
Val Tyr Gly Ala Gly Ser Arg Val Leu Arg Phe Asn Leu Pro Gly Ala
900 905 910
Leu Gin Arg Ser Gly Leu Ser Leu Gly Gin Phe Ile Ala Ile Arg Gly
915 920 925
Asp Trp Asp Gly Gin Gin Leu He Gly Tyr Tyr Ser Pro Ile Thr Leu
930 935 940
Pro Asp Asp Leu Gly Met Ile Asp Ile Leu Ala Arg Ser Asp Lys Gly
945 950 955 960
Thr Leu Arg Glu Trp Ile Ser Ala Leu Glu Pro Gly Asp Ala Val Glu
965 970 975
Met Lys Ala cys Gly Gly Leu Val Ile Glu Arg Arg Leu Ser Asp Lys
980 985 990
His Phe Val Phe Met Gly His Ile Ile Asn Lys Leu Cys Leu Ile Ala
995 1000 1005
- 47 032726
Gly Gly Thr Gly Vai Ala Pro Met Leu Gln He He Lys Ala Ala
1010 1015 1020
Phe Met Lys Pro Phe He Asp Thr Leu Glu Ser Vai His Leu He
1025 1030 1035
Tyr Ala Ala Glu Asp Vai Thr Glu Leu Thr Tyr Arg Glu Vai Leu
1040 1045 1050
Glu Glu Arg Arg Arg Glu Ser Arg Gly Lys Phe Lys Lys Thr Phe
1055 1060 1065
Vai Leu Asn Arg Pro Pro Pro Leu Trp Thr Asp Gly Vai Gly Phe
1070 1075 1080
He Asp Arg Gly lie Leu Thr Asn His Vai Gln Pro Pro Ser Asp
1085 1090 1095
Asn Leu Leu Vai Ala He Cys Gly Pro Pro Vai Met Gln Arg lie
1100 1105 1110
Vai Lys Ala Thr Leu Lys Thr Leu Gly Tyr Asn Met Asn Leu Vai
1115 1120 1125
Arg Thr Vai Asp Glu Thr Glu Pro Ser Gly Ser
1130 1135 <210> 7 <211> 3498 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> FRDml оптимизированный по кодонам для A. niger <400>7 atgggtgccg atggtatctc ctctgcctcc attgtcgtca ccgaccccga ggctgctgcc60 aagaagcgtg accgcatggc ccgtgagctc ctctcctcca actccggtct ttgccaggag120 gatgagccca ccatcatcaa cctgaagggt ctggaacaca ccatccccta ccgtcttgct180 gttgtccttt gcaactctcg cagcactggt gaattcgagg ccaaggctgc tgagatcctc240
- 48 032726
cgcaaggctt tccacatggt tgactactct ctgaactgct tcaaccccga gtccgagctc 300
tcccgtgtca acagcttgcc tgtcggtgag aagcaccaga tgagcgaaga tctgcgccac 360
gtcatggagt gcaccatctc cgtccaccac tcctctggca tgggtttcga ccctgctgct 420
ggtcccatca tctcccgtct gcgtggtgcc atgcgcgacc acaacgacat gtccgacatc 480
tccgtcaccg aggctgaggt tgagctgttc tcgctagcgc agtcgttcga tgttgacctc 540
gaggagggca ccattgctcg caagcactcc gaggctcgcc tcgaccttgg tggtgtcaac 600
aagggctaca ctgttgacta cgtggtggac cacctccgcg ctgctggcat gcccaacgtc 660
ctgttcgaat ggggtggtga catccgtgcc tccggccgca acatcaaggg caacctctgg 720
gctgttgcca tcaagcgccc tccctccgtt gaggaggtca tccgccgtgc caagggcaag 780
atgctcaaga tgggtgaaga agaacaggag gagaaggatg atgactctcc cagccttctg 840
cacgttgttg agctcgatga tgaggccctc tgcacctccg gtgactacga gaacgtcctc 900
taccacccca agcacggtgt tgctggcagc atcttcgact ggcagcgccg tggtctgctg 960
tctcctgagg agggtgctct tgctcaggtt tccgtcaagt gctactctgc catgtacgcc 1020
gatgcccttg ccaccgtctg cctggtcaag cgtgatgccg tccgtatccg ctacctcctg 1080
gaaggctggc gctacgtgcg ctctcgtgtc accaactact tcgcctacac ccgccagggt 1140
gagcgtcttg ctcacatgca cgaaattgcc caggagactc gtgagctccg tgagatccgc 1200
attgctggct ccctcccctc ccgtatcgtc atcgtcggtg gtggtctggc cggtctgtct 1260
gctgccattg aggctgcctc ctgcggtgct caggtcatcc tgatggagaa ggagggtcgt 1320
attggtggca actctgccaa ggccacctcc ggtatcaacg gctggggtac tcgcactcag 1380
gccaagtccg acatcctgga tggcggcaag tacttcgagc gtgacacctt cctgagcggt 1440
gttggtggta ccactgaccc tgctctggtc aaggtcctct ccgtcaagtc cggtgatgcc 1500
attggctggt tgaccagcct tggtgttcct ctttctgttc tctcccagct gggtggtcac 1560
tctttcaagc gtacccaccg tgctcctgac aagactgatg gcactcctct ccccatcggt 1620
cacaccatca tgcgcaccct cgaggaccac atccgcaaca acctgagcga acgtgtcacc 1680
atcatgaccc acgtttccgt cactgagctc ctccacgaga ctgacaccac tcccgatggt 1740
gcctccgagg tccgtgtcac cggtgtccgc taccgtgacc tctccgatgt tgacggccag 1800
- 49 032726
cccagcaagc tccttgccga tgccgttgtc cttgccactg gtggtttctc caacgaccgc 1860
gaggagaaca gcttgctttg caagtacgcc ccccacctgg cctccttccc caccaccaac 1920
ggcccttggg ccactggtga tggtgtcaag ctggccacct ccgtcggtgc caagctcgtc 1980
gacatggaca aggtccagct gcaccccact ggcttgattg accccaagga ccccgccaac 2040
accaccaaga tcctgggccc cgaggctctc cgtggcagcg gtggtatcct gctcaacaag 2100
cagggcaagc gcttcgtcaa cgagcttgac ctccgcagcg ttgtctccaa ggccatcaac 2160
actcagggca acgaataccc cggcagcggt ggctgctact tcgcctactg cgtgttgaac 2220
gaagatgcca ccaacctgtt ctgcggtggt gctcttggat tctacggcaa gaagcttggt 2280
ctgttccagc gtgctgagac tgttgaggag cttgccaagt tgattggctg cgatgagggc 2340
gagctccgtg acaccctcga gaagtacgag acttgctcga aggccaaggt tgcctgcccc 2400
gtgaccggca aggtcgtgtt cccctgcgtt gttggtaccc gtggtcccta caacgtcgct 2460
ttcgtcaccc cctccatcca ctacaccatg ggtggctgct tgatttctcc tgctgctgag 2520
gtcctccagg aatacaaggg tctgaacatc ctggagaacc accgtcccat tcgctgcttg 2580
ttcggtgctg gtgaagtcac cggtggtgtc cacggtggca accgcctggg tggcaactcc 2640
ctcctcgagt gcgttgtgtt cggcaagatc gctggtgacc gtgctgccac cattctccag 2700
aagcgcgaaa ttgccctctc caagaccagc tggacctccg tcgtcgtccg cgagtcccgc 2760
tctggcgagc agttcggtac cggctctcgt gtcctccgct tcaacctgcc cggtgctctc 2820
cagcgcactg gtctgaacct gggtgagttc gtcgccatcc gtggtgaatg ggatggccag 2880
cagctggtcg gctacttctc ccccatcacc ctccccgaag atcttggtac catctccctc 2940
ctggtccgtg ccgacaaggg caccctcaag gaatggatat gtgccctccg ccccggtgac 3000
agcgttgaga tcaaggcctg cggtggtctg cgtatcgacc aggaccctgt caagaagtgc 3060
ttgctattcc gcaaccgccc catcacccgc ttcgctcttg ttgctgctgg tactggtgtt 3120
gctcccatgc tccaggtcat ccgtgctgct ctcaagaagc cctacgtgga tacattggag 3180
tccatccgtc tgatctacgc tgctgaagaa tacgacaccc tgacctaccg ctccatcctc 3240
cagcgcttcg ctgaggagtt ccccgacaag ttcgtctgca acttcgtcct caacaaccct 3300
cctgaaggct ggactggtgg tgttggtttc gtcaacaaga agtccctcca gaaggtcctc 3360
- 50 032726 cagcctccta gctctgagcc tctgattgtc gtctgcggtc ctcctgtcat gcagcgtgat 3420 gtcaagaacg agctcctcag catgggctac gacaaggagc ttgtccacac cgttgacggc 3480 gagtctggca ccctataa 3498 <210> 8 <211> 3420 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> FRDg оптимизированный ген для A. niger <400> 8
atggtcgatg gccgctcctc cgcctccatt gttgctgttg accccgagcg tgctgctcgt 60
gagcgtgatg ctgctgctcg tgccctcctc caggactctc ccttgcacac caccatgcag 120
tacgccacct ccggtctgga attgactgtt ccctacgccc tcaaggttgt tgcctccgcc 180
gacaccttcg accgtgccaa ggaggttgcc gatgaggtcc tccgctgcgc ctggcagctg 240
gccgacaccg tcctcaactc tttcaacccc aacagcgaag tctctctggt cggccgcctc 300
cccgtcggtc agaagcacca gatgagcgct cctctcaagc gtgtcatggc ctgctgccag 360
cgtgtctaca acagctctgc tggctgcttc gaccccagca ctgctcctgt tgccaaggcc 420
ctccgtgaga tcgctcttgg caaggagcgc aacaacgcct gcttggaggc tcttactcag 480
gcctgcaccc tccccaactc gttcgtcatt gacttcgagg ctggcaccat ctcccgcaag 540
cacgaacacg cctccctcga tcttggtggt gtcagcaagg gctacatcgt cgactacgtc 600
attgacaaca tcaacgctgc tggtttccag aacgttttct tcgactgggg tggtgactgc 660
cgtgcctccg gcatgaacgc ccgcaacacc ccctgggttg ttggtatcac ccgccccccg 720
tcattggaca tgcttcccaa ccctcccaag gaggccagct acatctccgt catctccctc 780
gacaacgagg ctcttgccac cagcggtgac tacgagaacc tgatctacac tgccgatgac 840
aagcctctga cctgcaccta cgactggaag ggcaaggagc tcatgaagcc cagccagtcc 900
aacattgccc aggtcagcgt caagtgctac tctgccatgt acgccgatgc ccttgccact 960
gcttgcttca tcaagcgtga ccccgccaag gtccgccagc tgttggatgg ctggcgctac 1020
gtgcgcgaca ccgtccgtga ctaccgtgtc tacgtgcgcg agaacgagcg tgttgccaag 1080
- 51 032726
atgttcgaaa ttgccactga ggatgccgag atgcgcaagc gccgtatctc caacaccctc 1140
cctgctcgtg tcattgttgt tggtggtggt ctggctggtc tttctgctgc cattgaggct 1200
gctggctgcg gtgctcaggt tgtcctgatg gagaaggagg ccaagctcgg tggcaactcc 1260
gccaaggcca cctccggtat caacggctgg ggtactcgtg ctcaggccaa ggcctccatc 1320
gtcgatggcg gcaagtactt cgagcgtgac acctacaagt ccggtatcgg tggcaacacc 1380
gaccctgctc tggtcaagac cctgagcatg aagtccgccg atgccattgg ctggttgacc 1440
agccttggtg ttcctcttac tgtcctttct cagctgggtg gccactctcg caagcgcacc 1500
caccgtgctc ctgacaagaa ggacggcacc cccctcccca tcggtttcac catcatgaaa 1560
actctcgagg accacgtccg tggcaacctg tctggccgta tcaccatcat ggagaactgc 1620
tcggtgacct cgctactctc cgagactaag gagcgccccg atggcaccaa gcagatccgt 1680
gtcaccggtg ttgagttcac ccaggctggc tctggcaaga ccaccatcct ggccgatgcc 1740
gtcatcctgg ccactggtgg tttctccaac gacaagactg ccgactcgct actccgcgaa 1800
cacgctcccc acctggtcaa cttccccacc accaacggcc cctgggcgac tggtgatggt 1860
gtcaagctgg cccagcgtct gggtgctcag ctcgtcgaca tggacaaggt ccagctccac 1920
cccactggtc tgatcaaccc caaggaccct gccaacccca ccaagttcct tggacctgag 1980
gctctccgtg gctccggtgg tgtccttctg aacaagcagg gcaagcgctt cgtcaacgag 2040
ctcgatctcc gcagcgttgt ctccaaggcc atcatggagc agggtgctga ataccccggc 2100
agcggtggca gcatgttcgc ctactgcgtt ctcaacgctg ctgctcagaa gctgttcggt 2160
gtctcctccc acgaattcta ctggaagaag atgggtctgt tcgtcaaggc cgacaccatg 2220
cgtgatcttg ctgctctgat cggttgcccc gttgagagcg tgcagcagac cctggaagaa 2280
tacgagcgcc tctccatctc ccagcgctct tgccccatca cccgcaagtc ggtgtaccct 2340
tgcgtgcttg gcaccaaggg tccctactac gtggctttcg tcaccccctc catccactac 2400
accatgggtg gctgcttgat ctctccttct gctgagatcc agatgaagaa cacctcctcc 2460
cgtgctcctc tctcccactc caaccccatc ctcggtctgt tcggtgctgg tgaagtcact 2520
ggtggtgtcc acggtggcaa ccgtcttggt ggcaactccc tcctcgagtg cgttgtgttc 2580
ggccgtatcg ctggtgaccg tgccagcacc atcctccagc gcaagagctc tgctctctcc 2640
- 52 032726 ttcaaggtct ggaccactgt tgtcctccgc gaagtccgcg agggtggtgt ctacggtgct2700 ggctctcgtg tcctccgctt caacctcccc ggtgctctcc agcgctccgg tctgtctctt2760 ggccagttca ttgccatccg tggtgactgg gatggccagc agctcattgg ctactactct2820 cccatcaccc tccccgatga tcttggaatg atcgacatcc tggctcgctc cgacaagggt2880 accctccgcg aatggatctc cgctctggag cccggtgatg ccgttgagat gaaggcctgc2940 ggtggtctgg tcattgagcg tcgtctgtcc gacaagcact tcgtgttcat gggtcacatc3000 atcaacaagc tctgcttgat tgccggtggt actggtgttg ctcccatgct tcagatcatc3060 aaggctgctt tcatgaagcc cttcattgac accctcgagt ccgtccacct gatctacgct3120 gctgaggatg tcactgagct gacctaccgt gaggtccttg aggagcgccg ccgcgagtcc3180 cgtggcaagt tcaagaaaac cttcgtcctg aaccgccctc ctcctctctg gactgatggt3240 gttggtttca ttgaccgtgg tatcctgacc aaccacgtcc agcctccctc cgacaaccta3300 ttagtggcca tctgcggtcc tcctgtcatg cagcgcattg tcaaggccac tctcaagacc3360 ctaggataca acatgaacct ggtccgcact gttgatgaga ctgagccctc cggatcataa3420 <210>9 <211>3498 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> FRDml оптимизированный ген для S. cerevisiae <400>9 atgggtgctg atggtatttc ttctgcttcc attgttgtta ctgacccaga agctgctgcc60 aagaagcgtg acagaatggc cagagaattg ttgtcctcca actctggtct atgtcaagaa120 gatgaaccaa ccatcatcaa cttaaagggt ttggaacaca ccattccata cagattggcc180 gttgttttgt gtaactccag atccactggt gaattcgaag ccaaggctgc tgaaatcttg240 agaaaggctt tccacatggt tgactactct ttgaattgtt tcaacccaga atctgaattg300 tcccgtgtca actctttacc agtcggtgaa aagcaccaaa tgtccgaaga tctaagacat360 gtcatggaat gtaccatttc tgtccaccac tcctctggta tgggtttcga cccagctgct420 ggtccaatca tctccagatt gagaggtgcc atgagagatc acaacgacat gtccgatatc480
- 53 032726 tccgtcactg aagctgaagt tgaattattc tctttggctc aatctttcga tgtcgacttg 540 gaagaaggta ctattgccag aaagcactct gaagccagat tggatttggg tggtgtcaac 600 aagggttaca ctgttgacta cgttgttgac catttgagag ctgctggtat gccaaacgtc 660 ttgttcgaat ggggtggtga tatcagagct tctggtagaa acatcaaggg taacttgtgg 720 gctgttgcca tcaagcgtcc accatctgtt gaagaagtta tccgtcgtgc caagggtaag 780 atgttaaaga tgggtgaaga agaacaagaa gaaaaggacg atgactctcc atctttgttg 840 cacgttgttg aattggatga cgaagctttg tgtacctctg gtgactacga aaacgtctta 900 taccatccaa agcacggtgt tgctggttcc attttcgact ggcaacgtcg tggtttattg 960 tctccagaag aaggtgcttt agctcaagtt tccgtcaaat gttactctgc catgtacgct 1020 gatgctttgg ccactgtttg tttggtcaag agagatgctg tcagaatcag atacttgttg 1080 gaaggttgga gatacgtcag atctcgtgtc accaactact tcgcttacac cagacaaggt 1140 gaaagattgg ctcacatgca cgaaattgct caagaaacca gagaattaag agaaatcaga 1200 attgctggtt ctttgccatc cagaattgtt atcgtcggtg gtggtttggc tggtctatcc 1260 gctgccattg aagctgcttc ttgtggtgct caagtcattt tgatggaaaa ggaaggtaga 1320 attggtggta actctgccaa ggctacctct ggtatcaacg gttggggtac cagaacccaa 1380 gccaagtctg atatcttgga tggtggtaag tactttgaaa gagacacttt cttgtccggt 1440 gtcggtggta ccactgaccc agctttggtc aaggtcttgt ccgtcaaatc tggtgacgct 1500 atcggttggt taacttcttt gggtgtccca ttgtccgttt tgtctcaatt gggtggtcac 1560 tctttcaaga gaactcacag agctccagac aagactgatg gtactccatt accaattggt 1620 cacaccatca tgagaacttt ggaagatcat atcagaaaca acttgtctga aagagttacc 1680 atcatgaccc acgtttctgt tactgaattg ttgcacgaaa ctgacaccac tccagatggt 1740 gcttctgaag ttcgtgtcac cggtgtccgt tacagagact tgtctgatgt cgatggtcaa 1800 ccttccaaac tattggctga cgctgttgtt ttggccactg gtggtttctc caacgacaga I860 gaagaaaact ctttgttgtg taaatacgct cctcatttgg cttctttccc aactaccaac 1920 ggtccatggg ctactggtga cggtgtcaaa ttggccacct ccgttggtgc caagttggtt 1980 gacatggaca aggttcaatt gcacccaact ggtttgattg acccaaagga cccagctaac 2040
- 54 032726
accactaaga tcttgggtcc agaagctttg agaggttctg gtggtatttt gttgaacaag 2100
caaggtaaga gattcgtcaa cgaattggac ttgagatccg ttgtttccaa ggccattaac 2160
actcaaggta acgaataccc aggttctggt ggttgttact ttgcttactg tgtcttaaac 2220
gaagatgcta ccaacttatt ctgtggtggt gctttgggtt tctacggtaa gaaattaggt 2280
ttgttccaaa gagctgaaac tgttgaagaa ttggccaaat tgattggttg tgacgaaggt 2340
gaattgagag acactttgga aaaatacgaa acctgttcca aggccaaggt tgcttgtcca 2400
gtcactggta aggttgtttt cccatgtgtt gtcggtacca gaggtccata caatgttgct 2460
ttcgtcactc catccatcca ctacaccatg ggtggttgtt tgatctctcc agctgctgaa 2520
gtcttgcaag aatacaaggg tttgaatatc ttggaaaacc acagaccaat cagatgtttg 2580
ttcggtgctg gtgaagtcac tggtggtgtc cacggtggta acagattagg tggtaactct 2640
ctattggaat gtgttgtctt tggtaagatt gctggtgaca gagctgccac tatcttgcaa 2700
aagagagaaa ttgctttgtc caagacctcc tggacctctg ttgttgtcag agaatccaga 2760
tctggtgaac aattcggtac cggttccaga gttttgagat tcaacttgcc aggtgcttta 2820
caaagaaccg gtttgaactt gggtgaattc gttgccatca gaggtgaatg ggatggtcaa 2880
caattagtcg gttacttctc tccaatcact ttgccagaag atttgggtac catctctttg 2940
ttggtcagag ctgacaaggg tactttgaag gaatggatct gtgctttgcg tccaggtgac 3000
tccgttgaaa tcaaggcttg tggtggtcta agaattgacc aagatccagt caagaaatgt 3060
ttgttgttca gaaacagacc aattaccaga tttgctttgg ttgctgctgg taccggtgtt 3120
gctccaatgt tgcaagttat cagagctgct ttgaagaagc catacgtcga cactttggaa 3180
tccatcagat tgatctacgc tgctgaagaa tatgacactt taacctacag atctatcttg 3240
caaagatttg ctgaagaatt cccagacaaa ttcgtttgta acttcgtctt aaacaaccct 3300
ccagaaggtt ggaccggtgg tgttggtttc gtcaacaaga aatctttgca aaaggttttg 3360
caaccacctt cttctgaacc attgattgtt gtttgtggtc cacctgttat gcaaagagat 3420
gtcaaaaatg aattgttgtc catgggttac gacaaggaat tggttcacac tgtcgatggt 3480
gaatctggta ccttgtaa 3498
- 55 032726 <210> 10 <211> 3420 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> FRDg оптимизированный ген для S. cerevisiae <400> 10
atggttgatg gtagatcttc tgcttccatt gttgccgttg acccagaaag agctgccaga 60
gaaagagatg ctgctgccag agctttgttg caagactctc cattgcacac caccatgcaa 120
tacgctacct ctggtttgga attgactgtt ccatacgctt tgaaggttgt tgcttctgct 180
gacactttcg acagagccaa ggaagttgct gatgaagtct tgagatgtgc ctggcaattg 240
gctgacaccg ttttgaactc tttcaaccca aactctgaag tctctttagt cggtagatta 300
ccagtcggtc aaaagcatca aatgtctgct ccattgaaac gtgtcatggc ttgttgtcaa 360
agagtctaca actcctctgc tggttgtttc gacccatcca ctgctccagt tgccaaggct 420
ttgagagaaa ttgctttggg taaggaaaga aacaatgctt gtttggaagc tttgactcaa 480
gcttgtacct tgccaaactc tttcgtcatt gatttcgaag ctggtactat ctccagaaag 540
cacgaacacg cttctttgga tttgggtggt gtttccaagg gttacatcgt cgattacgtc 600
attgacaaca tcaatgctgc tggtttccaa aacgttttct ttgactgggg tggtgactgt 660
cgtgcctccg gtatgaacgc cagaaacact ccatgggttg tcggtatcac tagacctcct 720
tccttggaca tgttgccaaa ccctccaaag gaagcttctt acatctccgt catctctttg 780
gacaatgaag ctttggctac ctctggtgat tacgaaaact tgatctacac tgctgacgat 840
aaaccattga cctgtaccta cgattggaaa ggtaaggaat tgatgaagcc atctcaatcc 900
aatatcgctc aagtttccgt caagtgttac tctgccatgt acgctgacgc tttggctacc 960
gcttgtttca tcaagcgtga cccagccaag gtcagacaat tgttggatgg ttggagatac 1020
gttagagaca ccgtcagaga ttaccgtgtc tacgtcagag aaaacgaaag agttgccaag 1080
atgttcgaaa ttgccactga agatgctgaa atgagaaaga gaagaatttc caacacttta 1140
ccagctcgtg tcattgttgt tggtggtggt ttggctggtt tgtccgctgc cattgaagct 1200
gctggttgtg gtgctcaagt tgttttgatg gaaaaggaag ccaagttggg tggtaactct 1260
gccaaggcta cctctggtat caacggttgg ggtactagag ctcaagctaa ggcttccatt 1320
- 56 032726
gtcgatggtg gtaagtactt cgaaagagat acctacaagt ctggtatcgg tggtaacacc 1380
gatccagctt tggttaagac tttgtccatg aaatctgctg acgctatcgg ttggttgact 1440
tctctaggtg ttccattgac tgttttgtcc caattaggtg gtcactccag aaagagaact 1500
cacagagctc cagacaagaa ggatggtact ccattgccaa ttggtttcac catcatgaaa 1560
actttagaag atcatgttag aggtaacttg tccggtagaa tcaccatcat ggaaaactgt 1620
tccgttacct ctttgttgtc tgaaaccaag gaaagaccag acggtaccaa gcaaatcaga 1680
gttaccggtg tcgaattcac tcaagctggt tctggtaaga ccaccatttt ggctgatgct 1740
gttatcttgg ccaccggtgg tttctccaac gacaagactg ctgattcttt gttgagagaa 1800
catgccccac acttggttaa cttcccaacc accaacggtc catgggctac tggtgatggt 1860
gtcaagttgg ctcaaagatt aggtgctcaa ttggtcgata tggacaaggt tcaattgcac 1920
ccaactggtt tgatcaaccc aaaggaccca gccaacccaa ccaaattctt gggtccagaa 1980
gctctaagag gttctggtgg tgttttgttg aacaaacaag gtaagagatt tgtcaacgaa 2040
ttggatttga gatctgttgt ttccaaggcc atcatggaac aaggtgctga atacccaggt 2100
tctggtggtt ccatgtttgc ttactgtgtc ttgaacgctg ctgctcaaaa attgtttggt 2160
gtttcctctc acgaattcta ctggaagaag atgggtttgt tcgtcaaggc tgacaccatg 2220
agagacttgg ctgctttgat tggttgtcca gttgaatccg ttcaacaaac tttagaagaa 2280
tacgaaagat tatccatctc tcaaagatct tgtccaatta ccagaaaatc tgtttaccca 2340
tgtgttttgg gtaccaaagg tccatactat gtcgcctttg tcactccatc tatccactac 2400
accatgggtg gttgtttgat ttctccatct gctgaaatcc aaatgaagaa cacttcttcc 2460
agagctccat tgtcccactc caacccaatc ttgggtttat tcggtgctgg tgaagtcacc 2520
ggtggtgtcc acggtggtaa cagattaggt ggtaactctt tgttggaatg tgttgttttc 2580
ggtagaattg ccggtgacag agcttctacc attttgcaaa gaaagtcctc tgctttgtct 2640
ttcaaggtct ggaccactgt tgttttgaga gaagtcagag aaggtggtgt ctacggtgct 2700
ggttcccgtg tcttgagatt caacttacca ggtgctctac aaagatctgg tctatccttg 2760
ggtcaattca ttgccatcag aggtgactgg gacggtcaac aattgattgg ttactactct 2820
ccaatcactt tgccagacga tttgggtatg attgacattt tggccagatc tgacaagggt 2880
- 57 032726 actttacgtg aatggatctc tgctttggaa ccaggtgacg ctgtcgaaat gaaggcttgt 2940 ggtggtttgg tcatcgaaag aagattatct gacaagcact tcgttttcat gggtcacatt 3000 atcaacaagc tatgtttgat tgctggtggt accggtgttg ctccaatgtt gcaaatcatc 3060 aaggccgctt tcatgaagcc attcatcgac actttggaat ccgtccactt gatctacgct 3120 gctgaagatg tcactgaatt gacttacaga gaagttttgg aagaacgtcg tcgtgaatcc 3180 agaggtaaat tcaagaaaac tttcgttttg aacagacctc ctccattatg gactgacggt 3240 gtcggtttca tcgaccgtgg tatcttgacc aaccacgttc aaccaccatc tgacaactta 3300 ttggttgcca tctgtggtcc accagttatg caaagaattg tcaaggccac tttaaagact 3360 ttaggttaca acatgaactt ggtcagaacc gttgacgaaa ctgaaccatc tggaagttaa 3420
<210> <211> <212> <213> 11 898 ДНК Искусственная последовательность
<220>
<223> GPDA промотор <400> 11
tcagcgtcca attcgagctc tgtacagtga ccggtgactc tttctggcat gcggagacac 60
ggacggtcgc agagaggagg gctgagtaat aagcgcactc atgtcagctc tggcgctctg 120
aggtgcagtg gatgattatt aatccgggac cggccgcccc tccgccccga agtggaaagg 180
ctggtgtgcc cctcgttgac caagaatcta ttgcatcatc ggagaatatg gagcttcatc 240
gaatcaccgg cagtaagcga aggagaatgt gaagccaggg gtgtatagcc gtcggcgaaa 300
tagcatgcca ttaacctagg tacagaagtc caattgcttc cgatctggta aaagattcac 360
gagatagtac cttctccgaa gtaggtagag cgagtacccg gcgcgtaagc tccctaattg 420
gcccatccgg catctgtagg gcgtccaaat atcgtgcctc tcctgctttg cccggtgtat 480
gaaaccggaa aggccgctca ggagctggcc agcggcgcag accgggaaca caagctggca 540
gtcgacccat ccggtgctct gcactcgacc tgctgaggtc cctcagtccc tggtaggcag 600
ctttgccccg tctgtccgcc cggtgtgtcg gcggggttga caaggtcgtt gcgtcagtcc 660
aacatttgtt gccatatttt cctgctctcc ccaccagctg ctcttttctt ttctctttct 720
- 58 032726
tttcccatct tcagtatatt catcttccca tccaagaacc tttatttccc ctaagtaagt 780
actttgctac atccatactc catccttccc atcccttatt cctttgaacc tttcagttcg 840
agctttccca cttcatcgca gcttgactaa cagctacccc gcttgagcca ccgtcaaa 898
<210> 12 <211> 1000 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность
<220> <223> TDH3 промотор
<400> 12 ctattttcga ggaccttgtc accttgagcc caagagagcc aagatttaaa ttttcctatg 60
acttgatgca aattcccaaa gctaataaca tgcaagacac gtacggtcaa gaagacatat 120
ttgacctctt aacaggttca gacgcgactg cctcatcagt aagacccgtt gaaaagaact 180
tacctgaaaa aaacgaatat atactagcgt tgaatgttag cgtcaacaac aagaagttta 240
atgacgcgga ggccaaggca aaaagattcc ttgattacgt aagggagtta gaatcatttt 300
gaataaaaaa cacgcttttt cagttcgagt ttatcattat caatactgcc atttcaaaga 360
atacgtaaat aattaatagt agtgattttc ctaactttat ttagtcaaaa aattagcctt 420
ttaattctgc tgtaacccgt acatgcccaa aatagggggc gggttacaca gaatatataa 480
catcgtaggt gtctgggtga acagtttatt cctggcatcc actaaatata atggagcccg 540
ctttttaagc tggcatccag aaaaaaaaag aatcccagca ccaaaatatt gttttcttca 600
ccaaccatca gttcataggt ccattctctt agcgcaacta cagagaacag gggcacaaac 660
aggcaaaaaa cgggcacaac ctcaatggag tgatgcaacc tgcctggagt aaatgatgac 720
acaaggcaat tgacccacgc atgtatctat ctcattttct tacaccttct attaccttct 780
gctctctctg atttggaaaa agctgaaaaa aaaggttgaa accagttccc tgaaattatt 840
cccctacttg actaataagt atataaagac ggtaggtatt gattgtaatt ctgtaaatct 900
atttcttaaa cttcttaaat tctactttta tagttagtct tttttttagt tttaaaacac 960
caagaactta gtttcgaata aacacacata aacaaacaaa 1000
- 59 032726 <210> 13 <211> 500 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> TDH3 терминатор <400> 13
gtgaatttac tttaaatctt gcatttaaat aaattttctt tttatagctt tatgacttag 60
tttcaattta tatactattt taatgacatt ttcgattcat tgattgaaag ctttgtgttt 120
tttcttgatg cgctattgca ttgttcttgt ctttttcgcc acatgtaata tctgtagtag 180
atacctgata cattgtggat gctgagtgaa attttagtta ataatggagg cgctcttaat 240
aattttgggg atattggctt ttttttttaa agtttacaaa tgaatttttt ccgccaggat 300
aacgattctg aagttactct tagcgttcct atcggtacag ccatcaaatc atgcctataa 360
atcatgccta tatttgcgtg cagtcagtat catctacatg aaaaaaactc ccgcaatttc 420
ttatagaata cgttgaaaat taaatgtacg cgccaagata agataacata tatctagatg 480
cagtaatata cacagattcc 500
<210> 14 <211> 538 <212> белок <213> Искусственная последовательность <220>
<223> A. succinogenes PEP карбоксикиназа где EGY в положениях 120-122 заменено на DAF <400> 14
Met Thr Asp Leu Asn Lys Leu Val Lys Glu Leu Asn Asp Leu Gly Leu
1 5 10 15
Thr Asp Val Lys G1U lie Val Tyr Asn Pro Ser Tyr Glu Gin Leu Phe
20 25 30
Glu Glu Glu Thr Lys Pro Gly Leu Glu Gly Phe Asp Lys Gly Thr Leu
35 40 45
Thr Thr Leu Gly Ala Val Ala Val Asp Thr Gly He Phe Thr Gly Arg
- 60 032726
50 55 60
Ser Pro Lys Asp Lys Tyr He Val cys Asp Glu Thr Thr Lys Asp Thr
65 70 75 80
Val Trp Trp Asn Ser Glu Ala Ala Lys Asn Asp Asn Lys Pro Met Thr
85 90 95
Gln Glu Thr Trp Lys Ser Leu Arg Glu Leu Val Ala Lys Gln Leu Ser
100 105 110
Gly Lys Arg Leu Phe Val Val Asp Ala Phe cys Gly Ala Ser Glu Lys
115 120 125
His Arg He Gly Val Arg Met Val Thr Glu Val Ala Trp Gln Ala His
130 135 140
Phe Val Lys Asn Met Phe He Arg Pro Thr Asp Glu Glu Leu Lys Asn
145 150 155 160
Phe Lys Ala Asp Phe Thr Val Leu Asn Gly Ala Lys cys Thr Asn Pro
165 170 175
Asn Trp Lys Glu Gln Gly Leu Asn Ser Glu Asn Phe Val Ala Phe Asn
180 185 190
lie Thr Glu Gly He Gln Leu He Gly Gly Thr Trp Tyr Gly Gly Glu
195 200 205
Met Lys Lys Gly Met Phe Ser Met Met Asn Tyr Phe Leu Pro Leu Lys
210 215 220
Gly Val Ala Ser Met His cys Ser Ala Asn Val Gly Lys Asp Gly Asp
225 230 235 240
Val Ala He Phe Phe Gly Leu Ser Gly Thr Gly Lys Thr Thr Leu Ser
245 250 255
Thr Asp Pro Lys Arg Gln Leu He Gly Asp Asp Glu His Gly Trp Asp
- 61 032726
260 265 270
Glu Ser Gly Val Phe Asn Phe Glu Gly Gly cys Tyr Ala Lys Thr Ile
275 280 285
Asn Leu Ser Gin Glu Asn Glu Pro Asp Ile Tyr Gly Ala lie Arg Arg
290 295 300
Asp Ala Leu Leu Glu Asn Val Val Val Arg Ala Asp Gly Ser Val Asp
305 310 315 320
Phe Asp Asp Gly Ser Lys Thr Glu Asn Thr Arg Val Ser Tyr Pro Ile
325 330 335
Tyr His Ile Asp Asn lie Val Arg Pro Val Ser Lys Ala Gly His Ala
340 345 350
Thr Lys Val lie Phe Leu Thr Ala Asp Ala Phe Gly Val Leu Pro Pro
355 360 365
Val Ser Lys Leu Thr Pro Glu Gin Thr Glu Tyr Tyr Phe Leu Ser Gly
370 375 380
Phe Thr Ala Lys Leu Ala Gly Thr Glu Arg Gly Val Thr Glu Pro Thr
385 390 395 400
Pro Thr Phe Ser Ala Cys Phe Gly Ala Ala Phe Leu Ser Leu His Pro
405 410 415
Ile Gin Tyr Ala Asp Val Leu Val Glu Arg Met Lys Ala Ser Gly Ala
420 425 430
Glu Ala Tyr Leu Val Asn Thr Gly Trp Asn Gly Thr Gly Lys Arg Ile
435 440 445
Ser Ile Lys Asp Thr Arg Gly lie lie Asp Ala Ile Leu Asp Gly Ser
450 455 460
Ile Glu Lys Ala Glu Met Gly Glu Leu Pro Ile Phe Asn Leu Ala Ile
- 62 032726
465 470 475 480
Pro Lys Ala Leu Pro Gly Vai Asp Pro Ala Ile Leu Asp Pro Arg Asp
485 490 495
Thr Tyr Ala Asp Lys Ala Gin Trp Gin Vai Lys Ala Glu Asp Leu Ala
500 505 510
Asn Arg Phe Vai Lys Asn Phe Vai Lys Tyr Thr Ala Asn Pro Glu Ala
515 520 525
Ala Lys Leu Vai Gly Ala Gly Pro Lys Ala
530 535 <210>15 <211>1617 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> nt. A. succinogenes PEP карбоксикиназа кодирующая DAF вместо EGY <400>15 atgactgact taaacaaact cgttaaagaa cttaatgact tagggcttac cgatgttaag60 gaaattgtgt ataacccgag ttatgaacaa cttttcgagg aagaaaccaa accgggtttg120 gagggtttcg ataaagggac gttaaccacg cttggcgcgg ttgccgtcga tacggggatt180 tttaccggtc gttcaccgaa agataaatat atcgtttgcg atgaaactac gaaagacacc240 gtttggtgga acagcgaagc ggcgaaaaac gataacaaac cgatgacgca agaaacttgg300 aaaagtttga gagaattagt ggcgaaacaa ctttccggta aacgtttatt cgtggtagac360 gcattctgcg gcgccagtga aaaacaccgt atcggtgtgc gtatggttac tgaagtggca420 tggcaggcgc attttgtgaa aaacatgttt atccgaccga ccgatgaaga gttgaaaaat480 ttcaaagcgg attttaccgt gttaaacggt gctaaatgta ctaatccgaa ctggaaagaa540 caaggtttga acagtgaaaa ctttgtcgct ttcaatatta ccgaaggtat tcagcttatc600 ggcggtactt ggtacggcgg tgaaatgaaa aaaggtatgt tctcaatgat gaactacttc660 ctgccgttaa aaggtgtggc ttccatgcac tgttccgcca acgtaggtaa agacggtgac720
- 63 032726
gtggctattt tcttcggttt atccggtacg ggtaaaacaa cgctttcgac cgatcctaaa 780
cgccaattaa tcggtgatga cgaacacggt tgggatgaat ccggcgtatt taactttgaa 840
ggcggttgtt acgcgaaaac cattaactta tctcaagaaa acgaaccgga tatttacggc 900
gcaatccgtc gtgacgcatt attagaaaac gtcgtggttc gtgcagacgg ttccgttgac 960
tttgacgacg gttcaaaaac agaaaatacc cgtgtttcat atccgattta ccacatcgac 1020
aacatcgttc gtccggtatc gaaagccggt catgcaacca aagtgatttt cttaaccgcg 1080
gacgcattcg gcgtattgcc gccggtttca aaactgactc cggaacaaac cgaatactac 1140
ttcttatccg gctttactgc aaaattagcg ggtacggaac gcggcgtaac cgaaccgact 1200
ccgacattct cggcctgttt cggtgcggca ttcttaagcc tgcatccgat tcaatatgcg 1260
gacgtgttgg tcgaacgcat gaaagcctcc ggtgcggaag cttatttggt gaacaccggt 1320
tggaacggca cgggtaaacg tatttcaatc aaagataccc gcggtattat cgatgcgatt 1380
ttggacggtt caatcgaaaa agcggaaatg ggcgaattgc caatctttaa tttagcgatt 1440
cctaaagcat taccgggtgt tgatcctgct attttggatc cgcgcgatac ttacgcagac 1500
aaagcgcaat ggcaagttaa agcggaagat ttggcaaacc gtttcgtgaa aaactttgtg 1560
aaatatacgg cgaatccgga agcggctaaa ttagttggcg ccggtccaaa agcataa 1617
<210> 16 <211>1617 <212> ДНК <213> Оптимизированный по кодонам A. succinogenes РЕРСК для S. cerevisiae <400>16 atgactgatt tgaacaaatt ggtcaaggaa ttgaatgatt tgggtttgac tgacgtcaag60 gaaattgtct acaacccatc ttacgaacaa ttattcgaag aagaaaccaa gccaggtttg120 gaaggtttcg acaagggtac tttgaccact ttaggtgctg ttgctgttga caccggtatt180 ttcaccggtc gttctccaaa ggacaaatac attgtttgtg atgaaaccac caaggacacc240 gtctggtgga actctgaagc tgccaagaac gataacaagc caatgactca agaaacctgg300 aaatctttga gagaattggt tgccaagcaa ttgtctggta agagattatt cgttgttgac360 gctttctgtg gtgcttctga aaagcacaga attggtgtca gaatggtcac tgaagttgct420 tggcaagctc atttcgtcaa gaacatgttc atcagaccaa ctgacgaaga attgaagaac480
- 64 032726
ttcaaggctg acttcaccgt tttgaatggt gccaagtgta ccaacccaaa ctggaaggaa 540
caaggtttga actctgaaaa ctttgttgct ttcaacatca ctgaaggtat ccaattgatt 600
ggtggtacct ggtacggtgg tgaaatgaag aagggtatgt tctccatgat gaactatttc 660
ttgccattga aaggtgttgc ttccatgcac tgttctgcca atgtcggtaa ggatggtgac 720
gttgccatct tcttcggtct atccggtact ggtaagacca ctctatccac tgacccaaag 780
agacaattga ttggtgatga cgaacacggt tgggacgaat ctggtgtctt taactttgaa 840
ggtggttgtt acgccaagac catcaactta tctcaagaaa acgaaccaga tatctacggt 900
gccatccgtc gtgatgcttt gttggaaaac gttgttgtca gagctgacgg ttctgttgac 960
ttcgacgacg gttccaagac tgaaaacacc agagtttctt acccaatcta ccacattgac 1020
aacattgtca gacctgtttc caaggctggt cacgctacca aggttatctt cttgactgct 1080
gatgctttcg gtgtcttgcc acctgtttcc aaattgactc cagaacaaac cgaatactac 1140
ttcttgtccg gtttcactgc caaattggct ggtactgaaa gaggtgtcac tgaaccaact 1200
ccaactttct ctgcttgttt cggtgctgct ttcttatctt tgcacccaat ccaatacgct 1260
gatgtcttgg ttgaaagaat gaaggcttct ggtgctgaag cttacttggt caacaccggt 1320
tggaacggta ccggtaagag aatctccatc aaggatacca gaggtatcat tgatgctatc 1380
ttggacggtt ccattgaaaa ggctgaaatg ggtgaattgc caatcttcaa cttggccatt 1440
ccaaaggctt tgccaggtgt tgacccagcc atcttagatc caagagacac ctacgctgac 1500
aaggctcaat ggcaagtcaa ggctgaagat ttggctaaca gattcgtcaa gaactttgtc 1560
aaatacactg ctaacccaga agctgccaaa ttggttggtg ctggtccaaa ggcttaa 1617
<210>17 <211>538 <212> белок <213> Mannheimia succinicipoducens <400>17
Met Thr Asp Leu Asn Gln Leu Thr Gln Glu Leu Gly Ala Leu Gly lie 15 1015
His Asp Vai Gln Glu Vai Vai Tyr Asn Pro Ser Tyr Glu Leu Leu Phe
- 65 032726
20 25 30
Ala Glu Glu Thr Lys Pro Gly Leu Glu Gly Tyr Glu Lys Gly Thr Vai
35 40 45
Thr Asn Gin Gly Ala Vai Ala Vai Asn Thr Gly Ile Phe Thr Gly Arg
50 55 60
Ser Pro Lys Asp Lys Tyr lie Vai Leu Asp Asp Lys Thr Lys Asp Thr
65 70 75 80
Vai Trp Trp Thr Ser Glu Lys Vai Lys Asn Asp Asn Lys Pro Met Ser
85 90 95
Gin Asp Thr Trp Asn Ser Leu Lys Gly Leu Vai Ala Asp Gin Leu Ser
100 105 110
Gly Lys Arg Leu Phe Vai Vai Asp Ala Phe Cys Gly Ala Asn Lys Asp
115 120 125
Thr Arg Leu Ala Vai Arg Vai Vai Thr Glu Vai Ala Trp Gin Ala His
130 135 140
Phe Vai Thr Asn Met Phe Ile Arg Pro Ser Ala Glu Glu Leu Lys Gly
145 150 155 160
Phe Lys Pro Asp Phe Vai Vai Met Asn Gly Ala Lys Cys Thr Asn Pro
165 170 175
Asn Trp Lys Glu Gin Gly Leu Asn Ser Glu Asn Phe Vai Ala Phe Asn
180 185 190
Ile Thr Glu Gly Vai Gin Leu Ile Gly Gly Thr Trp Tyr Gly Gly Glu
195 200 205
Met Lys Lys Gly Met Phe Ser Met Met Asn Tyr Phe Leu Pro Leu Arg
210 215 220
Gly Ile Ala Ser Met His Cys Ser Ala Asn Vai Gly Lys Asp Gly Asp
- 66 032726
225 230 235 240
Thr Ala lie Phe Phe Gly Leu Ser Gly Thr Gly Lys Thr Thr Leu Ser
245 250 255
Thr Asp Pro Lys Arg Gin Leu He Gly Asp Asp Glu His Gly Trp Asp
260 265 270
Asp Glu Gly Vai Phe Asn Phe Glu Gly Gly cys Tyr Ala Lys Thr He
275 280 285
Asn Leu Ser Ala Glu Asn Glu Pro Asp He Tyr Gly Ala He Lys Arg
290 295 300
Asp Ala Leu Leu Glu Asn Vai Vai Vai Leu Asp Asn Gly Asp Vai Asp
305 310 315 320
Tyr Ala Asp Gly Ser Lys Thr Glu Asn Thr Arg Vai Ser Tyr Pro He
325 330 335
Tyr His He Gin Asn He Vai Lys Pro Vai Ser Lys Ala Gly Pro Ala
340 345 350
Thr Lys Vai He Phe Leu Ser Ala Asp Ala Phe Gly Vai Leu Pro Pro
355 360 365
Vai Ser Lys Leu Thr Pro Glu Gin Thr Lys Tyr Tyr Phe Leu Ser Gly
370 375 380
Phe Thr Ala Lys Leu Ala Gly Thr Glu Arg Gly He Thr Glu Pro Thr
385 390 395 400
Pro Thr Phe Ser Ala Cys Phe Gly Ala Ala Phe Leu Ser Leu His Pro
405 410 415
Thr Gin Tyr Ala Glu Vai Leu Vai Lys Arg Met Gin Glu Ser Gly Ala
420 425 430
Glu Ala Tyr Leu Vai Asn Thr Gly Trp Asn Gly Thr Gly Lys Arg He
- 67 032726
435 440 445
Ser He Lys Asp Thr Arg Gly He He Asp Ala He Leu Asp Gly Ser
450 455 460
lie Asp Lys Ala Glu Met Gly Ser Leu Pro He Phe Asp Phe Ser He
465 470 475 480
Pro Lys Ala Leu Pro Gly Val Asn Pro Ala He Leu Asp Pro Arg Asp
485 490 495
Thr Tyr Ala Asp Lys Ala Gln Trp Glu Glu Lys Ala Gln Asp Leu Ala
500 505 510
Gly Arg Phe Val Lys Asn Phe Glu Lys Tyr Thr Gly Thr Ala Glu Gly
515 520 525
Gln Ala Leu Val Ala Ala Gly Pro Lys Ala
530 535 <210> 18 <211> 1617 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> РЕР карбоксикиназа М. succiniciproducens сро для S. cerevisiae <400>18 atgaccgatt tgaaccaatt gactcaagaa ttgggtgctt tgggtattca cgatgtccaa60 gaagttgtct acaacccatc ttacgaattg ttgtttgctg aagaaaccaa gccaggtttg120 gaaggttacg aaaagggtac tgttaccaac caaggtgctg ttgctgtcaa caccggtatc180 ttcaccggtc gttctccaaa ggacaaatac attgtcttgg atgacaagac caaggacact240 gtctggtgga cttctgaaaa ggtcaagaac gacaacaaac caatgtccca agacacttgg300 aactctttaa agggtttagt cgctgaccaa ttgtctggta agagattatt cgttgtcgat360 gctttctgtg gtgccaacaa ggacaccaga ttagctgtca gagttgtcac tgaagttgct420 tggcaagctc acttcgttac caacatgttc atcagaccat ctgctgaaga attgaaaggt480
- 68 032726
ttcaagccag atttcgttgt catgaacggt gccaaatgta ccaacccaaa ctggaaggaa 540
caaggtttga actctgaaaa ctttgttgct ttcaacatca ctgaaggtgt tcaattgatt 600
ggtggtacct ggtacggtgg tgaaatgaag aagggtatgt tctccatgat gaactacttc 660
ttgccattga gaggtattgc ttccatgcac tgttctgcca atgtcggtaa ggacggtgac 720
actgccatct tcttcggtct atccggtacc ggtaagacca ctttgtccac tgacccaaag 780
agacaattga ttggtgatga cgaacacggt tgggatgacg aaggtgtttt caactttgaa 840
ggtggttgtt acgccaagac catcaactta tctgctgaaa atgaaccaga tatctatggt 900
gccatcaagc gtgacgctct attggaaaac gttgttgttt tggacaatgg tgacgtcgat 960
tatgctgacg gttccaagac tgaaaacacc agagtttctt acccaatcta ccatattcaa 1020
aacattgtca agccagtttc caaggctggt ccagctacca aagttatctt cttgtctgct 1080
gatgctttcg gtgttttgcc tcctgtttcc aagttgactc cagaacaaac caagtactac 1140
ttcttgtctg gtttcaccgc caagttggct ggtactgaaa gaggtatcac tgaaccaact 1200
ccaactttct ctgcttgttt cggtgctgcc tttttgtctt tgcacccaac tcaatacgct 1260
gaagttttgg tcaagagaat gcaagaatct ggtgctgaag cttacttggt caacactggt 1320
tggaacggta ccggtaagag aatctccatc aaagatacca gaggtatcat cgatgccatc 1380
ttggatggtt ccattgacaa ggctgaaatg ggttctttgc caattttcga tttctccatt 1440
ccaaaggctt tgccaggtgt caacccagcc atcttagacc caagagacac ctacgctgac 1500
aaagctcaat gggaagaaaa ggctcaagac ttggctggta gattcgtcaa gaacttcgaa 1560
aaatacactg gtactgctga aggtcaagct ttggttgctg ctggtccaaa ggcctaa 1617
<210> 19 <211> 365 <212> белок <213> Искусственная последовательность <220>
<223> MDH2 S. cerevisiae без первых 12 а.а.
<400> 19
Met Leu Lys lie Ala lie Leu Gly Ala Ala Gly Gly He Gly Gln Ser 15 10 15
- 69 032726
Leu Ser Leu Leu 20 Leu Lys Ala Gln Leu Gln Tyr Gln Leu Lys Glu Ser
25 30
Asn Arg Ser Val Thr His Ile His Leu Ala Leu Tyr Asp Val Asn Gln
35 40 45
Glu Ala Ile Asn Gly Val Thr Ala Asp Leu Ser His Ile Asp Thr Pro
50 55 60
Ile Ser Val Ser Ser His Ser Pro Ala Gly Gly Ile Glu Asn Cys Leu
65 70 75 80
His Asn Ala Ser Ile Val Val Ile Pro Ala Gly Val Pro Arg Lys Pro
85 90 95
Gly Met Thr Arg Asp Asp Leu Phe Asn Val Asn Ala Gly lie Ile Ser
100 105 110
Gln Leu Gly Asp Ser Ile Ala Glu cys cys Asp Leu Ser Lys Val Phe
115 120 125
Val Leu Val Ile Ser Asn Pro Val Asn Ser Leu Val Pro Val Met Val
130 135 140
Ser Asn Ile Leu Lys Asn His Pro Gln Ser Arg Asn Ser Gly Ile Glu
145 150 155 160
Arg Arg Ile Met Gly Val Thr Lys Leu Asp Ile Val Arg Ala Ser Thr
165 170 175
Phe Leu Arg Glu Ile Asn Ile Glu Ser Gly Leu Thr Pro Arg Val Asn
180 185 190
Ser Met Pro Asp Val Pro Val lie Gly Gly His Ser Gly G1U Thr lie
195 200 205
Ile Pro Leu Phe Ser Gln Ser Asn Phe Leu Ser Arg Leu Asn Glu Asp
210 215 220
- 70 032726
Gln Leu Lys Tyr Leu Ile His Arg Val Gln Tyr Gly Gly Asp Glu Val
225 230 235 240
Val Lys Ala Lys Asn Gly Lys Gly Ser Ala Thr Leu Ser Met Ala His
245 250 255
Ala Gly Tyr Lys cys Val Val Gln Phe Val Ser Leu Leu Leu Gly Asn
260 265 270
Ile Glu Gln Ile His Gly Thr Tyr Tyr Val Pro Leu Lys Asp Ala Asn
275 280 285
Asn Phe Pro Ile Ala Pro Gly Ala Asp Gln Leu Leu Pro Leu Val Asp
290 295 300
Gly Ala Asp Tyr Phe Ala Ile Pro Leu Thr Ile Thr Thr Lys Gly Val
305 310 315 320
Ser Tyr Val Asp Tyr Asp Ile Val Asn Arg Met Asn Asp Met Glu Arg
325 330 335
Asn Gln Met Leu Pro Ile cys Val Ser Gln Leu Lys Lys Asn Ile Asp
340 345 350
Lys Gly Leu Glu Phe Val Ala Ser Arg Ser Ala Ser Ser
355 360 365
<210> 20 <211> 1099 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> cpo MDH2 S. cerevisiae без первых 12 a.a.
<400>20 atgttgaaga ttgccatctt gggtgctgct ggtggtatcg gtcaatcttt gtctttgttg60 ttgaaggctc aattgcaata ccaattgaag gaatccaaca gatctgttac ccacattcat120 ttggctttgt acgatgtcaa ccaagaagct atcaacggtg tcactgctga cttgtctcac180
- 71 032726
atcgataccc caatctctgt ttcctctcac tctccagctg gtggtattga aaactgtttg 240
cacaacgctt ccattgttgt cattccagcc ggtgttccaa gaaagccagg tatgacccgt 300
gacgatttgt tcaacgtcaa tgccggtatc atctctcaat taggtgattc cattgctgaa 360
tgttgtgact tgtccaaggt tttcgtcttg gttatctcca acccagtcaa ctctttggtt 420
cctgttatgg tttccaacat cttgaagaac cacccacaat ccagaaactc tggtattgaa 480
agaagaatca tgggtgtcac caaattggac attgtcagag cttccacttt cttgagagaa 540
atcaacattg aatctggttt gactccaaga gtcaactcca tgccagatgt tccagttatc 600
ggtggtcact ctggtgaaac tatcatccca ttattctctc aatctaactt cttgtccaga 660
ttgaatgaag atcaattgaa atacttgatt caccgtgtcc aatacggtgg tgacgaagtt 720
gtcaaggcca agaacggtaa gggttctgct actctatcca tggctcatgc cggttacaag 780
tgtgttgtcc aattcgtttc tctattatta ggtaacattg aacaaatcca cggtacctac 840
tacgttccat tgaaagatgc taacaacttc ccaattgctc caggtgctga ccaattattg 900
ccattagtcg acggtgctga ctactttgcc atcccattga ccatcactac caagggtgtt 960
tcttacgttg actacgatat cgtcaacaga atgaacgaca tggaaagaaa ccaaatgttg 1020
cctatctgtg tttctcaatt gaagaagaac attgacaagg gtttggaatt cgttgcttcc 1080
agatctgctt ccagttaag 1099
<210> 21 <211> 340 <212> белок <213> Искусственная последовательность <220>
<223> MDH3 S. cerevisiae без С-концевого SKL <400> 21
Met Val Lys Val Ala Ile Leu Gly Ala Ser Gly Gly Val Gly Gln Pro
1 5 10 15
Leu Ser Leu Leu Leu Lys Leu Ser Pro Tyr Val Ser Glu Leu Ala Leu
20 25 30
Tyr Asp Ile Arg Ala Ala Glu Gly lie Gly Lys Asp Leu Ser His Ile
- 72 032726
40 45
Asn Thr Asn Ser Ser cys Val Gly Tyr Asp Lys Asp Ser Ile Glu Asn
50 55 60
Thr Leu Ser Asn Ala Gin Val Val Leu Ile Pro Ala Gly Val Pro Arg
65 70 75 80
Lys Pro Gly Leu Thr Arg Asp Asp Leu Phe Lys Met Asn Ala Gly Ile
85 90 95
Val Lys Ser Leu Val Thr Ala Val Gly Lys Phe Ala Pro Asn Ala Arg
100 105 110
Ile Leu Val Ile Ser Asn Pro Val Asn Ser Leu Val Pro lie Ala Val
115 120 125
Glu Thr Leu Lys Lys Met Gly Lys Phe Lys Pro Gly Asn Val Met Gly
130 135 140
Val Thr Asn Leu Asp Leu Val Arg Ala Glu Thr Phe Leu Val Asp Tyr
145 150 155 160
Leu Met Leu Lys Asn Pro Lys Ile Gly Gin Glu Gin Asp Lys Thr Thr
165 170 175
Met His Arg Lys Val Thr Val Ile Gly Gly His Ser Gly Glu Thr Ile
180 185 190
Ile Pro Ile lie Thr Asp Lys Ser Leu Val Phe Gin Leu Asp Lys Gin
195 200 205
Tyr Glu His Phe Ile His Arg Val Gin Phe Gly Gly Asp Glu Ile Val
210 215 220
Lys Ala Lys Gin Gly Ala Gly Ser Ala Thr Leu Ser Met Ala Phe Ala
225 230 235 240
Gly Ala Lys Phe Ala Glu Glu Val Leu Arg Ser Phe His Asn Glu Lys
- 73 032726
245 250 255
Pro Glu Thr Glu Ser Leu Ser Ala Phe Vai Tyr Leu Pro Gly Leu Lys
260 265 270
Asn Gly Lys Lys Ala Gin Gin Leu Vai Gly Asp Asn Ser Ile Glu Tyr
275 280 285
Phe Ser Leu Pro Ile Vai Leu Arg Asn Gly Ser Vai Vai Ser Ile Asp
290 295 300
Thr Ser Vai Leu Glu Lys Leu Ser Pro Arg Glu Glu Gin Leu Vai Asn
305 310 315 320
Thr Ala Vai Lys Glu Leu Arg Lys Asn Ile Glu Lys Gly Lys Ser Phe
325 330 335
He Leu Asp Ser
340 <210> 22 <211> 1024 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> MDH3 S. cerevisiae без SKL кодирующих nt, cpo <400>22 atggttaagg ttgccatctt aggtgcttct ggtggtgtcg gtcaaccatt atctctatta60 ttgaaattgt ctccatacgt ttctgaattg gctttgtacg atatcagagc tgctgaaggt120 attggtaagg atttgtccca catcaacacc aactcctctt gtgttggtta cgacaaggat180 tccatcgaaa acactttgtc caatgctcaa gttgtcttga ttccagctgg tgttccaaga240 aagccaggtt tgaccagaga tgatttgttc aagatgaacg ctggtatcgt taagtctttg300 gttactgctg tcggtaaatt tgccccaaac gctcgtatct tagtcatctc caaccctgtt360 aactctttgg ttccaattgc cgttgaaact ttgaagaaga tgggtaagtt caagccaggt420 aacgttatgg gtgtcaccaa cttggatttg gtcagagctg aaactttctt ggttgactac480
- 74 032726
ttgatgttga agaacccaaa gatcggtcaa gaacaagaca agaccaccat gcacagaaag 540
gtcaccgtca tcggtggtca ctctggtgaa accatcattc caatcatcac tgacaaatcc 600
ttggttttcc aattggacaa gcaatacgaa catttcatcc acagagtcca attcggtggt 660
gacgaaattg tcaaggccaa gcaaggtgcc ggttctgcta ccttgtccat ggctttcgct 720
ggtgccaaat ttgctgaaga agtcttacgt tctttccaca acgaaaagcc agaaactgaa 780
tctttgtctg ctttcgtcta cttgccaggt ttgaagaacg gtaagaaggc tcaacaatta 840
gtcggtgaca actccattga atacttctct ttgccaattg ttttgagaaa cggttccgtt 900
gtttccattg acacttctgt tttggaaaaa ttgtctccaa gagaagaaca attggtcaac 960
actgctgtca aggaattgag aaagaacatt gaaaagggta agtctttcat cttggacagt 1020
taag1024 <210>23 <211>472 <212> белок <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Fumarase R. oryzae без первых 23 aa+ новый Μ <40θ> 23
Met Ser Ser Ala Ser Ala Ala Leu Gln Lys Phe Arg Ala Glu Arg Asp
1 5 10 15
Thr Phe Gly Asp Leu Gln Vai Pro Ala Asp Arg Tyr Trp Gly Ala Gln
20 25 30
Thr Gln Arg Ser Leu Gln Asn Phe Asp He Gly Gly Pro Thr Glu Arg
35 40 45
Met Pro Glu Pro Leu He Arg Ala Phe Gly Vai Leu Lys Lys Ala Ala
50 55 60
Ala Thr Vai Asn Met Thr Tyr Gly Leu Asp Pro Lys Vai Gly Glu Ala
65 70 75 80
lie Gln Lys Ala Ala Asp Glu Vai He Asp Gly Ser Leu He Asp His
- 75 032726
85 90 95
Phe Pro Leu Val Val Trp Gln Thr Gly Ser Gly Thr Gln Thr Lys Met
100 105 110
Asn Val Asn Glu Val He Ser Asn Arg Ala He Glu Leu Leu Gly Gly
115 120 125
Glu Leu Gly Ser Lys Ala Pro Val His Pro Asn Asp His Val Asn Met
130 135 140
Ser Gln Ser Ser Asn Asp Thr Phe Pro Thr Ala Met His Val Ala Ala
145 150 155 160
Val Val Glu He His Gly Arg Leu He Pro Ala Leu Thr Thr Leu Arg
165 170 175
Asp Ala Leu Gln Ala Lys Ser Ala Glu Phe Glu His He He Lys He
180 185 190
Gly Arg Thr His Leu Gln Asp Ala Thr Pro Leu Thr Leu Gly Gln Glu
195 200 205
Phe Ser Gly Tyr Thr Gln Gln Leu Thr Tyr Gly He Ala Arg Val Gln
210 215 220
Gly Thr Leu Glu Arg Leu Tyr Asn Leu Ala Gln Gly Gly Thr Ala Val
225 230 235 240
Gly Thr Gly Leu Asn Thr Arg Lys Gly Phe Asp Ala Lys Val Ala Glu
245 250 255
Ala lie Ala Ser He Thr Gly Leu Pro Phe Lys Thr Ala Pro Asn Lys
260 265 270
Phe Glu Ala Leu Ala Ala His Asp Ala Leu Val Glu Ala His Gly Ala
275 280 285
Leu Asn Thr Val Ala Cys Ser Leu Met Lys He Ala Asn Asp He Arg
- 76 032726
290 295300
Туг Leu Gly Ser Gly Pro Arg cys Gly Leu Gly Glu Leu Ser Leu Pro
305 310 315 320
Glu Asn Glu Pro Gly Ser Ser He Met Pro Gly Lys Val Asn Pro Thr
325 330 335
Gin Cys Glu Ala Met Thr Met Val Cys Ala Gin Val Met Gly Asn Asn
340 345 350
Thr Ala He Ser Val Ala Gly Ser Asn Gly Gin Phe Glu Leu Asn Val
355 360 365
Phe Lys Pro Val Met He Lys Asn Leu He Gin Ser He Arg Leu He
370 375 380
Ser Asp Ala Ser He Ser Phe Thr Lys Asn Cys Val Val Gly He Glu
385 390 395 400
Ala Asn Glu Lys Lys He Ser Ser He Met Asn Glu Ser Leu Met Leu
405 410 415
Val Thr Ala Leu Asn Pro His He Gly Tyr Asp Lys Ala Ala Lys Cys
420 425 430
Ala Lys Lys Ala His Lys Glu Gly Thr Thr Leu Lys Glu Ala Ala Leu
435 440 445
Ser Leu Gly Tyr Leu Thr Ser Glu Glu Phe Asp Gin Trp Val Arg Pro
450 455 460
Glu Asp Met lie Ser Ala Lys Asp
465470 <210>24 <211>1419 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность
- 77 032726 <220>
<223> Fumarase R. oryzae без nt кодирующей первые аа + Μ <400> 24
atgtcctctg cttctgctgc tttgcaaaaa ttcagagctg aaagagatac cttcggtgac 60
ttgcaagttc cagctgaccg ttactggggt gctcaaactc aaagatcttt gcaaaacttt 120
gacattggtg gtccaactga aagaatgcca gaaccattaa tcagagcttt cggtgttttg 180
aagaaggctg ctgccaccgt caacatgacc tacggtttgg acccaaaggt tggtgaagcc 240
atccaaaagg ctgctgacga agttatcgat ggttctttga ttgaccattt cccattggtt 300
gtctggcaaa ccggttctgg tactcaaacc aagatgaacg tcaatgaagt catctccaac 360
agagccattg aattgttggg tggtgaatta ggttccaagg ctccagtcca cccaaacgat 420
catgtcaaca tgtctcaatc ttccaacgac actttcccaa ctgccatgca cgttgctgcc 480
gttgttgaaa ttcacggtag attgattcca gctttgacca ctttgagaga tgctttgcaa 540
gccaaatctg ctgaattcga acacatcatc aagattggta gaacccactt gcaagatgct 600
accccattga ctttaggtca agaattctcc ggttacactc aacaattgac ctacggtatt 660
gctcgtgttc aaggtacttt ggaaagatta tacaacttgg ctcaaggtgg tactgctgtc 720
ggtactggtt tgaacaccag aaagggtttc gatgccaagg ttgctgaagc cattgcttcc 780
atcactggtt taccattcaa gaccgctcca aacaaattcg aagctttggc tgctcacgac 840
gctttggttg aagctcacgg tgctttgaac accgttgctt gttctttgat gaagattgcc 900
aacgatatcc gttacttggg ttctggtcca agatgtggtt taggtgaatt gtctctacca 960
gaaaacgaac caggttcttc catcatgcca ggtaaggtca acccaactca atgtgaagct 1020
atgaccatgg tttgtgctca agtcatgggt aacaacactg ccatctctgt tgctggttcc 1080
aacggtcaat tcgaattgaa tgtctttaaa ccagtcatga tcaagaactt gatccaatcc 1140
atcagattaa tctctgacgc ttccatctct ttcaccaaga actgtgttgt cggtattgaa 1200
gctaacgaaa agaagatctc ctccatcatg aacgaatctt tgatgttggt cactgctttg 1260
aaccctcaca ttggttacga caaggctgcc aagtgtgcca agaaggctca caaggaaggt 1320
accactttga aagaagctgc tctatctttg ggttacttga cctctgaaga attcgaccaa 1380
tgggttagac ctgaggacat gatttctgcc aaggattaa 1419
- 78 032726 <210> 25 <211> 1000 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> TDH1 промотор <400> 25
cttccctttt acagtgcttc ggaaaagcac agcgttgtcc aagggaacaa tttttcttca 60
agttaatgca taagaaatat ctttttttat gtttagctaa gtaaaagcag cttggagtaa 120
aaaaaaaaat gagtaaattt ctcgatggat tagtttctca caggtaacat aacaaaaacc 180
aagaaaagcc cgcttctgaa aactacagtt gacttgtatg ctaaagggcc agactaatgg 240
gaggagaaaa agaaacgaat gtatatgctc atttacactc tatatcacca tatggaggat 300
aagttgggct gagcttctga tccaatttat tctatccatt agttgctgat atgtcccacc 360
agccaacact tgatagtatc tactcgccat tcacttccag cagcgccagt agggttgttg 420
agcttagtaa aaatgtgcgc accacaagcc tacatgactc cacgtcacat gaaaccacac 480
cgtggggcct tgttgcgcta ggaataggat atgcgacgaa gacgcttctg cttagtaacc 540
acaccacatt ttcagggggt cgatctgctt gcttccttta ctgtcacgag cggcccataa 600
tcgcgctttt tttttaaaag gcgcgagaca gcaaacagga agctcgggtt tcaaccttcg 660
gagtggtcgc agatctggag actggatctt tacaatacag taaggcaagc caccatctgc 720
ttcttaggtg catgcgacgg tatccacgtg cagaacaaca tagtctgaag aaggggggga 780
ggagcatgtt cattctctgt agcagtaaga gcttggtgat aatgaccaaa actggagtct 840
cgaaatcata taaatagaca atatattttc acacaatgag atttgtagta cagttctatt 900
ctctctcttg cataaataag aaattcatca agaacttggt ttgatatttc accaacacac 960
acaaaaaaca gtacttcact aaatttacac acaaaacaaa 1000
<210> <211> <212> <213> 26 500 ДНК Искусственная последовательность
<220> <223> TDH1 терминатор
- 79 032726
<400> 26 ataaagcaat cttgatgagg ataatgattt ttttttgaat atacataaat actaccgttt 60
ttctgctaga ttttgtgaag acgtaaataa gtacatatta ctttttaagc caagacaaga 120
ttaagcatta actttaccct tttctcttct aagtttcaat actagttatc actgtttaaa 180
agttatggcg agaacgtcgg cggttaaaat atattaccct gaacgtggtg aattgaagtt 240
ctaggatggt ttaaagattt ttcctttttg ggaaataagt aaacaatata ttgctgcctt 300
tgcaaaacgc acatacccac aatatgtgac tattggcaaa gaacgcatta tcctttgaag 360
aggtggatac tgatactaag agagtctcta ttccggctcc acttttagtc cagagattac 420
ttgtcttctt acgtatcaga acaagaaagc atttccaaag taattgcatt tgcccttgag 480
cagtatatat atactaagaa 500
<210> 27 <211> 600 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность
<220>
<223> второй TDH3 промотор <400> 27 ttagtcaaaa aattagcctt ttaattctgc tgtaacccgt acatgcccaa aatagggggc 60
gggttacaca gaatatataa catcgtaggt gtctgggtga acagtttatt cctggcatcc 120
actaaatata atggagcccg ctttttaagc tggcatccag aaaaaaaaag aatcccagca 180
ccaaaatatt gttttcttca ccaaccatca gttcataggt ccattctctt agcgcaacta 240
cagagaacag gggcacaaac aggcaaaaaa cgggcacaac ctcaatggag tgatgcaacc 300
tgcctggagt aaatgatgac acaaggcaat tgacccacgc atgtatctat ctcattttct 360
tacaccttct attaccttct gctctctctg atttggaaaa agctgaaaaa aaaggttgaa 420
accagttccc tgaaattatt cccctacttg actaataagt atataaagac ggtaggtatt 480
gattgtaatt ctgtaaatct atttcttaaa cttcttaaat tctactttta tagttagtct 540
tttttttagt tttaaaacac caagaactta gtttcgaata aacacacata aacaaacaaa 600
<210> 28 <211> 300
- 80 032726 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> второй TDH3 терминатор <400>28 gtgaatttac tttaaatctt gcatttaaat aaattttctt tttatagctt tatgacttag60 tttcaattta tatactattt taatgacatt ttcgattcat tgattgaaag ctttgtgttt120 tttcttgatg cgctattgca ttgttcttgt ctttttcgcc acatgtaata tctgtagtag180 atacctgata cattgtggat gctgagtgaa attttagtta ataatggagg cgctcttaat240 aattttgggg atattggctt ttttttttaa agtttacaaa tgaatttttt ccgccaggat300 <210>29 <211>3148 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> TDHlp-PCKm-TDHlt искуственная конструкция <400> 29
ggatcccttc ccttttacag tgcttcggaa aagcacagcg ttgtccaagg gaacaatttt 60
tcttcaagtt aatgcataag aaatatcttt ttttatgttt agctaagtaa aagcagcttg 120
gagtaaaaaa aaaaatgagt aaatttctcg atggattagt ttctcacagg taacataaca 180
aaaaccaaga aaagcccgct tctgaaaact acagttgact tgtatgctaa agggccagac 240
taatgggagg agaaaaagaa acgaatgtat atgctcattt acactctata tcaccatatg 300
gaggataagt tgggctgagc ttctgatcca atttattcta tccattagtt gctgatatgt 360
cccaccagcc aacacttgat agtatctact cgccattcac ttccagcagc gccagtaggg 420
ttgttgagct tagtaaaaat gtgcgcacca caagcctaca tgactccacg tcacatgaaa 480
ccacaccgtg gggccttgtt gcgctaggaa taggatatgc gacgaagacg cttctgctta 540
gtaaccacac cacattttca gggggtcgat ctgcttgctt cctttactgt cacgagcggc 600
ccataatcgc gctttttttt taaaaggcgc gagacagcaa acaggaagct cgggtttcaa 660
ccttcggagt ggtcgcagat ctggagactg gatctttaca atacagtaag gcaagccacc 720
atctgcttct taggtgcatg cgacggtatc cacgtgcaga acaacatagt ctgaagaagg 780
- 81 032726
gggggaggag catgttcatt ctctgtagca gtaagagctt ggtgataatg accaaaactg 840
gagtctcgaa atcatataaa tagacaatat attttcacac aatgagattt gtagtacagt 900
tctattctct ctcttgcata aataagaaat tcatcaagaa cttggtttga tatttcacca 960
acacacacaa aaaacagtac ttcactaaat ttacacacaa aacaaaatga ctgatttgaa 1020
caaattggtc aaggaattga atgatttggg tttgactgac gtcaaggaaa ttgtctacaa 1080
cccatcttac gaacaattat tcgaagaaga aaccaagcca ggtttggaag gtttcgacaa 1140
gggtactttg accactttag gtgctgttgc tgttgacacc ggtattttca ccggtcgttc 1200
tccaaaggac aaatacattg tttgtgatga aaccaccaag gacaccgtct ggtggaactc 1260
tgaagctgcc aagaacgata acaagccaat gactcaagaa acctggaaat ctttgagaga 1320
attggttgcc aagcaattgt ctggtaagag attattcgtt gttgacgctt tctgtggtgc 1380
ttctgaaaag cacagaattg gtgtcagaat ggtcactgaa gttgcttggc aagctcattt 1440
cgtcaagaac atgttcatca gaccaactga cgaagaattg aagaacttca aggctgactt 1500
caccgttttg aatggtgcca agtgtaccaa cccaaactgg aaggaacaag gtttgaactc 1560
tgaaaacttt gttgctttca acatcactga aggtatccaa ttgattggtg gtacctggta 1620
cggtggtgaa atgaagaagg gtatgttctc catgatgaac tatttcttgc cattgaaagg 1680
tgttgcttcc atgcactgtt ctgccaatgt cggtaaggat ggtgacgttg ccatcttctt 1740
cggtctatcc ggtactggta agaccactct atccactgac ccaaagagac aattgattgg 1800
tgatgacgaa cacggttggg acgaatctgg tgtctttaac tttgaaggtg gttgttacgc 1860
caagaccatc aacttatctc aagaaaacga accagatatc tacggtgcca tccgtcgtga 1920
tgctttgttg gaaaacgttg ttgtcagagc tgacggttct gttgacttcg acgacggttc 1980
caagactgaa aacaccagag tttcttaccc aatctaccac attgacaaca ttgtcagacc 2040
tgtttccaag gctggtcacg ctaccaaggt tatcttcttg actgctgatg ctttcggtgt 2100
cttgccacct gtttccaaat tgactccaga acaaaccgaa tactacttct tgtccggttt 2160
cactgccaaa ttggctggta ctgaaagagg tgtcactgaa ccaactccaa ctttctctgc 2220
ttgtttcggt gctgctttct tatctttgca cccaatccaa tacgctgatg tcttggttga 2280
aagaatgaag gcttctggtg ctgaagctta cttggtcaac accggttgga acggtaccgg 2340
- 82 032726
taagagaatc tccatcaagg ataccagagg tatcattgat gctatcttgg acggttccat 2400
tgaaaaggct gaaatgggtg aattgccaat cttcaacttg gccattccaa aggctttgcc 2460
aggtgttgac ccagccatct tagatccaag agacacctac gctgacaagg ctcaatggca 2520
agtcaaggct gaagatttgg ctaacagatt cgtcaagaac tttgtcaaat acactgctaa 2580
cccagaagct gccaaattgg ttggtgctgg tccaaaggct taaggcccgg gcataaagca 2640
atcttgatga ggataatgat ttttttttga atatacataa atactaccgt ttttctgcta 2700
gattttgtga agacgtaaat aagtacatat tactttttaa gccaagacaa gattaagcat 2760
taactttacc cttttctctt ctaagtttca atactagtta tcactgttta aaagttatgg 2820
cgagaacgtc ggcggttaaa atatattacc ctgaacgtgg tgaattgaag ttctaggatg 2880
gtttaaagat ttttcctttt tgggaaataa gtaaacaata tattgctgcc tttgcaaaac 2940
gcacataccc acaatatgtg actattggca aagaacgcat tatcctttga agaggtggat 3000
actgatacta agagagtctc tattccggct ccacttttag tccagagatt acttgtcttc 3060
ttacgtatca gaacaagaaa gcatttccaa agtaattgca tttgcccttg agcagtatat 3120
atatactaag aaggcgcgcc gcggccgc 3148
<210> 30 <211> 3148 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> TDHlp-PCKl-TDHlt искусственная конструкция <400> 30
ggatcccttc ccttttacag tgcttcggaa aagcacagcg ttgtccaagg gaacaatttt 60
tcttcaagtt aatgcataag aaatatcttt ttttatgttt agctaagtaa aagcagcttg 120
gagtaaaaaa aaaaatgagt aaatttctcg atggattagt ttctcacagg taacataaca 180
aaaaccaaga aaagcccgct tctgaaaact acagttgact tgtatgctaa agggccagac 240
taatgggagg agaaaaagaa acgaatgtat atgctcattt acactctata tcaccatatg 300
gaggataagt tgggctgagc ttctgatcca atttattcta tccattagtt gctgatatgt 360
cccaccagcc aacacttgat agtatctact cgccattcac ttccagcagc gccagtaggg 420
- 83 032726
ttgttgagct tagtaaaaat gtgcgcacca caagcctaca tgactccacg tcacatgaaa 480
ccacaccgtg gggccttgtt gcgctaggaa taggatatgc gacgaagacg cttctgctta 540
gtaaccacac cacattttca gggggtcgat ctgcttgctt cctttactgt cacgagcggc 600
ccataatcgc gctttttttt taaaaggcgc gagacagcaa acaggaagct cgggtttcaa 660
ccttcggagt ggtcgcagat ctggagactg gatctttaca atacagtaag gcaagccacc 720
atctgcttct taggtgcatg cgacggtatc cacgtgcaga acaacatagt ctgaagaagg 780
gggggaggag catgttcatt ctctgtagca gtaagagctt ggtgataatg accaaaactg 840
gagtctcgaa atcatataaa tagacaatat attttcacac aatgagattt gtagtacagt 900
tctattctct ctcttgcata aataagaaat tcatcaagaa cttggtttga tatttcacca 960
acacacacaa aaaacagtac ttcactaaat ttacacacaa aacaaaatga ccgatttgaa 1020
ccaattgact caagaattgg gtgctttggg tattcacgat gtccaagaag ttgtctacaa 1080
cccatcttac gaattgttgt ttgctgaaga aaccaagcca ggtttggaag gttacgaaaa 1140
gggtactgtt accaaccaag gtgctgttgc tgtcaacacc ggtatcttca ccggtcgttc 1200
tccaaaggac aaatacattg tcttggatga caagaccaag gacactgtct ggtggacttc 1260
tgaaaaggtc aagaacgaca acaaaccaat gtcccaagac acttggaact ctttaaaggg 1320
tttagtcgct gaccaattgt ctggtaagag attattcgtt gtcgatgctt tctgtggtgc 1380
caacaaggac accagattag ctgtcagagt tgtcactgaa gttgcttggc aagctcactt 1440
cgttaccaac atgttcatca gaccatctgc tgaagaattg aaaggtttca agccagattt 1500
cgttgtcatg aacggtgcca aatgtaccaa cccaaactgg aaggaacaag gtttgaactc 1560
tgaaaacttt gttgctttca acatcactga aggtgttcaa ttgattggtg gtacctggta 1620
cggtggtgaa atgaagaagg gtatgttctc catgatgaac tacttcttgc cattgagagg 1680
tattgcttcc atgcactgtt ctgccaatgt cggtaaggac ggtgacactg ccatcttctt 1740
cggtctatcc ggtaccggta agaccacttt gtccactgac ccaaagagac aattgattgg 1800
tgatgacgaa cacggttggg atgacgaagg tgttttcaac tttgaaggtg gttgttacgc I860
caagaccatc aacttatctg ctgaaaatga accagatatc tacggtgcca tcaagcgtga 1920
cgctctattg gaaaacgttg ttgttttgga caatggtgac gtcgattatg ctgacggttc 1980
- 84 032726
caagactgaa aacaccagag tttcttaccc aatctaccat attcaaaaca ttgtcaagcc 2040
agtttccaag gctggtccag ctaccaaagt tatcttcttg tctgctgatg ctttcggtgt 2100
tttgcctcct gtttccaagt tgactccaga acaaaccaag tactacttct tgtctggttt 2160
caccgccaag ttggctggta ctgaaagagg tatcactgaa ccaactccaa ctttctctgc 2220
ttgtttcggt gctgcctttt tgtctttgca cccaactcaa tacgctgaag ttttggtcaa 2280
gagaatgcaa gaatctggtg ctgaagctta cttggtcaac actggttgga acggtaccgg 2340
taagagaatc tccatcaaag ataccagagg tatcatcgat gccatcttgg atggttccat 2400
tgacaaggct gaaatgggtt ctttgccaat tttcgatttc tccattccaa aggctttgcc 2460
aggtgtcaac ccagccatct tagacccaag agacacctac gctgacaaag ctcaatggga 2520
agaaaaggct caagacttgg ctggtagatt cgtcaagaac ttcgaaaaat acactggtac 2580
tgctgaaggt caagctttgg ttgctgctgg tccaaaggcc taaggcccgg gcataaagca 2640
atcttgatga ggataatgat ttttttttga atatacataa atactaccgt ttttctgcta 2700
gattttgtga agacgtaaat aagtacatat tactttttaa gccaagacaa gattaagcat 2760
taactttacc cttttctctt ctaagtttca atactagtta tcactgttta aaagttatgg 2820
cgagaacgtc ggcggttaaa atatattacc ctgaacgtgg tgaattgaag ttctaggatg 2880
gtttaaagat ttttcctttt tgggaaataa gtaaacaata tattgctgcc tttgcaaaac 2940
gcacataccc acaatatgtg actattggca aagaacgcat tatcctttga agaggtggat 3000
actgatacta agagagtctc tattccggct ccacttttag tccagagatt acttgtcttc 3060
ttacgtatca gaacaagaaa gcatttccaa agtaattgca tttgcccttg agcagtatat 3120
atatactaag aaggcgcgcc gcggccgc 3148
<210> 31 <211> 2637 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> TDH3p-delta 12N MDH2-TDH3t искусственная конструкция <400> 31 ggatccggcg cgccctattt tcgaggacct tgtcaccttg agcccaagag agccaagatt 60
- 85 032726
taaattttcc tatgacttga tgcaaattcc caaagctaat aacatgcaag acacgtacgg 120
tcaagaagac atatttgacc tcttaacagg ttcagacgcg actgcctcat cagtaagacc 180
cgttgaaaag aacttacctg aaaaaaacga atatatacta gcgttgaatg ttagcgtcaa 240
caacaagaag tttaatgacg cggaggccaa ggcaaaaaga ttccttgatt acgtaaggga 300
gttagaatca ttttgaataa aaaacacgct ttttcagttc gagtttatca ttatcaatac 360
tgccatttca aagaatacgt aaataattaa tagtagtgat tttcctaact ttatttagtc 420
aaaaaattag ccttttaatt ctgctgtaac ccgtacatgc ccaaaatagg gggcgggtta 480
cacagaatat ataacatcgt aggtgtctgg gtgaacagtt tattcctggc atccactaaa 540
tataatggag cccgcttttt aagctggcat ccagaaaaaa aaagaatccc agcaccaaaa 600
tattgttttc ttcaccaacc atcagttcat aggtccattc tcttagcgca actacagaga 660
acaggggcac aaacaggcaa aaaacgggca caacctcaat ggagtgatgc aacctgcctg 720
gagtaaatga tgacacaagg caattgaccc acgcatgtat ctatctcatt ttcttacacc 780
ttctattacc ttctgctctc tctgatttgg aaaaagctga aaaaaaaggt tgaaaccagt 840
tccctgaaat tattccccta cttgactaat aagtatataa agacggtagg tattgattgt 900
aattctgtaa atctatttct taaacttctt aaattctact tttatagtta gtcttttttt 960
tagttttaaa acaccaagaa cttagtttcg aataaacaca cataaacaaa caaaatgttg 1020
aagattgcca tcttgggtgc tgctggtggt atcggtcaat ctttgtcttt gttgttgaag 1080
gctcaattgc aataccaatt gaaggaatcc aacagatctg ttacccacat tcatttggct 1140
ttgtacgatg tcaaccaaga agctatcaac ggtgtcactg ctgacttgtc tcacatcgat 1200
accccaatct ctgtttcctc tcactctcca gctggtggta ttgaaaactg tttgcacaac 1260
gcttccattg ttgtcattcc agccggtgtt ccaagaaagc caggtatgac ccgtgacgat 1320
ttgttcaacg tcaatgccgg tatcatctct caattaggtg attccattgc tgaatgttgt 1380
gacttgtcca aggttttcgt cttggttatc tccaacccag tcaactcttt ggttcctgtt 1440
atggtttcca acatcttgaa gaaccaccca caatccagaa actctggtat tgaaagaaga 1500
atcatgggtg tcaccaaatt ggacattgtc agagcttcca ctttcttgag agaaatcaac 1560
attgaatctg gtttgactcc aagagtcaac tccatgccag atgttccagt tatcggtggt 1620
- 86 032726
cactctggtg aaactatcat cccattattc tctcaatcta acttcttgtc cagattgaat 1680
gaagatcaat tgaaatactt gattcaccgt gtccaatacg gtggtgacga agttgtcaag 1740
gccaagaacg gtaagggttc tgctactcta tccatggctc atgccggtta caagtgtgtt 1800
gtccaattcg tttctctatt attaggtaac attgaacaaa tccacggtac ctactacgtt I860
ccattgaaag atgctaacaa cttcccaatt gctccaggtg ctgaccaatt attgccatta 1920
gtcgacggtg ctgactactt tgccatccca ttgaccatca ctaccaaggg tgtttcttac 1980
gttgactacg atatcgtcaa cagaatgaac gacatggaaa gaaaccaaat gttgcctatc 2040
tgtgtttctc aattgaagaa gaacattgac aagggtttgg aattcgttgc ttccagatct 2100
gcttccagtt aaggcccggg cgtgaattta ctttaaatct tgcatttaaa taaattttct 2160
ttttatagct ttatgactta gtttcaattt atatactatt ttaatgacat tttcgattca 2220
ttgattgaaa gctttgtgtt ttttcttgat gcgctattgc attgttcttg tctttttcgc 2280
cacatgtaat atctgtagta gatacctgat acattgtgga tgctgagtga aattttagtt 2340
aataatggag gcgctcttaa taattttggg gatattggct ttttttttta aagtttacaa 2400
atgaattttt tccgccagga taacgattct gaagttactc ttagcgttcc tatcggtaca 2460
gccatcaaat catgcctata aatcatgcct atatttgcgt gcagtcagta tcatctacat 2520
gaaaaaaact cccgcaattt cttatagaat acgttgaaaa ttaaatgtac gcgccaagat 2580
aagataacat atatctagat gcagtaatat acacagattc cggccggccg cggccgc 2637
<210> 32 <211> 1966
<212> <213> ДНК Искусственная последовательность
<220>
<223> TDH3p-MDH3-TDH3t искусственная конструкция
<400> 32
ggatccggcg cgccacgcgt ggccggcctt agtcaaaaaa ttagcctttt aattctgctg 60
taacccgtac atgcccaaaa tagggggcgg gttacacaga atatataaca tcgtaggtgt 120
ctgggtgaac agtttattcc tggcatccac taaatataat ggagcccgct ttttaagctg 180
gcatccagaa aaaaaaagaa tcccagcacc aaaatattgt tttcttcacc aaccatcagt 240
- 87 032726
tcataggtcc attctcttag cgcaactaca gagaacaggg gcacaaacag gcaaaaaacg 300
ggcacaacct caatggagtg atgcaacctg cctggagtaa atgatgacac aaggcaattg 360
acccacgcat gtatctatct cattttctta caccttctat taccttctgc tctctctgat 420
ttggaaaaag ctgaaaaaaa aggttgaaac cagttccctg aaattattcc cctacttgac 480
taataagtat ataaagacgg taggtattga ttgtaattct gtaaatctat ttcttaaact 540
tcttaaattc tacttttata gttagtcttt tttttagttt taaaacacca agaacttagt 600
ttcgaataaa cacacataaa caaacaaaat ggttaaggtt gccatcttag gtgcttctgg 660
tggtgtcggt caaccattat ctctattatt gaaattgtct ccatacgttt ctgaattggc 720
tttgtacgat atcagagctg ctgaaggtat tggtaaggat ttgtcccaca tcaacaccaa 780
ctcctcttgt gttggttacg acaaggattc catcgaaaac actttgtcca atgctcaagt 840
tgtcttgatt ccagctggtg ttccaagaaa gccaggtttg accagagatg atttgttcaa 900
gatgaacgct ggtatcgtta agtctttggt tactgctgtc ggtaaatttg ccccaaacgc 960
tcgtatctta gtcatctcca accctgttaa ctctttggtt ccaattgccg ttgaaacttt 1020
gaagaagatg ggtaagttca agccaggtaa cgttatgggt gtcaccaact tggatttggt 1080
cagagctgaa actttcttgg ttgactactt gatgttgaag aacccaaaga tcggtcaaga 1140
acaagacaag accaccatgc acagaaaggt caccgtcatc ggtggtcact ctggtgaaac 1200
catcattcca atcatcactg acaaatcctt ggttttccaa ttggacaagc aatacgaaca 1260
tttcatccac agagtccaat tcggtggtga cgaaattgtc aaggccaagc aaggtgccgg 1320
ttctgctacc ttgtccatgg ctttcgctgg tgccaaattt gctgaagaag tcttacgttc 1380
tttccacaac gaaaagccag aaactgaatc tttgtctgct ttcgtctact tgccaggttt 1440
gaagaacggt aagaaggctc aacaattagt cggtgacaac tccattgaat acttctcttt 1500
gccaattgtt ttgagaaacg gttccgttgt ttccattgac acttctgttt tggaaaaatt 1560
gtctccaaga gaagaacaat tggtcaacac tgctgtcaag gaattgagaa agaacattga 1620
aaagggtaag tctttcatct tggacagtta aggtgaattt actttaaatc ttgcatttaa 1680
ataaattttc tttttatagc tttatgactt agtttcaatt tatatactat tttaatgaca 1740
ttttcgattc attgattgaa agctttgtgt tttttcttga tgcgctattg cattgttctt 1800
- 88 032726
gtctttttcg ccacatgtaa tatctgtagt agatacctga tacattgtgg atgctgagtg I860
aaattttagt taataatgga ggcgctctta ataattttgg ggatattggc tttttttttt 1920
aaagtttaca aatgaatttt ttccgccagg atgggcccgc ggccgc 1966
<210> 33 <211> 2950 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220> <223> TDHl-FUMR-TDHlt искусственная конструкция <400> 33 ggatcccttc ccttttacag tgcttcggaa aagcacagcg ttgtccaagg gaacaatttt 60
tcttcaagtt aatgcataag aaatatcttt ttttatgttt agctaagtaa aagcagcttg 120
gagtaaaaaa aaaaatgagt aaatttctcg atggattagt ttctcacagg taacataaca 180
aaaaccaaga aaagcccgct tctgaaaact acagttgact tgtatgctaa agggccagac 240
taatgggagg agaaaaagaa acgaatgtat atgctcattt acactctata tcaccatatg 300
gaggataagt tgggctgagc ttctgatcca atttattcta tccattagtt gctgatatgt 360
cccaccagcc aacacttgat agtatctact cgccattcac ttccagcagc gccagtaggg 420
ttgttgagct tagtaaaaat gtgcgcacca caagcctaca tgactccacg tcacatgaaa 480
ccacaccgtg gggccttgtt gcgctaggaa taggatatgc gacgaagacg cttctgctta 540
gtaaccacac cacattttca gggggtcgat ctgcttgctt cctttactgt cacgagcggc 600
ccataatcgc gctttttttt taaaaggcgc gagacagcaa acaggaagct cgggtttcaa 660
ccttcggagt ggtcgcagat ctggagactg gatctttaca atacagtaag gcaagccacc 720
atctgcttct taggtgcatg cgacggtatc cacgtgcaga acaacatagt ctgaagaagg 780
gggggaggag catgttcatt ctctgtagca gtaagagctt ggtgataatg accaaaactg 840
gagtctcgaa atcatataaa tagacaatat attttcacac aatgagattt gtagtacagt 900
tctattctct ctcttgcata aataagaaat tcatcaagaa cttggtttga tatttcacca 960
acacacacaa aaaacagtac ttcactaaat ttacacacaa aacaaaatgt cctctgcttc 1020
tgctgctttg caaaaattca gagctgaaag agataccttc ggtgacttgc aagttccagc 1080
- 89 032726
tgaccgttac tggggtgctc aaactcaaag atctttgcaa aactttgaca ttggtggtcc 1140
aactgaaaga atgccagaac cattaatcag agctttcggt gttttgaaga aggctgctgc 1200
caccgtcaac atgacctacg gtttggaccc aaaggttggt gaagccatcc aaaaggctgc 1260
tgacgaagtt atcgatggtt ctttgattga ccatttccca ttggttgtct ggcaaaccgg 1320
ttctggtact caaaccaaga tgaacgtcaa tgaagtcatc tccaacagag ccattgaatt 1380
gttgggtggt gaattaggtt ccaaggctcc agtccaccca aacgatcatg tcaacatgtc 1440
tcaatcttcc aacgacactt tcccaactgc catgcacgtt gctgccgttg ttgaaattca 1500
cggtagattg attccagctt tgaccacttt gagagatgct ttgcaagcca aatctgctga 1560
attcgaacac atcatcaaga ttggtagaac ccacttgcaa gatgctaccc cattgacttt 1620
aggtcaagaa ttctccggtt acactcaaca attgacctac ggtattgctc gtgttcaagg 1680
tactttggaa agattataca acttggctca aggtggtact gctgtcggta ctggtttgaa 1740
caccagaaag ggtttcgatg ccaaggttgc tgaagccatt gcttccatca ctggtttacc 1800
attcaagacc gctccaaaca aattcgaagc tttggctgct cacgacgctt tggttgaagc I860
tcacggtgct ttgaacaccg ttgcttgttc tttgatgaag attgccaacg atatccgtta 1920
cttgggttct ggtccaagat gtggtttagg tgaattgtct ctaccagaaa acgaaccagg 1980
ttcttccatc atgccaggta aggtcaaccc aactcaatgt gaagctatga ccatggtttg 2040
tgctcaagtc atgggtaaca acactgccat ctctgttgct ggttccaacg gtcaattcga 2100
attgaatgtc tttaaaccag tcatgatcaa gaacttgatc caatccatca gattaatctc 2160
tgacgcttcc atctctttca ccaagaactg tgttgtcggt attgaagcta acgaaaagaa 2220
gatctcctcc atcatgaacg aatctttgat gttggtcact gctttgaacc ctcacattgg 2280
ttacgacaag gctgccaagt gtgccaagaa ggctcacaag gaaggtacca ctttgaaaga 2340
agctgctcta tctttgggtt acttgacctc tgaagaattc gaccaatggg ttagacctga 2400
ggacatgatt tctgccaagg attaaggccc gggcataaag caatcttgat gaggataatg 2460
attttttttt gaatatacat aaatactacc gtttttctgc tagattttgt gaagacgtaa 2520
ataagtacat attacttttt aagccaagac aagattaagc attaacttta cccttttctc 2580
ttctaagttt caatactagt tatcactgtt taaaagttat ggcgagaacg tcggcggtta 2640
- 90 032726
aaatatatta ccctgaacgt ggtgaattga agttctagga tggtttaaag atttttcctt 2700
tttgggaaat aagtaaacaa tatattgctg cctttgcaaa acgcacatac ccacaatatg 2760
tgactattgg caaagaacgc attatccttt gaagaggtgg atactgatac taagagagtc 2820
tctattccgg ctccactttt agtccagaga ttacttgtct tcttacgtat cagaacaaga 2880
aagcatttcc aaagtaattg catttgccct tgagcagtat atatatacta agaaggcgcg 2940
ccgcggccgc 2950
<210> 34 <211> 5037 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> TDH3p-FRDml-TDH3t искусственная конструкция <400> 34
ggatccggcg cgccctattt tcgaggacct tgtcaccttg agcccaagag agccaagatt 60
taaattttcc tatgacttga tgcaaattcc caaagctaat aacatgcaag acacgtacgg 120
tcaagaagac atatttgacc tcttaacagg ttcagacgcg actgcctcat cagtaagacc 180
cgttgaaaag aacttacctg aaaaaaacga atatatacta gcgttgaatg ttagcgtcaa 240
caacaagaag tttaatgacg cggaggccaa ggcaaaaaga ttccttgatt acgtaaggga 300
gttagaatca ttttgaataa aaaacacgct ttttcagttc gagtttatca ttatcaatac 360
tgccatttca aagaatacgt aaataattaa tagtagtgat tttcctaact ttatttagtc 420
aaaaaattag ccttttaatt ctgctgtaac ccgtacatgc ccaaaatagg gggcgggtta 480
cacagaatat ataacatcgt aggtgtctgg gtgaacagtt tattcctggc atccactaaa 540
tataatggag cccgcttttt aagctggcat ccagaaaaaa aaagaatccc agcaccaaaa 600
tattgttttc ttcaccaacc atcagttcat aggtccattc tcttagcgca actacagaga 660
acaggggcac aaacaggcaa aaaacgggca caacctcaat ggagtgatgc aacctgcctg 720
gagtaaatga tgacacaagg caattgaccc acgcatgtat ctatctcatt ttcttacacc 780
ttctattacc ttctgctctc tctgatttgg aaaaagctga aaaaaaaggt tgaaaccagt 840
tccctgaaat tattccccta cttgactaat aagtatataa agacggtagg tattgattgt 900
- 91 032726
aattctgtaa atctatttct taaacttctt aaattctact tttatagtta gtcttttttt 960
tagttttaaa acaccaagaa cttagtttcg aataaacaca cataaacaaa caaaatgggt 1020
gctgatggta tttcttctgc ttccattgtt gttactgacc cagaagctgc tgccaagaag 1080
cgtgacagaa tggccagaga attgttgtcc tccaactctg gtctatgtca agaagatgaa 1140
ccaaccatca tcaacttaaa gggtttggaa cacaccattc catacagatt ggccgttgtt 1200
ttgtgtaact ccagatccac tggtgaattc gaagccaagg ctgctgaaat cttgagaaag 1260
gctttccaca tggttgacta ctctttgaat tgtttcaacc cagaatctga attgtcccgt 1320
gtcaactctt taccagtcgg tgaaaagcac caaatgtccg aagatctaag acatgtcatg 1380
gaatgtacca tttctgtcca ccactcctct ggtatgggtt tcgacccagc tgctggtcca 1440
atcatctcca gattgagagg tgccatgaga gatcacaacg acatgtccga tatctccgtc 1500
actgaagctg aagttgaatt attctctttg gctcaatctt tcgatgtcga cttggaagaa 1560
ggtactattg ccagaaagca ctctgaagcc agattggatt tgggtggtgt caacaagggt 1620
tacactgttg actacgttgt tgaccatttg agagctgctg gtatgccaaa cgtcttgttc 1680
gaatggggtg gtgatatcag agcttctggt agaaacatca agggtaactt gtgggctgtt 1740
gccatcaagc gtccaccatc tgttgaagaa gttatccgtc gtgccaaggg taagatgtta 1800
aagatgggtg aagaagaaca agaagaaaag gacgatgact ctccatcttt gttgcacgtt I860
gttgaattgg atgacgaagc tttgtgtacc tctggtgact acgaaaacgt cttataccat 1920
ccaaagcacg gtgttgctgg ttccattttc gactggcaac gtcgtggttt attgtctcca 1980
gaagaaggtg ctttagctca agtttccgtc aaatgttact ctgccatgta cgctgatgct 2040
ttggccactg tttgtttggt caagagagat gctgtcagaa tcagatactt gttggaaggt 2100
tggagatacg tcagatctcg tgtcaccaac tacttcgctt acaccagaca aggtgaaaga 2160
ttggctcaca tgcacgaaat tgctcaagaa accagagaat taagagaaat cagaattgct 2220
ggttctttgc catccagaat tgttatcgtc ggtggtggtt tggctggtct atccgctgcc 2280
attgaagctg cttcttgtgg tgctcaagtc attttgatgg aaaaggaagg tagaattggt 2340
ggtaactctg ccaaggctac ctctggtatc aacggttggg gtaccagaac ccaagccaag 2400
tctgatatct tggatggtgg taagtacttt gaaagagaca ctttcttgtc cggtgtcggt 2460
- 92 032726
ggtaccactg acccagcttt ggtcaaggtc ttgtccgtca aatctggtga cgctatcggt 2520
tggttaactt ctttgggtgt cccattgtcc gttttgtctc aattgggtgg tcactctttc 2580
aagagaactc acagagctcc agacaagact gatggtactc cattaccaat tggtcacacc 2640
atcatgagaa ctttggaaga tcatatcaga aacaacttgt ctgaaagagt taccatcatg 2700
acccacgttt ctgttactga attgttgcac gaaactgaca ccactccaga tggtgcttct 2760
gaagttcgtg tcaccggtgt ccgttacaga gacttgtctg atgtcgatgg tcaaccttcc 2820
aaactattgg ctgacgctgt tgttttggcc actggtggtt tctccaacga cagagaagaa 2880
aactctttgt tgtgtaaata cgctcctcat ttggcttctt tcccaactac caacggtcca 2940
tgggctactg gtgacggtgt caaattggcc acctccgttg gtgccaagtt ggttgacatg 3000
gacaaggttc aattgcaccc aactggtttg attgacccaa aggacccagc taacaccact 3060
aagatcttgg gtccagaagc tttgagaggt tctggtggta ttttgttgaa caagcaaggt 3120
aagagattcg tcaacgaatt ggacttgaga tccgttgttt ccaaggccat taacactcaa 3180
ggtaacgaat acccaggttc tggtggttgt tactttgctt actgtgtctt aaacgaagat 3240
gctaccaact tattctgtgg tggtgctttg ggtttctacg gtaagaaatt aggtttgttc 3300
caaagagctg aaactgttga agaattggcc aaattgattg gttgtgacga aggtgaattg 3360
agagacactt tggaaaaata cgaaacctgt tccaaggcca aggttgcttg tccagtcact 3420
ggtaaggttg ttttcccatg tgttgtcggt accagaggtc catacaatgt tgctttcgtc 3480
actccatcca tccactacac catgggtggt tgtttgatct ctccagctgc tgaagtcttg 3540
caagaataca agggtttgaa tatcttggaa aaccacagac caatcagatg tttgttcggt 3600
gctggtgaag tcactggtgg tgtccacggt ggtaacagat taggtggtaa ctctctattg 3660
gaatgtgttg tctttggtaa gattgctggt gacagagctg ccactatctt gcaaaagaga 3720
gaaattgctt tgtccaagac ctcctggacc tctgttgttg tcagagaatc cagatctggt 3780
gaacaattcg gtaccggttc cagagttttg agattcaact tgccaggtgc tttacaaaga 3840
accggtttga acttgggtga attcgttgcc atcagaggtg aatgggatgg tcaacaatta 3900
gtcggttact tctctccaat cactttgcca gaagatttgg gtaccatctc tttgttggtc 3960
agagctgaca agggtacttt gaaggaatgg atctgtgctt tgcgtccagg tgactccgtt 4020
- 93 032726
gaaatcaagg cttgtggtgg tctaagaatt gaccaagatc cagtcaagaa atgtttgttg 4080
ttcagaaaca gaccaattac cagatttgct ttggttgctg ctggtaccgg tgttgctcca 4140
atgttgcaag ttatcagagc tgctttgaag aagccatacg tcgacacttt ggaatccatc 4200
agattgatct acgctgctga agaatatgac actttaacct acagatctat cttgcaaaga 4260
tttgctgaag aattcccaga caaattcgtt tgtaacttcg tcttaaacaa ccctccagaa 4320
ggttggaccg gtggtgttgg tttcgtcaac aagaaatctt tgcaaaaggt tttgcaacca 4380
ccttcttctg aaccattgat tgttgtttgt ggtccacctg ttatgcaaag agatgtcaaa 4440
aatgaattgt tgtccatggg ttacgacaag gaattggttc acactgtcga tggtgaatct 4500
ggtaccttgt aaggcccggg cgtgaattta ctttaaatct tgcatttaaa taaattttct 4560
ttttatagct ttatgactta gtttcaattt atatactatt ttaatgacat tttcgattca 4620
ttgattgaaa gctttgtgtt ttttcttgat gcgctattgc attgttcttg tctttttcgc 4680
cacatgtaat atctgtagta gatacctgat acattgtgga tgctgagtga aattttagtt 4740
aataatggag gcgctcttaa taattttggg gatattggct ttttttttta aagtttacaa 4800
atgaattttt tccgccagga taacgattct gaagttactc ttagcgttcc tatcggtaca 4860
gccatcaaat catgcctata aatcatgcct atatttgcgt gcagtcagta tcatctacat 4920
gaaaaaaact cccgcaattt cttatagaat acgttgaaaa ttaaatgtac gcgccaagat 4980
aagataacat atatctagat gcagtaatat acacagattc cggccggccg cggccgc 5037
<210> 35 <211> 4959 <212> ДНК <213> Artificial construct <220>
<223> TDH3p-FRDg-TDH3t Искусственная последовательность <400>35 ggatccggcg cgccctattt tcgaggacct tgtcaccttg agcccaagag agccaagatt60 taaattttcc tatgacttga tgcaaattcc caaagctaat aacatgcaag acacgtacgg120 tcaagaagac atatttgacc tcttaacagg ttcagacgcg actgcctcat cagtaagacc180 cgttgaaaag aacttacctg aaaaaaacga atatatacta gcgttgaatg ttagcgtcaa240
- 94 032726
caacaagaag tttaatgacg cggaggccaa ggcaaaaaga ttccttgatt acgtaaggga 300
gttagaatca ttttgaataa aaaacacgct ttttcagttc gagtttatca ttatcaatac 360
tgccatttca aagaatacgt aaataattaa tagtagtgat tttcctaact ttatttagtc 420
aaaaaattag ccttttaatt ctgctgtaac ccgtacatgc ccaaaatagg gggcgggtta 480
cacagaatat ataacatcgt aggtgtctgg gtgaacagtt tattcctggc atccactaaa 540
tataatggag cccgcttttt aagctggcat ccagaaaaaa aaagaatccc agcaccaaaa 600
tattgttttc ttcaccaacc atcagttcat aggtccattc tcttagcgca actacagaga 660
acaggggcac aaacaggcaa aaaacgggca caacctcaat ggagtgatgc aacctgcctg 720
gagtaaatga tgacacaagg caattgaccc acgcatgtat ctatctcatt ttcttacacc 780
ttctattacc ttctgctctc tctgatttgg aaaaagctga aaaaaaaggt tgaaaccagt 840
tccctgaaat tattccccta cttgactaat aagtatataa agacggtagg tattgattgt 900
aattctgtaa atctatttct taaacttctt aaattctact tttatagtta gtcttttttt 960
tagttttaaa acaccaagaa cttagtttcg aataaacaca cataaacaaa caaaatggtt 1020
gatggtagat cttctgcttc cattgttgcc gttgacccag aaagagctgc cagagaaaga 1080
gatgctgctg ccagagcttt gttgcaagac tctccattgc acaccaccat gcaatacgct 1140
acctctggtt tggaattgac tgttccatac gctttgaagg ttgttgcttc tgctgacact 1200
ttcgacagag ccaaggaagt tgctgatgaa gtcttgagat gtgcctggca attggctgac 1260
accgttttga actctttcaa cccaaactct gaagtctctt tagtcggtag attaccagtc 1320
ggtcaaaagc atcaaatgtc tgctccattg aaacgtgtca tggcttgttg tcaaagagtc 1380
tacaactcct ctgctggttg tttcgaccca tccactgctc cagttgccaa ggctttgaga 1440
gaaattgctt tgggtaagga aagaaacaat gcttgtttgg aagctttgac tcaagcttgt 1500
accttgccaa actctttcgt cattgatttc gaagctggta ctatctccag aaagcacgaa 1560
cacgcttctt tggatttggg tggtgtttcc aagggttaca tcgtcgatta cgtcattgac 1620
aacatcaatg ctgctggttt ccaaaacgtt ttctttgact ggggtggtga ctgtcgtgcc 1680
tccggtatga acgccagaaa cactccatgg gttgtcggta tcactagacc tccttccttg 1740
gacatgttgc caaaccctcc aaaggaagct tcttacatct ccgtcatctc tttggacaat 1800
- 95 032726 gaagctttgg ctacctctgg tgattacgaa aacttgatct acactgctga cgataaacca I860 ttgacctgta cctacgattg gaaaggtaag gaattgatga agccatctca atccaatatc 1920 gctcaagttt ccgtcaagtg ttactctgcc atgtacgctg acgctttggc taccgcttgt 1980 ttcatcaagc gtgacccagc caaggtcaga caattgttgg atggttggag atacgttaga 2040 gacaccgtca gagattaccg tgtctacgtc agagaaaacg aaagagttgc caagatgttc 2100 gaaattgcca ctgaagatgc tgaaatgaga aagagaagaa tttccaacac tttaccagct 2160 cgtgtcattg ttgttggtgg tggtttggct ggtttgtccg ctgccattga agctgctggt 2220 tgtggtgctc aagttgtttt gatggaaaag gaagccaagt tgggtggtaa ctctgccaag 2280 gctacctctg gtatcaacgg ttggggtact agagctcaag ctaaggcttc cattgtcgat 2340 ggtggtaagt acttcgaaag agatacctac aagtctggta tcggtggtaa caccgatcca 2400 gctttggtta agactttgtc catgaaatct gctgacgcta tcggttggtt gacttctcta 2460 ggtgttccat tgactgtttt gtcccaatta ggtggtcact ccagaaagag aactcacaga 2520 gctccagaca agaaggatgg tactccattg ccaattggtt tcaccatcat gaaaacttta 2580 gaagatcatg ttagaggtaa cttgtccggt agaatcacca tcatggaaaa ctgttccgtt 2640 acctctttgt tgtctgaaac caaggaaaga ccagacggta ccaagcaaat cagagttacc 2700 ggtgtcgaat tcactcaagc tggttctggt aagaccacca ttttggctga tgctgttatc 2760 ttggccaccg gtggtttctc caacgacaag actgctgatt ctttgttgag agaacatgcc 2820 ccacacttgg ttaacttccc aaccaccaac ggtccatggg ctactggtga tggtgtcaag 2880 ttggctcaaa gattaggtgc tcaattggtc gatatggaca aggttcaatt gcacccaact 2940 ggtttgatca acccaaagga cccagccaac ccaaccaaat tcttgggtcc agaagctcta 3000 agaggttctg gtggtgtttt gttgaacaaa caaggtaaga gatttgtcaa cgaattggat 3060 ttgagatctg ttgtttccaa ggccatcatg gaacaaggtg ctgaataccc aggttctggt 3120 ggttccatgt ttgcttactg tgtcttgaac gctgctgctc aaaaattgtt tggtgtttcc 3180 tctcacgaat tctactggaa gaagatgggt ttgttcgtca aggctgacac catgagagac 3240 ttggctgctt tgattggttg tccagttgaa tccgttcaac aaactttaga agaatacgaa 3300 agattatcca tctctcaaag atcttgtcca attaccagaa aatctgttta cccatgtgtt 3360
- 96 032726
ttgggtacca aaggtccata ctatgtcgcc tttgtcactc catctatcca ctacaccatg 3420
ggtggttgtt tgatttctcc atctgctgaa atccaaatga agaacacttc ttccagagct 3480
ccattgtccc actccaaccc aatcttgggt ttattcggtg ctggtgaagt caccggtggt 3540
gtccacggtg gtaacagatt aggtggtaac tctttgttgg aatgtgttgt tttcggtaga 3600
attgccggtg acagagcttc taccattttg caaagaaagt cctctgcttt gtctttcaag 3660
gtctggacca ctgttgtttt gagagaagtc agagaaggtg gtgtctacgg tgctggttcc 3720
cgtgtcttga gattcaactt accaggtgct ctacaaagat ctggtctatc cttgggtcaa 3780
ttcattgcca tcagaggtga ctgggacggt caacaattga ttggttacta ctctccaatc 3840
actttgccag acgatttggg tatgattgac attttggcca gatctgacaa gggtacttta 3900
cgtgaatgga tctctgcttt ggaaccaggt gacgctgtcg aaatgaaggc ttgtggtggt 3960
ttggtcatcg aaagaagatt atctgacaag cacttcgttt tcatgggtca cattatcaac 4020
aagctatgtt tgattgctgg tggtaccggt gttgctccaa tgttgcaaat catcaaggcc 4080
gctttcatga agccattcat cgacactttg gaatccgtcc acttgatcta cgctgctgaa 4140
gatgtcactg aattgactta cagagaagtt ttggaagaac gtcgtcgtga atccagaggt 4200
aaattcaaga aaactttcgt tttgaacaga cctcctccat tatggactga cggtgtcggt 4260
ttcatcgacc gtggtatctt gaccaaccac gttcaaccac catctgacaa cttattggtt 4320
gccatctgtg gtccaccagt tatgcaaaga attgtcaagg ccactttaaa gactttaggt 4380
tacaacatga acttggtcag aaccgttgac gaaactgaac catctggaag ttaaggcccg 4440
ggcgtgaatt tactttaaat cttgcattta aataaatttt ctttttatag ctttatgact 4500
tagtttcaat ttatatacta ttttaatgac attttcgatt cattgattga aagctttgtg 4560
ttttttcttg atgcgctatt gcattgttct tgtctttttc gccacatgta atatctgtag 4620
tagatacctg atacattgtg gatgctgagt gaaattttag ttaataatgg aggcgctctt 4680
aataattttg gggatattgg cttttttttt taaagtttac aaatgaattt tttccgccag 4740
gataacgatt ctgaagttac tcttagcgtt cctatcggta cagccatcaa atcatgccta 4800
taaatcatgc ctatatttgc gtgcagtcag tatcatctac atgaaaaaaa ctcccgcaat 4860
ttcttataga atacgttgaa aattaaatgt acgcgccaag ataagataac atatatctag 4920
- 97 032726 atgcagtaat atacacagat tccggccggc cgcggccgc4959 <210>36 <211>438 <212> белок <213> Schizosaccharomyces pombe <400>36
Met Gly Glu Leu Lys Glu He Leu Lys Gln Arg Tyr His Glu Leu Leu
1 5 10 15
Asp Trp Asn Vai Lys Ala Pro His Vai Pro Leu Ser Gln Arg Leu Lys
20 25 30
His Phe Thr Trp Ser Trp Phe Ala cys Thr Met Ala Thr Gly Gly Vai
35 40 45
Gly Leu He He Gly Ser Phe Pro Phe Arg Phe Tyr Gly Leu Asn Thr
50 55 60
lie Gly Lys He Vai Tyr He Leu Gln He Phe Leu Phe Ser Leu Phe
65 70 75 80
Gly Ser Cys Met Leu Phe Arg Phe He Lys Tyr Pro Ser Thr He Lys
85 90 95
Asp Ser Trp Asn His His Leu Glu Lys Leu Phe He Ala Thr cys Leu
100 105 110
Leu Ser He Ser Thr Phe He Asp Met Leu Ala He Tyr Ala Tyr Pro
115 120 125
Asp Thr Gly Glu Trp Met Vai Trp Vai He Arg He Leu Tyr Tyr He
130 135 140
Tyr Vai Ala Vai Ser Phe He Tyr cys Vai Met Ala Phe Phe Thr He
145 150 155 160
Phe Asn Asn His Vai Tyr Thr He Glu Thr Ala Ser Pro Ala Trp He
165 170 175
- 98 032726
Leu Pro Ile Phe 180 Pro Pro Met Ile Cys Gly Val Ile Ala Gly Ala Val
185 190
Asn Ser Thr Gln Pro Ala His Gln Leu Lys Asn Met Val Ile Phe Gly
195 200 205
Ile Leu Phe Gln Gly Leu Gly Phe Trp Val Tyr Leu Leu Leu Phe Ala
210 215 220
Val Asn Val Leu Arg Phe Phe Thr Val Gly Leu Ala Lys Pro Gln Asp
225 230 235 240
Arg Pro Gly Met Phe Met Phe Val Gly Pro Pro Ala Phe Ser Gly Leu
245 250 255
Ala Leu lie Asn lie Ala Arg Gly Ala Met Gly Ser Arg Pro Tyr Ile
260 265 270
Phe Val Gly Ala Asn Ser Ser Glu Tyr Leu Gly Phe Val Ser Thr Phe
275 280 285
Met Ala lie Phe lie Trp Gly Leu Ala Ala Trp Cys Tyr cys Leu Ala
290 295 300
Met Val Ser Phe Leu Ala Gly Phe Phe Thr Arg Ala Pro Leu Lys Phe
305 310 315 320
Ala Cys Gly Trp Phe Ala Phe Ile Phe Pro Asn Val Gly Phe Val Asn
325 330 335
Cys Thr Ile Glu Ile Gly Lys Met Ile Asp Ser Lys Ala Phe Gln Met
340 345 350
Phe Gly His Ile Ile Gly Val Ile Leu cys Ile Gln Trp Ile Leu Leu
355 360 365
Met Tyr Leu Met Val Arg Ala Phe Leu Val Asn Asp Leu cys Tyr Pro
370 375 380
- 99 032726
Gly 385 Lys Asp Glu Asp Ala His Pro Pro Pro Lys Pro Asn Thr Gly Val
390 395 400
Leu Asn Pro Thr Phe Pro Pro Glu Lys Ala Pro Ala Ser Leu Glu Lys
405 410 415
Val Asp Thr His Val Thr Ser Thr Gly Gly Glu Ser Asp Pro Pro Ser
420 425 430
Ser Glu His Glu Ser Val
435 <210> 37 <211> 1317 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> S. pombe malae пермеаза сро для S. cerevisiae <400>37 atgggtgaat tgaaggaaat cttgaagcaa cgttaccatg aattgttgga ctggaacgtc60 aaggctccac acgttccatt gtctcaaaga ttgaagcatt tcacctggtc ctggtttgct120 tgtaccatgg ccactggtgg tgtcggtttg atcattggtt ctttcccatt cagattctac180 ggtttgaaca ccattggtaa gattgtctac atcttacaaa tcttcttatt ctctttgttt240 ggttcttgta tgttgttcag attcatcaaa tacccatcta ccatcaagga ctcctggaac300 caccacttgg aaaaattatt cattgctacc tgtttgctat ccatctccac tttcattgac360 atgttggcca tctacgctta cccagacact ggtgaatgga tggtctgggt tatcagaatc420 ttatactaca tctacgttgc tgtctctttc atctactgtg tcatggcttt cttcaccatt480 ttcaacaacc acgtttacac cattgaaact gcttctccag cttggatctt accaattttc540 ccaccaatga tctgtggtgt cattgctggt gctgtcaact ccactcaacc agctcaccaa600 ttgaagaaca tggttatctt cggtatctta ttccaaggtt tgggtttctg ggtttacttg660 ttgttgtttg ctgtcaacgt tttgagattc ttcaccgttg gtttggccaa gcctcaagac720 agaccaggta tgttcatgtt tgttggtcca ccagctttct ccggtttggc tttgatcaac780
- 100 032726 attgcccgtg gtgctatggg ttccagacca tacattttcg tcggtgccaa ttcttctgaa840 tacttgggtt tcgtttccac tttcatggcc attttcatct ggggtttggc tgcttggtgt900 tactgtttgg ccatggtttc tttcttggct ggtttcttca ccagagctcc attgaaattt960 gcttgtggtt ggtttgcttt catcttccca aacgtcggtt tcgttaactg taccattgaa1020 attggtaaga tgattgactc caaggccttc caaatgttcg gtcacatcat cggtgtcatc1080 ctatgtatcc aatggatctt gttgatgtac ttgatggtca gagctttctt ggtcaacgat1140 ttgtgttacc caggtaagga tgaagatgct cacccacctc caaagccaaa cactggtgtt1200 ttgaacccaa ctttcccacc agaaaaggct ccagcttctt tggaaaaggt tgacacccac1260 gttacttcca ctggtggtga atctgatcct ccatcttctg aacacgaaag cgtttaa1317 <210>38 <211> 600 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> EN01 промотор T в положении -5 заменено на А чтобы получить лучшую последовательность Козак <400> 38
ccgcggaacc gccagatatt cattacttga cgcaaaagcg tttgaaataa tgacgaaaaa 60
gaaggaagaa aaaaaaagaa aaataccgct tctaggcggg ttatctactg atccgagctt 120
ccactaggat agcacccaaa cacctgcata tttggacgac ctttacttac accaccaaaa 180
accactttcg cctctcccgc ccctgataac gtccactaat tgagcgatta cctgagcggt 240
cctcttttgt ttgcagcatg agacttgcat actgcaaatc gtaagtagca acgtctcaag 300
gtcaaaactg tatggaaacc ttgtcacctc acttaattct agctagccta ccctgcaagt 360
caagaggtct ccgtgattcc tagccacctc aaggtatgcc tctccccgga aactgtggcc 420
ttttctggca cacatgatct ccacgatttc aacatataaa tagcttttga taatggcaat 480
attaatcaaa tttattttac ttctttcttg taacatctct cttgtaatcc cttattcctt 540
ctagctattt ttcataaaaa accaagcaac tgcttatcaa cacacaaaca ctaaaacaaa 600
<210> 39
- 101 032726 <211> 300 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> EN01 терминатор <400>39 agcttttgat taagccttct agtccaaaaa acacgttttt ttgtcattta tttcattttc60 ttagaatagt ttagtttatt cattttatag tcacgaatgt tttatgattc tatatagggt120 tgcaaacaag catttttcat tttatgttaa aacaatttca ggtttacctt ttattctgct180 tgtggtgacg cgggtatccg cccgctcttt tggtcaccca tgtatttaat tgcataaata240 attcttaaaa gtggagctag tctatttcta tttacatacc tctcatttct catttcctcc300 <210> 40 <211> 2240
<212> ДНК <213> Искусственная последовательность
<220> <223> ENOlp-SpMAE-ENOlt искусственная конструкция
<400> 40 ggatccggcg cgccccgcgg aaccgccaga tattcattac ttgacgcaaa agcgtttgaa 60
ataatgacga aaaagaagga agaaaaaaaa agaaaaatac cgcttctagg cgggttatct 120
actgatccga gcttccacta ggatagcacc caaacacctg catatttgga cgacctttac 180
ttacaccacc aaaaaccact ttcgcctctc ccgcccctga taacgtccac taattgagcg 240
attacctgag cggtcctctt ttgtttgcag catgagactt gcatactgca aatcgtaagt 300
agcaacgtct caaggtcaaa actgtatgga aaccttgtca cctcacttaa ttctagctag 360
cctaccctgc aagtcaagag gtctccgtga ttcctagcca cctcaaggta tgcctctccc 420
cggaaactgt ggccttttct ggcacacatg atctccacga tttcaacata taaatagctt 480
ttgataatgg caatattaat caaatttatt ttacttcttt cttgtaacat ctctcttgta 540
atcccttatt ccttctagct atttttcata aaaaaccaag caactgctta tcaacacaca 600
aacactaaaa caaaatgggt gaattgaagg aaatcttgaa gcaacgttac catgaattgt 660
tggactggaa cgtcaaggct ccacacgttc cattgtctca aagattgaag catttcacct 720
ggtcctggtt tgcttgtacc atggccactg gtggtgtcgg tttgatcatt ggttctttcc 780
- 102 032726
cattcagatt ctacggtttg aacaccattg gtaagattgt ctacatctta caaatcttct 840
tattctcttt gtttggttct tgtatgttgt tcagattcat caaataccca tctaccatca 900
aggactcctg gaaccaccac ttggaaaaat tattcattgc tacctgtttg ctatccatct 960
ccactttcat tgacatgttg gccatctacg cttacccaga cactggtgaa tggatggtct 1020
gggttatcag aatcttatac tacatctacg ttgctgtctc tttcatctac tgtgtcatgg 1080
ctttcttcac cattttcaac aaccacgttt acaccattga aactgcttct ccagcttgga 1140
tcttaccaat tttcccacca atgatctgtg gtgtcattgc tggtgctgtc aactccactc 1200
aaccagctca ccaattgaag aacatggtta tcttcggtat cttattccaa ggtttgggtt 1260
tctgggttta cttgttgttg tttgctgtca acgttttgag attcttcacc gttggtttgg 1320
ccaagcctca agacagacca ggtatgttca tgtttgttgg tccaccagct ttctccggtt 1380
tggctttgat caacattgcc cgtggtgcta tgggttccag accatacatt ttcgtcggtg 1440
ccaattcttc tgaatacttg ggtttcgttt ccactttcat ggccattttc atctggggtt 1500
tggctgcttg gtgttactgt ttggccatgg tttctttctt ggctggtttc ttcaccagag 1560
ctccattgaa atttgcttgt ggttggtttg ctttcatctt cccaaacgtc ggtttcgtta 1620
actgtaccat tgaaattggt aagatgattg actccaaggc cttccaaatg ttcggtcaca 1680
tcatcggtgt catcctatgt atccaatgga tcttgttgat gtacttgatg gtcagagctt 1740
tcttggtcaa cgatttgtgt tacccaggta aggatgaaga tgctcaccca cctccaaagc 1800
caaacactgg tgttttgaac ccaactttcc caccagaaaa ggctccagct tctttggaaa 1860
aggttgacac ccacgttact tccactggtg gtgaatctga tcctccatct tctgaacacg 1920
aaagcgttta agagcttttg attaagcctt ctagtccaaa aaacacgttt ttttgtcatt 1980
tatttcattt tcttagaata gtttagttta ttcattttat agtcacgaat gttttatgat 2040
tctatatagg gttgcaaaca agcatttttc attttatgtt aaaacaattt caggtttacc 2100
ttttattctg cttgtggtga cgcgggtatc cgcccgctct tttggtcacc catgtattta 2160
attgcataaa taattcttaa aagtggagct agtctatttc tatttacata cctctcattt 2220
ctcatttcct ccgcggccgc 2240
- 103 032726 <210> 41 <211> 1180 <212> белок <213> Saccharomyces cerevisiae <400> 41
Met Ser Ser Ser Lys Lys Leu Ala Gly Leu Arg Asp Asn Phe Ser Leu
1 5 10 15
Leu Gly Glu Lys Asn Lys Ile Leu Vai Ala Asn Arg Gly Glu Ile Pro
20 25 30
Ile Arg Ile Phe Arg Ser Ala His Glu Leu Ser Met Arg Thr Ile Ala
35 40 45
Ile Tyr Ser His Glu Asp Arg Leu Ser Met His Arg Leu Lys Ala Asp
50 55 60
Glu Ala Tyr Vai Ile Gly Glu Glu Gly Gin Tyr Thr Pro Vai Gly Ala
65 70 75 80
Tyr Leu Ala Met Asp Glu Ile Ile Glu Ile Ala Lys Lys His Lys Vai
85 90 95
Asp Phe Ile His Pro Gly Tyr Gly Phe Leu Ser Glu Asn Ser Glu Phe
100 105 110
Ala Asp Lys Vai Vai Lys Ala Gly Ile Thr Trp lie Gly Pro Pro Ala
115 120 125
Glu Vai lie Asp Ser Vai Gly Asp Lys Vai Ser Ala Arg His Leu Ala
130 135 140
Ala Arg Ala Asn Vai Pro Thr Vai Pro Gly Thr Pro Gly Pro Ile Glu
145 150 155 160
Thr Vai Gin Glu Ala Leu Asp Phe Vai Asn Glu Tyr Gly Tyr Pro Vai
165 170 175
Ile Ile Lys Ala Ala Phe Gly Gly Gly Gly Arg Gly Met Arg Vai Vai
- 104 032726
180 185 190
Arg Glu Gly Asp Asp Val Ala Asp Ala Phe Gln Arg Ala Thr Ser Glu
195 200 205
Ala Arg Thr Ala Phe Gly Asn Gly Thr cys Phe Val Glu Arg Phe Leu
210 215 220
Asp Lys Pro Lys His Ile Glu Val Gln Leu Leu Ala Asp Asn His Gly
225 230 235 240
Asn Val Val His Leu Phe Glu Arg Asp Cys Ser Val Gln Arg Arg His
245 250 255
Gln Lys Val Val Glu Val Ala Pro Ala Lys Thr Leu Pro Arg Glu Val
260 265 270
Arg Asp Ala Ile Leu Thr Asp Ala Val Lys Leu Ala Lys Val cys Gly
275 280 285
Tyr Arg Asn Ala Gly Thr Ala Glu Phe Leu Val Asp Asn Gln Asn Arg
290 295 300
His Tyr Phe Ile Glu Ile Asn Pro Arg Ile Gln Val Glu His Thr Ile
305 310 315 320
Thr Glu Glu Ile Thr Gly Ile Asp Ile Val Ser Ala Gln Ile Gln Ile
325 330 335
Ala Ala Gly Ala Thr Leu Thr Gln Leu Gly Leu Leu Gln Asp Lys Ile
340 345 350
Thr Thr Arg Gly Phe Ser Ile Gln cys Arg Ile Thr Thr Glu Asp Pro
355 360 365
Ser Lys Asn Phe Gln Pro Asp Thr Gly Arg Leu Glu Val Tyr Arg Ser
370 375 380
Ala Gly Gly Asn Gly Val Arg Leu Asp Gly Gly Asn Ala Tyr Ala Gly
- 105 032726
385 390 395 400
Ala Thr Ile Ser Pro His Tyr Asp Ser Met Leu Val Lys Cys Ser Cys
405 410 415
Ser Gly Ser Thr Tyr Glu Ile Val Arg Arg Lys Met Ile Arg Ala Leu
420 425 430
Ile Glu Phe Arg Ile Arg Gly Val Lys Thr Asn Ile Pro Phe Leu Leu
435 440 445
Thr Leu Leu Thr Asn Pro Val Phe Ile Glu Gly Thr Tyr Trp Thr Thr
450 455 460
Phe lie Asp Asp Thr Pro Gln Leu Phe Gln Met Val Ser Ser Gln Asn
465 470 475 480
Arg Ala Gln Lys Leu Leu His Tyr Leu Ala Asp Leu Ala Val Asn Gly
485 490 495
Ser Ser Ile Lys Gly Gln Ile Gly Leu Pro Lys Leu Lys Ser Asn Pro
500 505 510
Ser Val Pro His Leu His Asp Ala Gln Gly Asn Val Ile Asn Val Thr
515 520 525
Lys Ser Ala Pro Pro Ser Gly Trp Arg Gln Val Leu Leu Glu Lys Gly
530 535 540
Pro Ser Glu Phe Ala Lys Gln Val Arg Gln Phe Asn Gly Thr Leu Leu
545 550 555 560
Met Asp Thr Thr Trp Arg Asp Ala His Gln Ser Leu Leu Ala Thr Arg
565 570 575
Val Arg Thr His Asp Leu Ala Thr Ile Ala Pro Thr Thr Ala His Ala
580 585 590
Leu Ala Gly Ala Phe Ala Leu Glu cys Trp Gly Gly Ala Thr Phe Asp
- 106 032726
595 600 605
Val Ala Met Arg Phe Leu His Glu Asp Pro Trp Glu Arg Leu Arg Lys
610 615 620
Leu Arg Ser Leu Val Pro Asn He Pro Phe Gin Met Leu Leu Arg Gly
625 630 635 640
Ala Asn Gly Val Ala Tyr Ser Ser Leu Pro Asp Asn Ala He Asp His
645 650 655
Phe Val Lys Gin Ala Lys Asp Asn Gly Val Asp He Phe Arg Val Phe
660 665 670
Asp Ala Leu Asn Asp Leu Glu Gin Leu Lys Val Gly Val Asn Ala Val
675 680 685
Lys Lys Ala Gly Gly Val Val Glu Ala Thr Val cys Tyr Ser Gly Asp
690 695 700
Met Leu Gin Pro Gly Lys Lys Tyr Asn Leu Asp Tyr Tyr Leu Glu Val
705 710 715 720
Val Glu Lys lie Val Gin Met Gly Thr His He Leu Gly He Lys Asp
725 730 735
Met Ala Gly Thr Met Lys Pro Ala Ala Ala Lys Leu Leu He Gly Ser
740 745 750
Leu Arg Thr Arg Tyr Pro Asp Leu Pro He His Val His Ser His Asp
755 760 765
Ser Ala Gly Thr Ala Val Ala Ser Met Thr Ala Cys Ala Leu Ala Gly
770 775 780
Ala Asp Val Val Asp Val Ala He Asn Ser Met Ser Gly Leu Thr Ser
785 790 795 800
Gin Pro Ser He Asn Ala Leu Leu Ala Ser Leu Glu Gly Asn He Asp
- 107 032726
805 810 815
Thr Gly He Asn Val Glu His Val Arg Glu Leu Asp Ala Tyr Trp Ala
820 825 830
Glu Met Arg Leu Leu Tyr Ser cys Phe Glu Ala Asp Leu Lys Gly Pro
835 840 845
Asp Pro Glu Val Tyr Gin His Glu He Pro Gly Gly Gin Leu Thr Asn
850 855 860
Leu Leu Phe Gin Ala Gin Gin Leu Gly Leu Gly Glu Gin Trp Ala Glu
865 870 875 880
Thr Lys Arg Ala Tyr Arg Glu Ala Asn Tyr Leu Leu Gly Asp He Val
885 890 895
Lys Val Thr Pro Thr Ser Lys Val Val Gly Asp Leu Ala Gin Phe Met
900 905 910
Val Ser Asn Lys Leu Thr Ser Asp Asp He Arg Arg Leu Ala Asn Ser
915 920 925
Leu Asp Phe Pro Asp Ser Val Met Asp Phe Phe Glu Gly |_eu He Gly
930 935 940
Gin Pro Tyr Gly Gly Phe Pro Glu Pro Leu Arg Ser Asp Val Leu Arg
945 950 955 960
Asn Lys Arg Arg Lys Leu Thr cys Arg Pro Gly Leu Glu Leu Glu Pro
965 970 975
Phe Asp Leu Glu Lys He Arg Glu Asp Leu Gin Asn Arg Phe Gly Asp
980 985 990
He Asp Glu Cys Asp Val Ala Ser Tyr Asn Met Tyr Pro Arg Val Tyr 995 1000 1005
Glu Asp Phe Gin Lys He Arg Glu Thr Tyr Gly Asp Leu Ser Val
- 108 032726
1010 10151020
Leu Pro Thr Lys Asn Phe Leu 1030 Ala Pro Ala Glu Pro 1035 Asp Glu Glu
1025
Ile Glu Val Thr Ile Glu Gin Gly Lys Thr Leu Ile Ile Lys Leu
1040 1045 1050
Gin Ala Val Gly Asp Leu Asn Lys Lys Thr Gly Gin Arg Glu Val
1055 1060 1065
Tyr Phe Glu Leu Asn Gly Glu Leu Arg Lys Ile Arg Val Ala Asp
1070 1075 1080
Lys Ser Gin Asn Ile Gin Ser Val Ala Lys Pro Lys Ala Asp Val
1085 1090 1095
His Asp Thr His Gin Ile Gly Ala Pro Met Ala Gly Val Ile Ile
1100 1105 1110
Glu Val Lys Val His Lys Gly Ser Leu Val Lys Lys Gly Glu Ser
1115 1120 1125
Ile Ala Val Leu Ser Ala Met Lys Met Glu Met Val Val Ser Ser
1130 1135 1140
Pro Ala Asp Gly Gin Val Lys Asp Val Phe Ile Lys Asp Gly Glu
1145 1150 1155
Ser Val Asp Ala Ser Asp Leu Leu Val Val Leu Glu Glu Glu Thr
1160 1165 1170
Leu Pro Pro Ser Gin Lys Lys
11751180 <210>42 <211>3543 <212> ДНК <213> Saccharomyces cerevisiae
- 109 032726 <400> 42
atgagcagta gcaagaaatt ggccggtctt agggacaatt tcagtttgct cggcgaaaag 60
aataagatct tggtcgccaa tagaggtgaa attccgatta gaatttttag atctgctcat 120
gagctgtcta tgagaaccat cgccatatac tcccatgagg accgtctttc aatgcacagg 180
ttgaaggcgg acgaagcgta tgttatcggg gaggagggcc agtatacacc tgtgggtgct 240
tacttggcaa tggacgagat catcgaaatt gcaaagaagc ataaggtgga tttcatccat 300
ccaggttatg ggttcttgtc tgaaaattcg gaatttgccg acaaagtagt gaaggccggt 360
atcacttgga tcggccctcc agctgaagtt attgactctg tgggtgacaa agtctctgcc 420
agacacttgg cagcaagagc taacgttcct accgttcccg gtactccagg acctatcgaa 480
actgtgcaag aggcacttga cttcgttaat gaatacggct acccggtgat cattaaggcc 540
gcctttggtg gtggtggtag aggtatgaga gtcgttagag aaggtgacga cgtggcagat 600
gcctttcaac gtgctacctc cgaagcccgt actgccttcg gtaatggtac ctgctttgtg 660
gaaagattct tggacaagcc aaagcatatt gaagttcaat tgttggctga taaccacgga 720
aacgtggttc atcttttcga aagagactgt tctgtgcaaa gaagacacca aaaagttgtc 780
gaagtcgctc cagcaaagac tttgccccgt gaagttcgtg acgctatttt gacagatgct 840
gttaaattag ctaaggtatg tggttacaga aacgcaggta ccgccgaatt cttggttgac 900
aaccaaaaca gacactattt cattgaaatt aatccaagaa ttcaagtgga gcataccatc 960
actgaagaaa tcaccggtat tgacattgtt tctgcccaaa tccagattgc cgcaggtgcc 1020
actttgactc aactaggtct attacaggat aaaatcacca cccgtgggtt ttccatccaa 1080
tgtcgtatta ccactgaaga tccctctaag aatttccaac cggataccgg tcgcctggag 1140
gtctatcgtt ctgccggtgg taatggtgtg agattggacg gtggtaacgc ttatgcaggt 1200
gctactatct cgcctcacta cgactcaatg ctggtcaaat gttcatgctc tggttctact 1260
tatgaaatcg tccgtaggaa gatgattcgt gccctgatcg aattcagaat cagaggtgtt 1320
aagaccaaca ttcccttcct attgactctt ttgaccaatc cagtttttat tgagggtaca 1380
tactggacga cttttattga cgacacccca caactgttcc aaatggtatc gtcacaaaac 1440
agagcgcaaa aactgttaca ctatttggca gacttggcag ttaacggttc ttctattaag 1500
ggtcaaattg gcttgccaaa actaaaatca aatccaagtg tcccccattt gcacgatgct 1560
- 110 032726
cagggcaatg tcatcaacgt tacaaagtct gcaccaccat ccggatggag acaagtgcta 1620
ctggaaaagg gaccatctga atttgccaag caagtcagac agttcaatgg tactctactg 1680
atggacacca cctggagaga cgctcatcaa tctctacttg caacaagagt cagaacccac 1740
gatttggcta caatcgctcc aacaaccgca catgcccttg caggtgcttt cgctttagaa 1800
tgttggggtg gtgctacatt cgacgttgca atgagattct tgcatgagga tccatgggaa 1860
cgtctgagaa aattaagatc tctggtgcct aatattccat tccaaatgtt attacgtggt 1920
gccaacggtg tggcttactc ttcattacct gacaatgcta ttgaccattt tgtcaagcaa 1980
gccaaggata atggtgttga tatatttaga gtttttgatg ccttgaatga tttagaacaa 2040
ttaaaagttg gtgtgaatgc tgtcaagaag gccggtggtg ttgtcgaagc tactgtttgt 2100
tactctggtg acatgcttca gccaggtaag aaatacaact tagactacta cctagaagtt 2160
gttgaaaaaa tagttcaaat gggtacacat atcttgggta ttaaggatat ggcaggtact 2220
atgaaaccgg ccgctgccaa attattaatt ggctccctaa gaaccagata tccggattta 2280
ccaattcatg ttcacagtca tgactccgca ggtactgctg ttgcgtctat gactgcatgt 2340
gccctagcag gtgctgatgt tgtcgatgta gctatcaatt caatgtcggg cttaacttcc 2400
caaccatcaa ttaatgcact gttggcttca ttagaaggta acattgatac tgggattaac 2460
gttgagcatg ttcgtgaatt agatgcatac tgggccgaaa tgagactgtt gtattcttgt 2520
ttcgaggccg acttgaaggg accagatcca gaagtttacc aacatgaaat cccaggtggt 2580
caattgacta acttgttatt ccaagctcaa caactgggtc ttggtgaaca atgggctgaa 2640
actaaaagag cttacagaga agccaattac ctactgggag atattgttaa agttacccca 2700
acttctaagg ttgtcggtga tttagctcaa ttcatggttt ctaacaaact gacttccgac 2760
gatattagac gtttagctaa ttctttggac tttcctgact ctgttatgga cttttttgaa 2820
ggtttaattg gtcaaccata cggtgggttc ccagaaccat taagatctga tgtattgaga 2880
aacaagagaa gaaagttgac gtgccgtcca ggtttagaat tagaaccatt tgatctcgaa 2940
aaaattagag aagacttgca gaacagattc ggtgatattg atgaatgcga tgttgcttct 3000
tacaatatgt atccaagggt ctatgaagat ttccaaaaga tcagagaaac atacggtgat 3060
ttatcagttc taccaaccaa aaatttccta gcaccagcag aacctgatga agaaatcgaa 3120
- 111 032726 gtcaccatcg aacaaggtaa gactttgatt atcaaattgc aagctgttgg tgacttaaat
3180 aagaaaactg ggcaaagaga agtgtatttt gaattgaacg gtgaattaag aaagatcaga
3240 gttgcagaca agtcacaaaa catacaatct gttgctaaac caaaggctga tgtccacgat
3300 actcaccaaa tcggtgcacc aatggctggt gttatcatag aagttaaagt acataaaggg
3360 tctttggtga aaaagggcga atcgattgct gttttgagtg ccatgaaaat ggaaatggtt
3420 gtctcttcac cagcagatgg tcaagttaaa gacgttttca ttaaggatgg tgaaagtgtt
3480 gacgcatcag atttgttggt tgtcctagaa gaagaaaccc tacccccatc ccaaaaaaag
3540 taa
3543 <210>
<211>
<212>
<213>
ДНК
Искусственная последовательность <220>
<223>
Pl праймер <400> ggactagtat gagcagtagc aagaaattgg <210>
<211>
<212>
<213>
ДНК
Искусственная последовательность <220>
<223>
P2 праймер <400> ccgctcgagt tacttttttt gggatggggg t

Claims (14)

  1. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
    1. Рекомбинантная эукариотическая клетка для продукции янтарной кислоты, выбираемая из группы, состоящей из клеток дрожжей и клеток мицелиальных грибов, включающая нуклеотидную последовательность, кодирующую NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу, которая катализирует превращение фумаровой кислоты в янтарную кислоту, причем NAD(H)-зависимая фумаратредуктаза активна в цитозоле после экспрессии нуклеотидной последовательности, кодирующей NAD(H)-зависимую фумаратредуктазу.
  2. 2. Клетка по п.1, которая экспрессирует нуклеотидную последовательность, кодирующую NAD(H)зависимую фумаратредуктазу, содержащую аминокислотную последовательность, идентичную по меньшей мере на 40% последовательности SEQ ID NO: 3 и/или SEQ ID NO: 6.
  3. 3. Клетка по п. 1 или 2, где NAD(H)-зависимая фумаратредуктаза происходит из Trypanosoma sp.
  4. 4. Клетка по любому из пп.1-3, которая сверхэкспрессирует нуклеотидную последовательность, кодирующую пируваткарбоксилазу.
  5. 5. Клетка по любому из пп.1-4, дополнительно включающая нуклеотидную последовательность, кодирующую гетерологичную фосфоенолпируваткарбоксикиназу.
  6. 6. Клетка по любому из пп.1-5, дополнительно включающая нуклеотидную последовательность, кодирующую малатдегидрогеназу, активную в цитозоле после экспрессии нуклеотидной последовательности, кодирующей указанную малатдегидрогеназу.
  7. 7. Клетка по любому из пп.1-6, дополнительно включающая нуклеотидную последовательность, кодирующую фумаразу, активную в цитозоле после экспрессии нуклеотидной последовательности, кодирующей указанную фумаразу.
  8. 8. Клетка по любому из пп.1-7, дополнительно включающая нуклеотидную последовательность, кодирующую транспортер дикарбоновых кислот.
  9. 9. Клетка по любому из пп.1-8, где по меньшей мере один ген, кодирующий алкогольдегидрогеназу, не является функциональным.
  10. 10. Клетка по любому из пп.1-9, где по меньшей мере один ген, кодирующий глицерол-3фосфатдегидрогеназу, не является функциональным.
  11. 11. Клетка по любому из пп.1-10, где по меньшей мере один ген, кодирующий сукцинатдегидрогеназу, не является функциональным.
    - 112 032726
  12. 12. Клетка по любому из пп.1-11, которая представляет собой клетку Aspergillus, предпочтительно клетку Aspergillus niger.
  13. 13. Клетка по любому из пп.1-11, которая представляет собой клетку Saccharomyces cerevisiae.
  14. 14. Способ получения янтарной кислоты, включающий ферментацию эукариотической клетки по любому из пп.1-13 в подходящей для ферментации среде и извлечение янтарной кислоты.
    - 113 032726
    Фиг. 7
    Фиг. 8
    - 114 032726
    Фиг. 9
    Фиг. 10
    Фиг. 11
EA201000837A 2007-11-20 2008-11-14 Рекомбинантная эукариотическая клетка для продукции янтарной кислоты, которая содержит nad(h)-зависимую фумаратредуктазу EA032726B1 (ru)

Applications Claiming Priority (7)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP07121120 2007-11-20
EP07121117 2007-11-20
EP07121113 2007-11-20
EP08156960 2008-05-27
EP08156961 2008-05-27
EP08156959 2008-05-27
PCT/EP2008/065583 WO2009065778A1 (en) 2007-11-20 2008-11-14 Succinic acid production in a eukaryotic cell

Publications (2)

Publication Number Publication Date
EA201000837A1 EA201000837A1 (ru) 2010-12-30
EA032726B1 true EA032726B1 (ru) 2019-07-31

Family

ID=40268299

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA201000837A EA032726B1 (ru) 2007-11-20 2008-11-14 Рекомбинантная эукариотическая клетка для продукции янтарной кислоты, которая содержит nad(h)-зависимую фумаратредуктазу

Country Status (10)

Country Link
US (3) US9340804B2 (ru)
EP (3) EP2220232B1 (ru)
JP (2) JP5641938B2 (ru)
CN (3) CN101903522B (ru)
AT (1) ATE555203T1 (ru)
BR (2) BRPI0819273B8 (ru)
CA (2) CA2875319A1 (ru)
EA (1) EA032726B1 (ru)
ES (2) ES2383473T3 (ru)
WO (2) WO2009065780A1 (ru)

Families Citing this family (56)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2009011974A1 (en) * 2007-05-18 2009-01-22 Microbia Precision Engineering, Inc. Organic acid production by fungal cells
CN101903522B (zh) * 2007-11-20 2015-08-05 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 在真核生物中生产二羧酸
CA2714088A1 (en) * 2008-02-15 2009-08-20 Dsm Ip Assets B.V. Process for the production of a dicarboxylic acid
CN107267561A (zh) 2008-07-08 2017-10-20 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 通过在低pH下发酵生产二羧酸
RU2422526C2 (ru) * 2009-01-30 2011-06-27 Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов (ФГУП ГосНИИгенетика) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЯНТАРНОЙ КИСЛОТЫ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ДРОЖЖЕЙ, ПРИНАДЛЕЖАЩИХ К РОДУ Yarrowia
EP2419518A1 (en) * 2009-04-15 2012-02-22 DSM IP Assets B.V. Dicarboxylic acid production process
UA108853C2 (uk) 2009-07-10 2015-06-25 Спосіб ферментації галактози
ES2655308T3 (es) 2009-08-27 2018-02-19 Dsm Ip Assets B.V. Procedimiento de fermentación de ácido dicarboxílico
BR112012004594A2 (pt) 2009-09-01 2016-06-21 Novozymes Inc célula hospedeira fúngica filamentosa, e, método para produzir um ácido dicarboxílico
US20120238722A1 (en) * 2009-11-24 2012-09-20 Roquette Freres Sa Process for the crystallization of succinic acid
JP2011120508A (ja) * 2009-12-09 2011-06-23 Oji Paper Co Ltd コハク酸を製造する方法
EP2519491A4 (en) 2009-12-31 2014-10-08 Groupe Novasep Sas PURIFICATION OF BERNSTEINIC ACID FROM THE FERMENTATION OF SPROUTS WITH AMMONIUM UCCINATE
CN102812127B (zh) 2010-03-09 2014-12-03 三菱化学株式会社 琥珀酸的制造方法
EP2371802A1 (en) 2010-03-30 2011-10-05 DSM IP Assets B.V. Process for the crystallization of succinic acid
CN102869766B (zh) 2010-04-21 2015-11-25 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 适于发酵混合的糖组合物的细胞
US8617859B2 (en) 2010-06-04 2013-12-31 Novozymes, Inc. C4 dicarboxylic acid production in filamentous fungi
KR20130113937A (ko) 2010-06-21 2013-10-16 노보자임스 인코포레이티드 C4―디카르복실산 수송체 활성을 가진 아스페르질루스 아쿨레아투스 유래한 폴리펩티드 및 그것을 암호화하는 폴리뉴클레오티드
EP2582829B1 (en) 2010-06-21 2016-11-30 Novozymes, Inc. Methods for improved c4-dicarboxylic acid production in filamentous fungi
US9187772B2 (en) * 2010-09-01 2015-11-17 University Of Florida Research Foundation, Inc. L-malate production by metabolically engineered escherichia coli
EP2619314A1 (en) 2010-09-24 2013-07-31 DSM IP Assets B.V. Dicarboxylic acid production process
AR083613A1 (es) * 2010-10-28 2013-03-06 Total Sa Proceso para la produccion de acido polilactico usando monascus
EP2495304A1 (en) 2010-12-03 2012-09-05 DSM IP Assets B.V. Dicarboxylic acid production in a yeast cell
WO2012103261A2 (en) 2011-01-25 2012-08-02 Finley Kenneth R Compositions and methods for succinate production
CN103492551A (zh) 2011-02-28 2014-01-01 诺维信股份有限公司 用于生产c4-二羧酸的微生物
PL2726624T3 (pl) 2011-07-01 2017-06-30 Dsm Ip Assets B.V. Sposób wytwarzania kwasów dikarboksylowych komórki zatrudniających grzybiczych
ES2579706T3 (es) 2011-08-19 2016-08-16 Novozymes, Inc. Microorganismos recombinantes para la producción de ácidos C4-dicarboxílicos
CN102559518B (zh) * 2011-12-20 2013-10-16 江南大学 一种高产延胡索酸米根霉及其应用
EP2807262A4 (en) * 2012-01-25 2015-12-30 Bioamber Internat S A R L PROCESS FOR SUCCINATE MANUFACTURE
FR2987678B1 (fr) 2012-03-02 2016-04-15 Roquette Freres Methode de mesure de la stabilite thermique d'un acide succinique cristallin destine a la fabrication de polymeres
FR2988733B1 (fr) 2012-03-27 2016-02-05 Carbios Microorganisme recombinant
KR101464656B1 (ko) 2012-06-15 2014-12-02 한국생명공학연구원 발효산물 고생성능을 가지는 변이 미생물 및 이를 이용한 발효산물의 제조방법
EP2877568B1 (en) 2012-07-25 2021-04-28 Cargill, Incorporated Yeast cells having reductive tca pathway from pyruvate to succinate and overexpressing an exogenous nad(p)+ transhydrogenase enzyme
US10066246B2 (en) 2012-07-25 2018-09-04 Cargill, Incorporated Yeast cells having NADP(H)-dependent reductive TCA pathway from pyruvate to succinate
BR112015004488A2 (pt) * 2012-08-28 2018-11-21 Braskem Sa método de coprodução de um terpeno e pelo menos um coproduto a partir de uma fonte de carbono fermentável
KR102253532B1 (ko) 2012-09-14 2021-05-18 피티티 글로벌 케미컬 퍼블릭 컴퍼니 리미티드 낮은 ph에서 발효에 의한 유기산의 제조
EP2898082B1 (en) 2012-09-20 2019-09-04 LCY Bioscience Inc. Pathways to adipate semialdehyde and other organic products
WO2014135712A2 (en) 2013-03-08 2014-09-12 Dsm Ip Assets B.V. Polyester
WO2015007902A1 (en) * 2013-07-18 2015-01-22 Dsm Ip Assets B.V. Fermentation process
CA2931591C (en) * 2013-12-12 2023-09-19 Dsm Ip Assets B.V. Fumarate reductases
WO2016002680A1 (ja) * 2014-06-30 2016-01-07 旭硝子株式会社 形質転換体およびその製造方法、ならびに炭素数4のジカルボン酸の製造方法
US9882151B2 (en) 2014-11-14 2018-01-30 Universal Display Corporation Organic electroluminescent materials and devices
EP3227256B1 (en) 2014-12-02 2019-03-13 Roquette Freres Process for manufacturing succinic acid from a fermentation broth using nanofiltration to purify recycled mother liquor
EP3067378A1 (en) 2015-03-11 2016-09-14 DSM IP Assets B.V. Polyester
US20180179499A1 (en) 2015-06-04 2018-06-28 Bioamber Inc. Biobased production of functionalized alpha-substituted acrylates and c4-dicarboxylates
US11078504B2 (en) * 2015-12-23 2021-08-03 Dsm Ip Assets B.V. Yeast host cells for dicarboxylic acid production
JP2017121184A (ja) * 2016-01-04 2017-07-13 花王株式会社 変異リゾプス属菌
CN116286420A (zh) 2016-07-13 2023-06-23 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 苹果酸脱氢酶
DE102016115425A1 (de) 2016-08-19 2018-02-22 Jacobs University Bremen Ggmbh Gentechnisch veränderte Hefe zur Fermentation von Glycerol
WO2018211132A1 (en) 2017-05-18 2018-11-22 Avantium Knowledge Centre B.V. Polyester copolymer
US11306179B2 (en) 2017-05-18 2022-04-19 Avantium Knowledge Centre B.V. Polyester copolymer
US11608488B2 (en) * 2017-07-11 2023-03-21 Adisseo France S.A.S. Enhanced metabolite-producing yeast
US20210207076A1 (en) * 2018-05-25 2021-07-08 Danisco Us Inc. Overexpression of fumarate reductase results in an increased fermentation rate in yeast
KR102129379B1 (ko) * 2018-10-10 2020-07-02 한국과학기술원 고활성의 말산 탈수소효소가 도입된 숙신산 생성용 변이 미생물 및 이를 이용한 숙신산 제조방법
JP7284262B2 (ja) 2018-11-22 2023-05-30 アバンティウム・ナレッジ・センター・ベー・フェー 1種又は複数種のポリエステルコポリマーを製造するための方法、1種又は複数種のオリゴマーを調製するための方法、オリゴマー組成物、及びポリエステルコポリマー
CN113249238B (zh) * 2021-05-07 2022-08-23 江南大学 一株耐酸酿酒酵母及其在有机酸制备中的应用
CN114806913B (zh) * 2022-04-15 2023-11-28 盛虹控股集团有限公司 具有线粒体定位还原tca途径的高产琥珀酸酵母工程菌株及其构建方法和应用

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1672077A1 (en) * 2003-08-28 2006-06-21 Mitsubishi Chemical Corporation Process for producing succinic acid
WO2007030830A2 (en) * 2005-09-09 2007-03-15 Genomatica, Inc. Methods and organisms for the growth-coupled production of succinate
WO2007061590A1 (en) * 2005-11-21 2007-05-31 Tate & Lyle Ingredients Americas, Inc. Malic acid production in recombinant yeast
EP1867727A1 (en) * 2006-06-15 2007-12-19 Danmarks Tekniske Universitet Enhanced citrate production

Family Cites Families (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3542861A1 (de) 1985-12-04 1987-06-11 Huels Chemische Werke Ag Verfahren zur gewinnung von l-aepfelsaeure
US5643758A (en) * 1987-03-10 1997-07-01 New England Biolabs, Inc. Production and purification of a protein fused to a binding protein
WO1990014423A1 (en) 1989-05-18 1990-11-29 The Infergene Company Microorganism transformation
DK0778348T3 (da) 1989-07-07 2000-12-04 Unilever Nv Fremgangsmåde til fremstilling af et protein ved anvendelse af en svamp transformeret ved multikopi-integration af en ekspr
EP1321523A3 (en) 1993-07-23 2004-03-03 DSM IP Assets B.V. Selection marker gene free recombinant strains; a method for obtaining them and the use of these strains
US6265186B1 (en) 1997-04-11 2001-07-24 Dsm N.V. Yeast cells comprising at least two copies of a desired gene integrated into the chromosomal genome at more than one non-ribosomal RNA encoding domain, particularly with Kluyveromyces
EP0979294B1 (en) 1997-04-11 2015-05-27 DSM IP Assets B.V. Gene conversion as a tool for the construction of recombinant industrial filamentous fungi
AU4144999A (en) 1998-05-19 1999-12-06 Dsm N.V. Improved (in vivo) production of cephalosporins
WO2000037671A2 (en) 1998-12-22 2000-06-29 Dsm N.V. Improved in vivo production of cephalosporins
DE102004011248A1 (de) * 2004-03-09 2005-09-22 Degussa Ag Verfahren zur Herstellung von L-Aminosäuren unter Verwendung coryneformer Bakterien
EP2460872A1 (en) * 2004-12-22 2012-06-06 Michigan Biotechnology Institute Recombinant microorganisms for increased production of organic acids
US7435168B2 (en) * 2005-01-14 2008-10-14 Archer-Daniels-Midland Company Compositions and methods for manipulating carbon flux in cells
DE102005031801B3 (de) * 2005-07-07 2006-08-24 Carsten Paulsen Reinigungsanlage für Türme von Windkraftanlagen
KR20080031504A (ko) 2005-08-05 2008-04-08 미시간 스테이트 유니버시티 악티노바실러스 숙시노제네스의 c4-경로로부터 화학물질을생산하기 위해 악티노바실러스 숙시노제네스130z(atcc 55618)로부터 얻은 유전자
KR100727054B1 (ko) 2005-08-19 2007-06-12 한국과학기술원 푸마레이트 하이드라타제 c를 코딩하는 유전자로 형질전환된 재조합 미생물 및 이를 이용한 숙신산의 제조방법
WO2008000632A1 (en) 2006-06-29 2008-01-03 Dsm Ip Assets B.V. A method for achieving improved polypeptide expression
CN101688176B (zh) * 2007-04-17 2013-11-06 味之素株式会社 具有羧基的酸性物质的生产方法
EP2155885A4 (en) 2007-05-18 2010-12-01 Microbia Prec Engineering Inc ACIDIC ACID PRODUCTION IN RECOMBINANT YEAST
WO2009011974A1 (en) 2007-05-18 2009-01-22 Microbia Precision Engineering, Inc. Organic acid production by fungal cells
CN101903522B (zh) * 2007-11-20 2015-08-05 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 在真核生物中生产二羧酸
EP2807262A4 (en) 2012-01-25 2015-12-30 Bioamber Internat S A R L PROCESS FOR SUCCINATE MANUFACTURE
KR102253532B1 (ko) 2012-09-14 2021-05-18 피티티 글로벌 케미컬 퍼블릭 컴퍼니 리미티드 낮은 ph에서 발효에 의한 유기산의 제조

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1672077A1 (en) * 2003-08-28 2006-06-21 Mitsubishi Chemical Corporation Process for producing succinic acid
WO2007030830A2 (en) * 2005-09-09 2007-03-15 Genomatica, Inc. Methods and organisms for the growth-coupled production of succinate
WO2007061590A1 (en) * 2005-11-21 2007-05-31 Tate & Lyle Ingredients Americas, Inc. Malic acid production in recombinant yeast
EP1867727A1 (en) * 2006-06-15 2007-12-19 Danmarks Tekniske Universitet Enhanced citrate production

Non-Patent Citations (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DATABASE UniProt [Online] 1 March 2003 (2003-03-01), "NADH-dependent fumarate reductase" XP002477928, retrieved from EBI accession no. UNIPROT:Q8ITL2, Database accession no. Q8ITL2, the whole document -& BESTEIRO S. ET AL.: "Succinate secreted by Trypanosoma brucei is produced by a novel and unique glycosomal enzyme, NADH-dependent fumarate reductase", JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY, vol. 277, no. 41, 11 October 2002 (2002-10-11), pages 38001-38012, XP002477925, ISSN: 0021-9258, the whole document, figure 10 *
DATABASE UniProt [Online] 12 April 2005 (2005-04-12), "Mitochondrial NADH-dependent fumarate reductase (EC 1.3.1.6)", XP002477927, retrieved from EBI accession no. UNIPROT:Q5BU1, Database accession no. Q5BU14, the whole document -& COUSTOU V. ET AL.: "A mitochondrial NADH-dependent fumarate reductase involved in the production of succinate excreted by procyclic Trypanosoma brucei", JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY, vol. 280, no. 17, April 2005 (2005-04), pages 16559-16570, XP002477924, ISSN: 0021-9258, the whole document, figure 1, page 16561, right-hand column, paragraph "Expresion of EGFP-tagged FRDm1 in Trypanosomes" *
DATABASE UniProt [Online], 1 October 1993 (1993-10-01), "Fumarate reductase (NADH) (EC 1.3.1.6) (NADH-dependent fumarate reductase) (FAD-dependent oxidoreductase FRDS)", XP002477929, retrieved from EBI accession no. UNIPROT:P32614, Database accession no. P32614, the whole document *
DE JONGH, W.A. NIELSEN, J.: "Enhanced citrate production through gene insertion in Aspergillus niger", METABOLIC ENGINEERING, ACADEMIC PRESS, US, vol. 10, no. 2, 17 November 2007 (2007-11-17), US, pages 87 - 96, XP022510142, ISSN: 1096-7176 *
DE JONGH: "Organic acid production by Aspergillus niger", THESE DE DOCTORAT PRESENTÉE AU DÉPARTEMENT DE CHIMIE DE L'UNIVERSITÉ DE LAUSANNE POUR L'OBTENTION DU GRADE DE DOCTEUR ÈS SCIENCES, 1 May 2006 (2006-05-01), pages 1.I - XII,1, XP002445685 *
ENOMOTO K, ARIKAWA Y, MURATSUBAKI H: "Physiological role of soluble fumarate reductase in redox balancing during anaerobiosis in Saccharomyces cerevisiae", FEMS MICROBIOLOGY LETTERS, WILEY-BLACKWELL PUBLISHING LTD., GB, vol. 215, no. 1, 24 September 2002 (2002-09-24), GB, pages 103 - 108, XP002477926, ISSN: 0378-1097, DOI: 10.1111/j.1574-6968.2002.tb11377.x *
GOLDBERG ISRAEL, ROKEM J STEFAN, PINES OPHRY: "Organic acids: old metabolites, new themes", JOURNAL OF CHEMICAL TECHNOLOGY AND BIOTECHNOLOGY, WILEY, vol. 81, no. 10, 1 October 2006 (2006-10-01), pages 1601 - 1611, XP002477014, ISSN: 0268-2575, DOI: 10.1002/jctb.1590 *
KUBO Y, TAKAGI H, NAKAMORI S: "Effect of gene disruption of succinate dehydrogenase on succinate production in a sake yeast strain", JOURNAL OF BIOSCIENCE AND BIOENGINEERING, ELSEVIER, AMSTERDAM, NL, vol. 90, no. 6, 1 January 2000 (2000-01-01), NL, pages 619 - 624, XP003009625, ISSN: 1389-1723, DOI: 10.1263/jbb.90.619 *
LIN, H. BENNETT, G.N. SAN, K.-Y.: "Metabolic engineering of aerobic succinate production systems in Escherichia coli to improve process productivity and achieve the maximum theoretical succinate yield", METABOLIC ENGINEERING, ACADEMIC PRESS, US, vol. 7, no. 2, 1 March 2005 (2005-03-01), US, pages 116 - 127, XP004801711, ISSN: 1096-7176, DOI: 10.1016/j.ymben.2004.10.003 *
SONG, H. LEE, S.Y.: "Production of succinic acid by bacterial fermentation", ENZYME AND MICROBIAL TECHNOLOGY, STONEHAM, MA, US, vol. 39, no. 3, 3 July 2006 (2006-07-03), US, pages 352 - 361, XP005459365, ISSN: 0141-0229, DOI: 10.1016/j.enzmictec.2005.11.043 *

Also Published As

Publication number Publication date
BRPI0819275B1 (pt) 2022-05-17
CA2704654C (en) 2015-02-10
EP2220233B1 (en) 2012-04-25
US20140031587A1 (en) 2014-01-30
CN101978063B (zh) 2018-10-16
WO2009065780A1 (en) 2009-05-28
EA201000837A1 (ru) 2010-12-30
US9689005B2 (en) 2017-06-27
JP2011502524A (ja) 2011-01-27
CN104818224A (zh) 2015-08-05
EP2687602A1 (en) 2014-01-22
US20110081694A1 (en) 2011-04-07
BRPI0819273B1 (pt) 2022-05-17
WO2009065778A1 (en) 2009-05-28
BRPI0819275A2 (pt) 2014-10-14
CA2875319A1 (en) 2009-05-28
CN101978063A (zh) 2011-02-16
BRPI0819273B8 (pt) 2022-07-19
ES2522622T3 (es) 2014-11-17
JP2014236739A (ja) 2014-12-18
BRPI0819273A2 (pt) 2014-10-14
CN101903522A (zh) 2010-12-01
CN101903522B (zh) 2015-08-05
EP2220232B1 (en) 2014-09-03
US20120165569A1 (en) 2012-06-28
JP5641938B2 (ja) 2014-12-17
ATE555203T1 (de) 2012-05-15
EP2220232A1 (en) 2010-08-25
EP2220233A1 (en) 2010-08-25
ES2383473T3 (es) 2012-06-21
CA2704654A1 (en) 2009-05-28
BRPI0819275B8 (pt) 2022-07-19
US9340804B2 (en) 2016-05-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA2704654C (en) Succinic acid production in a eukaryotic cell
CA2730595C (en) Low ph dicarboxylic acid production
US8735112B2 (en) Dicarboxylic acid production in a recombinant yeast
US20110104771A1 (en) Process for the production of a dicarboxylic acid
CA2771162C (en) Dicarboxylic acid fermentation process
US20150291986A1 (en) Itaconic acid and itaconate methylester production
US20140045230A1 (en) Dicarboxylic acid production in a filamentous fungus
CN109689864B (zh) 苹果酸脱氢酶
US9944905B2 (en) Fumarate reductases
US20170191089A1 (en) Itaconic acid and itaconate methylester and dimethylester production

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s)

Designated state(s): AM AZ BY KZ KG MD TJ TM