DE69839133T2 - Isolierung von Nukleinsäuren - Google Patents

Isolierung von Nukleinsäuren Download PDF

Info

Publication number
DE69839133T2
DE69839133T2 DE69839133T DE69839133T DE69839133T2 DE 69839133 T2 DE69839133 T2 DE 69839133T2 DE 69839133 T DE69839133 T DE 69839133T DE 69839133 T DE69839133 T DE 69839133T DE 69839133 T2 DE69839133 T2 DE 69839133T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
solid phase
nucleic acid
nucleic acids
cell lysate
pcr
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
DE69839133T
Other languages
English (en)
Other versions
DE69839133D1 (de
Inventor
Matthew John Maidstone Baker
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Life Technologies Corp
Original Assignee
Invitrogen Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=26312726&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=DE69839133(T2) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Priority claimed from GBGB9725839.6A external-priority patent/GB9725839D0/en
Priority claimed from GBGB9815541.9A external-priority patent/GB9815541D0/en
Application filed by Invitrogen Corp filed Critical Invitrogen Corp
Publication of DE69839133D1 publication Critical patent/DE69839133D1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE69839133T2 publication Critical patent/DE69839133T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1003Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
    • C12N15/1006Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1003Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1003Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
    • C12N15/1006Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers
    • C12N15/101Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers by chromatography, e.g. electrophoresis, ion-exchange, reverse phase

Description

  • Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zum Extrahieren von Nukleinsäuren aus biologischem Material, insbesondere Blut.
  • Es besteht eine sehr große Nachfrage nach DNA-Analysen für eine Reihe von Zwecken, und das hat zu einem Bedarf an schnellen, sicheren Verfahren mit hohem Durchsatz zur Isolierung und Reinigung von DNA und anderen Nukleinsäuren geführt.
  • Proben zur Verwendung für die DNA-Identifikation oder -Analyse können aus einem breiten Spektrum von Quellen, wie biologischem Material wie Tier- und Pflanzenzellen, Kot, Gewebe usw., genommen werden, und es können auch Proben von Böden, Nahrungsmitteln, Wasser usw. genommen werden.
  • Bestehende Verfahren zur Extraktion von DNA schließen die Verwendung von Phenol/Chloroform, Aussalzen, die Verwendung von chaotropen Salzen und Silicaharzen, die Verwendung von Affinitätsharzen, Ionenaustauschchromatographie und die Verwendung von magnetischen Kügelchen ein. Verfahren sind in den US-Patentschriften 5057426 , 4923978 , den EP-Patentschriften 0512767 A1 und EP 0515484B sowie WO 95/13368 , WO 97/10331 und WO 96/18731 beschrieben. Diese Patente und Patentanmeldungen offenbaren Verfahren zum Adsorbieren von Nuldeinsäuren an ein festes Trägermaterial und anschließendem Isolieren der Nukleinsäuren. Die früher verwendeten Verfahren verwenden irgendeine Art von Lösungsmittel zum Isolieren der Nukleinsäuren, und diese Lösungsmittel sind entzündbar, brennbar oder toxisch.
  • EP 0 707077 A beschreibt das Einfangen und selektive Freisetzen von Nukleinsäure aus einem Lysat durch Verwendung eines wasserlöslichen, schwach basischen Polymers unter Bildung eines Präzipitats mit dem Polymer. Dann wird das Präzipitat abgetrennt und die Nukleinsäure aus dem Polymer unter Verwendung extrem salzhaltiger Bedingungen, einer starken Base oder Erwärmung freigesetzt.
  • Blut ist eine der am reichlichsten vorhandenen Quellen von Proben für die DNA-Analyse, da Blutproben routinemäßig aus einem breiten Spektrum von Gründen entnommen werden. Allerdings hat sich aufgrund der viskosen und proteinösen Beschaffenheit von Blut bei Verwendung bekannter DNA-Extraktionsverfahren eine Automatisierungsanwendung aufgrund von Schwierigkeiten bei der Handhabung großer Volumina, die relativ geringe Mengen an DNA enthalten, als schwierig erwiesen. Bisher erfolgte die Nukleinsäureextraktion nur zum Teil automatisch unter Verwendung gefährlicher Reagenzien und langsamer Verarbeitungszeiten.
  • Ich habe nunmehr ein verbessertes Verfahren zur Extraktion von Nukleinsäuren und anderen Biomolekülen aus Blut und anderen biologischen Materialien ausgearbeitet.
  • Demnach stellt die vorliegende Erfindung ein Verfahren zum Extrahieren von Nukleinsäure aus einem Zelllysat, wie in den Ansprüchen dargelegt, bereit.
  • Das Verfahren ist besonders nützlich, wenn das biologische Material Blut ist, doch kann das Verfahren für einen Bereich von Anwendungssubstanzen, wie Plasmid- und Vektorisolierung und Pflanzen-DNA-Extraktion verwendet werden.
  • Vorzugsweise werden die Zellen im Blut unter Freisetzung von Nukleinsäuren lysiert und es können bekannte Lysiermittel und Verfahren verwendet werden, wie das Inkontaktbringen mit ionischen und nicht-ionischen Detergenzien, hypotonen Salzlösungen, Proteasen, chaotropischen Mitteln, Lösungsmitteln, unter Anwendung von Veränderungen des pH-Werts oder Wärme. Ein Verfahren zum Lysieren von Zellen zur Isolierung von Nukleinsäure ist in WO 96/00228 beschrieben.
  • Besteht das biologische Material aus Blut, so können die Proben wahlweise mit Wasser oder einem anderen Verdünnungsmittel verdünnt werden, um die Handhabung und Verarbeitung zu erleichtern.
  • Bis zu zehnfache Verdünnungen können verwendet werden, und im Allgemeinen kann eine stärkere Verdünnung besser sein, und es ist ein Merkmal der vorliegenden Erfindung, dass sie eine geringe Verdünnung des Blutes erlaubt.
  • Die Festphase, mit der das Blut in Kontakt gebracht wird, kann aus einem Material gebildet sein, das eine natürliche Affinität für Nukleinsäuren aufweist, oder es kann aus einem Material gebildet sein, dessen Oberfläche mit einem Mittel behandelt ist, das bewirkt, dass die Nukleinsäuren an dieses binden, oder das deren Affinität für Nukleinsäuren erhöht. Geeignete Materialien schließen poröses Glas (Controlled Pore Glass), ein Polysaccharid (Agarose oder Cellulose), andere Arten von Silica/Glas, keramische Materialien, poröse Kunststoffmaterialien, wie porige Kunststoffzapfen, die ein einzelnes Formteil oder einen Einsatz für ein Standardrohr darstellen, Polystyrolkügelchen, paramagnetische Kügelchen etc., ein. Größe und Porosität sind nicht kritisch und können variieren und für bestimmte Anwendungen ausgewählt werden.
  • Geeignete Mittel zum Behandeln der Oberfläche der Festphase oder zu deren Derivatisierung schließen deren Behandlung mit einer Substanz, die eine Ladung, z. B. eine positive Ladung, auf die Oberfläche oder eine hydrophile oder hydrophobe Oberfläche auf die Festphase aufbringen kann, z. B. Hydroxygruppen, Nitratgruppen, autoreaktive Gruppen, Farbstoffe und andere aromatische Verbindungen, ein.
  • In einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung bewirkt die Festphase, dass die DNA bei einem bestimmten pH-Wert eher an sie bindet als an Kontaminanten in der Blutprobe und ermöglicht die Freisetzung der gebundenen Nukleinsäure, wenn sie mit einem Eluanten mit einem anderen pH-Wert in Kontakt gebracht wird. Dieses System kann mit einer Festphase verwendet werden, die Histidin oder ein Polyhistidin enthält, welches die Nukleinsäuren tendenziell bei einem niedrigen pH-Wert, z. B. weniger als 6, bindet und die gebundenen Nukleinsäuren dann freisetzt, wenn der pH-Wert erhöht wird, z. B. auf mehr als 8. Alternativ dazu werden Nukleinsäuren bei einem im Wesentlichen neutralen pH-Wert an eine aminierte Oberfläche gebunden und bei einem sehr hohen pH-Wert freigesetzt.
  • In einer weiteren Ausführungsform der Erfindung kann in ein Kunststoffformteil ein Bindemittel, z. B. in einer Mulde in einer Platte etc., eingebracht werden, sodass das Bindemittel in die Oberfläche eingebracht wird, wobei die Blutprobe dann mit der Oberfläche in Kontakt gebracht wird, was bewirkt, dass die Nukleinsäuren an die Oberfläche binden. Dann wird die Blutprobe entfernt und die Oberfläche mit einem Eluiermittel behandelt, um die gebundenen Nukleinsäuren freizusetzen. Ist die Oberfläche Teil einer Mulde in einer Multiwell-Platte, lässt sich das ganze System leicht für schnelle Sampling- und Extraktionstechniken in großem Umfang.
  • Bindemittel, die verwendet werden können, schließen ladungsumschaltbare Ionenaustauscherharze unter Verwendung einer positiv geladenen Festphase, die durch Verändern des pH-Werts über ihren pKa-Wert umgepolt oder neutralisiert werden kann, wie z. B. Nukleotide, Polyamine, Imidazolgruppen und andere ähnliche Reagenzien mit einem geeigneten pKa-Wert, ein.
  • Auch können Nukleinsäuren durch Interkalation unter Verwendung einer Vielfalt an Interkalationsverbindungen in die Festphase eingebracht werden, z. B. Actinomycin D, Ethidiumbromid etc.
  • In einer weiteren Ausführungsform der Erfindung kann eine Kunststoffoberfläche derart modifiziert werden, dass sie funktionelle Gruppen einschließt. Der Kunststoff kann ein beliebiger Kunststoff sein, der zur Aufnahme von Proben verwendet wird, z. B. Polypropylen. Die funktionellen Gruppen können positiv oder negativ geladen sein, um die Nukleinsäuren in der richtigen Pufferlösung zu binden.
  • Alternativ dazu können die funktionellen Gruppen chemische Gruppen sein, die zur kovalenten Kopplung an andere Liganden oder Polymere fähig sind.
  • Wird der Kunststoff in einem Kunststoffformteil, z. B. in einer Mulde in einer Platte, oder als Polymerasekettenreaktions-(PCR)-Röhrchen, verwendet, lassen sich die Oberflächeneigenschaften des Kunststoffs für die Verwendung in der vorliegenden Erfindung in geeigneter Weise modifizieren, indem die entsprechenden Chemikalien in die Pressmasse, z. B. eine Spritzgussmasse, eingeschlossen oder dieser zugesetzt werden.
  • Bei Verwendung in einem PCR-Röhrchen oder in einer Multititerplatte mit tiefen Mulden können die Röhrchen oder Mulden dazu verwendet werden, geringe Mengen an DNA oder RNA zu isolieren und zu immobilisieren, unter Bildung einer reinen Matrize für die nachfolgende PCR oder andere genetische Analyse- und Manipulationsverfahren.
  • Handelt es sich bei dem Kunststoff um Polypropylen, z. B. in Form eines dünnwandigen PCR-Röhrchens, kann die Polypropylenoberfläche durch Oxidieren der Oberfläche mit einem Oxidationsmittel, wie Kaliumpermanganat und Schwefelsäure, unter Bildung einer carboxylierten Oberfläche (COOH-Gruppen) modifiziert werden. Dieses Röhrchen kann dann verwendet werden, um die Isolierung von DNA aus Lösungen oder Rohproben, z. B. Blut, zu verbessern. Durch Einstellen des pH-Werts, der Dielektrizitätskonstante, der Löslichkeit oder Innenstärke kann die DNA oder RNA an den Wänden des Röhrchens immobilisiert und durch Waschen von Kontaminanten gereinigt werden und ist dann für die PCR oder andere analytische Techniken bereit.
  • Die Carboxylgruppen können weiter durch kovalente Kopplung einer anionischen Gruppe, wie Imidazol oder Polyhistidin, oder eines beliebigen starken oder schwachen Ionenaustauschers modifiziert werden, um die Bindung von Nukleinsäuren durch eine Ladungswechselwirkung zu ermöglichen. Dieses Röhrchen könnte dann verwendet werden, um die Isolierung von DNA aus Lösungen oder aus Rohproben, z. B. von Blut, zu verbessern. Wieder kann durch Einstellen des pH-Werts, der Dielektrizitätskonstante, der Löslichkeit oder Innenstärke die DNA oder RNA an den Wänden des Röhrchens immobilisiert und durch Waschen von Kontaminanten gereinigt werden und ist dann für die PCR oder andere analytische Techniken bereit.
  • Die Nukleinsäuren können in einem Niedrigsalzpuffer eluiert werden und sind dann für die PCR oder andere Analysen bereit.
  • Die Festphase kann mit einer Blutprobe durch Mischen mit der Festphase in einer Misch-/Rührvorrichtung oder durch Leiten der Blutprobe über die Festphase in Kontakt gebracht werden, oder die Festphase kann paramagnetisch sein und durch ein magnetisches Feld manipuliert worden sein. Wenngleich die Erfindung zur Auftrennung oder Isolierung von Nukleinsäuren aus Blut besonders geeignet ist, kann sie auch mit einem Spektrum von Biomolekülen verwendet werden, insbesondere jenen, welche die Entfernung von Zellwandtrümmern oder unlöslichen Teilchen erfordern.
  • In einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung liegt die Festphase in Form eines Granulats in einer Säule vor und die Blutprobe wird durch die Säule unter Anwendung eines Differenzialdrucks durch die Säule nach oben gezogen, die Blutprobe wird mit der Luft nach oben gezogen und das feste Granulatmaterial kann gewirbelt werden, wodurch die Misch- und Kontaktgeschwindigkeit erhöht und die Klumpenbildung minimiert wird.
  • Das erfindungsgemäße Verfahren ist zur Verwendung in einem Mehrfach-Mulden-Format geeignet, wobei eine Serie von Extraktionen aus unterschiedlichen Proben im Wesentlichen gleichzeitig stattfinden kann, was die Automatisierung des Extraktionsvorgangs erleichtern wird, indem es das Stattfinden einer schnellen Extraktion mit Hochdurchsatz ermöglicht und die Durchführung der kombinatorischen Chemie erlaubt. Dadurch wird es möglich, mit einem hohen Durchsatz in einer üblichen Anordnung einer Mikrotiterplatte, z. B. einer Anordnung von acht mal zwölf, eine große Anzahl von Probenarten automatisch zur gleichen Zeit zu behandeln.
  • Die Erfindung ist beispielhaft beschrieben.
  • Beispiel 1
  • Extraktion von Nukleinsäuren aus Vollblut
  • Ein Ionenaustauscher mit veränderbarer Ladung wurde durch kovalente Kopplung von Polyhistidin an 100μm-Glaskügelchen unter Verwendung von Glutaldehyd durch Mischen von 1 Gramm der aminierten Glaskügelchen mit 0,01 Vol.-% Glutaldehyd in 0,1 M Natriumbicarbonat mit/bei einem pH-Wert von 8, enthaltend 20 mg Polyhistidin, hergestellt. Nach Inkubation über Nacht wurden die Perlen reichlich gewaschen, um das nicht kovalent gekoppelte Material zu entfernen, und in 10 mM MES, pH 5, enthaltend 0,1 Vol.-% Tween 20, aufbewahrt.
  • Etwa 300 mg der derivatisierten 100 μm-Glaskügelchen wurden in eine 1 ml Kunststoffsäule, die an beiden Enden umschlossen war, gegeben.
  • Eine Blutprobe wurde mit einem gleichen Volumen von 10 mM MES mit pH 5, enthaltend 1% Tween 20, Proteasen (200 μg/ml) und 1 mM EDTA, inkubiert. Nach beendetem Aufschluss wurde das Blut in der Säule, welche die Glaskügelchen enthielt, nach oben gesaugt und die DNA wurde immobilisiert, wodurch die kontaminierenden Proteine passieren konnten, um dann entsorgt zu werden.
  • Die Glaskügelchen, welche die immobilisierte DNA enthielten, wurden mit einem Puffer, umfassend 10 mM MES pH 5, enthaltend 1% Tween 20, und 1 mM EDTA gewaschen, und dies wurde so lange wiederholt, bis die Waschlösung farblos war.
  • Nach dem Waschen wurden die Kügelchen mit Luft getrocknet und die DNA wurde mit einer geringen Menge an 10 mM Tris-HCl, pH 8,5, eluiert und in einem sterilen Röhrchen aufgefangen, bereit für die Analyse. Auf diese Weise wurden die DNA vom Blut getrennt.
  • Für unterschiedliche Biomoleküle lässt sich der Puffer etc. auf geeignete Weise modifizieren.
  • Beispiel 2
  • Ein Gramm carboxylierte paramagnetische Kügelchen wurden in 50 mM Imidazolpuffer mit einem pH-Wert von 6 gewaschen und dann mit 100 mg Polyhistidin in 50 ml eines 50 mM Imidazolpuffers mit einem pH-Wert von 6 gemischt. Ein chemisches Kopplungsmittel (EDC) wurde mit einer Endkonzentration von 5 mg pro ml zugesetzt und über Nacht gemischt. Die Kügelchen wurden in Wasser, 0,5 M Natriumchlorid, 1% Tween 20, 100 mM Tris-HCl mit pH 8 gewaschen und in 10 mM MES, 0,1% Tween 20 pH5 aufbewahrt.
  • Um DNA aus dem Blut zu extrahieren, wurden 1 mg Kügelchen mit Blut, das in 10% Tween 20 mit 25 mM MES, 1 mM EDTA mit pH 5 verdünnt worden war, vermischt. Die Kügelchen wurden mit einem Magneten separiert und durch erneutes Suspendieren in 1 mM MES, 0,1% Tween 20 gewaschen. Zum Eluieren der DNA wurden die Kügelchen in 10 mM Tris-HCl mit pH 8,5 resuspendiert und mit Hilfe eines Magneten getrennt, worauf die DNA in Lösung zurückblieb.

Claims (23)

  1. Ein Verfahren zum Extrahieren von Nukleinsäure aus einem Zelllysat, wobei das Verfahren folgendes umfasst:_ Herstellen eines Kontakts zwischen dem Zelllysat und einer Festphase bei einem ersten pH, bei dem die Festphase eine positive Ladung aufweist, so dass die Nukleinsäure eher an die Festphase als an Kontaminanten im Zelllysat bindet; Ablösen der Nukleinsäure bei einem zweiten, höheren pH über dem pKs der Festphase, um die positive Ladung zu invertieren oder zu neutralisieren und so die gebundene Nukleinsäure von der Festphase abzulösen; wobei es sich bei der Festphase um Controlled Pore Glass, ein Polysaccharid, ein keramisches Material, ein poröses Kunststoffmaterial, ein Kunststoffmaterial, Polystyrolkügelchen, paramagnetische Kügelchen oder einen porigen Kunststoffzapfen, der ein einzelnes Formteil oder einen Einsatz für einen Behälter darstellt, handelt; und wobei die Nukleinsäure unter Verwendung eines Niedrigsalzpuffers gelöst wird.
  2. Das Verfahren gemäß Anspruch 1 oder 2, wobei es sich bei dem Zelllysat um Pflanzenzelllysat oder Tierzelllysat handelt.
  3. Das Verfahren gemäß Anspruch 1 oder 2, wobei es sich bei der Nukleinsäure um ein Plasmid handelt.
  4. Das Verfahren gemäß Anspruch 1 oder 2, wobei es sich bei der Nukleinsäure um DNA handelt.
  5. Das Verfahren gemäß Anspruch 1 oder 2, wobei es sich bei der Nukleinsäure um RNA handelt.
  6. Das Verfahren gemäß Anspruch 1 oder 2, wobei es sich bei dem Zelllysat um ein Blutzelllysat handelt.
  7. Das Verfahren gemäß Anspruch 1, wobei das Kunststoffmaterial in Form einer Pipettenspitze, einer Mikrotiterplatte oder einer Mikrotiterplatte mit tiefen Kavitäten oder eines PCR_-Röhrchens vorliegt.
  8. Das Verfahren gemäß Anspruch 1 oder Anspruch 6, wobei die eluierte Nukleinsäure für die Analyse oder Amplifikation unter Verwendung von PCR bereit steht, ohne dass weitere Reinigung erforderlich wäre.
  9. Das Verfahren gemäß einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die Nukleinsäure bei einem pH von weniger als 6 an die Festphase bindet und bei einem pH von mehr als 8 von der Festphase abgelöst wird.
  10. Das Verfahren gemäß einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die Nukleinsäure bei einem im Wesentlichen neutralen pH an die Festphase bindet und bei einem pH von mehr als 10 von der Festphase abgelöst wird.
  11. Das Verfahren gemäß einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die Festphase aus einem Material gebildet wird, das eine natürliche Affinität für Nukleinsäuren aufweist.
  12. Das Verfahren gemäß einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die Festphase aus einem Material gebildet wird, dessen Oberfläche mit einem Wirkstoff behandelt ist, der eine positive Ladung einführt, um zu bewirken, dass die Nukleinsäuren an dieses binden oder um die Affinität desselben für Nukleinsäuren zu erhöhen.
  13. Das Verfahren gemäß einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei es sich bei der Festphase um ein Ionenaustauscherharz mit veränderbarer Ladung handelt, das eine positive Ladung aufweist, die durch Ändern des pHs auf einen Wert über dessen pKs invertiert oder neutralisiert werden kann.
  14. Das Verfahren gemäß Anspruch 13, wobei das Ionenaustauscherharz ein Nukleotid, ein Polyamin oder eine Verbindung, die eine Imidazolgruppe enthält, umfasst.
  15. Das Verfahren gemäß Anspruch 12, wobei die Oberfläche der Festphase mit Histidin oder einem Polyhistidin behandelt ist.
  16. Das Verfahren gemäß einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die Festphase eine Kunstoffoberfläche umfasst, die so modifiziert wurde, dass sie funktionelle Gruppen einschließt.
  17. Das Verfahren gemäß Anspruch 15 oder Anspruch 16, wobei es sich bei dem Kunststoffmaterial um Polypropylen handelt.
  18. Das Verfahren gemäß Anspruch 17, wobei die Poylpropylenoberfläche durch Oxidieren der Oberfläche mit einem Oxidationsmittel modifiziert ist, um eine carboxylierte Oberfläche zu schaffen.
  19. Das Verfahren gemäß Anspruch 18, wobei die Carboxylgruppen weiter durch kovalente Kopplung einer Anionenaustauschergruppe modifiziert werden, um die Bindung von Nukleinsäuren durch eine Ladungswechselwirkung zu ermöglichen.
  20. Das Verfahren gemäß Anspruch 19, wobei es sich bei der Anionenaustauschergruppe um Imidazol, Polyhistidin oder einen starken oder schwachen Ionenaustauscher handelt.
  21. Das Verfahren gemäß einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei es sich bei der Festphase um ein PCR-_Röhrchen oder eine Mikrotiterplatte handelt, die verwendet wird, um kleine Mengen an Nukleinsäure zu isolieren und zu immobilisieren, wodurch ein Templat für anschließende PCR oder sonstige genetische Analyse und Manipulation gebildet wird.
  22. Das Verfahren gemäß einem der vohergehenden Ansprüche, wobei es sich bei der Festphase um eine Multiwellplatte handelt, wodurch ermöglicht wird, dass eine Reihe an Extraktionen von Nukleinsäure aus verschiedenen Proben im Wesentlichen gleichzeitig durchgeführt werden.
  23. Das Verfahren gemäß einem der vorhergehenden Ansprüche, das des Weiteren das Amplifizieren dieser abgelösten Nukleinsäure unter Verwendung von PCR umfasst.
DE69839133T 1997-12-06 1998-12-04 Isolierung von Nukleinsäuren Expired - Lifetime DE69839133T2 (de)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB9725839 1997-12-06
GBGB9725839.6A GB9725839D0 (en) 1997-12-06 1997-12-06 Isolation of nucleic acids
GBGB9815541.9A GB9815541D0 (en) 1998-07-17 1998-07-17 Isolation of nucleic acids
GB9815541 1998-07-20

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE69839133D1 DE69839133D1 (de) 2008-03-27
DE69839133T2 true DE69839133T2 (de) 2009-02-05

Family

ID=26312726

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE69805649T Expired - Lifetime DE69805649T2 (de) 1997-12-06 1998-12-04 Isolierung von nukleinsäuren
DE69839133T Expired - Lifetime DE69839133T2 (de) 1997-12-06 1998-12-04 Isolierung von Nukleinsäuren

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE69805649T Expired - Lifetime DE69805649T2 (de) 1997-12-06 1998-12-04 Isolierung von nukleinsäuren

Country Status (16)

Country Link
US (1) US20030130499A1 (de)
EP (2) EP1036082B1 (de)
JP (2) JP2004501054A (de)
KR (2) KR20010032806A (de)
CN (1) CN1230440C (de)
AT (2) ATE386044T1 (de)
AU (1) AU755342B2 (de)
BR (1) BR9815569A (de)
CA (1) CA2318306A1 (de)
DE (2) DE69805649T2 (de)
DK (1) DK1036082T3 (de)
ES (2) ES2177093T3 (de)
HK (1) HK1034520A1 (de)
NO (1) NO315323B1 (de)
PT (1) PT1036082E (de)
WO (1) WO1999029703A2 (de)

Families Citing this family (116)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB9425138D0 (en) 1994-12-12 1995-02-08 Dynal As Isolation of nucleic acid
US6914137B2 (en) * 1997-12-06 2005-07-05 Dna Research Innovations Limited Isolation of nucleic acids
AU4367500A (en) * 1999-04-21 2000-11-02 Annovis, Inc. Magnetic dna extraction kit for plants
US6383783B1 (en) * 1999-09-21 2002-05-07 3M Innovative Properties Company Nucleic acid isolation by adhering to hydrophobic solid phase and removing with nonionic surfactant
SE9904539D0 (sv) * 1999-12-10 1999-12-10 Alphahelix Ab Method and device for the handling of samples and reagents
JP2001221721A (ja) * 2000-02-09 2001-08-17 Sapporo Imuno Diagnostic Laboratory:Kk 乾燥濾紙便による遺伝子診断
DE10006590B4 (de) * 2000-02-11 2007-10-18 Qiagen North American Holdings, Inc. Verwendung funktionalisierter Membranen bzw. Matrizes zur Aufreinigung von Nukleinsäuren sowie entsprechende Verfahren
EP1349951A4 (de) * 2001-01-09 2005-08-24 Whitehead Biomedical Inst Verfahren und reagenzien zur isolierung von nukleinsäuren
US7829025B2 (en) 2001-03-28 2010-11-09 Venture Lending & Leasing Iv, Inc. Systems and methods for thermal actuation of microfluidic devices
US8895311B1 (en) 2001-03-28 2014-11-25 Handylab, Inc. Methods and systems for control of general purpose microfluidic devices
JP2005538929A (ja) 2002-01-16 2005-12-22 ダイナル バイオテック エイエスエイ 単一サンプルからの核酸及びタンパク質の単離方法
GB0212825D0 (en) * 2002-05-31 2002-07-10 Dna Res Innovations Ltd Methods compositions and kits for cell separation
GB0212826D0 (en) * 2002-05-31 2002-07-10 Dna Res Innovations Ltd Materials and methods relating to polyions and substance delivery
GB0229287D0 (en) * 2002-12-16 2003-01-22 Dna Res Innovations Ltd Polyfunctional reagents
US7601491B2 (en) 2003-02-06 2009-10-13 Becton, Dickinson And Company Pretreatment method for extraction of nucleic acid from biological samples and kits therefor
US20040197780A1 (en) * 2003-04-02 2004-10-07 Agencourt Bioscience Corporation Method for isolating nucleic acids
CN100395257C (zh) * 2003-05-08 2008-06-18 慈溪市中鼎生物技术有限公司 钾离子酸性水溶液和利用这种溶液的dna提取方法和试剂盒
EP2402089A1 (de) 2003-07-31 2012-01-04 Handylab, Inc. Verarbeitung partikelhaltiger Proben
US8852862B2 (en) 2004-05-03 2014-10-07 Handylab, Inc. Method for processing polynucleotide-containing samples
WO2005108620A2 (en) * 2004-05-03 2005-11-17 Handylab, Inc. Processing polynucleotide-containing samples
US20060003958A1 (en) * 2004-05-11 2006-01-05 Melville Mark W Novel polynucleotides related to oligonucleotide arrays to monitor gene expression
WO2006004611A2 (en) * 2004-06-25 2006-01-12 Invitrogen Corporation Separation of nucleic acid
EP1778877B1 (de) 2004-07-28 2009-10-21 Canon U.S. Life Sciences, Inc. Verfahren zur überwachung genomischer dna von organismen
EP1776458A2 (de) * 2004-07-30 2007-04-25 Agencourt Bioscience Corporation Verfahren zur isolierung von nukleinsäuren mit hilfe von festphasenträgern mit multifunktionalen gruppen
WO2006017428A2 (en) * 2004-08-03 2006-02-16 Becton, Dickinson And Company Use of magnetic material to direct isolation of compounds and fractionation of multipart samples
KR100647306B1 (ko) * 2004-12-23 2006-11-23 삼성전자주식회사 아미노기와 카르복실기를 포함하고 제1 pH에서 양전하를띠는 물질을 이용하여 핵산을 분리하는 방법
US7964380B2 (en) 2005-01-21 2011-06-21 Argylia Technologies Nanoparticles for manipulation of biopolymers and methods of thereof
US20060166223A1 (en) * 2005-01-26 2006-07-27 Reed Michael W DNA purification and analysis on nanoengineered surfaces
KR100647315B1 (ko) * 2005-02-02 2006-11-23 삼성전자주식회사 실란화된 고상 물질을 이용한 핵산의 분리 및 증폭 방법
WO2006089192A2 (en) * 2005-02-18 2006-08-24 Canon U.S. Life Sciences, Inc. Devices and methods for identifying genomic dna of organisms
US20060234251A1 (en) * 2005-04-19 2006-10-19 Lumigen, Inc. Methods of enhancing isolation of RNA from biological samples
KR100668337B1 (ko) 2005-05-21 2007-01-12 삼성전자주식회사 단백질에 비하여 핵산에 대한 결합력이 선택적으로 높은pH 의존성 이온 교환물질, 그가 고정화되어 있는 고체기판, 및 상기 물질 및 고체 기판을 이용하여 핵산을분리하는 방법
WO2007028084A2 (en) 2005-09-01 2007-03-08 Canon U.S. Life Sciences, Inc. Method and molecular diagnostic device for detection, analysis and identification of genomic dna
GB0522193D0 (en) * 2005-10-31 2005-12-07 Axis Shield Asa Method
WO2007066665A1 (ja) * 2005-12-05 2007-06-14 Universal Bio Research Co., Ltd. cRNAの調製方法
US11806718B2 (en) 2006-03-24 2023-11-07 Handylab, Inc. Fluorescence detector for microfluidic diagnostic system
JP5415253B2 (ja) 2006-03-24 2014-02-12 ハンディラブ・インコーポレーテッド 微小流体サンプルを処理するための一体化システム及びその使用方法
US10900066B2 (en) 2006-03-24 2021-01-26 Handylab, Inc. Microfluidic system for amplifying and detecting polynucleotides in parallel
US7998708B2 (en) 2006-03-24 2011-08-16 Handylab, Inc. Microfluidic system for amplifying and detecting polynucleotides in parallel
KR100785010B1 (ko) * 2006-04-06 2007-12-11 삼성전자주식회사 수소 결합을 이용하여 고체 지지체의 친수성 표면 상에서핵산 정제 방법 및 장치
EP2010910A2 (de) 2006-04-21 2009-01-07 Wyeth Profilbestimmungsanalyse der differentiellen expression von zellkulturphänotypen und verwendung damit
US8163535B2 (en) 2006-06-26 2012-04-24 Blood Cell Storage, Inc. Devices and processes for nucleic acid extraction
US7608399B2 (en) 2006-06-26 2009-10-27 Blood Cell Storage, Inc. Device and method for extraction and analysis of nucleic acids from biological samples
KR100837401B1 (ko) * 2006-08-21 2008-06-12 삼성전자주식회사 비평면 형상의 고체 지지체를 이용하여 미생물로부터핵산을 분리하는 방법,상기 분리된 핵산을 주형으로 하여핵산을 증폭하는 방법 및 상기 고체 지지체를 포함하는핵산 분리 및 증폭 장치
US7919278B2 (en) 2006-08-21 2011-04-05 Samsung Electronics Co., Ltd. Method of amplifying nucleic acid from a cell using a nonplanar solid substrate
US8158411B2 (en) 2006-08-21 2012-04-17 Samsung Electronics Co., Ltd. Method of separating microorganism using nonplanar solid substrate and device for separating microorganism using the same
KR100813265B1 (ko) * 2006-08-21 2008-03-13 삼성전자주식회사 비평면 형상의 고체 지지체를 이용하여 미생물로부터핵산을 증폭하는 방법
KR100813264B1 (ko) * 2006-08-21 2008-03-13 삼성전자주식회사 비평면 형상의 고체 지지체를 이용하여 미생물로부터핵산을 증폭하는 방법
WO2008035991A2 (en) * 2006-09-19 2008-03-27 Michael Ronald Cook A nucleic acid extraction method
GB2445441B (en) 2006-09-26 2010-06-30 Ge Healthcare Bio Sciences Nucleic acid purification method
WO2008060604A2 (en) 2006-11-14 2008-05-22 Handylab, Inc. Microfluidic system for amplifying and detecting polynucleotides in parallel
WO2008061165A2 (en) * 2006-11-14 2008-05-22 Handylab, Inc. Microfluidic cartridge and method of making same
US8999636B2 (en) * 2007-01-08 2015-04-07 Toxic Report Llc Reaction chamber
GB0701253D0 (en) 2007-01-23 2007-02-28 Diagnostics For The Real World Nucleic acid amplification and testing
CA2629589C (en) 2007-04-20 2016-03-29 F.Hoffmann-La Roche Ag Isolation and purification of nucleic acid molecules with a solid phase
US20090017460A1 (en) * 2007-06-15 2009-01-15 Wyeth Differential expression profiling analysis of cell culture phenotypes and uses thereof
US20100294665A1 (en) * 2007-07-12 2010-11-25 Richard Allen Method and system for transferring and/or concentrating a sample
US8105783B2 (en) 2007-07-13 2012-01-31 Handylab, Inc. Microfluidic cartridge
US9186677B2 (en) 2007-07-13 2015-11-17 Handylab, Inc. Integrated apparatus for performing nucleic acid extraction and diagnostic testing on multiple biological samples
CA2693654C (en) 2007-07-13 2018-02-13 Handylab, Inc. Polynucleotide capture materials, and methods of using same
US8287820B2 (en) 2007-07-13 2012-10-16 Handylab, Inc. Automated pipetting apparatus having a combined liquid pump and pipette head system
US8182763B2 (en) 2007-07-13 2012-05-22 Handylab, Inc. Rack for sample tubes and reagent holders
US9618139B2 (en) 2007-07-13 2017-04-11 Handylab, Inc. Integrated heater and magnetic separator
US10125388B2 (en) 2007-10-31 2018-11-13 Akonni Biosystems, Inc. Integrated sample processing system
WO2009086215A2 (en) * 2007-12-21 2009-07-09 Wyeth Pathway analysis of cell culture phenotypes and uses thereof
GB0814570D0 (en) * 2008-08-08 2008-09-17 Diagnostics For The Real World Isolation of nucleic acid
KR101015502B1 (ko) * 2008-09-09 2011-02-22 삼성전자주식회사 제1 pH에서 양전하 및 제2 pH에서 음전하를 띠는 화합물 및 그를 이용하여 핵산을 분리하는 방법
WO2010031007A2 (en) 2008-09-12 2010-03-18 Genvault Corporation Matrices and media for storage and stabilization of biomolecules
US8361716B2 (en) * 2008-10-03 2013-01-29 Pathogenetix, Inc. Focusing chamber
US20100204462A1 (en) 2008-10-13 2010-08-12 Thomas Walter Pipette tip with separation material
DE102008063003A1 (de) * 2008-12-23 2010-06-24 Qiagen Gmbh Nukleinsäureaufreinigungsverfahren
DE102008063001A1 (de) 2008-12-23 2010-06-24 Qiagen Gmbh Nukleinsäureaufreinigungsverfahren
US9464319B2 (en) 2009-03-24 2016-10-11 California Institute Of Technology Multivolume devices, kits and related methods for quantification of nucleic acids and other analytes
US9447461B2 (en) 2009-03-24 2016-09-20 California Institute Of Technology Analysis devices, kits, and related methods for digital quantification of nucleic acids and other analytes
KR101796906B1 (ko) 2009-03-24 2017-11-10 유니버시티 오브 시카고 반응을 수행하기 위한 방법
US10196700B2 (en) 2009-03-24 2019-02-05 University Of Chicago Multivolume devices, kits and related methods for quantification and detection of nucleic acids and other analytes
EP2256195A1 (de) * 2009-05-12 2010-12-01 Qiagen GmbH Nukleinsäureaufreinigungsverfahren
IN2012DN03431A (de) 2009-09-21 2015-10-23 Akonni Biosystems
JP2013513400A (ja) * 2009-12-14 2013-04-22 ベティ ウー 核酸物質を分離する方法および物質
KR101878749B1 (ko) 2010-03-05 2018-07-17 삼성전자주식회사 표적 세포의 분리 방법 및 키트
CN103540518B (zh) 2010-07-23 2015-07-08 贝克曼考尔特公司 化验盒
CA3082652A1 (en) 2011-04-15 2012-10-18 Becton, Dickinson And Company Scanning real-time microfluidic thermocycler and methods for synchronized thermocycling and scanning optical detection
CN103764827B (zh) * 2011-07-04 2018-04-24 恰根有限公司 可用于分离和/或纯化核酸的试剂
CN113388605A (zh) 2011-09-26 2021-09-14 凯杰有限公司 用于分离细胞外核酸的快速方法
DK2761305T3 (da) 2011-09-30 2017-11-20 Becton Dickinson Co Forenet reagensstrimmel
EP2771462A4 (de) * 2011-10-27 2015-04-08 Ge Healthcare Bio Sciences Ab Aufreinigung von nukleinsäuren
EP2773892B1 (de) 2011-11-04 2020-10-07 Handylab, Inc. Vorrichtung zur vorbereitung von polynukleotidproben
CN104053997B (zh) 2011-11-07 2016-12-21 贝克曼考尔特公司 用于处理样本的系统和方法
WO2013070740A1 (en) 2011-11-07 2013-05-16 Beckman Coulter, Inc. Aliquotter system and workflow
WO2013070754A1 (en) 2011-11-07 2013-05-16 Beckman Coulter, Inc. Robotic arm
BR112014011046A2 (pt) 2011-11-07 2017-06-13 Beckman Coulter, Inc. fluxo de trabalho e sistema de centrífuga
KR20140091033A (ko) 2011-11-07 2014-07-18 베크만 컬터, 인코포레이티드 검체 컨테이너 검출
US8973736B2 (en) 2011-11-07 2015-03-10 Beckman Coulter, Inc. Magnetic damping for specimen transport system
RU2658773C2 (ru) 2012-02-03 2018-06-22 Бектон, Дикинсон Энд Компани Система и способ выполнения автоматизированных тестов над множеством биологических проб
US8685708B2 (en) 2012-04-18 2014-04-01 Pathogenetix, Inc. Device for preparing a sample
US9822356B2 (en) 2012-04-20 2017-11-21 California Institute Of Technology Fluidic devices and systems for sample preparation or autonomous analysis
US9808798B2 (en) 2012-04-20 2017-11-07 California Institute Of Technology Fluidic devices for biospecimen preservation
US9803237B2 (en) 2012-04-24 2017-10-31 California Institute Of Technology Slip-induced compartmentalization
EP2891716B1 (de) 2012-08-28 2018-03-28 Biocube System Inc. Poröse festphase zur schnellen isolierung biologischer moleküle für eine nukleinsäureamplifizierungsreaktion aus biologischen proben und verwendung davon
US9719082B2 (en) * 2013-10-31 2017-08-01 General Electric Company Substrates and associated methods for elution of nucleic acids
WO2015199423A1 (ko) * 2014-06-24 2015-12-30 (주)바이오니아 자성 입자를 이용한 핵산 분리 방법
CN104513819B (zh) * 2014-12-17 2020-05-05 吉林大学 一种选择性提取dna的方法
AU2016277476B2 (en) 2015-06-10 2022-07-21 Qiagen Gmbh Method for isolating extracellular nucleic acids using anion exchange particles
KR101696549B1 (ko) * 2015-07-31 2017-01-13 전북대학교산학협력단 수소이온농도 대응 검체 스왑 장치
KR102190922B1 (ko) * 2015-09-01 2020-12-14 삼성전자주식회사 핵산 분리 방법
WO2017162518A1 (en) 2016-03-19 2017-09-28 Qiagen Gmbh Stabilization of rna
US11161107B2 (en) 2016-05-25 2021-11-02 Integrated Micro-Chromatography Systems, Inc. Dispersive pipette extraction system for purification of large biomolecules
CN106520522A (zh) * 2016-12-06 2017-03-22 厦门华厦学院 一种dna萃取装置及方法
EP3502274A1 (de) * 2017-12-22 2019-06-26 Attomol GmbH Probenträger und verfahren zu dessen herstellung
CN108660074B (zh) * 2018-05-28 2022-04-29 嘉兴市艾科诺生物科技有限公司 核酸提取pcr扩增检测一体化解决方案
JP7421469B2 (ja) 2019-01-25 2024-01-24 積水化学工業株式会社 核酸の単離方法、核酸の単離キット、及び検査チップ
JP2020124129A (ja) * 2019-02-01 2020-08-20 積水化学工業株式会社 核酸の単離方法及び核酸単離用デバイス
CN110129314B (zh) * 2019-04-24 2021-04-13 合肥欧创基因生物科技有限公司 一种氨基酸缓冲液及血浆游离dna提取试剂盒
WO2021055084A1 (en) * 2019-09-18 2021-03-25 Apostle, Inc. Apparatuses systems and methods for enrichment and separation of nucleic acids by size
EP4077659A1 (de) 2019-12-16 2022-10-26 QIAGEN GmbH Anreicherungsverfahren
WO2022263500A1 (en) 2021-06-17 2022-12-22 Qiagen Gmbh Method for isolating non-vesicular mirna

Family Cites Families (46)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3797202A (en) * 1971-08-27 1974-03-19 Gen Electric Microporous/non-porous composite membranes
US4055469A (en) * 1976-12-10 1977-10-25 Eastman Kodak Company Purification of microbial enzyme extracts using synthetic polyelectrolytes
US4843012A (en) * 1986-09-17 1989-06-27 Genetics Institute, Inc. Novel composition for nucleic acid purification
DE3639949A1 (de) * 1986-11-22 1988-06-09 Diagen Inst Molekularbio Verfahren zur trennung von langkettigen nukleinsaeuren
US5599667A (en) * 1987-03-02 1997-02-04 Gen-Probe Incorporated Polycationic supports and nucleic acid purification separation and hybridization
US4921805A (en) * 1987-07-29 1990-05-01 Life Technologies, Inc. Nucleic acid capture method
CA1297432C (en) * 1987-07-29 1992-03-17 Gulilat Gebeyehu Nucleic acid capture reagent
US4908318A (en) * 1987-09-04 1990-03-13 Integrated Genetics, Inc. Nucleic acid extraction methods
US4923978A (en) * 1987-12-28 1990-05-08 E. I. Du Pont De Nemours & Company Process for purifying nucleic acids
US5234809A (en) * 1989-03-23 1993-08-10 Akzo N.V. Process for isolating nucleic acid
US5334499A (en) * 1989-04-17 1994-08-02 Eastman Kodak Company Methods of extracting, amplifying and detecting a nucleic acid from whole blood or PBMC fraction
US5124444A (en) * 1989-07-24 1992-06-23 Microprobe Corporation Lactam-containing compositions and methods useful for the extraction of nucleic acids
US5128247A (en) * 1989-08-14 1992-07-07 Board Of Regents, The University Of Texas System Methods for isolation of nucleic acids from eukaryotic and prokaryotic sources
US5433847A (en) * 1989-11-01 1995-07-18 Board Of Supervisors Of Louisiana State University And Agricultural And Mechanical College Radial flow chromatography
US5641628A (en) * 1989-11-13 1997-06-24 Children's Medical Center Corporation Non-invasive method for isolation and detection of fetal DNA
IT1240870B (it) * 1990-02-14 1993-12-17 Talent Procedimento per l'estrazione e la purificazione di dna genomico umano
AU8951191A (en) * 1990-10-29 1992-05-26 Dekalb Plant Genetics Isolation of biological materials using magnetic particles
US5654179A (en) * 1990-11-14 1997-08-05 Hri Research, Inc. Nucleic acid preparation methods
US5204246A (en) * 1990-12-26 1993-04-20 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Dna isolation method
US6051380A (en) * 1993-11-01 2000-04-18 Nanogen, Inc. Methods and procedures for molecular biological analysis and diagnostics
US5710028A (en) * 1992-07-02 1998-01-20 Eyal; Nurit Method of quick screening and identification of specific DNA sequences by single nucleotide primer extension and kits therefor
WO1995027718A2 (en) * 1994-04-08 1995-10-19 Hybridon, Inc. Purification of oligodeoxynucleotide phosphorothioates using anion exchange chromatography
US5622822A (en) * 1994-09-13 1997-04-22 Johnson & Johnson Clinical Diagnostics, Inc. Methods for capture and selective release of nucleic acids using polyethyleneimine and an anionic phosphate ester surfactant and amplification of same
US5582988A (en) * 1994-09-15 1996-12-10 Johnson & Johnson Clinical Diagnostics, Inc. Methods for capture and selective release of nucleic acids using weakly basic polymer and amplification of same
US5705628A (en) * 1994-09-20 1998-01-06 Whitehead Institute For Biomedical Research DNA purification and isolation using magnetic particles
US5652348A (en) * 1994-09-23 1997-07-29 Massey University Chromatographic resins and methods for using same
US5660984A (en) * 1994-12-09 1997-08-26 Davis; Thomas E. DNA isolating apparatus comprising a non-porous DNA binding, anion exchange resin and methods of use thereof
US5631146A (en) * 1995-01-19 1997-05-20 The General Hospital Corporation DNA aptamers and catalysts that bind adenosine or adenosine-5'-phosphates and methods for isolation thereof
US5612473A (en) * 1996-01-16 1997-03-18 Gull Laboratories Methods, kits and solutions for preparing sample material for nucleic acid amplification
US5981735A (en) * 1996-02-12 1999-11-09 Cobra Therapeutics Limited Method of plasmid DNA production and purification
SE9600590D0 (sv) * 1996-02-19 1996-02-19 Pharmacia Biotech Ab Sätt för kromatografisk separation av peptider och nukleinsyra samt ny högaffin jonbytesmatris
US5916746A (en) * 1996-05-09 1999-06-29 Kirkegaard & Perry Laboratories, Inc. Formazan-based immunoassay
US5981235A (en) * 1996-07-29 1999-11-09 Promega Corporation Methods for isolating nucleic acids using alkaline protease
JP3793287B2 (ja) * 1996-08-22 2006-07-05 ペンタックス株式会社 プラスミドdnaの単離方法
CA2214495C (en) * 1996-09-25 2002-02-05 Daniel L. Woodard Hydrated zirconium silicate composition for purification of nucleic acids
US6060246A (en) * 1996-11-15 2000-05-09 Avi Biopharma, Inc. Reagent and method for isolation and detection of selected nucleic acid sequences
US5770712A (en) * 1997-03-14 1998-06-23 Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. Crosslinked hydrogel beads from chitosan
EP0897978A3 (de) * 1997-08-22 2001-10-17 Becton, Dickinson and Company Zirkoniumoxyd und verwandten Verbindungen zur Reinigung von Nukleinsäuren
JP4304348B2 (ja) * 1997-09-22 2009-07-29 独立行政法人理化学研究所 Dnaの単離方法
DE19743518A1 (de) * 1997-10-01 1999-04-15 Roche Diagnostics Gmbh Automatisierbare universell anwendbare Probenvorbereitungsmethode
US7078224B1 (en) * 1999-05-14 2006-07-18 Promega Corporation Cell concentration and lysate clearance using paramagnetic particles
US6194562B1 (en) * 1998-04-22 2001-02-27 Promega Corporation Endotoxin reduction in nucleic acid purification
US6534262B1 (en) * 1998-05-14 2003-03-18 Whitehead Institute For Biomedical Research Solid phase technique for selectively isolating nucleic acids
WO2000044928A2 (en) * 1999-01-27 2000-08-03 Halaka Folim G Materials and methods for the purification of polyelectrolytes
US6310199B1 (en) * 1999-05-14 2001-10-30 Promega Corporation pH dependent ion exchange matrix and method of use in the isolation of nucleic acids
US6270970B1 (en) * 1999-05-14 2001-08-07 Promega Corporation Mixed-bed solid phase and its use in the isolation of nucleic acids

Also Published As

Publication number Publication date
KR20010032806A (ko) 2001-04-25
NO315323B1 (no) 2003-08-18
CN1281462A (zh) 2001-01-24
JP2004501054A (ja) 2004-01-15
ES2301581T3 (es) 2008-07-01
KR20050088164A (ko) 2005-09-01
DE69839133D1 (de) 2008-03-27
AU755342B2 (en) 2002-12-12
NO20002540D0 (no) 2000-05-16
DE69805649T2 (de) 2002-12-05
DK1036082T3 (da) 2002-08-12
ATE218140T1 (de) 2002-06-15
ATE386044T1 (de) 2008-03-15
BR9815569A (pt) 2001-10-09
US20030130499A1 (en) 2003-07-10
CA2318306A1 (en) 1999-06-17
AU1344799A (en) 1999-06-28
EP1234832A2 (de) 2002-08-28
CN1230440C (zh) 2005-12-07
HK1034520A1 (en) 2001-10-26
JP2010162037A (ja) 2010-07-29
WO1999029703A3 (en) 1999-08-26
EP1036082B1 (de) 2002-05-29
EP1234832A3 (de) 2003-08-13
ES2177093T3 (es) 2002-12-01
WO1999029703A2 (en) 1999-06-17
NO20002540L (no) 2000-07-07
EP1036082A2 (de) 2000-09-20
EP1234832B1 (de) 2008-02-13
PT1036082E (pt) 2002-10-31
DE69805649D1 (de) 2002-07-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69839133T2 (de) Isolierung von Nukleinsäuren
DE60107468T2 (de) Nucleinsäure-isolation
DE60012506T2 (de) Mischbett-festphase und dessen verwendung zur isolation von nukleinsäuren
DE69933186T2 (de) Methode zur Reinigung und Manipulation von Nukleinsäure mittels paramagnetischen Partikeln
DE60012318T2 (de) pH ABHÄNGIGE IONTAUSCHERMATRIX UND ANWENDUNGSVERFAHREN IN DER ISOLIERUNG VON NUKLEINSÄUREN
EP1121460B1 (de) Verfahren und mittel zur isolierung und reinigung von nukleinsäuren an oberflächen
DE102017204267B4 (de) Verfahren zur anreicherung von zellen aus einer probe und der nachfolgenden nukleinsäureisolierung aus diesen zellen
EP3168303A1 (de) Verfahren zur isolierung von nukleinsäuren, wobei die nukleinsäuren bei erhöhter temperatur an einer matrix immobilisiert werden
WO2012062753A1 (de) Verfahren und vorrichtung zur isolierung und reinigung von doppelsträngigen nukleinsäuren
WO2007065934A1 (de) Verfahren und testkit zur trennung, aufreinigung und wiedergewinnung von lang- und kurzkettigen nukleinsäuren
DE102016214909A1 (de) Tragbare Nukleinsäure-Extraktionsvorrichtung und Verfahren zu deren Verwendung
EP1274745A1 (de) Magnetische, silanisierte trägermaterialien auf basis von polyvinylalkohol
WO2006008085A1 (de) Vorrichtung und verfahren zur effizienteren isolierung von nukleinsäuren
DE60123828T2 (de) Lysat-klärung und nukleinsäureisolierung mit silanisierten silicamatrizes
DE69817000T2 (de) Verfahren zur schnellen isolierung von rns
EP1242816A2 (de) Chromatographiematerial und verfahren unter verwendung desselben
DE102004045332B3 (de) Verfahren zur Isolierung und Trennung von einzel- und doppelsträngigen Nucleinsäuren aus einer diese Nucleinsäuren enthaltenden Probe sowie Trennsäule zur Durchführung dieses Verfahrens
MXPA00005474A (en) Isolation of nucleic acids
WO2005066361A1 (de) Verfahren zur anreicherung und stabilisierung von dna-haltigen bestandteilen aus biologischen materialien
EP4298108A1 (de) Verfahren zur simultanen isolierung von nukleinsäuren aus sedimentierbaren und nicht sedimentierbaren biomolekülen in wasserproben
WO2021180628A1 (de) Verfahren zum behandeln einer biologischen probe und vorrichtung zum isolieren von zellen aus einem transportmedium
Monteiro et al. Essential guides for isolation/purification of nucleic acids

Legal Events

Date Code Title Description
8363 Opposition against the patent