DE19744768A1 - Klonierungsvektoren für die Herstellung von Adenoviralen Minimalviren - Google Patents
Klonierungsvektoren für die Herstellung von Adenoviralen MinimalvirenInfo
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Abstract
Die Erfindung betrifft Klonierungsvektoren für die Herstellung von Adenoviralen Minimalviren, umfassend DOLLAR A - zwei mehr als 8 Bp lange invariable Erkennungssequenzen für eine Restriktionsendonuklease, die die beiden adenoviralen terminalen invertierten Replikationssequenzen (ITR, inverted terminal repeats) flankieren, DOLLAR A - eine Multiple Klonierungsstelle zur Insertion von therapeutischen DNA-Fragmenten, in welche ggf. nichtkodierende chromosomale Säugetier-DNA einkloniert ist, DOLLAR A - eine Reportergenkassette, DOLLAR A - ein Verpackungssignal eines Bakteriophagen, DOLLAR A - zwei adenovirale terminale, invertierte Replikationssequenzen sowie ein adenovirales Verpackungssignal und DOLLAR A - ein bakterielles Plasmidrückgrat mit Replikationsursprung und bakteriellem Resistenzgen.
Description
Die Erfindung betrifft Klonierungsvektoren für die Herstellung
von Adenoviralen Minimalviren. Anwendungsgebiete der Erfindung
sind die Medizin und die pharmazeutische Industrie.
Adenovirale Vektoren sind effiziente Gentransfervehikel für die
somatische Gentherapie. Die Vektoren der ersten Generation
bestehen aus dem vollständigen Genom des Adenovirus Serotyp 5
(Ad5) mit Deletionen in der E1- und der E3-Region, in die
jeweils Fremdgene inseriert werden können. Diese Vektoren sind
in geeigneten Zellinien, welche die E1-Funktionen zur Verfügung
stellen, zur selbständigen Vermehrung befähigt. Aufgrund der
verbleibenden viralen kodierenden Sequenzen haben solche
Vektoren eine maximale Transportkapazität von ca. 8 Kb Fremd-
DNA. Restexpression adenoviraler Gene scheint maßgeblich für
die immunologische Eliminierung transduzierter Zellen in vivo,
und damit auch für die zeitliche Begrenzung der
Transgenesxpression und der entsprechenden therapeutischen
Effekte verantwortlich zu sein (Yang, Y. et al., 1994, Cellular
immunity to viral antigens limits E1-deleted for gene therapy,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91, 4401-4411).
Ein vielversprechender Ansatz zur Erhöhung der
Transportkapazität bei gleichzeitiger Reduktion der
Immunogenität ist die Auslagerung aller kodierenden
adenoviralen Genomabschnitte aus dem therapeutischen Vektor
(Chen, H.H. et al., 1997, Persistence in muscle of an
adenoviral vector that lacks all viral genes, Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 94, 1645-50). Zur Vermehrung und Verpackung solcher
sogenannter Adenoviraler Minimalviren, die neben dem zu
transportierenden therapeutischen Fremdgen nur noch die kurzen
Signalsequenzen für die virale Replikationsmaschinerie
(invertierte terminale Replikationssequenzen, engl. inverted
terninal repeats, ITRs) sowie für die Verpackung in virale
Hüllen (engl. packaging signal, PS) enthalten, sind auf
Helferviren beruhende Systeme bereits beschrieben (Parks, R.J.
et al., 1996, A helper-dependent adenovirus vector system:
removal of helper virus by cre-mediated excision of the viral
packaging signal, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93: 13565-13570)
und werden derzeit weltweit weiterentwickelt. Aufgrund der
Größe der Konstrukte, die besondere Anforderungen an die
Klonierungsstrategien stellt, ist die Klonierung von
Minimalviren derzeit ein aufwendiger und zeitraubender Prozeß.
Ein Vektor zur Minimalvirusherstellung, aus dem nach Insertion
therapeutischer Expressionkassetten Minimalviren hergestellt
werden können, ist bereits beschrieben (Hardy, et al., 1997,
Construction of adenovirus vectors through cre-lox
recombination, J. Virol. 71, 1842-1849). In diesem wurde jedoch
im Austausch gegen die adenoviralen kodierenden Sequenzen DNA
des Phagen Lambda eingebaut, die nach dem heutigen
Kenntnisstand destabilisierend auf das Adenovirale
Minimalvirusgenom wirkt. Ferner schränkt der dort gewählte
Mechanismus zur Virusentstehung die Auswahl der Transgene ein.
Außerdem können die mit diesem System erzeugten Minimalviren
nur in vitro eingesetzt werden, da ein stark immunogenes
Reporterenzym verwendet wurde.
Die Aufgabe der Erfindung besteht darin, ein Klonierungssystem
bereitzustellen, mit dem die Herstellung Adenoviraler
Minimalviren vereinfacht wird und neue Komponenten einzufügen,
die den Einsatz dieser Vektoren in vitro und in vivo erlauben.
Die Aufgabe wird gemäß den Ansprüchen realisiert.
Erfindungsgemäß werden im folgenden zwei Konstrukte (pMV und
pMVX) vorgestellt, mit denen eine wesentlich vereinfachte und
beschleunigte Herstellung rekombinanter Adenoviren des
Minimalvirustyps möglich ist.
Die Klonierung der Adenoviralen Minimalviren wurde hier
vereinfacht durch die Verwendung der Cosmidklonierung (siehe
C.1.4.). Der hier geschaffene Mechanismus zur Virusentstehung
schränkt die Transgenwahl nicht ein (siehe C.1.3.). Darüber
hinaus wurde ein neuartiges Titerungssystem konstruiert, das
die in-vivo-Anwendung der Adenoviralen Minimalviren
erlaubt (siehe C.1.5.2.). Zudem enthält pMVX ein Fragment
chromosomaler humaner DNA als virales Rückgrat zur Verbesserung
der Stabilität (siehe C.2.6.1.) und der Flexibilität bei der
Wahl der einzubauenden Fremd-DNA (siehe C.2.6.2.). Beide
Vektoren sind mit allen bislang beschriebenen Helfersystemen
zur Vermehrung und Verpackung von Minimalviren kompatibel.
Das bakterielle Rückgrat des Plasmids stammt aus pBlueskript
und enthält neben dem Replikationsursprung ein Beta-
Lactamasegen zur Vermittlung einer Ampicillin-Resistenz. Das
Beta-Lactamasegen ermöglicht die Anwendung üblicher
Selektionsverfahren bei der Vermehrung von pMV und seiner
Derivate sowie deren Klonierung. Der Replikationsursprung von
pBlueskript unterliegt einer Multi-Kopien-Kontrolle in E.coli
und ermöglicht dadurch die präparative Vermehrung des
Minimalvirusvektors mit hoher Ausbeute in geeigneten E.coli-
Stämmen.
Das Plasmid enthält das 5'-ITR mit dem Verpackungssignal (die
ersten 514 Basenpaare (Bp) des Adenovirusgenoms) sowie das, 3'-
ITR (die letzten 162 Bp des Adenovirusgenoms). Dies sind die
minimal erforderlichen Signalsequenzen für die Erkennung des
Minimalvirusgenoms durch die Replikationsmaschinerie des
adenoviralen Helfervirus sowie die Verpackung der replizierten
Minimalvirusgenome in virale Capside.
Die Verwendung der Enden des Adenovirusgenoms zur Einbringung
der ITRs und des Verpackungssignals in Konstrukte zur
Minimalvirusherstellung ist zwingende Grundlage zur Herstellung
von Minimalviren und daher auch von anderen beschrieben.
Die Freisetzung der ITRs ermöglicht ihre effektive Erkennung
durch den Replikationsapparat. Die 18 Bp lange
Erkennungssequenz vermittelt die höchste Spezifität für die
Freisetzung der Enden und gleichzeitig höchste Flexibilität bei
der Wahl der transgenen Sequenzen. Eine 18 Bp-Sequenz tritt
statistisch nur einmal in 6,8 × 1011 Hasenpaaren auf, das
menschliche Genom als Quelle potentieller Transgene enthält nur
ca. 3 × 109 Basenpaare. Es ist damit praktisch auszuschließen,
daß in einem gewünschten Transgen eine solche Erkennungssequenz
auftritt, die mit dem Freisetzungsmechanismus interferieren
würde.
Gezielt neben den ITRs eingebrachte Restriktionsschnittstellen
für selten schneidende Restriktionsenzyme haben auch Hardy et
al. (1997) beschrieben. Zur Freisetzung der ITRs werden hier
Schnittstellen für die Restriktionsendonuklease SfiI verwendet.
Dieses Enzym hat aber eine nur 8 Bp lange spezifische
Erkennungssequenz. Das Auftreten von Schnittstellen in der
gewünschten Transgenkassette kann mit diesem System nicht
ausgeschlossen werden kann.
Minimalvirusgenome besitzen die größte Stabilität, wenn ihre
Genomgröße der des Wildtyp-Adenovirus (ca. 36 Kilobasenpaare
(Kb)) möglichst nahe kommt. In diesem Größenbereich sind die
klassischen Klonierungsverfahren sehr ineffizient und
fehlerbehaftet.
Durch das cos-Signal erhält das Konstrukt die Eigenschaften
eines Cosmidvektors. Die Verwendung von Cosmidklonierungs
techniken ermöglicht eine hocheffiziente und größenselektierte
Konstruktion rekombinanter Minimalvirusgenome. Die Größen
selektion ergibt sich dabei aus der Verpackungskapazität des
Lambda-Phagen, die nach Abzug des bakteriellen Teils im Plasmid
genau dem als stabil geltenden Minimalvirus-Größenbereich von
ca. 25-38 Kb (Mitani, K. et al., 1995, Rescue, propagation, and
partial purification of a helper virus-dependent adenovirus
vector, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92, 3854-858) entspricht.
Die Cosmidklonierungstechnik wird bislang hauptsächlich zur
Herstellung von Genbanken eingesetzt. Ihre Anwendung zur
Vereinfachung der Minimalvirusklonierung ist neu.
Minimalviren sind nicht zur selbständigen Replikation
befähigt, daher kann die Titerung nicht nach den klassischen
Adenovirus-Titerungsverfahren erfolgen. Die Titerung von
Minimalviren, die aus pMV und dessen Derivaten erzeugt wurden,
kann über Reportergene erfolgen, die über enzymatische
Farbreaktionen oder immunologische Detektionsverfahren eine
direkte Visualisierung infizierter Zellen ermöglichen. Es
besteht die Auswahl zwischen zwei Reportersystemen, von denen
eines neuartig ist:
In pMV-BG ist eine konstitutive Beta-Galaktosidase-
Expressionskassette inseriert. Sie besteht aus dem Beta-
Galaktosidase-Gen unter Kontrolle des RSV-3'-LTRs (RSV-
Promoter) und einem nachgeschalteten Polyadenylierungssignal.
Die Visualisierung infizierter Zellen ist durch X-Gal-Färbung
möglich.
Das Beta-Galaktosidase-Reportersystem zur Visualisierung
viraler Infektion sowie zur Titerung von Viren ist ein
allgemeines Verfahren und wurde bei Gentransfervektoren
unterschiedlichster Art, einschließlich adenoviraler
Minimalviren, bereits eingesetzt.
Beta-Galaktosidase, ist in vivo ein starkes Immunogen. Zur
Erzeugung von Minimalviren, die für in vivo Anwendung
vorgesehen sind, wird in pMV-PLAP ein alternatives
Titerungssystem angeboten, das auf einem Reportergensystem
beruht, das in vivo nicht als Immunogen auftritt. Neben dem
Polyadenylierungssignal enthält die regulierte
Reportergenkassette zwei Komponenten, die für geringstmögliche
Immunogenität sorgen:
Die Reportergenexpression wird durch den tet-Promotor gesteuert, der derzeit als der am besten regulierbare Promotor in Säugerzellen gilt (Gossen, M.& Bujard, H., 1992, Tight control of gene expression in mammalian cells by tetracycline responsive promoters, Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 89, 5547-551). Der Promotor ist nur in Anwesenheit des tet-Transaktivators aktiv. In Säugerzellen, die den Transaktivator natürlicherweise nicht exprimieren, ist der Promotor weitgehend stumm. Zur Titerung haben wir eine Zellinie erzeugt, die durch Adenoviren gut infizierbar ist und den tet-Transaktivator konstitutiv exprimiert.
Die Reportergenexpression wird durch den tet-Promotor gesteuert, der derzeit als der am besten regulierbare Promotor in Säugerzellen gilt (Gossen, M.& Bujard, H., 1992, Tight control of gene expression in mammalian cells by tetracycline responsive promoters, Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 89, 5547-551). Der Promotor ist nur in Anwesenheit des tet-Transaktivators aktiv. In Säugerzellen, die den Transaktivator natürlicherweise nicht exprimieren, ist der Promotor weitgehend stumm. Zur Titerung haben wir eine Zellinie erzeugt, die durch Adenoviren gut infizierbar ist und den tet-Transaktivator konstitutiv exprimiert.
Als Reportergen ist PLAP (placenta-like alkaline phosphatase)
inseriert, ein gut charakterisiertes humanes Reportergen mit
etablierten Nachweisverfahren (Kumar-Singh, R. and Chamberlain,
J.S., 1996, Encapsidated adenovirus minichromosomes allow
deliwery and expression of a 14 Kb dystrophin cDNA to muscle
cells, Hum. Mol. Genet. 5, 913-921.), das im Menschen keine
bekannten antigenen Eigenschaften hat.
Bei diesem Titerungssystem sind sowohl die beiden Komponenten
(tet-Promotor und PLAP-Gen) als auch das zugrundeliegende
Prinzip einer Doppelstrategie zur Vermeidung einer Immunantwort
(regulierter Promotor, der im Zielorganismus stumm ist und
Verwendung eines Reportergens, das dem Genom des Zielorganismus
entstammt) zur Titerung von Gentherapievektoren generell
neuartig.
pMV enthält eine Multiple Klonierungstelle mit unikalen
Schnittstellen für mehrere Restriktionsenzyme zur erleichterten
Insertion von therapeutischen DNA-Fragmenten. Unter
Berücksichtigung der adenoviralen Verpackungskapazität können
Fragmentgrößen bis ca. 30 Kb inseriert werden. Vektoren zur
Minimalvirusherstellung mit einer Multiplen Klonierungsstelle
sind bislang nicht beschrieben.
Der Minimalvirusvektor pMVX besitzt alle Komponenten von pMV
außer der Multiplen Klonierungsstelle, an deren Stelle ein
Stück nichtkodierende DNA aus dem menschlichen Genom eingefügt
ist. Dieses verleiht dem Vektor neue Eigenschaften. Auch pMVX
wird mit zwei verschiedenen Reportergenkassetten angeboten.
C.2.1. siehe C.1.1.
C.2.2. siehe C.1.2.
C.2.3. siehe C.1.3.
C.2.4. siehe C.1.4.
C.2.5. Reportergenkassette
C.2.5.1. Konstitutive Beta-Galaktosidase-Reportergenkassette in pMVX-BG siehe C.1.5.1.
C.2.5.2. Regulierte PLAP-Reportergenkassette in pMVX-PLAP siehe C.1.5.2.
C.2.1. siehe C.1.1.
C.2.2. siehe C.1.2.
C.2.3. siehe C.1.3.
C.2.4. siehe C.1.4.
C.2.5. Reportergenkassette
C.2.5.1. Konstitutive Beta-Galaktosidase-Reportergenkassette in pMVX-BG siehe C.1.5.1.
C.2.5.2. Regulierte PLAP-Reportergenkassette in pMVX-PLAP siehe C.1.5.2.
pMVX enthält ein 27,4 Kb großes, humanes DNA-Fragment X-
chromosomalen Ursprungs, dessen Sequenz vollständig bekannt ist
und keine codierenden Regionen enthält. Unerwünschte Effekte
durch Genexpression aus dieser Komponente sind daher weitgehend
auszuschließen. Gegenüber pMV ergeben sich folgende zusätzliche
Eigenschaften:
Das chromosomale Fragment bildet das Rückgrat der von pMVX
ableitbaren Minimalviren. Bislang bestehende Systeme verwenden
z. B. DNA des Phagen Lambda als Rückgrat. Die mit Lambda-DNA
aufgefüllten Minimalviren sind, wie aus Kongreßberichten
bekannt, instabil, während die Insertion chromosomaler
Fragmente stabilisierend wirkt. Obwohl dies bekannt ist, sind
Vektoren zur Minimalviruserzeugung, die dieses systematisch
ausnutzten, indem verschiedene Transgenkassetten in konstanten
chromosomalen Kontext eingebaut werden können, bislang nicht
beschrieben.
Durch geeignete Schnittstellen für kommerziell erhältliche
Restriktionsendonukleasen können in pMVX mit einem
Klonierungschritt Kassetten in einem Größenbereich von bis zu
18 Kb inseriert werden, und gleichzeitig kann eine
Minimalvirus-Genomgröße eingehalten werden, die höchste
Stabilität des abgeleiteten Minimalvirus sichert. Diese
Flexibilität bezüglich der Größe der zu inserierenden Kassette
ist für Minimalvirus-Klonierungsvektoren neuartig.
Alle Enzyme liefern Enden, die entweder bereits glatt oder
durch Klenow-Polymerase auffüllbar sind. Eine Klonierung über
glatte DNA-Enden ist bei der hier zur Anwendung kommenden
Cosmidklonierung vorzuziehen.
In der Mitte des Rückgrats liegt eine unikale SnaBI-
Schnittstelle (erzeugt direkt glatte DNA-Enden). Hier können
unter Berücksichtigung der adenoviralen Verpackungskapazität
Expressionskassetten bis zu einer Größe von ca. 5 Kb in die
chromosomale Umgebung inseriert werden. Zur Insertion größerer
Kassetten stehen paarweise organisierte Schnittstellen zur
Verfügung. Je nach Größe der zu inserierenden Kassette kann die
Klonierung über XhoI/XhoI (um ca. 5 Kb erhöhte
Aufnahmekapazität), PmaCI/PmaCI bzw. PshAI/PshAI (um ca. 10 Kb
erhöhte Aufnahmekapazität) oder PmaCI/PshAI (um ca. 18 Kb
erhöhte Aufnahmekapazität) erfolgen. Ergebnis ist immer eine
vom chromosomalen Rückgrat oder Teilen desselben eingerahmte
Expressionskassette in einem Minimalvirusgenom mit der
erforderlichen Genomgröße. Durch Kombination der beschriebenen
Schnittstellen können auch Zwei- und Dreigenvektoren problemlos
konstruiert werden.
Die Einbettung der therapeutischen Kassette in den
chromosomalen Kontext führt durch verschiedene Mechanismen zu
effektiverem Gentransfer. Das ist vor allem darauf
zurückzuführen, daß die in den Adenoviralen Minimalviren
angewendete humane genomische DNA den Vektor nach Transfer in
die Zielzelle stabilisiert.
Von pMV und pMVX abgeleitete Minimalviren sind nach dem
derzeitigen Kenntnisstand ohne Einschränkung für das gesamte
Spektrum des adenoviralen Gentransfers einsetzbar. Sie erfüllen
die Sicherheitskriterien für gentherapeutische Vektoren und
sind mit allen derzeit beschriebenen Helfersystemen zur
Minimalvirusvermehrung kompatibel.
Meistens enthalten die bislang konstruierten Minimalviren als
therapeutische Expressionskassetten cDNA-Konstrukte, die in der
Regel durch virale Promotoren gesteuert werden. Diese
Konstrukte können unnatürlich hohe Expression des Transgenes
bedingen, die über den therapeutischen Rahmen hinaus geht und
die Zelle schädigen kann.
In die hier beschriebenen Minimalvirusvektoren lassen sich
komplette Gene in natürlicher chromosomaler Organisation mit
einer Gesamtgröße bis ca. 30 Kb (pMV) bzw. ca. 23 Kb (pMVX)
inklusive ihrer physiologischen Promotoren einsetzen, deren
Expression dann den zelleigenen Regulationsmechanismen
unterliegt. Schädigende Wirkungen der Überexpression lassen
sich so vermeiden.
Bei der Herstellung von therapeutischen Minimalviren mit den
hier beschriebenen Vektoren erfolgt klonales Arbeiten mit
homogenen Insertpopulationen. Werden dagegen inhomogene
Präparationen von DNA-Fragmenten (z. B. fragmentierte genomische
DNA) in pMV oder pMVX eingesetzt, so entstehen Cosmidbanken.
Werden diese zur Minimalvirusherstellung eingesetzt, entstehen
Virusbanken, die zur Expressionsanalyse von Genen eingesetzt
werden können.
Dieses könnte in Projekten zur Genomanalyse zur Anwendung
kommen, da hier Techniken zur systematischen Funktionsanalyse
der sequenzierten DNA-Stücke gesucht werden. Da bei der
Genomanalyse häufig DNA-Fragmente untersucht werden, die im
Bereich der Adenovirusverpackungskapazität liegen, wären
Adenoviren interessante Expressionsvehikel für diese
systematische Funktionsanalyse.
Adenoviren der ersten Generation wurden zur Herstellung von
transgenen Mäusen eingesetzt (Tsukui et al., 1996, Transgenesis
by adenovirus-mediated gene transfer into mouse zona-free eggs,
Nature Biotechnology 14, 982-985). Die Konstruktion der
entsprechenden homologen Rekombinationskonstrukte mit den hier
beschriebenen Vektoren liefert aufgrund der erheblich erhöhten
Aufnahmekapazität von Minimalviren für Fremd-DNA die
Möglichkeit zur Insertion längerer homologer Bereiche, was zu
erhöhter Rekombinationsfrequenz führen sollte. Zudem könnte die
Erzeugung transgener Tiere bei Spezies, deren genetische
Manipulation über die Es-Zell-Technologie derzeit noch nicht
möglich ist, durch eine virale Strategie unter Verwendung von
Minimalviren ermöglicht werden.
Die Erfindung soll nachfolgend am Beispiel der Klonierung des
Vektors pMVX-BG näher erläutert werden:
Die ITRs und das Verpackungssignal von Adenovirus Typ 5 (Ad5)
sowie die konstitutive Beta-Galaktosidase-Expressionskassette
wurden zunächst in das von der Firma Pharmacia vertriebenen
Plasmid pSL1190 kloniert.
Das 3'-ITR wurde mit den Starteroligonukleotiden AD5ITR1
(enthält als Verlängerung eine BglII-Schnittstelle) und AD5ITR3
(enthält als Verlängerung eine EcoRI-Schnittstelle) und wt-Ad5-
DNA als Matrize durch Polymerase-Kettenreaktion (PCR)
amplifiziert. Das resultierende 176-Bp-PCR-Produkt wurde mit
BglII und EcoRI verdaut und in die entsprechenden
Restriktionsschnittstellen in der Multiplen Klonierungsstelle
von pSL1190 inseriert.
Sequenz der verwendeten Starteroligonukleotide:
Das 5'-ITR mit dem angrenzenden Verpackungssignal von Ad5 wurde
mit den Starteroligonukleotiden AD5ITR1 (enthält als
Verlängerung eine terminale BglII-Schnittstelle) und AD5ITR2
(enthält als Verlängerung eine terminale Asp718-Schnittstelle)
und wt-Ad5-DNA als Matrize durch PCR amplifiziert. Das
resultierende 545-Bp-PCR-Produkt wurde mit BglII und EcoRI
verdaut und in die entsprechenden Restriktionsschnittstellen in
der Multiplen Klonierungsstelle von pSL1190 inseriert.
Sequenz der verwendeten Starteroligonukleotide:
Die konstitutive Beta-Galaktosidase-Kassette - bestehend aus
dem RSV-Promoter, dem Beta-Galaktosidase-Gen sowie dem SV40-
Polyadenylierungssignal - wurde aus pRSVBGSV40 (kloniert von
Herrn Peter Löser) durch Doppelverdau mit NruI und XbaI als
4230-Bp-Fragment freigesetzt und in die kompatiblen HpaI- und
AvrII-Restriktionsschnittstellen. in der Multiplen
Klonierungsstelle von pSLITRPS (vgl. 1.2) inseriert.
Ausgangsplasmid für die Konstruktion der Vectors pMVX-BG war -
neben den oben beschriebenen Plasmiden pSLITR (vgl. 1.1) und
pSLITR2BG (vgl. 1.3) - das von der Firma Stratagene vertriebene
Plasmid pBSKS-, auf dessen bakteriellem Rückgrat (Replikations
ursprung und Ampicillin-Resistengen) aufbauend die einzelnen
Komponenten inseriert wurden.
Das 3'-ITR wurde durch Doppelverdau mit EcoRI und Asp718 als
222 Bp-Fragment aus pSLITR freigesetzt und in die
entsprechenden Restriktionsschnittstellen des Polylinkers von
pBSKS- inseriert.
Durch Doppelverdau des Ausgangsplasmides pSLITRPSBG mit PstI
und BglII wurde ein 4780-Bp-Fragment freigesetzt, das das 5'-
ITR, das Verpackungssignal sowie eine direkt daran
anschließende konstitutive Beta-Galaktosidase-
Expressionskassette (bestehend aus RSV-Promoter, Beta-
Galaktosidase-Gen und SV40-Polyadenylierungssignal) enthält.
Dieses wurde über die entsprechenden Restriktionsschnittstellen
in die Multiple Klonierungsstelle von pBSITR inseriert.
In pMV-BG.PL liegen flankierend zu den ITRs unikale
Schnittstellen für BglII und Spel. Zur Insertion von
Schnittstellen für die Meganuklease I-SceI wurde das Plasmid
durch Doppelverdau mit BglII und SpeI in ein 2952 Bp-Fragment
(das bakterielle Rückgrat enthaltend) und ein 4965 Bp-Fragment
(die Beta-Galaktosidase-Kassette sowie die ITRs und das PS
enthaltend) gespalten. Die Fragmente wurden getrennt isoliert
und die 5'-überhängenden Enden des 2952-Bp-Fragments durch
Klenow-Polymerase zu glatten Enden aufgefüllt. Die gerichtete
Insertion der Meganukleaseschnittstellen erfolgte durch eine
Vier-Fragment-Ligation dieser beiden Fragmente mit zwei
synthetischen DNA-Verbindungsstücken, die die Erkennungssequenz
der Meganuklease enthalten sowie jeweils ein glattes und ein
überhängendes Ende (passend zu den glatten Enden des 2952-
Fragmentes bzw. zu den überhängenden BglII und SpeI-Enden des
4965-Bp Fragments) enthalten. Diese DNA-Verbindungsstücke
wurden durch Hybridisierung des Oligonukleotids ISceI-Rev mit
dem Oligonukleotid ISceI-BglII bzw. ISceI-SpeI erzeugt.
Sequenz der verwendeten Oligonukleotide:
Das Cos-Sequenzmotiv wurde aus dem Cosmid-Vektor pWE15 durch
Doppelverdau mit ClaI und AccI als 2367-Bp-Fragment entnommen
und in den unikalen NheI-Ort im bakteriellen Rückgrad von pMV-
Bg.MH inseriert. Da die Enden der verwendeten Enzyme nicht
kompatibel sind, wurden alle Fragmentenden mit Klenow-
Polymerase zu glatten Enden aufgefüllt und dann ligiert. Daraus
resultierten zwei Produkte mit unterschiedlichen
Insertionsorientierungen der Cos-Sequenz. Da die Sequenz
orientierungsunabhängig ist, wurde eine der beiden
Orientierungen willkürlich ausgewählt.
Das 27,4-kB-Fragment wurde aus einem von Dr. David Bauer, AG
Genomanalyse, IMB Jena, zur Verfügung gestellten Cosmid
(cos3H10) durch Verdau mit NgoMI freigesetzt. Durch Insertion
in die zu NgoMI kompatible AgeI-Restriktionsschnittstelle von
pMV-BG.COS wurde die humane genomische Sequenz zwischen dem 5-
ITR/PS und der Beta-Galaktosidase-Expressionskassette
inseriert.
Claims (14)
1. Klonierungsvektor für die Herstellung von Adenoviralen
Minimalviren, umfassend
- - zwei mehr als 8 Bp lange invariable Erkennungssequenzen für eine Restriktionsendonuklease, die die beiden adenoviralen terminalen invertierten Replikationssequenzen (ITR, inverted terminal repeats) flankieren,
- - eine Multiple Klonierungsstelle zur Insertion vor therapeutischen DNA-Fragmenten, in welche ggf. nichtkodierende chromosomale Säugetier-DNA einkloniert ist,
- - eine Reportergenkassette,
- - ein Verpackungssignal eines Bakteriophagen,
- - zwei adenovirale terminale, invertierte Replikationssequenzer sowie ein adenovirales Verpackungssignal und
- - ein bakterielles Plasmidrückgrat mit Replikationsursprung ung bakteriellem Resistenzgen.
2. Klonierungsvektor nach Anspruch 1, gekennzeichnet dadurch,
daß die Erkennungssequenzen für die Meganuklease I-Sce I
vorliegen.
3. Klonierungsvektor nach Anspruch 1, gekennzeichnet dadurch,
daß chromosomale Säugetier-DNA-Fragmente mit einer Größe von 15
bis 35 Kb verwendet werden.
4. Klonierungsvektor nach Anspruch 1 und 3, gekennzeichnet
dadurch, daß Fragmente aus humaner chromosomaler DNA verwendet
werden.
5. Klonierungsvektor nach Anspruch 1, 3 und 4, gekennzeichnet
dadurch, daß ein Fragment aus humaner X-chromosomaler DNA mit
mindestens 2 dualen Restriktionsschnittstellen verwendet wird.
6. Klonierungsvektor nach Anspruch 1, 3, 4 und 5,
gekennzeichnet dadurch, daß eine konstitutiv exprimierte Beta-
Galaktosidase-Reportergenkassette eingesetzt wird.
7. Klonierungsvektor nach Anspruch 1, gekennzeichnet dadurch,
daß eine reguliert exprimierte Reportergenkassette eingesetzt
wird.
8. Klonierungsvektor nach Anspruch 1 und 7, gekennzeichnet
dadurch, daß zur Regulation ein Promotor mit Tetracyclin-
Operator eingesetzt wird.
9. Klonierungsvektor nach Anspruch 1, gekennzeichnet dadurch,
daß ein Reportergen verwendet wird, dessen Produkt in
Zielorganismus nicht nachweisbar immunogen ist.
10. Klonierungsvektor nach Anspruch 1 und 9, gekennzeichnet
dadurch, daß ein Reportergen verwendet wird, das aus dem Genon
des Organismus entstammt, in dem die vom Klonierungsvektor
gebildeten Adenoviralen Minimalviren zur Anwendung kommen.
11. Klonierungsvektor nach Anspruch 1, 9 und 10, gekennzeichnet
dadurch, daß als Reportergen die humane Placentale Alkalische
Phosphatase verwendet wird.
12. Klonierungsvektor nach Anspruch 1, gekennzeichnet dadurch,
daß ein cos-Signal aus dem Phagen Lambda verwendet wird.
13. Klonierungsvektor pMVX-BG aus 37808 Bp nach einem der
Ansprüche 1 bis 12 gekennzeichnet durch die Sequenz gemäß E.3.,
die Bestandteil des Anspruchs ist.
14. Klonierungsvektor pMV gemäß Abb. 1, die Bestandteil
des Anspruchs ist.
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