DE1808834B2 - Stabilisiertes, wäßriges Präparat der Enzyme Protease, a -Amylase oder deren Gemische - Google Patents
Stabilisiertes, wäßriges Präparat der Enzyme Protease, a -Amylase oder deren GemischeInfo
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Description
(a) der Gehalt an aktivem Enzym 0,001 bis 1,0% beträgt und es
(b) 65 bis 97% Wasser,
(c) 2 bis 27% eines Stabilisierungsmittels in der zur Stabilisierung erforderlichen Menge, nämlich
Monohydroxyalkohole mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen Alkoxymonohydroxyalkohole der allgemeinen
Formel
R1-O-R2-OH
worin Ri einen Alkyl- oder einen Alkoxyalkylrest
mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen und 0 bis 1 Ätherbindungen und R2 einen Alkylenrest mit 1
bis 4 Kohlenstoffatomen bedeuten oder Diaikylglykoläther der allgemeinen Formel
R1O(CH2CH2O)1R2
worin R1 und R2 jeweils Alkylreste mit 1 bis
etwa 4 Kohlenstoffatomen und χ = 1 bis etwa 10 bedeuten, und
(d) 0 bis 15% eines nichtionischen oder zwitterionischen
Detergens enthält.
2. Präparat nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß es im Falle eines Gehaltes an
Λ-Amylase 2 bis 15% eines nichtionischen oder zwitterionischen Detergens enthält
3. Präparat nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Stabilisierungsmittel Methanol,
Äthanol, Isopropanol, Propanol, 3-Propoxypropanol, Diäthylenglykolmonobutyläther oder Äthylenglykoldimethyläther
ist.
4. Präparat nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
(a) der Gehalt an aktivem Enzym 0,01 bis 0,5% beträgt, und es
(b) 72 bis 95% Wasser,
(c) als Stabilisierungsmittel Methanol, Äthanol, Isopropanol, Propanol, 3-Propoxypropanol
oder Diäthylenglykolmonobutyläther, wobei das Methanol in Mengen von etwa 16% bis
27%, das Äthanol in Mengen von etwa 3 bis 5f 19%, das Propanol in Mengen von etwa 2 bis
8%, das Isopropanol in Mengen von etwa 4 bis 22%, das Propoxypropanol in Mengen von
etwa 8 bis 17% und der Diäthylenglykolmonobutyläther in Mengen von 8 bis 17% verwendet
werden, und
(d) 4 bis 10% eines nichtionischen oder zwitterionischen
Detergens enthält.
5. Präparat nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß sein pH-Wert zwischen 5,0 und 10,0
liegt.
6. Präparat nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß sein pH-Wert zwischen 6,5 und 8,5
liegt.
7. Präparat nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Protease eine alkalische Protease,
nämlich Subtilisin, BPN', Elastase, Keratinase,
4C.
55 Carboxypeptidase, Aminopeptidase, Aspergillopeptidase A und Aspergillopeptidase B, ist.
8. Präparat nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Stabilisierungsmittel Methanol,
Äthanol oder Isopropanol ist, wobei das Methanol in Mengen von etwa 17 bis 25 Gew.-% des Präparates,
das Äthanol in Mengen von etwa 6 bis 18 Gew.-% des Präparates und das Isopropanol in Mengen von
etwa 9 bis etwa 20 Gew.-% des Präparates verwendet werden.
9. Präparat nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß es eine wirksame Menge eines
Konservierungsmittels enthält.
Die Erfindung betrifft ein stabilisiertes, wäßriges Präparat der Enzyme Protease. Λ-Amylase oder deren
Gemische, das dadurch gekennzeichnet ist, daß, bezogen auf das Gewicht des Präparates,
(a) der Gehalt an aktivem Enzym 0,001 bis 1,0% beträgt und es
(b) 65 bis 97% Wasser,
(c) 2 bis 27% eines Stabilisierungsmittels in der zur Stabilisierung erforderlichen Menge, nämlich Monohydroxyalkohole
mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen, A'koxymonohydroxyalkohole der allgemeinen
Formel
R1-O-R2-OH
worin Ri einen Alkyl- oder einen Alkoxyalkylrest
mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen und 0 bis 1 Ätherbindungen und R2 einen Alkylenrest mit 1 bis
4 Kohlenstoffatomen bedeuten oder Dialkylglykoläther der allgemeinen Formel
R1O(CH2CH2O)xR2
worin Ri und R2 jeweils Alkylreste mit 1 bis etwa 4
Kohlenstoffatomen und χ = 1 bis etwa 10 bedeuten, und
(d) 0 bis 15% eines nichtionischen oder zwitterionischen Detergens enthält.
Enzyme werden im allgemeinen in Form trockener Pulver gehandelt. Die pulverförmigen Enzympräparate
müssen vor hohen Temperaturen und hoher relativer Feuchtigkeit geschützt werden, andernfalls werden die
Enzyme rasch abgebaut und/oder desaktiviert (siehe z. B. Alcalase, Industriepublikation der Firma Novo
Industri A/S, Kopenhagen, Dänemark). Wäßrige Enzympräparate sind nicht allgemein verfügbar, da die
Enzyme in einem wäßrigen Milieu rasch abgebaut und/oder desaktiviert werden.
Es sind bereits Versuche durchgeführt worden, um Enzyme in wäßrigen Lösungen zu stabilisieren. Siehe
US-PS 32 96 094, in welcher vorgeschlagen wird, speziell hydrolysiertes und löslich gemachtes Kollagen
und Glycerin zur Stabilisierung wäßriger Lösungein von proteolytischen Enzymen zu verwenden. Diese Methode
der Stabilisierung der Enzyme erfordert jedoch große Mengen an Glycerin, z. B. 35 bis 60 Gew.-% der
gesamten Lösung und erhöht dadurch die Kosten der Enzymlösung erheblich.
Gemäß der US-PS 30 95 358 wird Sorbit zur Stabilisierung wäßriger Lösungen verwendet, die
Enzyme, wie Papain und Gemische aus Protease und Amylase, erhalten aus Bacillus subtilis, enthalten. Diese
Methode erfordert ebenfalls große Mengen (65 bis 90 Gew.-% einer 60%igen Sorbitlösung) des Stabilisierungsmittels
Sorbit. Das große Volumen an Sorbit, das zur Stabilisierung der Enzyme in wäßrigen Lösungen
erforderlich ist, wirkt als Verdünnungsmittel und trägt erheblich zu den Kosten des Präparates bei.
Die beiden vorgenannten Literaturstellen veranschaulichen die erheblichen Probleme, denen man sich
bei Versuchen zur Stabilisierung wäßriger Lösungen von Enzymen gegenübersieht:
(1) Unkosten und (2) außerordentliche Verdünnung des wäßrigen Produktes mit einem Stabilisierungsmittel.
Das erfindungsgemäße stabilisierte wäßrige Präparat der Enzyme Protease, «-Amylase oder deren Gemische
ermöglicht es, die Probleme zu meistern, denen man sich
aufgrund des Standes der Technik gegenübersieht Die trfindungsgemäß verwendeten Stabilisierungsmittel betragen
nur 2 bis 27%, bezogen auf das Gewicht des Enzympräparates. Diese Stabilisierungsmittel stehen zu
tragbaren Preisen bequem zur Verfügung. Die erfindungsgemäß eingesetzten Protease stabilisierenden
Verbindungen besitzen wertvolle Lösungsmitteleigenschaften und sind daher besonders erwünscht, wenn das
Präparat zur Anwendung in Wasch- und Reinigungsmitteln vorgesehen ist Die Alkohole, z. B. Äthanol, sind
auch ausgezeichnete Adstringentien und üben so eine wertvolle Funktion aus, wenn das erfindungsgemäße
Präparat als Mundwasser verwendet wird. Ein Zusatz der gegebenenfalls vorgesehenen nichtionischen oder
zwitterionischen Detergenskomponenten erhöht die Stabilität der Enzyme in dem wäßrigen Präparat,
verleiht ihm wünschenswerte oberflächenaktive Eigenschaften und erhöht die Reinigungskraft dieses Präparates.
In der Figur sind die stabilisierenden Wirkungen verschiedener Konzentrationen von erfindungsgemäßen
Stabilisierungsmitteln in einer wäßrigen Lösung dargestellt, die 1% Alcalase (6% kristallines Enzym) und
5% äthoxylierten Talgalkohol (1 Mol Talgalkohol, der mit 30 Mol Äthylenoxid äthoxyliert ist) enthält und auf
einen pH-Wert von pH 7,0 eingestellt ist Es ist zu ersehen, daß die bevorzugten Stabilisierungsmittel, d. h.
Methanol, Äthanol und Isopropanol verwendet werden können, um während langer Lagerzeiträume die
Enzymstabilität auf ein Maximum zu bringen.
In der Zeichnung ist auf der Ordinate die verbleibende Enzymaktivität nach 5wöchiger Lagerung bei einer
Temperatur von 38° C aufgetragen und auf der Abszisse der Prozentgehalt des Stabilisierungsmittels.
Körnige, enzymhaltige Detergensmischungen sind in Europa seit mehreren Jahren in Verwendung und
wurden in letzter Zeit auch in den Vereinigten Staaten von Amerika gebräuchlich. Diese enzymhaltigen körnigen
Detergensmischungen sind insbesondere bei der Entfernung von Flecken aus Geweben, festen Haushaltsgegenständen,
Böden und Wänden wirksam. Diese körnigen Detergensmischungen sind jedoch bei der
Verwendung in kleinem Maßstab, z. B. bei der Fleckenentfernung, unbequem zu handhaben.
Die oben beschriebenen Nachteile werden mit den erfindungsgemäßen Präparaten vermieden. Das erfindungsgemäße
wäßrige Präparat der Enzyme Protease, Λ-Amylase oder deren Gemische ist zweckmäßig als
Fleckentfernungsmittel, als Zusatz für Detergentien, als Wasch- und Reinigungsmittel oder als Mundwasser
verwendbar. Außerdem sind die Enzyme in den erfindungsgemäßen Präparaten während langer Lagerzeieen
stabil.
Dieses Präparat enthält drei wesentliche Hauptbestandteile: Wasser, aktive Enzyme und Stabilisierungsmittel.
Nichtionische oder zwitterionische Detergentien können den Präparaten als wahlweise zuzufügende
Komponenten zugesetzt werden. Diese Komponenten und die Anwendungsmengen derselben sind nachstehend
näher erläutert
Wasser stellt einen überwiegenden Anteil der erfindungsgemäßen Präparate dar und wird in Mengen
ίο von 65 bis 97 Gew.-% des Präparates und vorzugsweise
in Mengen von 72 bis 95% verwendet Entionisiertes Wasser wird zwar bevorzugt, doch ist dessen Anwendung
nicht zwingend.
Die Enzyme, die in wäßriger Lösung erfindungsgemaß stabilisiert werden, sind die alkalischen, neutralen und sauren Proteasen sowie a-Amylasen oder deren Gemische. Proteasen nach diesen Klassifikationen leiten sich im allgemeinen von Pilzen und Bakterien ab. Enzyme, die von pflanzlichen und tierischen Quellen stammen, können hier ebenfalls verwendet werden, sind aber nicht so bequem in die obigen alkalischen, neutralen und sauren Unterklassen einzuteilen. Diese Enzyme sind im pH-Bereich von etwa 3 bis 11 und bei Temperaturen im Bereich von etwa 4,4° C bis etwa 77° C aktiv. Optimale Aktivität dieser Proteasen zeigt sich im allgemeinen im pH-Bereich von etwa 5,0 bis 10 und vorzugsweise von 6,0 bis 9,5.
Die Enzyme, die in wäßriger Lösung erfindungsgemaß stabilisiert werden, sind die alkalischen, neutralen und sauren Proteasen sowie a-Amylasen oder deren Gemische. Proteasen nach diesen Klassifikationen leiten sich im allgemeinen von Pilzen und Bakterien ab. Enzyme, die von pflanzlichen und tierischen Quellen stammen, können hier ebenfalls verwendet werden, sind aber nicht so bequem in die obigen alkalischen, neutralen und sauren Unterklassen einzuteilen. Diese Enzyme sind im pH-Bereich von etwa 3 bis 11 und bei Temperaturen im Bereich von etwa 4,4° C bis etwa 77° C aktiv. Optimale Aktivität dieser Proteasen zeigt sich im allgemeinen im pH-Bereich von etwa 5,0 bis 10 und vorzugsweise von 6,0 bis 9,5.
Die Proteasen sind beim Abbau von Proteinschmutz besonders wirksam. Die Proteasen katalysieren die
Hydrolyse der Peptidbindung von Proteinen, Polypeptiden und verwandter Verbindungen. Auf diese Weise
werden freie Amino- und Carboxygruppen erhalten, und die langkettigen Proteinstrukturen werden zu verschiedenen
kürzeren Ketten verkleinert Diese kürzeren Ketten können leicht mit Wasser oder wäßrigen
Detergensmischungen aus deren Umgebung entfernt werden.
Die alkalischen Proteasen sind besonders bevorzugte Enzyme zur Verwendung im Rahmen der Erfindung.
Alkalische Proteasen, die zur Anwendung im Rahmen der Erfindung geeignet sind, umfassen Subtilisin, BPN',
Elastase, Keratinase, Carboxypeptidase, Aminopeptidase, Aspergillopeptidase A und Aspergillopeptidase B,
Substilisin und BPN' werden besonders bevorzugt verwendet. Die alkalischen Proteasen werden deswegen
im Rahmen der Erfindung insbesondere bevorzugt, da sie im pH-Bereich normaler Detergenskomponenten,
d. i. pH 7,5 bis pH 10,5, optimale Aktivität zeigen und die alkalischen Proteasen zeigen in den erfindungsgeinäßen
so Präparaten eine überraschende Stabilität
Die neutralen Proteasen, die im Rahmen der Erfindung verwendet werden können, umfassen Kollagenase,
Chymotrypsin und Trypsin und solche proteolytischen Enzyme, die aus Streptomycesspecies isoliert
sind. Sowohl Chymotrypsin als auch Trypsin zeigen im neutralen bis alkalischen Bereich optimale Aktivität.
Beispiele saurer Proteasen, die zur Verwendung im Rahmen der Erfindung geeignet sind, umfassen Pepsin,
Papain und Bromelin. Sowohl Papain ais auch Bromelin zeigen im sauren bis neutralen Bereich optimale
Aktivität.
Die Λ-Amylasen werden in den erfindungsgeinäßen Präparaten ebenfalls stabilisiert. Alle a-Amylasen
zeigen im sauren Bereich optimale Aktivität Die
b5 Λ-Amylasen sind spezie'l zum Abbau von Stärkemolekülen
gut geeignet, da sie in der Stärke die «-1.4-glykosidischen Bindungen angreifen. Die verbleibenden
kürzeren Ketten werden aus deren Umgebung
mit Wasser ader wäßrigen Lösungen der Detergentien leicht entfernt. Die «-Amylasen können aus tierischen
Quellen, Getreidekörnern, Bakterien oder Pilzquellen erhalten werden.
Im Handel erhältliche Enzymmischungen, die die oben beschriebenen Enzyme enthalten, sind für die
Anwendung im Rahmen der Erfindung geeignet. Diese handelsüblichen Enzymmischungen werden im allgemeinen
in trockener, pulverisierter Form gehandelt und enthalten etwa 2% bis 80% aktive Enzyme in
Kombination mit einem inerten, pulverförmigen Träger, wie Natrium- oder Calciumsulfat oder Natriumchlorid,
als restlichen, 20% bis 98% ausmachenden Bestandteil. Der Gehalt an aktivem Enzym in den handelsüblichen
Enzymmischungen ist das Ergebnis der angewendeten Herstellungsmethoden und steiit kein kritisches Merkmal
dar, solange das Endprodukt gemäß der Erfindung den angegebenen speziellen Enzymgehalt aufweist. Die
unlöslichen, inerten Materialien werden im allgemeinen aus dem erfindungsgemäßen Präparat entfernt, um ein
Präparat mit befriedigendem klarem Aussehen, das frei von Fällungen ist, zu liefern.
Besondere Beispiele von im Handel erhältlichen Enzymmischungen sind nachstehend angegeben, wobei
die Herstellerfirmen in Klammer beigefügt worden sind: Alcalase (Novo Industri, Kopenhagen, Dänemark);
Maxatase (Koninklijke Nederlandsche Gist-En Spiritusfabriek N. V, Delft, Niederlande); Protease B-4000 und
Protease AP (Schweizerische Ferment A. G., Basel, Schweiz); CRD-Protease (Monsato Company, St Louis,
Missouri); Viokase (VioBin Corporation, Monticello, Illinois); Pronase-P, Pronase-E, Pronase-AS und Pronase-AF
(sämtliche hergestellt von der Kaken-Chemical Company, Japan); Bioprase (Nagase & Co, Ltd, Osaka,
Japan); Rapidase P-2000 (Rapidase, Seclin, Frankreich); Takamine, Bromelain 1:10, HT proteolytisches Enzym
200, Enzym L-W und Λ-Amylase (Miles Chemical Company, Elkharl, Indiana, USA); Rhozyme Ρ-11-Κοη-zentrat,
Pectinol, Rhozyme PF, Rhozyme J-25 (Rohm & Haas, Philadelphia, Pennsylvania, USA); (Rhozyme PF
und J-25 haben Salz- und Maisstärketräger und stellen Proteasen mit Diastaseaktivität dar); Amprozyme 200
(Jacques Wolf & Company; ein Betrieb der Nopco Chemical Company, Newark, New Jersey, USA) und
Wallerstein 627-P (Wallerstein Company, Staten Island, New York).
CRD-Protease (auch bekannt als Monsanto DA-10)
ist eine brauchbare pulverförmige Enzymmischung. Die CRD-Protease wird angeblich durch Mutation eines
Bacillus subtilis erhalten. Es ist aus neutralen und alkalischen Proteasen und a-Amylase zusammengesetzt.
Die neutrale Protease hat ein Molekulargewicht von etwa 44 000 und enthält 1 bis 2 Atome Zink je
Molekül. Die CRD-Protease kann in wäßrigen Systemen, wie in jenen gemäß der Erfindung, verwendet
werden. Der Gehalt an aktivem Enzym CRD-Protease, auf Basis von Gew.-%, liegt im allgemeinen im Bereich
von etwa 20% bis 75%.
Pronase-P, Pronase-E, Pronase-AB und Pronase-AF
sind pulverförmige Enzymgemische, die auch mit Vorteil im Rahmen der Erfindung verwendet werden
können. Diese Enzyme werden der Kulturbrühe des Streptomyces Griseus erhalten, der für die Herstellung
von Streptomycin Verwendung findet Sie werden durch eine aufeinanderfolgende Behandlung in einer Harzsäule isoliert Die Hauptkomponente der Pronase ist eine
neutrale Protease, Streptomyces Griseus-Protease. Diese Enzymmischung enthält ein Calciumsalz als
Stabilisator und ist innerhalb eines weiten pH-Bereiches recht gut stabil, z. B. bei pH-Werten von 4 bis 10, und ist
innerhalb eines Temperaturbereiches von 10° C bis 66° C
ziemlich stabil.
Ein weiteres Enzymgemisch, das für die erfindungsgemäßen Präparate bevorzugt verwendet wird, ist
Alcalase (Novo Industri A/S, Kopenhagen, Dänemark), die als proteolytisches Enzympräparat beschrieben
wird, das durch Submersfermentation eines speziellen Stammes von Bacillus subtilis hergestellt wird. Die
primäre Enzymkomponente von Alcalase ist Subtilisin. Außer Proteasen enthält Alcalase geringe Mengen an
Λ-Amylase. Alcalase ist ein feines graues, freifließendes Pulver, das einen Gehalt an kristallinem aktiven
Enzymen von etwa 6% aufweist. Der Rest des Pulvers umfaßt in erster Linie Natriumsulfat, Calciumsulfat und
verschiedene inerte organische Trägermaterialien. Aicalase zeigt außergewöhnliche Stabilität in den erfindungsgemäßen
wäßrigen Präparaten.
Biophase ist ein pulverförmiges Enzymgemisch, das alkalische Proteasen (BPN') und und a-Amylasen
enthält Dieses Enzymgemisch kann mit oder ohne Verdünnungsmittel, wie Natrium- und Calciumsulfat,
erhalten werden.
Zur Erzielung bester Ergebnisse enthält das erfindungsgemäße Präparat vorzugsweise 0,01 bis etwa 0,5
Gew.-% aktive Enzyme, bezogen auf das Gewicht des Präparates. Wird eines der bevorzugten Enzymgemische
verwendet, so enthält das erfindungsgemäße Präparat vorzugsweise etwa 0,1% bis 4,0% des
Enzymgemisches, wie es in der im Handel vertriebenen Form erhältlich ist, z. B. mit etwa 2% bis 80% aktiven
Enzymen. Der Gehalt an aktivem Enzym des erfindungsgemäßen wäßrigen Enzymgemischs liegt jedenfalls,
wie oben angegeben, im Bereich zwischen 0,001 % undl%.
Die Stabilisierungsmittel, die die oben beschriebenen Enzyme stabilisieren, sind Monohydroxyalkohole mit 1
bis 4 Kohlenstoffatomen, Alkoxymonohydroxyalkohole oder Dialkylglykoläther. Besondere Beispiele geeigneter
Monohydroxyalkohole umfassen
Methanol, Äthanol, Propanol,
Isopropanol, Butanol und Isobutanol.
Alkoxymonohydroxyalkohole umfassen
Methanol, Äthanol, Propanol,
Isopropanol, Butanol und Isobutanol.
Alkoxymonohydroxyalkohole umfassen
Methoxymethanol, 2-Methoxyäthanol,
3-Methoxypropanol, 2-Methoxypropanol,
Äthoxymethanol, 2-Äthoxyäthanol,
3-Äthoxypropanol, 2-Äthoxypropanol,
Propoxymethanol, 2-Propoxyäthanol,
Äthoxymethanol, 2-Äthoxyäthanol,
3-Äthoxypropanol, 2-Äthoxypropanol,
Propoxymethanol, 2-Propoxyäthanol,
3-Propoxypropanol, 2-Propoxypropanol,
Butoxymethanol, 2-Butoxyäthanol,
3-Butoxypropanol, 2-Butoxypropano! und
Diäthylenglykolmonobutyläther.
Beispiele von Dialkylglykoläthern der allgemeinen Formel
Butoxymethanol, 2-Butoxyäthanol,
3-Butoxypropanol, 2-Butoxypropano! und
Diäthylenglykolmonobutyläther.
Beispiele von Dialkylglykoläthern der allgemeinen Formel
R1O(CH2CH2O)Jl2
worin Ri, R2 und χ die vorstehend angegebenen
Bedeutungen haben, sind
Äthylenglykoldimethyläther,
Äthylenglykoldiäthyläther,
Äthyienglykoldi-n-propyläther,
Diäthylenglykoldimethyläther,
Triäthylenglykoldimethyläther, der
Methyläther
von hexaoxyäthyleniertem Butanol oder der
Butyläther
von decaoxy-äthyleniertem ButanoL
Bevorzugte Stabilisierungsmittel zur Verwendung im Rahmen der Erfindung sind
Methanol, Äthanol, Isopropanol,
Propanol, 3-Propoxypropanol,
piäthylenglykolmonobutylätheroder
Äthylenglykoldimethyläther.
Propanol, 3-Propoxypropanol,
piäthylenglykolmonobutylätheroder
Äthylenglykoldimethyläther.
Methanol, Äthanol und Isopropanol werden zur Verwendung im Rahmen der Erfindung besonders
bevorzugt. Methanol und die von Methanol abgeleiteten Stabilisierungsmittel sollen wegen ihres giftigen Charakters
nicht in wäßrigen Enzympräparaten verwendet werden, die in den Körper gelangen können.
Die enzymstabilisierenden Verbindungen, wie sie
vorstehend beschrieben sind, können in den erfindungsgemäßen Präparaten in wirksamen Mengen verwendet
werden, die im Bereich von etwa 2 bis etwa 27 Gew.-°/o, bezogen auf das Gewicht des Präparates, liegen.
Um jedoch optimale Stabilisierungswirkungen während langer Lagerzeiten bei hohen Temperaturen zu
erhalten, sollen die Stabilisierungsmittel in den nachstehenden Anwendungsbereichen benutzt werden. Die
bevorzugten Anwendungsbereiche, wie sie in der nachstehenden Tabelle 1 für Methanol, Äthanol und
Isopropanol angegeben sind, verleihen den wäßrigen Enzympräparaten eine solche Haltbarkeit, daß etwa
50% Enzymaktivität nach 5wöchiger Lagerung bei 38° C vorliegt.
Stabilisierungsmittel | Anwendungsbereich | Bevorzugter Anwendungs |
in Gew.-% | bereich in Gew.-% | |
des Enzympräparates | des Enzympräparates | |
Methanol | 16-27 | 17-25 |
Äthanol | 3-19 | 6-18 |
Propanol | 2- 8 | - |
Isopropanol | 4-22 | 9-20 |
3-Propoxypropanol | 8-17 | - |
Diäthylenglykolmonobutyläther | 8-17 | _ |
Wasserlösliche nichtionische und zwitterionische Detergentien können als gegebenenfalls vorliegende
Bestandteile benutzt werden. Diese Detergentien erhöhen die Lagerstabilität der im Rahmen der
Erfindung ve· wendeten Enzyme und verbessern die Detergenskennmerkmale des Präparats signifikant.
Wegen dieser wertvollen Merkmale wird es bevorzugt, nichtionische und zwitterionische Detergentien den
wäßrigen Enzympräparaten gemäß der Erfindung, insbesondere denjenigen mit einem Gehalt an «-Amylase,
einzuverleiben. Die nichtionischen und zwitterionischen Detergentien werden in Mengen von 0 bis 15%,
vorzugsweise 4 bis 10%, bezogen auf das Gewicht des Enzympräparates, verwendet. Wird Λ-Amylase verwendet,
so werden 2 bis 15% des nichtionischen oder zwitterionischen Detergens bevorzugt.
Beispiele geeigneter nichtionischer Mittel zur Verwendung im Rahmen der Erfindung umfassen:
(1) Die Polyäthylenoxidkondensate von Alkylphenolen,
z. B. die Kondensationsprodukte von Alkalphenolen mit einer Alkylgruppe, die etwa 6 bis 12 Kohlenstoffatome
in gerader oder verzweigter Kette aufweist, mit Äthylenoxid, wobei dieses Athylenoxid in Mengen
vorliegt, die 5 bis 25 Mol Äthylenoxid je Mol Alkylphenol entsprechen. Der Alkylsubstituent in
solchen Verbindungen kann beispielsweise von polymerisiertem Propylen, Düsobutylen, Octen oder Nonen
abgeleitet sein.
(2) Solche nichtionischen synthetischen Detergentien, die aus der Kondensation von Athylenoxid mit den
Produkten stammen, die durch Umsetzung von Propylenoxid und Äthylendiamin erhalten werden. Beispiele
hierfür sind Verbindungen, die etwa 40 bis etwa 80 Gew.-% Polyoxyäthylen enthalten und ein Molekulargewicht von etwa 5000 bis etwa 11 000 haben und aus
der Umsetzung von Äthylenoxidgruppen mit einer hydrophoben Base stammen, die aus dem Reaktionsprodukt von Äthylendiamin und überschüssigem Propylenoxid besteht, wobei die Base ein Molekulargewicht in
der Größenordnung von 2500 bis 3000 aufweist; solche Verbindungen haben sich z. B. als zufriedenstellend
erwiesen.
(3) Das Kondensationsprodukt eines rviois aliphatischen
Alkohols mit 8 bis 22 Kohlenstoffatomen in entweder gerader oder verzweigter Kette mit 5 bis 40
Mol Äthylenoxid, z. B. ein Kokosnußalkohol-Äthylen-
oxid-Kondensat mit 5 bis 40 Mol Äthylenoxid je Mol Kokosnußalkohol, wobei die Kokosnußalkoholfraktion
10 bis 14 Kohlenstoff a tome aufweist.
(4) Unsubstituierte Amide und Monoäthanol- und Diäthanolamide von Fettsäuren, die Säurereste mit
etwa 8 bis etwa 22 Kohlenstoffatomen aufweisen. Diese Acylreste leiten sich üblicherweise von natürlich
vorkommenden Glyceriden (z. B. Kokosnußöl, Palmöl, Sojabohnenöl und Talg) ab, können aber auch
synthetischen Ursprungs sein (z. B. solche, die durch Oxydation von Erdöl oder durch Hydrieren von
Kohlenmonoxid nach dem Fischer-Tropach-Verfahren entstehen).
(5) Langkettige tertiäre Aminoxide der allgemeinen Formel R2
R'(OR*)n—N-^O
R3
worin R1 einen Alkylrest mit etwa 8 bis 22
Kohlenstoffatomen, R2 und R3 jeweils Methyl-, Äthyloder Hydroxyäthylreste, R4 Äthylen und π = 0 bis etwa
10 bedeuten. Der Pfeil in der Formel ist eine übliche Darstellung einer semipolaren Bindung. Spezielle
Beispiele der Aminoxiddetergentien umfassen: Dimethyldodecylaminooxid und Bis-(2-hydroxyäthyl)-dodecylaminoxid.
(6) Langkettige tertiäre Phosphinoxide der allgemeinen Formel
RR'R'T-* O,
worin R einen Alkyl-, Alkenyl- oder Monohydroxyalkylrest mit 10 bis 22 Kohlenstoffatomen in der Kettenlänge
und R' und R" jeweils Alkyl- oder Monohydroxyalkyl-
Gruppen mit 1 bis 3 Kohlenstoffatomen bedeuten. Der Pfeil in der Formel ist eine übliche Darstellung einer
semipolaren Bindung. Beispiele geeigneter Phosphinoxide sind in der US-Patentschrift 33 04 263 angegeben
und umfassen: Dimethyldodecylphosphinoxid und Bis- r>
(2-hydroxyäthyl)-dodecylphosphinoxid.
(7) Langkettige Sulfoxide der allgemeinen Formel
R5-S-R6 '"
worin R5 einen Alkylrest mit etwa 10 bis 22
Kohlenstoffatomen, 0 bis etwa 5 Ätherbindungen und 0 bis etwa 2 Hydroxylsubstituenten bedeutet, wobei
mindestens einer der Reste R5 einen Alkylrest darstellt,. r>
der 0 Atherbindungen und etwa 10 bis 18 Kchienstoffatome
aufweist, und worin R« einen Alkylrest mit 1 bis 3 Kohlenstoffatomen und 1 bis 2 Hydroxylgruppen ist.
Spezielle Beispiele dieser Sulfoxide sind: Dodecylmethylsulfoxid und 3-Hydroxytridecylmethylsulfoxid.
Die zwitterionischen synthetischen Detergentien, die erfindungsgemäß verwendet werden können, sind
allgemein Derivate aliphatischer quaternärer Ammonium-, Phosphonium- und Sulfonium-Verbindungen, in
welchen der aliphatische Rest geradkettig oder verzweigtkettig sein kann und worin einer der
aliphatischen Substituenten etwa 8 bis 22 Kohlenstoffutome enthält und einer eine anionische, wasserlöslichmachende
Gruppe aufweist, z. B.
Carboxy-, Sülfo-, Sulfate-, Phosphato- oder Phosphono-Gruppe.
Beispiele von Verbindungen, die unter diese Definition fallen, sind
3-(N,N-Dimethyl-N-hexadecylammonio)-
propan-1-sulfonatund
3-(N,N-Dimethyl-N-hexadecylammonio)-2-hydroxypropan-1
-sulfonat.
Hinsichtlich weiterer Beispiele zwitterionischer synthetischer Detergentien, siehe kanadische Patentschrift
7 08 147. Auf diese Angaben in der Literatur wird besonders Bezug genommen.
Mischungen verschiedener nichtionischer Detergentien oder Mischungen nichtionischer Detergentien und
zwitterionischer Detergentien können mit Vorteil im Rahmen der Erfindung verwendet werden.
Die verschiedenen Komponenten der erfindungsgemäßen Enzympräparate können in beliebiger Reihenfolge
vermischt werden.
Es wird jedoch bevorzugt, die Alkohol-Wasser-Mischung
zuerst herzustellen und die Enzyme zuzusetzen, so um irgendwelchen Abbau oder irgendwelche Desaktivierung
in Lösungen zu vermeiden, die überwiegend aus entweder Wasser oder Alkohol bestehen. Die gegebenenfalls
anzuwendenden Detergenskomponenten können zu beliebiger Zeit zugesetzt werden.
Der pH-Wert des stabilisierten wäßrigen Enzympräparats gemäß der Erfindung beträgt im allgemeinen
etwa 5,0 bis 10,0 und vorzugsweise etwa 6,5 bis 8,5. Im bevorzugten pH-Bereich werden maximale Stabilisierungswirkungen
erhalten. Der pH-Wert kann mittels einer Base, z. B. Natrium- oder Kaliumhydroxid, erhöht,
oder mit einer Säure, z. B. Chlorwasserstoffsäure, erniedrigt werden.
Obgleich es nicht zwingend ist, wird es auch bevorzugt, daß diesem Präparat ein Konservierungsmittel
zugesetzt wird, um Bakterien und Pilzwachstumi zu verhindern. Ein besonders gutes Konservierungsmittel
ist Phenylmercuriacetat, das im allgemeinen im Rahmen der Erfindung in Mengen verwendet wird, die etwa 10
bis 40 Teile/Million des Präparates betragen. Es kann ein beliebiges Konservierungsmittel, das mit diesen
Präparaten verträglich ist, verwendet werden.
Das erfindungsgemäße Enzympräparat, das Wasser, Stabilisierungsmittel, Enzyme und gegebenenfalls nichtionische und/oder zwitterionische Detergentien enthält,
kann als Fleckentferner, Detergenszusatz oder als Detergensmischung verwendet werden. Das Präparat
kann in eine Sprühdose abgepackt und zweckmäßigerweise zur Entfernung relativ kleiner Flecken aus
Geweben verwendet werden, oder es kann auch in größeren Mengen als Detergenszusatz Anwendung
finden. Dieses Präparat kann an Stelle von Hypochloritbieichmittcln
eingesetzt werden, da es viele der Flecken entfernt, die diese Bleichmittel entfernen, und als
weiteren Vorteil die Eigenschaft hat, daß es Fluoreszenzstoffe und Weißgrad erhöhende Mittel nicht
angreift oder abbaut. Mit dem Zusatz der gegebenenfalls anzuwendenden nichtionischen und/oder zwitterionischen
Detergentien kann dieses Präparat als einziges Detergens bei einem Waschverfahren benutzt werden.
Das Präparat ist auch zur Verwendung als Mundwasser geeignet. Das Alkoholstabilisierungsmittel, vorzugsweise
Äthanol, wirkt als ein Adstringens, während die Enzyme bei der Entfernung von Zahnbelag wirksam
sind und Nahrungsmittelteilchen aus den Zahnfleischspalten und Schleimschichten aus dem Mund entfernen.
Die folgenden Beispiele dienen der Erläuterung der Erfindung. Alle Angaben betreffend Teile, Prozentsätze
und Verhältnisse beziehen sich, soweit nichts anders angegeben ist auf Gewicht
Die folgenden Präparate (Beispiele 1 bis 29) wurden hergestellt und in geschlossenen Glasflaschen während
der angegebenen Zeitabschnitte gelagert Die Beispiele 1, 2, 10 und 24 stellen keine, die Erfindung erläuternden
Beispiele dar, sondern werden lediglich zu Vergleichszwecken angeführt.
Beispiel
Nr.
Nr.
Stabilisierungsmittel Gew.-%4)
TAE301) Al- H2O
calase2)
calase2)
% Restaktivität3)
Lagerung Lagerang bei 27°C Lagerung bei 38°C
bei 100C Wo- 8 Wo- 3 Wo- 6 Wo- 8 Wo- 6 Wo- 2 Wo- 3 Wo- 5 Wo- 8 Wochen
chen chen chen chen chen chen chen chen chen
1 | — | 1 | 1 | 98 | 85 | — | 75 |
2 | — | - | 1 | 99 | 77 | - | 50 |
3 | 5% Äthanol | 5 | 1 | 89 | - | 98 | - |
4 | 10% Äthanol | 5 | 1 | 84 | — | 95 | — |
69
91
12
46 69 57 41
11
Fortsetzung
12
Beispiel
Stabilisierungsmittel Gew.-%4)
TAE30 1) Al- H2O
calase2)
% Restaktivität1)
Lagerung bei 27 C
Lagerung bei 38 C
Lagerung bei 10 C Wo- 8 Wo- 3 Wo- 6 Wo- 8 Wo- 6 Wo- 2 Wo- 3 Wo- 5 Wo- 8 Wochen
chen chen chen chen chen chen chen chen chen
FGHJ KLMNOP
5 | 15% Äthanol | 5 | Stabilisierungsmittel | 1 | 79 |
6 | 5% Methanol | 5 | 1 | 89 | |
7 | 10% Methanol | 5 | 1 | 84 | |
8 | 15% Methanol | 5 | 1 | 79 | |
9 | 20% Methanol | 5 | 1 | 74 | |
10 | 30% Methanol | 5 | 1 | 64 | |
11 | 5% Isopropanol | 5 | 1 | 89 | |
12 | 10% Isopropanol | 5 | 1 | 84 | |
13 | 15% Isopropanol | 5 | 1 | 79 | |
14 | 4% Propanol | 5 | 1 | 90 | |
15 | 7% Propanol | 5 | 1 | 87 | |
16 | 2% n-Butanol | 5 | 1 | 92 | |
17 | 4% n-Butanol | 5 | 1 | 90 | |
18 | 10% Äthanoi | 1 | 1 | 88 | |
19 | 10% Äthanol | 5 | 1 | 84 | |
20 | 20% Äthanol | 1 | 1 | 78 | |
21 | 20% Äthanol | 5 | 1 | 74 | |
22 | 20% Äthanol | 0 | 1 | 79 | |
23 | 10% 3-Propoxy- | 5 | 1 | 84 | |
propanol | |||||
*) | Nach 22 Wochen erhaltener | Wert. | |||
**) | Nach 12 Wochen erhaltener | Wert. | |||
±) | Nach 4 Wochen erhaltener 1 | Wert. | |||
Beispiel Gewichts-% | |||||
Nr. | HAPS5 | ||||
99 78 90 92
98 105 109
- | 100 | - | — | 81 | 70 | 50 |
- | 51 | - | - | 33 | 0 | 0 |
- | 70 | - | - | 48 | 9 | 0 |
- | 78 | - | - | 55 | 29 | 0 |
- | - | - | 78 | - | 69 | - |
- | - | - | 20 | - | 2 | - |
- | 83 | - | - | 54 | 41 | 30 |
- | 85 | - | - | 68 | 48 | 37 |
- | 110 | - | - | 65 | 55 | 36 |
72 | - | 19 | 55 | - | - | - |
91 | - | 54 | 46 | - | - | - |
76 | - | 0 | 36 | - | - | - |
59 | - | 0 | 15 | - | - | - |
90 | - | 73 | - | 59 | 45 | 34 |
100 | - | 97*) | - | - | 61 | 47 |
100 | - | - | - | - | 25*) | - |
80 | - | - | - | - | 15*) | - |
80 | — | - | _ | — | 40 | - |
84**) -
Alcalase
% Restaktivität Lagerung in Wochen bei 27 C 3 8 \2
95,75
83,75 88 - -
83,75 100
89,75
79 - - 100 -
85,75
') TAE30 = 1 Mol Talgalkohol, der mit 30 Molen Äthylenoxyd äthoxyliert ist
2I Alcalase = ein im Handel erhältliches proteolytisches Enzympräparat mit einem Gehalt an kristallinem Enzym von etwa 6%.
3) % Restaktivität, bestimmt nach der AzocoU-Methode. Die AzocoU-Methode beruht auf der Freisetzung eines wasserlöslichen
Farbstoffes aus einem wasserunlöslichen Proteinfarbstoffsubstrat (Azocoll) durch ein proteolytisches Enzym. Die Menge des
unter sorgfältig geregelten Bedingungen freigesetzten Farbstoffes wird spektrophotometrisch gemessen. Die enzymatische Aktivität wird aus der Menge an freigesetztem Farbstoff berechnet Die Anfangsaktivität entspricht 100%.
4) 30 ppm Phenylmercuriacetat wurden jedem Präparat zugesetzt, um Bakterien- und Pilzwachstum zu verzögern. Der pH-Wert
jedes Präparates der Beispiele 1 bis 29 wird auf pH 7,0 gehalten.
^HAPS = 3-(N,N-Dimethyl-N-alkylammonio)-2-hydroxypropan-l-sulfonat, worin sich die Alkvlgruppe von einem Mittelschnitt-Kokosnußalkohol: 2% C10, 66% C12, 23% C14 und 9% C]6 ableitet
24 | - | 3,25 | 1 |
25 | 12% Diäthylenglykol- monobutyläther |
3,25 | 1 |
26 | 12% 3-Propoxypropanol | 3,25 | 1 |
27 | 3% Äthylenglykol- monobutyläther |
||
3% Diäthylenglykol- monobutyläther |
3,25 | 1 | |
28 | 15% Äthanol | 5 | 1 |
29 | 10% 3-ProDOxypronanol | 3.25 | 1 |
Wie aus Beispiel 2 hervorgeht, werden Proteasen (Alcalase) rasch in wäßriger Lösung abgebaut und/oder
desaktiviert, falls kein Stabilisierungsmittel vorhanden ist. Nach dreiwöchiger Lagerung bei 38° C waren
nahezu 90% der Enzymaktivität verlorengegangen. Unter milderen Bedingungen, d.h. bei 100C und 27°C
war der Verlust an Enzymaktivität geringer, aber der Verlust war selbst unter diesen milden Bedingungen
sehr wesentlich.
Die Zugabe eines nichtionischen Detergens, TAE30,
zur wäßrigen Enzymlösung (Beispiel 1) hindert den Abbau und/oder die Desaktivierung der Enzyme bei
niedrigen Lagertemperaturen: bei hohen Lagertemperaturen scheint jedoch das nichtionische Detergens die
Abbau- und/oder Desaktivierungsgeschwindigkeit der Enzyme zu erhöhen.
Die Zugabe der erfindungsgemäßen Stabilisierungsmittel bei den Beispielen 3 bis 23 und 25 bis 29 führte
stets zu einer erhöhten Enzymstabilität bei Lagerbedingungen von 100C. Um jedoch eine signifikant erhöhte
Enzymstabilität bei höheren Temperaturen zu erhalten, müssen die bevorzugten Stabilisierungsmittel, d. s.
Methanol, Äthanol, Propanol, Isopropanol, 3-Propoxypropanol
oder Diäthylenglykolmonobutyläther in den hier beschriebenen Anwendungsbereichen benutzt
werden. Die Beispiele 4, 5, 9, 11, 12 und 13 veranschaulichen den bevorzugten Stabilisierungseffekt
der besonders bevorzugten Stabilisierungsmittel Methanol, Äthanol und Isopropanol bei hohen Temperaturen
(8 Wochen Lagerung bei 38°C).
Es wurden die folgenden stabilisierten wäßrigen
Es wurden die folgenden stabilisierten wäßrigen
;o Enzympräparate (Beispiele 30 bis 77) hergestellt. In
jedem Beispiel wurde das Wasser und das Stabilisierungsmittel innig gemischt, mit nichtionischem oder
zwitterionischem Detergens versetzt und zuletzt die Enzyme zugesetzt Die Enzyme wurden in jedem
Beispiel während der Lagerung bei hoher Temperatur (38° C) und während der Lagerung bei niedriger
Temperatur (10°C) stabilisiert. Alle wirkten gut als Fleckentferner, Detergenszusätze und als Detergentien
als solche. Die nichtionischen (TAE30) und die zwitterionischen (HAPS) Zusätze erhöhten die Lagerstabilität
in jedem Falie.
Beispiel Nr. | Gew.-% | Isopropanol | 3-Propoxy- | Nichtionischer oder | HAPS2) | 1 | inzym | Amylase4) | H2O5) | |
propanol | zwitterionischer Zusatz | 1 | ||||||||
Stabilisierungsmittel | C | D | TAE30') | F ( | 1 | - | H | |||
_ | _ | _ | - | Mcalase3) | _ | |||||
Äthanol | - | - | E | - | - | - | ||||
A | - | - | 5 | - | - | - | J | |||
30 | B | - | - | 9 | - | - | 84 | |||
31 | 10 | 10 | - | 5 | - | - | - | 80 | ||
32 | 10 | 10 | - | 9 | - | - | - | 79 | ||
33 | 15 | 15 | - | 5 | - | - | 75 | |||
34 | 15 | 15 | - | 9 | - | - | - | 84 | ||
35 | - | - | 10 | 5 | - | 80 | ||||
36 | - | - | 10 | 9 | - | 79 | ||||
37 | - | - | 15 | 5 | 5 | - | 75 | |||
38 | - | - | 15 | 9 | 9 | - | 84 | |||
39 | - | - | - | 5 | 5 | 0,1 | 80 | |||
40 | - | - | - | 9 | 9 | 0,1 | 79 | |||
41 | - | - | - | 5 | 0,1 | 75 | ||||
42 | - | - | - | 9 | 0,1 | 83,9 | ||||
43 | 10 | 10 | - | 5 | 0,1 | 79,9 | ||||
44 | 10 | 10 | - | 9 | 0,1 | 78,9 | ||||
45 | 15 | 15 | - | 5 | 0,1 | 74,9 | ||||
46 | 15 | 15 | - | 9 | I | 0,1 | 83,9 | |||
47 | - | - | 10 | 5 | I | 0,1 | 79,9 | |||
48 | - | - | 10 | 9 | 0,1 | 78,9 | ||||
49 | - | - | 15 | 5 | I | 0,1 | 74,9 | |||
50 | - | - | 15 | 9 | I | 0,1 | 83,9 | |||
51 | - | - | - | 5 | I | - | 79,9 | |||
52 | - | - | - | 9 | I | - | .78,9 | |||
53 | - | - | - | - | I | - | 74,9 | |||
54 | - | _ | _ | - | I | _ | 84 | |||
55 | 10 | - | 80 | |||||||
56 | 10 | _ | 79 | |||||||
57 | 15 | 75 | ||||||||
15 | ||||||||||
Fortsetzung
Beispiel Nr. | Gew.-% | Isopropanol | Nichtionischer oder | - | HAPS2) | - | H2O5) |
zwitterionischer Zusatz | 10 | - | |||||
Stabilisierungsmittel | C | 3-Propoxy- TAE30 1) | 10 | F | 0,1 | ||
10 | propanol | 15 | 5 | 0,1 | |||
Äthanol | 10 | D E | 15 | 9 | 0,1 | ||
A | 15 | _ | - | 5 | 0,1 | J | |
58 | B | 15 | - - | - | 9 | 0,1 | 84 |
59 | _ | - | - | - | 5 | 0, | 80 |
60 | - | - | - | 9 | 0, | 79 | |
61 | - | - | - | 5 | 0, | 75 | |
62 | - | - | - | 9 | 0, | 84 | |
63 | - | - | - | 5 | 0, | 80 | |
64 | - | - | - | 9 | 0, | 79 | |
65 | - | - | 10 | 5 | 0, | 75 | |
66 | - | - | 10 | 9 | 83,9 | ||
67 | 10 | 10 | 15 | 5 | 79,9 | ||
68 | 10 | 10 | 15 | 9 | 78,9 | ||
69 | 15 | 15 | 5 1 | 74,9 | |||
70 | 15 | 15 | 9 1 | 83,9 | |||
71 | - | - | 5 1 | 79,9 | |||
72 | - | - | 9 1 | 78,9 | |||
73 | - | - | 5 1 | 74,9 | |||
74 | - | - | 9 1 | 83,9 | |||
75 | - | Enzym | 79,9 | ||||
76 | - | 78,9 | |||||
77 | - | 74,9 | |||||
- | Alcalase3) Amylase4) | ||||||
G H | |||||||
1 | |||||||
1 | |||||||
1 | |||||||
1 | |||||||
1 | |||||||
I |
1JTAEw = Talgalkohol, der mit 30 Molen Äthylenoxyd äthoxyliert ist.
2) HAPS = 3-(N,N-Dirnethyl-N-alkylammonio)-2-hydroxypropan-l-sulfonat, worin die Alkylgruppe vom Mittelschnitt-Kokosnußalkohol: 2% Cio, 66% Ci2, 23% C]4 und 9% Q6 abgeleitet ist.
3) Alcalase = siehe Beispiele 1 bis 29.
4) Wallerstein-bakterielle a-Amylase, Chargen-Nr. 4S46A.
5) Jedes Präparat der Beispiele 30 bis 77 enthielt 30 ppm Phenylmercuriacetat. Die pH-Werte dieser Präparate wurden auf
7,0 gehalten.
Ein stabiles wäßriges Enzympräparat wurde erfindungsgemäß aus folgenden Komponenten angesetzt:
Komponente
Gew.-%
Alcalase (6% kristallines Enzym) TAE30
Äthanol
Wasser
Phenylmercuriacetat
1%
5% 10% 84% 30 ppm
der pH-Wert dieses Präparates wurde mit Natriumhydroxid auf 7,0 eingestellt.
Dieses Präparat wurde für Reihen von Fleckentfernungs- und Waschtests, wie nachstehend angegeben,
verwendet. Ähnlich verschmutzte Tücher wurden in wäßrigefi Lösungen, enthaltend äquivalente Mengen
von IV4 Bechern einer handelsüblichen Detergensmischung
(Tide®) in 60,64 I Wasser mit einer Härte von 6,7° bei 54° C während 10 Minuten gewaschen.
Das erfindungsgemäße Präparat wurde in der vorliegenden Form verwendet, d. h. es erfolgte keine
Verdünnung bei den Durchfeuchtungsvorgängen in der 5. Minute, 30. Minute und nach 3 Stunden. Etwa V2 ml
bis etwa 1 ml des Präparates wurden direkt auf jeden Fleck oder verschmutzten Bereich von etwa 5 bis 10 cm2
aufgesprüht. Die verschmutzten Tücher wurden während der angegebenen Zeitabschnitte liegengelassen
und dann in der oben beschriebenen Weise in der handelsüblichen Detergensmischung gewaschen.
Das Präparat wurde auch als Zusatz zu der handelsüblichen Detergensmischung verwendet. Etwa
1,2 ml des erfindungsgemäßen Präparats wurden je 3,791 des Waschwassers bei diesen Waschvorgängen
verwendet. Die Ergebnisse sind nachstehend zusammengestellt:
60
65
Beispiel 78
Flecken
Flecken
Mögliche Bewertung
Waschen mit Tide® Waschen
mit Tide*
plus Präparat
mit Tide*
plus Präparat
5 Min.
Befeuchten,
dann
Waschen
mit Tide®
Befeuchten,
dann
Waschen
mit Tide®
3OMiIL Befeuchten, dann Waschen
mit Tide®
? Stunden Befeuchten, dann Waschen mit Tide«
Protein | 80 |
Pigment | 35 |
T-Oberhernd + Kissenbezug1) | 20 |
Synthetischer Schmutz2) | 10 |
EMPABlutNr. 1123) | 10 |
Salatwürze | 5 |
Andere Flecken4) | 25 |
Baum Wolltücher) | 5 |
Hemdkragen6) | 5 |
Gesamtbewertung | 195 |
30
12
12
70
54
19
10
19
10
5
8
4
17
2
3
8
4
17
2
3
122
61 21 10
5 10
4 19
136
68
21
14
22
150
') StofTstücke aus natürlich verschmutzten T-Oberhemden und Kissenbezügen.
2) Stoffstücke mit speziellem synthetischem Schmutz.
3) Blutgetränkte Tücher, die von der Eidgenössischen Materialprüfungs- und Versuchsanstalt für Industrie, Bahnwesen und
Gewerbe, Schweiz, erhalten wurden.
4) Tücher, die mit 5 verschiedenen Arten von Schmutz verunreinigt sind.
5) Reine Baumwolltücher, die zur Ermittlung der relativen Redeposition verwendet wurden.
6) Natürlich verschmutzte Hemdkragenstücke.
Die mögliche Beurteilung für Protein leitet sich von folgendem ab: 16 gesonderte und verschiedene Proteinflecken
wurden auf jedes Proteinprüftuch aufgebracht. Jeder Fleck wurde nach dem Waschvorgang visuell an
Hand einer von 0 bis 5 reichenden Skala eingestuft. Eine Beurteilung von 5 gibt eine vollständige Entfernung an
(die »mögliche Bewertung«), während 0 keine Entfernung bedeutet. Beurteilungen zwischen 0 und 5 geben
dazwischenliegende teilweise Entfernung an. Die mögliche Proteinbeurteilung von 80 wird erhalten,
indem die 16 Flecken mit den 5 möglichen Bewertungspunkten je Fleck multipliziert werden. Die möglichen
Bewertungen für die anderen Flecken werden in gleicher Weise berechnet. Die Gesamtbewertungen
sind ein Maß für ein breites Reinigungsspektrum.
Die Zugabe des erfindungsgemäßen Präparats zum Waschwasser, das das handelsübliche Detergens enthielt,
erhöhte die Bewertung (Tide®+Präparat) gegenüber dem Waschen mit Detergens (Waschen mit Tide®)
um etwa 40%, woraus ein signifikanter Vorteil bei der Reinigung ersichtlich ist. Wendete man ein 5 Minuten
dauerndes Durchfeuchten an, so wurde die Gesamtbewertung (5 Min. Befeuchten, dann Waschen mit Tide®)
um 70% gegenüber der Bewertung mit Tide® erhöht, während ein Befeuchten während 30 Min. oder
3 Stunden die Gesamtbewertung um nahezu 100% gegenüber der Bewertung des Waschens mit Tide6
allein erhöhl.
Beispiel 79
Ein Mundwasserpräparat wird aus den folgenden Komponenten angesetzt:
Ein Mundwasserpräparat wird aus den folgenden Komponenten angesetzt:
Komponenten | Gew.-% |
Äthanol | 16,50 |
Wasser | 79,10 |
Monsanto CRD Protease (DA-10) | 2,00 |
(34% Enzym) | |
GeschmackstofF, Farbstoffe und Süßungs | 2,15 |
mittel | |
Natriumhydroxid zur Einstellung eines | 0,25 |
pH-Wertes von 7,0 |
Die Enzyme sind während langer Lagerungszeiträume bei relativ hohen Temperaturen stabil. Die Mischung
ist zur Entfernung von Zahnbelag von den Zähnen, Nahrungsteilchen aus Zahnfleischspalten und Schleimbelag
im Mund brauchbar.
Im wesentlichen gleiche Ergebnisse wie in den mische an Stelle von Alcalase und Monsanto CRD-Provorstehenden
Beispielen wurden erhalten, wenn man tease (DA-10) verwendete, in dem die Enzyme in
die folgenden Enzyme oder handelsüblichen Enzymge- wäßriger Lösung stabilisiert wurden:
Subtilisin, BPN', Elastase. Keratinase,
Carboxypeptidase, Aminopeptidase, Aspergiliopeptidase A. Aspergillopeptidase B,
Collagenase, Chymotrypsin, Trypsin, Pepsin, Papain, Bromelin, Maxatasc,
Protease B-4000, Protease AP, Alcaiase,
CRD Protease, Viokase, Pronase-P, Pronase-E, Pronase-AS, Pronase-AF,
Bioprase, Rapidase P-2000,Takamin, HT proleolytisches Enzym 2000, Enzym,
L-W, Rhozyin P-11-Konzentrat, Peotinol,
Rhozym PF, Rhozym J-25 und Amprozym 200. Im wesentlichen gleiche Ergebnisse wie in den
vorstehenden Beispielen wurden erhalten, wenn die übrigen vorstehend genannten Stabilisierungsmittel
anstelle jener in den vorstehenden Beispielen eingesetzt wurden, indem die Enzyme in wäßriger Lösung
stabilisiert wurden.
Im wesentlichen gleiche Ergebnisse wie in den vorstehenden Beispielen wurden erhalten, wenn man
die übrigen vorstehend genannten nichtionischen und zwitterionischen Detergentien anstelle des Talgalkohols,
der mit 30 Mol Äthylenoxid je MoI Talgalkohol äthcxyliert ist, und des 3-(N,r>i-Dimethyl-N-mittelschnittkokosnußalkylammonio)-2-hydroxypropan-1
sulfonats einsetzte, indem die stabilisierenden Wirkungen der Alkohole und Alkoxyalkohole erhöht wurden.
Gemäß den Beispielen 3 bis 24 und 26 bis 78 wurden die Enzyme im wäßrigen Präparat stabilisiert, falls kein nichtionisches oder zwitterionisches Produkt in der wäßrigen Lösung enthalten ist.
Gemäß den Beispielen 3 bis 24 und 26 bis 78 wurden die Enzyme im wäßrigen Präparat stabilisiert, falls kein nichtionisches oder zwitterionisches Produkt in der wäßrigen Lösung enthalten ist.
Ähnliche Ergebnisse wie in den Beispielen I bis 79 wurden erhalten, wenn der pH-Wert der erfindungsgemäßen
Präparate auf 6,5, 8,0 und 8,5 eingestellt wurde, wot>ei die Enzyme für lange Zeiträume stabilisiert
wurden. Die Enzymstabilisierung wurde auch gemäß den Beispielen 1 bis 79 erhalten, wenn der pH-Wert der
Präparate auf 5,0,9,0 und 10,0 eingestellt wurde.
Hierzu 1 Blatt Zeichnungen
Claims (1)
1. Stabilisiertes, wäßriges Präparat der Enzyme Protease, Λ-Amylase oder deren Gemische, dadurch
gekennzeichnet, daß, bezogen auf das Gewicht des Präparates,
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US4285276A (en) * | 1978-11-15 | 1981-08-25 | Howard A. Fromson | Method for printing employing lithographic fountain dampening solution |
DE2909396B2 (de) * | 1979-03-09 | 1981-07-30 | Diamalt AG, 8000 München | Entschlichtungsmittel und Verfahren zu seiner Herstellung |
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US4287082A (en) * | 1980-02-22 | 1981-09-01 | The Procter & Gamble Company | Homogeneous enzyme-containing liquid detergent compositions containing saturated acids |
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FR2520753B1 (fr) * | 1982-02-01 | 1986-01-31 | Transgene Sa | Nouveaux vecteurs d'expression de la catechol 2,3-oxygenase, enzymes obtenues et leurs applications |
MX161813A (es) * | 1982-12-13 | 1990-12-28 | Colgate Palmolive Co | Mejoras a composicion detergente liquida |
IE81141B1 (en) | 1983-06-24 | 2000-04-05 | Genencor Int | Procaryotic carbonyl hydrolases |
US4548727A (en) * | 1983-10-06 | 1985-10-22 | The Drackett Company | Aqueous compositions containing stabilized enzymes |
DE3428834A1 (de) * | 1984-08-04 | 1986-02-13 | Henkel KGaA, 4000 Düsseldorf | Geschirreinigungsmittel |
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DK563986A (da) * | 1986-11-25 | 1988-06-17 | Novo Industri As | Fremstilling af en lav-temperatur-aktiv protease |
US4711739A (en) * | 1986-12-18 | 1987-12-08 | S. C. Johnson & Son, Inc. | Enzyme prespotter composition stabilized with water insoluble polyester or polyether polyol |
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GB8816443D0 (en) * | 1988-07-11 | 1988-08-17 | Albright & Wilson | Liquid enzymatic detergents |
US4999288A (en) * | 1987-10-28 | 1991-03-12 | Gds Technology, Inc. | Test composition and method for the determination of anilides |
DE3927286C2 (de) * | 1989-08-18 | 1997-07-24 | Roehm Gmbh | Wäßrige Enzym-Flüssigformulierungen |
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