DE1517784C - Verfahren zum Verbessern des Ribonucleinsäuregehalts von Hefezellen - Google Patents
Verfahren zum Verbessern des Ribonucleinsäuregehalts von HefezellenInfo
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Description
Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zum Verbessern des Ribonucleinsäuregehalts von Hefezellen
durch Züchten von Hefezellen unter aeroben Bedingungen mit bestimmten Mikroorganismen.
Ribonucleinsäure ist sehr wichtig als Ausgangsmaterial für die Herstellung von 5'-Inosinsäure und
5'-Guanylsäure, die beide weitgehend als Komponenten von Würzen verwendet werden. Im Großverfahren
wird Ribonucleinsäure gewöhnlich durch Extraktion der in Hefezellen enthaltenen Ribonucleinsäure
gewonnen..
Es ist bereits bekannt, Hefen auf Kohlenhydraten als Kohlenstoffquellen, z. B. Glucose, Melasse und
Stärkehydrolysat, zu züchten und'das erhaltene Rohmaterial zur Gewinnung von Ribonucleinsäure zu extrahieren.
Solche mit Kohlenhydraten als Kohlenstoffquelle arbeitenden Verfahren -sind jedoch nachteilig,
da die Kohlenhydrate verhältnismäßig teuer sind.
Aus der USA.-Patentschrift 3 193 390 ist auch bereits ein Verfahren zum Züchten von Hefen der
Gattung Candida unter aeroben Bedingungen in einem " Nährmedium bekannt, das Paraffinkohlenwasserstoffe,
vorzugsweise n-Paraffinkohlenwasserstoffe, als Hauptkohlenstoffquelle
enthält. Die Züchtung erfolgt in einem pH-Bereich von 3 bis 6 bei Temperaturen von
■25 bis 35°C.
In der französischen Patentschrift 1 381 311 ist-ein
Verfahren beschrieben, bei dem bestimmte Hefestämme der Gattungen Candida und Torulopsis unter
aeroben Bedingungen in einem Nährmedium gezüchtet werden, die Kohlenwasserstoffe als einzige
Kohlenstoffquelle enthalten. Nach der Züchtung wird eine mikroorganismenhaltige Fraktion abgetrennt und
diese Fraktion einer Lösungsmittelextraktion unterworfen. Mit der Extraktion soll der hohe Lipidgehalt
einer auf Kohlenwasserstoffen gezüchteten Hefe, der für den eingenartigen und unangenehmen Geschmack
einer solchen Hefe verantwortlich ist, herabgesetzt und damit eine Geschmacksverbesserung erzielt werden.
Überraschenderweise wurde nun gefunden, daß man Hefezellen mit gegenüber den bekannten Verfahren
erhöhtem Gehalt an Ribonucleinsäure erhält, wenn man unter aeroben Bedingungen und üblichen pH-
und Temperaturverhältnissen bestimmte Mutanten der Gattung Candida in einem als Hauptkohlenstoffquelle
Kohlenwasserstoffe, insbesondere n-Paraffine mit 14 bis 21 Kohlenstoffatomen, enthaltenden Medium
züchtet. Die verwendeten Mutanten der Gattung Candida sind gegen Thiazin-, Oxazin- und Acridinfarbstoffe
resistent. Demgegenüber werden Hefezellen mit nur einer geringen Menge Ribonuclein erhalten,
wenn Wildstämme der genannten Hefen an Stelle der Mutanten in diesem Kulturmedium gezüchtet werden.
Die Mutanten können künstlich oder spontan aus den natürlich vorkommenden Stämmen erhalten werden.
Gegenstand der Erfindung ist demnach ein Verfahren zum Verbessern des Ribonucleinsäuregehalts
von Hefezellen durch Züchten von Hefezellen unter aeroben Bedingungen und üblichen pH- und Temperaturverhä.'tnissen
in einem Nährmedium, welches als Hauptkohlenstoffquelle Kohlenwasserstoffe, die
wenigstens 10 Volumen pro Volumen an n-Parafünen mit 14 bis 21 Kohlenstoffatomen .aufweisen und
übliche Nährstoffe enthält, das dadurch gekennzeichnet ist, daß man als Hefe Candida tropicalis Berkhout
ATCC 20 005, 20 006 und 20 007 oder Candida parapsilosis Langeron et Talice ATCC 20008 einsetzt.
Beim Verfahren gemäß der Erfindung werden Stämme, die zur Gattung Candida gehören, als, ursprüngliche
Mikroorganismen verwendet, aus denen die gewünschten Mutanten erzeugt werden können.
Das Wachstum von Wildstämmen, die zur Gattung Candida gehören, einschließlich Candida tropicalis
Berkhout und Candida parapsilosis Langeron et Talice, wird in Gegenwart von Thiazinfarbstoffen, wie
3,7-Diaminphenothiazoniumchlorid,3,7-Bis-(dimethylamino)-phenazathioniumchlorid,
Oxazinfarbstoffe^ wie Tetramethyldiaminoxanthyliumchlorid, oder Acridinfarbstoffen,
wie 2,8-Bis-(dimethylamino)-acridiniumchlorid, 2,8-Diamino-lO-methylacridiniumchlorid
und 2,8-Diaminoacridiniumchlorid, gehemmt. Die Mutanten, die gegen diese Farbstoffe resistent sind,
können erzeugt werden durch Behandlung von Wildstämmen der Gattung Candida mit einem Mutagen,
z. B..durch Bestrahlung mit Ultraviolettlicht, Röntgenstrahlen* oder Behandlung mit salpetriger Säure oder
durch Wahl und Isolierung eines Stammes von natürlich und spontan auftretenden Mutanten der Wildstämme.
Das Wachstum der- so erhaltenen Mutanten wird durch diese Farbstoffe nicht mehr gehemmt. Die
gewünschte Mutation eines Wildstammes der Gattung Candida kann nach beliebigen an sich bekannten Methoden
hervorgerufen werden, die in zahlreichen Veröffentlichungen beschrieben sind, z. B. in »Methods
in Medical Research«, Bd. 3, von R. W. G e r a r d, Year Book Publishers, Inc., Chicago, 1950, und
»Nature«, 183, S. 1829 (1959), in einer Arbeit von F. Kaudewitz.
Vom Standpunkt des Wachstums und der in den Zellen angereicherten Ribonucleinsäuremenge werden :
von den so erhaltenen, gegen die genannten Farbstoffe resistenten Mutanten vorzugsweise solche verwendet,
die auf einem Kulturmedium zu wachsen vermögen, das die Farbstoffe in wenigstens der 5fachen Mindestkonzentration
enthält, die das Wachstum der Wildstämme, aus denen die Mutanten erhalten wurden,
hemmt. ■
Von den erfindungsgemäßen Mutanten ist Candida tropicalis Berkhout ATCC 20 005 gegen 3,7-Diaminophenothiazoniumchlorid
resistent, Candida tropicalis Berkhout ATCC 20 006 gegen Tetramethyldiaminoxanthyliumchlorid
resistent, Candida tropicalis Berkhout ATCC 20 007 gegen 2,8-Bis-(dimethylamino)-acridiniumchlorid
resistent und Candida parapsilosis Langeron et Talice ATCC 20 008 gegen Tetramethyldiaminoxanthyliumchlorid
resistent. Die Zahlen hinter der Abkürzung »ATCC« sind die Zugangsnummern der American Type Culture Collection (ATCC), Rockville,
Maryland, USA.
Das Verfahren gemäß der Erfindung wird im allgemeinen vorzugsweise unter Verwendung eines flüssigen
Kulturmediums durchgeführt. Die Kultivierung erfolgt aerob, d. h. unter Belüftung, unter statischen
oder submersen Bedingungen. Das gemäß der Erfindung verwendete Kulturmedium muß als Kohlenstoffquelle wenigstens Kohlenwasserstoffe enthalten,
die Normalparaffine einer C-Zahl im Bereich von 14 bis 21 enthalten.
Vom Standpunkt des Wachstums des Mutanten und der in den Zellen angereicherten Ribonucleinsäuremenge
beträgt die Menge der in den Kohlenwasserstoffen enthaltenen Normalparaffine mit C-Zahlen im
Bereich von 14 bis 21 vorzugsweise wenigstens 10 Volumprozent. Die genannten Normalparaffine selbst
bilden vorteilhaft zu 100 °/0 die Kohlenstoffquelle beim Verfahren gemäß der Erfindung.
1OiY 7Ö4
Die Normalparaffine bestehen entweder nur aus einer Art von C14- bis C21-Normalparaffinen oder aus
zwei oder mehr Arten von Normalparaffinen, deren C-Zahl jeweils im genannten Bereich liegt. Außer den
Q4- bis Cai-Normalparaffinen kann die erfindungsgemäß
verwendete Kohlenwasserstoffquelle noch andere Kohlenwasserstoffe enthalten (z. B. verzweigte
Paraffine, Olefine, cyclische Paraffine, aromatische Kohlenwasserstoffe, Normalparaffine mit 1 bis 13
oder wenigstens 22 C-Atomen), solange die Ci4- bis
Cji-Normalparaffine insgesamt in einer Menge von
wenigstens 10% (Vol./Vol.) vorhanden sind. .
Vorzugsweise verwendet man als Kohlenwasserstoffe reines n-Hexadecan, schwere Paraffine, die etwa
90 Volumprozent Normalparaffine enthalten, die C-Zahlen im Bereich von 14 bis 21 und einen Siedebereich
von etwa 262 bis 3490C haben, schweres Gasöl,
das etwa 17% Normalparaffine einer C-Zahl im Bereich von 15 bis 20 enthält und einen Siedebereich von
etwa 272 bis 3860C hat, und Gasöl, das etwa 14% Normalparaffine mit C-Zahlen im Bereich von 14 bis
17 enthält und einen Siedebereich von etwa 180 bis 35O°C hat. Vom Standpunkt des Wachstums des Mu-.
tanten und der in den Zellen angereicherten Menge der Ribonucleinsäure. werden die Kohlenwasserstoffe
im allgemeinen in einer solchen Menge verwendet, daß die Konzentration der Normalparaffine mit C-Zahlen
im Bereich von 14 bis 21 im Kulturmedium insgesamt etwa 3 bis 20 Volumprozent beträgt.
Da diese Kohlenwasserstoffe in Wasser schwerlöslich sind, erfolgt ihre Zugabe praktisch zu einem
wäßrigen Kulturmedium unter Rühren oder Schütteln, wobei eine Suspension gebildet wird, die sehr feine
Teilchen enthält. Gegebenenfalls kann ein Suspendiermittel, z. B. eine oberflächenaktive Substanz vom Typ
des Polyoxyäthylensorbitanmonostearats verwendet werden. Diese Kohlenwasserstoffe genügen als solche
als Kohlenstoffquelle, jedoch können gegebenenfalls üblicherweise verwendete Kohlenstoffquellen, wie
Kohlenhydrate, (z. B. Glucose), zusammen mit den Kohlenwasserstoffen verwendet werden.
Das Kulturmedium muß eine oder mehrere Stickstoffquellen sowie die Kohlenwasserstoffe als Nährstoffe
enthalten. Geeignet sind die bei den bekannten Verfahren verwendeten Stickstoffquellen, beispielsweise
Pepton, Sojabohnenpulver, Maisquell wasser, Fleischextrakt, Ammoniumsalze, organische oder anorganische
Stickstoffverbindungen oder stickstoffhaltige Stoffe. Ferner können anorganische Salze,
z.B. Natriumchlorid, Metallsalze, z.B. Zink-, Eisen- und Mangansalze, dem Medium in geringen Mengen
zugesetzt werden.
Die Kultivierungsbedingungen, z. B. der pH-Wert des Mediums und die Kultivierungstemperatur, müssen
so geregelt werden, daß maximales Wachstum der Zellen im Kulturmedium und maximale Anreicherung
von Ribonucleinsäure in diesen Zellen .erzielt werden. Im allgemeinen wird der Anfangs-pH-Wert des Kulturmediums
auf etwa 4,0 bis 8,0 und die Kultivierungstemperatur auf etwa 20 bis 40° C eingestellt. Unter
diesen Kultivierühgsbedingungen werden Zellen, die eine sehr hohe Ribonucleinsäuremenge enthalten, im
Laufe der Zeit im Kulturmedium gebildet. .
Die Kultivierung wird fortgesetzt, bis die maximale Ribonucleinsäuremenge in den gezüchteten Zellen angereichert
ist. Die Zeit, die bis zur maximalen Anreicherung der Ribonucleinsäure erforderlich ist, ist
in Abhängigkeit von verschiedenen Faktoren unterschiedlich, jedoch erreicht die Menge der Ribonucleinsäure
in den Zellen im allgemeinen das Maximum in etwa 5 bis 36 Stunden nach Beginn der Kultivierung.
Λ Die auf diese Weise erhaltenen Zellen, die eine sehr hohe Menge Ribonucleinsäure enthalten, können von
dem Kultivierungsmedium in beliebiger geeigneter Weise, z. B. durch Zentrifugieren, abgetrennt werden.
Die in den so erhaltenen Hefezellen enthaltene Ribonucleinsäure kann von den Hefezellen nach Belieben
als Ribonucleinsäure oder als Oligonucleotid nach beliebigen Methoden gewonnen werden, die für
diesen Zweck bekannt sind. Beispielsweise kann die Ribonucleinsäure durch eine Extraktionsbehandlung
gewonnen werden, bei der man die Hefe, die in einer 5 bis 15%igen wäßrigen Natriumchloridlösung suspendiert
ist, 0,5 bis 100 Stunden auf eine Temperatur von etwa 60 bis 90°C erhitzt und den flüssigen Anteil vom
festen Anteil abtrennt (s. »Biochemical Journal«, II, S. 319 [1"917]). Oligonucleotid kann gewonnen werden,
indem die wäßrige Hefesuspension bei pH 7 bis 8,0 für eine Dauer von 0,5 bis 10 Stunden auf eine Temperatur
von etwa-80 bis 1300C erhitzt und der flüssige
Anteil vom festen Anteil abgetrennt wird (s. japanische Patentveröffentlichung 9 991/1962). · ' -
Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele erläutert, in denen die Prozentsätze sich auf Volumen
pro Volumen beziehen, falls nicht anders angegeben. Hierbei verhalten sich Gewichtsteile zu Raumteilen
wie Gramm zu Millimeter.
10 ml Kulturmedium der nachstehend in Tabelle 1 genannten Zusammensetzung werden nach Zugabe
von 400 MikrogrammTetramethyldiaminoxanthyliumchlorid'pro
Milliliter mit Candida tropicalis Berkhout beimpft. Das Medium wird 4 Tage bei 28°C unter
Schütteln bebrütet.
Saccharose .-. 50 g/l
Natriumglutamat 2 g/l
Ammoniumsulfat "25 g/l
KH2Po4 ........... ig/i
MgSO4 · 7H2O 0,5 g/l
CaCl2 0,1 g/l
Biotin 2 μ g/l
Calciumpantothenat 400 μ g/l
Inosit '2000 μ g/1
Nicotinsäure 400 μ g/l
p-Aminobenzoesäure ...... 200 μ g/l
Pyridoxinhydrochlorid . 400 μ g/l
Riboflavin 200 μ g/l
Thiaminhydrochlorid 400 μ g/l
pH 5,8
Aus der erhaltenen Kulturbrühe werden spontan gebildete Mutanten isoliert, die gegen Tetramethyl-
diaminoxanthyliumchlorid resistent sind. Von diesen isolierten Mutanten wird ein Stamm Candida tropicalis
Berkhout ATCC 20 006 in 50 Raumteile eines Kulturmediums der in Tabelle 2 genannten Zusammensetzung
geimpft. Das Medium wird 24 Stunden bei 5 28°C geschüttelt.
Gewichtsteile .
Schwere Paraffine* 100
NH4NO3 10
KH2PO4 20
K2HPO4 10
MgSO4-7H2O ... 1
MnSO4 · 4H2O 0,01
ZnSO4-7H2O; 0,01
FeSO4 · 7H2O 0,01 .
Maisquellwasser 10
Wasser 1000 Raumteile
pH-Wert 6,0
* a) Zusammensetzung:
* a) Zusammensetzung:
Cu-Qü-Normalparaffine 90,7%
Cn-Qa-Normalparaffine 1,9%
Qo-Csa-Normalparaffine 8,5 %
b) Siedebereich 262 bis 3490C
Mit der erhaltenen Kulturbrühe werden 1000 Raumteile des Kulturmediums der in Tabelle 2 genannten
Zusammensetzung geimpft, worauf 20 Stunden bei 28° C geschüttelt wird. Die erhaltene Kulturbrühe
wird zentrifugiert, wobei 24 Gewichtsteile (als Trockensubstanz) Zellen erhalten werden, die, bezogen auf das
Gesamtgewicht, 12% Ribonucleinsäure enthalten. Die Zellen werden in 250 Raumteilen einer auf pH 8,0
eingestellten 0,5molaren Natriumchloridlösung suspendiert. Die Suspension wird 30 Minuten auf 9O0C
erhitzt, um die Ribonucleinsäure zu extrahieren. Anschließend werden die Zellen abfiltriert. Zum erhaltenen
Filtrat werden 100 Raumteile Äthanol gegeben, wobei 2,2 Gewichtsteile Ribonucleinsäure erhalten
werden.
Wenn ein. Wildstamm von Candida tropicalis Berkhout an Stelle des genannten Mutanten unter den
gleichen Bedingungen kultiviert wird, werden 20 Gewichtsteile (als Trockensubstanz) Zellen erhalten, die
bezogen auf das Gesamtgewicht, nur 4,0% Ribonucleinsäure enthalten.
Mit Candida arapsilosis Langeron et Talice werden 10 ml des Kulturmediums der in Tabelle 1 von Beispeil
1" genannten Zusammensetzung, dem 400 μg Tetramethyldiaminoxanthyliumchlorid pro Milliliter
zugesetzt worden waren, geimpft. Das Medium wird 4 Tage bei 28° C geschüttelt. Von der erhaltenen
Kulturbrühe werden spontan auftretende Mutanten isoliert, die gegen Tetramethyldiaminqxanthyliumchlorid
resistent sind. Von den isolierten Mutanten wird ein Stamm, der als Candida parapsilosis Langeron
et Talice ATCC 20 008 bezeichnet wird, in 50 Raumteile des in der folgenden Tabelle 3 genannten Kulturmediums
geimpft, das 24 Stunden unter Schütteln bei 280C bebrütet wird.
Gewichtsteile
.. 300
.. 300
Gasöl*
NH4NO3 10
KH2PO4 20
K2HPO4 10
MgSO4-7H2O :.... 1
MnSO4-4H2O ...' 0,01
ZnSO4-7H2O 0,01
FeSO4-7H2O ..... 0,01
Maisquellwasser 10
Wasser .- 1000 Raumteile
pH-Wert 6,0
* a) Zusammensetzung:
* a) Zusammensetzung:
CvCT-Normalparaffine - - - 13,5 %
C12-CI3-Normalparaffine 6,5 %
Verzweigte Paraffine .· 10%
Monocyclische Paraffine 25 %
Dicyclische Paraffine -20%
Monoaromatische Kohlenwasserstoffe 12 %
Diaromatische Kohlenwasserstoffe ... 8 %
Diaromatische Kohlenwasserstoffe ... 8 %
b) Siedebereich 180 bis 35O°C
c) Flammpunkt etwa 71° C
Die erhaltene Kulturbrühe wird zu 1000 Raumteilen des Kulturmediums der in Tabelle 3 genannten
Zusammensetzung gegeben, worauf 24 Stunden bei 28° C geschüttelt wird. Die erhaltene Kulturbrühe wird
zentrifugiert, wobei 22 Gewichtsteile (gerechnet als Trockensubstanz) Zellen erhalten werden, die 11,8%
(bezogen auf das Gesamtgewicht) Ribonucleinsäure enthalten. Die Zellen werden in 250 Raumteilen einer
auf pH 0,8 eingestellten 0,5molaren wäßrigen Natriumchloridlösung suspendiert. Die Suspension wird
30 Minuten auf 90° C erhitzt, wobei die Ribonucleinsäure extrahiert wird. Nach Entfernung der Zellen
durch Filtration werden zum erhaltenen Filtrat 100 Raumteile Äthanol gegeben, wobei 2,1 Gewichtsteile
Ribonucleinsäure erhalten werden.
Wenn an Stelle des genannten Mutanten ein Wildstamm von Candida parapsilosis Langeron et Talice
unter den gleichen Bedingungen kultiviert wird, werden 21 Gewichtsteile (gerechnet als Trockensubstanz)
Zellen erhalten, die nur 3,5 Gewichtsprozent *
(bezogen auf das Gesamtgewicht) Ribonucleinsäure enthalten. . . .
Mit Candida tropicalis Berkhout werden 10 ml des Kulturmediums der in Tabelle 1 von Beispiel 1 genannten
Zusammensetzung beimpft, dem 400 μg 2,8-Bis-(dimethylamino)-acridiniumchlorid pro Milliliter
zugesetzt worden waren. Das Medium wird 4 Tage bei 28 0C unter Schütteln bebrütet. Von der erhaltenen
Kulturbrühe werden spontan auftretende Mutanten isoliert, die gegen 2,8-Bis-(dimethylamino)-acridiniumchlorid
resistent sind.
Von den isolierten Mutanten wird ein Stamm, der als Candida tropicalis Berkhout ATCC 20 007 bezeichnet
wird, in 50 Raumteile des Kulturmediums der in der folgenden Tabelle 4 genannten Zusammensetzung
geimpft. Das Medium wird 24 Stunden unter Schütteln bei 280C bebrütet.
Gewichtsteile
Schweres Gasöl* 200
NH4NO3 .10
KH2PO4 20
K2HPO4 10
MgSO1-7 H2O 1
MnSO4-4H2O 0,01
ZnSO4-7H2O 0,01
FeSO4 -7H2O 0,01
Maisquellwasser 10
. Wasser 1000 Raumteile
pH-Wert 6,0
a) Enthält 20°/,. C15-C.,„-Normalparaffine.
b) Siedebereich 272 bis 380" C.
c) Flammpunkt etwa 140'C.
(1) Spezifisches Gewicht 0,866.
(1) Spezifisches Gewicht 0,866.
Mit der erhaltenen Kulturbrühe werden 1000 Raumteile des Kulturmediums der in Tabelle 4 genannten
Zusammensetzung geimpft, worauf 20Stunden bei 28°C geschüttelt wird. Die erhaltene Kulturbrühe
tfird zentrifugiert, wobei 22 Gewichtsteile (gerechnet als Trockensubstanz) Zellen erhalten werden, die, bezogen
auf das Gesamtgewicht, 11,5 °/0 Ribonucleinsäure
enthalten. Die Aufarbeitung der Zellen auf die in Beispiel 1 beschriebene Weise ergibt 2,3 Gewichtsteile Ribonucleinsäure.
Wenn ein Wildstamm von Candida tropicalis Berkliout
an Stelle des genannten Mutanten unter den gleichen Bedingungen kultiviert wird, werden 22 Gewichtsteile
(gerechnet als Trockensubstanz) Zellen erhalten, die nur 3,3 °/0 (bezogen auf das Gesamtgewicht)
Ribonucleinsäure enthalten.
Nach Bestrahlung mit Ultraviolettlicht (15 W) für eine Dauer von 30 Sekunden aus einer Höhe von
50 cm werden mit Zellen von Candida tropicalis Berkhout 10 ml des Kulturmediums der in. Tabelle 1 von
Beispiel Γ genannten Zusammensetzung geimpft, dem 500 [j.g 3,7-Diaminophenothiazoniiimchlorid pro Milliliter
zugesetzt worden waren, worauf 4 Tage bei 28 0C geschüttelt wird. Von der erhaltenen Kulturbrühe
werden spontan auftretende Mutanten isoliert, die gegen 3,7-Diaminophenothiazoniumchlorid resistent
sind.
Von den isolierten Mutanten wird ein Stamm, der
als Candida tropicalis Berkhout ATCC 20 005 bezeichnet wird, in 50 Raumteile eines Kulturmediums
geimpft, das die in Tabelle 2 von Beispiel 1 genannte Zusammensetzung hat, jedoch an Stelle der schweren
Paraffine reines n-Hexadecan enthält. Anschließend wird 24 Stunden bei 28°C geschüttelt.
Mit der erhaltenen Kulturbrühe werden 1000 Raumteile des Kulturmediums beimpft, das die vorstehend
genannte Zusammensetzung hat, worauf 22 Stunden bei 281C unter Schütteln bebrütet wird. Die erhaltene
Kulturbrühe wird zentrifugiert, wobei 25 Raumteile (gerechnet als Trockensubstanz) Zellen erhalten werden,
die, bezogen auf das Gesamtgewicht, 12,2% Ribonucleinsäure enthalten. Die Zellen werden auf die
im Beispiel 1 beschriebene Weise aufgearbeitet, wobei
G 2,5 Gewichtsteile Ribonucleinsäure erhalten werden.
Wenn ein Wildstamm von Candida tropicalis Berkhout an Stelle des genannten Mutanten unter den
gleichen Bedingungen kultiviert wird,, werden 22 Gewichtsteile (gerechnet als Trockensubstanz) Zellen
ίο erhalten, die nur 3,4 °/0 Ribonucleinsäure enthalten.
B e i s ρ i e I 5
Mit dem gegen 3,7-Diaminophenothiazoniumchlorid resistenten Mutanten Candida tropicalis Berkhout
ATCC 20 005 werden 1000 Raumteile des Kulturmediums der" in Tabelle 2 genannten Zusammensetzung
auf die im Beispiel 1 beschriebene Weise geimpft, wobei 24 Gewichtsteile (gerechnet als Trockensubstanz)
Zellen erhalten werden, die, bezogen auf das Gesamtgewicht, 11,4% Ribonucleinsäure enthalten.
Die Zellen werden in 250 Raumteilen einer Natriumhydroxidlösung suspendiert, deren pH-Wert 8,0
beträgt. Die Suspension wird 60 Minuten auf 13O0C erhitzt. Zur Suspension werden 50 Gewichtsteile eines
im Handel erhältlichen Filterhilfsmittels gegeben. Das erhaltene Gemisch wird unter' Druck filtriert. Zum
Filtrat werden 1000 Raumteile Äthanol gegeben, wobei 23 Gewichtsteile Oligonucleotid erhalten werden.
Isolierung und Selektion der verwendeten Mutanten
Mit Zellen der Mikroorganismen werden 10 ml eines Kulturmediums geimpft, das hergestellt wird,
indem das Kulturmedium der in Tabelle 1 genannten Zusammensetzung durch die entsprechend bemessene
Menge (in Konzentration) des Farbstoffs ergänzt wird, worauf das Medium 4 Tage bei 28°C geschüttelt
wird. Im Gegensatz zu Zellen von Wildstämmen, die praktisch nicht wachsen, sind die Mutantenzellen in
der tage, zu wachsen. Die erhaltene Kulturbrühe wird
auf der Oberfläche einer synthetischen Agarplatte ausgebreitet, die die entsprechend bemessene Menge des
Farbstoffs enthält, wodurch die Zellen des Mutanten auf der Oberfläche der Agarplatte während der Bebrütung
für eine Dauer von 3 bis 7 Tagen zu Kolonien heranwachsen können. Diese Kolonien, die aus Mutantenzellen
bestehen, die gegen den Farbstoff resistent sind, werden voneinander isoliert.' Mit jedem dieser
Mutanten wird das synthetische flüssige Medium beimpft, worauf unter den in jedem Beispiel genannten
Bedingungen kultiviert wird. Die Trübungen der Kulturbrühe werden gemessen, um die Fortpflanzung
der Mutanten zu ermitteln.
Von diesen Mutanten wird der Stamm, der eine hohe Dichte ergibt, für die Erzeugung in der beschriebenen
Weise ausgewählt.
In den nachfolgenden Vergleichsversuchen werden die Hefen der französischen Patentschrift 1 381 311
hinsichtlich ihrer Ribonucleinsäure ansammelnden Wirkung mit den erfindungsgemäßen Hefen verglichen.
Vergleichsversuche
Teströhrchen werden mit je 5 ml eines Kulturmediums der folgenden Zusammensetzung gefüllt:
209 611/88
9 10
Gasöl* 300 g Jedes der Teströhrchen wird mit einer öse der in
NH4NO3 10 g der nachfolgenden Tabelle aufgezählten Stämme be-
KH2PO4 20 g impft und 24 Stunden bei 28°C unt;r Schütten be-
K2HPO4 10 g brütet. Dann werden Schüttilflaschen mit einem
MgSO4 · 7H2O Ig 5 Fassungsvermögen von 200 ml mit jeweils 20 ml· des
MnSO4 · 4H2O 0,01 g Kulturmediums beschickt und jeweils mit 0,4 ml der
ZnSO4 · 7H2O 0,01 g jeweiligen Kulturbrühe geimpft und 24 Stunden bei
FeSO4 -7H2O ....... 0,01 g 28° C unter Schütteln bebrütet. Di; Zellausbeute und
Maisquellwasser .'.'...' 10 g der Gehalt der Zellen an Ribonuchinsäiire wird beWasser
'....'. r.. zu 1 Liter io zogen auf die trockene ZeIh bestimmt.1 Die Ergebnisse
pH 6,0 zeigt die nachfolgende Tabelle. . , .
♦ Das verwendete Gasöl hat folgende Eigenschaften: Die Vergleichsversuche zeigen, daß von den sechs
Έ) Bestandteile: Hefen der französischen Patentschrift 1 381 311 nur
R^vh^nTiV^ii16"510^1116" ""n «./ Candida lipolytica CBS 599 überhaupt auf dem gas-
η-Paraffine mit Kohlenstoffzahlen im 1S ölhaltigen Kulturmedium wachst, während die anderen
. Bereich von 12 bis 13 6,5% fünf Stämme kein Wachstum zeigen. Auch bei Candida
verzweigtkettige Paraffine 10°/„ lipolytica CBS 599 ist jedoch die Anreicherung von
-- dgSSSSSJSf!1!'.:!!"!!"!".!Si!: Ribonucleinsäure wesentlich gering*, als bei den
monoaromatische Kohlenwasserstoffe 12% Mutanten gemäß der Erfindung,
diaromatische Kohlenwasserstoffe ... 8 % 20 -
b) Siedebereich 180 bis 35O°C
c) Flammpunkt etwa71°C - -
| :' Stämme | Zellausbcute | Ribonucleinsäure- gehalt der Zellen _ |
| a) französische Patentschrift 1 381 311 Candida lipolytica CBS 599 Candida pulcherrima CBS 610 Candida utilis CBS 890 |
18,0 mg/ml kein Wachstum kein Wachstum kein Wachstum kein Wachstum kein Wachstum 20,0 mg/ml 21,2 mg/ml 21,3 mg/ml 21,8 mg/ml |
7,5 °/o , |
| Candida utilis var. major CBS 841 Candida Tropicalis CBS 2317 . Torulopsis colliculosa CBS 133 i>) Erfindung Candida tropicalis Berkhout ATCC 20 006 Candida parapsilosis Langeron et Talice ATCC 20 008 Candida tropicalis Berkhout ATCC 20 007 Candida tropicalis Berkhout ATCC 20 005 λ |
. ll,8°/o 11,9% 11,7 °/o ■12,17ο |
Claims (1)
- Patentanspruch:, Verfahren zum Verbsssern des Ribonucleinsäuregehalts von Hefezellen durch Züchten von Hefe- 45 zellen unter aeroben Bedingungen und üblichen pH- und Temperaturverhältnissen in einem Nährmedium, welches als Hauptkohlenstoffquelle Kohlenstoffe, die wenigstens 10 Volumen pro Volumen an η-Paraffinen mit 14 bis 21. Kohlenstoffatomen aufweisen, und übliche Nährstoffe enthält, dadurch gekennzeichnet, daß man als Hefe Candida tropicalis Berkhout ATCC 20 005, 20 006 und 20 007 oder Candida parapsilosis Langeron et Talice ATCC 20 008 einsetzt.
Family
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