DE10006578C2 - Verwendung von kompatiblen Soluten als Inhibitoren des enzymatischen Abbaus von makromolekularen Biopolymeren - Google Patents
Verwendung von kompatiblen Soluten als Inhibitoren des enzymatischen Abbaus von makromolekularen BiopolymerenInfo
- Publication number
- DE10006578C2 DE10006578C2 DE10006578A DE10006578A DE10006578C2 DE 10006578 C2 DE10006578 C2 DE 10006578C2 DE 10006578 A DE10006578 A DE 10006578A DE 10006578 A DE10006578 A DE 10006578A DE 10006578 C2 DE10006578 C2 DE 10006578C2
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- biopolymers
- use according
- diseases
- compatible
- compatible solutes
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
- A61K31/7004—Monosaccharides having only carbon, hydrogen and oxygen atoms
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/13—Amines
- A61K31/131—Amines acyclic
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/185—Acids; Anhydrides, halides or salts thereof, e.g. sulfur acids, imidic, hydrazonic or hydroximic acids
- A61K31/19—Carboxylic acids, e.g. valproic acid
- A61K31/195—Carboxylic acids, e.g. valproic acid having an amino group
- A61K31/197—Carboxylic acids, e.g. valproic acid having an amino group the amino and the carboxyl groups being attached to the same acyclic carbon chain, e.g. gamma-aminobutyric acid [GABA], beta-alanine, epsilon-aminocaproic acid, pantothenic acid
- A61K31/198—Alpha-aminoacids, e.g. alanine, edetic acids [EDTA]
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/185—Acids; Anhydrides, halides or salts thereof, e.g. sulfur acids, imidic, hydrazonic or hydroximic acids
- A61K31/205—Amine addition salts of organic acids; Inner quaternary ammonium salts, e.g. betaine, carnitine
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/33—Heterocyclic compounds
- A61K31/395—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
- A61K31/40—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having five-membered rings with one nitrogen as the only ring hetero atom, e.g. sulpiride, succinimide, tolmetin, buflomedil
- A61K31/401—Proline; Derivatives thereof, e.g. captopril
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/33—Heterocyclic compounds
- A61K31/395—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
- A61K31/495—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with two or more nitrogen atoms as the only ring heteroatoms, e.g. piperazine or tetrazines
- A61K31/505—Pyrimidines; Hydrogenated pyrimidines, e.g. trimethoprim
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/66—Phosphorus compounds
- A61K31/665—Phosphorus compounds having oxygen as a ring hetero atom, e.g. fosfomycin
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/66—Phosphorus compounds
- A61K31/683—Diesters of a phosphorus acid with two hydroxy compounds, e.g. phosphatidylinositols
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Description
Die vorliegende Erfindung betrifft die Verwendung von kompatiblen Soluten als Inhibitoren des enzymatischen Ab
baus von makromolekularen Biopolymeren.
Unerwünschter Abbau von makromolekularen Biopolymeren wird durch die spezifische Hemmung der die Reaktion
katalysierenden Enzyme verhindert.
Überraschenderweise wurde nun gefunden, dass der enzymatische Abbau von makromolekularen Biopolymeren auch
durch Zugabe von kompatiblen Soluten unterdrückt werden kann, ohne dass es einer spezifischen Hemmung der den Ab
bau katalysierenden Enzyme bedarf.
Gegenstand der Erfindung ist daher die Verwendung kompatibler Solute als Inhibitoren des enzymatischen Abbaus
von makromolekularen Biopolymeren.
Biologische Makromoleküle werden in anabolischen und katabolischen Stoffwechselprozessen auf- und abgebaut.
Die enzymatische Aufspaltung organischer Makromoleküle in deren Monomerverbindungen kann durch Hydrolyse oder
durch Phosphorolyse geschehen. Die Spaltung erfolgt bei der Hydrolyse unter Verbrauch von Wasser, bei der Phospho
rolyse unter Verbrauch von Phosphat.
Die natürlichen Katalysatoren der Hydrolyse sind Hydrolasen. Zu den Hydrolasen zählen Lipasen, welche Fette zu
Glycerin und Fettsäuren spalten, Phospholipasen, welche als Verdauungsenzyme Esterbindungen von Phosphatidylver
bindungen spalten, Nukleasen, welche Nukleinsäurepolymere wie DNA und RNA spalten, Glykosidasen, welche Gly
koside spalten, und Proteasen, welche die Peptidbindungen von Proteinen spalten.
Während der Proteolyse - also der Hydrolyse von Proteinen - werden die Peptidbindungen (auch Amidbindungen ge
nannt) zwischen der α-Aminogruppe einer Aminosäure und der α-Carboxylgruppe einer zweiten Aminosäure unter Ver
brauch eines Wassermoleküls gespalten. Im Falle der Spaltung eines Dipeptids - eines Peptids bestehend aus zwei Ami
nosäuren - werden durch Proteolyse zwei freie Aminosäuren gebildet.
Die bislang bekannten Proteasen ordnet man entsprechend ihrer Funktionsweise und ihren Substraten verschiedenen
Proteaseklassen bzw. -familien zu. Folgende Proteaseklassen sind beschrieben:
Proteolysen können partiell (limitiert) oder vollständig (total) ablaufen. Bei der partiellen Proteolyse entstehen unter
schiedlich große Proteinfragmente bzw. Peptide, bei der totalen Hydrolyse wird ein Protein vollständig zu Aminosäuren
abgebaut. Die Proteinketten werden hier strukturspezifisch oder -unspezifisch vom Ende der Proteinstränge durch soge
nannte Exoproteinasen oder nach einer Spaltung mitten im Proteinstrang durch sogenannte Endoproteinasen abgebaut.
Die enzymkatalysierte Hydrolyse wird auf vielen technischen Gebieten angewendet, wobei in der Biotechnik insbe
sondere die Proteolyse eine große Bedeutung besitzt. Spezifische Proteasen werden beispielsweise als biochemische
Werkzeuge zur Aufklärung von Struktur-/Funktionsbeziehungen von Proteinen eingesetzt. Hierzu werden Proteine einer
partiellen (limitierten) Proteolyse unterzogen und es wird geprüft, welche Eigenschaften die verbleibenden Protein
bruchstücke bzw. Peptide besitzen. Proteaseinhibitoren werden hier gezielt zum Abbruch ablaufender Proteolysen einge
setzt.
Die Proteolyse wird des weiteren zur Proteinsequenzanalyse und zur Peptidkartierung eingesetzt. Ebenfalls werden
Proteasen zur Analyse der Topologie von Protein enthaltenden, biologischen Membranen und zur Solubilisierung von
Membranproteinen verwendet.
Proteasen werden auch großtechnisch zur katalytischen Prozessierung von Proteinen und Peptiden eingesetzt. So wer
den Proteasen in Waschmitteln zur Entfernung von Proteinverunreinigungen in Textilien oder zur Reinigung technischer
Oberflächen von Proteinverschmutzungen verwendet. Außerdem werden Proteasen zur industriellen Herstellung von
Peptiden oder Aminosäuren aus Proteinen genutzt.
Biologische Makromoleküle und Polymere können vor einem enzymatischen Abbau geschützt werden.
So kann beispielsweise die Proteolyse durch die Protease hemmende, sogenannte Proteaseinhibitoren teilweise oder
vollständig verhindert werden. Proteaseinhibitoren werden in zwei Klassen unterteilt:
- - Niedermolekulare, spezifisch am aktiven Zentrum einer Protease bindende Hemmstoffe, welche irreversibel die Aminosäurereste im aktiven Zentrum der Proteasen derart modifizieren, dass diese ihre Funktionalität verlieren.
- - Proteaseinhibitoren, welche als sogenannte Pseudosubstrate für Proteasen dienen. Proteasen werden sozusagen von ihrem eigentlichen Proteinsubstrat ablenkt und der Reaktionslösung stöchiometrisch entzogen. Die Proteasen werden hier zwar nicht zerstört, aber spezifisch entfernt. Klasse 2 Proteaseinhibitoren sind ebenfalls solche, welche den Enzymen für ihre Aktivität essentielle Cofaktoren entziehen.
Zur erstgenannten Gruppe zählen z. B. die Serin-Protease-Inhibitoren Diisopropyl Phosphofluoridate (DFP) und Phe
nylmethansulfonyl Fluoride (PMSF). Aspartat Proteasen werden durch Diazoacetyl Verbindungen und durch Pepstatin
inaktiviert. Metallo-Proteasen werden generell durch metall-chelatisierende Reagenzien inhibiert. Carboxypeptidase A
und B werden spezifisch durch aus Kartoffeln isolierbare Hemmstoffe und Thermolysin durch Phosphoramidon ge
hemmt.
Zur zweiten Gruppe der Proteaseinhibitoren zählen z. B. Pankreas Trypsin Inhibitor, Sojabohne Trypsin Inhibitor, α-
Proteaseinhibitor und der universelle Proteaseinhibitor α-2-Makroglobulin.
G. Salvesen und H. Nagase (1989) geben einen Überblick über die nach dem Stand der Technik genutzten Klasse 1
und Klasse 2 Inhibitoren [Inhibition of proteolytic enzymes in Proteolytic enzymes: A practical approach (Herausgeber;
R. J. Beynon und J. S. Bond, IRL Press Oxford)].
Klasse 1 Proteaseinhibitoren haben aufgrund ihres Wirkprinzips alle den Nachteil, dass sie grundsätzlich mit allen
Proteinen und nicht nur mit Proteasen bzw. deren aktiven Zentren reagieren können. Klasse 1 Proteaseinhibitoren besit
zen somit für biologische Systeme und Organismen ein toxisches Potential. Klasse 2 Proteaseinhibitoren weisen u. a. den
Nachteil auf, dass sie die Proteasen nur stöchiometrisch und reversibel hemmen. Eine Proteolyse bleibt prinzipiell immer
möglich.
Den bis hierher beschriebenen Verfahren zum Schutz vor enzymatischem Abbau ist gemein, dass der jeweils dafür
verantwortliche Biokatalysator spezifisch gehemmt wird.
Die Proteolyse von Proteinen kann auch durch Proteindenaturierung verhindert werden. Hierbei wird die Sekundär-,
Tertiär- sowie Quartär-Struktur aller Proteine vollständig zerstört, so dass spezifische Proteasen keine Aktivität mehr auf
weisen. Derartige Denaturierungen werden durch chaotrope Reagenzien, wie z. B. Harnstoff oder Guanidiniumhydro
chlorid, bzw. durch Detergenzien, wie Natriumdodecylsulfat, erreicht. Besonders nachteilig bei diesen Verfahren ist, dass
eine Proteolyse zwar verhindert wird, aber die zu schützenden Proteine in den meisten Fällen ihre Funktion einbüssen.
Keine der hier aufgeführten Methoden zielt auf die Stabilisierung der jeweiligen Substrate ab.
Überraschenderweise hat sich gezeigt, dass die Verwendung von kompatiblen Soluten den Abbau von makromoleku
laren Biopolymeren, insbesondere von Makromolekülen, Proteinen, Lipiden oder Nucleinsäuren, mit degradierenden
Enzymen verhindert.
Vorzugsweise werden erfindungsgemäß als kompatible Solute Substanzen gewählt aus der Gruppe bestehend aus Ec
toin, wie Hydroxyectoin, Prolin, Betain, Glutamin, cyclisches Diphosphoglycerat, Mannosylgly
cerat, Derivaten des Mannosylglycerats wie Mannosylglyceramid, Di-myo-Inositolphosphat, Diglycerolphosphat, Nγ-
Acetylornithin, Trimethylamine-N-oxid oder Kombinationen davon eingesetzt werden.
Die Verwendung der kompatiblen Solute in einer Konzentration von 0,05 bis 2,0 M ist bevorzugt. Weiter bevorzugt ist
bei Verwendung von Ectoin eine Konzentration von 0,1-1 M, insbesondere 0,1-0,5 M. Bei Verwendung anderer Solute
sind 0,4-1,5 M, insbesondere 0,4-1,2 M bevorzugt.
Erfindungsgemäß wird ein Verfahren zum Schutz von Biopolymeren vor dem Abbau durch degradierende Enzyme be
reitgestellt, bei dem zu einer die Biopolymere enthaltenden Probe kompatible Solute zugefügt werden.
Gegebenenfalls erfolgt nach Zugabe des kompatiblen Solutes oder der kompatiblen Solute eine Inkubation, woraufhin
sich gegebenenfalls Weiterverarbeitungsschritte, wie Zellaufschluß und Isolierung des abbaubaren Biopolymers an
schließen.
Insbesondere ist die Probe ein biotechnischer Ansatz zur Herstellung von Proteinen oder Nucleinsäuren.
Die der Erfindung zugrunde liegenden Untersuchungen haben nun überraschend gezeigt, dass durch Einsatz kompati
bler Solute der enzymatische Abbau verhindert werden kann, wobei erstaunlicherweise weder die Funktionalität des zu
schützenden Biopolymers noch die des abbauenden Enzymes verloren gehen. Die Resultate zeigen außerdem, dass Ma
kromoleküle vor einem enzymatischen Angriff geschützt werden können, während kleine Proteine und Peptide nicht ge
schützt werden.
Der Abbau scheint also bei Einwirkung kompatibler Solute nicht durch eine spezifische Inhibition oder Eliminierung
der degradierenden Enzyme, sondern vielmehr über eine möglicherweise unspezifische Stabilisierung der makromoleku
laren Substrate selbst verhindert zu werden. Durch die Zugabe von kompatiblen Soluten wird das Biopolymer scheinbar
in seiner Struktur so verändert, dass das abbauende Enzym das Biopolymer nicht mehr "erkennt". Enzymatischer Abbau
von Biomolekülen wird somit wahrscheinlich durch sterische Enzym-Substrat-Inkompatibilität unspezifisch unter
drückt.
Die Anwendung der Erfindung hat insbesondere für Anwendungen bei Proteinen den immensen Vorteil, dass eine ein
zige Inhibitionslösung universell einsetzbar wird. Häufig enthalten Proteinlösungen ein größeres Spektrum an uner
wünschten Proteasen, was nach dem Stand der Technik für jeden Proteasetyp einen spezifischen Inhibitor erfordert und
die Verwendung von Inhibitionsmixturen nach sich zieht. Dieses Vorgehen und die damit verbundenen Nachteile können
durch das erfindungsgemäße Verfahren umgangen werden.
Im Zusammenhang mit den hier beschriebenen Wirkungen stehen auch Wirkungen der kompatible Solute als Arznei
mittel. Erfindungsgemäß können die kompatiblen Solute zur Herstellung von Arzneimitteln zur Behandlung von Erkran
kungen eingesetzt werden, die durch enzymatischen Abbau von Biopolymeren und von Bioploymeren gebildeten Strukturen,
wie Zellen, Organellen oder Gewebe, verursacht werden und im kausalen Zusammenhang mit pathologischen Er
scheinungen stehen. Dazu gehören insbesondere Erkrankungen, wie Erkrankungen des Immunsystems, wie Autoimm
unerkrankungen, Insulin abhängige Diabetes melitus, Graves-Krankheit, Hashimotos-Krankheit, nachteilige Nebenwir
kungen von Strahlungsbehandlungen, Entzündungsprozesse, Transplantabstoßung, HIV-Infektionen bzw. retrovirale In
fektionen (z. B. Herpes), Gewebeverletzung/Wundheilung, akute und chronische Entzündung, akute Pankreatitis,
Schockzustände, fibrinolytische Blutung, Herzkrankheiten (z. B. Infarkt), Alzheimer's Krankheit, neuronale Degenera
tion, Krankheiten von Leber, Skelett und Muskel, Bluthochdruck, Metastasenbildung von Krebszellen und Hautkrebs.
Die Wirksamkeit des der Erfindung zugrunde liegenden Prinzips wurde durch Hemmung der limitierten Proteolyse
von Antikörpern dokumentiert. Die Experimente wurden mit folgenden Antikörpern oder Konjugaten ausgeführt: Hu
manes IgG: Sigma Product No. 14506 Lot 037H8816; Rinder IgG; Serva; Cohn-Fraktion II Product No. 22550; Mono
klonaler Maus Anti-Human IgG: DAKO Klon A57H Code No. Mo828 Lot 076 IgM kappa: Kaninchen Anti-Maus IgG +
IgM (H + L); Dianova Code No. 315-035-058 Lot 39605.
Es wurden limitierte Proteolysen des humanen IgG bei einer Antikörperkonzentration von 0,5 mg/ml und einer Pep
sinkonzentration von 5 µg/ml bei 37°C in 100 mM Natriumacetat pH 3 durchgeführt. Die Inkubationen erfolgten ohne
Zusätze unter 0,5 M Ectoin, unter 0,5 M Hydroxyectoin sowie unter einer Mischung aus 0,25 M Ectoin und 0,25 M Hy
droxyectoin. Der Verlauf der limitierten Proteolysen wurde im Anschluss an die Inkubationen in 12%igen SDS-Gelen
unter reduzierenden Bedingungen quantifiziert.
Aus Fig. 1 ergibt sich, dass die Hydrolyse der schweren Kette sowohl durch Ectoin als auch durch Hydroxyectoin si
gnifikant gehemmt wird.
Fig. 1 zeigt die limitierte Proteolyse der schweren Ketten (s. K.) eines humanen Antikörpers (IgG) durch Pepsin. Bah
nen 1, 5, 9: mit Wasser: Bahnen 2, 6, 10: mit Ectoin; Bahnen 3, 7, 11: mit Ectoin und Hydroxyectoin; Bahnen 4, 8, 12: mit
Hydroxyectoin; Bahnen 1, 2, 3, 4: ohne Inkubation; Bahnen 5, 6, 7, 8; nach 15 min. Inkubation; Bahnen 9, 10, 11, 12;
nach 180 min. Inkubation.
Die Hemmung der Proteolyse von Antikörpern durch Ectoin wurde zusätzlich mittels Enzyme Linked Immunosorbant
Assay (ELISA) gezeigt. Dazu wurden 96-Well-ELISA-Platten über Nacht mit 0,5 µg humanem IgG in 100 µl 0,9% NaCl
bei 4°C beschichtet. Im Anschluß daran wurden die Platten 3 × in 50 mM Tris, 0,8% NaCl, 0,02% KCl, pH 74 C(T-TBS)
gewaschen und mit 200 µl 1% Gelatine in TBS für 2 Stunden bei 37°C blockiert. Nach dreimaligem Waschen in T-TBS
erfolgte eine Inkubation mit einem monoldonalen Maus-anti-Human-IgG 1 : 250 in TBS verdünnt mit 50 µl pro Well für
eine Stunde bei 37°C. Nach viermaligem Waschen mit T TBS erfolgte eine Inkubation mit einem Peroxidase konjugier
ten Kaninchen anti-Maus-Antikörper 1 : 5000 in TBS verdünnt mit 100 µl pro Well für eine Stunde bei 37°C. Nach wei
terem viermaligem Waschen erfolgte die Enzymreaktion durch Zugabe von 100 µl pro Well Substrat. Als Substrat diente
4,8 mg Phenylendiamin in 3 ml 0,2 M Na2HPO4, 3 ml 0,1 M Citronensäure, 6 ml Wasser und 5 µl H2O2. Die Reaktion
wurde nach ca. 10 Minuten durch Ansäuern mit 100 µl pro Well 0,07 M Schwefelsäure gestoppt und die Platten in einem
ELISA-Autoreader quantifiziert. Alle drei Proteinkomponenten wurden vor dem Experiment für zwei Stunden bei 37°C
mit bzw. ohne Zugabe von 0.5 M Ectoin durch Pepsin proteolysiert. Wie aus Tabelle 2 ersichtlich ist, konnten zwei An
tikörper gegen den proteolytischen Verdau durch Zugabe von 0,5 M Ectoin wirkungsvoll geschützt werden. Das Anti
körperkonjugat wurde nicht durch Pepsin angegriffen. Die Behandlung wurde in analoger Weise mit Hydroxyectoin,
Prolin und Betain durchgeführt.
Die Konzentrationsabhängigkeit des Effektes vom kompatiblen Solut wurde am Beispiel von Ectoin, Hydroxyectoin,
Prolin und Betain bestimmt. Hierbei wurde das humane Immunglobulin wie beschrieben proteolysiert und der Effekt im
ELISA quantifiziert.
Fig. 2 zeigt die Konzentrationsabhängigkeit der Stabilisierung eines humanen Antikörpers gegen Proteolyse durch
Pepsin in Gegenwart steigender Konzentration an Ectoin, Hydroxyectoin, Prolin, Betain. Die Fig. 3 zeigt das Ergebnis
der Kontrollversuche ohne Zugabe von Pepsin zum Gemisch aus Antikörper und kompatiblem Solut.
Die Experimente lassen prinzipiell zwei Erklärungsmöglichkeiten zu. Zum einen könnten die kompatiblen Solute die
Protease inhibieren. Zum anderen könnten die Solute erfindungsgemäß über die Stabilisierung der nativen, kompakteren
Konformation des Antikörpermoleküls den Angriff der Protease aus sterischen Gründen verhindern. Es wurde daher der
Effekt von Ectoin und Hydroxyectoin auf die Aktivität von Pepsin anhand der Hydrolyse eines synthetischen, niedermo
lekularen Hexapeptids spektrophotometrisch bestimmt [Schinaith, E.: Clin. Biochem. 22, 91-98 (1989)]. Die enzymki
netischen Messungen mit Leu-Ser-p-NitroPhe-Nle-Ala-Leu-Methylester als Substrat zeigten, dass weder Ectoin noch
Hydroxyectoin die Protease inhibieren. Dies ist ein deutliches Indiz dafür, dass die Hemmung der Antikörperproteolysen
erfindungsgemäß auf sterische Effekte zurückzuführen ist.
Claims (12)
1. Verwendung von kompatiblen Soluten zum Schutz von Biopolymeren vor
Abbau durch degradierende Enzyme.
2. Verwendung nach Anspruch 1, wobei die Biopolymere Makromoleküle,
Lipide, Proteine, Fette oder Nucleinsäuren sind.
3. Verwendung nach Anspruch 1 und/oder 2, wobei die degradierenden
Enzyme Hydrolasen oder Phosphorylasen sind.
4. Verwendung nach Anspruch 3, wobei die Hydrolasen Proteasen sind.
5. Verwendung nach einem der Ansprüche 1 bis 4, wobei als kompatible
Solute Substanzen gewählt aus der Gruppe bestehend aus Ectoin,
Hydroxyectoin, Prolin, Betain, Glutamin, cyclisches Diphosphoglycerat,
Mannosylglycerat, Mannosylglyceramid, Di-myo-inositol-1,1'-Phopshat,
Diglycerolphosphat, Nγ-Acetylornithin, Trimethylamine-N-oxid oder
Kombinationen davon eingesetzt werden.
6. Verwendung nach mindestens einem der Ansprüche 1 bis 5, wobei die
kompatiblen Solute in einer Konzentration von 0,05 bis 2 M eingesetzt
werden.
7. Verfahren zum Schutz von Biopolymeren vor Abbau durch degradierende
Enzyme, wobei zu einer die Biopolymere enthaltenden Probe kompatible
Solute zugefügt werden.
8. Verfahren nach Anspruch 7, wobei nach Zugabe des kompatiblen Soluts
oder der kompatiblen Solute eine Inkubation erfolgt, woraufhin sich
gegebenenfalls Weiterverarbeitungsschritte, wie Zellaufschluß und
Isolierung des abbaubaren Biopolymers anschließen.
9. Verfahren nach Anspruch 7 und/oder 8, wobei die Probe ein
biotechnologischer Ansatz zur Herstellung von Proteinen oder
Nucleinsäuren ist.
10. Verwendung von kompatiblen Soluten zur Herstellung eines Arzneimittels
zur Behandlung von Erkrankungen, die durch den Abbau von
Biopolymeren und von Bioploymeren gebildeten Strukturen, wie Zellen,
Organellen oder Gewebe, durch degradierende Enzyme verursacht
werden.
11. Verwendung nach Anspruch 10, wobei die Erkrankungen ausgewählt sind
aus der Gruppe bestehend aus Erkrankungen des Immunsystems, Insulin
abhängige Diabetes melitus, Graves-Krankheit, Hashimotos-Krankheit,
nachteilige Nebenwirkungen von Strahlungsbehandlungen,
Entzündungsprozesse, Transplantabstoßung, HIV-Infektionen bzw.
retrovirale Infektionen, Gewebeverletzung/Wundheilung, akute und
chronische Entzündung, akute Pankreatitis, Schockzustände,
fibrinolytische Blutung, Herzkrankheiten, Alzheimer's Krankheit,
neuronale Degeneration, Krankheiten von Leber, Skelett und Muskel,
Bluthochdruck, Metastasenbildung von Krebszellen und Hautkrebs.
12. Verwendung nach Anspruch 10, wobei die Erkrankungen ausgewählt sind
aus der Gruppe bestehend aus Autoimmunerkrankungen, Herpes und
Infarkt.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE10006578A DE10006578C2 (de) | 2000-02-14 | 2000-02-14 | Verwendung von kompatiblen Soluten als Inhibitoren des enzymatischen Abbaus von makromolekularen Biopolymeren |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE10006578A DE10006578C2 (de) | 2000-02-14 | 2000-02-14 | Verwendung von kompatiblen Soluten als Inhibitoren des enzymatischen Abbaus von makromolekularen Biopolymeren |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE10006578A1 DE10006578A1 (de) | 2001-08-23 |
DE10006578C2 true DE10006578C2 (de) | 2002-10-31 |
Family
ID=7630907
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE10006578A Expired - Fee Related DE10006578C2 (de) | 2000-02-14 | 2000-02-14 | Verwendung von kompatiblen Soluten als Inhibitoren des enzymatischen Abbaus von makromolekularen Biopolymeren |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE10006578C2 (de) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102225066A (zh) * | 2011-04-29 | 2011-10-26 | 济南环肽医药科技有限公司 | 四氢嘧啶及其衍生物在制备治疗胰腺炎药物中的应用 |
CN102247374A (zh) * | 2011-04-22 | 2011-11-23 | 山东弘立医学动物实验研究有限公司 | 四氢嘧啶及其衍生物在制备治疗皮肤创伤的药物中的应用 |
CN112245433A (zh) * | 2020-11-27 | 2021-01-22 | 华熙生物科技股份有限公司 | 依克多因类物质在制备防治缺血性脑卒中药物中的应用 |
Families Citing this family (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE10043456A1 (de) * | 2000-09-04 | 2002-03-14 | Merck Patent Gmbh | Verwendung von Ectoin oder Ectoin-Derivaten zur Stabilisierung von p53 |
US7048910B2 (en) | 2000-09-07 | 2006-05-23 | Merck Patent Gmbh | Use of ectoine or ectoine derivatives for oral care |
DE10214257A1 (de) | 2002-03-28 | 2003-10-16 | Merck Patent Gmbh | Verwendung von kompatiblen Soluten zur Inhibierung der Freisetzung von Ceramiden |
DE10330768A1 (de) * | 2003-07-07 | 2005-02-24 | bitop Aktiengesellschaft für biotechnische Optimierung | Verwendung von aus extremophilen Bakterien gewonnenen Osmolyten zur Herstellung von inhalierbaren Arzneimitteln zur Prophylaxe und Behandlung pulmonaler und kardiovaskulärer Erkrankungen, sowie eines Osmolyte als Wirkstoffbestandteil enthaltende Inhalationsvorrichtung |
JP2008537734A (ja) * | 2005-03-12 | 2008-09-25 | ビトップ アクツィエンゲゼルシャフト フュール ビオテヒニシェ オプティミールング | 経口で用いられる適合溶質を含む薬剤 |
DE102008006780A1 (de) * | 2008-01-30 | 2009-08-06 | Bitop Ag | Verwendung von Tetrahydropyrimidinen |
DE102011113059A1 (de) * | 2011-09-09 | 2013-03-14 | Bitop Ag | Therapeutische Anwendungen von Ectoin |
DE102012013482A1 (de) | 2012-07-09 | 2014-01-09 | Bitop Ag | Zusammensetzung zur Förderung der Wiederherstellung von verletztem Körpergewebe |
DE202014011522U1 (de) | 2014-05-22 | 2021-11-05 | bitop Aktiengesellschaft (bitop AG) | Zusammensetzung zur Behandlung des Auges |
DE102014007423A1 (de) | 2014-05-22 | 2015-11-26 | Bitop Ag | Zusammensetzung zur Behandlung des Auges |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE4427617A1 (de) * | 1994-08-04 | 1996-02-08 | Erwin A Dr Galinski | Verfahren zur Gewinnung von Zellinhaltsstoffen aus halophilen und osmophilen sowie halo- und osmotoleranten Mikroorganismen |
-
2000
- 2000-02-14 DE DE10006578A patent/DE10006578C2/de not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE4427617A1 (de) * | 1994-08-04 | 1996-02-08 | Erwin A Dr Galinski | Verfahren zur Gewinnung von Zellinhaltsstoffen aus halophilen und osmophilen sowie halo- und osmotoleranten Mikroorganismen |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102247374A (zh) * | 2011-04-22 | 2011-11-23 | 山东弘立医学动物实验研究有限公司 | 四氢嘧啶及其衍生物在制备治疗皮肤创伤的药物中的应用 |
CN102247374B (zh) * | 2011-04-22 | 2013-05-22 | 山东弘立医学动物实验研究有限公司 | 含有四氢嘧啶及其衍生物的治疗皮肤创伤的药物 |
CN102225066A (zh) * | 2011-04-29 | 2011-10-26 | 济南环肽医药科技有限公司 | 四氢嘧啶及其衍生物在制备治疗胰腺炎药物中的应用 |
CN112245433A (zh) * | 2020-11-27 | 2021-01-22 | 华熙生物科技股份有限公司 | 依克多因类物质在制备防治缺血性脑卒中药物中的应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE10006578A1 (de) | 2001-08-23 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP1125583A1 (de) | Verwendung von kompatiblen Soluten als Inhibitoren des enzymatischen Abbaus von makromolekularen Biopolymeren | |
DE10006578C2 (de) | Verwendung von kompatiblen Soluten als Inhibitoren des enzymatischen Abbaus von makromolekularen Biopolymeren | |
EP0142860A2 (de) | Desulfatohirudine, Verfahren zu ihrer Herstellung und pharmazeutische Mittel | |
DE2926808A1 (de) | Proteaseprodukt mit verringerter allergener wirkung, herstellungsverfahren und waschmittel | |
DE2315501A1 (de) | Verfahren zur bestimmung von cholesterin | |
EP1074615A1 (de) | Verfahren zur Reindarstellung der den Blutgerinnungsfaktor VII aktivierenden Protease, ihres Proenzyms oder eines Gemisches beider Proteine mittels Affinitätschromatographie | |
DD296960A5 (de) | Therapreutisches mittel | |
EP1074616A1 (de) | Verfahren zur Reindarstellung der den Blutgerinnungsfaktor VII aktivierenden Protease, ihres Proenzyms oder eines Gemisches beider Proteine mittels Ionenaustauscherchromatographie | |
EP0535059B1 (de) | Dna-sequenz für eine serin-protease und damit zusammenhängende gegenstände | |
AT397390B (de) | Verfahren zur spaltung von proteinen | |
EP0421023A1 (de) | Katabolische Enzyme zur Induktion des Tumornekrose-Faktors (TNF) | |
DE3147947C2 (de) | Verfahren zur Herstellung halbsynthetischer Enzyme | |
EP0065246B1 (de) | Verfahren zur Gewinnung anaboler, atmungsfördernder, niedermolekularer Wirkstoffe für prophylaktische, therapeutische, zell- und gewebekulturtechnische Zwecke | |
DE2509482C2 (de) | Verfahren zur Herstellung des Kallikrein-Trypsin-Inhibitors aus Rinderlunge | |
DD158109A1 (de) | Verfahren zur hemmung der katalytischen aktivitaet von peptidhydrolasen | |
EP1096951A1 (de) | Verwendung von bromelainproteasen zur hemmung der blutgerinnung | |
DE4308061A1 (de) | Neue Aminosäure-Deacetylase mit Spezifität für L-N-Acetyl-Phosphinothricin, ihre Herstellung und Verwendung | |
DE2122298A1 (de) | Verfahren zur Gewinnung von Creatininamidohydrolase | |
DE2900926C2 (de) | ||
DE69634090T2 (de) | Verfahren zur verhinderung der aktivität des chymopapain- und ppainenzyms mit tierischen polysacchariden | |
DE4325746C2 (de) | Verfahren zur Herstellung von Peptiden | |
DE102008054494B4 (de) | Hefezellbasierter Bioassay zur Testung spezifischer Inhibitoren gegen humane tumorrelevante Matrix-Metalloproteasen (MMPs) | |
WO1998001108A1 (de) | Definierte enzymmischungen für kosmetische zwecke | |
EP0373335A2 (de) | Neue Serinprotease-Inhibitor-Proteine, diese enthaltende Arzneimittel, DNA-Sequenzen die für diese Proteine codieren und Verfahren zur Herstellung dieser Proteine, Arzneimittel und DNA-Sequenzen | |
Klebe | Inhibitoren für Hydrolasen mit Acylenzym-Zwischenstufe |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
OP8 | Request for examination as to paragraph 44 patent law | ||
8127 | New person/name/address of the applicant |
Owner name: BITOP AKTIENGESELLSCHAFT FUER BIOTECHNISCHE OPTIMI |
|
D2 | Grant after examination | ||
8364 | No opposition during term of opposition | ||
R119 | Application deemed withdrawn, or ip right lapsed, due to non-payment of renewal fee |