CZ357997A3 - Promotory pro genovou expresi - Google Patents

Promotory pro genovou expresi Download PDF

Info

Publication number
CZ357997A3
CZ357997A3 CZ973579A CZ357997A CZ357997A3 CZ 357997 A3 CZ357997 A3 CZ 357997A3 CZ 973579 A CZ973579 A CZ 973579A CZ 357997 A CZ357997 A CZ 357997A CZ 357997 A3 CZ357997 A3 CZ 357997A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
protein
recombinant dna
promoter
dna construct
sequence
Prior art date
Application number
CZ973579A
Other languages
English (en)
Inventor
Peter A. Lagosky
Original Assignee
Astra Aktiebolag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Astra Aktiebolag filed Critical Astra Aktiebolag
Publication of CZ357997A3 publication Critical patent/CZ357997A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • C12N15/72Expression systems using regulatory sequences derived from the lac-operon
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/635Parathyroid hormone (parathormone); Parathyroid hormone-related peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide

Description

Tento vynález se týká oblasti genetického inženýrství aplikovaného na bakteriální hostitele. Přesněji, vynález se týká expresních systémů pro produkci proteinů v bakteriálních hostitelých.
Dosavadní stav techniky
Příchod rekombinantní DNA technologie umožnil produkci různých přirozeně se vyskytujících a syntetických proteinů v organismech jako jsou bakterie, houby, kvasinky a savčí buňky. Obecně tato produkce vyžaduje inserci genů, které kódují požadovaný protein do hostitelského organismu a využití buněčného mechanismu pro expresi genu.
Rekombinantní DNA technologie se kontinuálně vyvíjí pro dosažení produkce v komerčně akceptovatelných množstvích. Limitujícím faktorem v rekombinantní produkci proteinů je stupeň, ve kterém je gen kódující požadovaný protein exprivován. Přesněji, bylo zjištěno, že promotorovy region genu je zásadní pro proces transkripce genové exprese. Účinný promotor jako je trp promotor nalezený v E. coli, se váže těsně na DNA-zaměřenou RNA polymerasu pro navození trankripce genu v generování mRNA. Méně účinný promotor jako je lac promotor se váže na RNA polymerasu méně těsně, což vede k nižšímu stupni generování mRNA.
trp promotor je široce používán v produkci heterologních • · · ··· ··· ··· ·· ·· ··· ·· ·· proteinů vzhledem ke své schopnosti účinně iniciovat transkripci. Navzdory jeho účinnosti, základní nevýhodou trp promotoru je to, že není snadno kontrolovatelný. Přesněji, trp promotor není plně reprivovatelný, t.j. může řídit transkripci před tím, než je hostitel v kultuře kultivován do vhodné fáze pro produkci proteinu. Jiným široce používaným promotorem je lac promotor, který je méně účinný než trp, ale je lépe kontrolovatelný.
Pro vývoj nových účinných promotorů byly kombinovány funkční složky různých promotorů, například jak je to popsáno v U.S: patentu č. 5.362.646. V jednom příkladu byly části bakteriofágového T7 promotoru Αχ (P ) kombinovány se dvěma lac operátory. Přesněji, intergenový region mezi takzvanými -35 a -10 regiony bakteriofágového T7 promotoru byl nahrazen modifikovanou sekvencí lac operátoru a pro kontrolu vzniklého promotorového hybridu byl druhý lac operátor zaveden downstream. Bylo zjištěno, že vzniklý promotor/operátorový systém, který je inkorporován do komerčně dostupných pUHE plasmidů, účinně iniciuje transkripci za indukce a je vysoce reprivovatelný před indukcí.
Jiný promotor popsaný Tsungem et al., (Proč. Nati. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 5940) obsahuje účinný trp -35 region, -10 region z vysoce účinného IppP-5 promotoru (varianty Ipp promotoru) a intergen odvozený od lac promotoru. U tohoto promotoru bylo ukázáno, že je vysoce účinný v iniciaci transkripce, což vede k buněčné letalitě. Zatímco různé jiné promotory umožňují zlepšení zisku proteinů z mikrobiálních hostitelů, stále existuje potřeba promotorů, které ještě účiněji řídí produkci proteinů komerční hodnoty.
··· ·· · ·· ·· • · · ···· ···* • · · · · · · ···· • · · · · · · · ···· * ··· · · · · · · ·· · · · ·· ··· · · ··
Oblast vynálezu
Podle jednoho aspektu předkládaného vynálezu je zde poskytnut rekombinantní DNA konstrukt použitelný pro expresi proteinu v bakteriálním hostiteli. Konstrukt obsahuje kódující region pro protein a s ním navázaný kontrolní region obsahuj ící promotor mající DNA sekvenci vybranou z:
' -TTGACAACATAAAAAACTTTGTGTTATACT-3 ' ; a
5'-TTGACACTTTATGCTTCCGGCTCGTATACT-3'.
Popis obrázků na připojených výkresech
Obrázek 1 ilustruje nukleotidovou sekvenci a schematickou representaci expresní kazety inkorporující rekombinantní DNA konstrukty podle předkládaného vynálezu.
Obrázky 2 a 3 ilustrují nukleotidovou sekvenci DNA konstruktů podle předkládaného vynálezu obsahující promotorový a operátorový region.
Předkládaný vynález poskytuje DNA sekvence použitelné v řízení DNA exprese s vysokou účiností v bakteriálních hostitelích jako je E. coli. Použití expresních vektorů obsahujících tyto sekvence poskytuje hodnotné prostředky pro dosažení zvýšené produkce expresibilních proteinů, jak endogeních, tak heterologních. V jednom aspektu vynálezu je zde poskytnut nový rekombinantní DNA konstrukt použitelný pro expresi proteinu v bakteriálním hostiteli. Konstrukt obsahuje kódující region pro protein operativně navázaný na promotor pro umožnění exprese uvedeného proteinu v hostiteli, kde promotor obsahuje DNA sekvenci vybranou z:
' -TTGACAACATAAAAAACTTTGTGTTATACT-3 ' ; a
5'-TTGACACTTTATGCTTCCGGCTCGTATACT-3'.
Tyto promotory mají společnou konsensuální sekvenci -35 regionu TTGACA a sekvenci -10 regionu TATACT. Intergenová sekvence, t.j. sekvence o 18 bazích, která je vmezeřena, může být podle předkládaného vynálezu buď sekvence ACATAAAAAACTTTGTGT nebo CTTTATGCTTCCGGCTCG, a preferovaně je to sekvence ACATAAAAAACTTTGTGT. V souladu s tím poskytuje vynález v preferovaném provedení DNA konstrukty, ve kterých je DNA kódující požadovaný protein operativně navázána pod expresní kontrolou na promotor sekvenci 5'-TTGACAACATAAAAAACTTTGTGTTATACT-3'.
Odborníci v oboru ocení, že promotory podle předkládaného vynálezu vytvářejí jeden základní element požadovaných složek, uvnitř funkčního kontrolního regionu, pro řízení exprese. Kromě toho, tyto promotory mohou být insertovány za použití standartních postupů do jakéhokoliv vhodného expresního vektoru, který se může replikovat v Gram + nebo - bakteriích. Přesněji, a pro vytvoření kontrolního regionu genové exprese, předkládané promotory budou inkorporovány s takovými dalšími kontrolními elementy, které jsou typicky vyžadovány pro tuto expresi, včetně vazebného místa pro ribosomy a, v provedeních podle předkládaného vynálezu, operátorem, který účinkuje pro kontrolu • · funkce promotoru.
Tyto složky musí být sestaveny ve vztahu jedna k druhé jak je to nutné pro průběh exprese podle dobře známých pravidel genové exprese.
V jednom provedení vynálezu inkorporuje kontrolní region konstruktu operátor. Operátory, které mohou být použity, zahrnují ty, které jsou přímo indukovatelné chemickými induktory a ty, jako je lac, které jsou de-reprivovatelné. Příklady vhodných operátorů zahrnují E. coli laktosový, galaktosový, tryptofanový a tetracyklinový operátor (viz Miller et al., The Operon, Cold Spring Harbor Laboratory, 1980, a Hillen et al., J. Mol. Biol., 1984, 172: 185). Preferované operátory jsou vysoce reprivovatelné, takže exprese DNA kódující protein může být kontrolována. Ve specifickém provedení obsahuje kontrolní region lac operátor (obr. 1), který brání expresi z promotoru za absence syntetického induktoru izopropyl-S-D-thiogalaktopyranosidu (IPTG) a přirozeného induktoru laktosy.
Kontrolní region dále obsahuje sekvenci vazebného místa pro ribosom (RBS) pro usnadnění vazby ribosomů na mRNA transkript a tak pro iniciaci translace RNA kódujícího regionu pro generování proteinu. Vhodná vazebná místa pro ribosomy obsahují lac a bakteriofág T5. V preferovaném provedení je RBS sekvence odvozená od T5 bakteriofágového RBS majícího sekvenci 5 ' -ATTAAAGAGGAGAAATTAAGC-3 ' .
Kontrolní regiony konstruktů podle předkládaného vynálezu jsou operativně navázány na kódující regiony pro endogení a * · · · • · · · ··· · · ♦ · · ·· ·· • * ··· · • · · · • · ·
heterologní proteiny. Termín heterologní proteiny označuje polypeptidy nebo proteiny, které, ačkoliv nejsou přirozeně produkovány bakteriálním hostitelem, jsou exprivocány tímto hostitelem, pokud je vhodně transformován DNA kódující protein; genomová DNA, cDNA a syntetická DNA může být použita pro transformaci hostitele. Proteiny, které mohou být produkovány za použití systému zde popsaného zahrnují, ale nejsou omezeny na, hormony jako je parathyreoidální hormon (PTH), glukagon nebo jeho fragmenty a příbuzné peptidy jako je GLP-1 a GLP-2, růstové faktory jako je epidermální růstový faktor (EGF); a lymfokiny jako je interleukin-6 a -8 (IL-6, -8). Pro usnadnění izolace autentických forem proteinu, t.j. proteinu bez dalšího Met zbytku, mohou být také produkovány fúsní proteiny, které jsou štěpeny po expresi. Například, DNA kódující požadovaný protein může být předcházena DNA kódující signálním peptidem, tak jako je E. coli zevní membránový protein ompA. V tomto případě dává exprivovaný protein vznoknout fúsnímu proteinu obsahujícímu N-Met-obsahující ompA signální peptid, který je následován požadovaným proteinem. Signální peptid nese fúsní protein přes intermembránu bakterie, kde je signální peptid štěpen. Jiné signální peptidy, které mohou být použity, obsahují alkalickou fosfatasu, E. coli termostabilní enterotoxin II a protein A od Streptococcus. Alternativně, fúsní protein může být syntetizován a štěpen ve zvláštním postupu za získání požadovaného proteinu. Například glutathion-S-transferasa (GST) může být štěpena z požadovaného proteinu thrombinem nebo faktorem Xa.
Ve specifickém provedení vynálezu obsahuje kódující region DNA kódující lidský PTH, jehož aminokyselinová sekvence je popsána Hendym et al., (Proč. Nati. Acad. Sci. USA, 1981, 78: 7365) . V příkladech zde popsaných je DNA sekvence kódující PTH
Ί navázána přímo na a ve čtecím rámečku s DNA kódující ompA signální peptid.
Preferované rekombinantní DNA konstrukty ilustrované na obrázku 1, mající Ipp nebo lacUV5 intergen, byly produkovány z jednořetězcových oligonukleotidů syntetizovaných fosforamiditovou metodou. Gelově purifikovaný řetězec obsahující sekvence od Xhol do EcoRI restrikčního místa byly potom použity jako iniciální PCR cíl a byl PCR amplifikován do dvouřetězcového DNA fragmentu za použití komplementárních jednořetězcových DNA oligonukleotidů, které specificky hybridizují na konce buď iniciální ukázané oligonukleotidové sekvence nebo na její komplementární řetězec. Tak jsou připraveny konstrukty za použití standartní metody genové syntesy, jak je popsána například v Maniatis et al., (Molecular Cloning Cold Spring Harbor Laboratories, 1982) a Innis et al (PCR protocols, A guide to Methods and Applications).
V jiném aspektu vynálezu zde jsou poskytnuty expresní vektory použitelné pro produkci transformantů bakteriálních hostitelských buněk, které inkorporují rekombinantní DNA konstrukt podle předkládaného vynálezu. DNA konstrukty podle předkládaného vynálezu mohou být inkorporovány jako kazeta do vektoru, preferovaně do plasmidového vektoru, zavedenými technikami. Obecně, vektor je štěpen v restrikčních místech, která korespondují s restrikčními místy na jednom z konců kazety. Kazeta je potom zavedena ligací konců do komplementárně štěpených míst vektoru.
Ačkoliv bakteriofágové vektory mohou být použity, preferovány jsou plasmidové vektory jako je pBR322 a pUC serie plasmidů. Po • · • · inkorporování do vhodného vektoru může být vzniklý plasmid amplifikován v hostiteli pro poskytnutí dostatečných množství pro následné klonování. Bude oceněno, že DNA kódující vybraný protein je vhodně inkorporována na plasmid, který poskytuje mnoho klonovacích míst, za použití standartních klonovacích/ligačních metod. Plasmid také musí inkorporovat zdroj replikace a je žádoucí, aby inkorporoval markéry jako jsou geny resistence na ampicilin nebo tetracyklin pro umožnění selekce transformovaných buněk. Bude také oceněno, že translační stop kodony ve všech třech čtecích rámečcích a správně umístěný transkripční terminační region budou vyžadovány pro uspokojivou expresi požadovaného proteinu. Vhodné transkripční terminátory zahrnují transkripční terminátory z E. coli trpA, thr, his a phe genů.
Po inkorporování DNA kódující požadovaný protein do vektoru je tímto vektorem transformován vybraný bakteriální hostitel za použití standartní chloridem vápenatým mediované transformační techniky. Vhodní bakteriální hostitelé zahrnují gram negativní bakterie jako je E. coli a Salmonella. Preferovaným hostitelem je komerčně dostupný kmen E. coli a nejlépe JM101 a jeho deriváty.
Pokud kontrolní region NA konstruktu obsahuje lac operátor, jak je zde popsáno podrobněji dále, pak by transformovaný hostitelský kmen měl být schopen exprivovat, a požadovaně v některých případech nadprodukovat, lac produkt, takže funkce promotoru a proto exprese proteinu mohou být regulovány. Potřeba nadprodukce láci některými transformanty může být dosažena, podle jednoho provedení vynálezu, použitím hostitelů, kteří již nesou láci'3 gen odpovědný za naprodukci láci produktu. Láci
nadprodukující kmeny E. coli, které mohou být použity jako hostitelé, zahrnují JM sérii kmenů dostupnou od Clontech Laboratories lne., California, USA. Specifické hostitelské kmeny vhodné pro použití zahrnují JM101, JM105 a JM107. Alternativně, láci nadprodukce v transformantech může být dosažena inkorporací laclq genu na vektory podle předkládaného vynálezu. Protože je, v této situaci, nadprodukce láci zprostředkována vektorem, může být využit kterýkoliv z mnoha komerčně dostupných bakteriálních hostitelských kmenů, včetně E. coli kmenů DH1, RR1, C600, CMK603 a EB505. Láci13 gen, který má být inkorporován do vektoru, může být získán jako 1,2 kb HindlII fragment plasmidu pMMB22 (který popsal Bagdasarian et al (Gene 1983, 26: 273) a potom může být inkorporován bez narušení v jakémkoliv místě plasmidového vektoru.
Pro zvýšení stability dědičnosti vektorů, v určitých plasmidech, z původně transformovaného kmenu na jeho potomstvo, může být oddělující element (par) funkční v E. coli také inkorporován do vektoru. Jeden takový par element může být uvolněn z pSCIOl jako 380 bp HincII/Avall fragment a může být potom klonován do vhodného místa vektoru.
Po transformaci jsou bakteriální hostitelé nesoucí expresní vektor kultivováni v kultivačním mediu nejvhodnějším pro vybraného hostitele. Pro E. coli může být použit LB bujón nebo 2YT medium (kvasinkový extrakt/trypton) pro kultivaci zde preferovaných kmenů. Selektivní tlak pro plasmidové transformanty by měl být udržován cytotoxickým agens, které zabíjí netransformované hostitelské buňky. Například, transformanty s plasmidem nesoucím gen pro resistenci na tetracyklin by měly být kultivovány v mediu obsahujícím • 9 ·· · · • · · 0 • · 9 9
9 9 9
9 9 ·· tetracyklin. Vhodné jsou koncentrace tetracyklinu v mediu okolo 5-15 /ig/ml.
Promotor na konstruktu je preferovaně regulovatelný prostřednictvím vazby represorové molekuly na operátor umístěný v sousedství promotoru v kontrolním regionu. V preferovaném provedení se láci genový produkt váže na lac operátor umístěný v sousedství promotoru. V tomto případě reprivuje vazba láci produktu promotor, což snižuje expresní hladiny kódující DNA, která je pod jeho kontrolou. Pro zvýšení hladin exprese je chemický IPTG (izopropyl-S-D-thiogalaktopyranosid), který se váže na láci a dereprivuje promotor, přidán do kultivačního media pro derepresi promotoru a indukci exprese. Vhodně je IPTG přidán do kultivačního media tehdy, pokud buňky dosáhly střední log růstové fáze.
Pro určení optimální hustoty, při které by kultura měla být kultivována pro dosažení maximálního výtěžku požadovaného proteinu mohou být provedeny pokusy a může být testována hladina proteinu v během pokusu. Obecně, dostatečný zisk proteinu může být získán tehdy, pokud buňky dosáhnou střední log fáze, akumulace vyššího množství hodin potom.
ačkoliv proteinu může být očekávána během 4 být purifikován technikami zavedenými pro tento protein. Ve specifickém přes kde je získán
Požadovaný protein může v oboru, které jsou vhodné provedení vynálezu je exprivovaný PTH exkretován periplasmatický prostor a do kultivačního media, přímo. Pokud je exkretován, pak může být vyčerpané medium izolováno za použití biochemických technik, které respektují charakter protein ve smyslu jeho molekulové velikosti, náboje, izoelektrického bodu atd. Medium může být nejprve koncentrováno, například lyofilizací. Dále, pokud jsou dostupné protilátky nebo přirozený ligand pro protein, mohou být použity afinitní kolony.
Specifická provedení vynálezu budou nyní doložena příklady s odkazem na obrázky.
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
Ve své zralé formě je PTH 84 aminokyselinový peptid, který u lidí zvyšuje hladinu vápníku v krvi a moduluje tvorbu kostí. DNA kódující lidský PTH byla syntetizována za použití zavedených technik a podle aminokyselinové sekvence publikované Hendym et al., výše, a byla inkorporována do konstruktů popsaných dále, jak je ukázáno na obrázku 1.
Preferované rekombinantní DNA konstrukty inkorporující promotor č. 1 a 2, stejně jako referenční promotory č. 3 a 4, ilustrované v tabulce 1 a na obrázku 1, na které odkazujeme, byly produkovány z jednořetězcového oligonukleotidu syntetizovaného fosfforamiditovou metodou. Gelově purifikovaný řetězec obsahující sekvence od Xhol do EcoRI restrikčního místa byly potom použity jako iniciální PCR cíl a byl PCR amplifikován do dvouřetězcového DNA fragmentu za použití komplementárních jednořetězcových DNA oligonukleotidů, které specificky hybridizují na konce buď iniciální ukázané oligonukleotidové sekvence nebo na její komplementární řetězec. Tak jsou připraveny konstrukty za použití standartní metody genové syntesy, jak je popsána například v Maniatis et al., (Molecular * · • ·
Cloning Cold Spring Harbor Laboratories, 1982) a Innis et al (PCR protocols, A guide to Methods and Applications).
Konstrukty byly potom klonovány do pUC18 odvozených plasmidů, které udílejí resistenci na tetracyklin místo resistence na ampicilin. JM101 odvozený kmen E. coli byl potom transfektován podle zavedených technik (viz Maniatis et al., Molecular Cloning Cold Spring Harbor Laboratories, 1982).
Příklad 2
Exprese transformovaných hostitelů
Transformanty obsahující PTH vektory byly kultivovány přes noc při 30 °C ve 2YT bujónu obsahujícím 0,5% glukosu a tetracyklin a potom byly inokulovány do čerstvého media stejného složení, kde pokračovala kultivace při 30 °C dokud nebyla dosažena log fáze. Kultury byly potom indukovány (1 mM IPTG) v 1 hodinových intervalech, aliquoty kultur byly odebrány a frakcionovány za produkce vzorků kultivačního media pro identifikaci exkretovaných PTH produktů za použití standartního Allegro testu. Výsledky testu jsou dány v tabulce 1, dále.
Tabulka 1
Promotor RBS Max PTH (mg/1) 6-8 hod.
v c. -35 region intergen -10 region
1 trp ipp lppP-5 T5 lac 245 148
2 trp lacUVS lppP-5 T5 121
lac 10
3 trp lacO lppP-5 T5 lac 50 5
4 T7 lacO T7 T5 lac 100 10
Výsledky Allegro testu ukazují, že promotory inkorporující 18 bp lpp a lacUVS sekvence usnadňují zvýšení hladin heterologního PTH proteinu. Promotory č. 1 a č.2 jsou lepší ve srovnání s promotorem č. 3, ve kterém byl intergen substituován modifikovanou sekvencí lac operátoru (lacO); a ve srovnání s promotorem č. 4, kde je -35 a -10 region z bakteriofágu T7 a intergen je lacO promotor. Studie se stejnými promotory exprivujícími gen kódující chlaramfenikol acetyl transferasu (CAT) ukázaly podobné výsledky zvýšené exprese pro promotory č. 1 a č. 2. Také bylo zaznamenáno, že každý ze studovaných promotorů -vykazoval zvýšený výnos proteinu, pokud byl kombinován s RBS z bakteriofágu T ve srovnání s RBS odvozeným od lac.

Claims (14)

1. Rekombinantní DNA konstrukt, který exprivuj e protein v bakteriálním hostiteli, kde konstrukt obsahuje kódující region pro protein operativně navázaný na kontrolní region obsahující promotor, který navozuje expresi uvedeného proteinu v hostitelské buňce, kde promotor obsahuje DNA sekvenci skládající se z:
5'-TTGACAACATAAAAAACTTTGTGTTATACT-3'(SEQ ID NO: 1); a
5’-TTGACACTTTATGCTTCCGGCTCGTATACT-3'(SEQ ID NO: 2).
2. Rekombinantní DNA konstrukt podle nároku 1, kde uvedený promotorový region obsahuje DNA sekvenci
5 ' -TTGACAACATAAAAAACTTTGTGTTATACT-3 ' (SEQ ID NO: 1).
3. Rekombinantní DNA konstrukt podle nároku 1 nebo 2, kde uvedenou bakteriální buňkou je buňka E. coli.
4. Rekombinantní DNA konstrukt podle jakéhokoliv z nároků 1 až 3, kde uvedený kontrolní region dále obsahuje operátor pro regulaci exprese proteinu.
5. Rekombinantní DNA konstrukt podle nároku 4, kde operátor je lac operátor.
6. Rekombinantní DNA konstrukt podle jakéhokoliv z nároků 1 až 5, kde protein je lidský parathyreoidální hormon.
změněné nároky
7. Rekombinantní DNA konstrukt podle jakéhokoliv z nároků 1 až 6, který dále obsahuje DNA kódující OmpA signální peptid ve čtecím rámečku s kódujícím regionem, což navozuje sekreci proteinu do periplasmy hostitelské buňky.
8. Rekombinantní DNA konstrukt podle jakéhokoliv z nároků 1 až 7, kde kontrolní region obsahuje T5 ribosomové vazebné místo mající DNA sekvenci
ATTAAAGAGGAGAAATTAAGC (SEQ ID NO: 5) .
9. Rekombinantní DNA konstrukt podle jakéhokoliv z nároků 1 až 8, kde kontrolní region obsahuje sekvenci danou na obrázku 2 (SEQ ID NO: 12).
10. Rekombinantní DNA konstrukt podle jakéhokoliv z nároků 1 až 8, mající sekvenci kde kontrolní region obsahuje sekvenci danou na obrázku 3 (SEQ ID NO: 13).
11. Vektor obsahující rekombinantní DNA konstrukt podle jakéhokoliv z nároků 1 až 10.
12. bakteriální hostitelská buňka transformovaná vektorem podle nároku 11.
13. Bakteriální hostitelská buňka podle nároku 12, kterou je E. coli buňka.
14. Způsob pro produkci rekombinantního proteinu vyznačuj ícísetím, že obsahuje kultivování hostitelské buňky podle nároku 12 nebo 13 za podmínek, za změněné nároky ti kterých je uvedený protein produkován, a získání uvedeného proteinu.
změněné nároky
CZ973579A 1995-05-19 1996-05-16 Promotory pro genovou expresi CZ357997A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US08/445,133 US5629205A (en) 1995-05-19 1995-05-19 Promoters for gene expression

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ357997A3 true CZ357997A3 (cs) 1998-04-15

Family

ID=23767732

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ973579A CZ357997A3 (cs) 1995-05-19 1996-05-16 Promotory pro genovou expresi

Country Status (25)

Country Link
US (1) US5629205A (cs)
EP (1) EP0828844B1 (cs)
JP (2) JP3828576B2 (cs)
KR (1) KR19990014906A (cs)
CN (1) CN1131313C (cs)
AT (1) ATE248923T1 (cs)
AU (1) AU698656B2 (cs)
BR (1) BR9609102A (cs)
CA (1) CA2221587C (cs)
CZ (1) CZ357997A3 (cs)
DE (1) DE69629808T2 (cs)
DK (1) DK0828844T3 (cs)
EE (1) EE9700355A (cs)
ES (1) ES2202436T3 (cs)
HK (1) HK1004148A1 (cs)
HU (1) HUP9900750A3 (cs)
IS (1) IS4609A (cs)
MX (1) MX9708689A (cs)
NO (1) NO325879B1 (cs)
NZ (1) NZ306536A (cs)
PL (1) PL324226A1 (cs)
PT (1) PT828844E (cs)
SK (1) SK154997A3 (cs)
TR (1) TR199701394T1 (cs)
WO (1) WO1996036721A1 (cs)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6194168B1 (en) 1997-09-30 2001-02-27 Human Genome Sciences, Inc. Expression control sequences
EP1572720A4 (en) * 2002-05-24 2008-12-24 Nps Allelix Corp PROCESS FOR THE ENZYMATIC PRODUCTION OF GLP-2 (1-34) AND GLP-2 (1-33) PEPTIDES
US20050119183A1 (en) * 2003-11-12 2005-06-02 Nps Allelix Corp. Method for treating bone loss using parathyroid hormone
DK1704234T3 (da) * 2003-11-21 2012-05-07 Nps Pharma Inc Fremstilling af glucagon-lignende peptid 2 og analoger
WO2005058946A2 (en) * 2003-12-12 2005-06-30 Zymogenetics, Inc. Methods for enhancing expression of recombinant proteins
MA45489A (fr) 2015-10-22 2018-08-29 Juno Therapeutics Gmbh Procédés de culture de cellules, kits et appareil associés
KR102606210B1 (ko) 2017-04-27 2023-11-24 주노 테라퓨틱스 게엠베하 올리고머 입자 시약 및 이의 사용 방법
CN108060168B (zh) * 2017-12-29 2021-06-29 苏州金唯智生物科技有限公司 一种改进的启动子及其组成的t载体和应用
CN108165551B (zh) * 2017-12-30 2021-06-29 苏州金唯智生物科技有限公司 一种改进的启动子及其组成的t载体和应用
CN108118059B (zh) * 2017-12-30 2021-03-19 苏州金唯智生物科技有限公司 一种改进的启动子及其组成的载体和应用

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8517071D0 (en) * 1985-07-05 1985-08-14 Hoffmann La Roche Gram-positive expression control sequence
ATE123526T1 (de) * 1987-08-17 1995-06-15 Hoffmann La Roche Hochreprimierbare expressionskontrollsequenzen.
US5223407A (en) * 1988-08-31 1993-06-29 Allelix Inc. Excretion of heterologous proteins from e. coli
US5171670A (en) * 1989-05-12 1992-12-15 The General Hospital Corporation Recombinant dna method for production of parathyroid hormone
JPH05509001A (ja) * 1990-08-28 1993-12-16 イー・アイ・デユポン・ドウ・ヌムール・アンド・カンパニー 有効な分泌用ベクター類の迅速選択方法

Also Published As

Publication number Publication date
CA2221587C (en) 2008-07-08
KR19990014906A (ko) 1999-02-25
NO325879B1 (no) 2008-08-11
BR9609102A (pt) 1999-05-11
CN1190993A (zh) 1998-08-19
IS4609A (is) 1997-11-07
CA2221587A1 (en) 1996-11-21
HK1004148A1 (en) 1998-11-20
AU5511696A (en) 1996-11-29
JP3828576B2 (ja) 2006-10-04
EE9700355A (et) 1998-06-15
HUP9900750A3 (en) 1999-11-29
US5629205A (en) 1997-05-13
AU698656B2 (en) 1998-11-05
ES2202436T3 (es) 2004-04-01
PL324226A1 (en) 1998-05-11
DE69629808T2 (de) 2004-07-15
DK0828844T3 (da) 2004-01-05
ATE248923T1 (de) 2003-09-15
JP3837154B2 (ja) 2006-10-25
JP2006187295A (ja) 2006-07-20
TR199701394T1 (xx) 1998-02-21
NO975286D0 (no) 1997-11-18
EP0828844A1 (en) 1998-03-18
EP0828844B1 (en) 2003-09-03
SK154997A3 (en) 1998-05-06
NZ306536A (en) 1999-10-28
DE69629808D1 (de) 2003-10-09
NO975286L (no) 1997-11-18
PT828844E (pt) 2004-01-30
MX9708689A (es) 1998-02-28
JPH11509083A (ja) 1999-08-17
CN1131313C (zh) 2003-12-17
HUP9900750A2 (hu) 1999-06-28
WO1996036721A1 (en) 1996-11-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Rosenberg et al. Effects of consecutive AGG codons on translation in Escherichia coli, demonstrated with a versatile codon test system
US5460954A (en) Production of human proinsulin using a novel vector system
US6117651A (en) Expression vectors
JP3837154B2 (ja) 遺伝子発現用プロモーター
US20040106118A1 (en) Method for exposing peptides and polypeptides on the cell surface of bacteria
JPH09510611A (ja) ポリペプチドの分泌促進
JP3976685B2 (ja) タンパク質分泌のためのClyA溶血素の使用
JP3416888B2 (ja) プラスミド安定化
EP1019487A1 (en) Expression control sequences
AU2001297770A1 (en) Use of CLyA hemolysin for excretion of fusion proteins
JPH0376580A (ja) 大腸菌発現ベクターとそれを利用した抗ウイルス性タンパク質の製造方法
US9187752B2 (en) Hybrid portable origin of replication plasmids
EP0996713B1 (en) Vector for expression of heterologous protein and methods for extracting recombinant protein and for purifying isolated recombinant insulin
JPH04502851A (ja) 原核生物細胞中にポリペプチドを調製するための発現システム
MXPA97008689A (en) Promoters of the expression of ge
JPH03501801A (ja) クローン化プロテインg変異体遺伝子及びそれから発現されたプロテインg変異体
US8003348B2 (en) Method for the mass expression of an antimicrobial peptide by co-expression of a basic antimicrobial peptide and an acidic peptide using a translational coupling system
HU197937B (en) Process for producing new cloning carriers usable for the expression of polypeptides in microbiological host cells
CA2730741C (en) Self-replicating vector lacking an antibiotic-resistance gene
ES2393979T3 (es) Proceso para la producción de polipéptidos
JP2009511006A (ja) 新規選択系
JPS61224991A (ja) 専門化リボソームおよびその使用方法
JPS6091984A (ja) 新規プラスミドベクタ−
JPH0759580A (ja) ヒトカルシトニン前駆体ペプチドの製造法
MXPA00010057A (en) Novel constructs for controlled expression of recombinant proteins in prokaryotic cells