CZ242096A3 - Method of storing ultrasonic gaseous suspensions - Google Patents

Method of storing ultrasonic gaseous suspensions Download PDF

Info

Publication number
CZ242096A3
CZ242096A3 CZ962420A CZ242096A CZ242096A3 CZ 242096 A3 CZ242096 A3 CZ 242096A3 CZ 962420 A CZ962420 A CZ 962420A CZ 242096 A CZ242096 A CZ 242096A CZ 242096 A3 CZ242096 A3 CZ 242096A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
microbubbles
suspension
gas
suspensions
suspension according
Prior art date
Application number
CZ962420A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ291540B6 (cs
Inventor
Feng Yan
Michel Schneider
Jean Brochot
Original Assignee
Bracco Research Sa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=8218355&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=CZ242096(A3) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Bracco Research Sa filed Critical Bracco Research Sa
Publication of CZ242096A3 publication Critical patent/CZ242096A3/cs
Publication of CZ291540B6 publication Critical patent/CZ291540B6/cs

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • A61K49/22Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations
    • A61K49/222Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, liposomes
    • A61K49/223Microbubbles, hollow microspheres, free gas bubbles, gas microspheres

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Radiology & Medical Imaging (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Acoustics & Sound (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Degasification And Air Bubble Elimination (AREA)
  • Investigating Or Analyzing Materials By The Use Of Ultrasonic Waves (AREA)
  • Freezing, Cooling And Drying Of Foods (AREA)
  • Ultra Sonic Daignosis Equipment (AREA)
  • Physical Or Chemical Processes And Apparatus (AREA)
  • Treating Waste Gases (AREA)
  • Sampling And Sample Adjustment (AREA)
  • Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Description

Tento vynález se týká suspenzí bublin plynu imobilizováných ve zmrazeném vodném nosném prostředí. Vynález se také^&Z, týká způsobu skladování suspenzí bublin plynu za chladu » a jejich používání jako kontrastních činidel pro ultrazvukové^/ . <
zobrazování lidského a zvířecího těla.
Oblast techniky
Rychlý vývoj ultrazvukových kontrastních prostředků v posledních letech vytvořil řadu rozdílných prostředků, které jsou vhodné při ultrazvukovém zobrazování orgánů a tkáně lidského nebo zvířecího těla. Tyto prostředky jsou určeny především jako intravenózní nebo intraarteriálni injikovatelné prostředky, ve spojení s použitím lékařského echografického vybavení. Tyto nástroje obvykle slouží pro zpracování skupiny B-způsobu vytváření obrazu (založeno na prostorové distribuci zpětného rozptylu vlastností tkáně) a Dopplerova signálu (založeno na zpracování kontinuálních vln nebo pulsního Dopplerova zpracování ultrazvukových ozvěnových signálů, ke stanovení parametrů krve nebo proudící kapaliny). Jiné ultrazvukové zobrazovací metody by mohly být také vhodné z těchto prostředků v budoucnosti, jako ultrazvuková počítačová tomografie (měřeni zeslabení přenosu) nebo difrakční počítačová tomografie (měření parametrů —---------rozptylu-a- zeslabení .při., úhlovém odrazu). Na základě suspenzí ? ’ ’ ^·· - ........ ........
bublin plynu ve vodném nosném prostředí se tyto injikovatelné prostředky mohou v podstatě rozdělit do dvou kategorií, na vodné suspenze, ve kterých mikrobubliny plynu jsou vázány na rozhraní plyn - kapalina neboli mají nestálý obal zahrnující molekuly kapaliny a povrchově aktivní látky volné vázané na rozhraní plynu ke kapalině, a dále suspenze, ve kterých mikrobubliny mají materiálovou hranici neboli hmotný obal vytvořený z přírodních a syntetických polymerů. V případě syntetických polymerů se mikrobubliny označují jako mikrobalonky. Již však existuje jiný druh ultrazvukových kontrastních prostředků a to suspenze porézních částic z polymeru ; .
. . . .J... -#**>*.· nebo jiných tuhých látek, které nesou mikrobubliny plynu,J* Γ zachycené v pórech mikročástic. Tyto kontrastní prostředky 'seV***: zde pokládají za variantu druhu mikrobalonků. Třebaže je fyzikální rozdíl, oba druhy mikrobublin plynu, pokud jsou v suspenzi, jsou vhodné jako ultrazvukové kontrastní prostředky. Více o těchto rozdílných prostředcích se může zjistit v EP-A-0 077 752 (Schering), EP-A-0 123 235 (Schering), EP-A-0 324 938 (Widder a kol.), EP-A-0. 474 833 (Schneider a kol.), EP-A-0 458 745 (Bichon a kol.),
US-A-4 900 540 (Ryan), US-A-5 230 832 (Unger) a jinde.
Určitá z výše uvedených ultrazvukových kontrastních činidel jsou vyvinuta a komerčně dostupná, zatímco jiná jsou v rozdílných stádiích klinických zkoušek. Avšak i když jsou kontrastní činidla komerčně dostupná nebo na klinických testech, tyto produkty vždy trpí problémy spojenými se skladováním. Problémy skladováni jsou vlastní suspenzím, které v důsledku jejich zvláštní povahy podléhají separaci nebo segregaci fází, agregaci bublin plynu a po delším skladování rovněž srážení různých přísad. Segregace mikrobublin nebo mikrobalonků plynu vychází ze skutečnosti, že suspenze se obvykle připravují z nekalibrovaných mikrobublin, jejichž velikost se mění od přibližné 1 až do zhruba 50 μιη. -Rozsáhlá'většina bublin plynů ve známých 'suspenzích se nachází mezi 1 a přibližně 10 μ®. V důsledku distribuce velikosti mikrobublin, tyto suspenze během skladováni podléhají 'segregaci, při které větší mikrobubliny migrují do horní části, zatímco menší mikrobubliny se koncentrují v nižších částech, co často vede k úplnému oddělení fáze.
Pokusy řešit tento problém použitím činidel zvyšujících viskozitu ukázalo, že míra separace se může snížit, ale nikoli vyloučit. 1
Agregace mikrobublin plynu je proces, během kterého větší bubliny absorbují menší bubliny, a tak dochází .k^růstu^^ velikosti bublin. Se separací fáze se tento procesurychluje^, a suspenze s mikrobublinami, které mají průměrnou velikošfSSW^^-^’^^' například od 2 do 8 um, po určité době mohou vyvinout suspenzi s velikostí mikrobublin například od 5 do 12 μτη nebo i větší. To je obzvláště nežádoucí v případech, kdy suspenze kalibrovaných mikrobublin a suspenze zamýšlené pro vytvoření sytosti v levém srdci se koncentrují. 2měna velikosti není pouze důsledkem stárnutí echogenických vlastností kontrastního prostředku, ale také zanechává prostředek nepoužitelný, pro určité aplikace, jako pro aplikace založené na průchodu mikrobublin plícemi.„Mikrobubliny-s velikostínad-10gm .„pravděpodobně—neprocházejl^pTicnínTi-kapilárami, a proto kromě vytváření riskantních stavů jsou takové suspenze méně vhodné pro zobrazování levého srdce.
Jiný problém se suspenzemi plynu a jejich skladováním přichází š difúzí plynu, která probíhá při relativně nízkých rychlostech, ale která se urychluje při separaci fáze. Nevyhnutelný únik plynu ze suspenze mikrobublin je tak dále urychlován a v extrémních případech může vést k úplnému vyčerpání plynu z prostředí. Proto spojený účinek těchto různých mechanismů na destrukci suspenze plynu má za výsledek velmi rychlou degradaci prostředku.
Při některých přístupech k zobrazení ultrazvukem je jedním ze žádoucích aspektů těchto kontrastních prostředků pro mikrobubliny nebo částice, které obsahují plyn, aby byly distribuovány v těsném oknu velikosti. Příčina toho je uvedena výše. Účinnost těchto prostředků při zvyšováni kontrastu v obrazech vytvářených lékařským ultrasonografickým vybavením je založena především na vysoce zvýšeném rozptylu přicházející ultrazvukové energie a za druhé na modifikovaném zeslabení vlastností tkání obsahujících tyto prostředky, a na rozdíl od toho představuje měřítko relativní amplitudy signálu dosažené z oblastí, které jsou perfundovány kontrastním prostředkem, ve srovnání s amplitudou signálu V* - z oblastí, které neobdržely kontrastní prostředek. Zvýšením ’ ” se rozumí zvýšení kontrastní hodnoty pozorované po podání ''5 ’ ' kontrastního prostředku, v porovnání s kontrastem pozorovaným před jeho podáním. Jak již bylo uvedeno výše, typ vybavení umožňujícího zobrazováni má přímý prospěch z těchto prostředků a je v úzké souvislosti s echografickými nástroji (B-způsob nebo Dopplerův způsob). Rozdílné vlastnosti zeslabení odezvy tkání obsahujících prostředek v porovnání ke tkáním, které prostředek neobsahují, se může také využít ke zlepšení diagnostické hodnoty procesu zobrazování. Kromě toho závislost frekvence ultrazvuku jak na vlastnostech rozptylu,,· tak na vlastnostech zeslabení u prostředku, se může použít k dalšímu zvýšení prostorového rozlišení tkáně. V tomto případě fyzikální zákony ovládající tuto frekvenční závislost systematicky závisí na velikosti mikrobublin nebo částic. Tak použitý algoritmus je mnohem účinnější, pokud působí na ozvěnový signál pocházející z mikrobublin nebo částic s těsnou distribucí velikosti. Jako příklad se uvádí, že jeden takový pokus využívá nelineární oscilace mikrobublin k detekci echofrekvence složek při druhé harmonické nebo základní excitační frekvenci. Protože tkáně neobsahující kontrastní prostředek neprojevují stejné nelineární chování jako mikrobubliny,.._.ta.to metoda je schopna zvýšit významně kontrast mezi oblastmi obsahujícími a oblastmi neobsahujícími 1 kontrastní prostředek. Toto zvýšení je mnohem zřetelnější pro daný počet částic na jednotku objemu, když velikosti jsou úzce distribuovány. Avšak příprava produktů s takovou úzkou distribucí velikosti je časově náročná a pokud se takové kalibrované suspenze již dodávají, měl by se výrazně usnadnit další vývoj a použití tohoto technického postupu. 0 spolehlivé skladování takových prostředků s nezměněnou distribucí velikosti je tak také velký zájem.
Další' obtíže se skladováním vodné suspenze plynu jsou, založeny na zkušenosti s .ultrazvukovými kontrastními · prostředky, které obsahují fosfolipidy jako stabilizátory^ mikrobublin plynu.'V důsledku hydrolýzy fosfolipidů se* koncentrace stabilizátoru (povrchově aktivní látky) během skladování konstantně snižuje, co způsobuje ztrátu obsahu mikrobublin a degradaci echogenních vlastností suspenze. Tak problém skladování ultrazvukových kontrastních prostředků obsahujících suspenze mikrobublin plynu zůstává otevřen.
Skladování vodných suspenzí plynu za studená, dosahované zmrazením, je známo po určitou dobu v potravinářském •průmyslu.' Například”US-A-4 347“707*(Generál Food Cořp. ) uvádí~__ skladování zplyněného ledu s vysokým obsahem plynu a dobrou stabilitu, při skladování, který se vyrábí metodou, při které se zplyněný led připravuje stykem vodné kapaliny s plyny tvořícími hydrát za tlaku a teploty tak, že se vytvoří plynný hydratovaný komplex suspendovaný v kapalině a teplota a tlak se kontrolovatelně snižují k produkci například uhličitanového ledu s obsahem 85 až 110 ml oxidu uhličitého na gram.
Podle tohoto dokumentu zplyněný led má vysoký obsah plynu, prodlouženou stabilitu při skladování, je vhodný pro komerční distribuci ve zmrazeném stavu a když se vnese do vody, skýtá intenzivní šumění.
To znamená, že zmrazování suspenzí plynu za účelem jejich skladováni po prodloužené časové období a opětovné použití zabezpečených suspenzí by nezbytné nebylo vhodné pro ultrazvukové kontrastní prostředky, protože suspendovaný plyn má sklon unikat z nosného prostředí během rozmrazování.
Další obtížnost se zmrazenou plynovou suspenzí mikrobublín spočívá ve skutečnostiže expanze nosného prostředí během zmrazováňí vytváří vnitřní síly, které jednoduše zničí nebo , rozdrtí obal mikrobublín při uvolňování zachyceného plynu a dovolí, aby plyn unikl bud během skladování nebo později během rozmrazování suspenze. Tento problém je obzvláště obtížný, pokud suspenze mikrobublín mají materiálovou hranici· nebo hmotný obal. . .. '. /
Podstata vynálezu
Krátce uvedeno, vynález se týká zmrazených suspenzí bublin plynu imobilizovaných ve zmrazeném vodném nosném prostředí, přičemž nosné prostředí obsahující bubliny plynu s vhodnými přísadami je fyziologicky přijatelnou nosnou látkou.,Imobilizované bubliny plynu jsou mikrobubliny, které;, jsou vázány nestálým obalem nebo hmotnou membránou, a suspenA . \7·ί;.
ze, pokud se vyskytují v kapalné formě, jsou injikovatelné žijícím bytostem a jsou vhodné jako kontrastní prostředky pro ultrazvukové zobrazování krevního řečiště a tkáně lidských a zvířecích pacientu.
L ix
Podle tohoto vynálezu teploty zmrazováňí suspenze jsou od -1 do -196 °C, výhodné od -10 do -76 °C, zatímco velikost mikrobublín plynu je pod 50 μπι, výhodně pod 10 μπι. Zvláště vhodné jsou suspenze, ve kterých je velikost mikrobublín od 2 do 9 μπι, přičemž suspenze mikrobublín s velikostí od 3 do 5 μια jsou vhodnější.
---------s ohledem na.. ro.zdíl_v_ biologické degradovatelnosti mezi suspenzemi obsahujícími mikrobalonky nebo mikrobubliny plynu s hmotným obalem, ve kterém je membrána zhotovena ze syntetického nebo přírodního polymeru nebo proteinu, a suspenzemi obsahujícími mikrobubliny plynu s nestálými obaly, zmrazené suspenze s nestálými obaly jsou výhodnější, zvláště pokud se použijí lamelární fosfolipidy ve formě monomolekulárních nebo vícemolekulárních membránových vrstev.
Ύ
Tento vynález se také týká způsobu skladování suspenzí mikrobublin, kde suspenze je umístěna do chladicího zařízení, a kde mikrobubliny jsou zmobilizovány v nosném prostředí . .
ochlazením na teplotu pod teplotou zmražení suspenze,••;výhb'<ině%'«>^áií*< za teploty od -I do -196 °C, výhodněji od -10 ďó -76 °C^ přičemž mrazicí podmínky se udržují pó*delší časové' oMolSí r'** Podle potřeby se zmrazená suspenze může udržovat v atmosféře inertního plynu nebo směsí plynů, z nichž alespoň jeden je enkapsulován do mikrobublin. Plyn se s výhodou vybírá z plynů obsahujících halogen, vzduchu, kyslíku, dusíku, oxidu uhličitého nebo jejich směsí.
Použití injikovatelných suspenzí podle tohoto vynálezu pro ultrasonické echografické zobrazování orgánů a tkání a pro' přípravu ultrazvukových kontrastních prostředků je také popsáno.
Přehled obrázků na výkresech obr. 1 znázorňuje diagram změny koncentrace bublin (podle zjištěného počtu) v rozmražené suspenzi mikrobublin SF6 a vzduchu, který obsahuje 5 % CSF12, ve vodném nosném prostředí jako funkci teploty skladování.
Na obr. 2 je vynesena změna celkového objemu plynu z rozmražených suspenzí mikrobublin SF6 a vzduchu, který obsahuj e 5 % C5F12, ve vodném nosném prostředí jako funkce teploty skladování.
Na obr. 3 je v grafické formě předložena změna absorbance rozmražených suspenzí mikrobublin jako funkce použitého vnějšího tlaku a teploty skladování.
Obr. 4 je diagramem ukazujícím změnu relativní absorbance jako funkci použitého vnějšího tlaku na rozmražené suspenze po skladování při rozdílných teplotách.
V· <· *
Obr.
mikrobublin (obr. 5B) z 3, 4 a 6 μιη je diagramem ukazujícím distribuci velikosti v číselném (obr. 5A) a objemovém procentu plynu kalibrovaných mikrobublin s průměrnou velikostí '*
Obř. 6 je diagramem ukazujícím distribuci velikosti mikrobublin v číselném (obr. 6A) a objemovém procentu plynu (obr. 6B) z nekalibrováných mikrobublin.
Podrobný popis vynálezu
Λ '·'&
Podle tohoto vynálezu se získává zmrazená suspenze . mikrobublin plynu, ve které jsou mikrobubliny imobilizovány „ ve zmrazeném vodném nosném prostředí, které kromě mikrobublin obsahuje obvyklé přísady. Vodná nosná látka je fyziologicky přijatelná a suspenze, která v kapalné formě je injikovatelná r-' do žijící bytosti, je vhodná jako ultrazvukový kontrastní prostředek pro zobrazování krevního řečiště a tkáně lidských a zvířecích pacientů. Mikrobubliny zmobilizovaného plynu vázané nestálým obalem nebo hmotnou membránou se zachycují mezi molekulami zmrazeného nosného prostředí, jehož teplota je od -1 do -196 °C, výhodně od -10 do -76 °C. Použité přesné teplotní rozmezí bude záviset na volbě plynu v mikrobublinách, ale také na druhu a jakosti použitých přísad. Tak
.............například..v. případě, .vzduchu, nebo dusíku může teplota ležet kdekoli od -1 do -196 °C, zatímco v případě C4Fg bude teplota od -1 do -5 °C. Pokud se jako případy použijí kopolymery polyoxypropylenu a polyoxyethylenu nebo se použije polyethylenglykol, v závislosti na celkovém přítomném množství v suspenzi, nejvyšší přijatelná teplota může být -5 °C nebo rovněž -10 °C na místo -1 °C.
Velikost většiny mikrobublin v suspenzi je obvykle pod 50 μκι, ale velikost mikrobublin pro intravenózně injekčně zaváděné kontrastní prostředky bude výhodně pod 10 μπ.
Pro většinu aplikací by požadavky uspokojovaly
.. . ... . . -4 4. -v , .
suspenze s mikrobublinami, ktere mají distribuci velikosti od 2 do 9 μιη, avšak pokud se nakládá se suspenzemi kalibroványcíi’^ mikrobublin, velikosti mohou být kdekoli v tomto uvedeném rozmezí, například do 2 do 4 μιη, od 3 do 5 μιη, od 4 do 6 μη, od 5 do 7 μιι, od 6 do 8 μη nebo od 7 do 9 μιιι. Přitom však mikrobubliny s rozmezím velikosti od 3 do 5 μη jsou výhodné.
Tak tento vynález také poskytuje zmrazené suspenze mikrobublin s velmi úzkou distribucí velikosti. Obvyklá distribuce velikosti mikrobublin ze suspenzí kalibrovaných mikrobublinbude jak je ilustrováno na obr. 5, kde distribuce , .
je dána hranicemi číselné distribuce mikrobublin (jak šě <*·· stanoví Coulerovým čítačem), viz obr. 5A, a hranicemi objemové distribuce mikrobublin (jak se stanoví Coulerovým čítačem), viz obr. 5B. Na rozdíl od suspenzí obsahujících kalibrované mikrobubliny, suspenze obsahující nekalibrované bubliny plynu budou mít obvykle číselnou a objemovou distribuci velikosti, která je podobná distribuci jak je znázorněna na obr. 6A a obr. 6B. Z těchto obrázků se snadno zjistí, že echografické odezvy suspenzí připravených z kalibrovaných mikrobublin plynu budou mnohem rovnoměrnější, co poskytne menší rozptyl, a proto ostřejší zobrazení než v případě suspenzí s nekalibrovanými mikrobublinami. Jak již bylo uvedeno, tyto kalibrované suspenze jsou velmi žádoucí, ale jejich použití je tak dalece velmi omezeno. Tak tyto žádoucí suspenze jsou nyní snadno dostupné jednoduchým převedením zmrazených suspenzí, které se mohou skladovat při nízkých teplotách po prodloužené časové období bez nežádoucí ztráty jejich počáteční echogenicity.
I
I
Další výhoda tohoto vynálezu vychází ze skutečnosti, že za účelem vytvoření echosignálových složek při dvojnásobné základní frekvenci, druhá harmonická frekvence zobrazování vyžaduje nelineární oscilaci kontrastního prostředku. Takové chování využívá ultrazvukovou excitační hladinu, abyse; překročil určitý akustický práh při určité hloubce tkáně f' Během nelineární oscilace nastává frekvenční konverze, co způsobuje přeměnu akustické energie ze základní excitační frekvence až na její druhou harmonickou frekvenci. Tyto významné energie přenášené do mikrobublin během tohoto typu zobrazování vyžadují mikrobubliny dostatečně odolné k přečkání těchto podmínek. Vynález poskytuje snadný a obvyklý přístup k suspenzím, které obsahují mikrobubliny s dobrou odolností vůči změnám tlaku, které se mohou nyní připravit í' v předstihu, skladovat a používat, když je zapotřebí. ‘
Jak již bylo zmíněno, zmrazené suspenze podle tohoto vynálezu mohou obsahovat kromě mikrobublin plynu také přísady, mezi které se zahrnují různé povrchově aktivní látky, přípravky zvyšující viskozitu, stabilizátory a podobně. Mezi povrchově aktivní látky se mohou zahrnout povrchově aktivní látky, které vytvářejí film a které nevytvářejí film, včetně fosfolipidů v lamelární nebo laminární formě, které jsou známé ke stabilizaci mikrobublin s nestálým plynem a kapalným obalem. Lamejární fosfolipidy mohou být ve formě monomolekulárních nebo vícemolekulárních vrstev nebo liposomů.
V závislosti na typu mikrobublin, to znamená s nestálým obalem nebo hmotnou membránou, nosné prostředí může zahrnovat jako přísady hydratační přípravky a/nebo hydrofilní stabilizující sloučeniny, jako je polyethylenglykol, cukry, jako je galaktóza, laktóza nebo sacharóza, dextran, škrob a jiné polysacharidy nebo jiné obvyklé přísady, jako je polyoxypropylenglykol a polyoxyethylenglykol a jejich kopolymery, ethery alifatických alkoholů s polyoxyaíkylenglykoly, estery mastných kyselin s polyoxyalkylovaným sorbitanem, mýdla, glycerol-polyalkylkenstearát, glycerol-polyoxyethylenricinoleát, homopolymery a kopólyměrý polýálkylenglykolů, polý“,.,. ethoxylovaný sojový olej a ricinový olej, stejně jako jejichý , hydrogenované deriváty, ethery a estery sacharózý nebo jiných ' •i cukrů s mastnými kyselinami a alifatickými alkoholy, ktere^^ ' jsou popřípadě polyoxyalkylované, monoglyceridy, diglyceridy, a triglyceridy* nasycených nebo nenasycených mastných kyselin a také glyceridy sojového oleje a sacharózý. Povrchově aktivní látky mohou být filmotvorné nebo nefilmotvorné a mohou zahrnovat polymerovatelné ampifilní sloučeniny typu linoleyl-lecitinů nebo polyethylendodekanoátu. Výhodně povrchové aktivní látky jsou filmotvorné a ještě výhodněji jde o fosfolipidy zvolené z kyseliny fosfatidové, fosfatidylcholinu, , fosfatidylethanolaminu, fosfatidylserinu, fosfatidylglycero~lu’fósfaťfdýlinóšitóiu, karďiolipinu, sfingomyelínu nebo jejich směsí. Kromě filmotvorných povrchově aktivních-látek zmíněných výše, suspenze mohou dále obsahovat až 50 % hmotnostních nelaminárních povrchově'aktivních látek, které jsou zvoleny z mastných kyselin, esterů a etherů mastných kyselin a alkoholů s polyoly, jako jsou polyalkylenglykoly, polyalkylenované cukry a jiné cukry, a polyalkylénováný glycerol. Mezi obzvláště vhodné látky se zahrnuje dicetylfosfát, cholesterol, ergosterol, fytosterol, sitosterol, lanosterol, tokoferol, propylgallát, askrobylpalmitát a butylovaný hydroxytoluen.
Je třeba vzít v úvahu, že tento vynález není omezen pouze na suspenze mikrobublin plynu s nestálým obalem. Běžně se mohou použít jakékoli vhodné částice naplněné plyny, jako jsou porézní částice, liposomy nebo mikrobalonky, které mají obal vytvořený z fosfolipidů, syntetických nebo přírodních polymerů nebo proteinů. Tak bylo stanoveno, že mikrobalonky připravené s albuminem nebo liposomovými váčky mohou být vhodné skladovány po prodloužené časové období ve zmrazeném stavu. Rozmražené suspenze obsahující tyto mikrobalonky , projevují přijatelné echogenicity, co ukazuje na relativně malou ztrátu mikrobublin. Suspenze, ve kterých jsou mikrobub-.
liny stabilizovány sorbitolem nebo neiontovými povrchově < ·τ ** ?· ' - ’·“τ aktivními látkami, jako kopolymery polyethylenu a polypropy- 1 ?
lénu (komerčně známé jako Pluronic') projevují naprosto dobrou zobrazovací kapacitu po skladování. ,
Přísady používané pro suspenze podle tohoto vynálezu mohou dále obsahovat přípravky zvyšující viskozitu a/nebo stabilizátory, které jsou zvoleny ze lineárních a zesítěných polysacharidů nebo oligosacharidů, cukrů, hydrofilních polymerů a jodovaných sloučenin. V takovém případě hmotnostní eř* poměr těchto sloučenin k povrchové aktivním látkám je od přibližně 1:5 do 100:1. ?
Suspenze podle tohoto vynálezu se připravují -¾ s rozdílnými plyny nebo směsmi plynů a obvykle obsahují od 1 ý
107 do 108 mikrobublin na ml, od IQ8 do 109 mikrobublin na ml ;·?
nebo od 109 do 1010 mikrobublin na ml. Tyto koncentrace * zůstávají stejné po prodlouženém skladování, to znamená několik měsíců, a pokud se připravuje suspenze s SFg, C^Fg nebo jejich směsmi nebo směsmi vzduchu s SFg nebo C^F·^, koncentrace se nezmění ani po opakovaných cyklech zmrazování a roztáni.
. . ..... .. - Když. mikrobubliny^v suspenzi mají. hmotnou membránu, .... membrána je zhotovena ze syntetického nebo přírodního polymeru nebo proteinu. Polymer, který tvoří obal nebo hraniční membránu injikovatelných mikrobalonků, se může zvolit z většiny hydrofilních, biologicky degradovatelných, fyziologicky snášenlivých polymerů. Mezi takovými polymery se <
· mohou jmenovat polysacharidy s omezenou rozpustností ve vodě, polylaktidy a polyglykolidy a jejich kopolymery, kopolymery laktidů a laktonů, jako je e-kaprolakton, 5-valerolakton a polypeptidy. Veliká všestrannost při výběru syntetických polymerů je proto výhodná, protože u alergických pacientů se může požadovat, aby se vyhnulo použití mikrobalonkú zhotov©“ ných z přírodních proteinů (albumin, želatina). Mezi vhodné polymery se zahrnují póly (ortho) esterykopolymery kyseliny mléčné a kyseliny glykolové, polytDíL-laktid-kó-fi-'^·'^’·'·^^·^' -kaprolakton), poly(D,L-laktid-ko-S-valerolakton), poly(D,L-laktid-ko-g-butyrolakton), polyalkyl-kyanakryláty, polyamidy, polyhydroxybutyrát, polydioxanon, poly-p-aminoketony, polyfosfazeny a polyanhydridy. Polyaminokyseliny, jako je póly(kyselina glutamová) a póly(kyselina asparagová) se mohou také použít, stejně jako jejich deriváty, to znamená parciální estery s nižšími alkoholy nebo glykoly. Vhodný příklad takových polymerů je póly-(terč.-butylglutamát).
Jestliže je membrána zhotovena z proteinového materiálu, proteinem je albumin.
I když ve spojení s .vhodnými povrchově aktivními'. látkami a stabilizátory se mohou použít samotné plyny obsahující halogen, vzduch, kyslík, dusík nebo oxid uhličitý, nyní je také navrženo používat směsi plynů obsahujících halogen se vzduchem, kyslíkem, dusíkem a s oxidem uhličitým. Plyny obsahující halogen jsou plyny zvolené z fluoridu sírového, tetrafluormethanu, chlortrifluormethanu, dichlordifluormethanu, bromtrifluormethanu, bromchlordifluormethanu, dibromdifluormethanu, dichlortetrafluorethanu, chlorpentafluorethanu, hexafluorethanu, hexafluorpropylenu, oktafluorpropanu, hexafluorbutadienu, oktafluor-2-butenu, oktafluorcyklobutánu, dekafluorbutanu, perfluorcyklopentanu, dodekafluorpentanu nebo jejich směsí a výhodně jsou zvoleny z fluoridu sírového, tetrafluormethanu, hexafluorethanu, hexafluorpropylenu, oktafluorpropanu, hexafluorbutadienu, oktafluor-2-butenu, oktafluorcyklobutanu, dekafluorbutanu, perfluorcyklopentanu *
f a dodekafluorpentanu.
Tento vynález se také týká způsobu skladování suspenzí mikrobublin, při kterém se suspenze umístí do chladicího , . ,t ~ zařízení, jako je chladnička, a mikrobubliny se imobílizují v nosném prostředí ochlazením na teplotu pod teplotou zmrazení suspenze, výhodně na teplotu od -1 do -196 C a výhodněji od -10 do -76 °C, přičemž chladicí podmínky se udržují během prodlouženého časového období. Podle potřeby se zmrazená suspenze udržuje v atmosféře inertního plynu nebo směsi plynů, z nichž alespoň jeden je enkapsulován v mikrobublinách. Plyn se s výhodou zvolí z plynů obsahujících halogen, vzduchu, kyslíku, dusíku, oxidu uhličitého nebo jejich směsí.
Bylo nalezeno, že plyny nebo směsi plynů používané pro
A zmrazenou suspenzi podle tohoto vynálezu mají mít teplotu varu, která je nižší než -18 °C. To znamená, že suspenze připravené s plyny obsahujícími halogen, jako se samotným C4F8 nebo C5F10, budou mít velmi malou stabilitu při skladováni a ztratí prakticky veškerou svojí echogenicitu po ·» zmrazení. Tó je obzvláště překvapující, protože všechny jiné plyny obsahující halogen produkují velmi stabilní zmrazené suspenze, které přečkají několik cyklu zmrazování a roztáni bez významné ztráty echogenicity. Rovněž přidáváním těchto plynů s malým množstvím jiných halogenovaných plynů nebo rovněž odpařením halogenované látky, která je za teploty místnosti kapalná, jako je C5F·^, se připraví smési, které by nemohly, být,..skladovány,, zmrazené . Naproti tomu smícháním vzduchu s určitým množstvím těchto plynů se připraví suspenze, které mají velmi dobrou stabilitu při skladování a velmi dobrou echogenicitu po několika cyklech zmrazení a roztáni.
Jak již bylo zmíněno výše, injikovatelné suspenze podle tohoto vynálezu, pokud jsou v kapalném stavu, jsou vhodné jako kontrastní prostředky pro ultrazvukové zobrazování orgánů a tkání. Před použitím se samozřejmě suspenze musí rozmrazit a popřípadě udržovat za teploty místnosti po určité časové období á potom podat pacientovi. Pacient se poté prohlíží pomocí ultrazvukové„sondy a^vy^vóřít^^'.
se obraz vyšetřované oblasti?
Do rozsahu tohoto vynálezu také spadá způsob přípravy ultrazvukových echografických kontrastních prostředků ze zmrazených injikovatelných suspenzí podle tohoto vynálezu. Pojmem příprava se rozumí, že se dosti koncentrované suspenze (obsahující například 1010 až 1011 nebo více'mikrobublin na mililitr) kalibrovaných nebo nekalibrováných mikrobublin skladují ve zmrazeném stavu během časového období a pokud je zapotřebí, rozmražená suspenze se popřípadě' zředí na požadovanou koncentraci'přidáním stejné nebo rozdílné ’ _ 'fyziologicky přijatelné kapalné nosné látky. Počítá se^také s tím, že se v tomto okamžiku mohou přidat další přísady nebo přídavné chemikálie.
Příklady provedeni vynálezu
Vynález je ilustrován příklady, které jsou uvedeny dále.
Příklad 1 mg diarachídoylfosfatidylcholinu (DAPC), 2,4 mg kyseliny dipalmitoylfosfatidové (DPPA) (obě sloučeniny jsou od firmy Avanti Polar Lipids, USA) a 3,94 g polyethylenglykolu (PEG 4000 od firmy Siegfried) se rozpustí ve 20 ml terč.-butanolu za teploty 60 °C ve skleněné nádobě s kulatým dnem. Čirý roztok se rychle ochladí na teplotu -45 °C a lyofilizuje. Alikvoty, o hmotnosti 25 mg získaného bílého koláče, se zavedou do skleněných lahviček o objemu 10 ml. Lahvičky se uzavřou kaučukovými zátkami, odvzdušní a plní zvoleným plynem nebo směsí plynů (viz tabulka 1). Uzávěrem se jako injekce vnese fyziologický roztok (0,9 % chloridu sodného) v množství 5 ml na lahvičku a lyofilizáty se rozpus? ti intenzivním třepáním.
'-.--i f '· ' «' £/. ••itiíWslOfcsae.XIÍ ' ’ \V:ííB
τ.-ηζΛ .-A*.
ví:.:.
·'< 4 •-ί-'Λ'
-«ΪΛ,ί.„ .
,«.,,Λ± .-Λ*..· X ~=f 9 '•í.tiP-.i
Suspenze mikrobublin se“vnese do studeného skladovačího prostoru (teplota -18 °C). 0 tři dny později se suspenze nechá roztát za teploty místnosti (23 °C), analyzuje se s ohledem na koncentraci bublin (za použití přístroje Coulter Multisizer) a stanoví se absorbance při vlnové délce 700 nm a zředění 1:50. Absorbance při 700 nm se měří podle celkové turbidity suspenze bublin.
Tabulka 1
Plyn nebo Teplota varu Rozpustnost Absorbance Získáno (%) směs plynů ( C) ve vodě (% z počáteční bublin t.
hodnoty)
vzduch -195 0,0167 33 14
SF6 -63,8 0,005 57 23
C3F8 -36,7 «0,005 59 54
C4F8 -6 0,016 11 * T 8
C4F10 -1,7 <0,005 7 4
vzduch s
5 % C5F12 -195 0,0167 71 49
.vzduch, s. - —..... - - .......-
10 % c5f12 -195 0,0167 55 34
vzduch s
io % c4f8 -195 0,0167 50 30
vzduch s
10 -s C4F10 -195 0,016 52 32
Tabulka 1 - pokračování
Plyn nebo Teplota varu Rozpustnost Absorbance Získáno (%)
směs plynů (°c.) ve vodě* (% z počáteční bublin
hodnoty) i.
SF6 s r -i · ý - · .* - A* •r ”*»· · ·.- ··. * -· • stíí.^ > r. .j* -i· ·· * ’
5 % C5F12 -63,8 0,0.05 62 ;4,1
C3F8 s - -. ... ....v .... ' > > · v :<&> jif ·ή···
5 % C5F12 C4Fg S -36,7 «0,005 84 71
5 * C5F12 C4F10 s -6 0,016 7 6
5 % C5F12 -1,7 <0,005 1 1 *
xenon s
5 % C5F12 -108,1 0,108 38 17
vyjádřeno Jako Bunsenův koeficient .
“V - -.·
Výsledky uvedené v tabulce 1 ukazují, že stabilita . zmrazování závisí na teplotě varu a rozpustnosti plynu ve vodě. Méně bublin se dostane y 'případě, plynů s teplotou varu nad -18 °C. Ξ přihlédnutím k plynům s teplotou varu pod -18 °C, nižší rozpustnost ve vodě vede k vyššímu získání bublin. Je také zajímavé poznamenat, že přídavek malého množství plynu o vysoké molekulové hmostnosti s malou rozpustností ve vodě, jako dodekafluorpentanu (CgF-^), zlepšuje získání bublin po roztáni v případě plynů s nízkými teplotami varu, ale nikoli v případě plynů s teplotou varu nad -18 °C. Konečně mikrobubliny plněné C4F8 a C4F10 samostatně nebo ve směsích s malými množstvími dodekafluorpentanu mají velmi malou stabilitu ke zmrazení a roztaní. Avšak pokud se tyto plyny použijí v kombinaci se suspenzemi mikrobublin vzduchu obsahujícími směsi, projevují lepši výsledky s ohledem na echogenicitu nebo ztrátu mikrobublin než suspenze, které obsahují vzduchové mikrobubliny.
Příklad 2 i
Suspenze SFg mikrobublin, připravená jak je popsáno v příkladu 1, se pomalu zmrazí (přibližně během 30 minut) na teplotu -18 °C a rychle (během 1 minuty) na teplotu -45 ,;°C. ' Jiné suspenze SFg mikrobublin se před zmrazením udržují ža teploty místnosti, až všechny bubliny vystoupí na povrch.& '
Ještě jiné suspenze se zmrazí, zatímco bubliny jsou homogenně distribuovány v roztoku. Zmrazené suspenze se skladují za teploty -18 a -45 °C po dobu 1 měsíce a potom se rozmrazí.
Tabulka 2
Test Koncentrace bublin Objem bublin (% z počáteční (% z počáteční hodnoty) hodnoty)
pomalé zmrazení (-18 °C) 16 39
rychlé zmrazení (-45 °C) 24 51
dekantace (-18 °C) 14 34
homogenizace (-13 °C) 24 61
Výsledky v tabulce 2 ukazují, že rychlost zmrazení má relativně malý vliv na konečný výsledek. Výtěžek v případě homogenní suspenze je lepší než v případě dekantovaných mikrobublin.
Příklad 3
Multilamelární liposomy (MLV) se připraví rozpuštěním 4,5 g hydrogenovaného sojového fosfatidylcholinu (HSPC od firmy Nattermann) a 0,5 g dicetylfosfátu (Fluka, Švýcarsko) lipidu .· *' ίΓμ,. .
* s a.*
Wt '*·*+ vnese ve směsi chloroformu a methanolu v poměru 2:1. Rozpouštědla se potom odpaří dosucha v bance s kulatým i dnem za použití í
rotační odparky. Výsledný lipídový film se vysuší ve vakuovém exikátoru. Po přidání 100 mol destilované vody se suspenze inkubuje za mícháni při teplotě 70 °C po dobu 30 minut... Lipósómová suspenze se upraví na konečnou koncentraci 25 mg'na mililitr přidáním destilované vody. ;
Alikvot liposomové suspenze o objemu 100 ml se do utěsněného skleněného reaktoru, který je vybaven vysoko otáčkovým mechanickým emulgátorem (Polytron). Plynná fáze v reaktoru je tvořena vzduchem obsahujícím 5 % C5F12 (jak se stanoví měřením hustoty). Po homogenizaci (během.1 minuty při frekvenci otáček 10 000 za minutu) se získaná mléčná suspenze zavede do dekantačni nálevky. Po 6 hodinách může být vidět bílá vrstva bublin na povrchu roztoku. Nižší fáze (obsahující liposomy) se zachytí, přidá se malé množství čerstvé vody ’a vrstvamikrobublin se _znovu homqg.enizuje_._...P_os.tup________— (dekantace) se opakuje a· připraví se čtyři vzorky s rozdílnou velikostí mikrobublin (viz WO 94/09829). Vzorky se zmrazí za teploty -18 °C a o 24 hodin později se nechají roztát při teplotě místnosti.
Tabulka 3
Počáteční Průměr Koncentrace Absorbance při 700
průměr Dn po zmrazení bublin {% z po- nm (% z počáteční
Dn (μη) a roztáni čáteční hodnoty) hodnoty)
2,5 2,5 19 20
4,6 4,5 60 68
6,0 6,2 86 100
7,6 8,1 76 91
Z dosažených výsledků (tabulka 3) je zřejmé, že zpracování zmrazením a roztáním nemá vliv na střední průměr mikrobublin. Experimenty ukazují, že mikrobubliny s větším průměrem (<2,5 μιη) odolávají zpracování zmrazením a roztáním lépe než mikrobubliny s menším průměrem. Dále se pozorovalo, že v určitých případech rychlost rozmrazování může ovlivnit _ konečnou koncentraci mikrobublin přítomných ve vzorku. Přesným vztah je stále nejasný, avšak vyskytují se údaje o tom, že' J ztráta mikrobublin je v obráceném poměru k rychlosti * rozmrazování. Předběžné výsledky ukazují, že lepší výsledky s ohledem na koncentraci mikrobublin (podle jejich počtu) a celkový objem plynu v suspenzi se dostanou při urychleném rozmrazováni, to znamená rozmrazování prováděném na vodné lázni za teploty 25 °C, než když se vzorky nechají za teploty 5 nebo 20 °C rozmrazovat postupně. Největší ztráta objemu plynu se pozoruje u vzorků, které jsou rozmrazovány za teploty 5 °C.
* J
Příklad 4
Experiment popsaný v příkladu 3 se opakuje za použití, směsi povrchově aktivních látek na místo multilamelárního liposomu. Směs povrchově aktivních látek se dostane rozpuštěním 1 g dípalmitoylfosfatidylglycerolu (DPPG Na, soli od .· firmy Avanti Polar Lipids, USA) a 3 g Pluronic^R^ Fg8 (kopolymer polyoxyethylenu a polyoxypropylenu s molekulovou hmotností 8400) v 80 ml destilované vody. Po zahřátí na teplotu přibližně 70 °C se dostane čirý roztok. Tento roztok se ochladí na teplotu místnosti a jeho objem se doplní na 100 ml glycerolem. Roztok povrchově aktivní látky se zavede do utěsněného skleněného reaktoru, kam byl vložen emulgátor Polytron. Po homogenizaci (během 1 minuty při frekvenci otáček 10 000 za minutu) se získá mléčná suspenze s vrstvou pěny v horní části. Pěna se odloží a dostane se nižší fáze, která obsahuje IQ9 mikrobublin na mililitr. Tato fáze se ponechá několik hodin předtím, než se zachytí bílá vrstva mikrobublín. Zachycené mikrobubliny se znovu homogenizují v destilované vodě, dvakrát dekantují a zpracují zmrazováním a roztáním jak již bylo popsáno. Když se porovnají charakteristiky mikrobublín před a po zmrazení, nepozorují se žádné výzpamné. .změny-v bublin na ml, po průměru Dn (před
Přiklad 5 celkové'koncentraci bublin (před 1,3 1,25 x 1θ8 bublin,na>1) a ve střednim*M^^S4í&4.^
4,0 μπι/ po 3,9 μη).
-í“ '·'··
Bubliny SFg se připraví, jak je popsáno v příkladu 1, a dekantují, jak je popsáno v příkladu 3. Během odstranění nižší vodné fáze se do nálevky zavede ekvivalentní objem plynného SFg. Vrstva bublin se znovu suspenduje v destilované vodě, 0,9% roztoku'chloridu sodného, 3% vodném roztoku glycerolu a 100 mg/ml roztoku trehalosy. Koncentrace bublin a absorbance při vlnové-délce 700 nm (po zředěni)' se stanoví ______—před-a-po··zpracování'zmrážováňxm_a roztáním. '
Tabulka 4
Suspendacní Absorbance při Koncentrace bublin prostředí 700 nm (% z počáteč- (z počáteční ní hodnoty) hodnoty)
destilovaná voda 69 66
0,9% NaCl 86 92
3% glycerol 92 96
100 mg/ml trehalosy 89 73
Výsledky v tabulce 4 ukazují vynikající získání mikrobublin nezávisle na suspendačním prostředí. Je důležité poznamenat, že se zde získají mikrobubliny v rozsahu od 66 do %, co se muže zdát jako nesrovnalost s předchozími výsledky uvedenými v tabulkách 1 a 2. Avšak v tomto případě I především mikrobubliny jsou kalibrovány, to znamená, že jsou stabilnější než nekalibrované, a dále velikost použitých mikrobublín je nad 4 μπι.
Příklad 6 . .· . i, .-·?-,· -•'i.*·’·.*.
, ·. . ' :r’* '· r }?*
Dekantované SFg mikrobubliny se dostanou 'jak je ’ popsáno v příkladu 5. Vrstva mikrobublín se suspenduje při rozdílných koncentracích mikrobublín v 0,9% roztoku chloridu sodného, potom zmrazí na teplotu -18 °C, skladuje po dobu přibližné 4 měsíců a nechá roztát za teploty místnosti.
Tabulka' 5
Koncentrace bublin objem bublin Průměr bublin (x 108/ml) (μΐ/ml) (μη).
nativní zpracované* nativní zpracované’ nativní zpracované
1,9 1,9 (1,9) 6,8 6,0 (5,5) 3,1 3,0 (2,9)
3,9 3,7 (3,3) 14,7 11,5 (9,4) 3,1 2,8 (2,6)
5,9 5,7 (5,4) 22,6 20,4 (18,6) 3,1 3,0 (3,0)
7,7 7,6 (6,1) 28,3 24,6 (17,0) 3,0 2,9 (2,7)
Zpracováním se míní zmrazování a roztáni. V závorkách jsou uvedeny výsledky dosažené po druhém zpracování zmrazováním a roztáním.
Výsledky shromážděné v tabulce 5 ukazují nevýrazný účinek koncentrace bublin na odolnost ke zpracováni zmrazováním a roztaním. Rovněž druhé zpracování zmrazováním a roztátím, které se provádí po uskutečněném skladování, nemá účinek na konečnou koncentraci, co ukazuje, že tyto suspenze jsou odolné k opakovaným cyklům zmrazování a roztáni rovněž po skladování bez velké ztráty počtu bublin a poškození echogenicity vzorků. ' .
Příklad 7 . ’ . . ... «». t·,
Mikrokuličky albuminu, zpracované působením ultrazvu* , .. . „. , , '.·:·· . - · ku, se pripravi za použiti způsobů, který je popsán . A v EP-A-0 324 928 (Widder). Uvedeno v krátkosti,' 5 ml ’”‘ř' ’ '* sterilního 5% roztoku lidského albuminu (od Blood Transfusion Service Švýcarského červeného kříže, Bern, Švýcarsko) se zavede do kalibrované injekční stříkačky o objemu 10 ml.
Ultrazvuková sonda (model 250 od firmy Branson Ultrasonic ,
Corp., USA) se spustí do roztoku na značku 4 ml. Působení ultrazvuku se provádí po dobu 30 sekund při nastavení energie 7. Potom se ultrazvuková sonda vyzvedne až na značku 6 (to znamená nad hladinu roztoku) a působení ultrazvuku se provádí to** μ pulzním- způsobem'' (0’, 3‘ s/cyklus) po dobu 4£_ &ekund_._Po_pds.tr.a.-:__.___________ ' není’ vrstvy pěny se dostane suspenze mikrokuliček albuminu, která obsahuje 1,5 x 108 bublin na mililitr, s číselným středním průměrem 3,6 μια. Suspenze se zmrazí na teplotu. -18 °C a nechá za této teploty přes noc. Den poté se suspenze nechá roztát za teploty místnosti. Suspenze analyzovaná před a po zpracování zmrazovánim a roztáním má tyto charakteristické vlastnosti:
Tabulka 6
Vzorek Absorbance Koncentrace bublin Průměr (se vzduchem) 700 nm (x l08/ml) Dn (um) nativní po zmrazení a roztáni
0,25
0,13
1,4
0,4
3,6
6,3
Výsledky v tabulce 6 ukazují určitý stupeň destrukce mikrobublin obsahujících vzduch cyklem zmrazování a rozmrazování. Pokud se na místo čistého vzduchu připravují albuminové bubliny se směsí vzduchu obsahující přibližně 5 % objemových c5f12 nebo c3f8' stabilita mikrokuliček proti ztrátě poctu ...
bublin zmrazováním a roztánim_se zřetelně zlepšuje (viz f ’ ' . . „ . „a/s .-..Λ···., tabulka 7). Z výsledků dosažených s iaikrokuličkami albuminu může být také zřejmé,- že cykly zmrazování a roztáni v případě vzduchových mikrobublin jsou škodlivé pro nižší konec velikostí shluků mikrobublin, to znamená, že mikrobubliny se střední velikostí přibližně 5 tím nebo více mají lepší odolnost a schopnost přetrvat než menši mikrobubliny.
Tabulka 7
Vzorek (vzduch s
Absorbance 700 nm
Koncentrace bublin Průměr (x 108/ml) Dn (um) C5F12 nativní 0,64 po zmrazení a roztáni 0,39
2,4
1,1
3,7
4,3
Příklad 8
Když se 3 g sacharidových mikročástic SHU-454, komerčního echo-kontrastního prostředku (Echovist^ , Schering, SRN) rekonstituje_v8,5 ,ml roztoku galaktózy. .(s obsahem 200 . mg sloučeniny na ml), jak je doporučeno výrobcem, a získaná látka se podrobí zpracování zmrazováním a roztáním, po roztáni je v roztoku přítomno pouze několik bublin. Jestliže se přidá 10 mg na ml směsi dipalmitoylfosfatidylglycerolu a Pluronic^) F68 v hmotnostním poměru 1:5 k roztoku galaktózy před přidáním mikročástic sacharózy, mohou se dostat stabilní mikrobubliny v koncentraci 2,5 x 108 mikrobublin na mililitr. Po zmrazení a roztáni koncentrace bublin poklesne přibližně o velikost tří řádů, na 2,3 x 105 na mililitr, co ukazuje značnou ztrátu mikrobublin během zpracování. Pokud še však přeď rekonstitucí nahradí vzduch .· v plynné fázi směsí vzduchu s obsahem 10 % C5F12, bubliny»* jsou stabilnější a také odolnější ke zpracovaní zmrazovamm a roztaním. Ztráta mikrobublin v tomto naposledy uvedeném*'*'' případě činí pouze 2,3 x 108 mikrobublin na mililitr, protože koncentrace poklesla z 3,9 x IQ8 na 1,6 x lo8 mikrobublin na mililitr.
.ťwí·
Příklad 9
Připraví se mikrobalonky z polymeru za použití | technického postupu popsaného v příkladu 4 EP-A-0 458 745 (Bracco*International) 2' Polymerem použitým při_této př_íp_rayé_______._____________ je poly-PÓMEG, který je popsán v US patentu č. 4 888 398.
Mikrobalonky se suspendují v koncentraci 1,8 x 108 částic na mililitr v destilované vodě, 0,9% roztoku chloridu sodného,
5% roztoku dextrózy a 3% glycerolu. Každá z těchto suspenzí se zmrazí a potom nechá roztát. Nepozorují se žádné zjistitelné změny po roztáni, ani v celkové koncentraci částic, ani ve středním průměru částic.
Příklad 10 l
V baňce s kulatým dnem o objemu 200 ml se rozpustí v 9 ml diethyletheru množství 126 mg vaječného lecitinu a 27 mg cholesterolu. K roztoku se přidají 3 ml o,2-molárního vodného roztoku hydrogenuhličitanu sodného s ionoforem A23187 a výsledný dvoj fázový systém se podrobuje působení ultrazvuku, až přejde na homogenní směs. Tato směs se odpaří I dosucha na rotační odparce Rotavapor a do láhve obsahující I usazeninu lipidu se přidají 3 ml O,2-molárního vodného roztoku hydrogenuhličitanu sodného.
r i
Po chvilce stání se výsledná liposomová suspenze dialýzuje proti fyziologickému roztoku, k odstranění nezachyceného hydrogenuhličitanu, a okyselí. Po další chvilce se roztok promyje destilovanou vodou a poté se několikrát vede kaskádou uhličitanových filtrů. Alikvot suspenze 4liposomů v s velikostí pod 50 um se potom zmrazí na teplotu -18 °C a skladuje za této teploty. 0 dva týdny později se suspenze nechá roztát za teploty místnosti. Suspenze analyzovaná před a po zpracování zmrazováním a roztaním ukazuje na přijatelně nízkou ztrátu echogenicity a počtu mikrobublin.
Příklad 11 i,
Při postupu z příkladu 3 se opakované použije SF6 a vzduch, který obsahuje 5 % C5F12, jako plYnná fáze a vzorky výsledné suspenze se zmrazí při -18, -45, -76 a -196 °C. Po 30 dnech skladování při teplotě odpovídající zmrazovací teplotě se vzorky rozmrazí a suspenze se analyzují. Dosažené výsledky jsou uvedeny v tabulce 8. Koncentrace mikrobublin ve vzorcích před zmrazením činí 11,3 x 10'/ml pro SF6 a 9,8 x 107/ml pro směs vzduchu s obsahem 5 % C5F12, zatímco příslušné objemy plynů ve vzorcích před skladováním jsou 2,9 μΐ/ml a 5,9 μΐ/ral. Průměrný průměr mikrobublin pro oba plyny činí 2,3 μη a 4,2 ^m.
Tabulka 8
Plyn Dosaže- Průměr Dosaže- Teplota Plynná Dosa- Průměr Dosažená koncentrace bu~ blin -r (x^o7)
ný ob- Dn po jem ply- rožnu táni (μΐ/ml) ná kon- (°C) centra- ce bublin (x io7) směs vzduchu s 5 % C5F12 žený Dn po objem roztá- 1..... plynu ni (μΐ/ml)
SF6 2,3 2,4 10,0 -18 ano 5,5 4,6 7,7
SF6 2,8 2,6 7,9 -45 ano 4,2 4,5 6,2
SF6 1,8 2,5 6,8 -70 ano 3,9 4,4 5,6
SF6 0,6 2,0 6,0 -196 ano 2,7 4,0 5,1
Z výsledků vyplývá, že čím jsou nižší teploty při skladování, tím je větší ztráta koncentrace mikrobublin a'Celkového množství plynu 'získaného po rozmražení. Výsledky '“dále ukazují, že pro rozmražené vzorky suspenzí s SFg; průměrný průměr se nejprve zvýší a potom prudce klesá, /jak se teplota snižuje. Pro směs vzduchu s 5 % C5F12 nastává relativně malá změna v průměru, mikrobublin. Výsledky také ukazují, že průměrný průměr mikrobubliny klesá s poklesem skladovací teploty. Jak je znázorněno na obr. 1 pro suspenze s SFg a směsi vzduchu s C5F12, dostane se pouze 51,7 % a 52 % počátečního stavu mikrobublin po skladování za teploty -196 °C. Avšak jak je zřejmé z obr. 2, celkový objem plynu získaného po skladování pro SFg je 21,1 % z původního objemu, zatímco pro směs vzduchu s C5F12 je dosažený objem 46,5 %. Tyto údaje ukazují, že velikost mikrobublin v případě suspenzí připravených s SFg se mění, to znamená že získané mikrobubliny mají snížené průměry.
obr. 3 a 4 ilustruji účinnost zmrazení nebo teploty při skladování na odolnost ke změně tlaku suspenzí mikrobublin, které obsahují směs vzduchu s 5 % CgF^2· Na diagramu z obr. 3 je představena absorbance (měřeno při vlnové délce 700 nm) jako funkce tlaku aplikovaného na suspenzi po skladování během 3 dnů za rozdílných teplot.
Z tohoto diagramu vyplývá, že pokles teplot při skladování má účinek na vlastnosti suspenze, přičemž změna vlastností v .
suspenze skladované za teplot od -18 do -76 C je významná, ' zatímco změna pro, vzorky skladované za teplot od -76 do -196 ,*,.
°C je relativné malá. Tak udržování teplot při skladování pod -76 °C se nezdá, že by poskytlo další výhody. Z pohledu na náklady zahrnující dosažení zvolených teplot pod -76 °C se může pro takové teploty rozhodnout pouze ve výjimečných případech.
Obr. 4 naproti tomu ukazuje, že pokud se suspenze mikrobublin obsahující směs vzduchu s 5 % C5F12 skladuje po dobu 3 dnů při nízkých teplotách, její odolnost ke změnám tlaku zůstává relativně nezměněna, zatímco stejná suspenze udržovaná během stejného časového období při teplotě 25 °C ztrácí přibližné 10 % své počáteční odolnosti ke změně tlaku.
Přesný postup, důležitost kritického tlaku a měření > absorbance již byly vysvětleny v EP-A-0 554 213, který se zde uvádí jako součást dosavadního stavu techniky.
Příklad 12 *
Dvojrozměrná echografie se provádí za použití výbavy ACUSON 128 XP (Acuson Corp., USA) s prostředky z příkladů 1, á 7 na experimentálních miniprasatech po injekci do periferní žily v množství 0,04 ml/kg tělesné hmotnosti.
Stanoví se zvýšení echo-kontrastu levé ventrikuly v případě nativních vzorků, stejně jako vzorků zpracovaných zmrazováním a roztaním. Nezjistí se žádné významné rozdíly ani v případech vzorků, jako jsou popsány v příkladu 7 pro albuminové mikrokuličky, co ukazuje, že výsledné mikrobubliny jsou z velké části dostatečné pro vytvoření silného a dlouho trvajícího zvýšení ozvěnového signálu.

Claims (25)

1. Zmrazená suspenze bublin plynu imobilizovaná ve zmrazeném vodném nosném prostředí, vyznačující se t í b, že nosné prostředí obsahující bubliny plynu a obvyklé přísady je fyziologicky přijatelnou nosnou látkou, imobilizované bubliny plynu jsou mikrobubliny vázané nestálým obalem nebo hmotnou membránou, suspenze, pokud je v kapalné formě,,je injikovatelná a vhodná jako kontrastní prostředek při ultrazvukovém zobrazování krevního řečiště a tkáně žijících jedinců.
2. Suspenze podle nároku 1, vyznačuj icí se t í m, že teplota zmrazeného prostředí je od -1 do -196 °C, výhodně od -10 do -76 °C.
3. Suspenze podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se t í m, že velikost většiny mikrobublin je pod 50 μια, výhodné pod 10 μη.
4. Suspenze podle nároku 3,vyznačuj icí se t í m, že velikost mikrobublin je od 2 do 9 μη, výhodně od 3 do 5 μιη.
5. Suspenze podle nároku 1 nebo 2, vyznačuj ιοί se tím, že zahrnuje přísady, jako povrchově aktivní látky, lamelární fosfolipidy ve formé jednomolekulární membránové vrstvy nebo vícemolekulární membránové vrstvy.
6. Suspenze podle nároku 5, vyznačuj ící se t í m, že lamelární fosfolipidy jsou ve formě unilamělárního nebo multilamelárniho liposomu.
7. Suspenze podle nároku 5,vyznačuj ící se t í m, že lamelárními fosfolipidy jsou nasycené fosfolipidy. :
í
8. Suspenze podle nároku 6 nebo 7,vyznačuj ιοί se t í m, že fosfolipidy jsou zvoleny z kyseliny fósfatidové, fosfatidylcholinu, fosfatidylethanolaminu, fosfatidylserinu, fosfatidylglycerolu, fosfatidylinositolu,kardiolipinu, sfingomyelinu nebo jejich směsí.
9. Suspenze podle nároku 1 nebo 2, vyznačuj í cí se tím, že přísady zahrnují látky, které jsou zvoleny ze souboru, jenž zahrnuje dicetylfosfát, cholesterol, ergosterol, fytosterol, sitosterol, lanosterol, tokoferol, propylgallát, askrobylpalmitát a butylovaný hydroxytoluen.
10. Suspenze podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se tím, že přísady zahrnují sorbitol nebo ' neiontovépovrchově'aktivní látkyL jako .kopolymety pplyoxyethylenu a polyoxypropylenu.
AfcJ.
11. Suspenze podle některého z předcházejících nároků, vyznačující se tím, že přísady zahrnují přípravky zvyšující viskozitu a/nebo stabilizátory, které jsou zvoleny ze lineárních'a zesítěných polysacharidů nebo oligosacharidů, cukrů, hydrofilních polymerů a jodovaných sloučenin, kde hmotnostní poměr k povrchově aktivním látkám je od přibližně 1:5 do 100:1,
12. Suspenze podle některého z předcházejících nároků, vyznačující se tím, že přísady dále zahrnují až 50 % hmotnostních nelaminárních povrchově aktivních látek, které jsou zvoleny z mastných kyselin, esterů a etherů mastných kyselin a alkoholů s polyoly.
13. Suspenze nároku 12,vyznačuj ící tím, že polyoly jsou polyalkylenglykoly, polyalkylenované cukry a jiné cukry a polyalkylenovaný glycerol.
14. Suspenze podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se tím, že obsahuje 107 až 108 mikrobublín na mililitr nebo 109 až 1010 mikrobublín na mililitr.
· ^ v,? ·
15. Suspenze podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se tím, membrána je zhotovena ze syntetického nebo přírodního polymeru nebo proteinu.
16. Suspenze podle nároku 15,vyznačuj ící se t i m, že polymer je zvolen z polysacharidů, polyaminokyselin a jejich esterů, polylaktidů a polyglykolidů a jejich kopolymerů, kopolymerů laktidů a laktonů, polypeptidů, poly(ortho)esterů, polydioxanonu, poly-p-aminoketonů, polyfosfazenů, polyanhydridů, polyalkyl(kyan)akrylátů, polyolefinů, polyakrylátů, polyakrylonitrilú, nehydrolyzovatelných polyesterů, polyurethanů a polymočovin, derivátů poly(kyseliny glutamové) nebo póly(kyseliny asparagové) a jejich kopolymerů s jinými aminokyselinami.
17. Suspenze podle nároku 15,vyznačuj ící , se t í m, že proteinem je albumin.
18. Suspenze podle nároku 1,vyznačuj ící se t i m, že plyn je zvolen z plynů obsahujících halogen, vzduchu, kyslíku, dusíku, oxidu uhličitého nebo jejich směsí.
- - -
19. Suspenze podle nároku. 18,..v y. z n. a č ,uj i c í se t í m, že plyn obsahující halogen· je zvolen ze souboru sestávajícího z SFg, CF4, C2Fg, C2F3, C3Fg, C3F8, C4Fg,
C4F8, C4F1o, C5F1q, C5F12 a jejich směsí.
20. Způsob skladování suspenzí mikrobublín podle nároků 1 až 19,vyznačující se tím, že zahrnuje tyto stupně:
a) umístění kapalné suspenze do chladicího zařízení,
b) imobilizaci mikrobublin ochlazením na teplotu pod teplotou zmrazení suspenze, výhodně na teplotu od^-l do -196 °C a výhodněji na teplotu od -10 do -76 °C a
c) udržování mrazících podmínek po prodloužené časové období.
21. Způsob podle nároku 20,vyznačující se t í i, že zmrazená suspenze se udržuje v atmosféře inertního plynu nebo směsi plynů, z nichž alespoň jeden je plynem enkapsulovaným v mikrobublinách.
~
22. Způsob podlenároku20, vry zn a č u j i c i________ — - — s-e - t í”m;že mikrobubliny obsahují plyn nebo směs plynů, z nichž alespoň jeden má teplotu varu pod -18 °C.
23. Způsob podle nároku 20, vyznačuj ící se t i m, že před svým použitím se suspenze rozmrazí za teploty místnosti během časového období.
24. Injikovatelné suspenze podle nároků 1 až 19, k použití při ultrazvukovém zobrazování orgánů a tkání.
25. Použití injikovatelných suspenzí podle nároků 1 až 19, k přípravě ultrazvukových echografických kontrastních prostředků.
CZ19962420A 1994-12-16 1995-12-14 Zmrazená suspenze bublin plynu imobilizovaná ve zmrazeném vodném nosném prostředí, způsob její přípravy a použití CZ291540B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP94810731 1994-12-16

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ242096A3 true CZ242096A3 (en) 1996-11-13
CZ291540B6 CZ291540B6 (cs) 2003-03-12

Family

ID=8218355

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ19962420A CZ291540B6 (cs) 1994-12-16 1995-12-14 Zmrazená suspenze bublin plynu imobilizovaná ve zmrazeném vodném nosném prostředí, způsob její přípravy a použití

Country Status (19)

Country Link
US (3) US5830435A (cs)
EP (1) EP0744962B2 (cs)
JP (1) JP3958358B2 (cs)
KR (1) KR100382811B1 (cs)
CN (1) CN1066965C (cs)
AT (1) ATE205404T1 (cs)
AU (1) AU701807B2 (cs)
CA (1) CA2181340C (cs)
CZ (1) CZ291540B6 (cs)
DE (1) DE69522670T3 (cs)
DK (1) DK0744962T4 (cs)
ES (1) ES2162943T5 (cs)
FI (1) FI120722B (cs)
IL (1) IL116328A (cs)
NO (1) NO313031B1 (cs)
NZ (1) NZ295744A (cs)
PT (1) PT744962E (cs)
WO (1) WO1996018420A1 (cs)
ZA (1) ZA9510721B (cs)

Families Citing this family (81)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6397098B1 (en) 1994-09-21 2002-05-28 Medrad, Inc. Data communication and control for medical imaging systems
US5837221A (en) * 1996-07-29 1998-11-17 Acusphere, Inc. Polymer-lipid microencapsulated gases for use as imaging agents
GB9617811D0 (en) 1996-08-27 1996-10-09 Nycomed Imaging As Improvements in or relating to contrast agents
US6867248B1 (en) 1997-05-12 2005-03-15 Metabolix, Inc. Polyhydroxyalkanoate compositions having controlled degradation rates
US6610764B1 (en) 1997-05-12 2003-08-26 Metabolix, Inc. Polyhydroxyalkanoate compositions having controlled degradation rates
US6828357B1 (en) 1997-07-31 2004-12-07 Metabolix, Inc. Polyhydroxyalkanoate compositions having controlled degradation rates
GB9717589D0 (en) * 1997-08-19 1997-10-22 Nycomed Imaging As Improvements in or relating to contrast agents
US6726650B2 (en) * 1997-12-04 2004-04-27 Bracco Research S.A. Automatic liquid injection system and method
CA2314151C (en) 1997-12-22 2004-10-26 Metabolix, Inc. Polyhydroxyalkanoate compositions having controlled degradation rates
DE19805012A1 (de) * 1998-02-07 1999-08-12 Thomas Gieselmann Kontrastmittel zur Verwendung als Diagnostikum bei bildgebenden Verfahren sowie seine Herstellung
DE19840532A1 (de) 1998-08-28 2000-03-09 Schering Ag Mit Ultraschallkonstrastmittel gefüllte Spritze mit einer mechanischen Bewegungsvorrichtung
DE19840536A1 (de) 1998-08-28 2000-03-09 Schering Ag Mit Ultraschallkontrastmittel gefüllte Spritze mit einer magnetischen Bewegungsvorrichtung
EP1159015A1 (en) 1999-03-04 2001-12-05 Tepha, Inc. Bioabsorbable, biocompatible polymers for tissue engineering
US6575930B1 (en) 1999-03-12 2003-06-10 Medrad, Inc. Agitation devices and dispensing systems incorporating such agitation devices
US6317623B1 (en) 1999-03-12 2001-11-13 Medrad, Inc. Apparatus and method for controlling contrast enhanced imaging procedures
EP2305324B1 (en) 1999-03-25 2014-09-17 Metabolix, Inc. Medical devices and applications of polyhydroxyalkanoate polymers
WO2001012069A1 (en) * 1999-08-13 2001-02-22 Point Biomedical Corporation Hollow microspheres with controlled fragility for medical use
EP2279757A3 (en) 2000-06-02 2011-08-03 Bracco Suisse SA Compounds for targeting endothelial cells
US6387077B1 (en) 2000-10-13 2002-05-14 Mallinckrodt Inc. Apparatus and method for providing a suspended agent
ATE376803T1 (de) 2001-04-06 2007-11-15 Bracco Research Sa Vorrichtung zur messung lokaler physikalischer parameter in einem flüssigkeitsgefüllten hohlraum
US7211240B2 (en) 2002-03-01 2007-05-01 Bracco International B.V. Multivalent constructs for therapeutic and diagnostic applications
US7261876B2 (en) 2002-03-01 2007-08-28 Bracco International Bv Multivalent constructs for therapeutic and diagnostic applications
US7794693B2 (en) 2002-03-01 2010-09-14 Bracco International B.V. Targeting vector-phospholipid conjugates
WO2004065621A1 (en) 2002-03-01 2004-08-05 Dyax Corp. Kdr and vegf/kdr binding peptides and their use in diagnosis and therapy
US8623822B2 (en) 2002-03-01 2014-01-07 Bracco Suisse Sa KDR and VEGF/KDR binding peptides and their use in diagnosis and therapy
EP2301587B1 (en) 2002-03-01 2014-06-25 Dyax Corp. KDR and VEGF/KDR binding peptides and their use in diagnosis
KR101076053B1 (ko) * 2003-02-04 2011-10-21 브라코 인터내셔날 비.브이. 초음파 조영제 및 그것의 제조방법
US20070128117A1 (en) * 2003-02-04 2007-06-07 Bracco International B.V. Ultrasound contrast agents and process for the preparation thereof
ES2557286T3 (es) 2003-03-03 2016-01-25 Dyax Corp. Usos de péptidos que se unen específicamente al receptor del HGF (cMet)
ITFI20030077A1 (it) * 2003-03-26 2004-09-27 Actis Active Sensors S R L Metodo per l'indagine ecografica tramite mezzi di contrasto
DK1638615T3 (en) 2003-05-08 2015-01-12 Tepha Inc MEDICAL POLYHYDROXYALKANOATE TEXTILES AND FIBERS
EP1696965B1 (en) * 2003-12-22 2014-12-10 Bracco Suisse SA Assembly of gas-filled microvesicle with active component for contrast imaging
AU2004308756B2 (en) * 2003-12-22 2010-06-24 Bracco Suisse S.A. Gas-filled microvesicle assembly for contrast imaging
EP1713400B1 (en) * 2004-01-16 2012-12-26 Boston Scientific Scimed, Inc. Apparatus for medical imaging
US8012457B2 (en) 2004-06-04 2011-09-06 Acusphere, Inc. Ultrasound contrast agent dosage formulation
GB2445322B (en) 2004-08-13 2008-08-06 Stichting Tech Wetenschapp Intravasular ultrasound techniques
JP4837663B2 (ja) 2004-08-18 2011-12-14 ブラッコ・シュイス・ソシエテ・アノニム 造影画像化のためのガス充填微小胞組成物
EP2684521A1 (en) 2004-11-16 2014-01-15 Medrad Inc. Modeling of pharmaceutical propagation
EP2990073B1 (en) 2004-11-24 2018-05-02 Bayer Healthcare LLC Devices and systems for fluid delivery
US20080045919A1 (en) * 2004-12-23 2008-02-21 Bracco Research S.A. Liquid Transfer Device for Medical Dispensing Containers
EP1714642A1 (en) * 2005-04-18 2006-10-25 Bracco Research S.A. Pharmaceutical composition comprising gas-filled microcapsules for ultrasound mediated delivery
CN103204911B (zh) 2005-12-09 2015-04-01 布拉科瑞士有限公司 靶向载体-磷脂缀合物
EP1797919A1 (en) * 2005-12-16 2007-06-20 Bracco Research S.A. Liquid transfer device for medical dispensing containers
US7967753B2 (en) * 2006-08-01 2011-06-28 Stichting Voor de Technische Wetenschappen of Van Vollenhovenlaan Pulse inversion sequences for nonlinear imaging
EP2061517B1 (en) 2006-09-05 2010-06-02 Bracco Research S.A. Gas-filled microvesicles with polymer-modified lipids
US7943683B2 (en) 2006-12-01 2011-05-17 Tepha, Inc. Medical devices containing oriented films of poly-4-hydroxybutyrate and copolymers
WO2008075192A2 (en) * 2006-12-19 2008-06-26 Bracco International Bv Targeting and therapeutic compounds and gas-filled microvesicles comprising said com ounds
EP2097835B1 (en) 2006-12-29 2018-05-30 Bayer Healthcare LLC Patient-based parameter generation systems for medical injection procedures
JP5437240B2 (ja) 2007-07-17 2014-03-12 メドラッド インコーポレーテッド 心肺機能の評価、及び流体搬送の手順のパラメータを決定する装置、システム及び方法
GB0811856D0 (en) * 2008-06-27 2008-07-30 Ucl Business Plc Magnetic microbubbles, methods of preparing them and their uses
CA2748995C (en) * 2008-10-07 2018-01-16 Bracco Suisse Sa Targeting construct comprising anti-polymer antibody and liposomes or microvesicles binding to the same
US9421330B2 (en) 2008-11-03 2016-08-23 Bayer Healthcare Llc Mitigation of contrast-induced nephropathy
KR101630190B1 (ko) 2008-12-16 2016-06-14 브라코 스위스 에스.에이. 조영제의 볼러스 투여를 위한 장치
EP2345732A1 (en) 2010-01-19 2011-07-20 Universite Paris Descartes Methods for intracellular delivery of nucleic acids
EP2585116A4 (en) 2010-06-24 2017-03-29 Bayer Healthcare LLC Modeling of pharmaceutical propagation and parameter generation for injection protocols
BR112013002945A2 (pt) 2010-08-09 2016-06-07 Inst Nat Sante Rech Med composição farmacâutica formulada com agente de eco-contraste de microbolhas e um ácido nucleico terapêutico de interesse para uso em um método para tratamento de uma doença ocular em um sujeito
CA2806639C (en) 2010-08-09 2020-10-20 Bracco Suisse Sa Targeted gas-filled microvesicles
BR112013016244B1 (pt) 2010-12-24 2021-12-21 Bracco Suisse Sa Formulação farmacêutica compreendendo microvesículas cheias de gás e precursor da mesma
WO2012136813A2 (en) 2011-04-07 2012-10-11 Universitetet I Oslo Agents for medical radar diagnosis
US10357450B2 (en) * 2012-04-06 2019-07-23 Children's Medical Center Corporation Process for forming microbubbles with high oxygen content and uses thereof
IN2014DN09192A (cs) 2012-04-30 2015-07-10 Ge Healthcare As
CN111528872A (zh) 2012-05-14 2020-08-14 拜耳医药保健有限公司 用于基于x射线管电压确定药用流体注射协议的系统和方法
WO2014096165A2 (en) 2012-12-21 2014-06-26 Bracco Suisse Sa Gas-filled microvesicles
US9555379B2 (en) 2013-03-13 2017-01-31 Bayer Healthcare Llc Fluid path set with turbulent mixing chamber, backflow compensator
US10577554B2 (en) 2013-03-15 2020-03-03 Children's Medical Center Corporation Gas-filled stabilized particles and methods of use
WO2016025329A1 (en) 2014-08-15 2016-02-18 Tepha, Inc. Self-retaining sutures of poly-4-hydroxybutyrate and copolymers thereof
US10626521B2 (en) 2014-12-11 2020-04-21 Tepha, Inc. Methods of manufacturing mesh sutures from poly-4-hydroxybutyrate and copolymers thereof
CA2969429C (en) 2014-12-11 2020-10-27 Tepha, Inc. Methods of orienting multifilament yarn and monofilaments of poly-4-hydroxybutyrate and copolymers thereof
JP6803839B2 (ja) 2014-12-18 2020-12-23 ブラッコ・スイス・ソシエテ・アノニムBracco Suisse SA 標的化されたガス入りの微小胞の製剤
JP2017537907A (ja) 2014-12-22 2017-12-21 ブラッコ・スイス・ソシエテ・アノニムBracco Suisse SA ワクチンとしての使用のためのガス入りの微小胞
CN104622848A (zh) * 2015-02-13 2015-05-20 西安交通大学 一种等离子体活化包膜微气泡
CN105569124B (zh) * 2016-01-31 2017-12-01 天津市建筑设计院 一种变频调速变压供水装置及其控制方法
CA3011248A1 (en) 2016-02-09 2017-08-17 Bracco Suisse Sa A recombinant chimeric protein for selectins targeting
WO2017152036A1 (en) 2016-03-03 2017-09-08 Bayer Healthcare Llc System and method for improved fluid delivery in multi-fluid injector systems
US11147890B2 (en) 2017-02-28 2021-10-19 Children's Medical Center Corporation Stimuli-responsive particles encapsulating a gas and methods of use
AU2018323442B2 (en) 2017-08-31 2024-06-27 Bayer Healthcare Llc Fluid path impedance assessment for improving fluid delivery performance
CA3068544A1 (en) 2017-08-31 2019-03-07 Bayer Healthcare Llc Method for dynamic pressure control in a fluid injector system
WO2019046267A1 (en) 2017-08-31 2019-03-07 Bayer Healthcare Llc SYSTEM AND METHOD FOR VOLUME COMPENSATION OF FLUID INJECTOR SYSTEM
CN110891630B (zh) 2017-08-31 2022-04-26 拜耳医药保健有限公司 驱动构件定位和流体注入器系统机械校准的系统和方法
EP3675931B1 (en) 2017-08-31 2021-08-11 Bayer Healthcare LLC Injector pressure calibration system and method
CN110051630A (zh) * 2019-02-03 2019-07-26 彭盛 一种载氧聚合物微泡及其制备方法

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE1467900A1 (de) * 1964-12-23 1969-01-16 Ferring Ab Roentgenkontrastmittel und Verfahren zur Herstellung solcher Mittel
US4276885A (en) * 1979-05-04 1981-07-07 Rasor Associates, Inc Ultrasonic image enhancement
US4347707A (en) * 1981-03-31 1982-09-07 General Foods Corporation Gasified ice product and process having improved storage stability
DE4219724A1 (de) 1992-06-13 1993-12-16 Schering Ag Verwendung von Mikrokapseln als Kontrastmittel für die Farbdoppler-Sonographie
US5271961A (en) 1989-11-06 1993-12-21 Alkermes Controlled Therapeutics, Inc. Method for producing protein microspheres
US5228446A (en) 1989-12-22 1993-07-20 Unger Evan C Gas filled liposomes and their use as ultrasonic contrast agents
IN172208B (cs) * 1990-04-02 1993-05-01 Sint Sa
US5205287A (en) * 1990-04-26 1993-04-27 Hoechst Aktiengesellschaft Ultrasonic contrast agents, processes for their preparation and the use thereof as diagnostic and therapeutic agents
JP3247374B2 (ja) 1990-10-05 2002-01-15 ブラッコ インターナショナル ベスローテン フェンノートシャップ 超音波エコグラフィーに適切な中空気体封入微小球の安定懸濁物の製造のための方法
GB9106686D0 (en) * 1991-03-28 1991-05-15 Hafslund Nycomed As Improvements in or relating to contrast agents
GB9107628D0 (en) * 1991-04-10 1991-05-29 Moonbrook Limited Preparation of diagnostic agents
JP3231768B2 (ja) 1991-09-17 2001-11-26 ソーナス ファーマシューティカルス,インコーポレイテッド 気体状超音波造影剤及び超音波造影剤として使用する気体の選定方法
IL104084A (en) 1992-01-24 1996-09-12 Bracco Int Bv Sustainable aqueous suspensions of pressure-resistant and gas-filled blisters, their preparation, and contrast agents containing them

Also Published As

Publication number Publication date
DK0744962T4 (da) 2006-01-09
EP0744962A1 (en) 1996-12-04
US5827504A (en) 1998-10-27
AU3935295A (en) 1996-07-03
JPH09509433A (ja) 1997-09-22
CN1066965C (zh) 2001-06-13
KR970701066A (ko) 1997-03-17
IL116328A (en) 1999-09-22
JP3958358B2 (ja) 2007-08-15
US5830435A (en) 1998-11-03
CA2181340C (en) 2007-09-11
NZ295744A (en) 1997-08-22
DE69522670T3 (de) 2006-06-14
DK0744962T3 (da) 2001-12-31
FI963202A0 (fi) 1996-08-15
DE69522670T2 (de) 2002-06-20
ATE205404T1 (de) 2001-09-15
FI963202A (fi) 1996-08-15
ZA9510721B (en) 1996-06-20
NO963327L (no) 1996-08-09
DE69522670D1 (de) 2001-10-18
CZ291540B6 (cs) 2003-03-12
WO1996018420A1 (en) 1996-06-20
FI120722B (fi) 2010-02-15
EP0744962B2 (en) 2005-09-07
KR100382811B1 (ko) 2003-08-19
IL116328A0 (en) 1996-03-31
MX9603330A (es) 1997-12-31
CA2181340A1 (en) 1996-06-20
ES2162943T3 (es) 2002-01-16
PT744962E (pt) 2002-02-28
AU701807B2 (en) 1999-02-04
EP0744962B1 (en) 2001-09-12
NO313031B1 (no) 2002-08-05
US5961956A (en) 1999-10-05
CN1141001A (zh) 1997-01-22
ES2162943T5 (es) 2006-03-01
NO963327D0 (no) 1996-08-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ242096A3 (en) Method of storing ultrasonic gaseous suspensions
JP4250747B2 (ja) 熱安定化された造影剤
JP4418033B2 (ja) 造影剤のまたはそれに関する改良
US6485705B1 (en) Mixable combination for generating a suspension of stable microbubbles for ultrasonic imaging
US20120093732A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
JPH10508284A (ja) 超音波造影媒体、この媒体を含む造影剤及び方法
US20060257321A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
HU227043B1 (en) Stabile microbubble suspension as enhancement agents for ultrasound echography
US20040208826A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US6613306B1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
DE60111917T2 (de) Lyophilisierbares Kontrastmittel, gasgefüllte Mikrobläschen enthaltend
US20050025710A1 (en) Reconstitutable formulation and aqueous suspension of gas-filled microvesicles for diagnostic imaging
US20060034771A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
JP2001515055A (ja) 造影剤に関する改良
US20010008626A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US20030185759A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US20030194376A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US20010012507A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
MXPA96003330A (en) Method of storage of suspensions gaseosasultrasoni
NO318875B1 (no) Ultralydkontrastmiddel

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20031214