编码thrE基因的新核苷酸序列和 用棒状菌酶促生产L-苏氨酸的方法
本发明涉及编码thrE基因的核苷酸序列,和用棒状菌经酶促反应生产L-苏氨酸的方法,其中棒状菌中thrE基因是扩增的。
L-苏氨酸用于动物饲料,人用药物及制药工业。
已知L-苏氨酸可通过棒状菌菌株,尤其谷氨酸棒杆菌的发酵而生产。由于L-苏氨酸的极其重要性,已持续进行改良生产方法的尝试。生产方法的改良可涉及发酵工程因素,如搅拌和供氧,或营养培养基的组分如发酵期间的糖浓度,或产物形式的加工方法,例如通过离子层析,或微生物本身的固有生产性质。
为改良这些微生物的生产性质,可使用诱变,选择及突变体选择等方法,以此方法可获得对抗代谢物如苏氨酸类似物α-氨基-β-羟戊酸(AHV)有抗性或重要的调节氨基酸缺陷的并产生L-苏氨酸的菌株。
一段时间以来,重组DNA工程的方法也用于棒杆菌生产L-苏氨酸的菌株的改良,其通过扩增各个苏氨酸生物合成基因,并研究对L-苏氨酸生产的作用而进行改良。
本发明人目的在于为改良L-苏氨酸的酶促生产而提供新措施。
L-苏氨酸用于动物营养、人用药物及制药工业,因此提供生产L-苏氨酸的新改良方法总是令人感兴趣的。
本发明提供了衍生自棒杆菌的优选地是重组的DNA,其在棒状微生物中可以复制,其至少含有以SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:3表示的编码thrE基因的核苷酸序列。
本发明还提供了根据权利要求1的可复制的DNA,其包括:
(i)SEQ ID NO:1或SEQ ID NO:3所示的,编码thrE基因的核苷酸序列,或
(ii)在遗传密码简并区内相应于(i)序列的至少一个序列,或
(iii)与互补于(i)或(ii)序列的序列杂交的至少一个序列,和/或任选地,
(iv)(i)中有功能的中义突变体。
本发明还提供了通过导入上述可复制的DNA转化的棒状微生物,尤其棒杆菌属。
本发明另外还提供了用棒状菌经酶促反应生产L-苏氨酸的方法,其使用尤其已生产L-苏氨酸的棒状菌,且其中编码thrE基因的核苷酸序列是扩增的,尤其是过表达的。
文中术语“扩增”是指微生物中由相应DNA编码的一或多种酶的胞内活性的提高,例如通过提高基因的拷贝数,或用强启动子或编码高活性相应酶的基因,及如果需要组合使用这些方法。
本发明的微生物可从葡萄糖、蔗糖、乳糖、果糖、麦芽糖、糖蜜、淀粉、纤维素或从甘油和乙醇中生产L-苏氨酸,此微生物可以是棒状菌的代表菌,尤其是棒杆菌属。在棒杆菌属中尤其应提及的是1后氨酸棒杆菌,本领域技术人员已知其生产L-苏氨酸的能力。
适当的棒杆菌菌属,尤其谷氨酸棒杆菌菌株,是尤其已知的野生型菌株:
谷氨酸棒杆菌ATCC 13032
醋谷棒杆菌ATCC 15806
嗜乙酰乙酸棒杆菌ATCC 13870
Corynebacterium melassecola ATCC 17965
嗜热产氨棒杆菌FERM BP-1539
黄色短杆菌ATCC 14067
乳发酵短杆菌ATCC 13869和
扩展短杆菌ATCC 14020
和从中获得的生产L-苏氨酸的突变体或菌株如:
谷氨酸棒杆菌ATCC 21649
黄色短杆菌BB69
黄色短杆菌DSM 5399
乳发酵短杆菌FERM-BP 269
乳发酵短杆菌TBB-10
本发明人已成功地分离谷氨酸棒杆菌的thrE基因,为了分离thrE基因,thrE基因缺陷的谷氨酸棒杆菌的突变体首先被产生。为此,将适当的起始菌株例如ATCC 14752或ATCC 13032进行诱变。
常规诱变法包括用化学物质例如N-甲基-N-硝基-N-亚硝基胍处理,或UV照射,通常已知这种起始突变方法,并可参见于Miller(细菌遗传概要,E.coli及相关细菌的实验手册,(Cold SpringHarbor Laboratory Press,1992)),或美国细菌学会的“普通细菌学方法”手册,(华盛顿D.C.,美国,1981)。
其它诱变方法是转座子诱变,其中利用转座子在DNA序列中“跳跃”的性质,从而干扰或切断相关基因的功能。本领域技术人员已知棒状菌的转座子,例如,红霉素抗性转座子Tn5432(Tauch等,质粒(1995)33:168-179)和氯霉素抗性转座子Tn5546已从干燥棒杆菌菌株M82B中分离出。
另一种转座子是由Ankri等(细菌学杂志(1996)178:4412-4419)所述的,并用于本发明实施例的转座子Tn 5531。该转座子Tn5531含有aph3卡那霉素抗性基因,并可以例如质粒载体pCGL0040形式输送,见图1所示。转座子Tn 5531的核苷酸序列可免费得自国立生物技术信息中心(NCBI,Bethesda,MD,美国),登记号U53587。
在已进行诱变,优选转座子诱变之后,对thrE基因缺陷突变体进行研究。thrE基因缺陷突变体通过以下事实被识别:其在基本培养基琼脂上良好生长,但在已补加含苏氨酸的寡肽,例如苏氨酰-苏氨酰-苏氨酸三肽的基本培养基琼脂上生长不佳。
该突变体例如是菌株ATCC 14752△ilvAthrE::Tn5531
以所述方式产生的菌株可用于分离和克隆thrE基因。
为此,可建立相应细菌的基因库。可根据通常已知的教材和手册建立基因库。例如由Winnacker所著教材:基因与克隆,基因工程入门(Verlag Chamie,Weinheim,德国,1990),或由Sambrook等所著手册:分子克隆实验手册(Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)。一非常熟知的基因库是已由Kohara等(细胞50,495-508(1987))在λ载体中建立的E.coli K-12菌株W3110的基因库。Bathe等(分子及普通遗传学,252:255-265,1996)阐述了借助于粘粒载体SuperCos I(Wahl等,1987,Proceeding of the NationalAcademy of Sciences USA,84:2160-2164),在E.coli K-12菌株NM554(Raleigh等,1988,核酸研究16:1563-1575)中建立的谷氨酸棒杆菌ATCC 13032的基因库。对本发明而言,在棒状菌,优选在谷氨酸棒杆菌中复制的载体是适用的。从现有技术中已知这种载体;例如质粒载体pZ1,由Menkel等(应用与环境微生物学(1989)64:549-554)所述。然后将以所述方式获得的基因库通过转化或电穿孔转入thrE基因缺陷的指示菌株中,且筛选具有在存在含苏氨酸寡肽的基本培养基琼脂上的生长能力的那些转化体。然后可将克隆的DNA片段进行序列分析。
当使用经Tn5531诱变产生的棒状菌突变体如菌株ATCC 14752△ilvAthrE::Tn5531时,可将thrE::Tn5531等位基因用包含于Tn5531中的卡那霉素抗性基因aph3直接克隆并分离。为此,使用已知克隆载体,例如pUC18(Norrander等,基因(1983)26:101-106和Yanisch-Perron等,基因(1985)33:103-119)。特别适于作克隆宿主是那些限制缺陷和重组缺陷的E.coli菌株,例如已由Grant等(Proceedings of the National Acad emy of Sciences USA,87(1990)4645-4649)阐述的菌株DH5αmcr。在存在卡那霉素的情况下选择转化体。然后对所得转化体的质粒DNA进行测序。为此,可使用由Sanger等所述的双脱氧链终止法(Proceedings of the NationalAcadermy of Sciences of USA(1977)74:5463-5467)。从而获得Tn5531插入位点上游和下游的thrE基因序列。然后用可商购序列分析程序,例如用程序Lasergene(Biocomputing Software for Windows,DNASTAR,Modison,美国)或程序包HUSAR(Release 4.0,EMBL,Heidelerg,德国)分析和装配所得核苷酸序列。
以此方式可获得编码thrE基因的谷氨酸棒杆菌的新DNA序列,示作SEQ ID NO:1,是本发明的一部分,用前述方法从此DNA序列中也已衍生出相应蛋白质的氨基酸序列。所得thrE基因产物的氨基酸序列以SEQ ID NO:2表示。
通过遗传密码的简并性产生自SEQ ID NO:1的编码DNA序列也是本发明的一部分。同样,与SEQ ID NO:1或SEQ ID NO:1的部分杂交的DNA序列也是本发明的一部分。另外,保守氨基酸置换,如用丙氨酸置换蛋白质中甘氨酸,或用谷氨酸置换蛋白质中天冬氨酸,本领域已知是有义突变,其不引起蛋白质任何功能的改变,即是中性的。另外已知蛋白质N和/或C-末端的改变基本不影响其功能,或者甚至可以稳定其功能,本领域技术人员可在以下文献中发现对此的论述,参见Ben-Bassat等(细菌学杂志169:751-757(1987))O’Regan等(基因77:237-251.(1989)),Sahin-Toth等(蛋白质科学3:240-247(1994)),Hochuli等(生物/技术6:1321-1325(1988)),及已知关于遗传和分子生物学的教材。以相应方式产生自SEQ ID NO:2的氨基酸序列也是本发明的一部分。
用SEQ ID NO:1所示核苷酸序列可合成适当的引物,然后将这些引物通过PCR用于扩增各种棒状菌和菌株的thrE基因。本领域技术人员从例如以下手册中可发现对此的论述,Gait:寡核苷酸合成实用方法(IRL Press,Oxford,VK,1984)及Newton和Graham:PCR(Spektrum Akademischer Verlag,Heiddberg,德国,1994)。或者,可将SEQ ID NO:1或其部分的核苷酸序列用作探针,以搜索尤其棒状菌基因库中的thrE基因,本领域技术人员可从例如以下手册中发现对此的论述:由Boehringer Mannheim GmbH出版的“滤膜杂交的DIG系统使用说明”(Mannheim,德国,1993),和Lieble等(国际系统细菌学杂志(1991))41:255-260)。然后将含有以此方式扩增的含thrE基因的DNA片段克隆并测序。
以SEQ ID NO:3表示的菌株ATCC 13032的thrE基因的DNA序列可以此方式获得,并是本发明的一部分,所得氨基酸序列以SEQID NO:4表示。
本发明还提供了分离thrE基因的方法,其特征在于获得thrE基因缺陷的作为指示菌株的突变体,优选棒状菌,其在存在含苏氨酸的寡肽的营养培养基上不生长,或仅微弱生长,并且
a)此thrE基因在建立基因库后被鉴别及分离,或
b)在选择转座子诱变的情况中,转座子优选呈对抗生素有抗性,且从而获得thrE基因。
本发明人从中发现,在thrE基因过表达后,棒状菌以改良方式生产L-苏氨酸。
为获得过表达,可提高相应基因的拷贝数,或可使位于结构基因上游的启动子和调节区或核糖体结合位点突变。掺入结构基因上游的表达盒以同样方式工作。通过可诱导启动子,在酶促L-苏氨酸生产期间增强表达也是可能的。通过目的在于延长mRNA寿命的措施,也可改良表达。通过防止酶蛋白的分解也可提高酶促活性。基因或基因构建体可以不同拷贝数存在于质粒中,或可在染色体中整合与扩增。或者,通过改变培养基的组分和培养条件,也可获得相关基因的过表达。
本领域熟练技术人员从以下文献中可发现对此的详述,参见Martin等(生物/技术5,137-146(1987)),Guerrero等(基因138,35-41(1994)),Tsuchiya和Morinaga(生物/技术6,428-430(1988)),Eikmanns等(基因102,93-98(1991)),欧洲专利申请EPSO472869,美国专利4,601,893,Schwarzer和Puhler(生物/技术9,84-87(1991)),Reinscheid等(应用及环境微生物学60,126-132(1994)),LaBarre等(细菌学杂志175,1001-1007(1993)),专利申请WO 96/15246,Malumbres等(基因134,15-24(1993)),日本特许公开JP-A-10-229891,Jensen和Hammer(生物技术及生物工程58,191-195(1998)),Makrides(微生物学综述60:512-538(1996))及已知关于遗传及分子生物学的教材。
利用其可过表达thrE基因的质粒例如是pZ1thrE(图2),其包含于菌株DM368-2 pZ1thrE中。质粒pZ1thrE是基于质粒pZ1的谷氨酸棒杆菌-E.coli穿梭载体,其由Menkel等所述(应用与环境微生物学(1989)64:549-554)。其它可在谷氨酸棒杆菌中复制的质粒载体如pEKExl(Eikmanns等,基因102:93-98(1991))或pZ8-1(EP-B-0375889)可以同样方式使用。
另外,除了新thrE基因之外,已知的苏氨酸生物合成途径的一或多种酶,或回补代谢的酶,或柠檬酸循环的酶的过表达,对L-苏氨酸的生产可以是有益的,例如以下基因可以同时过表达:
·编码高丝氨酸脱氢酶的hom基因(Peoples等,分子微生物学2,63-72(1988)),或编码反馈抗性高丝氨酸脱氢酶的homdr等位基因(Archer等,基因107,53-59,(1991)),或
·编码丙酮酸羧化酶的pyc基因(DE-A-19831609),或
·编码苹果酸:醌氧化还原酶的mqo基因(Molenaar等,欧洲生化杂志254,395-403(1998))。
除thrE基因的过表达之外,排除非所需的二级反应例如苏氨酸脱氢酶反应,对L-苏氨酸的生产也是有益的(Nakayama:“生产氨基酸的微生物的育种”,微生物产物的过量产生,Krumphanzl,Sikyta,Vanek(eds.)学术出版社,伦敦,英国,1982及Bell和Turner,生物化学杂志156,449-458(1976))。
根据本发明产生的微生物可连续培养或在分批方法(分批培养),或在补料分批(补料法)或重复补料分批法(重复补料法)中分批培养以生产L-苏氨酸。已知的培养法由Chmiel(Bioprozesstechnik l.Einfuhrung in die Bioverfahrenstechnik(GustavFischer Verlag,Stuttgart,1991)所著教材,或由Storhas(Bioreaktorenund periphere Einrichtungen(Vieweg Verlag,Brunswick/Wiesbaden,1994))所著教材中提供。
所用培养基必须以适当方式符合各菌株的需求,关于各种微生物培养基的阐述见于,美国细菌学会的“细菌学通用方法手册”(华盛顿D.C.,USA,1981)。可使用的碳源包括糖及碳水化合物,例如葡萄糖,蔗糖,乳糖,果糖,麦芽糖,糖蜜,淀粉和纤维素,油和脂肪如豆油,葵花油,落花生油和椰子油,脂肪酸如棕榈酸,硬脂酸和亚油酸,醇如甘油和乙醇,及有机酸如乙酸,这些物质可单独或混合使用,可使用的氮源包括含氮的有机化合物如胨,酵母提取物,肉膏,麦芽提取物,玉米浸液、大豆粉和尿素,或无机化合物如硫酸铵,氯化铵,磷酸铵,碳酸铵和硝酸铵。氮源可单独或混合使用,可使用的磷源包括磷酸,磷酸二氢钾或磷酸氢二钾,或相应钠盐培养基另外还必须含有为生长所需的金属盐如硫酸镁或硫酸铁。最后,除了上述物质之外,可使用生长必需物质如氨基酸和维生素,此外,可将适当前体加入培养基中上述物质可以单批形式或在培养期间以适当方式加入培养物中。
可以适当方式加入碱性化合物如NaOH,KOH,氨或氨水,或酸性化合物如磷酸或硫酸,以调节培养物的PH值,抗泡沫剂例如脂肪酸聚乙二醇酯可用于控制泡沫产生。适当的选择性作用物质例如抗生素,可加入培养基中以保持质粒的稳定性。氧气或含氧混合气,例如空气,可充入培养物中以保持有氧条件。培养温度通常在20℃~45℃,优选25℃~40℃,持续培养直至L-苏氨酸形成最大量。此目的通常在10~160小时范围达到。
L-苏氨酸的分析可通过阴离子交换层析,随后经如Speckman等(分析化学,30,(1958),1190)所述茚三酮衍生化作用进行,或通过如Lindroth等(分析化学(1979)51:1167-1174)所述反相HPLC进行。
以下微生物根据布达佩斯条约,已保藏在德意志微生物保藏中心(DSMZ,不伦瑞克,德国):
·黄色短杆菌菌株DM368-2 pZ1thrE,保藏号DSM 12840
·大肠杆菌菌株GM2929 pCGL0040,保藏号DSM 12839。
本发明借助于以下提供的实施例得以更详述阐述。
根据Sambrook等(分子克隆实验手册(1989),Cold SpringHarbacn Laboratory Press)所述,进行从E.coli中分离质粒DNA以及限制酶切,Klenow和碱性磷酸酶处理。除非特别提及,根据Chung等(Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA(1989)86:2172-2175)所述进行E.coli的转化。
实施例1谷氨酸棒杆菌ATCC 14752的thrE基因的克隆与测序
1、转座子诱变和突变体选择
将谷氨酸棒杆菌菌株ATCC 14752△ilvA用转座子Tn5531进行诱变,该转座子序列在国立生物技术信息中心(Bethesda,美国)的核苷酸数据库中存档,登记号U53587。用如Schafer等(基因(1994)145:69-73)所述的基因置换系统,将缺失掺入谷氨酸棒杆菌ATCC14752的ilvA基因中,为此,由Sahm等构建的失活载体pK19 mobsacB△ilvA(应用与环境微生物学(1999)65:1973-1979)用于缺失。将Stratagene(Heidelberg,德国)的甲基化酶缺陷的E.coli菌株SCS110(Jerpseth和Kretz,分子生物学策略6,22,(1993))首先用200ng载体pK19mobsacB△ilvA转化。通过在含50μg/ml卡那霉素的LB-琼脂平板上对卡那霉素的抗性鉴别转化体。从一个转化体中制备质粒pK19mobsacB△ilvA,然后将此失活质粒通过电穿孔(Haynes等,FEMS微生物学通信(1989)61:329-334)导入谷氨酸棒杆菌ATCC 14752中。通过在含15μg/ml卡那霉素的LBHIS-琼脂平板(Liebl等,FEMS微生物学通信(1989)65:299-304)上对卡那霉素的抗性鉴别失活载体整合入基因组中的克隆。为选择载体切除,将卡那霉素抗性克隆铺板于含蔗糖的LBG-培养基(具有15g/L琼脂,2%葡萄糖和10%蔗糖的LB培养基)上。以此方式获得的菌落,在经过二次重组时已丧失载体(Jager等,细菌学杂志(1992)174:5462-5465)。通过在具有及不具有300mg/L L-异亮氨酸,具有及不具有50μg/ml卡那霉素的基本培养基平板(具有15g/L琼脂的CGXII培养基(Keihauer等,细菌学杂志(1993)175:5595-5603))上差异接种,分离了6个克隆,通过切除载体这些克隆对卡那霉素敏感并且是异亮氨酸营养缺陷的,其中只有不完全的ilvA-Gen(△ilvA等位基因)存在于基因组中。这些克隆之一命名为菌株ATCC 14752△ilvA,并用于转座子诱变。
含有装配的转座子Tn5531(Ankri等,细菌学杂志(1996)178:4412-4419)的质粒pCGL0040分离自甲基化酶缺陷的E.coli菌株GM2929 pCGL0040(E.coli GM 2929:Palmer等,基因(1994)143:1-12)。通过电穿孔(Haynes等,FEMS微生物学通信(1989)61:329-334),用质粒pCGL0040转化谷氨酸棒杆菌菌株ATCC 14752△ilvA。通过在含15μg/ml卡那霉素的LBHIS-琼脂平板上对卡那霉素的抗性鉴别转座子Tn5531整合入基因组中的克隆(Liebl等,FEMS微生物学通信(1989)65:299-304)。以此方式获得2000个克隆,检查它们在存在苏氨酰-苏氨酰-苏氨酸时生长的阻滞。为此目的,将所有克隆单独移至具有或不具有2mM苏氨酰-苏氨酰-苏氨酸的CGXII基本培养基琼脂平板上。该培养基等同于由Keilhauer等所述(细菌学杂志(1993)175:5593-5603)CGXII培养基,但另外还含有25μg/ml卡那霉素,300mg/L L-异亮氨酸和15g/L琼脂。由Keilhauer等所述培养基的组分示于表1。
表1 CGXII培养基的组成
组分 |
浓度 |
(NH4)2SO4 |
20g/L |
脲 |
5g/L |
KH2PO4 |
lg/L |
K2HPO4 |
lg/L |
MgSO4x7H2O |
0.25g/L |
3-吗啉代丙烷磺酸 |
42g/L |
CaCl2 |
10mg/L |
FeSO4x7H2O |
10mg/L |
MnSO4xH2O |
10mg/L |
ZnSO4x7H2O |
1mg/L |
CuSO4 |
0.2mg/L |
NiCl2x6H2O |
0.02mg/L |
生物素 |
0.2mg/L |
葡萄糖 |
40g/L |
原儿茶酸 |
30mg/L |
将琼脂平板在30℃培养,并在12,18和24小时后研究生长情况。获得的转座子突变体在不具有苏氨酰-苏氨酰-苏氨酸时,与初始菌株谷氨酸棒杆菌ATCCl4752△ilvA相类似方式生长,但其在存在2mM苏氨酰-苏氨酰-苏氨酸时呈阻滞生长。将此突变体命名为ATCCl4752/△ilvAthrE::Tn5531。
2、ATCCl4752△ilvAthrE::Tn553l中Tn5531的插入位点的克隆与测序
为克隆位于实施例1.1所述突变体中转座子Tn5531上游的插入位点,首先如Schwarzer等所述(生物/技术(1990)9:84-87)分离此突变体菌株染色体DNA,并将400ng染色体DNA用限制内切酶EcoRI切割。将完全限制性插入片段与来自Roche Diagnostics(Mannheim,德国)的同样用EcoRI线性化的载体pUC18(Norander等,基因(1983)26:101-106)连接。通过电穿孔(Dower等,核酸研究(1988)16:6127-6145),将E.coli菌株DH5αmcr(Grant等,Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA(1990)87:4645-4649)用完全连接插入片段转化。其中转座子Tn 5531的插入位点克隆存在于载体pUC 18上的转化体,通过在含50μg/ml羧苄青霉素和25μg/ml的卡那霉素的LB-琼脂平板上对羧苄青霉素和卡那霉素的抗性而加以鉴别。从三个转化体中制备质粒,并通过限制分析确定克隆的插入片段的大小。通过Sanger等(Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA(1977)74:5463-5467)所述双脱氧链终止法,用约5.7kb的大插入片段确定一个质粒上插入位点的核苷酸序列。为此,起自下述寡核苷酸引物5’-CGG GTC TAC ACC GCT AGC CCA GG-3’对2.2kb插入片段进行测序。
为鉴别位于转座子下游的插入位点,用限制内切酶XbaI切割突变体的染色体DNA,并与用XbaI线性化的载体pUC18连接。如上述进行进一步克隆。通过Sanger等(Proceedings of the NationalAcademy of Sciences of the USA(1977)74:54635467)所述双脱氧链终止法,用约8.5kb大插入片段确定一个质粒上插入位点的核苷酸序列。为此,起自下面寡核苷酸引物5’-CGG TGC CTT ATC CATTCA GG-3’对0.65kb插入片段进行测序。
用程序包Lasergene(Biocomputing Software for Windows,DNASTAR,Madison,美国)对所得核苷酸序列进行分析与组装,此核苷酸序列再现为SEQ ID NO:1。此分析鉴别一个1467bp长的开放读框,相应基因被命名为thrE基因,相关基因产物含有489个氨基酸,并再现为SEQ ID NO:2。
实施例2来自谷氨酸棒杆菌ATCC 13032的thrE基因的克隆与测序
将thrE基因在E.coli克隆载体pUC18(Norrander等,基因(1983)26:101-106,Roche Diagnostics,Mannheim,德国)中克隆。以两个阶段进行克隆。首先用衍生自SEQ ID NO:1的以下寡核苷酸引物,经PCR扩增谷氨酸棒杆菌ATCC 13032的该基因。
ThrE-正向:5’-CCC CTT TGA CCT GGT GTT ATT G-3’
ThrE-反向:5’-CGG CTG CGG TTT CCT CTT-3’
在存在200μM脱氧核苷三磷酸(dATP,dCTP,dGTP,dTTP)情况下,将PCR反应循环30次,每次在热循环仪(PTC-100,MJResearch,Inc.,华盛顿,美国)中的1μM相应寡核苷酸,100ng谷氨酸棒杆菌ATCC 13032的染色体DNA,1/10体积的10倍反应缓冲液,和2.6单位热稳定Taq/Pwo-DNA聚合酶混合物(ExpandHigh Fidelity PCR System from Roche Diagnostics,Mannheim,德国)在以下条件进行反应:94℃ 30秒,58℃ 30秒,和72℃ 2分钟。
然后,根据生产者之说明,用SureClone连接试剂盒(Amersham,Pharmacia Biotech,Uppsala,Sweden),将约1.9kb大片段连入载体pUC18的SmaI切割位点。将E.coli菌株DH5αmcr(Grant等,Proceedings ofthe National Academy of Sciences of the USA(1990)87:4645-4649)用完整连接插入片段转化。基于在含50μg/ml羧苄青霉素的LB琼脂平板上对羧苄青霉素的抗性,鉴别转化体。从8个转化体中制备质粒,并通过限制分析测试作为插入片段的1.9kbPCR片段的存在与否。所得重组质粒在后文命名为pUC 18thrE。
通过如Sanger等(Proceedings of the National Academy of Sciencesof the USA(1977)74:5463-5467)所述双脱氧链终止法,确定质粒pUC 18thrE中1.9kb PCR片段的核苷酸序列。为此,借助于以下来自Roche Diagnostics(Mannheim,德国)的引物,对pUC 18thrE的完整插入片段进行测序。
通用引物:5’-GTA AAA CGA CGG CCA GT-3’
反向引物:5’-GGA AAC AGC TAT GAC CAT G-3’
此核苷酸序列再现为SEQ ID NO:3,用程序包Lasergene(Biocomputing Software for Windows,DNASTAR,Madison,美国)分析所包含的核苷酸序列。此分析鉴别出一个长1467bp的开放读框,称其为thrE基因。该基因编码489个氨基酸的多肽,记为SEQ IDNO:4。
实施例3 谷氨酸棒杆菌中thrE基因的表达
将实施例2中所述的谷氨酸棒杆菌ATCC13032的thrE基因克隆,以在载体pZ1(Menkel等,应用与环境微生物学(1989)64:549-554)中表达。为此,用限制酶SacI和XbaI从质粒pUC 18thrE中切下含thrE基因的1881bp的大DNA片段。将此片段的5’和3’末端用Klenow酶处理。将所得DNA片段连接于预先用ScaI线性化及去磷酸化的载体pZ1 中。将E.coli菌株DH5αmcr(Grant等,Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA(1990)87:4645-4649)用完整连接插入片段转化。基于在含50μg/ml卡那霉素的LB琼脂平板上对卡那霉素的抗性而鉴别转化体。从2个转化体中制备质粒,并经限制分析检查作为插入片段的1881bpScaI/XbaI片段的存在。以此方式产生的重组质粒命名为pZ1thrE(图2)。
通过电穿孔(Haynes等,FEMS微生物学通信(1989)61:329-334),将质粒pZ1和pZ1thrE掺入形成苏氨酸的菌株黄色短杆菌DM368-2中。该菌株由EP-B-0 385 940所述,且登记号DSM5399。基于其在含15μg/ml卡那霉素的LBHIS琼脂平板(Liebl等,FEMS微生物学通信(1989)65:299-304)上对卡那霉素的抗性而鉴别转化体。以此方式获得菌株黄色短杆菌DM368-2和DM 368-2 pZ1thrE。
实施例5 用黄色短杆菌制备L-苏氨酸
为研究其形成苏氨酸的情况,将菌株黄色短杆菌DM368-2 pZ1和DM368-2 pZ1thrE在具有50μg/ml卡那霉素的100ml脑心浸液培养基(Difco Laboratories,Detroit,美国)中,在30℃预培养14小时。然后用0.9%(w/v)的氯化钠液将细胞冲洗一次,并将此悬浮液接种于60ml CgXII培养基,以使OD600(在600nm的光密度)是0.5。此培养基等同于由Keilhauer等所述(细菌学杂志(1993)175:5593-5603)的培养基,但另外含有50μg/ml卡那霉素。将二个菌株在30℃培养72小时。在0,24,48和72小时之后取样本,并将细胞迅速离心(在Biofuge Pico,来自Heraeus,Osterode,德国,13000RPM,5分钟)。
通过反相HPLC(Lindroth等,分析化学(1979)51:1167-1174),对培养物上清液中胞外氨基酸浓度进行定量确定。使用配有荧光检测仪(G1321A)的HP1100系列(Hewlett-Packard,Waldbronn,德国)的HPLC装置;用HP-Chem-Station(Hewlett Packard)操作此系统及进行数据评估。在自动预备柱衍生化步骤中,将待分析的1μl氨基酸溶液与20μl邻苯二醛/2-巯基乙醇试剂(Pierce EuropeBV,Oud-Beijen Land,荷兰)混合。将所得发荧光的硫取代的异吲哚(Jones等,层析学杂志(1983)266:471-482),在组合的预备柱(40×4mm Hypersil ODS5)和主柱(Hypersil ODS5,二柱均得自CS-Chromatographie Service GmbH,Langerwehe,德国)中,用具有升高的非极性相(甲醇)的梯度程序分离。极性洗脱液是乙酸钠(0.1M,pH7.2);流速是0.8ml/分。在230nm的激发波长和在450nm的发射波长对衍生化的氨基酸进行荧光检测。通过与外标及作为另外的内标的天冬酰胺相对比,计算氨基酸浓度。
所得结果示于表2。
表2
菌株
|
L-苏氨酸(g/L)
|
0小时
|
24小时
|
48小时
|
72小时
|
DM368-2pZ1
|
0
|
0.46
|
1.27
|
1.50
|
DM368-2pZ1thrE
|
0
|
0.68
|
1.71
|
2.04
|
实施例 6载体pEC-T18mob2thrE的制备
1、构建pEC-T18mob2
根据现有技术构建E.coli谷氨酸棒杆菌穿梭载体pEC-T18mob2。
此载体含有包括复制效应子per的质粒pGA1的复制区rep(US-A-5,175,108;Nesvera等,细菌学杂志179,1525-1532(1997)),质粒pAG1的赋予四环素抗性的tetA(Z)基因(US-A-5,158,891;国立生物技术信息中心(NCBI,Bethesda,MD,美国)的基因库登记,登记号AF 121000),质粒pMB1的复制区oriV(Sutcliffe,ColdSpring Harbor Symposium on Quantitative Biology 43,77-90(1979)),包括1ac启动子和多重克隆位点(mcs)的1acZα基因片段(Norrander等,基因26,101-106(1983)),和质粒RP4的mob区(Simon等,(1983)生物/技术1:784-791)。
将构建的载体转化入E.coli菌株DH5α中(Hanahan,DNA克隆实用指导,卷I.IRL-Press,Oxford,华盛顿DC,USA,1985)。通过将转化体成批铺板于已补加5mg/l四环素的LB琼脂(Sambrook等,分子克隆实验手册,2nd版。冷泉港实验室出版社,冷泉港,纽约,美国,1989)上,选择携带质粒的细胞。通过Qiagen的QIAprep SpinMiniprep试剂盒从转化体中分离质粒DNA,并用限制酶EcoRI和HindIII限制消化,随后进行琼脂糖凝胶电泳(0.8%)检查。
该质粒称为pEC-T18mob2,并示于图3。
2、构建pEC-T18mob2thrE
将实施例2所述谷氨酸棒杆菌ATCC13032的thrE基因克隆,以在载体pEC-T18mob2中表达。为此,用限制酶SacI和XbaI从质粒pUC18thrE中切下含thrE基因的1881 bp大DNA片段。将所得DNA片段连于已预先用SacI和XbaI线性化及去磷酸化的载体pEC-T18 mob 2中。将E.coli菌株DH5αmcr(Grant等,Proceedings ofthe National Academy ofSciences of the USA(1990)87:4645-4649),用整个连接混合转化。基于其在含5μg/ml四环素的LB琼脂平板上对四环素的抗性,鉴别转化体。从2个转化体中制备质粒,并经限制分析检查作为插入片段的1881bp ScaI/XbaI片段的存在,以此方式获得的重组质粒称为pEC-T18mob2thrE(图4)。
通过电穿孔(Haynes等,FEMS微生物学通信(1989)61:329-334),将质粒pEC-T18mob2和pEC-T18mob2thrE导入生成苏氨酸的谷氨酸棒杆菌菌株MH20-22B-DR17中(Reinscheid等,应用与环境微生物学(1994)60:126-132)。基于其在含15μg/ml卡那霉素和5μg/ml四环素的LBHIS琼脂平板(Liebl等,FEMS微生物学通信(1989)65:299-304)上对四环素和卡那霉素的抗性鉴别转化体。以此方式获得谷氨酸棒杆菌菌株MH20-22B-DR17/pEC-T18mob2和MH20-22B-DR17/pEC-T18mob2thrE。
实施例7 用谷氨酸棒杆菌制备L-苏氨酸
为研究其生成苏氨酸的情况,将菌株谷氨酸棒杆菌MH20-22B-DR17/pEC-T18mob2和MH20-22B-DR17/pEC-T18mob2thrE,在含25μg/ml卡那霉素和5μg/ml四环素的100ml脑心浸液培养基(DifcoLaboratories,Detroit,美国)中,在30℃预培养14小时。然后用0.9%(w/v)NaCl液将细胞冲洗一次,并将此悬浮液接种于60ml CgXII培养基的,以使OD600(在600nm的光密度)为0.5,此培养基等同于由Keilhauer等(细菌学杂志(1993)175:5593-5603)所述的培养基,但另外含有25μg/ml卡那霉素和5μg/ml四环素。将二菌株在30℃培养72小时。在0,24,48和72小时之后取样本,并将细胞简短离心(在Biofuge pico离心机,Heraeus,Osterode德国。13000rpm,5分钟)
用反相HPLC(Lindroth等,分析化学(1979)51:1167-1174),如实施例5中对黄色短杆菌所做的一样,对培养物上清液中胞外氨基酸浓度进行定量确定。通过与外标和作为另外内标的天冬酰胺相对比,计算氨基酸浓度,结果示于表3。
表3
菌株
|
L-苏氨酸(g/L)
|
0小时
|
24小时
|
48小时
|
72小时
|
MH20-22B-DR17/pEC-T18mob2
|
0
|
3.14
|
5.82
|
5.78
|
MH20-22BDR17/pEC-T18mob2thrE
|
0
|
4.16
|
7.53
|
8.05
|
本发明包括如下附图:
图1:含转座子Tn5531的质粒pCGL0040图,转座子以未划影线的箭头表示。
图2:含thrE基因的质粒pZ1thrE图。
图3:质粒pEC-T18mob2图。
图4:含thrE基因的质粒pEC-T18mob2 thrE图。
长度数据应被认为是大约的。所采用的缩写和符号有如下含义:
·amp:氨苄青霉素抗性基因
·kan:卡那霉素抗性基因
·amp:氨苄青霉素抗性基因的3’部分
·oriBR322:质粒pBR322的复制区
·tet:四环素抗性基因
·oriV:E.coli的质粒编码的复制源点
·PR4mob:用于转移质粒的mob区
·rep:谷氨酸棒杆菌质粒pGA1的质粒编码的复制源点
·per:pGA1的控制拷贝数的基因
·LacZ-α:β-半乳糖苷酶的lacZα基因片段(N-末端)。
限制酶的缩写有如下含义
BamHI:来自Bacillus amyloliquefaciens的限制酶
BglII:来自Bacillus globigii的限制酶
EcoRI:来自E.coli的限制酶
EcoRV:来自E.coli的限制酶
HindIII:来自Haemophilus influenzae的限制酶
KpnI:来自Klebsiella pneumoniae的限制酶
PstI:来自Providencia stuartii的限制酶
PvuI:来自Proteus vulgaris的限制酶
SacI:来自Streptomyces achromogenes的限制酶
SalI:来自Streptomyces albus的限制酶
SmaI:来自Serratia marcescens的限制酶
XbaI:来自Xanthomonas badrii的限制酶
XhoI:来自Xanthomonas holcicola的限制酶
序列表<110> 德古萨-于尔斯股份公司于利希研究中心有限公司<120> 编码thrE基因的新核苷酸序列和用棒状菌酶促生产L-苏氨酸的方法<130> 990079 BT<140><141><160> 4<170> PatentIn Ver.2.1<210> 1<211> 2817<212> DNA<213> 谷氨酸棒杆菌 ATCC14752<220><221> CDS<222> (398)..(1864)<223> thrE-Gen<400> 1aatgaaataa tcccctcacc aactggcgac attcaaacac cgtttcattt ccaaacatcg 60agccaaggga aaagaaagcc cctaagcccc gtgttattaa atggagactc tttggagacc 120tcaagccaaa aaggggcatt ttcattaaga aaatacccct ttgacctggt gttattgagc 180tggagaagag acttgaactc tcaacctacg cattacaagt gcgttgcgct gccaattgcg 240ccactccagc accgcagatg ctgatgatca acaactacga atacgtatct tagcgtatgt 300gtacatcaca atggaattcg gggctagagt atctggtgaa ccgtgcataa acgacctgtg 360attggactct ttttccttgc aaaatgtttt ccagcgg atg ttg agt ttt gcg acc 41Met Leu Ser Phe Ala Thr1 5ctt cgt ggc cgc att tca aca gtt gac gct gca aaa gcc gca cct ccg 463Leu Arg Gly Arg Ile Ser Thr Val Asp Ala Ala Lys Ala Ala Pro Pro10 15 20cca tcg cca cta gcc ccg att gat ctc act gac cat agt caa gtg gcc 511Pro Ser Pro Leu Ala Pro Ile Asp Leu Thr Asp His Ser Gln Val 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