CN112195152A - 一种人结直肠癌组织类器官的培养方法及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种人结直肠癌组织类器官的培养方法,包括以下步骤:将人结直肠癌组织冲洗后放入转移培养液中,清洗后剪切;进一步清洗后离心、酶消化、过滤、收集细胞团;将上述细胞团与水凝胶混合,固化后加入DMEM培养液进行培养即得人结直肠癌组织类器官。本发明中采用转移培养液、消化液及培养液中加入庆大霉素、两性霉素B、primocin等抗生素可减少微生物污染,体外培养获得人结直肠癌类器官的方法简便、快速、成功率高,类器官生长状态良好。并且公开了上述人结直肠癌类器官在药物测试中的应用,可通过将人结直肠癌组织类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养模型作为一种患者个体化药物测试平台。
Description
技术领域
本发明属于生物工程技术领域,具体涉及一种人结直肠癌组织类器官的培养方法及其应用。
背景技术
人源肿瘤类器官(patient derived organoid,PDO)模型是近年来兴起的一种新型的肿瘤研究模型,Hans Clevers等在2009年首次提出利用基质胶在体外培养小鼠小肠隐窝上皮细胞和Lgr5+肠干细胞,可形成类似于肠腺的微型结构模拟体内小肠的结构和功能。研究显示,PDO与肿瘤组织标本间具有高度相似的基因组特征和肿瘤分子亚型;同时揭示了在单一患者水平进行基因型-表型分析的重要性。
目前所有类器官的建立几乎全部依赖于动物源性的基质胶作为三维培养支架。由于基质胶批次间微量组成成分的异质性、免疫原性及异种来源病原体转移风险等,严重阻碍了基质胶所培养的细胞及类器官在再生医学和高通量筛选等领域的临床应用。因此,探索更安全、稳定、可精确调控的培养材料对PDO的广泛应用具有重要意义。
Brian等报道了使用硫醇化透明质酸钠(thiolated HA)和含二硫化物的聚乙二醇二丙烯酸酯(PEGSSDA)的水溶液成功构建基于HA的水凝胶用于前列腺癌细胞培养;该材料合成成本低,组成成分精确可控,同时具有透明、稳定和多孔性,更能同时支持肿瘤细胞与间质细胞生长;该研究成功利用此基于HA的水凝胶作为前列腺癌肿瘤细胞与基质细胞多层培养的生物材料,构建了一种高通量的药物测试平台,但是目前为止还未有关于利用水凝胶体外建立人结直肠癌(CRC)类器官的研究报道。
PDO模型中只含有上皮细胞,而不含原肿瘤组织中的间质细胞,成为PDO最重要的缺陷,导致其在某些应用中的不精确的临床反应,严重阻碍了其在免疫防御的、肿瘤转移及侵袭、微环境调控等方面的应用。肿瘤相关成纤维细胞(CAFs)肿瘤微环境中最重要的组成成分之一,不仅为肿瘤上皮细胞提供物理支持,而且是肿瘤免疫、转移、耐药等关键功能的调节因子。结直肠癌PDO与CAFs共培养模型的研究,将为深入探索结直肠癌发生发展和以患者为中心的个体化药物治疗带来新的突破。
发明内容
本发明的第一个目的在于,克服现有技术的不足,提供一种更加简便、快速、稳定的分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法。
本发明的第二个目的在于,提供上述人结直肠癌组织类器官在药物测试中的应用。
本发明的第三个目的在于,提供一种药物测试平台。
本发明所采取的技术方案是:
本发明的第一个方面,提供一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,包括以下步骤:
(1)人结直肠癌组织的分离:将人结直肠癌组织冲洗后放入转移培养液中,清洗后剪切;进一步清洗后离心、酶消化、过滤、收集细胞团;
(2)人结直肠癌类器官的培养:将上述细胞团与水凝胶混合;固化后加入人结直肠癌类器官培养液进行培养,获得人结直肠癌类器官。
根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(2)中所述人结直肠癌类器官培养液为含有5-15nM Gastrin、B27、N2、0.5-1.5mMn-acetyl cysteine、GlutaMAX、90-110μg/mL庆大霉素、1-1.5μg/mL两性霉素B、90-110μg/ml primocin、8-15μMSB202190、5-15μMROCK抑制剂、45-55ng/ml EGF、4-6ng/ml FGF、4-6%FBS的DMEM/F12培养液。
优选地,根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(2)中所述人结直肠癌类器官培养液为含有10nMGastrin、B27、N2、1mM n-acetyl cysteine、GlutaMAX、100μg/mL庆大霉素、1.25μg/mL两性霉素B、100μg/mlprimocin、10μMSB202190、10μM ROCK抑制剂、50ng/ml EGF、5ng/ml FGF、5%FBS的DMEM/F12培养液。
根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(1)中所述酶消化所用的消化液为:1.25-1.75mg/mL IV型胶原蛋白酶、15-25μg/ml透明质酸酶、8-12μM ROCK抑制剂、80-130μg/ml庆大霉素。
优选地,根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(1)中所述酶消化所用的消化液为:1.5mg/mL IV型胶原蛋白酶、20μg/ml透明质酸酶、10μM ROCK抑制剂、100μg/ml庆大霉素。
进一步地,根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,所述ROCK抑制剂为Y-27632。
根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(1)中所述冲洗为使用0.5-1.5%聚维碘酮进行冲洗。
优选地,根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(1)中所述冲洗为使用1%聚维碘酮进行冲洗。
根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(1)中所述转移培养液为含有0.5-1.5%FBS、400-600Μ/mL青霉素、400-600μg/mL链霉素、80-120μg/ml庆大霉素、10-15g/mL两性霉素B的DMEM培养液。
优选地,根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(1)中所述转移培养液为含有1%FBS、500Μ/mL青霉素、500μg/mL链霉素、100μg/ml庆大霉素、12.5g/mL两性霉素B的DMEM培养液。
根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(1)中所述清洗为:用预冷的DMEM将组织漂洗至上清液清澈干净;所述剪切为:将所述人结直肠癌组织剪切成2-4mm的组织块。
根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(1)中所述离心的条件为:1000-1500rpm,3-5min。
优选地,根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(1)中所述离心的条件为:1200rpm,4min。
根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(1)中所述过滤为:使用100μm的细胞滤网去除未消化的组织团块,将滤液再次经过40μm的细胞滤网过滤。
根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(2)中所述细胞团与水凝胶混合后,细胞密度为6-10×104个/每20μL水凝胶。
优选地,根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(2)中所述细胞团与水凝胶混合后,细胞密度为6×104个/每20μL水凝胶。
根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(2)中所述水凝胶由Glycosil、Gelin-S及Extralink组成。
优选地,根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(2)中Glycosil、Gelin-S和Extralink的浓度为1%。
进一步地,根据本发明第一个方面所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,步骤(2)中Glycosil、Gelin-S和Extralink的体积比为2:2:1。
本发明的第二个方面,提供本发明第一个方面所述人结直肠癌来器官在药物测试中的应用。
本发明的第三个方面,提供一种药物测试平台。
根据本发明第三个方面所述的药物测试平台,所述药物测试平台由本发明第一个方面所述人结直肠癌组织类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养构建。
优选地,根据本发明第三个方面所述的药物测试平台,所述人结直肠癌组织类器官与肿瘤相关成纤维细胞的细胞数比例为(2-3):1。
本发明的有益效果是:
1.本发明采用聚维碘酮溶液冲洗取下的结直肠癌组织,再用生理盐水清洗,放入含抗生素的转移培养液DMEM中,以此初步处理组织,减少后续培养过程中出现的微生物污染几率,并且用DMEM代替PBS清洗组织,以尽可能维持细胞活性,提高类器官培养成功率。
2.本发明中消化液使用IV型胶原蛋白酶和透明质酸酶,可温和充分地解离组织,加入ROCK抑制剂Y-27632可减少因分离诱导的细胞凋亡,加入庆大霉素可减少污染。
3.本发明中的分离人结直肠癌组织的方法可获得更多细胞,细胞活性更高,体外培养获得人结直肠癌类器官的方法简便、快速、成功率高,类器官生长状态良好。
4.本发明中构建的人结直肠癌类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养模型,可用胰酶消化去除水凝胶上的肿瘤相关成纤维细胞,而水凝胶中的人结直肠癌类器官不受影响,以便进一步使用CCK8方法量化检测人结直肠癌类器官中细胞活性。
5.本发明中的人结直肠癌类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养模型中,肿瘤相关成纤维细胞的存在增强了人结直肠癌类器官对化疗药的抵抗性,更好的模拟患者体内的肿瘤环境,更能反映患者体内结直肠癌对化疗药的敏感性,可作为一种患者个体化药物测试平台。
附图说明
图1为不同硬度的水凝胶体外培养人结直肠癌类器官形态图。
图2为不同患者来源的结直肠癌组织体外培养类器官7天后的形态图。
图3为体外培养人结直肠癌类器官2天和7天后的形态图。
图4为人结直肠癌类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养模型构建方法的示意图。
图5为单纯人结直肠癌类器官培养与人结直肠癌类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养模型中人结直肠癌类器官对比的形态图。
图6为单纯人结直肠癌类器官培养与人结直肠癌类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养模型对化疗药的敏感性差异的对比图。其中A图为卡培他滨药物处理的敏感性差异图;B图为5-氟尿嘧啶药物处理的敏感性差异图;C图为奥沙利铂药物处理的敏感性差异图;D图为伊立替康药物处理的敏感性差异图。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步说明,但不作为对本发明的限定。
IV型胶原蛋白酶购自美国Gibco公司,透明质酸酶购自美国Sigma-Aldrich公司,Y-27632(ROCK抑制剂)购自美国Selleck Chemicals公司,Gastrin(胃泌素)购自美国Sigma-Aldrich公司,B27(血清替代物)购自美国Gibco公司,N2(细胞培养添加剂)购自美国Gibco公司,n-acetyl cysteine(N-乙酰半胱氨酸)购自日本Wako公司,GlutaMAX(L-丙氨酰-L-谷氨酰胺二肽)购自美国Gibco公司,primocin(原代细胞抗生素)购自法国InvivoGen公司,SB202190(p38 MAPK抑制剂)购自美国Sigma-Aldrich公司,EGF(表皮细胞生长因子)购自美国Peprotech公司,FGF(成纤维细胞生长因子)购自美国Peprotech公司,FBS(胎牛血清)购自美国Atlanta Biologicals公司,DMEM/F12购自美国Gibco公司,Glycosil(硫醇修饰的透明质酸)购自美国ESIBIO公司,Gelin-S(巯基修饰的明胶)购自美国ESIBIO公司,Extralink(聚乙二醇二丙烯酸酯)购自美国ESIBIO公司。
一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,包括以下步骤:
(1)人结直肠癌组织的分离
S01:人结直肠癌组织的预处理:取结直肠癌组织(避免坏死区域,大小0.5-1.0cm为宜),用0.5-1.5%聚维碘酮冲洗,再用生理盐水清洗,放入转移培养液DMEM中,转移培养液为含有0.5-1.5%FBS、400-600Μ/mL青霉素、400-600μg/mL链霉素、80-120μg/ml庆大霉素、10-15g/mL两性霉素B的DMEM培养液。
S02:用预冷DMEM将组织漂洗4次左右至上清液清澈干净,将组织置入10cm培养皿中,使用无菌眼科剪镊去除坏死组织、脂肪组织,再将其剪切成2-4mm的组织块,转移至50ml离心管中。
S03:用预冷DMEM将上述组织块漂洗4次左右至上清液清澈干净,1000-1400rmp,离心2-5min,加入15ml消化液,消化液含有1.25-1.75mg/mL IV型胶原蛋白酶、15-25μg/ml透明质酸酶、8-12μM Y-27632、80-130μg/ml庆大霉素,在37℃摇床上孵育40min,期间每隔10min快速上下颠倒数次,避免组织聚集成团影响后续细胞的收集。
S04:将上述消化液经100μm的细胞滤网去除未消化的组织团块,将滤液再次经过40μm的细胞滤网,将其置于6cm培养皿中,加入PBS,洗脱收集大于40μm的细胞团。
(2)人结直肠癌类器官的培养
S11:将Glycosil、Gelin-S、Extralink、DG Water取出恢复至室温,抽取DG water加入至Glycosil及Gelin-S中,置于37℃摇床上孵育40min使其充分溶解,抽取DG water加入至Extralink中,上下颠倒数次使其溶解,使Glycosil、Gelin-S和Extralink质量浓度均为1%。
S12:将Glycosil、Gelin-S及Extralink按2:2:1的体积量加入至细胞团中,细胞密度约为6-10×104个/每20μL水凝胶,用剪口的200μL枪头轻柔吹打重悬,待水凝胶接近凝固时再次吹打混匀,并迅速接种在96孔板中,每孔20μL。将培养板放入孵箱中孵育30min,待水凝胶凝固后,每孔加入人结直肠癌类器官培养液150μL,人结直肠癌类器官培养液为含有5-15nM Gastrin、B27、N2、0.5-1.5mM n-acetyl cysteine、GlutaMAX、90-110μg/mL庆大霉素、1-1.5μg/mL两性霉素B、90-110μg/ml primocin、8-15μMSB202190、5-15μM Y-27632、45-55ng/ml EGF、5ng/ml FGF、8-12%FBS的DMEM/F12培养液。
实施例1不同硬度的水凝胶体外培养人结直肠癌类器官
(1)人结直肠癌组织的分离
S01:分别取患者P01的手术标本约0.8cm、患者P02的手术标本约0.5cm,用1%聚维碘酮冲洗取下的结直肠癌组织,再用生理盐水清洗,放入转移培养液DMEM中,其中转移培养为含有1%FBS、500Μ/mL青霉素、500μg/mL链霉素、100μg/ml庆大霉素、12.5g/mL两性霉素B的DMEM培养液。
S02:用预冷的DMEM将组织漂洗4次至上清液清澈干净,将组织置入10cm培养皿中,使用无菌眼科剪镊去除坏死组织、脂肪组织,再将其剪切成2-4mm的组织块,转移至50ml离心管中。
S03:用预冷DMEM将上述组织块漂洗4次至上清液清澈干净,1200rmp,离心3min。加入15ml消化液,37℃摇床上孵育40min,期间每隔10min左右快速上下颠倒数次,其中消化液含有1.5mg/mL IV型胶原蛋白酶、20μg/ml透明质酸酶、10μM Y-27632、100μg/ml庆大霉素。
S04:将上述消化液经100μm的细胞滤网去除未消化的组织团块,将滤液再次经过40μm的细胞滤网,将其置于6cm培养皿中,加入PBS,洗脱收集大于40μm的细胞团。
(2)人结直肠癌类器官的培养
S11:将Glycosil、Gelin-S、Extralink、DG Water取出恢复至室温,抽取DG water加入至Glycosil及Gelin-S中,置于37℃摇床上孵育40min使其充分溶解,抽取DG water加入至Extralink中,上下颠倒数次使其溶解,保持Glycosil、Gelin-S的浓度为1%,可改变Extralink的浓度以改变水凝胶的硬度,Extralink的浓度分别为0.5%、1%和4%,可制备低硬度、中等硬度、高硬度的水凝胶。
S12:将每个患者所得细胞分为3组,分别加入低硬度、中等硬度、高硬度的水凝胶,其中具体操作为将Glycosil、Gelin-S及Extralink按2:2:1的体积量加入至细胞团中,其中患者P01的细胞密度约为9.3×104个/每20μL水凝胶,患者P02的细胞密度约为6.1×104个/每20μL水凝胶。用剪口的200μL枪头轻柔吹打重悬,待水凝胶接近凝固时再次吹打混匀,并迅速接种在96孔板中,每孔20μL。将培养板放入孵箱中孵育30min,待水凝胶凝固后,每孔加入人结直肠癌类器官培养液150μL,人结直肠癌类器官培养液为含有10nM Gastrin、B27、N2、1mM n-acetyl cysteine、GlutaMAX、100μg/mL庆大霉素、1.25μg/mL两性霉素B、100μg/ml primocin、10μMSB202190、10μM Y-27632、50ng/ml EGF、5ng/ml FGF、5%FBS的DMEM/F12培养液。培养7天后的结果见图1。从图1可以看出,在经7天的培养后,不论是来源于患者P01还是患者P02的组织进行分离后类器官培养,均是高硬度组细胞数量少、活性差、无类器官形成,低硬度组细胞较多、活性尚可,但不能维持类器官的三维立体结构,而中等硬度的水凝胶可维持细胞活性和增长,保持类器官三维结构。
实施例2不同患者来源的结直肠癌组织体外培养类器官
(1)人结直肠癌组织的分离
S01:分别取患者P03的手术标本约1.0cm、P04的手术标本约0.8cm、P05的手术标本约0.7cm、P06的手术标本约0.9cm,用1%聚维碘酮冲洗取下的结直肠癌组织,再用生理盐水清洗,放入转移培养液DMEM中,其中转移培养为含有1%FBS、500Μ/mL青霉素、500μg/mL链霉素、100μg/ml庆大霉素、12.5g/mL两性霉素B的DMEM培养液。
S02:用预冷的DMEM将组织漂洗4次至上清液清澈干净,将组织置入10cm培养皿中,使用无菌眼科剪镊去除坏死组织、脂肪组织,再将其剪切成2-4mm的组织块,转移至50ml离心管中。
S03:用预冷DMEM将上述组织块漂洗4次至上清液清澈干净,1200rmp,离心3min。加入15ml消化液,37℃摇床上孵育40min,期间每隔10min左右快速上下颠倒数次,其中消化液含有1.5mg/mL IV型胶原蛋白酶、20μg/ml透明质酸酶、10μM Y-27632、100μg/ml庆大霉素。
S04:将上述消化液经100μm的细胞滤网去除未消化的组织团块,将滤液再次经过40μm的细胞滤网,将其置于6cm培养皿中,加入PBS,洗脱收集大于40μm的细胞团。
(2)人结直肠癌类器官的培养
S11:将Glycosil、Gelin-S、Extralink、DG Water取出恢复至室温,抽取DG water加入至Glycosil及Gelin-S中,置于37℃摇床上孵育40min使其充分溶解,抽取DG water加入至Extralink中,上下颠倒数次使其溶解,使Glycosil、Gelin-S及Extralink的浓度均为1%;
S12:将Glycosil、Gelin-S及Extralink按2:2:1的体积量加入至细胞团中,其中患者P03的细胞密度约为9.6×104个/每20μL水凝胶,患者P04的细胞密度约为7.2×104个/每20μL水凝胶,患者P05的细胞密度约为6.1×104个/每20μL水凝胶,患者P06的细胞密度约为7.9×104个/每20μL水凝胶。用剪口的200μL枪头轻柔吹打重悬,待水凝胶接近凝固时再次吹打混匀,并迅速接种在96孔板中,每孔20μL。将培养板放入孵箱中孵育30min,待水凝胶凝固后,每孔加入人结直肠癌类器官培养液150μL,人结直肠癌类器官培养液为含有10nMGastrin、B27、N2、1mM n-acetyl cysteine、GlutaMAX、100μg/mL庆大霉素、1.25μg/mL两性霉素B、100μg/ml primocin、10μMSB202190、10μM Y-27632、50ng/ml EGF、5ng/ml FGF、5%FBS的DMEM/F12培养液。经7天的培养后的形态图见图2,可见在培养7天后,已经可以通过显微镜看到人结直肠癌类器官结构形成,并且所得到的人结直肠癌类器官具有三维结构。分别记录P03及P05培养2天和7天后的形态图,具体结果见图3,可以看出在培养2天后即可看到类器官结构形成,培养7天可见类器官呈结肠腺腔样结构。
实施例3一种化疗药物测试平台
一种化疗药物测试平台的构建,具体为人结直肠癌类器官与肿瘤成纤维细胞共培养进行化疗药物的筛选,包括以下步骤:
(1)人结直肠癌组织的分离
S01:人结直肠癌组织的预处理:分别取患者P03的手术标本约1.0cm、P07的手术标本约0.9cm,用1%聚维碘酮冲洗,再用生理盐水清洗,放入转移培养液DMEM中,转移培养液为含有1%FBS、500Μ/mL青霉素、500μg/mL链霉素、100μg/ml庆大霉素、12.5g/mL两性霉素B的DMEM培养液。
S02:用预冷DMEM将组织漂洗4次左右至上清液清澈干净,将组织置入10cm培养皿中,使用无菌眼科剪镊去除坏死组织、脂肪组织,再将其剪切成2-4mm的组织块,转移至50ml离心管中。
S03:用预冷DMEM将上述组织块漂洗4次至上清液清澈干净,1200rmp,离心3min。加入15ml消化液,37℃摇床上孵育40min,期间每隔10min左右快速上下颠倒数次,其中消化液含有1.5mg/mL IV型胶原蛋白酶、20μg/ml透明质酸酶、10μM Y-27632、100μg/ml庆大霉素。
S04:将上述消化液经100μm的细胞滤网去除未消化的组织团块,将滤液再次经过40μm的细胞滤网,将其置于6cm培养皿中,加入PBS,洗脱收集大于40μm的细胞团。
(2)人结直肠癌类器官的培养
S11:将Glycosil、Gelin-S、Extralink、DG Water取出恢复至室温,抽取DG water加入至Glycosil及Gelin-S中,置于37℃摇床上孵育40min使其充分溶解,抽取DG water加入至Extralink中,上下颠倒数次使其溶解,使Glycosil、Gelin-S和Extralink质量浓度均为1%。
S12:将Glycosil、Gelin-S及Extralink按2:2:1的体积量加入至细胞团中,细胞密度约为X×104/每20μL水凝胶,用剪口的200μL枪头轻柔吹打重悬,待水凝胶接近凝固时再次吹打混匀,并迅速接种在96孔板中,每孔20μL。将培养板放入孵箱中孵育30min,待水凝胶凝固后,每孔加入人结直肠癌类器官培养液150μL,人结直肠癌类器官培养液为含有10nMGastrin、B27、N2、1mM n-acetyl cysteine、GlutaMAX、100μg/mL gentamicin、1.25μg/mLamphotericin B、100μg/ml primocin、10μMSB202190、10μM Y-27632、50ng/ml EGF、5ng/mlFGF、5%FBS的DMEM/F12培养液。
(3)肿瘤相关成纤维细胞的培养
S21:将S04中经40μm滤网过滤后所得的滤液离心,然后用含2%青链霉素混合液、50μg/ml庆大霉素、1.25g/mL两性霉素B、20%FBS的DMEM培养液重悬细胞沉淀,转移至培养瓶中,放入37℃,5%CO2培养箱中培养。
S22:最初3天每天换液,之后换用含1%青链霉素混合液、10%FBS的DMEM培养液,每2-3天换液。
S23:当细胞融合率达80%-90%时进行传代培养。
(4)人结直肠癌类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养
类器官培养第2天,将肿瘤相关成纤维细胞接种在水凝胶上,每孔2-3×104,人结直肠癌类器官与肿瘤相关成纤维细胞的细胞数比例为(2-3):1,以构建共培养模型,培养液成分为10nM Gastrin、B27、N2、1mM n-acetyl cysteine、GlutaMAX、100μg/ml primocin、5%FBS的DMEM/F12培养液,示意图见图4。
(5)人结直肠癌类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养的化疗药物测试
类器官培养第3天,分别设置化疗药物卡培他滨,5-氟尿嘧啶,奥沙利铂及伊立替康的不同浓度组(0.1μm/L,1μm/L,10μm/L,100μm/L)及对照DMSO组,每2天更换培养液。5天后,倒置显微镜拍摄记录人结直肠癌类器官的生长形态,其中对照组的生长形态见图5,可见共培养组中肿瘤相关成纤维细胞的作用增加了PDO的数量,且活性更好。接下来用胰酶消化去除共培养模型中的肿瘤相关成纤维细胞,CCK8方法检测人结直肠癌类器官细胞存活率,两组对化疗药敏感性的差异见图6,从图6可以看出肿瘤相关成纤维细胞增强了人结直肠癌类器官对化疗药物的抵抗性,人结直肠癌类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养构建的模型可以更好的反映患者体内肿瘤对化疗药的敏感性,因此该共培养模型可作为一种患者个体化药物测试平台。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,其描述较为具体和详细,但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。
Claims (10)
1.一种人结直肠癌组织类器官的培养方法,包括以下步骤:
(1)人结直肠癌组织的分离:将人结直肠癌组织冲洗后放入转移培养液中,清洗后剪切;进一步清洗后离心、酶消化、过滤、收集细胞团;
(2)人结直肠癌类器官的培养:将上述细胞团与水凝胶混合;固化后加入人结直肠癌类器官培养液进行培养,获得人结直肠癌类器官。
2.根据权利要求1所述的一种人结直肠癌组织类器官的培养方法,其特征在于,步骤(2)中所述人结直肠癌类器官培养液为含有5-15nMGastrin、B27、N2、0.5-1.5mMn-acetylcysteine、GlutaMAX、90-110μg/mL庆大霉素、1-1.5μg/mL两性霉素B、90-110μg/mlprimocin、8-15μM SB202190、5-15μM ROCK抑制剂、45-55ng/mlEGF、4-6ng/ml FGF、4-6%FBS的DMEM/F12培养液;所述ROCK抑制剂优选为Y-27632。
3.根据权利要求1所述的一种人结直肠癌组织类器官的培养方法,其特征在于,步骤(1)中所述酶消化所用的消化液为:1.25-1.75mg/mL IV型胶原蛋白酶、15-25μg/ml透明质酸酶、8-12μM ROCK抑制剂、80-130μg/ml庆大霉素。
4.根据权利要求1所述的一种分离和体外培养人结直肠癌组织类器官的方法,其特征在于,步骤(1)中所述冲洗为使用0.5-1%聚维碘酮进行冲洗。
5.根据权利要求1所述的一种人结直肠癌组织类器官的培养方法,其特征在于,步骤(1)中所述转移培养液为含有0.5-1.5%FBS、400-600Μ/mL青霉素、400-600μg/mL链霉素、80-120μg/ml庆大霉素、10-15g/mL两性霉素B的DMEM培养液。
6.根据权利要求1所述的一种人结直肠癌组织类器官的培养方法,其特征在于,步骤(1)中所述过滤为:使用100μm的细胞滤网去除未消化的组织团块,将滤液再次经过40μm的细胞滤网过滤。
7.根据权利要求1所述的一种人结直肠癌组织类器官的培养方法,其特征在于,步骤(2)中所述细胞团与水凝胶混合后,细胞密度为6-10×104个/每20μL水凝胶。
8.根据权利要求1所述的一种人结直肠癌组织类器官的培养方法,其特征在于,步骤(2)中所述水凝胶由Glycosil、Gelin-S及Extralink组成。
9.权利要求1-8任一项所述人结直肠癌组织类器官在药物测试中的应用。
10.一种药物测试平台,其特征在于,由权利要求1-8任一所述人结直肠癌组织类器官与肿瘤相关成纤维细胞共培养构建。
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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GR01 | Patent grant | ||
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