CN111909953A - 用于桑黄遗传表达的重组载体及构建方法和遗传转化方法 - Google Patents

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CN111909953A CN202010503531.8A CN202010503531A CN111909953A CN 111909953 A CN111909953 A CN 111909953A CN 202010503531 A CN202010503531 A CN 202010503531A CN 111909953 A CN111909953 A CN 111909953A
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Abstract

本发明公开一种用于桑黄遗传表达的重组载体及构建方法和遗传转化方法。载体序列如SEQ ID No:13所示。构建方法:将双元载体pCAMBIA‑1301的CaMV35S启动子替换为桑黄同源启动子,获得适用于桑黄的双元载体。遗传转化方法:利用冻融法将重组双元载体转入根癌农杆菌,获得阳性菌;利用农杆菌侵染桑黄菌丝,并在培养基上共培养,随后覆盖低熔点PDA培养基;随后将菌落转移至新的培养基,选取长势旺盛的菌落提取DNA,利用PCR技术鉴定阳性菌株。本发明具有操作简单,转化率高等优点,成功实现了桑黄的遗传转化,使得在桑黄中进行同源敲除、过表达、异源表达成为可能,解决了无法建立桑黄遗传转化体系的问题。

Description

用于桑黄遗传表达的重组载体及构建方法和遗传转化方法
技术领域
本发明属于遗传育种领域,具体涉及一种用于桑黄遗传表达的重组载体及构建方法和遗传转化方法。
背景技术
桑黄作为中国著名的传统药用真菌已经有2000多年的历史,最早见于前汉朝的《神农本草经》中的“桑耳”。《本草纲目》记载,桑黄可用于止泻、崩漏带下、脾虚泄泻,此外还能排毒、活血、利五脏。现代研究表明,桑黄具有调节免疫、抑制癌细胞增值、诱导癌细胞凋亡等作用,是目前国际公认的抗癌效果较好的药用真菌之一,其中发挥作用的有效成分主要是多糖、三萜、黄酮和酚类物质。
目前,关于桑黄药用成分的研究主要集中在分离纯化和药理活性上,但是与药用成分有关的基因功能及调控机制的研究还未见报道,其中主要的原因就是缺乏遗传转化方法,导致基因功能的研究受到阻碍,因此建立一个高效稳定的遗传转化体系是解析桑黄药用成分合成机制的关键步骤。
在遗传转化进行前需要一个适宜的载体,启动子是表达载体的重要组成部分,同源启动子可有效提高转化效率。目前桑黄缺少合适的载体,使得桑黄遗传转化很难开展。利用桑黄同源gpd启动子构建双元载体是建立桑黄遗传转化体系的首要任务。
真菌遗传转化的方法很多,如PEG法、基因枪法,农杆菌介导法等。农杆菌介导的遗传转化方法具有操作简单、转化效率较高、外源基因能稳定的整合在寄主染色体上等优点。目前,农杆菌介导的遗传转化法已经在许多真菌中成功应用,但是不同的真菌转化工艺存在差异,参照其他真菌的转化方法无法顺利进行转化。过往一直采用原生质体作为真菌的遗传转化受体,但是原生质体再生周期长,使得潮霉素失效,很难筛选到阳性转化株;并且制备原生质体步骤复杂,成本高污染率高,很难获得阳性转化株。本发明利用根癌农杆菌介导桑黄遗传转化,具有操作简单,转化率高等优点,成功实现了桑黄的遗传转化,使得在桑黄中进行同源敲除、过表达、异源表达成为可能,为利用基因工程手段对桑黄进行遗传改良,探究桑黄药用成分合成机制奠定基础。
发明内容
基于以上不足之处,本发明的目的是提供一种用于桑黄遗传表达的重组双元载体及构建方法,该载体能够在桑黄中表达,可用于研究基因功能和改造桑黄菌株,解决了无法建立桑黄遗传转化体系的问题。
本发明采用如下技术方案:一种用于桑黄遗传表达的重组双元载体1301-SH-gpd,其序列如SEQ ID No:13所示。
本发还具有如下技术特征:
如上所述的一种用于桑黄遗传表达的重组双元载体1301-SH-gpd的构建方法,步骤如下:
(a)以pCAMBIA-1301载体为模板,设计引物组:
HYG-F,其序列如SEQ ID No:1所示,
HYG-R,其序列如SEQ ID No:2所示,
进行PCR扩增,得到带有同源臂的HYG表达盒片段;
(b)将pCAMBIA-1301载体双酶切,切除左边的CaMV35S启动子区和HYG潮霉素区,得到线性化pCAMBIA-1301载体,
(c)利用无缝克隆技术,将步骤a带有同源臂的HYG表达盒片段与步骤b线性化载体连接,得到重组载体1301-HYG,
(d)以桑黄DNA为模板,设计引物组:
gpdZ-F,其序列如SEQ ID No:3所示,
gpdZ-R,其序列如SEQ ID No:4所示,
进行PCR扩增,得到带有1301-HYG载体同源臂的gpd基因启动子片段,其序列如SEQID No:11所示,
(e)将步骤c得到的1301-HYG载体单酶切,得到线性化载体,
(f)将步骤d得到的带有同源臂的gpd启动子和步骤e得到的线性化载体连接,得到重组载体1301-gpd-HYG,
(g)以桑黄DNA为模板,设计引物组:
gpdY-F,其序列如SEQ ID No:5所示,
gpdY-R,其序列如SEQ ID No:6所示,
进行PCR扩增,得到带有1301-gpd-HYG载体同源臂的gpd启动子片段,其序列如SEQID No:12所示,
(h)将步骤f得到的1301-gpd-HYG载体双酶切,切除右边的CaMV35S启动子区,得到线性化载体,
(i)将步骤g得到的带有同源臂的gpd启动子和步骤h得到的线性化载体连接,得到重组双元载体1301-SH-gpd,其序列如SEQ ID No:13所示。
本发明的另一目的在于提供一种根癌农杆菌介导的桑黄遗传转化方法,采用如上所述的一种用于桑黄遗传表达的重组双元载体1301-SH-gpd,本方法简化了操作步骤,降低了污染率,可操作性强,克服了原生质体制备过程复杂、成本高的缺点。
本发明采用如下技术方案:一种根癌农杆菌介导的桑黄遗传转化方法包括以下步骤:
(1)利用冻融法将所述的重组双元载体1301-SH-gpd转入根癌农杆菌AGL-1感受态,培养获得阳性菌,
(2)将培养好的桑黄菌丝无菌条件下粉碎,随后将液体菌丝离心,弃上清,收集沉淀菌丝;
(3)在含不同浓度潮霉素:0μg/mL、2μg/mL、4μg/mL、6μg/mL、8μg/mL、10μg/mL的PDA平板上接种桑黄菌丝,得到适用于桑黄遗传转化的潮霉素浓度;
(4)将含有重组双元载体1301-SH-gpd的AGL-1农杆菌菌液加入到100mL含有50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中;将培养好的菌液离心,弃上清,沉淀用IM培养基重悬,得到侵染液;
(5)取步骤(4)得到的侵染液侵染步骤(2)得到的桑黄菌丝,共培养36h;
(6)在步骤(5)得到的共培养菌丝上覆盖低熔点PDA培养基培养,长出新菌落,随后将菌落转移至新的含有适用于桑黄遗传转化浓度的潮霉素的PDA培养基培养,选取长势旺盛的菌落提取DNA,利用PCR技术鉴定阳性菌株。
本发明还具有如下技术特征:
1、如上所述的适用于桑黄遗传转化的潮霉素浓度为4μg/mL。
2、如上步骤(6)利用PCR技术鉴定阳性菌株的方法如下:
设计引物:
J1-F,其序列如SEQ ID No:7所示
J1-R,其序列如SEQ ID No:8所示
J2-F:其序列如SEQ ID No:9所示
J2-R:其序列如SEQ ID No:10所示;
以重组双元载体1301-SH-gpd、转化子和野生型DNA为模板进行PCR扩增,结果显示,从转化子和重组双元载体1301-SH-gpd都能扩增出253bp和1013bp的预期DNA片段,但野生型中没有扩增产物,说明重组双元载体上的外源DNA片段已经整合到了桑黄转化子的基因组中。
3、如上步骤(1)中重组双元载体1301-SH-gpd转入根癌农杆菌AGL-1感受态,28℃培养1-2天。
4、如上步骤(2)菌丝匀浆20s,随后将菌丝置于离心管,5000rpm离心10min,收集沉淀菌丝。
5、如上步骤(3)将桑黄菌丝进行暗培养,培养温度为25℃。
6、如上步骤(4)培养至OD600为0.5-0.6,将培养好的菌液5000rpm离心10min弃上清,沉淀用IM培养基含有200μmol/L乙酰丁香酮和20μL 25%吐温80,重悬至OD600为0.6-0.7。
7、如上步骤(5)侵染液侵染步骤(2)的桑黄菌丝20min后,5000rpm离心10min,收集沉淀,0.2g沉淀物用1mL侵染液重悬,取200μL混合液体接种于含有200μmol/L乙酰丁香酮的Co-IM培养基,每个培养基约含有1.6×105个菌丝片段,共培养36h,培养温度为25℃。
8、如上步骤(6)首先将低熔点PDA培养基溶化后,冷却至29-30℃,在步骤(5)得到的共培养菌丝上覆盖含有4μg/mL潮霉素和300μg/mL头孢噻肟钠的低溶点PDA培养基,培养3-4天,长出新菌落,随后将菌落转移至新的含有4μg/mL潮霉素的PDA培养基,培养5-7天,选取长势旺盛的菌落提取DNA,利用PCR技术鉴定阳性菌株。
本发明的有益效果及优点如下:本发明构建的双元载体1301-SH-gpd可以在桑黄中表达,而且此载体可以利用NcoI单酶切,利用无缝克隆技术在桑黄gpd启动子后面添加目的基因构建重组载体,可用于研究基因功能和改造桑黄菌株。使用本发明的1301-SH-gpd载体构建表达外源基因的重组载体的过程简便、快速、经济、高效,可以快速完成基因表达载体的构建,具有很好的应用前景。首次将潮霉素作为筛选标记用于桑黄遗传转化,并测定出桑黄菌丝对潮霉素的筛选浓度为4μg/mL。本发明利用菌丝作为遗传转化受体,可以降低试验成本,并且本发明将菌丝匀浆,可以使菌丝产生较多的伤口,简化操作步骤的同时更有利于农杆菌的侵染。且菌丝再生能力强、速度快,从收集菌丝到获得转化株,桑黄菌丝遗传转化周期为9-13天。共培养过后,直接将低熔点PDA培养基(4μg/mL潮霉素,300μg/mL头孢噻肟钠)覆盖在共培养菌丝上,无需将菌丝转移和脱菌,简化了操作步骤,降低了污染率。本操作流程简单,可操作性强,不要求操作者拥有丰富的分子生物学实验的操作经验,克服了原生质体制备过程复杂、成本高的缺点。
附图说明
图1为1301-SH-gpd双元载体构建图;
图2为桑黄菌丝对潮霉素敏感性测试图;
图3为桑黄转化子在潮霉素筛选培养基上的筛选图;
图4为桑黄转化子PCR验证结果图,其中M为2000bp的Mark,1为野生型,2为转化子,3为载体1301-SH-gpd。
具体实施方式
下面实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法,下述实施例中所用的实验材料,如无特殊说明,均为自常规生化试剂商店购买得到的。
实验所用的原始质粒pCAMBIA-1301购买于生物技术公司,常见于市面。载体的克隆、冻融法转化步骤见分子克隆实验指南。
本发明中,所述桑黄遗传转化体系的构建方法,包括以下步骤(图1):
步骤一:桑黄双元载体1301-SH-gpd构建
①以pCAMBIA-1301载体为模板,用引物(画线部分为pCAMBIA-1301载体同源臂):
HYG-F:GGTACCGAGCTCGAATTCATGAAAAAGCCTGAACTCACCGC
HYG-R:CATTATTATGGAGAAACTCGAGCTATTTCTTTGCCCTCGGAC
进行PCR扩增。得到带有同源臂的HYG表达盒片段。
②将pCAMBIA-1301载体在XhoI和EcoRI酶的作用下进行酶切,得到酶切后的线性pCAMBIA-1301载体。
③将所述步骤①得到的线性pCAMBIA-1301载体和所述步骤②得到带有同源臂的HYG表达盒片段连接。
表1连接体系
Figure BDA0002525717350000061
得到1301-HYG载体。
④以桑黄总DNA为模板,用引物(画线部分为1301-HYG载体同源臂):
gpdZ-F:GGGTACCGAGCTCGAATTCAAGTGGCTTGAGTTTCGTCGTTGT
gpdZ-R:GGTGAGTTCAGGCTTTTTCATCACACAGAAAGTAAGCGCACATCG
进行PCR扩增,得到带有1301-HYG载体同源臂的gpd基因启动子片段,序列如SEQID No.11所示。
⑤将1301-HYG载体在EcoRI酶的作用下进行酶切,得到酶切后的线性载体。
⑥将所述步骤④得到的带有同源臂的gpd启动子和所述步骤⑤得到的线性载体连接。
表2连接体系
Figure BDA0002525717350000062
得到1301-gpd-HYG载体。
⑦以桑黄总DNA为模板,以序列(画线部分为1301-gpd-HYG载体同源臂)
gpdY-F:ACCTGCAGGCATGCAAGCTTAAGTGGCTTGAGTTTCGTCG
gpdY-R:TTACCCTCAGATCTACCATGGCACACAGAAAGTAAGCGCACATCG
进行PCR扩增,得到带有1301-gpd-HYG载体同源臂的gpd启动子片段,序列如SEQID No.12所示。
⑧将1301-gpd-HYG载体在HindIII和NcoI酶的作用下进行酶切,得到酶切后的线性载体。
⑨将所述步骤⑦得到的带有同源臂的gpd启动子片段和所述步骤⑧得到的线性载体连接。
表3连接体系
Figure BDA0002525717350000071
得到桑黄双元载体1301-SH-gpd,序列如SEQ ID No.13所示。
⑩本发明将所述步骤⑨得到的1301-SH-gpd载体转化入根癌农杆菌感受态中,培养1-2d,获得阳性菌。在本发明中,所述农杆菌转化优选的为冻融法。所述根癌农杆菌优选的为AGL-1,本发明对农杆菌感受态的来源没有任何限定。
步骤二:遗传转化受体制备
①将桑黄菌种接种到PD培养基中,180rpm,25℃振荡培养12天。
②将所述步骤①培养好的菌丝用匀浆仪无菌条件下粉碎20s,以10%的接种量接种于PD培养基中25℃静置培养8d,期间间或摇匀。
③将所述步骤②培养好的菌丝丝用匀浆仪无菌条件下粉碎20s,将液体置于50mL无菌离心管中,5000rpm离心10min,收集沉淀菌丝。
步骤三:桑黄菌丝对潮霉素敏感性测试
取步骤二沉淀菌丝,每0.2g菌丝用1mL蒸馏水重悬,取200μL重悬后的菌液接种在含不同浓度潮霉素:0μg/mL、2μg/mL、4μg/mL、6μg/mL、8μg/mL、10μg/mL的PDA平板上接种桑黄菌丝,观察菌丝生长情况,确定潮霉素(HYG)最佳浓度4μg/mL(图2)。
步骤四:农杆菌培养
①将含有1301-SH-gpd载体的AGL-1农杆菌在含有25μg/mL利福平和50μg/mL卡那霉素的PDA平板培养基画线,28℃培养2d。挑取PDA培养基上的单菌落接种到含有25μg/mL利福平和50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中,150rpm,25℃震荡培养1天。
②取所述步骤①培养好的菌液1mL加入到100mL LB液体培养基(50μg/mL卡那霉素)中,培养至OD600为0.5-0.6。
③将所述步骤②培养好的菌液5000rpm离心10min弃上清,用含有200μmol/L乙酰丁香酮和20μL 25%吐温80的IM培养基重悬至OD600为0.6-0.7,得到侵染液。
步骤五:侵染和共培养
①取所述步骤二③菌丝与步骤四③获得的侵染液混合,侵染20min。
②将所述步骤①液体离心,随后收集菌丝,每0.2g菌丝用1mL侵染液重悬,得到共培养液。
③取所述步骤②获得的共培养液200μL于含有200μmol/L乙酰丁香酮的Co-IM培养基中,每个培养基约含有1.6×105个菌丝片段,用无菌涂布棒涂抹均匀,置于25℃培养36h。
步骤六:筛选阳性转化子
①首先将低溶点PDA培养基溶化后,冷却至29-30℃,在所述步骤五的共培养菌丝上覆盖含有4μg/mL潮霉素和300μg/mL头孢噻肟钠的低溶点PDA培养基,冷却至35℃,置于25℃培养3-4天,长出新菌落(图3)。
②将所述步骤①菌落转移至新的含有4μg/mL潮霉素的PDA培养基,置于25℃培养5~7天,选取长势旺盛的菌丝转入PDA培养基,置于25℃培养7~9天。
③提取所述步骤②菌丝的基因组DNA,用引物:
J1-F:GATCGTTCAAACATTTGGCAATA
J1-R:GATCTAGTAACATAGATGACACCG和
J2-F:CTATGATGATGATGATAGTTACAGA
J2-R:CGGTAGGAGTTGGCCCCAATCCAGT
以双元载体1301-SH-gpd、转化子和野生型DNA为模板进行PCR扩增。PCR结果显示,从转化子和双元载体1301-SH-gpd都能扩增出253bp和1013bp的预期DNA片段,但野生型中没有扩增产物(图4)。说明双元载体上的外源DNA片段已经整合到了桑黄转化子的基因组中。
本发明所述培养基配方为:
PDA培养基:马铃薯200g/L;葡萄糖20g/L;agar 18g/L。
PD培养基:PDA培养基不加agar。
低溶点PDA培养基:马铃薯200g/L;葡萄糖20g/L;低溶点agar 5g/L。
IM培养基(1L):K-buffer(KH2PO4 14.5g/100mL;K2HPO4 20g/100mL)10mL;M-Nbuffer(NaCl 3g/100mL;MgSO4·7H2O 3g/100mL)20mL;20%Glucose(W/V)5mL;0.01%FeSO4(W/V)10mL;20%(NH4)2NO3(W/V)2.5mL;1%CaCl2·2H2O(W/V)1mL;50%Glycerol 10mL;1MMES 40mL;ZnSO4·7H2O 0.001g/L;CuSO4·5H2O 0.001g/L;MnSO4·H2O 0.001g/L;NaMoO4·2H2O 0.001g/L;H3BO3 0.001g/L。
CO-IM培养基:K-buffer(KH2PO4 14.5g/100mL;K2HPO4 20g/100mL)10mL;M-Nbuffer(NaCl 3g/100mL;MgSO4·7H2O 3g/100mL)20mL;20%Glucose(W/V)2.5mL;0.01%FeSO4(W/V)10mL;20%(NH4)2NO3(W/V)2.5mL;1%CaCl2·2H2O(W/V)1mL;50%Glycerol10mL;1M MES 40mL;ZnSO4·7H2O 0.001g/L;CuSO4·5H2O 0.001g/L;MnSO4·H2O 0.001g/L;NaMoO4·2H2O 0.001g/L;H3BO3 0.001g/L;agar 18g/L。
序列表
<110> 东北林业大学
<120> 用于桑黄遗传表达的重组载体及构建方法和遗传转化方法
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<170> SIPOSequenceListing 1.0
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<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
gatctagtaa catagatgac accg 24
<210> 9
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
ctatgatgat gatgatagtt acaga 25
<210> 10
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
cggtaggagt tggccccaat ccagt 25
<210> 11
<211> 1462
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
gggtaccgag ctcgaattca agtggcttga gtttcgtcgt tgtgattttg tggttatatt 60
actcacctat gcgatatgcg atatgccata tgattgaagt ttgtgtgtat gtaggttcgg 120
tatgcgatcg attatttatg agagaaccac tatccttccg tgtgttgata tgatattgag 180
gagcgatcaa tttccttttc cgccagtgaa gtaaagagaa tgtcatgata gcgagagtat 240
gatttatgac atcggatcgt atatcgatag tgtaagagag gtatggcagt ggaaccaagc 300
agcgcgtcca gctcgtggtg gctaaagatc aagtcgtcag gccagaatct gtggatctca 360
aaattgtcaa accgtcgaca cgatcacgtg gataccaaaa tagatgcaaa caaagagggg 420
tcattggata accatgtaaa ggaattggaa ttgttagcta atgattgact cgtatcattc 480
cgtatagccg aggcttactc gatgagagat ggaatgatgc atgctcggag tccgacgggt 540
gaacgtggtt gcagtacgta gcatatgatt caggttcgtc gtcgtcgacg agagcttgat 600
gtatcgtcag acggctcatc agggcttcat cgtggtaaga ttgggaggag actccgaatc 660
cgagcgtttc gcatctgctc gtcgtgcaga tgcggagata gaacagtaag agttatttcg 720
agcatagatg ggacggaagt agttccttat gcacgttcgt cgcggttcgg agacggaggt 780
gaagtaagtt cggggatatg gacatcgcca tcgctcatgc tcgggtggcg gctctcgagc 840
cgttgatgcg ttgagtcagc atacgcaata attttctttc gtactctcct ggacgcccgg 900
aattaaagaa tagggtgagt gataacacca cttggtgaga aacggccgca tgtgcaccga 960
cgcggtacgg gcgccgagga ggtagagact gagagggtcg gccgtcgagt aacaacggaa 1020
catcgggtcg aataccggtt cacaacatca tcataactca agttaaaaaa tcgacaaaaa 1080
tgaagaataa aatgtacgct ggtcgacgtg caataggagg ctcaatacat ttaaattcgc 1140
cagaaggagt cgagggaagg gacgagaaac acgtttaatc cggtttcata cgatccaacg 1200
gcgcggcgtc ggccgtgaac cgtgagccgt gacctcagtg accccccccc aacgcataca 1260
atacacaatg cgcatatata aagccctaac ccctctcgtc ccttcttgtc ctcgagcatc 1320
caccacattc tacagctcat tcatctactt tctatagact tgcatccata tcatcatggt 1380
gagtgatatg ttgggccggg atgtgctgat ggctcgcgat gtgcgcttac tttctgtgtg 1440
atgaaaaagc ctgaactcac cg 1462
<210> 12
<211> 1480
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 12
acctgcaggc atgcaagctt acctgcaggc atgcaagctt aagtggcttg agtttcgtcg 60
ttgtgatttt gtggttatat tactcaccta tgcgatatgc gatatgccgt atgattgaag 120
tttgtgtgta tgtaggttcg gtatgcgatc gattatttat gagagaacca ctatccttcc 180
gtgtgttgat atgatattga ggagcgatca atttcctttt ccgccagtga agtaaagaga 240
atgtcatgat agcgagagta tgatttatga catcggatcg tatatcgata gtgtaagaga 300
ggtatggcag tggaaccaag cagcgcgtcc agctcgtggt ggctaaagat caagtcgtca 360
ggccagaatc tgtggatctc aaaattgtca aaccgtcgac acgatcacgt ggataccaaa 420
atagatgcaa acaaagaggg gtcattggat aaccatgtaa aggaattgga attgttagct 480
aatgattgac tcgtatcatt ccgtatagcc gaggcttact cgatgagaga tggaatgatg 540
catgctcgga gtccgacggg tgaacgtggt tgcagtacgt agcatatgat tcaggttcgt 600
cgtcgtcgac gagagcttga tgtatcgtca gacggctcat cagggcttca tcgtggtaag 660
attgggagga gactccgaat ccgagcgttt cgcatctgct cgtcgtgcag atgcggagat 720
agaacagtaa gagttatttc gagcatagat gggacggaag tagttcctta tgcacgttcg 780
tcgcggttcg gagacggagg tgaagtaagt tcggggatat ggacatcgcc atcgctcatg 840
ctcgggtggc ggctctcgag ccgttgatgc gttgagtcag catacgcaat aattttcttt 900
cgtactctcc tggacgctcg gaattaaaga atagggtgag tgataacacc acttggtgag 960
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ggccgtcgag taacaacgga acatcgggtc gaataccggt tcacaacatc atcataactc 1080
aagttaaaaa atcgacaaaa atgaagaata aaatgtacgc tggtcgacgt gcaataggag 1140
gctcaataca ttaattcgcc agaaggagtt gagggaaggg acgagaaaca cgtttaatcc 1200
ggtttcatac gatccaacgg cgcggcgtcg gccgtgaacc gtgagccgtg acctcagtga 1260
ccccccccaa cgcatacaat acacaatgcg catatataaa gccctaaccc ctctcgtccc 1320
ttcttgtcct cgagcatcca ccacattcta cagctcattc atctactttc tatagacttg 1380
catccatatc atcatggtga gtgatatgtt gggccgggat gtgctgatgg ctcgcgatgt 1440
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<210> 13
<211> 12837
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 13
gatctgaggg taaatttcta gtttttctcc ttcattttct tggttaggac ccttttctct 60
ttttattttt ttgagctttg atctttcttt aaactgatct attttttaat tgattggtta 120
tggtgtaaat attacatagc tttaactgat aatctgatta ctttatttcg tgtgtctatg 180
atgatgatga tagttacaga accgacgact cgtccgtcct gtagaaaccc caacccgtga 240
aatcaaaaaa ctcgacggcc tgtgggcatt cagtctggat cgcgaaaact gtggaattga 300
tcagcgttgg tgggaaagcg cgttacaaga aagccgggca attgctgtgc caggcagttt 360
taacgatcag ttcgccgatg cagatattcg taattatgcg ggcaacgtct ggtatcagcg 420
cgaagtcttt ataccgaaag gttgggcagg ccagcgtatc gtgctgcgtt tcgatgcggt 480
cactcattac ggcaaagtgt gggtcaataa tcaggaagtg atggagcatc agggcggcta 540
tacgccattt gaagccgatg tcacgccgta tgttattgcc gggaaaagtg tacgtatcac 600
cgtttgtgtg aacaacgaac tgaactggca gactatcccg ccgggaatgg tgattaccga 660
cgaaaacggc aagaaaaagc agtcttactt ccatgatttc tttaactatg ccggaatcca 720
tcgcagcgta atgctctaca ccacgccgaa cacctgggtg gacgatatca ccgtggtgac 780
gcatgtcgcg caagactgta accacgcgtc tgttgactgg caggtggtgg ccaatggtga 840
tgtcagcgtt gaactgcgtg atgcggatca acaggtggtt gcaactggac aaggcactag 900
cgggactttg caagtggtga atccgcacct ctggcaaccg ggtgaaggtt atctctatga 960
actcgaagtc acagccaaaa gccagacaga gtctgatatc tacccgcttc gcgtcggcat 1020
ccggtcagtg gcagtgaagg gccaacagtt cctgattaac cacaaaccgt tctactttac 1080
tggctttggt cgtcatgaag atgcggactt acgtggcaaa ggattcgata acgtgctgat 1140
ggtgcacgac cacgcattaa tggactggat tggggccaac tcctaccgta cctcgcatta 1200
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aactgctgct gtcggctttc agctgtcttt aggcattggt ttcgaagcgg gcaacaagcc 1320
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caacgaaccg gatacccgtc cgcaaggtgc acgggaatat ttcgcgccac tggcggaagc 1500
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tcacaccgat accatcagcg atctctttga tgtgctgtgc ctgaaccgtt attacggatg 1620
gtatgtccaa agcggcgatt tggaaacggc agagaaggta ctggaaaaag aacttctggc 1680
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cgggctgcac tcaatgtaca ccgacatgtg gagtgaagag tatcagtgtg catggctgga 1800
tatgtatcac cgcgtctttg atcgcgtcag cgccgtcgtc ggtgaacagg tatggaattt 1860
cgccgatttt gcgacctcgc aaggcatatt gcgcgttggc ggtaacaaga aagggatctt 1920
cactcgcgac cgcaaaccga agtcggcggc ttttctgctg caaaaacgct ggactggcat 1980
gaacttcggt gaaaaaccgc agcagggagg caaacaagct agccaccacc accaccacca 2040
cgtgtgaatt acaggtgacc agctcgaatt tccccgatcg ttcaaacatt tggcaataaa 2100
gtttcttaag attgaatcct gttgccggtc ttgcgatgat tatcatataa tttctgttga 2160
attacgttaa gcatgtaata attaacatgt aatgcatgac gttatttatg agatgggttt 2220
ttatgattag agtcccgcaa ttatacattt aatacgcgat agaaaacaaa atatagcgcg 2280
caaactagga taaattatcg cgcgcggtgt catctatgtt actagatcgg gaattaaact 2340
atcagtgttt gacaggatat attggcgggt aaacctaaga gaaaagagcg tttattagaa 2400
taacggatat ttaaaagggc gtgaaaaggt ttatccgttc gtccatttgt atgtgcatgc 2460
caaccacagg gttcccctcg ggatcaaagt actttgatcc aacccctccg ctgctatagt 2520
gcagtcggct tctgacgttc agtgcagccg tcttctgaaa acgacatgtc gcacaagtcc 2580
taagttacgc gacaggctgc cgccctgccc ttttcctggc gttttcttgt cgcgtgtttt 2640
agtcgcataa agtagaatac ttgcgactag aaccggagac attacgccat gaacaagagc 2700
gccgccgctg gcctgctggg ctatgcccgc gtcagcaccg acgaccagga cttgaccaac 2760
caacgggccg aactgcacgc ggccggctgc accaagctgt tttccgagaa gatcaccggc 2820
accaggcgcg accgcccgga gctggccagg atgcttgacc acctacgccc tggcgacgtt 2880
gtgacagtga ccaggctaga ccgcctggcc cgcagcaccc gcgacctact ggacattgcc 2940
gagcgcatcc aggaggccgg cgcgggcctg cgtagcctgg cagagccgtg ggccgacacc 3000
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tccctaatca tcgaccgcac ccggagcggg cgcgaggccg ccaaggcccg aggcgtgaag 3120
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ttccgtgagg acgcattgac cgaggccgac gccctggcgg ccgccgagaa tgaacgccaa 3360
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ccagcttggc cgctgaagaa accgagcgcc gccgtctaaa aaggtgatgt gtatttgagt 3600
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ggccgggtac gagctgccca ttcttgagtc ccgtatcacg cagcgcgtga gctacccagg 4200
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ggtccaggcg ctggccgctg aaattaaatc aaaactcatt tgagttaatg aggtaaagag 4320
aaaatgagca aaagcacaaa cacgctaagt gccggccgtc cgagcgcacg cagcagcaag 4380
gctgcaacgt tggccagcct ggcagacacg ccagccatga agcgggtcaa ctttcagttg 4440
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atttttccgc ctaaaactct ttaaaactta ttaaaactct taaaacccgc ctggcctgtg 6060
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gcatcaggcg ctcttccgct tcctcgctca ctgactcgct gcgctcggtc gttcggctgc 6600
ggcgagcggt atcagctcac tcaaaggcgg taatacggtt atccacagaa tcaggggata 6660
acgcaggaaa gaacatgtga gcaaaaggcc agcaaaaggc caggaaccgt aaaaaggccg 6720
cgttgctggc gtttttccat aggctccgcc cccctgacga gcatcacaaa aatcgacgct 6780
caagtcagag gtggcgaaac ccgacaggac tataaagata ccaggcgttt ccccctggaa 6840
gctccctcgt gcgctctcct gttccgaccc tgccgcttac cggatacctg tccgcctttc 6900
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ctggtagcgg tggttttttt gtttgcaagc agcagattac gcgcagaaaa aaaggatctc 7320
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ccacatcggc cagatcgtta ttcagtaagt aatccaattc ggctaagcgg ctgtctaagc 7800
tattcgtata gggacaatcc gatatgtcga tggagtgaaa gagcctgatg cactccgcat 7860
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aaagttggcg tataacatag tatcgacgga gccgattttg aaaccgcggt gatcacaggc 8400
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aacgtgtttc tcgtcccttc cctcaactcc ttctggcgaa ttaatgtatt gagcctccta 10260
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ctcagtctct acctcctcgg cgcccgtacc gcgtcggtgc acatgcggcc gtttctcacc 10440
aagtggtgtt atcactcacc ctattcttta attccgagcg tccaggagag tacgaaagaa 10500
aattattgcg tatgctgact caacgcatca acggctcgag agccgccacc cgagcatgag 10560
cgatggcgat gtccatatcc ccgaacttac ttcacctccg tctccgaacc gcgacgaacg 10620
tgcataagga actacttccg tcccatctat gctcgaaata actcttactg ttctatctcc 10680
gcatctgcac gacgagcaga tgcgaaacgc tcggattcgg agtctcctcc caatcttacc 10740
acgatgaagc cctgatgagc cgtctgacga tacatcaagc tctcgtcgac gacgacgaac 10800
ctgaatcata tgctacgtac tgcaaccacg ttcacccgtc ggactccgag catgcatcat 10860
tccatctctc atcgagtaag cctcggctat acggaatgat acgagtcaat cattagctaa 10920
caattccaat tcctttacat ggttatccaa tgacccctct ttgtttgcat ctattttggt 10980
atccacgtga tcgtgtcgac ggtttgacaa ttttgagatc cacagattct ggcctgacga 11040
cttgatcttt agccaccacg agctggacgc gctgcttggt tccactgcca tacctctctt 11100
acactatcga tatacgatcc gatgtcataa atcatactct cgctatcatg acattctctt 11160
tacttcactg gcggaaaagg aaattgatcg ctcctcaata tcatatcaac acacggaagg 11220
atagtggttc tctcataaat aatcgatcgc ataccgaacc tacatacaca caaacttcaa 11280
tcatacggca tatcgcatat cgcataggtg agtaatataa ccacaaaatc acaacgacga 11340
aactcaagcc acttgaattc gagctcggta cccggggatc ctctagagtc gacctgcagg 11400
catgcaagct taagtggctt gagtttcgtc gttgtgattt tgtggttata ttactcacct 11460
atgcgatatg cgatatgccg tatgattgaa gtttgtgtgt atgtaggttc ggtatgcgat 11520
cgattattta tgagagaacc actatccttc cgtgtgttga tatgatattg aggagcgatc 11580
aatttccttt tccgccagtg aagtaaagag aatgtcatga tagcgagagt atgatttatg 11640
acatcggatc gtatatcgat agtgtaagag aggtatggca gtggaaccaa gcagcgcgtc 11700
cagctcgtgg tggctaaaga tcaagtcgtc aggccagaat ctgtggatct caaaattgtc 11760
aaaccgtcga cacgatcacg tggataccaa aatagatgca aacaaagagg ggtcattgga 11820
taaccatgta aaggaattgg aattgttagc taatgattga ctcgtatcat tccgtatagc 11880
cgaggcttac tcgatgagag atggaatgat gcatgctcgg agtccgacgg gtgaacgtgg 11940
ttgcagtacg tagcatatga ttcaggttcg tcgtcgtcga cgagagcttg atgtatcgtc 12000
agacggctca tcagggcttc atcgtggtaa gattgggagg agactccgaa tccgagcgtt 12060
tcgcatctgc tcgtcgtgca gatgcggaga tagaacagta agagttattt cgagcataga 12120
tgggacggaa gtagttcctt atgcacgttc gtcgcggttc ggagacggag gtgaagtaag 12180
ttcggggata tggacatcgc catcgctcat gctcgggtgg cggctctcga gccgttgatg 12240
cgttgagtca gcatacgcaa taattttctt tcgtactctc ctggacgctc ggaattaaag 12300
aatagggtga gtgataacac cacttggtga gaaacggccg catgtgcacc gacgcggtac 12360
gggcgccgag gaggtagaga ctgagagggt cggccgtcga gtaacaacgg aacatcgggt 12420
cgaataccgg ttcacaacat catcataact caagttaaaa aatcgacaaa aatgaagaat 12480
aaaatgtacg ctggtcgacg tgcaatagga ggctcaatac attaattcgc cagaaggagt 12540
tgagggaagg gacgagaaac acgtttaatc cggtttcata cgatccaacg gcgcggcgtc 12600
ggccgtgaac cgtgagccgt gacctcagtg acccccccca acgcatacaa tacacaatgc 12660
gcatatataa agccctaacc cctctcgtcc cttcttgtcc tcgagcatcc accacattct 12720
acagctcatt catctacttt ctatagactt gcatccatat catcatggtg agtgatatgt 12780
tgggccggga tgtgctgatg gctcgcgatg tgcgcttact ttctgtgtgc catggta 12837

Claims (10)

1.一种用于桑黄遗传表达的重组双元载体1301-SH-gpd,其特征在于:其序列如SEQ IDNo:13所示。
2.根据权利要求1所述的一种用于桑黄遗传表达的重组双元载体1301-SH-gpd的构建方法,其特征在于,步骤如下:
(a)以pCAMBIA-1301载体为模板,设计引物组:
HYG-F,其序列如SEQ ID No:1所示,
HYG-R,其序列如SEQ ID No:2所示,
进行PCR扩增,得到带有同源臂的潮霉素(HYG)表达盒片段;
(b)将pCAMBIA-1301载体双酶切,切除左边的CaMV35S启动子区和HYG潮霉素区,得到线性化pCAMBIA-1301载体,
(c)利用无缝克隆技术,将步骤a带有同源臂的HYG表达盒片段与步骤b线性化载体连接,得到重组载体1301-HYG,
(d)以桑黄DNA为模板,设计引物组:
gpdZ-F,其序列如SEQ ID No:3所示,
gpdZ-R,其序列如SEQ ID No:4所示,
进行PCR扩增,得到带有1301-HYG载体同源臂的gpd基因启动子片段,其序列如SEQ IDNo:11所示,
(e)将步骤c得到的1301-HYG载体单酶切,得到线性化载体,
(f)将步骤d得到的带有同源臂的gpd启动子和步骤e得到的线性化载体连接,得到重组载体1301-gpd-HYG,
(g)以桑黄DNA为模板,设计引物组:
gpdY-F,其序列如SEQ ID No:5所示,
gpdY-R,其序列如SEQ ID No:6所示,
进行PCR扩增,得到带有1301-gpd-HYG载体同源臂的gpd启动子片段,其序列如SEQ IDNo:12所示,
(h)将步骤f得到的1301-gpd-HYG载体双酶切,切除右边的CaMV35S启动子区,得到线性化载体,
(i)将步骤g得到的带有同源臂的gpd启动子和步骤h得到的线性化载体连接,得到重组双元载体1301-SH-gpd,其序列如SEQ ID No:13所示。
3.一种根癌农杆菌介导的桑黄遗传转化方法,采用如权利要求1所述的一种用于桑黄遗传表达的重组双元载体1301-SH-gpd,其特征在于:包括以下步骤:
(1)利用冻融法将所述的重组双元载体1301-SH-gpd转入根癌农杆菌AGL-1感受态,培养获得阳性菌,
(2)将培养好的桑黄菌丝无菌条件下粉碎,随后将液体菌丝离心,弃上清,收集沉淀菌丝;
(3)含不同浓度潮霉素:0μg/mL、2μg/mL、4μg/mL、6μg/mL、8μg/mL、10μg/mL的PDA平板上接种桑黄菌丝,得到适用于桑黄遗传转化的潮霉素浓度;
(4)将含有重组双元载体1301-SH-gpd的AGL-1农杆菌菌液加入到100mL含有50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中;将培养好的菌液离心,弃上清,沉淀用IM培养基重悬,得到侵染液;
(5)取步骤(4)得到的侵染液侵染步骤(2)得到的桑黄菌丝,共培养36h;
(6)在步骤(5)得到的共培养菌丝上覆盖低熔点PDA培养基培养,长出新菌落,随后将菌落转移至新的含有适用于桑黄遗传转化浓度的潮霉素的PDA培养基培养,选取长势旺盛的菌落提取DNA,利用PCR技术鉴定阳性菌株。
4.根据权利要求3所述的一种根癌农杆菌介导的桑黄遗传转化方法,其特征在于:所述的适用于桑黄遗传转化的潮霉素浓度为4μg/mL。
5.根据权利要求3或4所述的一种根癌农杆菌介导的桑黄遗传转化方法,其特征在于:步骤(6)利用PCR技术鉴定阳性菌株的方法如下:
设计引物:
J1-F,其序列如SEQ ID No:7所示
J1-R,其序列如SEQ ID No:8所示
J2-F:其序列如SEQ ID No:9所示
J2-R:其序列如SEQ ID No:10所示;
以重组双元载体1301-SH-gpd、转化子和野生型DNA为模板进行PCR扩增,结果显示,从转化子和重组双元载体1301-SH-gpd都能扩增出253bp和1013bp的预期DNA片段,但野生型中没有扩增产物,说明重组双元载体上的外源DNA片段已经整合到了桑黄转化子的基因组中。
6.根据权利要求3或4所述的一种根癌农杆菌介导的桑黄遗传转化方法,其特征在于:步骤(1)中重组双元载体1301-SH-gpd转入根癌农杆菌AGL-1感受态,28℃培养1-2天。
7.根据权利要求3或4所述的一种根癌农杆菌介导的桑黄遗传转化方法,其特征在于:步骤(2)菌丝匀浆20s,随后将菌丝置于离心管,5000rpm离心10min,收集沉淀菌丝。
8.根据权利要求3或4所述的一种根癌农杆菌介导的桑黄遗传转化方法,其特征在于:步骤(4)培养至OD600为0.5-0.6,将培养好的菌液5000rpm离心10min弃上清,沉淀用IM培养基含有200μmol/L乙酰丁香酮和20μL 25%吐温80,重悬至OD600为0.6-0.7。
9.根据权利要求8所述的一种根癌农杆菌介导的桑黄遗传转化方法,其特征在于:步骤(5)侵染液侵染步骤(2)的桑黄菌丝20min后,5000rpm离心10min,收集沉淀,0.2g沉淀物用1mL侵染液重悬,取200μL混合液体接种于含有200μmol/L乙酰丁香酮的Co-IM培养基,每个培养基约含有1.6×105个菌丝片段,共培养36h,培养温度为25℃。
10.根据权利要求3或4所述的一种根癌农杆菌介导的桑黄遗传转化方法,其特征在于:步骤(6)首先将低熔点PDA培养基溶化后,冷却至29-30℃,在步骤(5)得到的共培养菌丝上覆盖含有4μg/mL潮霉素和300μg/mL头孢噻肟钠的低熔点PDA培养基,培养3-4天,长出新菌落,随后将菌落转移至新的含有4μg/mL潮霉素的PDA培养基,培养5-7天,选取长势旺盛的菌落提取DNA,利用PCR技术鉴定阳性菌株。
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