CN111593034B

CN111593034B - 利用β-1,6-葡聚糖酶制备低聚龙胆糖的方法及其应用

Info

Publication number: CN111593034B
Application number: CN202010590774.XA
Authority: CN
Inventors: 吴敬; 夏伟; 徐星豪
Original assignee: Jiangnan University
Current assignee: Jiangnan University
Priority date: 2020-06-24
Filing date: 2020-06-24
Publication date: 2022-07-05
Anticipated expiration: 2040-06-24
Also published as: CN111593034A; WO2021258629A1; JP7295970B2; JP2022542737A

Abstract

本发明涉及利用β‑1,6‑葡聚糖酶制备低聚龙胆糖的方法及其应用，属于基因工程和发酵工程技术领域。本发明首先提供了一种利用对龙胆二糖具有转糖基活性的β‑1,6‑葡聚糖酶TcBgn，其可在加酶量较低的情况下将葡萄糖转化为低聚龙胆糖，且转化率高，可显著降低生产成本。本发明还将β‑1,6‑葡聚糖酶与β‑葡萄糖苷酶双酶复配制备低聚龙胆糖，利用双酶复配体系将葡萄糖转化为龙胆二糖和龙胆三糖，转化率高，且显著提高了龙胆三糖在产物中的比重。因而，β‑1,6‑葡聚糖酶单酶或双酶复配制备低聚龙胆糖的方法，均具有较好的工业化应用价值。

Description

利用β-1,6-葡聚糖酶制备低聚龙胆糖的方法及其应用

技术领域

本发明涉及利用β-1,6-葡聚糖酶制备低聚龙胆糖的方法及其应用，属于基因工程和发酵工程技术领域。

背景技术

低聚龙胆糖是葡萄糖以β-1，6糖苷键连接形成的功能性低聚糖，包括龙胆二糖和少量的三、四糖。低聚龙胆糖不被人体肠道消化吸收，但却有利于双歧杆菌和乳酸菌的繁殖和生长，适合糖尿病等人群食用，其高保湿性能有利于保持食品中的水分，可防止淀粉老化；同时低聚龙胆糖耐热性高，适用于需要高温处理的食品；其成分中的龙胆三糖具有独特的、柔和的柔和的提神苦味，具有良好的保健效果。目前，低聚龙胆糖被广泛运用于巧克力、冰淇凌、咖啡、调味品、烘烤食品和饮料中。

低聚龙胆糖酶法生产相关研究主要集中在利用β-葡萄糖苷酶以葡萄糖为底物通过逆水解缩合作用形成产物，但目前报道的β-葡萄糖苷酶在低聚龙胆糖生产过程中主要存在三个问题，一是低聚龙胆糖产率低，二是产物中只含有龙胆二糖，未检测到龙胆三糖及更高聚合度的低聚龙胆糖组分，三是用酶成本高。研究资料显示，龙胆三糖和龙胆四糖具有比龙胆二糖更好的促双歧杆菌益生活性。

β-1,6-葡聚糖酶(EC 3.2.1.75)是一种可水解β-1,6葡聚糖的糖苷水解酶，水解终产物为龙胆二糖。然而，部分研究显示，自然界中还存在部分β-1,6-葡聚糖酶对龙胆二糖具有微弱的水解活性，可利用龙胆二糖为底物转苷合成龙胆三糖甚至四糖。如Fujimoto等以聚合度为2～6的低聚龙胆糖为底物测试β-葡聚糖酶时发现，随着聚合度的降低，酶对底物的水解活力也会随之下降，假定对六糖的水解活力为100％，那么对于二糖则不到1％，而只有对二糖具备一定水解活力的酶，才能够以龙胆二糖为底物合成更高聚合度的低聚龙胆糖。由此可见，在目前的生产和研究中，对于如何制备聚合度更高的龙胆三糖仍然是一个亟待解决的问题。

发明内容

为解决目前存在的问题，本发明提出一种利用β-1,6-葡聚糖酶制备低聚龙胆糖的方法及其应用，提高低聚龙胆糖的转化率和产物中龙胆三糖的占比，提升产品品质。

本发明的第一个目的是提供一种利用β-1,6-葡聚糖酶单酶法制备低聚龙胆糖的方法。

在本发明的一种实施方式中，所述方法是以葡萄糖为底物。

在本发明的一种实施方式中，所述β-1,6-葡聚糖酶是来源于解纤维素蓝状菌Talaromycescellulolyticus的β-1,6-葡聚糖酶TcBgn，其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。

在本发明的一种实施方式中，以70～90％的葡萄糖为底物，β-1,6-葡聚糖酶加酶量为400～1600U/g葡萄糖，在pH 3.5～4.5、温度40～50℃下进行酶反应，反应48～96h。

本发明的第二个目的是提供一种利用β-葡萄糖苷酶和β-1,6-葡聚糖酶协同制备低聚龙胆糖的方法。

在本发明的一种实施方式中，所述方法是以葡萄糖为底物。

在本发明的一种实施方式中，所述β-葡萄糖苷酶和β-1,6-葡聚糖酶均来源于解纤维素蓝状菌Talaromycescellulolyticus；所述β-葡萄糖苷酶为β-葡萄糖苷酶TcBgl3A；所述β-1,6-葡聚糖酶为β-1,6-葡聚糖酶TcBgn；β-1,6-葡聚糖酶TcBgn的氨基酸序列如SEQ IDNO.1；β-葡萄糖苷酶TcBgl3A的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。

在本发明的一种实施方式中，以70～90％葡萄糖为底物，β-葡萄糖苷酶加酶量为200～600U/g葡萄糖，同时β-1,6-葡聚糖酶加酶量为400～800U/g葡萄糖，在pH 4.0～5.0、温度50～60℃下反应36～60h。

在本发明的一种实施方式中，所述低聚龙胆糖包括龙胆二糖和龙胆三糖。

本发明第三个目的是提供一种提高龙胆三糖产量的方法，所述方法以葡萄糖为底物。

在本发明的一种实施方式中，加入氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示的β-1,6-葡聚糖酶。

在本发明的一种实施方式中，加入氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示的β-1,6-葡聚糖酶，和氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示的β-葡萄糖苷酶。

本发明的第四个目的是提供表达所述β-1,6-葡聚糖酶的基因工程菌，所述基因工程菌以毕赤酵母为宿主，表达氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示的β-1,6-葡聚糖酶。

本发明的第五个目的是提供一种构建所述基因工程菌的方法，所述方法是将核苷酸序列为SEQ ID NO.3的编码β-1,6-葡聚糖酶的基因连接到表达载体pPIC9K上，得到重组质粒；将重组质粒转化至毕赤酵母KM71中，得到表达β-1,6-葡聚糖酶的基因工程菌。

本发明的第六个目的是提供一种生产β-1,6-葡聚糖酶的方法，所述方法包括：(1)分批发酵阶段：将种子液以8％-12％接种量接种于发酵罐中，控制温度28-30℃、初始转速180-220rpm、初始通气量7L/min、溶氧28-32％、pH 4.5-5.5；(2)补料发酵阶段：待溶氧上升至80-100％，以恒速流加甘油的方式进行补料培养，控制温度28-30℃、溶氧28-32％、pH4.5-5.5。

在本发明的一种实施方式中，当菌体OD₆₀₀在150～200，添加体积比为1～1.5％的甲醇、在25～30℃下诱导产酶，同时控制溶氧28-32％、pH 4.5-5.5，诱导96-144h。

本发明还保护所述利用β-1,6-葡聚糖酶单酶法制备低聚龙胆糖的方法，或利用β-葡萄糖苷酶和β-1,6-葡聚糖酶协同制备低聚龙胆糖的方法，或提高龙胆三糖产量的方法，或表达所述β-1,6-葡聚糖酶的基因工程菌，或生产β-1,6-葡聚糖酶的方法在制备低聚龙胆糖中的应用。

本发明的有益效果：

目前已报道以葡萄糖为底物酶法制备低聚龙胆糖最高水平为，绿色木霉Trichoderma viride来源的β-葡萄糖苷酶在80％葡萄糖的底物浓度下，加酶量为900U/g葡萄糖，制备低聚龙胆糖转化率为16.25％。

本发明所提供的β-1,6-葡聚糖酶TcBgn能以葡萄糖为底物单酶制备低聚龙胆糖，在加酶量400～800U/g葡萄糖时，低聚龙胆糖转化率可达19.21％～19.84％；在最佳反应条件下，以80％葡萄糖为底物制备低聚龙胆糖转化率可达到19.96％，高于目前已知报道以葡萄糖为底物单酶制备低聚龙胆糖的最高转化率，并且，三糖的比例可达1.35％～1.93％。

本发明还提出了一种利用β-1,6-葡聚糖酶和β-葡萄糖苷酶双酶复配制备低聚龙胆糖的方法，以上述β-1,6-葡聚糖酶和β-葡萄糖苷酶构建协同反应体系，在最佳反应条件下，以80％葡萄糖为底物，低聚龙胆糖转化率最高可达到23.83％，且产品组分中龙胆三糖含量明显增加，三糖比例可达2.97％～4.00％，为目前报道中以葡萄糖为底物制备得到的最高产率，极大提升了产品品质。

附图说明

图1是单酶法或双酶法制备低聚龙胆糖的方法示意图。

图2是重组β-葡萄糖苷酶TcBgl3A在3.6L罐发酵上清酶活曲线和SDS-PAGE电泳图。

图3是重组β-1,6葡聚糖酶TcBgn在3.6L罐发酵上清酶活曲线和SDS-PAGE电泳图；

图4是温度和pH对重组β-葡萄糖苷酶TcBgl3A酶活性的影响。

图5是温度和pH对重组β-1,6葡聚糖酶TcBgn酶活性的影响。

具体实施方式

培养基：

(1)MD固体培养基：YNB 13.4g/L，生物素4×10^-4g/L，葡萄糖20g/L，琼脂20g/L。

(2)YPD培养基：蛋白胨20g/L，酵母提取物10g/L，葡萄糖20g/L，固体培养基添加20g/L琼脂

(3)BMGY培养基：YNB 13.4g/L，甘油10g/L，生物素4×10^-4g/L，0.1mol/L磷酸钾缓冲溶液(pH 6.0)，蛋白胨20g/L，酵母粉10g/L

(4)BMMY培养基：YNB 13.4g/L，甲醇1％，生物素4×10^-4g/L，0.1mol/L磷酸钾缓冲溶液(pH 6.0)，蛋白胨20g/L，酵母粉10g/L

(5)发酵种子培养基：酵母粉5.0g/L，胰蛋白胨10.0g/L，葡萄糖10.0g/L，甘油30g/L。

(6)BSM培养基：85％磷酸26.7mL/L，CaSO₄ 0.93g/L，K₂SO₄ 18.2g/L，MgSO₄·7H₂O14.9g/L，KOH 4.13g/L，甘油30.0g/L，微量元素盐溶液4.32mL/L。

(7)生长阶段补料培养基：80％甘油，4.92mL/L微量元素液。

(8)诱导阶段补料培养基：100％甲醇，12.5mL/L微量元素液。高密度发酵用100％氨水和50％磷酸来调节pH。

β-葡萄糖苷酶酶活力分析：

(1)酶活单位定义

每毫升酶液每分钟水解pNPG产生1μmol的对硝基苯酚的酶活力为一个酶活单位。

(2)酶活力测定步骤

反应体系为1mL，pH 5.0的醋酸缓冲液960μL，加入适度稀释的粗酶液20μL，再加入20μL 100mmol/L的pNPG，在60℃恒温水浴中反应10min，10min后立即加入200μL的1mol/L的Na₂CO₃溶液终止反应，冰浴5min，于405nm处测光吸收值。以加热失活的酶液按照同样的方法处理作空白。

β-1,6-葡聚糖酶活力分析：

(1)酶活单位定义

每毫升酶液每分钟水解石耳多糖产生1μmol的葡萄糖的酶活力为一个酶活单位。

(2)酶活力测定步骤

用50mM的pH 4.0柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液配制40g/L的石耳多糖溶液，取180μL的缓冲液并加入200μL的石耳多糖溶液混匀后置于一定温度的水浴锅中预热5min，再加入20μL一定稀释倍数的酶液，准确计时30min后加入600μL DNS终止反应，冰浴7min后加入2mL去离子水并于540nm处测吸光值，热处理使酶液失活并以同样的反应体系作为空白。

实施例1：β-1,6葡聚糖酶及β-葡萄糖苷酶毕赤酵母基因工程菌的构建

(1)构建β-1,6葡聚糖酶毕赤酵母基因工程菌

化学合成β-1,6-葡聚糖酶TcBgn编码基因(核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示)与毕赤酵母表达载体pPIC9K相连，得到重组质粒pPIC9K-TcBgn并转入Escherichia coli JM109中，酶切验证后，将重组质粒pPIC9K-TcBgn电转整合到毕赤酵母KM71中，然后将转化液涂布到MD平板上，在MD平板长出单克隆，然后挑取96个转化子转到新的MD板上并用10mL规格的小管筛选酶活力较高的转化子，即为得到的β-1,6葡聚糖酶毕赤酵母基因工程菌。

PCR扩增β-1,6-葡聚糖酶TcBgn基因所用引物(下划线处为酶切位点)：

F:5’-GGGAATTCATCCACAAACGAGTTACAACTCCG-3’，(SEQ ID NO.5)；

R:5’-GGGCGGCCGCTTAGACAGCAGGCAACACCCATGT-3’，(SEQ ID NO.6)。

(2)构建β-葡萄糖苷酶毕赤酵母基因工程菌

合成β-葡萄糖苷酶的编码基因(核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示)，构建所用的酶切位点、具体步骤等参照上述β-1,6葡聚糖酶毕赤酵母基因工程菌的构建，构建得到β-葡萄糖苷酶毕赤酵母基因工程菌。

实施例2：3.6L罐发酵生产β-葡萄糖苷酶和β-1,6-葡聚糖酶

(1)将实施例1制备得到的β-1,6葡聚糖酶毕赤酵母基因工程菌和β-葡萄糖苷酶毕赤酵母基因工程菌分别接种至YPD培养基中，在30℃、200rpm培养24h，培养至种子液的OD₆₀₀为1.3-1.5。

(2)分批发酵阶段：将种子液以8％-12％接种量接种于发酵罐中，控制温度28-30℃、初始转速180-220rpm、初始通气量7L/min、溶氧28-32％、pH 4.5-5.5；

(3)补料发酵阶段：待溶氧上升至80-100％，以恒速流加甘油的方式进行补料培养，控制温度28-30℃、溶氧28-32％、pH 4.5-5.5；

(4)诱导培养阶段：当菌体细胞浓度OD₆₀₀在100-200范围内，用甲醇流加仪流加甲醇诱导产酶，甲醇浓度控制在0.5-1.5％(v/v)，控制温度20-30℃、溶氧28-32％、pH 4.5-5.5，诱导96-144h。将发酵液离心取上清液，得到粗酶液。

在高密度发酵的诱导阶段，分别对初始诱导菌体OD₆₀₀、甲醇浓度、诱导温度做优化。

①初始诱导菌体OD₆₀₀的优化：设置初始诱导菌体OD₆₀₀为100、150、200，发酵144h测定β-1,6-葡聚糖酶酶活。

表1不同初始OD₆₀₀下蛋白酶酶活

②甲醇浓度的优化：在初始诱导菌体OD₆₀₀为150的条件下，分别设置甲醇浓度为0.5％(v/v)、1.0％、1.5％，发酵144h测定β-1,6-葡聚糖酶酶活。

表2不同甲醇浓度下β-1,6-葡聚糖酶酶活

③诱导温度的优化：在初始诱导菌体OD₆₀₀为150、甲醇浓度为1.0％(v/v)，设置诱导温度为20、25、30℃，发酵144h测定蛋白酶活。

表3不同诱导温度下β-1,6-葡聚糖酶酶活

根据同样的方法，对β-葡萄糖苷酶的发酵条件进行优化，结果表明：在初始诱导菌体OD₆₀₀为150，甲醇浓度1.0％，诱导温度为25℃的条件下，β-葡萄糖苷酶的产酶效果也较其他的条件更好。

在初始诱导菌体OD₆₀₀为150，甲醇浓度1.0％，诱导温度为25℃最佳发酵条件下，测得β-葡萄糖苷酶在发酵108h时达到最高酶活为350U/mL，β-1,6-葡聚糖酶在发酵144h时最高酶活1795U/mL，重组β-葡萄糖苷酶的SDS-PAGE电泳图见图2，β-1,6-葡聚糖酶蛋白SDS-PAGE电泳图见图3。

实施例3：β-葡萄糖苷酶的酶学性质

将得到的β-葡萄糖苷酶酶液用上述所述的酶活测定方法进行酶学定性，以pNPG为底物，在不同的温度下测酶活，结果表明β-葡萄糖苷酶的最适温度为60℃；然后在最适温度条件下设置不同pH梯度测β-葡萄糖苷酶的酶活，得出该酶的最适pH为4.5(图4)。

实施例4：β-1,6-葡聚糖酶的酶学性质

将得到的β-葡萄糖苷酶酶液进行酶学定性，以石耳多糖为底物，在不同的温度下测酶活，结果表明β-1,6-葡聚糖酶的最适温度为45℃。然后在最适温度条件下设置不同pH梯度测β-1,6-葡聚糖酶的酶活，得出该酶的最适pH为4.0(图5)。

实施例5：β-1,6-葡聚糖酶在低聚龙胆糖制备中的应用

以80％葡萄糖为底物，在pH 4.0、45℃反应条件下反应72h，设置不同β-1,6-葡聚糖酶加酶量对酶反应的影响(表4)，低聚龙胆糖累积含量在一定范围内随加酶量升高而增加。当加酶量为1600U/g时，低聚龙胆糖的产量能达到159.7g/L，转化率为19.96％，高于目前已知报道以葡萄糖为底物单酶制备低聚龙胆糖的最高转化率。

表4重组β-1,6葡聚糖酶加酶量对低聚龙胆糖转化率的影响

实施例6：β-葡萄糖苷酶和β-1,6-葡聚糖酶在协同制备低聚龙胆糖中的应用

以80％葡萄糖为底物，在pH 4.5、60℃反应条件下反应48h，确定β-葡萄糖苷酶的加酶量为400U/g，设置不同β-1,6-葡聚糖酶加酶量对酶反应的影响(表5)，低聚龙胆糖累积含量在一定范围内随加酶量升高而增加，但当β-1,6-葡聚糖酶的加酶量达到400U/g葡萄糖时，增加加酶量反而降低低聚龙胆糖的产量。所以选择β-1,6-葡聚糖酶的加酶量为400U/g葡萄糖时最合适，此时低聚龙胆糖的产量能达到190.6g/L，转化率为23.83％，其中龙胆二糖为19.83％，龙胆三糖为4.00％。双酶法制备低聚龙胆糖转化率显著高于单酶法，且产品组分中龙胆三糖含量明显提高，产品品质提升。

表5加酶量对双酶复配低聚龙胆糖转化率的影响

虽然本发明已以较佳实施例公开如上，但其并非用以限定本发明，任何熟悉此技术的人，在不脱离本发明的精神和范围内，都可做各种的改动与修饰，因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。

SEQUENCE LISTING

<110> 江南大学

<120> 利用β-1,6-葡聚糖酶制备低聚龙胆糖的方法及其应用

<160> 6

<170> PatentIn version 3.3

<210> 1

<211> 470

<212> PRT

<213> Talaromyces cellulolyticus

<400> 1

Ile His Lys Arg Val Thr Thr Pro Ala Ala Tyr Ala Ser Asn Ser Asp

1 5 10 15

Gly Ser Tyr Ser Leu Thr Ser Ile Thr Ala Pro Ile Gln Gly Ala Ala

20 25 30

Ser Pro Gly Ser Glu Ser Thr Trp Glu Leu Ser Ile Asp Asp Ser Leu

35 40 45

Ser Gly Tyr Lys Gln Thr Ile Thr Gly Phe Gly Ala Ala Val Thr Asp

50 55 60

Ala Thr Val Thr Ser Phe Asn Thr Leu Ser Ser Ser Glu Leu Ser Gln

65 70 75 80

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85 90 95

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100 105 110

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115 120 125

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130 135 140

Ser Leu Gln Ser Asp Leu Lys Val Leu Gly Ser Ser Trp Ser Pro Pro

145 150 155 160

Gly Trp Met Lys Leu Asn Ser Ala Ile Asp Gly Thr Thr Thr Asn Asn

165 170 175

Asn Leu Asn Asp Gly Tyr Leu Gly Thr Gly Val Gly Ser Ala Gly Tyr

180 185 190

Ser Ser Glu Phe Ala Gln Tyr Phe Val Lys Tyr Ile Gln Ala Tyr Glu

195 200 205

Ala Leu Gly Ala Asn Ile Asp Ala Ile Thr Ile Gln Asn Glu Pro Leu

210 215 220

Asn Ser Gln Ala Gly Tyr Pro Thr Met Tyr Met Phe Asp Tyr Glu Gln

225 230 235 240

Gly Asp Leu Ile Gln Ser Tyr Ile Gly Pro Ala Leu Ala Asn Ala Gly

245 250 255

Leu Asp Thr Ala Val Trp Ala Tyr Asp His Asn Thr Asn Val Pro Ser

260 265 270

Phe Pro Gln Asn Val Leu Asp Thr Ala Ser Gln Tyr Val Asp Thr Val

275 280 285

Ala Trp His Cys Tyr Asp Asp Ser Leu Asp Trp Ser Val Leu Thr Asp

290 295 300

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305 310 315 320

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325 330 335

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340 345 350

Asp Ser Ser Asn Gly Pro His Leu Ser Ser Gly Gly Cys Asp Thr Cys

355 360 365

Gln Gly Leu Val Thr Ile Asn Ser Asp Gly Thr Tyr Thr Leu Glu Arg

370 375 380

Ala Tyr Tyr Met Met Ala Gln Tyr Ser Lys Phe Ile Pro Thr Gly Ala

385 390 395 400

Ile Ile Leu Asp Gly Ser Gly Ser Tyr Thr Tyr Ser Gly Val Gly Gly

405 410 415

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<210> 2

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<212> PRT

<213> Talaromyces cellulolyticus

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20 25 30

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35 40 45

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115 120 125

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Leu His Glu Leu Tyr Leu Trp Pro Phe Ala Asp Ala Val Arg Ala Asn

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260 265 270

Ile Ser Ser Gly Gln Val Ala Gln Ser Arg Leu Asp Asp Met Val Thr

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290 295 300

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580 585 590

Ile Thr Val Ser Thr Gly Pro Thr Thr Gly Gln Ile Val Pro Gly Gly

595 600 605

Pro Ser Asp Leu Phe Glu Ser Val Gly Thr Val Thr Val Gln Val Ala

610 615 620

Asn Thr Gly Ser Val Ala Gly Ser Glu Val Ala Gln Leu Tyr Ile Gly

625 630 635 640

Leu Pro Ser Ser Ala Pro Ser Ser Pro Pro Lys Gln Leu Arg Gly Phe

645 650 655

Asp Lys Leu Ser Leu Ala Ala Gly Ala Ser Gly Thr Ala Thr Phe Asp

660 665 670

Leu Thr Arg Arg Asp Leu Ser Tyr Trp Asp Val Ser Lys Gln Lys Trp

675 680 685

Val Val Pro Ser Gly Ala Phe Thr Val Tyr Val Gly Ala Ser Ser Arg

690 695 700

Asp Ile Arg Leu Gln Gly Thr Phe Thr Pro Gly Gly Ser Ser Thr Thr

705 710 715 720

Ser Thr Ile Thr Ser Ser Lys Thr Ser Thr Thr Ile Ser Thr Ser Val

725 730 735

Thr Thr Ser Ser Ser Thr Thr Ala Lys Thr Thr Thr Thr Ser Ser Thr

740 745 750

Thr Ser Ser Ala Gly Pro Thr Gln Thr Pro Tyr Gly Gln Cys Gly Gly

755 760 765

Gln Gly Trp Thr Gly Pro Thr Val Cys Ser Ser Gly Trp Thr Cys Lys

770 775 780

Val Thr Asn Gln Trp Tyr Ser Gln Cys Leu Gln

785 790 795

<210> 3

<211> 1413

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 3

attcataaaa gggttacaac accagcagct tatgctagta actcagatgg cagttactcc 60

cttacgtcaa taacagcccc tatccaggga gccgcttcac ccggttccga gtcaacttgg 120

gaactttcca tagacgactc attgagtggc tacaaacaga ccatcaccgg cttcggtgcc 180

gctgttactg atgcaaccgt cacgtccttt aatactctgt caagttctga gctgtctcag 240

ttgttaaatg ttttaatgac atccgccggc gccgactttt ccctgatgag acatacgatc 300

ggttcaagtg atttgtctgg cgatcctgcc tatacttatg atgacaatgg aggcgcagtt 360

gacacttcca tgtcaggttt caacttggga gaccgtggca cggcaatggc cgaaatgttg 420

gcaaaaatga agagtctgca gtctgacctg aaagtcttgg gctcatcttg gtccccccca 480

ggatggatga aacttaactc tgctatcgat ggaaccacaa caaacaacaa cttaaatgac 540

ggttatttag gtacgggagt cggttctgcc ggttactcct ctgagtttgc ccagtatttc 600

gtcaaatata tacaagccta tgaagcctta ggcgcaaata tagacgcaat tacaattcaa 660

aatgaacccc taaactccca ggccggctac cctacaatgt acatgtttga ctatgagcaa 720

ggcgacctta tacagtctta tatcggtccc gcattggcaa atgcaggttt ggacacggca 780

gtgtgggcct acgaccataa caccaacgtg ccatcattcc cccaaaatgt gttggatacg 840

gcatcccaat acgttgacac ggttgcctgg cattgttatg atgacagtct tgattggtca 900

gtattgactg acttcaagaa ctctaacccc ggagtaacac agtacatgac agaatgttgg 960

accccagcat ctggtgcatg gtatcaggcc tccaatttta ccataggccc actacaaaat 1020

tgggcaagtg gcgtgatggc ctggactctg ggtactgact catctaatgg tccccatctg 1080

tccagtggtg gctgtgatac gtgtcaaggt ctggtgacga tcaactcaga tggtacatat 1140

acattggaga gagcttacta tatgatggca cagtactcaa aatttattcc tacgggagcc 1200

atcattctgg acggctcagg ttcctacacc tatagtggag tcggtggtat tcagtcagta 1260

gcctccttga accctgatgg taccaggacg gttgtcatac aaaatacatt tagtaacgac 1320

gtttacgtta cagtcagtac ttcctccggt caggagtggt caggcaatat acctaccgag 1380

tccgtagtca cctgggtttt gccagcagtg taa 1413

<210> 4

<211> 2388

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 4

caatccgcta gttggtctgc agcatattct aaggctacag cagccctttc caagctgtcc 60

caaaacgata aaataggaat ggttacggga gtgggatggg gcaaaggccc ctgtgtgggt 120

aacactgccg ctcccagtgg catctctttc ccctccttat gcatacagga ttcaccctta 180

ggcgtaagat acgccaatcc cgtaactgcc ttccccgcag gaaccaacgc aggcatgacg 240

tgggacagga ctctgatgaa ccagaggggc gcagctcttg gtgccgaaag taagggccta 300

ggtgtgcatg tgcaactagg acccgtcgcc ggcccacttg gcaaaattgc acaaggaggt 360

aggggttggg aaggctttgg aacggaccca tacctgtctg gtgtagcaat gattgaaaca 420

atatctggta tgcaatcatc aggaacccaa gcctgcgcca aacattatat aggtaatgag 480

caagagctaa accgtgaatc tatgtctagt aatatagatg acagaacgct acacgaattg 540

tatctatggc ccttcgctga tgccgttagg gctaacgtcg cctccgttat gtgctcttac 600

aaccaaatca atggaacatt ctcatgtgaa aacgaagaaa gtatgacagg tattctaaag 660

acggaattag gattccccgg atatatcatg tcagattggg acgcacaaca cacaactgtt 720

acttccgcta atagtggcct agatatgacg atgccaggca gtgattactc tgacactccc 780

tcttccgttc tttggggcca gaacttggcc aatgccatat catctggaca agtcgcccag 840

agtaggttag acgacatggt cacacgtatc ttagccgcat ggtatctagt cggacaagat 900

caaggatttc ccgcagtcgc ttttaatagt tggacaggag gacaagcatc tgttaatgtc 960

accagtaatc ataaccaagt agccagggct gttgccagag actccattgt gttattgaaa 1020

aacaccaatt caacgctgcc attaaacaaa ccctcttcta tagcaattat cggcacggat 1080

gcccagacca atccctctgg acccaatgca tgcacggata ggggttgtga tactggaacc 1140

ttagctatgg gttggggctc cggtacgtgt cagttcccat atttgacaga cccattgaca 1200

gctatcaaga caagagcagc atccgacgga actacaatca caactagtat ttccgataat 1260

ggctccgcag gcgctagtgt ggcccagtcc gctgagtacg caattgtatt tatcaattcc 1320

gattctggag aaggttacat tacagtcgaa ggagtggcag gtgacaggaa taatcttgat 1380

ccctggcact caggaaacgc ccttgtccaa agtgtggccg ctgtgaacaa aaaaacaata 1440

gtggtaattc atagtgtggg ccccgtaatc ttagagacta tattggccca gcccaatgtg 1500

gtagcagtcg tttgggcagg tatacctgga caggagagtg ggtccgcctt aactgacatt 1560

ctttacggaa gtactgctcc tagtggtaag ctaacttata ctattgcaaa acaggcttct 1620

gattacggta cagcagtcgt gtcaggttca gataattacc ccgaaggttt attcattgat 1680

taccgtcact tcgacaaaag taatattgag cccagatacg agttcggtta cggcttgtca 1740

tatacgacat ttggatacac taacctagca atcgatataa cggtaagtac cggccccact 1800

accggccaaa tagtaccagg aggacccagt gatctttttg agtcagtggg caccgtaacc 1860

gtccaggtag ctaatacagg gtccgtagca ggctccgaag tagctcagtt atatatcgga 1920

ctgccctcca gtgcaccatc atccccacca aagcaactac gtggcttcga taagctgtcc 1980

cttgctgccg gtgctagtgg aacagctact tttgatttga cccgtcgtga tctatcatat 2040

tgggatgttt caaaacagaa gtgggttgtc ccttctggtg cttttaccgt ttacgtgggt 2100

gcatcttcta gggacattag actgcagggt acctttacac ccggtggatc tagtacaaca 2160

tccacgatca cgtcaagtaa aacgtccact accatctcca catctgttac tacctcatca 2220

tcaacaacgg caaagaccac aaccacgtca tccaccacat cttcagcagg accaacccag 2280

actccatacg gacagtgcgg cggtcagggt tggacgggtc ccacggtatg ttcatcaggt 2340

tggacatgta aagtaactaa tcaatggtac tcccagtgtc tgcagtaa 2388

<210> 5

<211> 32

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 5

gggaattcat ccacaaacga gttacaactc cg 32

<210> 6

<211> 34

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 6

gggcggccgc ttagacagca ggcaacaccc atgt 34

Claims

1.利用β-1,6葡聚糖酶制备低聚龙胆糖的方法，其特征在于，所述β-1,6-葡聚糖酶氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示；以葡萄糖为底物制备低聚龙胆糖。

2.根据权利要求1所述方法，其特征在于，所述β-1,6-葡聚糖酶的用量为400~1600 U/g葡萄糖。

3.利用β-1,6-葡聚糖酶和β-葡萄糖苷酶共同制备低聚龙胆糖的方法，其特征在于，所述β-1,6-葡聚糖酶氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示，所述β-葡萄糖苷酶氨基酸序列如SEQID NO.2所示；以葡萄糖为底物制备低聚龙胆糖。

4.根据权利要求3所述方法，其特征在于，所述β-1,6葡聚糖酶的用量为400~1600 U/g葡萄糖；所述β-葡萄糖苷酶的用量为200~600 U/g葡萄糖。

5.根据权利要求3~4任一项所述方法，其特征在于，所述方法为以70~90 g/100mL的葡萄糖为底物；所述低聚龙胆糖包括龙胆二糖和龙胆三糖。

6.一种提高龙胆三糖产量的方法，其特征在于，以葡萄糖为底物，

用氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示的β-1,6-葡聚糖酶催化底物；

或，用氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示的β-1,6-葡聚糖酶和氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示的β-葡萄糖苷酶催化底物。

7.权利要求1~5任一所述方法在制备低聚龙胆糖中的应用。