CN105505974B - 一种实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法 - Google Patents

一种实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN105505974B
CN105505974B CN201610039395.5A CN201610039395A CN105505974B CN 105505974 B CN105505974 B CN 105505974B CN 201610039395 A CN201610039395 A CN 201610039395A CN 105505974 B CN105505974 B CN 105505974B
Authority
CN
China
Prior art keywords
gene
laci
resistance
seamless
recombination
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
CN201610039395.5A
Other languages
English (en)
Other versions
CN105505974A (zh
Inventor
黄磊
姜灵轩
徐志南
蔡谨
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Zhejiang University ZJU
Original Assignee
Zhejiang University ZJU
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zhejiang University ZJU filed Critical Zhejiang University ZJU
Priority to CN201610039395.5A priority Critical patent/CN105505974B/zh
Publication of CN105505974A publication Critical patent/CN105505974A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105505974B publication Critical patent/CN105505974B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • C12N15/72Expression systems using regulatory sequences derived from the lac-operon
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2800/00Nucleic acids vectors
    • C12N2800/10Plasmid DNA
    • C12N2800/101Plasmid DNA for bacteria

Landscapes

  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开了一种大肠杆菌基因无痕同源重组的方法,该方法基于Lac阻遏系统和抗性筛选实现;通过构建包含lac操纵序列控制的抗性操纵子的大肠杆菌重组菌和包含正负筛选标记的无痕重组工具基因串,建立了一种大肠杆菌无痕同源重组的方法,可实现目的基因对大肠杆菌染色体上的靶位点进行无痕重组的目标,对大肠杆菌染色体进行基因编辑研究工作具有重要的意义。

Description

一种实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法
技术领域
本发明属于生物化工领域,特别涉及一种基于Lac阻遏系统和抗性筛选实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法。
背景技术
大肠杆菌具有基因操作相对简单、生长快、发酵成本低等优点,是目前基因工程中最常用的模式菌株之一。对大肠杆菌基因组进行基因的突变、删除、插入或替换等操作是大肠杆菌代谢工程的核心技术。Red同源重组技术是一种可在染色体水平上进行遗传操作的基因打靶技术,具有同源序列短、使用范围广和操作策略灵活等特点,是目前在大肠杆菌中最常用到的同源重组技术。但利用传统的Red同源重组技术对大肠杆菌的基因组进行编辑后会留下抗性筛选基因序列,即使此序列中的抗性基因可以利用质粒pCP20所表达的FLP重组酶来消除,但最终还是会在基因组上残留FRT位点序列。此类同源重组后残留的位点序列会对后续的基因同源重组操作的准确性和重组效率产生严重的负面影响。
Lac操纵子是大肠杆菌中参与乳糖分解的一个基因群,由乳糖系统的阻遏物和操纵序列组成,使得一组与乳糖代谢相关的基因受到同步的调控。Lac操纵序列包含了lac P启动子序列和紧随的操纵序列lac O,当菌体中含有lacI阻遏物基因所表达的阻遏物时,该阻遏物会结合到lac O上从而关闭lac P启动子。本专利首先将构建的由lac操纵序列启动的抗性基因A操纵子,将其同源重组替换大肠杆菌染色体上的野生型lacI基因及其启动子,再用正筛选标记抗性基因B与负筛选标记lacI阻遏物基因反向连接构成的无痕重组工具基因串同源替换基因组上的靶位点序列,利用此工具基因串上lacI基因所表达的阻遏物抑制抗性基因A的表达,最后用目标DNA片段同源替换此工具基因串以激活抗性基因A的表达,实现利用抗性I筛选得到重组成功的无痕同源重组子的目标。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的缺点和不足,提供一种基于Lac阻遏系统和抗性筛选实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法。
本发明的目的是通过以下技术方案实现的:一种实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法,包括以下步骤:
(1)将抗性基因A与lac操纵序列相连,得到操纵子,所述抗性基因A为可用于大肠杆菌抗性筛选的基因;
(2)将操纵子同源重组替换大肠杆菌染色体上的野生型lacI基因及其启动子;
(3)用无痕重组工具基因串对步骤2同源重组替换后的大肠杆菌的靶位点序列进行同源替换;所述无痕重组工具基因串由正筛选标记抗性基因B与负筛选标记lacI阻遏物基因反向连接而成,抗性基因B为可用于大肠杆菌抗性筛选的基因;负筛选标记lacI阻遏物基因包含placIq启动子;
(4)利用抗性对步骤3同源替换后的大肠杆菌进行筛选,获得重组成功的重组子;
(5)用目标DNA片段同源替换步骤4所得到的阳性大肠杆菌重组子中的工具基因串,利用抗性对目标DNA片段同源替换后的大肠杆菌进行筛选,得到重组成功的无痕同源重组子。
进一步地,所述抗性和抗性均选自抗氨苄青霉素、抗氯霉素、抗卡那霉素、抗四环素等,且抗性不同于抗性
本发明的有益效果是:本发明所公开的方法中无痕重组工具基因串和目标DNA片段的两步同源重组所产生的阳性重组子均可以用抗生素进行快速而有效的筛选,并能够达到用目标基因对大肠杆菌靶位点进行无痕重组的效果。此方法的建立对大肠杆菌染色体进行基因编辑研究工作具有重要的意义。
附图说明
图1:Plac-lacO-kan操纵子替换野生型lacI基因及其启动子的过程示意图
图2:含无痕重组工具基因串cat-PlacIq-lacI的重组载体pUC19-cat-PlacIq-lacI的结构示意图
图3:含无痕重组工具基因串tet-PlacIq-lacI的重组载体pUC19-tet- PlacIq-lacI的结构示意图
图4:利用cat-PlacIq-lacI工具基因串将天然talB基因启动子替换为trc启动子的过程示意图
图5:利用tet-PlacIq-lacI工具基因串将天然talB基因启动子替换为trc启动子的过程示意图。
具体实施方式
本发明采用了具有抗性、且具有lac阻遏作用的工具基因串,实现对基因重组的筛选;首先,采用操纵子(包含抗性基因A)同源重组替换大肠杆菌染色体上的野生型lacI基因及其启动子;然后用无痕重组工具基因串(包含抗性基因B和lacI阻遏物基因)对同源重组替换后的大肠杆菌的靶位点序列进行同源替换,使得抗性基因A的表达被抑制,而抗性基因B能有效表达,从而能利用抗性筛选出成功重组替换的大肠杆菌;最后用目标DNA片段进一步同源替换阳性大肠杆菌重组子中的工具基因串,使得抗性消失,而抗性基因A有效表达,从而能利用抗性I筛选出成功重组了目标DNA片段的大肠杆菌。
目标DNA片段为根据需要设计的基因片段,目标DNA片段的设计为本领域的常用技术手段,靶位点序列为目标DNA片段需要替换的序列,靶位点序列的挑选为本领域的公知常识。
本发明中,基因的同源重组为本领域的常用技术手段,例如使用电穿孔法、氯化钙法等公知的方法将外源片段或质粒载体导入大肠杆菌细胞。包含靶位点基因两端同源臂的外源片段可以利用Red同源重组技术和染色体上的靶位点基因发生同源重组。
下面结合实施例对本发明做进一步说明,但不应理解为对本发明的限制。若未特别指明,本实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段。
实施例1 构建由lac操纵序列启动的卡那霉素抗性基因kan操纵子,并同源重组替换大肠杆菌DH5α的野生型lacI基因及其启动子,构建包含由氯霉素抗性基因cat与lacI阻遏物基因反向连接组成的无痕重组工具基因串的重组质粒pUC19-cat-PlacIq-lacI,利用cat-PlacIq-lacI工具基因串,将大肠杆菌DH5α中talB基因的天然启动子替换为trc启动子,步骤如下:
1.1.将质粒pKD46电转入大肠杆菌DH5α,用氨苄青霉素平板筛选获得成功导入该质粒的菌株。
1.2. 用上下游引物lacI-Plac-kan-F和lacI-kan-R(DNA序列分别如SEQ ID NO.1和SEQ ID NO. 2所示)从质粒pKD4上pcr扩增得到Plac-lacO-kan操纵子基因,将其同源重组替换野生型lacI基因及其启动子,用卡那霉素平板筛选获得正确重组的阳性菌株。Plac-lacO-kan操纵子基因结构如图1所示,此操纵子基因包括Lac启动子(Plac),lacI阻遏物结合位点(lacO)和卡那霉素抗性基因(kan)三个部分,序列如SEQ ID NO. 3所示。
1.3 用上下游引物Bgl II-lacI-F和Kpn I-lacI-R(DNA序列分别如SEQ ID NO. 4和SEQ ID NO. 5所示)从质粒pTrc99a上pcr扩增得到包含lacI结构基因及其突变型启动子的基因片段PlacIq-lacI。
1.4用上下游引物BamH I-cat-F和Hind III-cat-R(DNA序列分别如SEQ ID NO. 6和SEQ ID NO. 7所示)从质粒pKD3上pcr扩增得到氯霉素抗性基因片段cat。
1.5将步骤4所得的cat基因和质粒pUC19分别用限制性内切酶BamH I、Hind III双酶切后,回收cat基因和质粒pUC19大片段,将两者连接获得重组质粒pUC19-cat。将重组质粒pUC19-cat和步骤3所得PlacIq-lacI基因分别用限制性内切酶BamH I、Kpn I双酶切后,回收质粒pUC19-cat大片段和PlacIq-lacI基因,将两者连接获得重组质粒pUC19-cat-PlacIq-lacI(质粒结构如图2所示),此质粒中包含的无痕重组工具基因串cat- PlacIq-lacI的序列如SEQ ID NO. 8所示;
1.6 用上下游引物cat-lacI-talB-F和cat-lacI-talB-R(DNA序列分别如SEQ IDNO. 12和SEQ ID NO. 13所示)从步骤5所得的质粒pUC19-cat-PlacIq-lacI上pcr扩增得到工具基因串cat-PlacIq-lacI,所得基因的两侧序列与talB基因的天然启动子两侧序列同源。将扩增所得基因导入步骤2所得的重组大肠杆菌,同源重组替换该大肠杆菌基因talB的启动子,用氯霉素平板筛选,得到重组菌株DH5α PtalB:: cat-PlacIq-lacI。
1.7 trc启动子基因片段(DNA序列如SEQ ID NO. 14所示)由公司合成,将其导入步骤6所得的重组菌株DH5α PtalB:: cat-PlacIq-lacI,同源重组替换菌株基因组上的cat-PlacIq-lacI片段,用卡那霉素平板筛选,得到同源重组成功的阳性重组菌株DH5αPtalB::Ptrc。替换过程如图4所示。
实施例2 构建由lac操纵序列启动的卡那霉素抗性基因kan操纵子,并同源重组替换大肠杆菌BL21(DE3)的野生型lacI基因及其启动子,构建包含由氯霉素抗性基因cat与lacI阻遏物基因反向连接组成的无痕重组工具基因串的重组质粒pUC19-cat-PlacIq-lacI,利用cat-PlacIq-lacI工具基因串,将大肠杆菌BL21(DE3)中talB基因的天然启动子替换为trc启动子,步骤如下:
2.1.将质粒pKD46电转入大肠杆菌BL21(DE3),用氨苄青霉素平板筛选获得成功导入该质粒的菌株。
2.2. 用上下游引物lacI-Plac-kan-F和lacI-kan-R(DNA序列分别如SEQ ID NO.1和SEQ ID NO. 2所示)从质粒pKD4上pcr扩增得到Plac-lacO-kan操纵子基因,将其同源重组替换野生型lacI基因及其启动子,用卡那霉素平板筛选获得正确重组的阳性菌株。Plac-lacO-kan操纵子基因结构如图1所示,此操纵子基因包括Lac启动子(Plac),lacI阻遏物结合位点(lacO)和卡那霉素抗性基因(kan)三个部分,序列如SEQ ID NO. 3所示。
2.3 用上下游引物Bgl II-lacI-F和Kpn I-lacI-R(DNA序列分别如SEQ ID NO. 4和SEQ ID NO. 5所示)从质粒pTrc99a上pcr扩增得到包含lacI结构基因及其突变型启动子的基因片段PlacIq-lacI。
2.4用上下游引物BamH I-cat-F和Hind III-cat-R(DNA序列分别如SEQ ID NO. 6和SEQ ID NO. 7所示)从质粒pKD3上pcr扩增得到氯霉素抗性基因片段cat。
2.5将步骤4所得的cat基因和质粒pUC19分别用限制性内切酶BamH I、Hind III双酶切后,回收cat基因和质粒pUC19大片段,将两者连接获得重组质粒pUC19-cat。将重组质粒pUC19-cat和步骤3所得PlacIq-lacI基因分别用限制性内切酶BamH I、Kpn I双酶切后,回收质粒pUC19-cat大片段和PlacIq-lacI基因,将两者连接获得重组质粒pUC19-cat-PlacIq-lacI(质粒结构如图2所示),此质粒中包含的无痕重组工具基因串cat- PlacIq-lacI的序列如SEQ ID NO. 8所示;
2.6 用上下游引物cat-lacI-talB-F和cat-lacI-talB-R(DNA序列分别如SEQ IDNO. 12和SEQ ID NO. 13所示)从步骤5所得的质粒pUC19-cat-PlacIq-lacI上pcr扩增得到工具基因串cat-PlacIq-lacI,所得基因的两侧序列与talB基因的天然启动子两侧序列同源。将扩增所得基因导入步骤2所得的重组大肠杆菌,同源重组替换该大肠杆菌基因talB的启动子,用氯霉素平板筛选,得到重组菌株BL21(DE3) PtalB:: cat-PlacIq-lacI。
2.7 trc启动子基因片段(DNA序列如SEQ ID NO. 14所示)由公司合成,将其导入步骤6所得的重组菌株BL21(DE3) PtalB:: cat-PlacIq-lacI,同源重组替换菌株基因组上的cat-PlacIq-lacI片段,用卡那霉素平板筛选,得到同源重组成功的阳性重组菌株BL21(DE3) PtalB::Ptrc。替换过程如图4所示。
实施例3 构建由lac操纵序列启动的卡那霉素抗性基因kan操纵子,并同源重组替换大肠杆菌JM109的野生型lacI基因及其启动子,构建包含由四环素抗性基因tet与lacI阻遏物基因反向连接组成的无痕重组工具基因串的重组质粒pUC19-tet-PlacIq-lacI,利用tet-PlacIq-lacI工具基因串,将大肠杆菌JM109中talB基因的天然启动子替换为trc启动子,步骤如下:
3.1.将质粒pKD46电转入大肠杆菌JM109,用氨苄青霉素平板筛选获得成功导入该质粒的菌株。
3.2. 用上下游引物lacI-Plac-kan-F和lacI-kan-R(DNA序列分别如SEQ ID NO.1和SEQ ID NO. 2所示)从质粒pKD4上pcr扩增得到Plac-lacO-kan操纵子基因,将其同源重组替换野生型lacI基因及其启动子,用卡那霉素平板筛选获得正确重组的阳性菌株。Plac-lacO-kan操纵子基因结构如图1所示,此操纵子基因包括Lac启动子(Plac),lacI阻遏物结合位点(lacO)和卡那霉素抗性基因(kan)三个部分,序列如SEQ ID NO. 3所示。
3.3用上下游引物Bgl II-lacI-F和Kpn I-lacI-R(DNA序列分别如SEQ ID NO. 4和SEQ ID NO. 5所示)从质粒pTrc99a上pcr扩增得到包含lacI结构基因及其突变型启动子的基因片段PlacIq-lacI。
3.4用上下游引物BamH I-tet-F和Hind III-tet-R(DNA序列分别如SEQ ID NO. 9和SEQ ID NO. 10所示)从质粒pBR322上pcr扩增得到四环素抗性基因片段tet。
3.5将步骤4所得的tet基因和质粒pUC19分别用限制性内切酶BamH I、Hind III双酶切后,回收tet基因和质粒pUC19大片段,将两者连接获得重组质粒pUC19-tet。将质粒pUC19-tet和步骤3所得PlacIq-lacI基因分别用限制性内切酶BamH I、Kpn I双酶切后,回收质粒pUC19-tet大片段和PlacIq-lacI基因,将两者连接获得重组质粒pUC19-tet-PlacIq-lacI(质粒结构如图3所示),此质粒中包含的无痕重组工具基因串tet- PlacIq-lacI的序列如SEQ ID NO. 11所示;
3.6用上下游引物tet-lacI-talB-F和tet-lacI-talB-R(DNA序列分别如SEQ IDNO. 15和SEQ ID NO. 16所示)从步骤5所得的质粒pUC19-tet-PlacIq-lacI上pcr扩增得到工具基因串tet-PlacIq-lacI,所得基因的两侧序列与talB基因的天然启动子两侧序列同源。将扩增所得基因导入步骤2所得的重组大肠杆菌,同源重组替换该大肠杆菌基因talB的启动子,用四环素平板筛选,得到重组菌株JM109 PtalB:: tet-PlacIq-lacI。
3.7 trc启动子基因片段(DNA序列如SEQ ID NO. 14所示)由公司合成,将其导入步骤6所得的重组菌株JM109 PtalB:: tet-PlacIq-lacI,同源重组替换菌株基因组上的tet-PlacIq-lacI片段,用卡那霉素平板筛选,得到同源重组成功的阳性重组菌株JM109PtalB::Ptrc。替换过程如图5所示。
SEQUENCE LISTING
<110> 浙江大学
<120> 一种大肠杆菌基因无痕同源重组的方法
<160> 16
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 168
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 1
gccggaagca taaagtgtaa agcctggggt gcctaatgag tgagctaact gctcactcat 60
taggcacccc aggctttaca ctttatgctt ccggctcgta tgttgtgtgg aattgtgagc 120
ggataacaat ttcacacagg aaacagctat gattgaacaa gatggatt 168
<210> 2
<211> 71
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 2
gaagaagggg ttgaatcgca ggctattctg gtggccggaa ggcgaagcgg ctcagaagaa 60
ctcgtcaaga a 71
<210> 3
<211> 893
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 3
gctcactcat taggcacccc aggctttaca ctttatgctt ccggctcgta tgttgtgtgg 60
aattgtgagc ggataacaat ttcacacagg aaacagctat gattgaacaa gatggattgc 120
acgcaggttc tccggccgct tgggtggaga ggctattcgg ctatgactgg gcacaacaga 180
caatcggctg ctctgatgcc gccgtgttcc ggctgtcagc gcaggggcgc ccggttcttt 240
ttgtcaagac cgacctgtcc ggtgccctga atgaactgca ggacgaggca gcgcggctat 300
cgtggctggc cacgacgggc gttccttgcg cagctgtgct cgacgttgtc actgaagcgg 360
gaagggactg gctgctattg ggcgaagtgc cggggcagga tctcctgtca tctcaccttg 420
ctcctgccga gaaagtatcc atcatggctg atgcaatgcg gcggctgcat acgcttgatc 480
cggctacctg cccattcgac caccaagcga aacatcgcat cgagcgagca cgtactcgga 540
tggaagccgg tcttgtcgat caggatgatc tggacgaaga gcatcagggg ctcgcgccag 600
ccgaactgtt cgccaggctc aaggcgcgca tgcccgacgg cgaggatctc gtcgtgaccc 660
atggcgatgc ctgcttgccg aatatcatgg tggaaaatgg ccgcttttct ggattcatcg 720
actgtggccg gctgggtgtg gcggaccgct atcaggacat agcgttggct acccgtgata 780
ttgctgaaga gcttggcggc gaatgggctg accgcttcct cgtgctttac ggtatcgccg 840
ctcccgattc gcagcgcatc gccttctatc gccttcttga cgagttcttc tga 893
<210> 4
<211> 29
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 4
ggaagatcta agcggcatgc atttacgtt 29
<210> 5
<211> 29
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 5
cggggtaccc tcacattaat tgcgttgcg 29
<210> 6
<211> 29
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 6
cgcggatccc gtgagacgtt gatcggcac 29
<210> 7
<211> 29
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 7
cccaagcttt aagggcacca ataactgcc 29
<210> 8
<211> 1960
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 8
ttacgccccg ccctgccact catcgcagta ctgttgtaat tcattaagca ttctgccgac 60
atggaagcca tcacaaacgg catgatgaac ctgaatcgcc agcggcatca gcaccttgtc 120
gccttgcgta taatatttgc ccatggtgaa aacgggggcg aagaagttgt ccatattggc 180
cacgtttaaa tcaaaactgg tgaaactcac ccagggattg gctgagacga aaaacatatt 240
ctcaataaac cctttaggga aataggccag gttttcaccg taacacgcca catcttgcga 300
atatatgtgt agaaactgcc ggaaatcgtc gtggtattca ctccagagcg atgaaaacgt 360
ttcagtttgc tcatggaaaa cggtgtaaca agggtgaaca ctatcccata tcaccagctc 420
accgtctttc attgccatac ggaattccgg atgagcattc atcaggcggg caagaatgtg 480
aataaaggcc ggataaaact tgtgcttatt tttctttacg gtctttaaaa aggccgtaat 540
atccagctga acggtctggt tataggtaca ttgagcaact gactgaaatg cctcaaaatg 600
ttctttacga tgccattggg atatatcaac ggtggtatat ccagtgattt ttttctccat 660
tttagcttcc ttagctcctg aaaatctcga taactcaaaa aatacgcccg gtagtgatct 720
tatttcatta tggtgaaagt tggaacctct tacgtgccga tcaacgtctc acgggatcta 780
agcggcatgc atttacgttg acaccatcga atggtgcaaa acctttcgcg gtatggcatg 840
atagcgcccg gaagagagtc aattcagggt ggtgaatgtg aaaccagtaa cgttatacga 900
tgtcgcagag tatgccggtg tctcttatca gaccgtttcc cgcgtggtga accaggccag 960
ccacgtttct gcgaaaacgc gggaaaaagt ggaagcggcg atggcggagc tgaattacat 1020
tcccaaccgc gtggcacaac aactggcggg caaacagtcg ttgctgattg gcgttgccac 1080
ctccagtctg gccctgcacg cgccgtcgca aattgtcgcg gcgattaaat ctcgcgccga 1140
tcaactgggt gccagcgtgg tggtgtcgat ggtagaacga agcggcgtcg aagcctgtaa 1200
agcggcggtg cacaatcttc tcgcgcaacg cgtcagtggg ctgatcatta actatccgct 1260
ggatgaccag gatgccattg ctgtggaagc tgcctgcact aatgttccgg cgttatttct 1320
tgatgtctct gaccagacac ccatcaacag tattattttc tcccatgaag acggtacgcg 1380
actgggcgtg gagcatctgg tcgcattggg tcaccagcaa atcgcgctgt tagcgggccc 1440
attaagttct gtctcggcgc gtctgcgtct ggctggctgg cataaatatc tcactcgcaa 1500
tcaaattcag ccgatagcgg aacgggaagg cgactggagt gccatgtccg gttttcaaca 1560
aaccatgcaa atgctgaatg agggcatcgt tcccactgcg atgctggttg ccaacgatca 1620
gatggcgctg ggcgcaatgc gcgccattac cgagtccggg ctgcgcgttg gtgcggatat 1680
ctcggtagtg ggatacgacg ataccgaaga cagctcatgt tatatcccgc cgtcaaccac 1740
catcaaacag gattttcgcc tgctggggca aaccagcgtg gaccgcttgc tgcaactctc 1800
tcagggccag gcggtgaagg gcaatcagct gttgcccgtc tcactggtga aaagaaaaac 1860
caccctggcg cccaatacgc aaaccgcctc tccccgcgcg ttggccgatt cattaatgca 1920
gctggcacga caggtttccc gactggaaag cgggcagtga 1960
<210> 9
<211> 29
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 9
cgcggatcct ttaatgcggt agtttatca 29
<210> 10
<211> 29
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 10
cccaagcttc ggcttccatt caggtcgag 29
<210> 11
<211> 2431
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 11
tcaggtcgag gtggcccggc tccatgcacc gcgacgcaac gcggggaggc agacaaggta 60
tagggcggcg cctacaatcc atgccaaccc gttccatgtg ctcgccgagg cggcataaat 120
cgccgtgacg atcagcggtc cagtgatcga agttaggctg gtaagagccg cgagcgatcc 180
ttgaagctgt ccctgatggt cgtcatctac ctgcctggac agcatggcct gcaacgcggg 240
catcccgatg ccgccggaag cgagaagaat cataatgggg aaggccatcc agcctcgcgt 300
cgcgaacgcc agcaagacgt agcccagcgc gtcggccgcc atgccggcga taatggcctg 360
cttctcgccg aaacgtttgg tggcgggacc agtgacgaag gcttgagcga gggcgtgcaa 420
gattccgaat accgcaagcg acaggccgat catcgtcgcg ctccagcgaa agcggtcctc 480
gccgaaaatg acccagagcg ctgccggcac ctgtcctacg agttgcatga taaagaagac 540
agtcataagt gcggcgacga tagtcatgcc ccgcgcccac cggaaggagc tgactgggtt 600
gaaggctctc aagggcatcg gtcgacgctc tcccttatgc gactcctgca ttaggaagca 660
gcccagtagt aggttgaggc cgttgagcac cgccgccgca aggaatggtg catgcaagga 720
gatggcgccc aacagtcccc cggccacggg gcctgccacc atacccacgc cgaaacaagc 780
gctcatgagc ccgaagtggc gagcccgatc ttccccatcg gtgatgtcgg cgatataggc 840
gccagcaacc gcacctgtgg cgccggtgat gccggccacg atgcgtccgg cgtagaggat 900
ccacaggacg ggtgtggtcg ccatgatcgc gtagtcgata gtggctccaa gtagcgaagc 960
gagcaggact gggcggcggc caaagcggtc ggacagtgct ccgagaacgg gtgcgcatag 1020
aaattgcatc aacgcatata gcgctagcag cacgccatag tgactggcga tgctgtcgga 1080
atggacgata tcccgcaaga ggcccggcag taccggcata accaagccta tgcctacagc 1140
atccagggtg acggtgccga ggatgacgat gagcgcattg ttagatttca tacacggtgc 1200
ctgactgcgt tagcaattta actgtgataa actaccgcat taaaggatct aagcggcatg 1260
catttacgtt gacaccatcg aatggtgcaa aacctttcgc ggtatggcat gatagcgccc 1320
ggaagagagt caattcaggg tggtgaatgt gaaaccagta acgttatacg atgtcgcaga 1380
gtatgccggt gtctcttatc agaccgtttc ccgcgtggtg aaccaggcca gccacgtttc 1440
tgcgaaaacg cgggaaaaag tggaagcggc gatggcggag ctgaattaca ttcccaaccg 1500
cgtggcacaa caactggcgg gcaaacagtc gttgctgatt ggcgttgcca cctccagtct 1560
ggccctgcac gcgccgtcgc aaattgtcgc ggcgattaaa tctcgcgccg atcaactggg 1620
tgccagcgtg gtggtgtcga tggtagaacg aagcggcgtc gaagcctgta aagcggcggt 1680
gcacaatctt ctcgcgcaac gcgtcagtgg gctgatcatt aactatccgc tggatgacca 1740
ggatgccatt gctgtggaag ctgcctgcac taatgttccg gcgttatttc ttgatgtctc 1800
tgaccagaca cccatcaaca gtattatttt ctcccatgaa gacggtacgc gactgggcgt 1860
ggagcatctg gtcgcattgg gtcaccagca aatcgcgctg ttagcgggcc cattaagttc 1920
tgtctcggcg cgtctgcgtc tggctggctg gcataaatat ctcactcgca atcaaattca 1980
gccgatagcg gaacgggaag gcgactggag tgccatgtcc ggttttcaac aaaccatgca 2040
aatgctgaat gagggcatcg ttcccactgc gatgctggtt gccaacgatc agatggcgct 2100
gggcgcaatg cgcgccatta ccgagtccgg gctgcgcgtt ggtgcggata tctcggtagt 2160
gggatacgac gataccgaag acagctcatg ttatatcccg ccgtcaacca ccatcaaaca 2220
ggattttcgc ctgctggggc aaaccagcgt ggaccgcttg ctgcaactct ctcagggcca 2280
ggcggtgaag ggcaatcagc tgttgcccgt ctcactggtg aaaagaaaaa ccaccctggc 2340
gcccaatacg caaaccgcct ctccccgcgc gttggccgat tcattaatgc agctggcacg 2400
acaggtttcc cgactggaaa gcgggcagtg a 2431
<210> 12
<211> 74
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 12
agtctcgcct ggcgataacc gtcttgtcgg cggttgcgct gacgttgcgt cgtgttacgc 60
cccgccctgc cact 74
<210> 13
<211> 70
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 13
tgatagtatt tctctttaaa cagcttgtta gggggatgta accggtctgc tcactgcccg 60
ctttccagtc 70
<210> 14
<211> 89
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 14
agcttgttag ggggatgtaa ccggtctgcc attatacgag ccggatgatt aattgtcaac 60
acgacgcaac gtcagcgcaa ccgccgaca 89
<210> 15
<211> 74
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 15
agtctcgcct ggcgataacc gtcttgtcgg cggttgcgct gacgttgcgt cgtgtcaggt 60
cgaggtggcc cggc 74
<210> 16
<211> 70
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 16
tgatagtatt tctctttaaa cagcttgtta gggggatgta accggtctgc tcactgcccg 60
ctttccagtc 70

Claims (2)

1.一种实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)将抗性基因A与lac操纵序列相连,得到操纵子,所述抗性基因A为可用于大肠杆菌抗性筛选的基因;
(2)将操纵子同源重组替换大肠杆菌染色体上的野生型lacI基因及其启动子;
(3)用无痕重组工具基因串对步骤2同源重组替换后的大肠杆菌的靶位点序列进行同源替换;所述无痕重组工具基因串由正筛选标记抗性基因B与负筛选标记lacI阻遏物基因反向连接而成,抗性基因B为可用于大肠杆菌抗性筛选的基因;负筛选标记lacI阻遏物基因包含placIq启动子;
(4)利用抗性对步骤3同源替换后的大肠杆菌进行筛选,获得重组成功的重组子;
(5)用目标DNA片段同源替换步骤4所得到的阳性大肠杆菌重组子中的工具基因串,利用抗性对目标DNA片段同源替换后的大肠杆菌进行筛选,得到重组成功的无痕同源重组子。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述抗性和抗性均选自抗氨苄青霉素、抗氯霉素、抗卡那霉素、抗四环素,且抗性不同于抗性
CN201610039395.5A 2016-01-21 2016-01-21 一种实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法 Expired - Fee Related CN105505974B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610039395.5A CN105505974B (zh) 2016-01-21 2016-01-21 一种实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610039395.5A CN105505974B (zh) 2016-01-21 2016-01-21 一种实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105505974A CN105505974A (zh) 2016-04-20
CN105505974B true CN105505974B (zh) 2019-01-11

Family

ID=55714267

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610039395.5A Expired - Fee Related CN105505974B (zh) 2016-01-21 2016-01-21 一种实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105505974B (zh)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109402157A (zh) * 2018-12-05 2019-03-01 四川省农业科学院经济作物育种栽培研究所 一种具有双抗生素筛选标记的原核表达载体及应用
CN110358812B (zh) * 2019-06-25 2022-12-27 武汉生物工程学院 一种用于λ-Red重组系统基因敲除重组阳性克隆检测的引物及检测方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1898387A (zh) * 2003-12-22 2007-01-17 塞尔蛋白质股份有限公司 用于无抗生素表达的表达载体
CN101328477A (zh) * 2008-07-23 2008-12-24 中国人民解放军军事医学科学院生物工程研究所 一种双向筛选系统及其应用
CN101984063A (zh) * 2010-07-14 2011-03-09 江南大学 一种大肠杆菌胞内表达载体及其应用
CN105063073A (zh) * 2015-09-16 2015-11-18 中国科学院南海海洋研究所 一种弧菌通用的基因敲除自杀载体及其应用

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1898387A (zh) * 2003-12-22 2007-01-17 塞尔蛋白质股份有限公司 用于无抗生素表达的表达载体
CN101328477A (zh) * 2008-07-23 2008-12-24 中国人民解放军军事医学科学院生物工程研究所 一种双向筛选系统及其应用
CN101984063A (zh) * 2010-07-14 2011-03-09 江南大学 一种大肠杆菌胞内表达载体及其应用
CN105063073A (zh) * 2015-09-16 2015-11-18 中国科学院南海海洋研究所 一种弧菌通用的基因敲除自杀载体及其应用

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"An efficient recombination system for chromosome engineering in Escherichia coli";Daiguan Yu等;《PNAS》;20000523;第97卷(第11期);1-2
"pBR322-Red 在大肠杆菌lac 操纵子基因敲除和敲入中的应用";陈伟等;《生物工程学报》;20050331;第21卷(第2期);第192-197页
"大肠杆菌无痕重组的策略与应用";刘陆罡等;《中国生物工程杂志》;20140814;第34卷(第8期);第88-96页
用red重组系统快速敲除大肠杆菌arol和aroK基因;王莉等;《军事医学科学院院刊》;20070831;第31卷(第4期);摘要

Also Published As

Publication number Publication date
CN105505974A (zh) 2016-04-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN107002046B (zh) 非复制型转导粒子和基于转导粒子的报道系统
CN105505974B (zh) 一种实现大肠杆菌基因无痕同源重组的方法
US10017798B2 (en) E. coli engineering bacteria producing 1,5-pentanediamine through whole cell catalysis and application thereof
CN102140431B (zh) L-色氨酸基因工程菌,其构建方法以及使用其发酵生产l-色氨酸的方法
CN110964683B (zh) 生产l-精氨酸的基因工程菌及其构建方法与应用
CN110468092B (zh) 一株高产l-缬氨酸的基因工程菌及其构建方法与应用
CN116004500A (zh) 一种生产l-缬氨酸的基因工程菌及其构建方法与应用
CN109423504B (zh) 生产l-色氨酸的菌株及用途
CN107058393B (zh) 一种基于自然转化的拟态弧菌高效遗传重组方法及应用
CN110079567B (zh) 一种过表达fimH基因的重组大肠杆菌在发酵生产氨基酸中的应用
CN108018264B (zh) 一种利用多拷贝基因共表达杆状病毒外源蛋白的构建和表达方法
CN105238816B (zh) 一种表达载体
CN110468155B (zh) 一种用于拯救猪肠道甲型冠状病毒的系统、方法及应用
CN108486133A (zh) 一种l-丝氨酸转运蛋白的应用方法
CN112852694B (zh) 虾青素合成菌株构建及其应用
CN105647959B (zh) 一种构建酵母多拷贝表达载体的方法
CN113061608B (zh) 一种诱导型启动子的进化方法及其应用
CN108504673B (zh) 一种转化质粒的方法
KR102642882B1 (ko) 아세토인 생성능이 증진된 재조합 미생물 및 이를 이용한 아세토인의 제조방법
CN111621854A (zh) Trc启动子突变文库及其应用
CN110055205B (zh) 一种敲除fimH基因的重组大肠杆菌及其构建方法与应用
ES2939979T3 (es) Corynebacterium para producir L-lisina por fermentación
CN112375726B (zh) 一种生产l-高丝氨酸的基因工程菌及其应用
CN108841850A (zh) 用于在鸭疫里默氏杆菌基因组插入外源基因的载体及方法
Yang et al. Design and application of artificial rare L-lysine codons in Corynebacterium glutamicum

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20190111

Termination date: 20210121

CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee