发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种大肠杆菌胞内表达载体,核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。
所述表达载体的物理图谱如图1所示。
所述表达载体复制子,抗性标记基因,阻遏蛋白基因及双启动子。
所述抗性标记基因为卡那霉素抗性基因。
所述复制子为p15A。
所述两个多克隆位点为MCS1和MCS2。
所述阻遏蛋白基因为λcItS857。
所述双启动子为λ噬菌体PL、PR双启动子。
本发明所要解决的另一个技术问题是提供一种上述表达载体的应用。
为解决上述技术问题,采用的技术方案为:
使用上述表达载体,构建衍生表达载体pSV03,用于色氨酸生产。
所述色氨酸生产包括如下步骤:将质粒pSV03转化至大肠杆菌W3110的衍生菌JW3686(E.coli Genetic Stock Center,Yale University)。挑选卡那霉素抗性单克隆菌落,选用通用的LB培养基35~37℃培养,当OD值达到3以上时,按照5~10%的接种量,转接至装液量为1.2~1.5L的3L发酵罐中,30~33℃培养至对数生长前期,升温至37~39度开始诱导产色氨酸;发酵一般是24~48h,更佳地为30~36h,pH值控制在6.8~7.2。
所述表达载体pSV03的物理图谱如附图2所示。
所述表达载体pSV03含有修饰的外源基因aroF、抗色氨酸反馈调控的trp操纵子基因(trpEFbrDCBA)。
所述修饰的基因aroF通过定点突变技术,缺失突变了由aroF编码的DAHP合成酶氨基酸序列中的第十一个氨基酸Lie,从而获得了抗色氨酸反馈调节的aroFFbr基因。
可用于本发明的宿主细胞宜为原核细胞,最佳的为大肠杆菌。
对于用于代谢工程的胞内表达载体而言,通常启动子序列、复制子序列等元件的选择至关重要。本发明的发明人经过多年研究,选择了λ噬菌体的温控型PL、PR双启动子和拷贝数为15的p15A复制子。在此基础上,构建了本大肠杆菌胞内表达载体pSV-T。以λ噬菌体转录启动子PL、PR构建的载体已经为大家所熟悉。这两个强启动子受控于λ噬菌体cl基因产物。cl基因的温度敏感突变体λcItS857,常常被用于调控PL、PR启动子的转录,30℃时阻遏启动子转录,42℃时解除抑制开始转录。
本发明提供的表达载体可以控制外源基因的表达,应用该质粒表达色氨酸合成代谢中的关键酶基因aroFFbr和trp操纵子trpEFbrDCBA生产色氨酸,发酵液中色氨酸的浓度最高可积累至11g/L,产量提高达50倍,在工业上有几大的应用前景。
具体实施方式
以下通过实施例来进一步阐明本发明,下列实施例用于说明目的而非用于限制本发明范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,基本上都按照常见的分子克隆手册所述的条件进行操作。
实施例1温敏型λ阻遏蛋白基因λcItS857核酸序列,λ噬菌体PL启动子核酸序列、多克隆位点MCS1核酸序列的克隆
提供温敏型λ阻遏蛋白基因λcItS857,λ噬菌体PR启动子序列是载体pDN707(C.A.Love et al.,1996,Stable high-copy number λpromoter vectors for overproduction of proteins in Escherichia coli,gene,176,49-53)。而多克隆位点MCS1核酸序列为人工合成,且在引物设计中引入多克隆位点MCS1。设计引物PCR扩增得到pDN707载体上2631至3737的核苷酸序列A1。所用的上游引物为:
P1:5’-CTGCAGGTGATGATTATCAGCCAGCAG-3’(下划线Pst1酶切位点)。
下游引物为:
P2:5’-CAGCTGAGTACTCATATGGATATCAGATCTTTAGCTGTCTTGGTTTGCCCAAAGC-3’(下划线为MCS1核酸序列,包含的酶切位点有PvuII、ScaI、NdeI、EcoRV、BglII)
PCR产物经胶回收、PstI/PvuII双酶切后,低融点胶回收备用。
实施例2PL启动子核酸序列和多克隆位点MCS2核酸序列的的克隆
提供PR启动子核酸序列是载体仍然是pDN707(C.A.Love et al.,1996,Stable high-copy numberλpromoter vectors for overproduction of proteins in Escherichia coli,gene,176,49-53)。而多克隆位点MCS2核酸序列为人工合成,且在引物设计中引入多克隆位点MCS2。设计引物PCR扩增得到pDN707载体上3738至3984的核苷酸序列A2。所用的上游引物为:
P3:5’-AGATCTGATATCCATATGAGTACTCAGCTGTCACCTACCAAACAATGCCCCCCTG-3’(下划线为MCS1核酸序列)
下游引物为:
P4:5’-GGATCCTCTAGAGTTAACGAGCTCCCATGGCAATGCTTCGTTTCGTATCAC-3’(下划线为MCS2核酸序列,包含的酶切位点有BamHI、XbaI、HpaI SacI、NcoI)
PCR产物经胶回收、BglII/NcoI双酶切后,低融点胶回收备用。
实施例3温敏型λ阻遏蛋白基因λcItS857核酸序列和λ噬菌体PR启动子、多克隆位点MCS1、λ噬菌体PL启动子、多克隆位点MCS2核酸序列的克隆
以实例1和实例2所得到的PCR片段A1,A2为模板,通过重叠PCR技术,利用引物P1和P4,PCR扩增得到含有温敏型λ阻遏蛋白基因λcItS857核酸序列和λ噬菌体PR启动子、多克隆位点MCS1、λ噬菌体PL启动子、多克隆位点MCS2核酸序列的核酸片段A3
PCR产物经胶回收、PstI/BamHI双酶切后,低融点胶回收备用。
实施例4表达载体pSV-T的构建
p15A复制子核酸序列,卡那霉素抗性基因序列来自于载体pACYC17(Chang AC,Cohen SN.,1978,Construction and characterization of amplifiable multicopy DNA cloning vehicles derived from the p15A cryptic miniplasmid,J.Bacteriol.,134(3),1141-1156;)。用PstI/BamHI双酶切载体pACYC17,然后分离出3026bp的DNA片段B1,低熔点胶回收备用;将实例3中得到的DNA片段A3与DNA片段A2混合在一起,用连接酶连接过夜,经测序验证连接正确和核苷酸序列正确,从而构建成载体pSV-T。载体pSV-T的物理图谱如附图1所示,其酶切图谱如图4所示。
实例5表达载体pSV03.的构建
克隆表达E.coli来源的抗aroFFbr和色氨酸操纵子trpEFbrDCBA
1.抗反馈调节作用基因aroFFbr的获得
基因aroF和trpEDCBA均是E.coli色氨酸合成途径中的关键酶基因,其中由aroF和trpED分别编码的DAHP合成酶和邻氨基苯甲酸合成酶均受到终端产物色氨酸的反馈抑制作用。因此本实例中首先涉及aroF和trpED抗反馈调节突变基因aroFFbr和trpEFbrD的获得。
aroF基因由实验室保藏的质粒pMD18-T/aroF提供,以载体pMD18-T/aroF为模板,由PCR反应得到突变后,由aroF编码的DAHP合成酶氨基酸序列缺失了第十一个氨基酸Lie,从而获得了抗色氨酸反馈调节的pMD18-T/aroFFbr序列。定点突变所用的上游引物为:
P3:5’-GCTGAATAACGTACATACCGACGAACAGG-3’
下游引物为:
P4:5’-CCTGTTCGTCGGTATGTACGTTATTCAGC-3’。
2.质粒pSV03.的构建
TrpEFbrDCBA基因由实验室保藏质粒pMD18-T/TrpEFbrDCBA提供。分别酶切质粒pMD18-T/aroFFbr和pMD18-T/TrpEFbrDCBA,将获得的aroFFbr和TrpEFbrDCBA基因序列分别克隆入质粒pSV-T的BglII/ScaI和BamHI/Ncol位点,形成质粒pSV03。
实施例6发酵生产色氨酸
1.工程菌的构建
将表达载体pSV03电转E.coli模式菌BW25113的衍生菌JW3686(E.coli Genetic Stock Center,Yale University),涂布于含有50μg/ml 卡那霉素的平板,挑选阳性菌种,进行PCR鉴定,建立产色氨酸的基因工程菌JW3686/pSV-T3。
2.种子培养
将基因工程菌JW3686/pSV-T3,接入含50μg/ml卡那霉素的LB培养基中,50ml培养基放入250ml的培养瓶中,37℃,转速为200rpm,培养时间为10~12小时,培养后OD600吸光值在4~5之间。
3.发酵罐培养:
发酵培养基组份浓度:0.3%(W/V)MgSO4·7H2O,0.0015%(W/V)CaCl2·H2O,0.3%(W/V)KH2PO4,0.1%(W/V)NaCl,0.5%(W/V),(NH4)2SO4,0.0075%(W/V)FeSO4·7H2O,0.01%(W/V,Na-Citrate,0.4%(W/V)Tryptone,0.2%(W/V)Yeast Extract,1.5%(W/V)glucose。
1.5ml/L微量元素液:
0.2%(W/V)Al2(SO4)3·18H2O,0.075%(W/V)
CoSO4·7H2O,0.25%(W/V)CuSO4·5H2O,0.05%(W/V)
H3BO3,2.4%(W/V)MnSO4·H2O,0.3%(W/V)
Na2MoO4·2H2O,0.25%(W/V)NiSO4·6H2O,1.5%(W/V)
ZnSO4·7H2O。
发酵过程补料:
葡萄糖500~600g/L
上述培养基在发酵罐中高压灭菌,用前无菌加入卡那霉素终浓度为50μg/ml。
发酵参数为:发酵前期培养温度为30℃,菌体对数生长中期时开始升温诱导,温度控制在38℃;pH值使用氨水控制在7.0;通气量为每升培养基1L/min;溶解氧控制在20%以上;搅拌速率与溶氧偶联。
发酵时以5%的比例在发酵罐中加入种子培养基,发酵3~4h,葡萄糖基本耗尽时,开始流加葡萄糖,保持发酵培养基中葡萄糖的浓度在0.5~2g/L。
发酵48h时,停止发酵,取菌液离心,取上清液测定色氨酸的产量,发现发酵液中最高可积累色氨酸11g/L。与不添加质粒pSV03的菌株JW3686发酵情况相比,色氨酸产量提高10倍以上。可见载体pSV-T在代谢工程中的应用具有广泛的前景。
此外应理解,在阅读了本发明的上述讲述内容之后,本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改,这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。