CN104293928A - 一种定量核酸外切酶i活性测定方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种定量核酸外切酶I活性测定方法,所述方法包括以下步骤:首先提供与单链DNA模板互补的引物,随后加入核酸外切酶I进行外切反应;外切反应后,加入单链DNA模板并退火,形成单链DNA模板/引物复合物;其后加入聚合酶,合成双链DNA;接着测定反应体系中单链或双链DNA的相对量,并由测定结果推导出核酸外切酶I活性程度,其中核酸外切酶I活性程度与反应体系中双链DNA的量成反比。与现有技术相比,本发明的方法无放射性污染,操作简单便捷,可以对核酸外切酶Ⅰ活性进行定量的检测分析。
Description
技术领域
本发明属于生化技术领域,具体来说涉及一种定量核酸外切酶I活性测定方法。
背景技术
核酸外切酶I(Exonuclease I, ExoI)是单链特异性3’→5’核酸外切酶,从ssDNA的3’-OH末端分解生成5’-单核苷酸。对单链DNA的特异性非常高,不分解双链DNA及RNA。
核酸外切酶I对单链DNA的高度特异性,使其成为分子生物学领域中一种非常重要的工具酶,应用非常广泛。例如,在PCR反应完成后,在产物中直接加入核酸外切酶I和虾碱性磷酸酶,降解剩余的引物和dNTP。消化过的PCR产物经过80℃加热后,即可直接进行测序反应而不需要纯化。
标准的核酸外切酶I测活方法采用放射性同位素法。核酸外切酶I以3’末端[3H]标记的单链寡核苷酸为底物,生成带[3H]标记的dNTP。产物经TCA沉淀后,用whatman滤纸过滤,以实现[3H]标记的dNTP和寡核苷酸的分离。通过测定酸可溶性产物中的放射性同位素的量,计算核酸外切酶I的活性。放射性同位素法存在易产生放射性污染、步骤多、周期长的缺陷,难以实现高通量、自动化。
发明内容
本发明的目的在于建立了一种简便、快速、非放射性且定量的核酸外切酶I测活方法,其原理如图1所示。
具体来说,本发明采用如下技术方案:
一种定量核酸外切酶I活性测定方法,其特征在于,所述方法包括以下步骤:首先提供与单链DNA模板互补的引物,随后加入核酸外切酶I进行外切反应;外切反应后,加入单链DNA模板并退火,形成单链DNA模板/引物复合物;其后加入聚合酶,合成双链DNA;接着测定反应体系中单链或双链DNA的相对量,并由测定结果推导出核酸外切酶I活性程度,其中核酸外切酶I活性程度与反应体系中双链DNA的量成反比。
优选地,双链DNA或单链DNA的相对量是利用荧光染料,通过荧光法测得的,并且双链DNA或单链DNA的相对量是以荧光强度表示的。更优选,所采用的荧光染料是双链DNA特异性荧光染料,例如可在市面上商购获得的picogreen染料。
优选地,所采用的单链DNA模板是单链环状DNA模板。更优选,所采用的单链DNA模板是M13噬菌体单链DNA,以便于建立标准测定方法。
作为标准测定方法的一个实例,所采用的聚合酶为Taq酶。
本发明的优点:
1. 无放射性污染;
2. 操作步骤简单,重复性好,稳定性强,反应迅速;
3. 可以对核酸外切酶Ⅰ活性进行定量的检测分析,便于操作。
附图说明
图1是本发明测定方法原理图。
图2是核酸外切酶Ⅰ活性-荧光强度曲线图。
具体实施方式
本发明建立了一种简便、快速、非放射性且定量的核酸外切酶I测活方法,其原理如图1所示。
如图1所示,加入单链DNA,如M13 ssDNA后,单链DNA引物可与其形成匹配的模板/引物复合物,如M13模板/引物复合物,Taq酶可以模板/引物复合物如M13模板/引物复合物为底物,进行聚合反应,生成M13双链DNA。M13双链DNA可被双链特异性的picogreen染料结合,产生荧光。ExoI酶可降解单链DNA引物,从而减少M13模板/引物复合物的量。ExoI酶的活性在一定范围内同M13模板/引物复合物的量成反比;而在DNA聚合酶活性一定的情况下,M13模板/引物复合物的量同荧光强度成正比。因此,本发明将ExoI酶的测活体系同DNA聚合酶测活体系偶联起来,在一定范围内,ExoI酶的活性同荧光强度成反比。
本发明人进一步证明了上述假设,从而建立了非放射性、简便、快速且可以定量的核酸外切酶Ⅰ测活方法。
作为本发明测定方法的一个实例,一个采用M13单链DNA作为单链模板的本发明测定方法包括如下基本步骤:
M13单链DNA:M13mp18单链DNA (NEB);
单链DNA引物:M13引物5’-aagccatccgcaaaa-3’;
1. ExoⅠ反应:
2. 聚合酶反应:
3. picogreen荧光检测:
向反应产物中加入0.5 μl picogreen染料(invitrogen P11495);用荧光酶标仪检测,激发波长为480 nm,发射波长为520 nm。
5. 标准曲线绘制及待测样品酶活计算:
标准品活力单位(U)的log值为横坐标,荧光强度为纵坐标,用GraphPad Prism5做非线性回归曲线。根据待测样品荧光强度,软件即可自动回算出待测样品的酶活(U/μl)。
下面将结合具体实施例来进一步说明本发明。
实施例1. “荧光法”测定核酸外切酶Ⅰ活性的可行性验证
M13单链DNA:M13mp18单链DNA (NEB);
单链RNA引物:M13引物5’-aagccatccgcaaaa-3’;
核酸外切酶Ⅰ:NEB M0293L,来源自重组大肠杆菌(E. coli)菌株,携带克隆自大肠杆菌的核酸外切酶Ⅰ基因。
核酸外切酶Ⅰ反应:
温度 | 时间 |
37℃ | 30分钟 |
4℃ | 保持 |
DNA聚合酶反应:
*1-12号管加入对应管号的核酸外切酶Ⅰ反应产物。
温度 | 时间 |
72℃ | 30分钟 |
4℃ | 保持。 |
picogreen荧光检测
向反应产物中加入0.5 μl picogreen染料(invitrogen P11495);用荧光酶标仪检测,激发波长为480 nm,发射波长为520 nm。检测结果如下表:
这一结果表明:
a. M13模板/引物复合物可被Taq酶催化聚合反应,生成M13双链DNA;
b. 核酸外切酶Ⅰ可以将单链DNA引物(M13引物)降解。在一定范围内,核酸外切酶Ⅰ的活性与M13模板/引物复合物的量成负相关,而M13模板/引物复合物的量又显然与picogreen荧光强度成正相关,因此核酸外切酶Ⅰ的活性与荧光强度成负相关,这点已被上表的结果所证明。
通过本实施例,我们将核酸外切酶Ⅰ的反应同DNA聚合酶反应偶联起来,可以实现对核酸外切酶Ⅰ活性的快速、简便的表征,为后续核酸外切酶Ⅰ活性的精确测定奠定了基础。本方法的原理如图1所示。
实施例2. 核酸外切酶Ⅰ活性-荧光强度曲线的绘制及EC50计算
以2#-12#的核酸外切酶Ⅰ活性单位单位(mU)的log值为横坐标,荧光强度为纵坐标,用GraphPad Prism5做非线性回归曲线。我们发现,这些数据点可以很好地拟合出一条倒S型曲线,如图2所示。
通过多次重复实验并计算曲线的半最大效应浓度 (EC50),我们发现,EC50值在多次实验间保持稳定:
实验 | EC50 (mU) |
1 | 4.071 |
2 | 4.059 |
3 | 4.112 |
4 | 3.989 |
5 | 4.266 |
平均值 (U) | 4.10 |
标准差SD (U) | 0.10 |
变异系数 CV (%) | 2.52 |
因此,这一EC50值可作为本方法即“荧光法”的活性定义。即在实施例1的反应体系中,使荧光强度达到最大值一半的核酸外切酶Ⅰ酶量定义为1个荧光法单位(Fluoresence Unit, FU);1 FU=4.10 mU。
上面结合附图和具体实施例对本发明的实施方式作了详细的说明,但是本发明不限于上述实施方式,在所属技术领域普通技术人员所具备的知识范围内,还可以在不脱离本发明宗旨的前提下做出各种变化。
Claims (7)
1. 一种定量核酸外切酶I活性测定方法,其特征在于,所述方法包括以下步骤:首先提供与单链DNA模板互补的引物,随后加入核酸外切酶I进行外切反应;外切反应后,加入单链DNA模板并退火,形成单链DNA模板/引物复合物;其后加入聚合酶,合成双链DNA;接着测定反应体系中单链或双链DNA的相对量,并由测定结果推导出核酸外切酶I活性程度,其中核酸外切酶I活性程度与反应体系中双链DNA的量成反比。
2. 如权利要求1所述的定量核酸外切酶I活性测定方法,其特征在于,双链DNA或单链DNA的相对量是利用荧光染料,通过荧光法测得的,并且双链DNA或单链DNA的相对量是以荧光强度表示的。
3. 如权利要求2所述的定量核酸外切酶I活性测定方法,其特征在于,所采用的荧光染料是双链DNA特异性荧光染料。
4. 如权利要求3所述的定量核酸外切酶I活性测定方法,其特征在于,所采用的染料是picogreen染料。
5. 如权利要求1所述的定量核酸外切酶I活性测定方法,其特征在于,所采用的单链DNA模板是单链环状DNA模板。
6. 如权利要求5所述的定量核酸外切酶I活性测定方法,其特征在于,所采用的单链DNA模板是M13噬菌体单链DNA。
7. 如权利要求1所述的定量核酸外切酶I活性测定方法,其特征在于,所采用的聚合酶为Taq酶。
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CN109652501A (zh) * | 2017-10-12 | 2019-04-19 | 深圳华大智造科技有限公司 | 一种检测核酸酶对特定碱基3′-5′外切活性的方法和试剂盒 |
CN110904187A (zh) * | 2019-11-05 | 2020-03-24 | 翌圣生物科技(上海)有限公司 | 一种Taq酶活性测定方法 |
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Non-Patent Citations (1)
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