CN103695380B - 果糖氨基酸氧化酶、制备方法及含该酶的糖化白蛋白检测试剂盒 - Google Patents

果糖氨基酸氧化酶、制备方法及含该酶的糖化白蛋白检测试剂盒 Download PDF

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Abstract

本发明公开一种果糖氨基酸氧化酶，具有SEQID.No.1所示的氨基酸序列或与该氨基酸序列有80%以上同源性的果糖氨基酸氧化酶中，其选自以下（a）至（f）中的氨基酸对应的位置上具有1个或更多的氨基酸残基进行取代，所得的果糖氨基酸氧化酶具有更高的热稳定性：（a）59位的谷氨酸，（b）98位的谷氨酸，（c）225位的甘氨酸，（d）277位的赖氨酸，（e）285位的谷氨酸，（f）355位的天冬氨酸。本发明还公开了上述酶的制备方法和含有该酶的测定糖化白蛋白的试剂盒，具有更高的热稳定性并能精确地测定糖化白蛋白。

Description

果糖氨基酸氧化酶、制备方法及含该酶的糖化白蛋白检测试剂盒
技术领域
本发明涉及体外诊断领域，具体说是提供一种热稳定性高的果糖赖氨酸氧化酶突变体，一种用于测定糖化白蛋白的方法，一种测定糖化白蛋白的试剂盒。本发明可用于临床检验，能够精确地测定糖化白蛋白。
背景技术
糖尿病是发生在高血糖人群中的一类代谢型疾病，可导致机体多数系统受到严重的损害，尤其是神经及血管。根据世界卫生组织预计，中国糖尿病人数已居世界第一位。糖尿病将成为未来50年中国最严重的公共卫生问题。
糖化白蛋白（Glycatedalbumin，GA）是指人血清中葡萄糖与白蛋白N末端发生非酶促糖化反应而形成的产物，其中90%与白蛋白链内的赖氨酸ε-NH2残基发生反应，其反应原理为两者首先形成不稳定的葡基胺（Glycosylamine）或Schiff碱基（SchiffBase），后者再经不可逆的葡糖胺（Amadori）重排反应形成稳定的氨基酮（酮胺）。因白蛋白的半衰期大约是20天，所以糖化白蛋白检测可被用于检测过去2-3周平均血糖水平。目前，糖化白蛋白已成为一项糖尿病患者必不可少的检测项目，与糖化血红蛋白相比，其更适合作为评估糖尿病透析患者住院治疗及死亡风险的指标。
所以如何能精确地测定出人血清中的糖化白蛋白量成为临床检测糖化白蛋白的关键。目前市场主要采用酶法用于检测人血清中的糖化白蛋白。其反应原理为首先使用蛋白酶将糖化蛋白消化成低分子量的糖化多肽，随后使用果糖氨基酸酶催化糖化多肽发生氧化反应生成多肽（或氨基酸），葡萄糖醛酮和H2O2。释放的H2O2通过终点反应比色法来测定，其在600nm处的吸收值与糖化白蛋白的浓度成比例。具体反应过程如下：
由上述反应原理和反应步骤可知，果糖氨基酸氧化酶为糖化白蛋白测定中的关键酶，果糖氨基酸氧化酶成为能否精确地测定人血清中糖化白蛋白的关键。
果糖氨基酸氧化酶又可以称为果糖氨基酸酶，阿马道里酶，酮氨氧化酶等。已经在许多细菌、酵母和真菌中发现了这类果糖氨基酸氧化酶，例如有来自曲霉属（Aspergillus）、青霉属（Penicillium）、镰孢属（Fusarium）、毕赤酵母属（Pichia）、锥毛壳属（Coniochaeta）、正青霉属（Eupencillum）、棒杆菌属（Corynebacterium）等（非-专利文件1Lin,Z.andJ.Zheng(2010)."Occurrence,characteristics,andapplicationsoffructosylamineoxidases(amadoriases)."ApplMicrobiolBiotechnol86(6):1613-1619.）。上述果糖氨基酸氧化酶均有可能应用于糖化白蛋白检测试剂盒。但同时，由于在实际应用中诊断试剂盒需要一定时间的保存，对稳定性有较高的要求，因而要求所使用的原料—酶—也应该稳定。而上述公开资料所显示的酶的热稳定性均不太理想。来自土曲霉（Aspergillusterreus）GP1的果糖氨基酸氧化酶在45℃热处理10分钟显示残留酶活为约40%（非-专利文件2:Yoshida,N.,Y.Sakai,etal.(1996)."Primarystructuresoffungalfructosylaminoacidoxidasesandtheirapplicationtothemeasurementofglycatedproteins."EuropeanJournalofBiochemistry242(3):499-505.）。来自尖孢镰孢（Fusariumoxysporum）S-1F4的果糖氨基酸氧化酶的45℃热处理5分钟显示残留酶活为约10%（非-专利文件3:Sakai,Y.,N.Yoshida,etal.(1995)."PurificationandpropertiesoffructosyllysineoxidasefromFusariumoxysporumS-1F4."Bioscience,biotechnology,andbiochemistry59(3):487.）。来自ConiochaetidiumsavoryiATCC36547的果糖氨基酸氧化酶在37℃热处理30分钟显示残留酶活为80%（日本专利申请公开号2004-275013;）。正是由于现有的果糖氨基酸氧化酶的热稳定性较差，使得目前市场上的糖化白蛋白检测试剂盒稳定性都不能满足要求，很多情况下，都是在试剂盒中添加大量的稳定剂，以提高试剂盒的稳定性（国际专利申请公开号WO2002061119A1），这就导致了试剂的粘度较高，以及其它一系列问题，不利于在生化仪上的应用。
所以急需开发一种热稳定性高的果糖氨基酸氧化酶，并利用该果糖氨基酸氧化酶研发出一种既具有高灵敏度，又能长期稳定的糖化白蛋白检测试剂盒。
发明内容
本发明针对现有技术的上述不足，提供一种具有高热稳定性的果糖氨基酸氧化酶。
由于来自于烟曲霉（Aspergillusfumigatus）的AmadoriaseI（其氨基酸序列为序列1即SEQID.No.1所示序列，其核苷酸序列为序列2即SEQID.No.2所示序列）具有对底物果糖赖氨酸的活性远远大于果糖缬氨酸的特点（非-专利文件4:Mennella,C.,R.C.Borrelli,etal.(2005)."SubstratespecificityofamadoriaseIfromAspergillusfumigatus."AnnNYAcadSci1043:837-844.），该特点使得其特别适合于糖化白蛋白检测试剂盒，因为糖化白蛋白的糖基化位点正是赖氨酸残基，与糖化血红蛋白的缬氨酸残基相区别，有利于在检测中降低其它因素的干扰。因此以此为出发，对该酶进行改造，以提高其热稳定性。由于AmadoriseI的序列与先前报道的FAOX-TE和FPOX-CE的序列同源性很低（非-专利文件5：Sakaue,R.andN.Kajiyama(2003)."Thermostabilizationofbacterialfructosyl-aminoacidoxidasebydirectedevolution."Appliedandenvironmentalmicrobiology69(1):139-145.非-专利文件6：Hirokawa,K.,A.Ichiyanagi,etal.(2008)."Enhancementofthermostabilityoffungaldeglycatingenzymesbydirectedevolution."ApplMicrobiolBiotechnol78(5):775-781.），因此无法通过简单的序列比对获得相关信息，而必须通过大量的创造性的研究来对该酶改造的相关信息。
具体而言是利用随机突变的方法，提高AmadoriseI的热稳定性，方法如下：
(1)以AmadoriseI的果糖氨基酸氧化酶基因序列为模板，进行易错PCR扩增，建立果糖氨基酸氧化酶的突变文库；
(2)将所述突变文库转入大肠杆菌，利用96孔板进行培养，并诱导表达；
(3)将细菌进行原位裂解，并利用醌法测定酶活性，筛选出热稳定性高的果糖赖氨酸氧化酶。
本发明以核苷酸序列2为模板，设计引物序列3（5’-atggcgccttcaattttgagcactg-3’）和引物序列4(5’-ttacggacctctgctctctccaatc-3’)，进行易错PCR，通过合理控制PCR反应体系中锰离子的浓度，将突变频率控制在1～2个核苷酸突变/1Kb核苷酸。将所获得的含突变核苷酸的片段纯化后，以含核苷酸序列2的pET-22b质粒为模板进行全质粒PCR（WHOP-PCR）（非-专利文件7:Miyazaki,K.(2003).CreatingrandommutagenesislibrariesbymegaprimerPCRofwholeplasmid(MEGAWHOP).DirectedEvolutionLibraryCreation,Springer:23-28），所得产物用限制性内切酶DpnI进行酶切消化，去除模板质粒。之后，转化TOP10感受态细胞，涂布于含氨苄抗生素的LB固体平板上，所得克隆约为10000个，故该随机突变所获得的库容量约为10000个。
将所得克隆用涂布棒混匀后，收集于离心管中，抽质粒，所得质粒转化BL21（ED3），以备下一步筛选用。接着，将上述转化子接种于96孔板中，所用培养基为150ulLB/每孔，含氨苄抗生素，该孔板作为保留板。次日按照相同顺序转接至另一块96孔板中，所用培养基为150ulLB/每孔，同时添加氨苄抗生素和IPTG进行诱导，于37℃下培养6小时，3800rpm离心收菌，去掉培养基，该孔板作为分析板。
在分析板中加入150ul裂解液（100mMTris，pH8.0；0.4mg/ml脱氧胆酸钠;0.8mg/mlCTAB；20mMKCl；80mMMgSO4）。于室温下裂解半小时后，3800rpm离心15分钟，取50ul裂解液于一块新的96孔板中。另取50ul裂解液于96孔PCR板中，置于96孔PCR仪中，在50℃下加热处理15分钟，转移至另一块96孔板中。在上述两块中分别加入100ul的显色液（Tris，100mM，pH8.0；TOOS溶液，15mM；4-APP，0.5mM；POD，40U/ml；果糖赖氨酸，15mM）。通过30分钟的显色，利用酶标仪记录其吸光值。通过计算两者吸光度的比值，判断热处理后的粗酶液的残留酶活比例。对于热稳定性提高了的突变株，其理论上的酶活残留比例将较野生型高。
本发明通过对10000多个突变株的筛选后，总共筛选获得了6个热稳定性有所提高的突变株。经测序分析，发现这6个突变株均为单碱基突变，其核苷酸序列突变分别为177G→T，293A→C，764G→C，830A→C，853G→C，1063G→C，相应的氨基酸序列突变分别为59E→N，98E→A，225G→A，277K→S，285E→Q，355D→H。
由于上述6个位点的突变提高的其热稳定性，故而如果上述突变成其他氨基酸，其热稳定性较野生型高的可能性也非常高。因而,本发明又大量尝试了上述位点的其他突变。同时，因为考虑到若将单一突变位点进行叠加，可以进一步提高热稳定性，所以也尝试了各种不同突变位点的组合。
对于59号位点的Glu，通过定点突变的方法，分别替代为其他19种氨基酸，构建19种突变质粒，对这19种突变质粒分别转化表达菌株BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现绝大部分突变株的热稳定性有所提高，其中以下突变体的热稳定性提高较为明显，分别是L，I，V，F，M，W，T，C，N，Y，D，H。
对于98号位点的Glu，通过定点突变的方法，分别替代为其他19种氨基酸，构建19种突变质粒，对这19种突变质粒分别转化表达菌株BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现绝大部分突变株的热稳定性有所提高，其中以下突变体的热稳定性提高较为明显，分别是A，L，I，V，P，F，S，T，C，N，Y，D，H。
对于225号位点的Gly，通过定点突变的方法，分别替代为其他19种氨基酸，构建19种突变质粒，对这19种突变质粒分别转化表达菌株BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现绝大部分突变株的热稳定性有所提高，其中以下突变体的热稳定性提高较为明显，分别是A，L，F，M，W，S，N，D。
对于277号位点的Lys，通过定点突变的方法，分别替代为其他19种氨基酸，构建19种突变质粒，对这19种突变质粒分别转化表达菌株BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现绝大部分突变株的热稳定性有所提高，其中以下突变体的热稳定性提高较为明显，分别是A，L，I，F，S，T，N，Y，R，H。
对于285号位点的Glu，通过定点突变的方法，分别替代为其他19种氨基酸，构建19种突变质粒，对这19种突变质粒分别转化表达菌株BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现绝大部分突变株的热稳定性有所提高，其中以下突变体的热稳定性提高较为明显，分别是A，L，I，F，M，W，Q，N。
对于355号位点的Asp，通过定点突变的方法，分别替代为其他19种氨基酸，构建19种突变质粒，对这19种突变质粒分别转化表达菌株BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现绝大部分突变株的热稳定性有所提高，其中以下突变体的热稳定性提高较为明显，分别是L，I，V，F，M，W，T，C，Y，R，H。
通过对以上位点的具体分析，发现这些位点确实都对该酶的热稳定性有较大贡献。为此，考虑到若将不同的突变位点进行组合，极有可能会进一步提高酶的热稳定性。所以又对不同的突变位点进行了组合，比如2个位点组合，3个位点组合，4个位点组合，5个位点组合，6个位点组合。但是由于每个位点都有十个甚至更多的氨基酸突变可以选择，其不同位点的组合将是一个天文数字，不可能每一个都进行研究。故而只能选取其中较有代表性的突变组合，以此来说明上述位点的组合是有效的。
对于2个突变位点的组合，通过定点突变的方法，将其突变为以下几种突变体：59E→F，98E→C；59E→F，225G→D；59E→F，277K→N；59E→F，285E→F；98E→P，225G→N；98E→P，277K→S；225G→L，277K→A；225G→L，285E→I；277K→Y，355D→T；285E→I，355D→W；将构建好的突变株转化至BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现这些突变株的热稳定性进一步提高。
对于3个突变位点的组合，通过定点突变的方法，将其突变为以下几种突变体：59E→F，98E→C，225G→F；59E→F，225G→D，277K→N；59E→F，277K→N，285E→I；98E→P，225G→N，285E→Q；225G→L，285E→I，355D→T；将构建好的突变株转化至BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现这些突变株的热稳定性进一步提高。
对于4个突变位点的组合，通过定点突变的方法，将其突变为以下几种突变体：59E→F，98E→C，225G→F，277K→N；59E→F，225G→D，277K→N，285E→F；，将构建好的突变株转化至BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现这些突变株的热稳定性进一步提高。
对于5个突变位点的组合，通过定点突变的方法，将其突变为以下几种突变体：59E→F，98E→C，225G→F，277K→N，285E→F；将构建好的突变株转化至BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现这些突变株的热稳定性进一步提高。
对于6个突变位点的组合，通过定点突变的方法，将其突变为以下几种突变体：59E→F，98E→C，225G→F，277K→N，285E→F，355D→L；将构建好的突变株转化至BL21（DE3），进行培养，诱导，表达，纯化，酶学性质分析，结果发现这些突变株的热稳定性进一步提高。
同时，作为一般惯用手段，在同源性很高的两条序列之间，其结构和功能往往很相似，对其中一个序列进行突变获得的有益效果，在另外一条同源性很高的序列之上进行同样的突变，一般来说同源性80%以上，优选地90%以上，更优选地96%以上，最为优选地99%以上，往往也会获得相似的有益效果。因而本发明在此基础上，对与序列2的氨基酸序列同源性等于或高于80%的序列进行了大量突变及其组合突变研究。
来自于以下几个菌株的果糖氨基酸氧化酶被选作试验对象，用以说明与序列1具有80%以上的同源性的酶，其相应位点的突变也将导致该酶热稳定性的增高。这几个菌株分别为：黑曲霉（Aspergillusniger）CBS513.88，棒曲霉（Aspergillusclavatus）NRRL1，新萨托菌（Neosartoryafischeri）NRRL181，烟曲霉（Aspergillusfumigatus）Af293；相应地与序列1的同源性分别为80%，83%，96%，99%。
黑曲霉（Aspergillusniger）CBS513.88与序列1的同源性为80%，其相应的突变位点为59E，98E，225G，277K，285E，355D，通过有选择性的挑选几种单个氨基酸突变，以及几种不同位点的组合突变，发现的确该酶的热稳定性也有不同程度的提高。比如以下的突变株热稳定性提高尤为明显：59E→F，98E→C，225G→F，277K→N，285E→F，355D→L。
棒曲霉（Aspergillusclavatus）NRRL1与序列1的同源性为83%，其相应的突变位点为59E，98E，225G，277N，285E，355D，通过有选择性的挑选几种单个氨基酸突变，以及几种不同位点的组合突变，发现的确该酶的热稳定性也有不同程度的提高。比如以下的突变株热稳定性提高尤为明显：59E→F，98E→C，225G→F，285E→F，355D→L。
新萨托菌（Neosartoryafischeri）NRRL181与序列1的同源性为96%，其相应的突变位点为59E，98E，225G，277K，285E，355D，通过有选择性的挑选几种单个氨基酸突变，以及几种不同位点的组合突变，发现的确该酶的热稳定性也有不同程度的提高。比如以下的突变株热稳定性提高尤为明显：59E→F，98E→C，225G→F，277K→N，285E→F，355D→L。
烟曲霉（Aspergillusfumigatus）Af293与序列1的同源性为99%，其相应的突变位点为59E，98E，225G，277K，285E，355D，通过有选择性的挑选几种单个氨基酸突变，以及几种不同位点的组合突变，发现的确该酶的热稳定性也有不同程度的提高。比如以下的突变株热稳定性提高尤为明显：59E→F，98E→C，225G→F，277K→N，285E→F，355D→L。
本发明中氨基酸的突变均用缩写字符代替，其为公知常识，具体含义如下：甘氨酸G，丙氨酸A，亮氨酸L，异亮氨酸I，缬氨酸V，脯氨酸P，苯丙氨酸F，甲硫氨酸M，色氨酸W，丝氨酸S，谷氨酰胺Q，苏氨酸T，半胱氨酸C，天冬酰胺N，酪氨酸Y，天冬氨酸D，谷氨酸E，赖氨酸K，精氨酸R，组氨酸H。本发明中285E→F，代表第285位的谷氨酸突变为苯丙氨酸，其余亦类似。
这里值得说明的是，本研究所使用的载体为pET-22b，宿主菌（宿主细胞）为BL21（DE3）。根据一般常识，任何简单的进行载体更换，如pET-20b，pET-28b，pET-32a，pQE30，pTrc99a等，或者进行宿主菌更换，如Rosetta，Origami，M15等，都应当被认为具有相同的技术效果，都将被认为落入权利要求保护范围之内。任何在突变酶的N端或C端添加纯化标签，已经信号肽的行为，也应当被认为落入权利要求保护范围之内。
作为一般地，可以利用已经公知的酶的表达纯化技术来进行果糖氨基酸氧化酶的制备。例如，接种相应的突变株菌种，待OD600生长至0.5～1时，进行异丙基硫代半乳糖苷（IPTG）诱导，此时为了有利于其表达，可以选择低温诱导，如25℃，20℃，16℃等，根据诱导温度及表达情况，确定最适的诱导时间，以获得最佳的表达量。表达之后可以利用常规方法进行离心，超声破碎，SDS-PAGE检测表达量等。至于纯化时，可以利用重组酶所带的标签选择相应的方法。例如，若重组质粒含有His-tag，可以利用镍柱进行亲和纯化。
可以利用上述具有良好热稳定性的果糖氨基酸氧化酶，进行糖化白蛋白检测方法的研发，并进一步开发出糖化白蛋白检测试剂盒。
其主要原理是，选择适当的缓冲液，在蛋白酶的作用下，糖化白蛋白被降解成果糖氨基酸或者果糖多肽，此时在果糖氨基酸氧化酶的作用下，将果糖氨基酸或者果糖多肽氧化成葡萄糖、氨基酸或者多肽、过氧化氢，同时消耗一定的氧气。然后通过测定产物的生产或者是底物的消耗量，来计算出样本中糖化白蛋白的含量。
样本要求：理论上只要是含有糖化白蛋白、糖化多肽、糖化氨基酸的样本都可以作为检测用的样本。由于本方法主要应用于临床检验，故常见的样本为血清。理论上应当避免溶血，样本采集后应当在2～8℃保持并及时测定。
缓冲液：任何适当浓度及pH的缓冲液都能在此使用，只要其对检测过程的酶活反应无抑制作用，不干扰检测过程即可。典型的缓冲液有：三羟甲基氨基甲烷盐酸盐缓冲液、乙酸-乙酸钠缓冲液、邻苯二甲酸-盐酸缓冲液或甘氨酸-盐酸缓冲液等。缓冲液的浓度可根据情况而确定，优选20～200mmol/L，更为优选地为50～100mmol/L。
蛋白酶：任何能够降解糖化白蛋白的蛋白酶都可以用于此，优选地有胰蛋白酶、嗜碱性蛋白酶、蛋白酶A、蛋白酶K等。所添加的蛋白酶应当促使糖化白蛋白能够充分降解，根据其不同来源，相应的浓度应为10～100KU/L，优选40KU/L。
产物的生成：产物的生成主要有三种，即葡萄糖、氨基酸、过氧化氢。可以通过测定这三种产物中的任何一种，来计算确定糖化白蛋白的含量。
葡萄糖的测定可以通过己糖激酶法测定，其原理是在己糖激酶催化下，葡萄糖和ATP发生磷酸化反应，生成葡萄糖-6-磷酸(G-6-P)与ADP。前者在葡萄糖-6-磷酸脱氢酶(G6PD)催化下脱氢，生成6-磷酸葡萄糖酸(6-GP)，同时使NADP还原成NADPH，NADPH的生成速率与葡萄糖浓度呈正比，在波长340nm监测吸光度升高速率，计算葡萄糖浓度。
氨基酸可以通过与荧光胺反应，最终测定荧光来测定。
过氧化氢则可以通过偶联过氧化物酶生成H2O2，再通过Trinder反应，生成颜色来检测。这里的色原可以是N,N-二(4-磺丁基)-3-甲基苯胺二钠盐（TODB），N-乙基-N-(3-磺丙基)-3-甲基苯胺钠盐（TOPS），N-乙基-N-(2-羟基-3-磺丙基)-3-甲基苯胺钠盐（TOOS）。
底物的消耗，底物主要是指O2，O2的消耗可以通过氧电极来检测。
利用上述方法，可以开发出相应的糖化白蛋白检测试剂盒试剂盒。主要原理是，选择适当的缓冲液，在蛋白酶的作用下，糖化白蛋白被降解成果糖氨基酸或者果糖多肽，此时在果糖氨基酸氧化酶的作用下，将果糖氨基酸或者果糖多肽氧化成葡萄糖、氨基酸或者多肽、过氧化氢，同时消耗一定的氧气。然后通过测定产物的生产或者是底物的消耗量，来计算出样本中糖化白蛋白的含量。在实际应用中，最常用的方法是检测产物中的过氧化氢，即通过Trinder反应来检测，这也是目前绝大多数试剂盒使用的偶联方式，本说明书中的实施例着重以此来进行实验，借以说明，但并不排除试剂盒中可以用检测其它物质来实现对糖化白蛋白的检测。
该糖化白蛋白检测试剂盒试剂盒包含试剂1和试剂2，其中试剂1包含缓冲液，蛋白酶，过氧化物酶，4-氨基安替比林，防腐剂。试剂2包含缓冲液，果糖氨基酸氧化酶突变株，色原，防腐剂。
缓冲液：任何适当浓度及pH的缓冲液都能在此使用，只要其对检测过程的酶活反应无抑制作用，不干扰检测过程即可。典型的缓冲液有：三羟甲基氨基甲烷盐酸盐缓冲液、乙酸-乙酸钠缓冲液、邻苯二甲酸-盐酸缓冲液或甘氨酸-盐酸缓冲液等。缓冲液的浓度可根据情况而确定，优选20～200mmol/L，更为优选地为50～100mmol/L。
蛋白酶：任何能够降解糖化白蛋白的蛋白酶都可以用于此，优选地有胰蛋白酶、嗜碱性蛋白酶、蛋白酶A、蛋白酶K等。所添加的蛋白酶应当促使糖化白蛋白能够充分降解，根据其不同来源，相应的浓度应为10～100KU/L，优选40KU/L。
过氧化物酶：该酶起到偶联作用，根据需要可添加浓度为10～100KU/L，优选地为30KU/L。
防腐剂的目的是防止细菌在试剂盒中的滋生，保证试剂盒长期保存的灵敏度等不受影响。所述的防腐剂有2-甲基-4-异噻唑啉-3-酮、proclin300等。为了有效达到这种目的，防腐剂的添加量应为0.01～0.05%，优选0.02%。
所述的果糖氨基酸氧化酶是指本发明的高热稳定性果糖氨基酸氧化酶，该酶的添加量应当以能够使底物果糖氨基酸或者果糖多肽充分反应为准，所添加的量应为10～100KU/L，优选地为20～50KU/L，最优选地为28KU/L。
本发明所述的色原可以是N,N-二(4-磺丁基)-3-甲基苯胺二钠盐（TODB），N-乙基-N-(3-磺丙基)-3-甲基苯胺钠盐（TOPS），N-乙基-N-(2-羟基-3-磺丙基)-3-甲基苯胺钠盐（TOOS，）色原在试剂盒中的浓度可以为1～10mmol/L，优选地为2mmol/L。
具体的，本发明上述的测定糖化白蛋白的试剂盒，该试剂盒包括试剂1和试剂2，试剂中各组分浓度为：
试剂1：
缓冲液20～200mmol/L
蛋白酶10～100KU/L
过氧化物酶10～100KU/L
4-氨基安替比林5～50mM/L
防腐剂0.01～0.05%
试剂2：
缓冲液20～200mmol/L
上述六个位点中的1个或更多氨基酸取代后所得的果糖氨基酸氧化酶10～100KU/L
色原1～10mmol/L
防腐剂0.01～0.05%。
若将本发明的糖化白蛋白的检测，与白蛋白的检测相结合，可以得出糖化白蛋白浓度除以白蛋白浓度算出糖化白蛋白的百分比值。
由于其性能优于以前的果糖氨基酸氧化酶，使得试剂盒在灵敏度、抗干扰等方面满足要求之外，其长期保持后的各方面性能均无明显下降。
本发明提供了一种稳定、简单、快速、灵敏、准确定量的检测试剂，其检测具有良好的稀释直线性、准确度、精密度，并与HPLC检测法有良好的一致性。本发明同现技术相比，采用本发明的糖化白蛋白测定试剂盒，酶法测定糖化白蛋白，完全可以替代HPLC应用于临床实验室进行大批量样本的测定，其操作简便，线性范围宽，成本低，具有很高的应用价值。
附图说明
图1糖化白蛋白检测线性范围图。
图2本发明与HPLC检测的相关性图。
具体实施方式
下面结合具体实施例进一步阐述本发明，但并不限于下述实施例。
实施例1
突变文库的构建
1、对于序列2所示的的序列，利用全基因合成的方法进行合成，并克隆至pET-22b载体上，所用酶切位点为NdeI和XhoI。以此得到的质粒pET-Ama为以下易错PCR和WHOP-PCR的模板。
2、易错PCR反应体系及条件
表1反应体系为100ul：
名称 体积（ul）
dNTP Mixture（各2.5mM） 8
dTTP(100mM) 0.8
dCTP(100mM) 0.8
10*PCRBuffer 10
上游引物（5mM），序列3 20
下游引物（5mM），序列4 20
MnCl2（5mM） 10
Mg2+（25mM） 14
Taq酶（5U/ul） 1
模板（10ng/ul） 5
水 12
反应条件为：
95℃5min；94℃30sec；55℃30sec；72℃2min；30个循环；72℃10min；4℃保存。
上述的MnCl2用量可以适当进行调整，以便获得合适的突变频率，即1～2核苷酸突变/1Kb核苷酸。
3、WHOP-PCR反应体系及条件
将易错PCR获得的片段，大小约1.4Kb进行胶回收后，用作下一轮WHOP-PCR的引物。
表2WHOP-PCR反应体系，50ul：
WHOP-PCR反应条件：
98℃30sec；98℃10sec；60℃10sec；72℃2.5min；24个循环；72℃5min；4℃保存。
4、酶切及转化
在50ul的WHOP-PCR的产物加入1ul的DpnI进行酶切，于37℃下反应2小时，以彻底除去模板DNA。
将上述酶切后的产物分5管转化TOP10感受态细胞，次日得到总共10000个单克隆以上的库容量。
实施例2
突变文库的筛选
1、培养、诱导、表达
将所得克隆用涂布棒混匀后，收集于离心管中，抽质粒，所得质粒转化BL21（ED3），以备下一步筛选用。接着，将上述转化子接种于96孔板中，其中最后一个孔接种野生型菌株以作为对照，所用培养基为150ulLB/每孔，含氨苄抗生素，该孔板作为保留板。次日按照相同顺序转接至另一块96孔板中，所用培养基为150ulLB/每孔，同时添加氨苄抗生素和IPTG进行诱导，于37℃下培养6小时，3800rpm离心收菌，去掉培养基，该孔板作为分析板。
2、筛选
在分析板中加入150ul裂解液（100mMTris，pH8.0；0.4mg/ml脱氧胆酸钠;0.8mg/mlCTAB；20mMKCl；80mMMgSO4）。于室温下裂解半小时后，3800rpm离心15分钟，取50ul裂解液于一块新的96孔板中。另取50ul裂解液于96孔PCR板中，置于96孔PCR仪中，在50℃下加热处理15分钟，转移至另一块96孔板中。在上述两块中分别加入100ul的显色液（Tris，100mM，pH8.0；TOOS溶液，15mM；4-APP，0.5mM；POD，40U/ml；果糖赖氨酸，15mM）。通过30分钟的显色，利用酶标仪记录其吸光值。通过计算两者吸光度的比值，判断热处理后的粗酶液的残留酶活比例。对于热稳定性提高了的突变株，其理论上的酶活残留比例将较野生型高。
本发明通过对10000多个突变株的筛选后，总共筛选获得了6个热稳定性有所提高的突变株。经测序分析，发现这6个突变株均为单碱基突变，其核苷酸序列突变分别为177G→T，293A→C，764G→C，830A→C，853G→C，1063G→C，相应的氨基酸序列突变分别为59E→N，98E→A，225G→A，277K→S，285E→Q，355D→H。
实施例3
果糖氨基酸氧化酶的酶活测定及热稳定性分析
经纯化后的果糖氨基酸氧化酶，在100mMTris，pH8.0的缓冲液中稀释成约10ug/ml。
取50ul该果糖氨基酸氧化酶于96孔PCR中，于50℃下热处理15min，4℃保存。
将经热处理过的50ul果糖氨基酸氧化酶转移至96孔板上，同时取未加热过的果糖氨基酸氧化酶50ul于同一块96孔板上。于37℃保温10min。
加入事先已孵育至37℃的显色液（Tris，100mM，pH8.0；TOOS溶液，15mM；4-APP，0.5mM；POD，40U/ml；果糖赖氨酸，15mM），于37℃下反应30min。
利用酶标仪记录其在555nm处的吸光度。
将热处理过的果糖氨基酸氧化酶的吸光值除以未热处理过的果糖氨基酸氧化酶的吸光值，所得数值即为在该温度下的残留酶活比例。
对上述随机突变获得的6个突变株及野生型果糖氨基酸氧化酶进行热稳定性分析，其结果见表3
表3随机突变获得的突变株的热稳定性分析
实施例4
59位氨基酸的取代的热稳定性分析
1、59为氨基酸的点突变的引入
第一轮PCR以pET-Ama为模板，分别用含有点突变的引物序列5（5’-tgctagttattgctcagcgg-3’）、序列6（5’-acaagattatgttacacagcgagctg-3’）作为上游引物扩增，获得含有点突变的目的片段。PCR体系为50ul：
表4PCR体系
PCR反应条件为：
98℃30sec；98℃10sec；60℃10sec；72℃30sec；30个循环；72℃5min；4℃保存。
所得目的片段经纯化后，用于下一轮WHOP-PCR的引物，其具体反应体系见表5
表5WHOP-PCR反应体系
PCR反应条件为：
98℃30sec；98℃10sec；60℃10sec；72℃2.5min；24个循环；72℃5min；4℃保存。
在50ul的WHOP-PCR的产物中加入1ul的DpnI进行酶切，于37℃下反应2小时，以彻底除去模板DNA。然后转化BL21（DE3），经测序正确后，用于热稳定性分析。
2.59位氨基酸取代后的热稳定性
将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表659位氨基酸取代的热稳定性分析
实施例5
98位氨基酸取代的热稳定性分析
按照上述方法，在98位氨基酸上引入不同的点突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表798位氨基酸取代的热稳定性分析
实施例6
225位氨基酸取代的热稳定性分析
按照上述方法，在225位氨基酸上引入不同的点突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表8225位氨基酸取代的热稳定性分析
实施例7
277位氨基酸取代的热稳定性分析
按照上述方法，在277位氨基酸上引入不同的点突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表9277位氨基酸取代的热稳定性分析
实施例8
285位氨基酸取代的热稳定性分析
按照上述方法，在285位氨基酸上引入不同的点突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表10285位氨基酸取代的热稳定性分析
实施例9
355位氨基酸取代的热稳定性分析
按照上述方法，在355位氨基酸上引入不同的点突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表11355位氨基酸取代的热稳定性分析
实施例10
两个不同突变位点氨基酸取代的结合的热稳定性分析
按照上述方法，在两个不同位点氨基酸上引入不同的点突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表12两个不同突变位点为氨基酸取代的热稳定性分析
实施例11
三个不同突变位点氨基酸取代的结合的热稳定性分析
按照上述方法，在三个不同位点氨基酸上引入不同的点突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表13三个不同突变位点为氨基酸取代的热稳定性分析
实施例12
四个不同突变位点氨基酸取代的结合的热稳定性分析
按照上述方法，在四个不同位点氨基酸上引入不同的点突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表14四个不同突变位点为氨基酸取代的热稳定性分析
实施例13
五个不同突变位点氨基酸取代的结合的热稳定性分析
按照上述方法，在五个不同位点氨基酸上引入不同的点突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表15五个不同突变位点为氨基酸取代的热稳定性分析
实施例14
六个不同突变位点氨基酸取代的结合的热稳定性分析
按照上述方法，在六个不同位点氨基酸上引入不同的点突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表16六个不同突变位点为氨基酸取代的热稳定性分析
实施例15
来自黑曲霉（Aspergillusniger）CBS513.88的果糖氨基酸氧化酶的突变及其组合的热稳定性分析
通过Blast可知，来自于黑曲霉（Aspergillusniger）CBS513.88的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸序列与来自烟曲霉（Aspergillusfumigatus）的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸序列的同源性为80%。其氨基酸序列见序列68，核苷酸序列见序列69，利用全基因合成的方法，将序列69合成，并克隆于pET-22b载体的NdeI和XhoI酶切位点中。
经序列分析发现，相应于AmadoriaseI的59，98，225，277，285，355位点的氨基酸，在黑曲霉（Aspergillusniger）CBS513.88的果糖氨基酸氧化酶上的相应位点为59E，98E，225G，277K，285E，355D。
按照上述点突变的方法，将黑曲霉（Aspergillusniger）CBS513.88的果糖氨基酸氧化酶的这些位点进行单碱基突变或不同位点的组合突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表17黑曲霉（Aspergillusniger）CBS513.88的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸取代的热稳定性分析
实施例16
来自棒曲霉（Aspergillusclavatus）NRRL1的果糖氨基酸氧化酶的突变及其组合的热稳定性分析
通过Blast可知，来自于棒曲霉（Aspergillusclavatus）NRRL1的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸序列与来自烟曲霉（Aspergillusfumigatus）的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸序列的同源性为83%。其氨基酸序列见序列70，核苷酸序列见序列71，利用全基因合成的方法，将序列71合成，并克隆于pET-22b载体的NdeI和XhoI酶切位点中。
经序列分析发现，相应于AmadoriaseI的59，98，225，277，285，355位点的氨基酸，在棒曲霉（Aspergillusclavatus）NRRL1的果糖氨基酸氧化酶上的相应位点为59E，98E，225G，277N，285E，355D。
按照上述点突变的方法，将棒曲霉（Aspergillusclavatus）NRRL1的果糖氨基酸氧化酶的这些位点进行单碱基突变或不同位点的组合突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表18棒曲霉（Aspergillusclavatus）NRRL1的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸取代的热稳定性分析
实施例17
来自新萨托菌（Neosartoryafischeri）NRRL181的果糖氨基酸氧化酶的突变及其组合的热稳定性分析
通过Blast可知，来自于新萨托菌（Neosartoryafischeri）NRRL181的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸序列与来自烟曲霉（Aspergillusfumigatus）的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸序列的同源性为96%。其氨基酸序列见序列72，核苷酸序列见序列73，利用全基因合成的方法，将序列73合成，并克隆于pET-22b载体的NdeI和XhoI酶切位点中。
经序列分析发现，相应于AmadoriaseI的59，98，225，277，285，355位点的氨基酸，在新萨托菌（Neosartoryafischeri）NRRL181的果糖氨基酸氧化酶上的相应位点为59E，98E，225G，277K，285E，355D。
按照上述点突变的方法，将新萨托菌（Neosartoryafischeri）NRRL181的果糖氨基酸氧化酶的这些位点进行单碱基突变或不同位点的组合突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表19新萨托菌（Neosartoryafischeri）NRRL181的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸取代的热稳定性分析
实施例18
来自烟曲霉（Aspergillusfumigatus）Af293的果糖氨基酸的突变及其组合的热稳定性分析
通过Blast可知，来自于烟曲霉（Aspergillusfumigatus）Af293的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸序列与来自烟曲霉（Aspergillusfumigatus）的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸序列的同源性为99%。其氨基酸序列见序列74，核苷酸序列见序列75，利用全基因合成的方法，将序列75合成，并克隆于pET-22b载体的NdeI和XhoI酶切位点中。
经序列分析发现，相应于AmadoriaseI的59，98，225，277，285，355位点的氨基酸，在烟曲霉（Aspergillusfumigatus）CBS513.88的果糖氨基酸氧化酶上的相应位点为59E，98E，225G，277K，285E，355D。
按照上述点突变的方法，将烟曲霉（Aspergillusfumigatus）Af293的果糖氨基酸氧化酶的这些位点进行单碱基突变或不同位点的组合突变。将所获得的突变株，接种过夜，次日按照1%的比例转接至新鲜的含氨苄的LB培养基中，待OD600长至0.8左右时，加入终浓度为0.4mM的IPTG诱导约5个小时，离心收菌，破碎，纯化。纯化所得的果糖氨基酸氧化酶按照上述方法分析其热稳定性。具体结果见下表。
表20烟曲霉（Aspergillusfumigatus）Af293的果糖氨基酸氧化酶的氨基酸取代的热稳定性分析
实施例19
制备方法
1、菌体的获得：培养含有不同突变基因的菌种培养至OD600约0.8时，加入IPTG诱导5小时，离心收集菌体，收集的菌体用缓冲液重新悬浮，超声破碎，离心收集上清；
2、硫酸铵沉淀：使用硫酸铵溶液对步骤（1）所得上清液进行分级沉淀，将最后收集得到的沉淀溶于bufferA中，得到粗提液；
3、亲和层析：用bufferA平衡镍柱，再将步骤（2）得到的粗提液上镍柱吸附，吸附结束后，用咪唑溶液进行梯度洗脱，收集洗脱液；
4、透析：将步骤（3）中的洗脱液装至透析袋中，置于4℃透析液中，并磁力搅拌透析过夜。
所述步骤（2）中bufferA为：50mM磷酸钾缓冲液，pH8.0，500mMNaCl；
所述步骤（3）中咪唑溶液为：50mM磷酸钾缓冲液，pH8.0，500mMNaCl，20mM～1000mM咪唑；
所述步骤（4）中透析液为：50mM磷酸钾缓冲液，pH8.0，500mMNaCl。
实施例20
糖化白蛋白检测试剂盒的线性范围
包括试剂1和试剂2，其中：
试剂1：
三羟甲基氨基甲烷盐酸盐缓冲液50mmol/L
蛋白酶K40KU/L
过氧化物酶30KU/L
4-氨基安替比林10mmol/L
2-甲基-4-异噻唑啉-3-酮0.02%
试剂2：
三羟甲基氨基甲烷盐酸盐缓冲液50mmol/L
果糖氨基酸氧化酶突变体28KU/L
N,N-双（4-磺丁基）-3-甲基苯胺(TODB)2mmol/L
2-甲基-4-异噻唑啉-3-酮0.02%
本实施例所用果糖氨基酸氧化酶突变体具体为M76号突变株，事实上，其他突变株亦可以使用。
测试的样本应当使用新鲜的血清，应当避免溶血。血清收集后若不及时进行检查，则应到存储于4℃，理论上应不超过2周。
检测条件：主波长600nm，副波长700nm。
检测步骤：见表21
表21：检测步骤
线性范围，见图1：
取GA高值血清，用生理盐水稀释成不同梯度，分别进行测定。
用该方法检测糖化白蛋白的线性范围21.0～1200umol/L，r2>0.990。
实施例21
糖化白蛋白检测试剂盒的精密度试验
对一高值和低值质控和两份样本血清分别进行20次测试，均值分别为204umol/L，751umol/L，251umol/L，373umol/L，CV分别为1.1%，0.7%，0.8%，0.6%。
表22批内精密度试验
对一高值和低值质控和两份样本血清分别进行连续测定10天，均值分别为204umol/L，751umol/L，251umol/L，373umol/L，CV分别为1.2%，0.7%，1.3%，1.0%。
表23批间精密度试验
实施例22
糖化白蛋白检测试剂盒的开瓶稳定性试验
试剂在日立生化仪上开瓶稳定性至少可持续4周。
表24开瓶稳定性试验
GA 0天 7天 14天 21天 28天
质控1：198umol/LGA 203 202 206 202 206
质控2：750umol/LGA 753 740 738 736 745
N109657270umol/L 274 271 274 269 272
实施例23
糖化白蛋白检测试剂盒与HPLC相关性
通过将本发明的糖化白蛋白检测试剂盒同经典的HPLC检测方法测定同样的样本，进行比较，发现其相关性良好，R2>0.995。
实施例24
糖化白蛋白检测试剂盒抗干扰试验
发现当维生素C的浓度低于0.2mmol/L，血红蛋白低于1.6g/L，结合胆红素低于0.32mmol/L，非结合胆红素低于0.32mmol/L时，甘油三脂低于20mmol/L，血糖低于20g/L，尿酸低于36g/L时，其对糖化白蛋白测定值的干扰小于10%。
表25干扰试验
实施例25
糖化白蛋白百分比值的测定
将糖化白蛋白的检测，与白蛋白的检测相结合，可以得出糖化白蛋白浓度除以白蛋白浓度算出糖化白蛋白的百分比值。
白蛋白检测试剂如下
试剂3：
琥珀酸缓冲液0.05mol/L
聚氧乙烯（23）十二烷基醚2.4g/L
溴甲酚绿1.8×10-4mol/L
检测条件：主波长600nm，副波长700nm。
反应方法：终点法。
检测步骤：见表26
表26：检测步骤
利用上述方法，对20份血清进行测定，并计算糖化白蛋白的百分比，见表27。
表2720份血清糖化白蛋白的百分比
通常情况下，糖化白蛋白的参考值为11～16%，糖化白蛋白值的升高常见于糖尿病，该指标可以作为糖尿病患者中期血糖控制的参考指标。
实施例26
利用其它果糖氨基酸氧化酶突变体配制的糖化白蛋白检测试剂盒的性能
由于本发明所涉及的果糖氨基酸氧化酶突变体众多，不可能一一在糖化白蛋白检测试剂盒中逐个验证，故而只选取几个最典型的果糖氨基酸氧化酶突变体，用于糖化白蛋白检测试剂盒，并对它们的性能进行评估，用以说明本发明所涉及的果糖氨基酸氧化酶突变体适合于糖化白蛋白检测试剂盒，不能用于限制本发明。所涉及的试剂盒的检测方法，线性范围，批内精密度，批间精密度，开口稳定性，与HPLC的相关性，抗干扰等的验证方法均于实施例20～25所述相同。
糖化白蛋白检测试剂盒，包括试剂1和试剂2，其中：
试剂1：
三羟甲基氨基甲烷盐酸盐缓冲液50mmol/L
蛋白酶K40KU/L
过氧化物酶30KU/L
4-氨基安替比林10mmol/L
2-甲基-4-异噻唑啉-3-酮0.02%
试剂2：
三羟甲基氨基甲烷盐酸盐缓冲液50mmol/L
果糖氨基酸氧化酶突变体28KU/L
N,N-双（4-磺丁基）-3-甲基苯胺(TODB)2mmol/L
2-甲基-4-异噻唑啉-3-酮0.02%
本实施例中，果糖氨基酸氧化酶突变株选用以下几种代表进行试验：即上述实施例制备的M1，M13，M28，M35，M50，M56，M64，M73，M79，M80，M81，M90，M100，M109，M120。
上述果糖氨基酸氧化酶突变体及其相应的糖化白蛋白检测试剂盒的性能具体见下表。
表28利用不同果糖氨基酸氧化酶突变株制备的糖化白蛋白检测试剂盒的性能
本发明的上述实施例是对本发明的说明而不能用于限制本发明，与本发明的权利要求书相当的含义和范围内的任何改变，都应认为是包括在权利要求书的范围内。

Claims (16)

1.一种果糖氨基酸氧化酶，其特征在于，该果糖氨基酸氧化酶为SEQID.No.1所示的氨基酸序列中的59位谷氨酸被取代为以下（a）序列后、所得的果糖氨基酸氧化酶；与取代前的SEQID.No.1所示的氨基酸序列果糖氨基酸氧化酶相比较，具有更高的热稳定性：
（a）59位的谷氨酸被取代为L、I、V、F、M、W、T、C、N、Y、D或H。
2.根据权利要求1所述的果糖氨基酸氧化酶，其特征在于，59位的谷氨酸被取代后的果糖氨基酸氧化酶同时以下（b）-（f）中一种或以上的位点也被取代，与取代前的SEQID.No.1所示的氨基酸序列果糖氨基酸氧化酶相比较，具有更高的热稳定性：
（b）98位的谷氨酸酸被取代为A、L、I、V、P、F、S、T、C、N、Y、D或H；
（c）225位的甘氨酸被取代为A、L、F、M、W、S、N或D；
（d）277位的赖氨酸被取代为A、L、I、F、S、T、N、Y、R或H；
（e）285位的谷氨酸被取代为A、L、I、F、M、W、Q或N；
（f）355位的天冬氨酸被取代为L、I、V、F、M、W、T、C、Y、R或H。
3.根据权利要求2所述的果糖氨基酸氧化酶，其特征在于，其特征在于，其选自以下（g）至（j）中的氨基酸被取代为以下（g）至（j）中记载的取代后的氨酸酸残基，所得的果糖氨基酸氧化酶；与取代前的SEQID.No.1所示的氨基酸序列果糖氨基酸氧化酶相比较，具有更高的热稳定性：
（g）59E→F，98E→C；
（h）59E→F，225G→D；
（i）59E→F，277K→N；
（j）59E→F，285E→F。
4.根据权利要求2所述的果糖氨基酸氧化酶，其特征在于，其选自以下（k）至（m）中的氨基酸被取代为以下（k）至（m）中记载的取代后的氨酸酸残基，所得的果糖氨基酸氧化酶；与取代前的SEQID.No.1所示的氨基酸序列果糖氨基酸氧化酶相比较，具有更高的热稳定性：
（k）59E→F，98E→C，225G→F；
（l）59E→F，225G→D，277K→N；
（m）59E→F，277K→N，285E→I。
5.根据权利要求2所述的果糖氨基酸氧化酶，其特征在于，其选自以下（n）至（o）中的氨基酸被取代为以下（n）至（o）中记载的取代后的氨酸酸残基，所得的果糖氨基酸氧化酶；与取代前的SEQID.No.1所示的氨基酸序列果糖氨基酸氧化酶相比较，具有更高的热稳定性：
（n）59E→F，98E→C，225G→F，277K→N；
（o）59E→F，225G→D，277K→N，285E→F。
6.根据权利要求2所述的果糖氨基酸氧化酶，其特征在于，其选自以下（p）中的氨基酸被取代为以下（p）中记载的取代后的氨酸酸残基，所得的果糖氨基酸氧化酶；与取代前的SEQID.No.1所示的氨基酸序列果糖氨基酸氧化酶相比较，具有更高的热稳定性：
（p）59E→F，98E→C，225G→F，277K→N，285E→F。
7.根据权利要求2所述的果糖氨基酸氧化酶，其特征在于，其选自以下（q）中的氨基酸被取代为以下（q）中记载的取代后的氨酸酸残基，所得的果糖氨基酸氧化酶；与取代前的SEQID.No.1所示的氨基酸序列果糖氨基酸氧化酶相比较，具有更高的热稳定性：
（q）59E→F，98E→C，225G→F，277K→N，285E→F，355D→L。
8.一种编码上述权利要求1～7任何一项所述的果糖氨基酸氧化酶的基因。
9.一种包含权利要求8所述的果糖氨基酸氧化酶基因的重组载体。
10.一种包含权利要求9所述重组载体的宿主细胞。
11.根据权利要求1所述的果糖氨基酸氧化酶的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
（1）菌体的获得：培养含有不同突变基因的菌种培养至OD600生长至0.5～1时，加入异丙基硫代半乳糖苷诱导5小时，离心收集菌体，收集的菌体用缓冲液重新悬浮，超声破碎，离心收集上清液；
（2）硫酸铵沉淀：使用硫酸铵溶液对步骤（1）所得上清液进行分级沉淀，将最后收集得到的沉淀溶于bufferA中，得到粗提液；
（3）亲和层析：用bufferA平衡镍柱，再将步骤（2）得到的粗提液上镍柱吸附，吸附结束后，用咪唑溶液进行梯度洗脱，收集洗脱液；
（4）透析：将步骤（3）中的洗脱液装至透析袋中，置于4℃透析液中，并磁力搅拌透析过夜；
所述步骤（2）中bufferA为：50mM磷酸钾缓冲液，pH8.0，500mMNaCl；
所述步骤（3）中咪唑溶液为：50mM磷酸钾缓冲液，pH8.0，500mMNaCl，20mM~1000mM咪唑；
所述步骤（4）中透析液为：50mM磷酸钾缓冲液，pH8.0，500mMNaCl。
12.一种测定糖化白蛋白的试剂盒，其特征在于：该试剂盒包括试剂1和试剂2，试剂中各组分浓度为：
试剂1：
缓冲液20～200mmol/L，
蛋白酶10～100KU/L，
过氧化物酶10～100KU/L，
4-氨基安替比林5~50mM/L，
防腐剂0.01～0.05%；
试剂2：
缓冲液20～200mmol/L，
权利要求1～7任一权利所述的果糖氨基酸氧化酶10～100KU/L，
色原1～10mmol/L，
防腐剂0.01～0.05%。
13.根据权利要求12所述的测定糖化白蛋白的试剂盒，其特征在于：所述的缓冲液为三羟甲基氨基甲烷盐酸盐缓冲液、乙酸-乙酸钠缓冲液、邻苯二甲酸-盐酸缓冲液或甘氨酸-盐酸缓冲液。
14.根据权利要求12所述的测定糖化白蛋白的试剂盒，其特征在于：所述的蛋白酶为胰蛋白酶、嗜碱性蛋白酶、蛋白酶A或蛋白酶K。
15.根据权利要求12所述的测定糖化白蛋白的试剂盒，其特征在于：所述的色原为N,N-二(4-磺丁基)-3-甲基苯胺二钠盐、N-乙基-N-(3-磺丙基)-3-甲基苯胺钠盐或N-乙基-N-(2-羟基-3-磺丙基)-3-甲基苯胺钠盐。
16.根据权利要求12所述的测定糖化白蛋白的试剂盒，其特征在于：所述的防腐剂为2-甲基-4异噻唑啉-3-酮、proclin300。
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