CN102838691A - 硫酸软骨素的提取纯化方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及制药领域,特别是涉及中药提取领域,更为具体的说是涉及硫酸软骨素的提取纯化方法。本发明公开的一种从软骨中提取硫酸软骨素的制备方法,包括:(1)预处理步骤、(2)碱化步骤、(3)酶解步骤、(4)膜浓缩步骤、(5)析晶步骤、(6)纯化步骤、(7)膜浓缩步骤、(8)喷雾干燥步骤。采用本发明所公开的技术方案,可以直接从软骨中提取、纯化硫酸软骨素,且此方法步骤简单、消耗低,工艺稳定,适合规模化生产。
Description
技术领域
本发明涉及制药领域,特别是涉及中药提取领域,更为具体的说是涉及硫酸软骨素的提取纯化方法。
背景技术
硫酸软骨素 (Chondroitin sulfate) 大量存在于动物软骨中,商品是从动物组织中提取制备的酸性粘多糖。硫酸软骨素是糖胺聚糖的一种,主要含有硫酸软骨素A、硫酸软骨素C等黏性多糖成分,是由D-葡糖醛酸和N-乙酰氨基半乳糖以β-1,4-糖苷键连接而成的重复二糖单位组成的多糖,并在N-乙酰氨基半乳糖的C-4位或C-6位羟基上发生硫酸酯化。
主要分为硫酸软骨素钠盐和硫酸软骨素钙盐等,常与葡萄糖胺配合使用,具有止痛,促进软骨再生的功效,用于治疗神经痛,偏头痛,关节痛,心脑血管疾病,同时也可以作为关节炎、滴眼液以及高血脂的辅助治疗用品。不仅如此,硫酸软骨素还可以作为食品、保健品的添加剂。在医药、化妆品、食品工业上具有广泛的用途,市场前景广阔。
发明内容
本发明的目的在于提供一种硫酸软骨素的提取纯化方法,特别是直接以软骨为原料,利用科工业化、规模化的提取纯化方法得到硫酸软骨素。
为了实现上述发明目的,本发明公开了以下技术方案:
一种硫酸软骨素的提取纯化方法,是以软骨为提取纯化原料,包括以下步骤:
(1) 预处理步骤:将软骨与足量水混合,加热,至70-85℃煮泡2-4小时,沥去水;
(2) 碱化步骤:向步骤(1)得到的软骨中加入NaOH水溶液,在35-40℃碱化2-4小时;
(3) 酶解步骤:
(3-1)调节碱化后的溶液pH 至8.5-9.0,加入胰酶,酶解6-8小时;
(3-2)酶解完成后,对溶液进行胰酶灭活操作,将酶解液冷却、离心,得到酶解过滤液;
(4) 一次膜浓缩步骤:将酶解过滤液用截留分子量为10000-50000的超滤膜浓缩至原体积的1/3;
(5) 析晶步骤:向浓缩液中加入92%~95%的乙醇溶液后,逐步调节至65%-75%,静置、析晶,离心过滤,得固体1;
(6) 纯化步骤:将步骤(5)中得到的固体1,按照步骤(5)的过程反复操作,直到滤液呈无色,固体呈白色状态为止,收集固体2,弃去滤液;
(7) 二次膜浓缩步骤:将固体2加水溶解,用截留分子量为10000-50000的超滤膜浓缩至溶液比重达到1.05-1.15;
(8) 喷雾干燥:将步骤(7)得到的浓缩液灭菌,喷雾干燥,得到硫酸软骨素。
作为一种优选本发明公开了所述用于调节pH的溶液为浓度16-18%盐酸溶液。
作为一种优选的方式,本发明公开了所述胰酶的灭活方式为:将溶液温度升高至75-80℃,静置1-2小时,调节pH至4-6。
所述步骤(2)中用于碱化的氢氧化钠溶液为4%~6%的氢氧化钠水溶液。
同时,本发明进一步公开了所述步骤(3-1)中胰酶的添加量为软骨质量的2.0-2.2%。
更进一步地,所述步骤(3-2)中采用蝶式离心机进行离心。
所述步骤(8)中采用陶瓷复合膜对浓缩液灭菌。
所述步骤(8)中喷雾干燥为:进风温度为190-195℃,出风温度为90-95℃。
所述步骤(2)中氢氧化钠溶液的加入量为软骨质量的2倍以上,所述步骤(1)中水的加入量至少与软骨同等质量。
所述步骤(4)与(7)中,超滤膜的进出压力范围为1.0~1.5Mpa。
本发明中通过对软骨进行预处理、碱化、酶解步骤,使得硫酸软骨素从软骨中充分分离出来,并且利用一次膜浓缩、析晶、二次膜浓缩步骤将硫酸软骨素与酶解液中的其他杂质分离,并通过喷雾干燥过程得到硫酸软骨素成品。
由于硫酸软骨素是一种多糖,所以采用常规的传统层析柱分离手段,不仅分离效果差,而且分离消耗高,本发明通过前处理及酶解与两次膜浓缩的配合,步骤简单、消耗低,成品收率高,适合于工业化、规模化生产。
同时,在本发明中优选了通过升温及调节pH的方式对胰酶灭活,从而终止酶解过程。采用这样的灭活方式,对硫酸软骨素的影响小,而且对后处理无残留影响,适合工业化生产。
不仅如此,本发明还进一步在考虑后处理及生产成本的基础上,优选了pH调节剂盐酸。
对于胰酶的添加量,如果添加过少则酶解不充分,如果添加过多,则增加生产成本,同时对后期的处理产生影响,增加酶灭活投入成本,本发明在多次试验的基础上,公开了优选的添加量为2.0-2.2%。
在本发明中,采用蝶式离心机进行离心分离,代替常规的过滤布(网)过滤分离,分离更彻底。
采用先进的陶瓷复合膜除菌技术,用蒸汽反冲再生和高温原位消毒灭菌;抗污染能力强,分离过程中无二次溶出物产生,不会发生膜孔溶涨而导致截留性能的变化;且膜再生性能好,清洗后可重复使用;分离过程简单,能耗低,操作维护简便。
同时,本发明公开了最佳的喷雾干燥温度选择,确保硫酸软骨素的品质不会在喷雾干燥过程中被损伤。
步骤(2)与步骤(1)中氢氧化钠与水溶液的添加,本发明中给出了最低量,从而保证浸取以及碱化过程的彻底。
当然,对于步骤(2)来说,也可以先加入水溶液,然后再按照4%~6%的量加入氢氧化钠。
最后,本发明公开了超滤膜浓缩过程中膜的优选进出压力,从而在保证浓缩效果的基础上,防止超滤膜失效。
综上所述,采用本发明所公开的技术方案,可以直接从软骨中提取、纯化硫酸软骨素,且此方法步骤简单、消耗低,工艺稳定,适合规模化生产。
具体实施方式
在本发明中,除非特殊说明,所用试剂、仪器、设备均为市售产品。
下面结合通过实施例对本发明作进一步详细描述。
实施例1
(1)预处理步骤:将软骨与两倍量的水(M/M)混合,加热,至70-85℃煮泡2-4小时,沥去水;
(2)碱化步骤:向步骤(1)得到的软骨中加入4%~6%的NaOH水溶液,在35-40℃碱化2-4小时;
(3)酶解步骤:
调节碱化后的溶液pH 至8.5-9.0,按照2.0%~2.2%的量加入胰酶,酶解6-8小时;
酶解完成后,对溶液进行胰酶灭活操作,将酶解液冷却、离心,得到酶解过滤液;
(4)一次膜浓缩步骤:将酶解过滤液用截留分子量为10000-50000的超滤膜浓缩至原体积的1/3;
(5)析晶步骤:向浓缩液中加入92%~95%的乙醇溶液后,逐步调节至65%-75%,静置、析晶,离心过滤,得固体1;
(6)纯化步骤:将步骤(5)中得到的固体1,按照步骤(5)的过程反复操作,直到滤液呈无色,固体呈白色状态为止,收集固体2,弃去滤液;
(7)二次膜浓缩步骤:将固体2加水溶解,用截留分子量为10000-50000的超滤膜浓缩至溶液比重达到1.05-1.15;
(8)喷雾干燥:将步骤(7)得到的浓缩液灭菌,喷雾干燥,得到硫酸软骨素。
实施例2
(1) 预处理步骤:将1000kg软骨投入提取罐中,加入等量的水(M /M),加热至70℃煮泡2小时,将水弃去。
(2) 碱化步骤:加入2倍量的饮用水,再加入4%的NaOH,35℃碱化2小时。
(3) 酶解步骤:用17%的盐酸调节pH 至8.5,再加入2.2%胰酶,酶解8小时,酶解完成后升温至75℃静置1小时,再用17%的盐酸调节pH至4,冷却,将酶解过滤液通过蝶式离心机进行离心。
(4) 膜浓缩步骤:将酶解过滤液用10000分子量的超滤膜进行浓缩,控制膜进出压力在1.0-1.5Mpa之间,浓缩至过滤液体积1/3。
(5) 析晶步骤:将92度的乙醇加入浓缩液中,并调节乙醇浓度到65度后,放置析晶1小时,抽走上清液,将析晶液离心甩干,得到固体1。
(6) 纯化步骤:重复上述步骤,直到流出液无颜色,固体层出现白色松散状为止,收集固体层,即为固体2。
(7) 膜浓缩步骤:将固体层加水溶解,用10000分子量超滤膜进行浓缩,控制膜进出压力在1.0-1.5Mpa之间,直到溶液比重达到1.05。
(8) 喷雾干燥:将浓缩液经过陶瓷复合膜进行灭菌,然后在进风温度为190-195℃,出口温度为90-95℃下进行喷雾干燥。成品收率达到97.8%。
实施例3
(1) 预处理步骤:将1000kg软骨投入提取罐中,加入等量的水(M /M),加热至80℃煮泡2小时,将水弃去。
(2) 碱化步骤:加入2倍量的饮用水,再加入5%的NaOH,35℃碱化3小时。
(3) 酶解步骤:用16%的盐酸调节PH 至8.5,再加入2.1%胰酶,酶解7小时,酶解完成后升温至75℃静置2小时,再用16%的盐酸调节pH至5,冷却,将酶解过滤液通过蝶式离心机进行离心。
(4) 膜浓缩步骤:将酶解过滤液用20000分子量的超滤膜进行浓缩,控制膜进出压力在1.0-1.5Mpa之间,浓缩至过滤液体积1/3。
(5) 析晶步骤:将95度的乙醇加入浓缩液中,并调节乙醇浓度到70度后,放置析晶2小时,抽走上清液,将析晶液离心甩干,得到固体1。
(6) 纯化步骤:重复上述步骤,直到流出的滤液无颜色,固体层出现白色松散状为止,收集固体层,即为固体2,将滤液弃去。
(7) 膜浓缩步骤:将固体层加水溶解,用20000分子量超滤膜进行浓缩,控制膜进出压力在1.0-1.5Mpa之间,直到溶液比重达到1.10。
(8) 喷雾干燥:将浓缩液经过陶瓷复合膜进行灭菌,然后在进风温度为190-195℃,出口温度为90-95℃下进行喷雾干燥。成品收率达到96.3%。
实施例4
(1) 预处理步骤:将1000kg软骨投入提取罐中,加入等量的水(M /M),加热至85℃煮泡2小时,将水弃去。
(2) 碱化步骤:加入2倍量的饮用水,再加入6%的NaOH,40℃碱化4小时。
(3) 酶解步骤:用18%的盐酸调节PH 至9.0,再加入2.0%胰酶,酶解7小时,酶解完成后升温至80℃静置2小时,再用18%的盐酸调节pH至5,冷却,将酶解过滤液通过蝶式离心机进行离心。
(4) 膜浓缩步骤:将酶解过滤液用30000分子量的超滤膜进行浓缩,控制膜进出压力在1.0-1.5Mpa之间,浓缩至过滤液体积1/3。
(5) 析晶步骤:将95度的乙醇加入浓缩液中,并调节乙醇浓度到75度后,放置析晶2小时,抽走上清液,将析晶液离心甩干,得到固体1。
(6) 纯化步骤:重复上述步骤,直到流出的滤液无颜色,固体层出现白色松散状为止,收集固体层,即为固体2,弃去滤液。
(7) 膜浓缩步骤:将固体层加水溶解,用30000分子量超滤膜进行浓缩,控制膜进出压力在1.0-1.5Mpa之间,直到溶液比重达到1.10。
(8) 喷雾干燥:将浓缩液经过陶瓷复合膜进行灭菌,然后在进风温度为190-195℃,出口温度为90-95℃下进行喷雾干燥。成品收率达到95.9%。
以上实施例仅用于更加清晰的理解本发明,但是并不限定本发明的保护范围。对于本发明中指出的各种优选条件,均可独立地实施,因此其组合形成的技术方案也在本发明的保护范围。特别要说明的是,对于本领域的技术人员来说,还可以根据本发明公开的技术方案作出若干的替换和润饰,应当指出这些也属于本发明的公开范围。
Claims (10)
1.硫酸软骨素的提取纯化方法,是以软骨为提取纯化原料,其特征是包括以下步骤:
预处理步骤:将软骨与足量水混合,加热,至70-85℃煮泡2-4小时,沥去水;
碱化步骤:向步骤(1)得到的软骨中加入NaOH水溶液,在35-40℃碱化2-4小时;
酶解步骤:
(3-1)调节碱化后的溶液pH 至8.5-9.0,加入胰酶,酶解6-8小时;
(3-2)酶解完成后,对溶液进行胰酶灭活操作,将酶解液冷却、离心,得到酶解过滤液;
一次膜浓缩步骤:将酶解过滤液用截留分子量为10000-50000的超滤膜浓缩至原体积的1/3;
析晶步骤:向浓缩液中加入92%~95%的乙醇溶液后,逐步调节至65%-75%,静置、析晶,离心过滤,得固体1;
纯化步骤:将步骤(5)中得到的固体1,按照步骤(5)的过程反复操作,直到滤液呈无色,固体呈白色状态为止,收集固体2,弃去滤液;
二次膜浓缩步骤:将固体2加水溶解,用截留分子量为10000-50000的超滤膜浓缩至溶液比重达到1.05-1.15;
喷雾干燥:将步骤(7)得到的浓缩液灭菌,喷雾干燥,得到硫酸软骨素。
2.根据权利要求1所述的的硫酸软骨素的提取纯化方法,其特征是所述步骤(2)中用于碱化的氢氧化钠溶液为4%~6%的氢氧化钠水溶液。
3.根据权利要求1所述的硫酸软骨素的提取纯化方法,其特征是所述步骤(3-2)中胰酶的灭活方式为:将溶液温度升高至75-80℃,静置1-2小时,调节pH至4-6。
4.根据权利要求3所述的硫酸软骨素的提取纯化方法,其特征是所述用于调节pH的溶液为浓度16-18%盐酸溶液。
5.根据权利要求1所述的硫酸软骨素的提取纯化方法,其特征是所述步骤(3-1)中胰酶的添加量为软骨质量的2.0-2.2%。
6.根据权利要求1所述的硫酸软骨素的提取纯化方法,其特征是所述步骤(3-2)中采用蝶式离心机进行离心。
7.根据权利要求1所述的硫酸软骨素的提取纯化方法,其特征是所述步骤(8)中采用陶瓷复合膜对浓缩液灭菌。
8.根据权利要求1所述的硫酸软骨素的提取纯化方法,其特征是所述步骤(8)中喷雾干燥的条件为:进风温度为190-195℃,出风温度为90-95℃。
9.根据权利要求8所述的硫酸软骨素的提取纯化方法,其特征是还优选以下一种或几种条件:所述步骤(2)中氢氧化钠溶液的加入量为软骨质量的2倍以上,所述步骤(1)中水的加入量至少与软骨同等质量。
10.根据权利要求1所述的硫酸软骨素的提取纯化方法,其特征是所述步骤(4)与(7)中,超滤膜的进出压力范围为1.0~1.5Mpa。
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
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C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
EXSB | Decision made by sipo to initiate substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20121226 |