发明内容
本发明的目的在于针对现有技术中的上述不足,提供一种禽肺病毒通用型RT-PCR检测引物。
本发明的另一目的是提供一种禽肺病毒RT-PCR检测方法。
本发明通过以下技术方案实现上述目的:
禽肺病毒通用型RT-PCR检测引物,其核苷酸序列如SEQ ID NO:1~2所示。
基于上述设计的引物,本发明还保护一种禽肺病毒检测方法,是用上述SEQ ID NO:1~2所示引物和待检样品RNA进行RT-PCR,如果PCR产物片段大小为319bp或320bp,则待检样品中有禽肺病毒。可以使用1%琼脂糖凝胶电泳鉴定PCR产物,如果电泳结果在319bp或320bp处出现扩增条带,即表明待检样品中有禽肺病毒。
上述禽肺病毒检测方法中, RT-PCR的反应体系含有一步法PCR混合酶(PrimeScipt 1 Step Enzyme Mix)、缓冲液(2×1 Step Buffer)、SEQ ID NO:1~2所示引物、样品RNA和无RNA酶的水(RNase Free H2O)。
上述禽肺病毒检测方法中,RT-PCR的反应程序为:
(1)50℃ 30min;
(2)预变性:95℃ 4min;
(3)变性:94℃ 30sec;退火:55~58℃ 20sec;延伸:72℃ 1 min;共进行30个循环;
(4)延伸:72℃10min。
上述RT-PCR反应程序的步骤(3)中退火温度最佳为57℃。
上述禽肺病毒检测方法,RT-PCR扩增产物序列为SEQ ID NO:3~6中的任意一条时,说明待检样品中有禽肺病毒。该检测方法可以同时检测APV病毒的多种亚型,至少包括A、B、C、D四个目前已知的亚型。
与现有技术相比,本发明具有以下有益效果:
本发明的引物特异性高、且片段小、敏感性高,整个PCR过程可以在2h内完成,能够特异地检测出各亚型APV的存在,可以大大减小对APV感染错漏诊断。
具体实施方式
实施例1
1、试验材料
1.1 主要试剂与仪器
AxyPrep体液病毒DNA/RNA小量试剂盒(Cat No.:AP-MN-BF-VNA-250),TaKaRa PrimeScript 0ne step RT-PCR Kit Ver.2 (TaKaRa Code:DRR055A),Thermo高速低温离心机,Thermo PCR仪。
1.2 毒株
A、B型APV弱毒株购自海博莱生物有限公司,C型APV弱毒株购自梅里亚生物有限公司,作为待检样品。
1.3 引物设计
首先对比APV A、B、C、D基因组N基因序列上共同的保守区域,然后设计一对扩增目的带为319bp或者320 bp的引物TN01。
表1
2、试验方法
2.1 RNA模板制备
使用AxyPrep体液病毒DNA/RNA小量试剂盒(Cat No.:AP-MN-BF-VNA-250)提取模板RNA(A、B、C型APV弱毒株的RNA),-70℃保存。
2.2 PCR反应
反应体系:使用TaKaRa PrimeScript 0ne step RT-PCR Kit Ver.2 (TaKaRa Code:DRR055A) PCR试剂盒,反应体系为25μL体系,具体如下:
序号 |
组分 |
体积 |
1 |
PrimeScipt 1 Step Enzyme Mix |
1μL |
2 |
2×1 Step Buffer |
12.5μL |
3 |
TN01-F(10μM) |
0.5μL |
4 |
TN01-R(10μM) |
0.5μL |
5 |
模板RNA |
5μL(约500ng) |
6 |
RNase Free H2O |
补足至25μL |
反应条件:逆转录:50℃ 30min;预变性:95℃ 4min;扩增30个循环(包括:变性:94℃ 30sec;退火:57℃ 20sec;延伸:72℃ 1 min);最后延伸:72℃10min。
PCR产物经1%琼脂糖凝胶电泳鉴定。
3、实验结果
经琼脂糖凝胶电泳鉴定,PCR反应获得的目的条带符合预期大小(图1),各亚型APV毒株都能扩增出大小为319bp或者320 bp的目的带。经测序结果显示(见SEQ ID NO:3~5),A、B、C亚型扩增的片段正确,通过序列对比(见图2),TN01理论上还可以检测到D型APV(见SEQ ID NO:6)。
SEQUENCE LISTING
<110> 广东温氏食品集团有限公司
<120> 禽肺病毒通用型RT-PCR检测引物及检测方法
<130>
<160> 6
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
gcaagcttat ggtgcaggtc 20
<210> 2
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 2
tgcatagctt tctgctgca 19
<210> 3
<211> 319
<212> DNA
<213> APV-A
<400> 3
gcaagcttat ggggcagggc aaacaatgct gcgctggggt gtcattgcac gatcctccaa 60
caatataatg ttgggccatg tatctgtcca agctgagttg aggcaagtat ctgaggtcta 120
tgacctagtg aggaaaatgg gacctgagtc agggttacta cacttacgcc agagtcccaa 180
agcgggtctt ttatcattga ccaactgtcc caattttgcc agtgttgtcc tcgggaacgc 240
cgccgggctt ggtattatag gcatgtacaa aggtcgagcc cccaaccttg agctgtttgc 300
tgctgctgaa agctatgca 319
<210> 4
<211> 319
<212> DNA
<213> APV-B
<400> 4
gcaagcttat ggtgcaggtc agactatgct aagatggggt gttgtggcaa gatcatccaa 60
taacatcatg ttgggccatg tgtctgtgca ggcagagtta aggcaggtct cagaagtgta 120
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<210> 5
<211> 320
<212> DNA
<213> APV-C
<400> 5
gcaagcttaa tggtgcaggt caaacaatgc taaggtgggg agtgatcgca agatcttcca 60
acaatataat gttgggccat gtctctgtac aagcagaact caaacaggtc acggaggtat 120
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cctcaggatt ggggatactt ggtatgtata gaggaagggt accaaacaca gagctgtttg 300
ctgcagcaga aagctatgca 320
<210> 6
<211> 319
<212> DNA
<213> APV-D
<400> 6
gcaggcttat ggggccggtc aaactatgct gcgatggggg gtagtagcaa ggtcctcgaa 60
taacataatg ttgggccatg tgtctgtcca agctgaactt aaacaagtgt cagaagttta 120
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agcagggctt ctgtctttaa ctagctgccc caattttgct agtgtagtgc tgggtaatgc 240
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