CN102108419B - 甘薯病毒病害spvd的多重rt-pcr检测方法 - Google Patents

甘薯病毒病害spvd的多重rt-pcr检测方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及一种危险性甘薯病毒病害SPVD的多重RT-PCR检测方法,先分别合成甘薯褪绿矮化病毒的引物、甘薯羽状斑驳病毒的引物、甘薯羽状斑驳病毒CH株系的上游引物,然后提取感染SPVD的甘薯叶片的总RNA作为PCR模板,进行反转录;将上述引物置于PCR反应体系中,以反转录产物作为模板,进行PCR扩增;PCR反应程序为:94℃预变性3min,94℃变性30s,54℃退火30s,72℃延伸40s,30个循环,最后72℃延伸10min;最后用琼脂糖凝胶电泳检测扩增产物。本发明建立了在一次PCR反应中即可检测出甘薯病毒病害SPVD是否存在的方法,并且可有效区分SPFMV的株系类型,检测效率提高,并能对SPVD的危险程度及时预警,为该病防控提供可靠依据。

Description

甘薯病毒病害SPVD的多重RT-PCR检测方法
技术领域
本发明涉及甘薯病毒的RT-PCR检测,属于生物工程技术领域,特别是涉及一种危险性甘薯病毒病害SPVD的多重RT-PCR检测方法。
背景技术:
甘薯病毒病害(Sweet potato virus diseases,SPVD)是由甘薯褪绿矮化病毒(Sweet potato chlorotic stunt virus,SPCSV)和甘薯羽状斑驳病毒(Sweet potato feathery mottle virus,SPFMV)协生共侵染甘薯引起的病毒病害。SPVD是上世纪70年代首先在非洲发现,目前主要分布在非洲和南美的一些国家。感染SPVD的甘薯表现为植株矮化、叶片褪绿、扭曲变形、脉明等症状。该病对甘薯产量影响极大,在非洲,病害严重时可造成减产80%以上,甚至绝收,SPVD是甘薯上最危险的病害之一。目前,发明人已在我国的广东、四川、江苏等地首次检测到SPVD的存在,为了加强对该病的预警和控制,防止该病的进一步蔓延危害,必须建立快速、高效的检测技术。
目前用于甘薯病毒检测的常用方法是酶联免疫吸附(ELISA)技术和PCR技术,由于ELISA技术的灵敏度较低,而且需要分别检测SPCSV 和SPFMV才能确定SPVD是否存在。另外SPFMV在中国至少存在CH和CH2两个株系类型,由于SPCSV与SPFMV不同的株系类型互作可能引起不同的产量损失,利用ELISA方法还不能有效区分SPFMV不同株系。而利用单一的RT-PCR进行检测时,也需要分别对SPCSV 和SPFMV进行检测才能确定SPVD是否存在,工作量大,效率低。 
发明内容:
本发明要解决的技术问题:克服现有的甘薯病毒检测的缺点,提供一种在一次PCR反应中检测危险性甘薯病毒病害SPVD是否存在以及存在类型的方法,为甘薯病毒的特异性检测提供了一种简便、高效和低成本的方法。
本发明的技术方案是:
甘薯病毒病害SPVD的多重RT-PCR检测方法,包括以下步骤:
(1)分别合成甘薯褪绿矮化病毒的引物CSV 1和CSV 2;甘薯羽状斑驳病毒的引物FMV 1和FMV 2;甘薯羽状斑驳病毒CH株系的上游引物FMVCH,甘薯羽状斑驳病毒CH2株系的上游引物FMVCH2,所述引物序列为:
CSV 1:5'-AGTGGTGAYGTAATAGTCGGTGG-3',                                    
CSV 2:5'-GCTAACGATTCACADACAGACTTCA-3',
FMV 1:5'-GARCARTTYCRMGCATGGTATGA-3',
FMV 2:5'-GAAGTGYGTCATRATYTGCCTAA-3',
FMVCH:5'-GCGTGATACGAGCAAAGAAAAGG-3',
FMVCH2:5'- CCAAAAGGGGCATTTACAGCACC-3',
其中Y为C或T,D为G、A或T,R为A或G,M为A或C;
(2)提取感染SPVD的甘薯叶片的总RNA作为PCR模板,进行反转录;
 (3)将所述CSV 1、CSV 2、FMV 1、FMV 2、FMVCH和FMVCH2引物置于PCR反应体系中,以反转录产物作为模板,进行PCR扩增;
(4)用琼脂糖凝胶电泳检测扩增产物。
所述反转录时的反应体系为10μl,包括:2μl 5×RT buffer,1μl 浓度为25mmol/L的MgCl2,1μl浓度各为10mmol/L的 dNTP混合物,CSV 2引物0.5μl,FMV 2引物0.5μl,0.25μl浓度为40U/μl的抑制剂,0.5μl浓度为5U/μl的反转录酶,4.25μl 甘薯叶片的总RNA;所述CSV 2、FMV 2引物浓度均为10μmol/L。
所述PCR反应体系为25μl,包括:2.5μl 10×PCR buffer,0.3μl浓度为5U/μl 的Taq 酶,2μl浓度各为2.5mmol/L的 dNTP混合物,1.3μl 浓度为25mmol/L 的 MgCl2溶液,CSV 1引物0.5μl、CSV 2引物0.5μl、FMV 1引物0.2μl、FMV2引物1.3μl、FMVCH引物0.3μl、FMVCH2引物0.5μl,所述引物浓度均为10μmol/L,用2μl反转录产物作模板,用DEPC- H2O 补足至25μl。 
所述反转录时反应程序为:42℃ 40min,99℃ 5min,5℃ 5min,反应后得到反转录产物。
所述PCR反应程序为:94℃预变性3min,94℃变性30s,54℃退火30s,72℃延伸40s, 30个循环,最后72℃ 延伸10min。
本发明的有益效果:
(1)本发明建立了在一次PCR反应中即可检测出危险性甘薯病毒病害SPVD是否存在的方法,并且可有效区分SPFMV的株系类型,能对SPVD的危险程度及时预警,为该病的防控提供可靠依据。而目前单一的RT-PCR检测,需要分别对SPCSV 和SPFMV进行检测才能确定SPVD是否存在,本发明的检测方法的工作量大大降低,工作效率大大提高。
(2)本发明利用建立的多重RT-PCR体系对疑似SPVD病毒甘薯样品进行检测,检测结果与单一的RT-PCR检测结果一致,进一步证明了本发明方法的可行性。
(3)本发明可应用于脱毒甘薯的培育过程中,通过对SPVD的快速高效检测,可以确保脱毒甘薯的质量和增产效果。
(4)本发明可有效区分甘薯羽状斑驳病毒(SPFMV)的株系类型,及时对SPVD的危险程度进行预警,可应用于甘薯种薯调运以及病害调查等过程中,防止该病的进一步扩散。
附图说明:      
图1:多重PCR反应中引物浓度对实验结果的影响
图中1-6分别表示4种上游引物FMV1、FMVCH、FMVCH2、CSV1的比例分别为0.2:0.2:0.4:0.4、0.2:0.4:0.4:0.4、0.2:0.4:0.6:0.6、0.3:0.3:0.6:0.6、0.2:0.4:0.4:0.4、0.2:0.4:0.6:0.6。
图2:多重PCR反应中退火温度对实验结果的影响
图中1-6分别表示退火温度为:50.0℃、51.9℃、53.7℃、56.1℃、58.0℃和60.0℃。
图3:多重PCR反应中dNTP 混合物浓度对实验结果的影响
图中1-6分别表示dNTP浓度为:0μl、0.5μl、1.0μl、1.5μl、2.0μl、2.5μl。
图4:多重PCR反应中Mg2+浓度对实验结果的影响
图中1-6分别表示Mg2+浓度为:0μl、0.5μl、1μl、1.5μl、2μl、2.5μl。
图5:多重PCR反应中酶浓度对实验结果的影响
图中1-6分别表示0μl、0.1μl、0.2μl、0.3μl、0.4μl、0.5μl。
图6:多重和单一RT-PCR检测结果比较
图中1-5分别表示:引物混扩增、FMVCH2引物扩增、FMVCH引物扩增、CSV引物扩增、FMV通用引物扩增。
图7:多重RT-PCR的特异性检测结果
图中1-5分别表示:混样、苏-10-34、苏-10-45、渝-10-1、阴性对照。
图8:多重RT-PCR的灵敏性测试结果
图中1-7分别表示:叶片总RNA、10-1倍稀释、10-2倍稀释、10-3倍稀释、10-4倍稀释、10-5倍稀释、10-6倍稀释。
具体实施方式:
以下结合实施例详细说明本发明,其中出现的百分比浓度如无特别说明,均指质量百分比浓度。
实施例1:甘薯病毒病害SPVD的多重RT-PCR检测方法
(一)材料和方法
1、引物的设计与合成:
根据SPCSV和SPFMV 病毒的基因组序列,设计以下引物,引物由TaKaRa公司合成。引物序列见下表1。
Figure 181408DEST_PATH_IMAGE002
 注:其中Y=C/T,D=G/A/T,R=A/G,M=A/C。
2、病毒材料
分别在广东、四川、江苏等地采集有典型SPVD症状的甘薯茎曼栽种于防虫温室中,分别利用血清学方法和单一PCR方法检测SPCSV和SPFMV,以确定SPVD病毒,并通过核苷酸测序确定SPFMV的株系类型,最后选定若干株SPVD感病甘薯植株,备用。
3、酶及试剂(盒)  
UNIQ-10柱式总RNA抽提试剂盒购自上海生物工程公司,RT-PCR试剂盒[TaKaRa RNA PCR Kit,AMV Ver.3.0]购自TaKaRa公司。
4、核酸提取
利用上海生工生物工程公司的Flash UNIQ柱式总RNA抽提试剂盒,按照其说明书的方法,提取感病甘薯叶片的总RNA。
5、单一RT-PCR:
(1)反转录(RT):反转录反应体系为10μl,包括2μl 5×RT buffer,1μl MgCl2(25mmol/L),1μl dNTP 混合物(各10mmol/L), 0.5μl  SPCSV的通用引物CSV 2,0.5μl  SPFMV的通用引物FMV 2,0.25μl RNase抑制剂(40U/μl),0.5μl反转录酶(AMV Reverse Transcrptase)(5U/μl),4.25μl样品RNA。 反应程序为:42℃ 40min,99℃ 5min,5℃ 5min。
   (2)PCR:反应体系为25μl,包括2.5μl 10×PCR buffer(Mg2+-),0.2μl Taq 酶(5U/μl),0.4μl上游特异性引物(CSV 1、FMV 1、FMVCH或FMVCH2)(10μmol/L),0.4μl下游特异性引物(CSV 2或FMV 2)(10μmol/L,1μl dNTP混合物(各2.5mmol/L),MgCl2(25mmol/L) 1μl;以2μl反转录产物为模板,用DEPC- H2O补足至25μl。
反应程序为: 94℃预变性3min,94℃变性30s,56℃退火30s,72℃延伸40s,30个循环,最后72℃ 延伸10min。 
6、多重PCR反应条件的初步筛选
在检测 SPFMV 和SPCSV 的单一RT-PCR反应体系基础上,建立同时检测这两种病原的多重RT-PCR反应体系。
在有效的RT- PCR 条件下,RT条件不变,对多重PCR的各引物浓度、TaqDNA 聚合酶量、退火温度、dNTPs 浓度、Mg2+等主要影响因子进行优化,筛选出多重 PCR反应体系的最佳反应体系。在优化某一影响因素时,其它因素不变。
PCR反应体系为25μl。
退火温度:分别设50.0℃、51.9℃、53.7℃、56.1℃、58.0℃和60.0℃ 6个处理;
dNTP 混合物(各2.5mmol/L)浓度:分别设0μl、0.5μl、1.0μl、1.5μl、2.0μl、2.5μl 6个处理;
MgCl2浓度(25mmol/L):分别设0μl、0.5μl、1μl、1.5μl、2μl、2.5μl 6个处理,Taq 酶(5U/μl)浓度:分别设0μl、0.1μl、0.2μl、0.3μl、0.4μl、0.5μl 6个处理;
引物浓度(10μmol/L)设6个处理,4种上游引物的比例分别为FMV1: FMVCH: FMVCH2:CSV1:(1)0.2:0.2:0.4:0.4 (2)0.2:0.4:0.4:0.4 (3)0.2:0.4:0.6:0.6 (4)0.3:0.3:0.6:0.6,其中下游引物加入量与上游引物对应;(5)0.2:0.4:0.4:0.4,其中FMV2引物加入量为1.3μl;(6)0.2:0.4:0.6:0.6,其中FMV2下游引物加入量为1.5μl。 
以单一RT-PCR反应体系为基础,通过调节上述参数,筛选和优化多重PCR反应体系。
7、多重RT-PCR体系的建立
(1)反转录(RT):与单一RT-PCR的反转录反应相同;
(2)PCR反应体系:在单一RT-PCR的基础上,分别对引物浓度、Taq酶浓度、MgCl2浓度和退火温度等条件进行优化。
8、PCR产物的电泳分析
用含EB的1.0%琼脂糖凝胶电泳检测扩增产物。上样量为5μl,80V稳压电泳40 min,EB染色,凝胶成像仪观察拍照。
(二)结果与分析
1、多重RT-PCR反应条件的筛选
为确定多重PCR的最优反应条件,分别对引物浓度、退火温度、dNTPs 浓度、Mg2+浓度和Taq DNA聚合酶量进行系列对比试验。
引物浓度:6种不同的FMV、FMVCH、FMVCH2 和CSV引物用量组合的PCR结果显示,几个引物用量组合效果都较好,但考虑到实际应用中,SPFMV和SPCSV对甘薯共同侵染时,SPCSV能使SPFMV得含量显著升高,而本身含量却显著降低,且SPFMV的两类株系并不一定同时与SPCSV共同侵染的现实情况,本实验选择引物量组合为0.5μl CSV 1引物,0.5μl CSV 2引物,0.2μl FMV 1引物,1.3μl FMV2引物,0.3μl FMVCH引物,0.5μl FMVCH2引物作为最佳引物浓度 (参见图 1)。
退火温度:结果显示,退火温度在 50~56℃范围内,都能比较好的扩增出四条目的带,综合考虑,本试验选择54 ℃为最佳退火温度 (参见图 2)。
dNTPs 浓度梯度:结果显示,当 dNTPs 加入量低于0.5μl时,不能很好地扩出所有目的条带,而加入量达到0.5μl后则能够扩出全部目的条带,并且随浓度的增加四种目的条带越来越亮,但加入量达到1.5μl后目的条带则没有太大变化。本实验选择2.0μl作为最佳 的dNTPs 浓度 (参见图 3)。
Mg2+浓度梯度:结果显示,当 Mg2+加入量低于0.5μl时不能扩增出目的条带,当Mg2+加入量达到0.5 μl后就能够扩出全部条带,并且随浓度的增加四种目的条带越来越亮,但当 Mg2+加入量高于2.5μl时,各目的条带的亮度反而变弱。综合考虑,选择Mg2+最佳加入量为1.3μl (参见图 4)。
Taq DNA聚合酶量梯度: 结果显示,当 Taq DNA聚合酶加入量为0.2μl时,就能清晰地扩出各条目的条带,随着酶量的增加,目的条带没有很大变化,本试验选择0.3μl进行下面的实验 (参见图 5)。
2、多重RT-PCR的特异性测验
选取在我国江苏、重庆等地采集的病毒样品(编号分别为:苏-10-34、苏-10-45、渝-10-1)及阴性对照甘薯样品提取总RNA,进行多重RT-PCR检测,其中血清学检测苏-10-34、苏-10-45甘薯样品中含有SPCSV和SPFMV两种病毒,而渝-10-1甘薯样品中含有SPFMV、SPLV、SPVG、SPCFV 、CMV等病毒。结果显示:苏-10-34为SPFMV-CH2与SPCSV两种病毒共同侵染,苏-10-45为SPFMV-CH和SPCSV两种病毒共同侵染,渝-10-1同时含有SPFMV的两类株系。检测结果与血清学检测结果一致 (参见图7)。
3、多重RT-PCR的灵敏性测验
从受SPVD侵染的甘薯叶片中提取总RNA,经过核酸蛋白分析仪测定并计算出总RNA的浓度为1619.6ng/μl,对总RNA进行10-0、10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6一系列稀释,经过多重RT-PCR扩增,观察电泳结果,分析多重RT-PCR检测的灵敏性。
结果表明,能同时检测出3种病毒的总RNA最大稀释限度为10-3,即该体系最低能从总RNA浓度为1619.6ng/ml的样品中检测出2种病毒的存在(参见图8)。
4、甘薯病毒病害SPVD多重RT-PCR检测方法的建立
根据不同参数对实验结果的影响,综合考虑实验结果和实验成本,最终优化的多重RT-PCR反应体系为:
PCR反应体系为25μl:包括2.5μl 10×PCR buffer(Mg2+-),0.3μl Taq 酶(5U/μl), 2μl dNTP Mixture(各2.5mmol/L),MgCl2(25mmol/L) 1.3μl,0.5μl CSV 1引物,0.5μl CSV 2引物,0.2μl FMV 1引物,1.3μl FMV2引物,0.3μl FMVCH引物,0.5μl FMVCH2引物,2μl反转录产物作模板,用DEPC- H2O 补足至25μl。
反应程序为: 94℃预变性3min,94℃变性30s,54℃退火30s,72℃延伸40s, 30个循环,最后72℃ 延伸10min。
5、甘薯病毒病害SPVD多重RT-PCR检测方法的应用
利用建立的多重RT-PCR体系对采自广东、四川等地的疑似SPVD甘薯样品进行检测,检测结果与单一RT-PCR的检测结果一致(参见图6)。

Claims (4)

1.甘薯病毒病害SPVD的多重RT-PCR检测方法,其特征在于,
(1)分别合成甘薯褪绿矮化病毒的引物CSV 1和CSV 2;甘薯羽状斑驳病毒的引物FMV 1和FMV 2;甘薯羽状斑驳病毒CH株系的上游引物FMVCH,甘薯羽状斑驳病毒CH2株系的上游引物FMVCH2,所述引物序列为:
CSV 1:5'-AGTGGTGAYGTAATAGTCGGTGG-3',  
CSV 2:5'-GCTAACGATTCACADACAGACTTCA-3',
FMV 1:5'-GARCARTTYCRMGCATGGTATGA-3',
FMV 2:5'-GAAGTGYGTCATRATYTGCCTAA-3',
FMVCH:5'-GCGTGATACGAGCAAAGAAAAGG-3',
FMVCH2:5'- CCAAAAGGGGCATTTACAGCACC-3',
其中Y为C或T,D为G、A或T,R为A或G,M为A或C;
(2)提取感染SPVD的甘薯叶片的总RNA作为PCR模板,进行反转录,所述反转录时的反应体系为:2μl 5×RT buffer,1μl 浓度为25mmol/L的MgCl2,1μl浓度各为10mmol/L的 dNTP混合物,CSV 2引物0.5μl,FMV 2引物0.5μl,0.25μl浓度为40U/μl的RNase抑制剂,0.5μl浓度为5U/μl的反转录酶,4.25μl 甘薯叶片的总RNA;所述CSV 2、FMV 2引物浓度均为10μmol/L;
 (3)将所述CSV 1、CSV 2、FMV 1、FMV 2、FMVCH和FMVCH2引物置于PCR反应体系中,以反转录产物作为模板,进行PCR扩增;
(4)用琼脂糖凝胶电泳检测扩增产物。
2.根据权利要求1所述的多重RT-PCR检测方法,其特征在于,所述PCR反应体系为:2.5μl 10×PCR buffer,0.3μl浓度为5U/μl 的Taq 酶,2μl浓度各为2.5mmol/L的 dNTP混合物,1.3μl 浓度为25mmol/L 的 MgCl2溶液,CSV 1引物0.5μl、CSV 2引物0.5μl、FMV 1引物0.2μl、FMV2引物1.3μl、FMVCH引物0.3μl、FMVCH2引物0.5μl,所述引物浓度均为10μmol/L,用2μl反转录产物作模板,用DEPC- H2O 补足至25μl。
3.根据权利要求1所述的多重RT-PCR检测方法,其特征在于,所述反转录时反应程序为:42℃ 40min,99℃ 5min,5℃ 5min,反应后得到反转录产物。
4.根据权利要求1所述的多重RT-PCR检测方法,其特征在于,所述PCR反应程序为:94℃预变性3min,94℃变性30s,54℃退火30s,72℃延伸40s, 30个循环,最后72℃ 延伸10min。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102305727B (zh) * 2011-07-20 2013-04-17 江苏徐州甘薯研究中心 一种甘薯病毒病血清检测取样方法
CN102586484B (zh) * 2012-03-09 2013-04-17 河南省农业科学院 烟粉虱中甘薯褪绿矮化病毒的检测方法及其应用
CN102747071B (zh) * 2012-05-31 2013-06-26 河南省农业科学院 克隆甘薯褪绿矮化病毒spcsv全基因组的引物对及方法
CN103849691B (zh) * 2014-02-26 2015-10-07 福建省农业科学院作物研究所 一种甘薯病毒检测引物及方法
CN104450977B (zh) * 2015-01-06 2016-08-17 西南大学 用于甘薯病毒病实时荧光定量pcr检测的引物及检测方法
CN106755579B (zh) * 2016-12-28 2018-08-17 河南省农业科学院植物保护研究所 一种甘薯块根中甘薯褪绿矮化病毒和甘薯双生病毒的多重pcr检测及预警方法
CN107360906A (zh) * 2017-08-04 2017-11-21 江苏徐淮地区徐州农业科学研究所(江苏徐州甘薯研究中心) 一种减轻甘薯spvd危害的方法
CN107385117B (zh) * 2017-09-20 2021-08-10 湖南省作物研究所 一种甘薯种薯复合病毒病(spvd)病原的检测方法
CN108950089B (zh) * 2018-09-03 2020-01-10 河南省农业科学院植物保护研究所 一种预测甘薯育苗期病毒病显症率和严重度的方法
CN113249403B (zh) * 2021-03-31 2023-08-04 江苏师范大学 一种具有spvd抗性甘薯的育种方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101250594A (zh) * 2008-04-07 2008-08-27 河南省农业科学院植物保护研究所 三种甘薯病毒的多重rt-pcr检测方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101250594A (zh) * 2008-04-07 2008-08-27 河南省农业科学院植物保护研究所 三种甘薯病毒的多重rt-pcr检测方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
A. ASHOUB等.COMPARISON OF METHODS TO DETECT SWEET POTATO FEATHERY MOTTLE VIRUS (SPFMV) IN SWEET POTATOES.《Egypt. J. Genet. Cytol》.2008,第37卷全文. *
J. F. KREUZE等.RNA silencing-mediated resistance to a crinivirus (Closteroviridae) in cultivated sweetpotato (Ipomoea batatas L) and development of sweetpotato virus disease following co-infection with a potyvirus.《MOLECULAR PLANT PATHOLOGY》.2008,第9卷(第5期),全文. *
张业辉.三种甘薯病毒多重RT-PCR检测方法的建立及甘薯脉花叶病毒SPVMV的分子鉴.《中国优秀硕士学位论文全文数据库(农业科技辑)》.2010,(第6期),全文. *
张业辉等.3种甘薯病毒多重RT-PCR检测方法的建立.《植物病理学报》.2010,第40卷(第1期),全文. *

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