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Abstract

一种提取植物DNA的方法,它涉及一种提取DNA的方法。它解决了目前植物DNA提取方法都只对含有少量多糖的植物提取材料有效,对多糖含量高的植物或部位基本无效的问题。提取方法:一、植物提取材料用液氮研磨成粉末,然后转入提取缓冲液I中进行水浴,再离心;二、取步骤一离心沉淀物转提取缓冲液II中进行水浴,之后加入氯仿离心;三、取步骤二离心上清液并加入上清液等体积的异丙醇,混匀后离心,再用乙醇洗涤离心沉淀,然后干燥,即得到植物提取材料的DNA。本发明方法是一种可以广泛使用的植物DNA提取方法,它不受植物提取材料多糖含量的影响,在DNA提取过程中可将植物中的多糖彻底去除,提高了DNA提取的效率、纯度和质量。

Description

一种提取植物DNA的方法
技术领域
本发明涉及一种提取DNA的方法。
背景技术
DNA是分子生物学研究的主要对象之一,在进行分子生物学操作过程中,基因组DNA的质量好坏是影响其成败的关键因素。例如,在PCR过程中多糖、多酚和色素等都会严重的影响DNA聚合酶的活性,干扰引物与模板的结合导致扩增失败。
植物尤其是一些林木中含有大量的多糖物质,多糖是提取植物DNA的主要干扰物质,由于它与核酸的物理性质非常相似,在提取过程中多糖物质通常与DNA共沉淀下来,非常难与DNA分开,因此严重地影响了所提取的DNA的质量。目前,国内外在提取植物基因组DNA过程中,为了去除多糖采用以下几种方法:①用低浓度乙醇去除多糖法:在DNA提取液中加入无水乙醇至终浓度10%~30%,再通过酚/仿抽提去除多糖,或者是先用浓度为100mmol/L的NaAc溶解DNA沉淀,再用低浓度乙醇抽提分离出多糖;②CTAB法:CTAB(十六烷基三甲基溴化铵)比SDS(十二烷基硫酸钠)去除多糖类物质的效果好,适当地提高CTAB和β-巯基乙醇的含量(不低于1%)可有效地去除多糖等次生物质;但是此方法中如果CTAB浓度过高,在保温时提取材料与CTAB缓冲液难以充分混匀,这就需要延长保温时间,也同时增加了DNA降解的机率;③在去除多糖时采用先加不含CTAB的缓冲液抽提多糖,在通过离心除去多糖的方法;④高盐沉淀多糖法:认为缓冲液中含有高浓度的NaCl将有助于去除多糖。
但是目前的这几种去除多糖提取植物DNA的方法都只对含有少量多糖的植物提取材料有效,而对于多糖含量高的植物(如:白桦)或部位(如:老叶片)基本无效,因此目前尚未有一种普遍有效的去除植物材料中多糖,保证所提取DNA质量的DNA提取方法,特别是缺乏有效的、针对多糖含量高的植物的DNA提取方法。
发明内容
本发明的目的是为了解决目前植物DNA提取方法都只对含有少量多糖的植物提取材料有效,对多糖含量高的植物或部位基本无效的问题,而提供的一种提取植物DNA的方法。
提取植物DNA按以下步骤进行:一、植物提取材料用液氮研磨成粉末,然后取0.15~0.25g研磨粉末转入1mL提取缓冲液I中在温度为45±1℃的条件下水浴10min,再在10000g条件下离心10min;二、取步骤一离心沉淀物转入0.5~1mL提取缓冲液II中在温度为65±1℃的条件下水浴10min,之后加入0.5~1mL氯仿在12000g的条件下离心5min;三、取步骤二离心上清液并加入上清液等体积的异丙醇,混匀后在10000~12000g条件下离心10min,再用体积浓度为75%、体积为0.5mL的乙醇洗涤离心沉淀2次,然后室温气干,即得到植物提取材料的DNA;其中步骤一中的提取缓冲液I由乙二胺四乙酸(EDTA)、NaCl和去离子水组成,提取缓冲液I中乙二胺四乙酸的浓度为50mmol/L、NaCl的浓度为0.16mol/L;步骤二中的提取缓冲液II由乙二胺四乙酸(EDTA)、NaCl、十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)、十二烷基肌氨酸钠(SLS)、巯基乙醇和去离子水组成,提取缓冲液II中乙二胺四乙酸的浓度为50mmol/L、NaCl的浓度为1mol/L、十六烷基三甲基溴化铵的浓度为2.5g/100mL、十二烷基肌氨酸钠的浓度为0.1g/100mL、巯基乙醇的浓度为1mL/100mL。
本发明方法步骤一中在45±1℃的条件下进行水浴可以使多糖和RNA完全溶解在提取缓冲液I中,而DNA则与蛋白形成复合物DNP沉淀出来(DNP在提取缓冲液I中溶解度极低),因此通过离心即可将DNA与多糖及RNA分开。本发明方法步骤二提取缓冲液II中CTAB的浓度提高到2.5g/100mL,同时还加入了另一种去污剂十二烷基肌氨酸钠(SLS),促进DNA与蛋白质的分离,并提高了DNA在提取缓冲液II中的溶解。本发明方法是一种可以广泛使用的植物DNA提取方法,它不受植物提取材料多糖含量的影响,在DNA提取过程中可将植物中的多糖彻底去除,提高了DNA提取的效率、纯度和质量。
附图说明
图1是具体实施方式六所提取的DNA的凝胶电泳图,图2是采用现有CTAB法所提取的DNA的凝胶电泳图。
具体实施方式
具体实施方式一:本实施方式提取植物DNA按以下步骤进行:一、植物提取材料用液氮研磨成粉末,然后取0.15~0.25g研磨粉末转入1mL提取缓冲液I中在温度为45±1℃的条件下水浴10min,再在10000g条件下离心10min;二、取步骤一离心沉淀物转入0.5~1mL提取缓冲液II中在温度为65±1℃的条件下水浴10min,之后加入0.5~1mL氯仿在12000g的条件下离心5min;三、取步骤二离心上清液并加入上清液等体积的异丙醇,混匀后在10000~12000g条件下离心10min,再用体积浓度为75%、体积为0.5mL的乙醇洗涤离心沉淀2次,然后空气室温干燥,即得到植物提取材料的DNA;其中步骤一中的提取缓冲液I由乙二胺四乙酸(EDTA)、NaCl和去离子水组成,提取缓冲液I中乙二胺四乙酸的浓度为50mmol/L、NaCl的浓度为0.16mol/L;步骤二中的提取缓冲液II由乙二胺四乙酸(EDTA)、NaCl、十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)、十二烷基肌氨酸钠(SLS)、巯基乙醇和去离子水组成,提取缓冲液II中乙二胺四乙酸的浓度为50mmol/L、NaCl的浓度为1mol/L、十六烷基三甲基溴化铵的浓度为2.5g/100mL、十二烷基肌氨酸钠的浓度为0.1g/100mL、巯基乙醇的浓度为1mL/100mL。
本实施方式在提取过程中采用低浓度NaCl溶液去除多糖,效果显著,克服了本领域技术人员的偏见。
本实施方式方法特别适用于多糖含量高的植物材料提取DNA。
本实施方式方法操作简单,易于掌握,步骤少,可有效的提高植物DNA提取效率。
具体实施方式二:本实施方式与具体实施方式一的不同点是:步骤二水浴过程中将装有提取缓冲液II和离心沉淀物的离心管颠倒3~10次。其它步骤及参数与实施方式一相同。
本实施方式可以保证反应均匀且充分,提高植物DNA的提取质量。
具体实施方式三:本实施方式与具体实施方式一的不同点是:步骤三中加入的异丙醇的温度为0~4℃(预冷)。其它步骤及参数与实施方式一相同。
本实施方式可以有效的沉淀DNA,提高植物DNA的得率。
具体实施方式四:本实施方式与具体实施方式一的不同点是:步骤二中加入氯仿后用振荡器震荡2~3min,然后再进行离心。其它步骤及参数与实施方式一相同。
本实施方式可以保证氯仿作用充分,有效去除杂蛋白,提高植物DNA的质量。
具体实施方式五:本实施方式与具体实施方式一的不同点是:将提取得到的植物DNA置于TE缓冲液中保藏。其它步骤及参数与实施方式一相同。
具体实施方式六:本实施方式提取白桦成熟叶片DNA按以下步骤进行:一、白桦成熟叶片用液氮研磨成粉末,然后取0.2g研磨粉末转入1mL提取缓冲液I中在温度为45℃的条件下水浴10min,再在10000g条件下离心10min;二、取步骤一离心沉淀物转入0.6mL提取缓冲液II中在温度为65℃的条件下水浴10min,之后加入0.6mL氯仿在12000g的条件下离心5min;三、取步骤二离心上清液并加入上清液等体积的异丙醇,混匀后在12000g条件下离心10min,再用体积浓度为75%、体积为0.5mL的乙醇洗涤离心沉淀2次,然后空气室温干燥,即得到白桦成熟叶片的DNA;其中步骤一中的提取缓冲液I由乙二胺四乙酸(EDTA)、NaCl和去离子水组成,提取缓冲液I中乙二胺四乙酸的浓度为50mmol/L、NaCl的浓度为0.16mol/L;步骤二中的提取缓冲液II由乙二胺四乙酸(EDTA)、NaCl、十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)、十二烷基肌氨酸钠(SLS)、巯基乙醇和去离子水组成,提取缓冲液II中乙二胺四乙酸的浓度为50mmol/L、NaCl的浓度为1mol/L、十六烷基三甲基溴化铵的浓度为2.5g/100mL、十二烷基肌氨酸钠的浓度为0.1g/100mL、巯基乙醇的浓度为1mL/100mL。
白桦的组织细胞中含有大量的多糖、多酚,本实施方式提取缓冲液I作用后的上清成粘稠状,说明溶解了大量的多糖;步骤一沉淀呈白色,说明大量的多糖已经在步骤一中去除了。本实施方式所提取的DNA的凝胶电泳图如图1所示。
现有CTAB法提取相同的白桦成熟叶片:取白桦成熟叶片在研钵中加入-196℃的液氮,将植物组织迅速研磨成粉末,把粉末转入65℃预热的含2mLCTAB的提取缓冲液的离心管中(提取缓冲液中Tris的浓度为100mmol/L;EDTA的浓度为20mmol/L;NaCl的浓度为1.4mol/L;CTAB的浓度为2.0g/100mL;巯基乙醇的浓度为2~5mL/100mL),使之充分混匀,于65℃水浴保温30min,期间缓慢颠倒离心管数次,保温30min后,使之冷却至室温(室温应大于15℃,否则CTAB-核酸复合物会发生沉淀),加入等体积氯仿/异戊醇(24∶1)进行抽提,缓慢颠倒离心管混匀10min,再12000rpm室温离心10min,将上清液转入另一离心管中,弃沉淀;(重复抽提2次)在上清液中加入等体积预冷的异丙醇,轻缓颠倒混合均匀,室温放置10~20min,沉淀DNA12000rpm室温离心10min,弃上清液,用0.5ml的75%乙醇洗涤2次以除去残留的盐;空气干燥后,将沉淀物溶于200μL灭菌去离子水中。
CTAB法所得沉淀较多,呈淡黄色,加入的TE缓冲液溶解较困难,呈粘稠状;提取的DNA的凝胶电泳图如图2所示。
图1和图2凝胶电泳结果进行比较,可以清楚的看出本实施方式提取的DNA条带明亮、整齐,其带型无降解拖尾现象,DNA得率高,说明本实施方式所提取的DNA比采用现有CTAB法提取的DNA的质量更为优异。

Claims (5)

1、一种提取植物DNA的方法,其特征在于提取植物DNA按以下步骤进行:一、植物提取材料用液氮研磨成粉末,然后取0.15~0.25g研磨粉末转入1mL提取缓冲液I中在温度为45±1℃的条件下水浴10min,再在10000g条件下离心10min;二、取步骤一离心沉淀物转入0.5~1mL提取缓冲液II中在温度为65±1℃的条件下水浴10min,之后加入0.5~1mL氯仿在12000g的条件下离心5min;三、取步骤二离心上清液并加入上清液等体积的异丙醇,混匀后在10000~12000g条件下离心10min,再用体积浓度为75%、体积为0.5mL的乙醇洗涤离心沉淀2次,然后室温气干,即得到植物提取材料的DNA;其中步骤一中的提取缓冲液I由乙二胺四乙酸、NaCl和去离子水组成,提取缓冲液I中乙二胺四乙酸的浓度为50mmol/L、NaCl的浓度为0.16mol/L;步骤二中的提取缓冲液II由乙二胺四乙酸、NaCl、十六烷基三甲基溴化铵、十二烷基肌氨酸钠、巯基乙醇和去离子水组成,提取缓冲液II中乙二胺四乙酸的浓度为50mmol/L、NaCl的浓度为1mol/L、十六烷基三甲基溴化铵的浓度为2.5g/100mL、十二烷基肌氨酸钠的浓度为0.1g/100mL、巯基乙醇的浓度为1mL/100mL。
2、根据权利要求1所述的一种提取植物DNA的方法,其特征在于步骤二水浴过程中将装有提取缓冲液II和离心沉淀物的离心管颠倒3~10次。
3、根据权利要求1所述的一种提取植物DNA的方法,其特征在于步骤三中加入的异丙醇的温度为0~4℃。
4、根据权利要求1所述的一种提取植物DNA的方法,其特征在于步骤二中加入氯仿后用振荡器震荡2~3min,然后再进行离心。
5、根据权利要求1所述的一种提取植物DNA的方法,其特征在于将提取得到的植物DNA置于TE缓冲液中保藏。
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