CN101138321A - 一种甘蔗脱毒组培快繁的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种甘蔗脱毒组培快繁的方法,属植物繁殖技术领域。包括如下步骤:取甘蔗的顶芽或腋芽为外植体,经愈伤组织诱导培养、植株分化培养、增殖培养、生根培养、病毒检测后,大量繁殖脱毒组培苗。本发明的优点是:采用的外植体体积较大,操作容易;接种成活率高;脱毒简便、快捷、彻底;月繁殖系数达5~10倍,速度快,适合工厂化育苗,可商品化生产。
Description
技术领域
本发明涉及植物脱毒组培快繁技术领域,尤其涉及一种甘蔗脱毒组培快繁的方法。
背景技术
甘蔗花叶病害在浙江和福建等省广泛发生已有多年,新叶呈现浅黄色斑驳或轻微的褪绿条纹,老叶呈现长条褪绿条纹或花叶,发病率很高,造成糖分和产量下降(约18%左右),种性也衰退,影响品质。
获得无病毒植株的方法有多种,例如热处理脱毒、茎尖培养脱毒和茎尖微嫁接脱毒以及组合方法。其中普遍采用的较好的方法是茎尖培养脱毒法,具体的步骤是:通过植物顶端分生组织切取茎尖(0.2mm以下分生组织),诱导产生幼芽,长成小植株得到脱毒苗。相关的技术已有许多的专利。例如,CN1031637A、CN1238122A、CN1258435A、CN1258436A披露了采用茎尖作为外植体,经茎尖培养后得到脱毒苗的方法。但是这种茎尖分生组织脱毒法存在的问题是:要切取很微小的0.2mm以下茎尖分生组织,需在显微镜下操作,具有一定难度;而且,切取茎尖组织越小,成活率就越低,而切取茎尖组织偏大,又不能完全脱除病毒,同时容易造成污染;因此,生产上迫切需要一种更好的方法来满足甘蔗脱毒组培快繁的需要。
发明内容
本发明目的是针对上述茎尖分生组织脱毒法所存在的操作难度大、成活率低等缺陷,提出一种以切取较大的甘蔗植株茎尖(2~3mm)为外植体,先诱导产生愈伤组织,再分化形成植株的方法,达到大量、快速、操作方便、脱毒彻底地繁殖甘蔗脱毒组培苗的目的。
本发明目的通过以下技术方案来实现:
一种甘蔗脱毒组培快繁的方法,按如下步骤进行:
1)培养基的配制,包括基本培养基和组培各阶段培养基的各组分与每升所含重量为:
(1)基本培养基:用MS培养基,蔗糖或白糖20~30g/L,琼脂7~9g/L,pH5.6~5.8;
(2)愈伤组织诱导培养基:MS中添加2,4-D 1~2mg/L和NAA 0.1~0.2mg/L;
(3)分化培养基:MS中添加6-BA2.0~3.0mg/L和NAA 0.1~0.3mg/L;
(4)增殖培养基:MS中添加6-BA0.5~1.0mg/L和NAA0.1mg/L;
(5)生根培养基:1/2MS中添加NAA0.1~0.5mg/L;
2)外植体的选取与灭菌:取甘蔗的顶芽或腋芽,经灭菌处理,作为脱毒组培用的外植体;
3)愈伤组织诱导培养:将步骤2)灭菌处理后的顶芽或腋芽在无菌条件下,摘取其2~3mm的茎尖组织,接种在愈伤组织诱导培养基上,诱导形成愈伤组织;
4)分化培养:将步骤3)诱导形成的愈伤组织移植至分化培养基分化出丛芽;
5)增殖培养:将步骤4)分化的丛芽切成单株接种在增殖培养基上,再分化出丛芽;
6)生根培养:将步骤5)增殖形成的丛芽切成单株接种在生根培养基中进行生根培养;
7)移栽:当步骤6)的生根组培苗生长至3~5cm,根数5根以上时,移栽基质培养至成苗;
8)病毒检测:利用RT-PCR扩增技术,构建其基因组序列克隆,原核表达制备病毒特异性的抗血清,建立ELISA检测技术进行甘蔗花叶病毒检测。
所述的培养基进一步可改进为,包括基本培养基和组培各阶段培养基的各组分与每升所含重量为:
(1)基本培养基:用MS基本培养基,白糖30g/L,琼脂7g/L,pH5.8;(2)愈伤组织诱导培养基:MS+2,4-D 1.5mg/L+NAA 0.15mg/L;(3)分化培养基:MS+6-BA 2.5mg/L+NAA 0.15mg/L;(4)增殖培养基:MS+6-BA 0.75mg/L+NAA 0.1mg/L;(5)生根培养基:1/2MS+NAA 0.25mg/L。
所述的灭菌处理是将外植体先经75%酒精浸泡0.5~1.0min,再用0.1%升汞溶液灭菌10~15min,最后用无菌水冲洗3~5次。
所述的移栽基质是泥炭∶珍珠岩∶蛭石按体积比3∶1∶2配制而成。本发明的有益效果是:
1)本发明利用甘蔗的顶芽和腋芽为脱毒组培的外植体,由于茎尖培养时摘取其2~3mm长的茎尖组织,体积较大接种操作就较容易;接种成功率高达90%以上,而现有以脱毒为目的仅摘取0.2~0.3mm的茎尖组织,其培养接种成活率一般只有20%~40%;
2)本发明脱毒简便、快捷,容易从2~3mm长的茎尖中诱导形成愈伤组织并分化出再生植株,解决了以往微型茎尖脱毒不彻底的问题;愈伤组织之所以能达到较好的脱毒效果,可能是因为愈伤组织中病毒的复制过程赶不上细胞增殖速度,将该脱毒组培苗经ELISA病毒检测后,带毒率为0(见试验例),可解决病毒引起甘蔗种质退化问题,恢复其产量和品质;
3)本发明以切取较大的甘蔗植株茎尖(2~3mm)为外植体,先诱导产生愈伤组织,再分化形成植株的方法,可快速获得大量脱毒组培苗,月繁殖系数达到5~10倍,适合工厂化育苗,可商品化生产。
具体实施方式
通过以下实施例对本发明作进一步的详细说明,但本发明的内容并不局限于此。
实施例1(甘蔗的顶芽为外植体)
1)外植体的选取与灭菌:于6月~11月,取甘蔗的顶芽,经75%酒精浸泡0.5~1.0min,再用0.1%升汞溶液灭菌10min,最后用无菌水冲洗3~5次,作为脱毒组培用的外植体;
2)基本培养基:用MS基本培养基,白糖20g/L,琼脂9g/L,pH5.6;
3)愈伤组织诱导培养:在无菌条件下从步骤(1)灭菌后外植体中摘取2~3mm的茎尖组织,接种在MS+2,4-D 1mg/L+NAA 0.1mg/L的愈伤组织诱导培养基上,至诱导形成愈伤组织;
4)分化培养:将步骤(3)诱导形成的愈伤组织移植至MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.1mg/L的分化培养基上诱导出丛芽;
5)增殖培养:将步骤(4)分化的丛芽切成单株接种在MS+6-BA0.5mg/L+NAA 0.1mg/L的增殖培养基上,再分化出丛芽;
6)生根培养:将步骤(5)增殖形成的丛芽切成单株接种在1/2MS+NAA0.1mg/L的生根培养基中进行生根培养;
7)移栽:当生根组培苗生长至3~5cm,根数5根以上时,移栽入由泥炭∶珍珠岩∶蛭石按体积比3∶1∶2配制而成的基质中;
8)病毒检测:利用RT-PCR扩增技术,构建其基因组序列克隆,原核表达制备病毒特异性的抗血清,建立ELISA检测技术进行甘蔗花叶病毒和高粱花叶病毒的检测。
实施例2:(以甘蔗的腋芽为外植体1)
1)外植体的选取与灭菌:于11月份,取甘蔗的腋芽,经75%酒精浸泡0.5~1.0min,再用0.1%升汞溶液灭菌15min,最后用无菌水冲洗3~5次,作为脱毒组培用的外植体;
2)基本培养基:用MS基本培养基,白糖25g/L,琼脂8g/L,pH5.7;
3)愈伤组织诱导培养:在无菌条件下从步骤(1)灭菌后外植体中摘取2~3mm的茎尖组织,接种在MS+2,4-D 2mg/L+NAA 0.2mg/L的愈伤组织诱导培养基上,诱导形成愈伤组织;
4)分化培养:将步骤(3)诱导形成的愈伤组织移植至MS+6-BA 3.0mg/L+NAA 0.3mg/L的分化培养基上诱导出丛芽;
5)增殖培养:将步骤(4)分化的丛芽切成单株接种在MS+6-BA1.0mg/L+NAA 0.1mg/L的增殖培养基上,再分化出丛芽;
6)生根培养:将步骤(5)增殖形成的丛芽切成单株接种在1/2MS+NAA0.5mg/L的生根培养基中进行生根培养;
7)移栽:当生根组培苗生长至3~5cm,根数5根以上时,移栽入由泥炭∶珍珠岩∶蛭石按体积比3∶1∶2配制而成的基质中;
8)病毒检测:利用RT-PCR扩增技术,构建其基因组序列克隆,原核表达制备病毒特异性的抗血清,建立ELISA检测技术进行甘蔗花叶病毒和高粱花叶病毒的检测。
实施例3:(以甘蔗的腋芽为外植体2)
1)外植体的选取与灭菌:于11月份,取甘蔗的腋芽,经75%酒精浸泡0.5~1.0min,再用0.1%升汞溶液灭菌10min,最后用无菌水冲洗3~5次,作为脱毒组培用的外植体;
2)基本培养基:用MS基本培养基,白糖30g/L,琼脂7g/L,pH5.8;
3)愈伤组织诱导培养:在无菌条件下从步骤(1)灭菌后外植体中摘取2~3mm的茎尖组织,接种在MS+2,4-D 1.5mg/L+NAA 0.15mg/L的愈伤组织诱导培养基上,诱导形成愈伤组织;
4)分化培养:将步骤(3)诱导形成的愈伤组织移植至MS+6-BA 2.5mg/L+NAA 0.15mg/L的分化培养基上诱导出丛芽;
5)增殖培养:将步骤(4)分化的丛芽切成单株接种在MS+6-BA 0.75mg/L+NAA 0.1mg/L的增殖培养基上,再分化出丛芽;
6)生根培养:将步骤(5)增殖形成的丛芽切成单株接种在1/2MS+NAA 0.25mg/L的生根培养基中进行生根培养;
7)移栽:当步骤(6)生根组培苗生长至3~5cm,根数5根以上时,移栽入由泥炭∶珍珠岩∶蛭石按体积比3∶1∶2配制而成的基质中;
8)病毒检测:利用RT-PCR扩增技术,构建其基因组序列克隆,原核表达制备病毒特异性的抗血清,建立ELISA检测技术进行甘蔗花叶病毒和高粱花叶病毒的检测。
试验例:(病毒检测)
对照材料:从田间采集的甘蔗病叶为材料。
处理材料:以实施例1获得的组培苗为材料。
1)抗血清制备:
a)根据已报道的甘蔗花叶病毒(sugarcan mosaic virus,SCMV)、和高粱花叶病毒(sorghummosaicvirus,SrMV)的检测已发表的序列设计相关病毒外壳蛋白表达引物;
b)扩增相关病毒外壳蛋白基因并构建原核表达质粒,在大肠杆菌中表达;
c)将目的蛋白与2×SDS上样缓冲液按1∶1(v/v)混合,煮沸变性后用12%的SDS聚丙烯凝胶电泳分离,电泳完毕后用0.25M KCl溶液染色;
d)切下的目的蛋白条带用适量1×SDS上样缓冲液匀浆后,再用5-20%梯度的SDS聚丙烯凝胶电泳分离,电泳完毕后用0.25M KCl溶液染色;
e)切下目的蛋白条带免疫小鼠,共免疫4次,前3次间隔7天,第4次免疫3天后断头取血。
2)ELISA检测技术:
a)包被:称取病样和健康对照各0.2g,分别加入包被液(0.05mol/L碳酸盐缓冲液,pH 9.6)各1mL研磨,6000rpm离心后包被96孔板,每孔100uL,4℃,12h;
b)封闭:加封闭液,每孔150uL,37℃孵育1h;
c)加一抗:加入适当稀释的抗血清(ELISA缓冲液稀释),37℃孵育2h;
d)加酶标二抗:加入1/5000的羊抗鼠IgG-碱性磷酸酶(Sigma,ELISA缓冲液稀释),37℃孵育2h;
e)加底物:1mg/mL的p-NPP(Sigma,溶于10%二乙醇胺,pH 9.8),37℃黑暗中孵育,分别在40min、1h和2h测OD405值。
3)检测结果如下表所示:
处理 | 检测的结果 |
对照 | 阳性 |
脱毒组培苗 | 阴性 |
Claims (4)
1.一种甘蔗脱毒组培快繁的方法,其特征在于按以下步骤进行:
1)培养基的配制,包括基本培养基和组培各阶段培养基的各组分与每升所含重量为:
(1)基本培养基:用MS培养基,蔗糖或白糖20~30g/L,琼脂7~9g/L,pH5.6~5.8;
(2)愈伤组织诱导培养基:MS中添加2,4-D 1~2mg/L和NAA 0.1~0.2mg/L;
(3)分化培养基:MS中添加6-BA2.0~3.0mg/L和NAA 0.1~0.3mg/L;
(4)增殖培养基:MS中添加6-BA0.5~1.0mg/L和NAA0.1mg/L;
(5)生根培养基:1/2MS中添加NAA0.1~0.5mg/L;
2)外植体的选取与灭菌:取甘蔗的顶芽或腋芽,经灭菌处理,作为脱毒组培用的外植体;
3)愈伤组织诱导培养:将步骤2)灭菌处理后的顶芽或腋芽在无菌条件下,摘取其2~3mm的茎尖组织,接种在愈伤组织诱导培养基上,诱导形成愈伤组织;
4)分化培养:将步骤3)诱导形成的愈伤组织移植至分化培养基分化出丛芽;
5)增殖培养:将步骤4)分化的丛芽切成单株接种在增殖培养基上,再分化出丛芽;
6)生根培养:将步骤5)增殖形成的丛芽切成单株接种在生根培养基中进行生根培养;
7)移栽:当步骤6)的生根组培苗生长至3~5cm,根数5根以上时,移栽基质培养至成苗。
2.根据权利要求1所述的甘蔗脱毒组培快繁的方法,其特征在于:所述的培养基,包括基本培养基和组培各阶段培养基的各组分与每升所含重量为:
(1)基本培养基:用MS基本培养基,白糖30g/L,琼脂7g/L,pH5.8;
(2)愈伤组织诱导培养基:MS+2,4-D 1.5mg/L+NAA 0.15mg/L;
(3)分化培养基:MS+6-BA 2.5mg/L+NAA 0.15mg/L;
(4)增殖培养基:MS+6-BA 0.75mg/L+NAA 0.1mg/L;
(5)生根培养基:1/2MS+NAA 0.25mg/L。
3.根据权利要求1所述的甘蔗脱毒组培快繁的方法,其特征在于:所述的灭菌处理是将外植体先经75%酒精浸泡0.5~1.0min,再用0.1%升汞溶液灭菌10~15min,最后用无菌水冲洗3~5次。
4.根据权利要求1所述的甘蔗脱毒组培快繁的方法,其特征在于:所述的移栽基质由泥炭∶珍珠岩∶蛭石按体积比3∶1∶2配制而成。
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CN (1) | CN101138321B (zh) |
Cited By (15)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101803574A (zh) * | 2010-04-23 | 2010-08-18 | 广州甘蔗糖业研究所 | 果蔗腋芽脱毒组培快繁方法 |
CN101904262A (zh) * | 2010-07-16 | 2010-12-08 | 广西壮族自治区甘蔗研究所 | 甘蔗试管苗的瓶外生根方法 |
CN102090340A (zh) * | 2010-12-22 | 2011-06-15 | 广州甘蔗糖业研究所湛江甘蔗研究中心 | 一种糖蔗茎尖组培脱毒快繁的方法 |
CN102273409A (zh) * | 2011-06-28 | 2011-12-14 | 蔡明� | 一种甘蔗种的组培方法 |
CN101361459B (zh) * | 2008-09-19 | 2012-03-07 | 广州甘蔗糖业研究所 | 去除甘蔗宿根矮化病菌、快速繁殖健康甘蔗种苗的方法 |
CN102668989A (zh) * | 2012-06-13 | 2012-09-19 | 福建农林大学 | 一种甘蔗液体浅层培养方法 |
CN102823493A (zh) * | 2012-08-20 | 2012-12-19 | 云南云蔗科技开发有限公司 | 一种甘蔗远缘杂种胚离体培养育苗的方法 |
CN102907328A (zh) * | 2012-11-14 | 2013-02-06 | 中国热带农业科学院热带生物技术研究所 | 利用微量元素促进甘蔗组培苗生根的方法 |
CN103081808A (zh) * | 2013-02-18 | 2013-05-08 | 广西壮族自治区农业科学院甘蔗研究所 | 一种采用瓶外生根的甘蔗组培快繁生产方法 |
CN103168694A (zh) * | 2013-04-12 | 2013-06-26 | 广西橡胶研究所 | 去除甘蔗宿根矮化病的方法 |
CN103430755A (zh) * | 2013-09-06 | 2013-12-11 | 广西壮族自治区农业科学院甘蔗研究所 | 一种甘蔗健康种子研制的方法 |
CN105309313A (zh) * | 2015-11-16 | 2016-02-10 | 四川省草原科学研究院 | 一种斑茅的快速繁殖方法 |
CN106879468A (zh) * | 2017-03-17 | 2017-06-23 | 广西壮族自治区农业科学院甘蔗研究所 | 一种提高甘蔗茎尖培养成活率的方法 |
CN107517855A (zh) * | 2017-10-19 | 2017-12-29 | 广西大学 | 获得甘蔗健康种苗的方法 |
CN105660099B (zh) * | 2016-01-12 | 2018-05-15 | 广西南亚热带农业科学研究所 | 一种甘蔗实生苗育苗方法 |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1258435A (zh) * | 1999-12-22 | 2000-07-05 | 扬州大学 | 一种莲藕脱毒种苗快速繁殖的方法 |
CN1258436A (zh) * | 1999-12-22 | 2000-07-05 | 扬州大学 | 一种荸荠脱毒种苗快速繁殖的方法 |
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2007
- 2007-08-22 CN CN2007100709573A patent/CN101138321B/zh not_active Expired - Fee Related
Cited By (20)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101361459B (zh) * | 2008-09-19 | 2012-03-07 | 广州甘蔗糖业研究所 | 去除甘蔗宿根矮化病菌、快速繁殖健康甘蔗种苗的方法 |
CN101803574A (zh) * | 2010-04-23 | 2010-08-18 | 广州甘蔗糖业研究所 | 果蔗腋芽脱毒组培快繁方法 |
CN101904262B (zh) * | 2010-07-16 | 2012-02-15 | 广西壮族自治区甘蔗研究所 | 甘蔗试管苗的瓶外生根方法 |
CN101904262A (zh) * | 2010-07-16 | 2010-12-08 | 广西壮族自治区甘蔗研究所 | 甘蔗试管苗的瓶外生根方法 |
CN102090340B (zh) * | 2010-12-22 | 2013-06-05 | 广州甘蔗糖业研究所湛江甘蔗研究中心 | 一种糖蔗茎尖组培脱毒快繁的方法 |
CN102090340A (zh) * | 2010-12-22 | 2011-06-15 | 广州甘蔗糖业研究所湛江甘蔗研究中心 | 一种糖蔗茎尖组培脱毒快繁的方法 |
CN102273409A (zh) * | 2011-06-28 | 2011-12-14 | 蔡明� | 一种甘蔗种的组培方法 |
CN102668989A (zh) * | 2012-06-13 | 2012-09-19 | 福建农林大学 | 一种甘蔗液体浅层培养方法 |
CN102823493A (zh) * | 2012-08-20 | 2012-12-19 | 云南云蔗科技开发有限公司 | 一种甘蔗远缘杂种胚离体培养育苗的方法 |
CN102823493B (zh) * | 2012-08-20 | 2013-07-17 | 云南云蔗科技开发有限公司 | 一种甘蔗远缘杂种胚离体培养育苗的方法 |
CN102907328B (zh) * | 2012-11-14 | 2014-08-27 | 中国热带农业科学院热带生物技术研究所 | 利用微量元素促进甘蔗组培苗生根的方法 |
CN102907328A (zh) * | 2012-11-14 | 2013-02-06 | 中国热带农业科学院热带生物技术研究所 | 利用微量元素促进甘蔗组培苗生根的方法 |
CN103081808A (zh) * | 2013-02-18 | 2013-05-08 | 广西壮族自治区农业科学院甘蔗研究所 | 一种采用瓶外生根的甘蔗组培快繁生产方法 |
CN103168694A (zh) * | 2013-04-12 | 2013-06-26 | 广西橡胶研究所 | 去除甘蔗宿根矮化病的方法 |
CN103168694B (zh) * | 2013-04-12 | 2015-09-09 | 广西橡胶研究所 | 去除甘蔗宿根矮化病的方法 |
CN103430755A (zh) * | 2013-09-06 | 2013-12-11 | 广西壮族自治区农业科学院甘蔗研究所 | 一种甘蔗健康种子研制的方法 |
CN105309313A (zh) * | 2015-11-16 | 2016-02-10 | 四川省草原科学研究院 | 一种斑茅的快速繁殖方法 |
CN105660099B (zh) * | 2016-01-12 | 2018-05-15 | 广西南亚热带农业科学研究所 | 一种甘蔗实生苗育苗方法 |
CN106879468A (zh) * | 2017-03-17 | 2017-06-23 | 广西壮族自治区农业科学院甘蔗研究所 | 一种提高甘蔗茎尖培养成活率的方法 |
CN107517855A (zh) * | 2017-10-19 | 2017-12-29 | 广西大学 | 获得甘蔗健康种苗的方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN101138321B (zh) | 2011-03-30 |
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