CN101138321A - 一种甘蔗脱毒组培快繁的方法 - Google Patents

一种甘蔗脱毒组培快繁的方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及一种甘蔗脱毒组培快繁的方法,属植物繁殖技术领域。包括如下步骤:取甘蔗的顶芽或腋芽为外植体,经愈伤组织诱导培养、植株分化培养、增殖培养、生根培养、病毒检测后,大量繁殖脱毒组培苗。本发明的优点是:采用的外植体体积较大,操作容易;接种成活率高;脱毒简便、快捷、彻底;月繁殖系数达5~10倍,速度快,适合工厂化育苗,可商品化生产。

Description

一种甘蔗脱毒组培快繁的方法
技术领域
本发明涉及植物脱毒组培快繁技术领域,尤其涉及一种甘蔗脱毒组培快繁的方法。
背景技术
甘蔗花叶病害在浙江和福建等省广泛发生已有多年,新叶呈现浅黄色斑驳或轻微的褪绿条纹,老叶呈现长条褪绿条纹或花叶,发病率很高,造成糖分和产量下降(约18%左右),种性也衰退,影响品质。
获得无病毒植株的方法有多种,例如热处理脱毒、茎尖培养脱毒和茎尖微嫁接脱毒以及组合方法。其中普遍采用的较好的方法是茎尖培养脱毒法,具体的步骤是:通过植物顶端分生组织切取茎尖(0.2mm以下分生组织),诱导产生幼芽,长成小植株得到脱毒苗。相关的技术已有许多的专利。例如,CN1031637A、CN1238122A、CN1258435A、CN1258436A披露了采用茎尖作为外植体,经茎尖培养后得到脱毒苗的方法。但是这种茎尖分生组织脱毒法存在的问题是:要切取很微小的0.2mm以下茎尖分生组织,需在显微镜下操作,具有一定难度;而且,切取茎尖组织越小,成活率就越低,而切取茎尖组织偏大,又不能完全脱除病毒,同时容易造成污染;因此,生产上迫切需要一种更好的方法来满足甘蔗脱毒组培快繁的需要。
发明内容
本发明目的是针对上述茎尖分生组织脱毒法所存在的操作难度大、成活率低等缺陷,提出一种以切取较大的甘蔗植株茎尖(2~3mm)为外植体,先诱导产生愈伤组织,再分化形成植株的方法,达到大量、快速、操作方便、脱毒彻底地繁殖甘蔗脱毒组培苗的目的。
本发明目的通过以下技术方案来实现:
一种甘蔗脱毒组培快繁的方法,按如下步骤进行:
1)培养基的配制,包括基本培养基和组培各阶段培养基的各组分与每升所含重量为:
(1)基本培养基:用MS培养基,蔗糖或白糖20~30g/L,琼脂7~9g/L,pH5.6~5.8;
(2)愈伤组织诱导培养基:MS中添加2,4-D 1~2mg/L和NAA 0.1~0.2mg/L;
(3)分化培养基:MS中添加6-BA2.0~3.0mg/L和NAA 0.1~0.3mg/L;
(4)增殖培养基:MS中添加6-BA0.5~1.0mg/L和NAA0.1mg/L;
(5)生根培养基:1/2MS中添加NAA0.1~0.5mg/L;
2)外植体的选取与灭菌:取甘蔗的顶芽或腋芽,经灭菌处理,作为脱毒组培用的外植体;
3)愈伤组织诱导培养:将步骤2)灭菌处理后的顶芽或腋芽在无菌条件下,摘取其2~3mm的茎尖组织,接种在愈伤组织诱导培养基上,诱导形成愈伤组织;
4)分化培养:将步骤3)诱导形成的愈伤组织移植至分化培养基分化出丛芽;
5)增殖培养:将步骤4)分化的丛芽切成单株接种在增殖培养基上,再分化出丛芽;
6)生根培养:将步骤5)增殖形成的丛芽切成单株接种在生根培养基中进行生根培养;
7)移栽:当步骤6)的生根组培苗生长至3~5cm,根数5根以上时,移栽基质培养至成苗;
8)病毒检测:利用RT-PCR扩增技术,构建其基因组序列克隆,原核表达制备病毒特异性的抗血清,建立ELISA检测技术进行甘蔗花叶病毒检测。
所述的培养基进一步可改进为,包括基本培养基和组培各阶段培养基的各组分与每升所含重量为:
(1)基本培养基:用MS基本培养基,白糖30g/L,琼脂7g/L,pH5.8;(2)愈伤组织诱导培养基:MS+2,4-D 1.5mg/L+NAA 0.15mg/L;(3)分化培养基:MS+6-BA 2.5mg/L+NAA 0.15mg/L;(4)增殖培养基:MS+6-BA 0.75mg/L+NAA 0.1mg/L;(5)生根培养基:1/2MS+NAA 0.25mg/L。
所述的灭菌处理是将外植体先经75%酒精浸泡0.5~1.0min,再用0.1%升汞溶液灭菌10~15min,最后用无菌水冲洗3~5次。
所述的移栽基质是泥炭∶珍珠岩∶蛭石按体积比3∶1∶2配制而成。本发明的有益效果是:
1)本发明利用甘蔗的顶芽和腋芽为脱毒组培的外植体,由于茎尖培养时摘取其2~3mm长的茎尖组织,体积较大接种操作就较容易;接种成功率高达90%以上,而现有以脱毒为目的仅摘取0.2~0.3mm的茎尖组织,其培养接种成活率一般只有20%~40%;
2)本发明脱毒简便、快捷,容易从2~3mm长的茎尖中诱导形成愈伤组织并分化出再生植株,解决了以往微型茎尖脱毒不彻底的问题;愈伤组织之所以能达到较好的脱毒效果,可能是因为愈伤组织中病毒的复制过程赶不上细胞增殖速度,将该脱毒组培苗经ELISA病毒检测后,带毒率为0(见试验例),可解决病毒引起甘蔗种质退化问题,恢复其产量和品质;
3)本发明以切取较大的甘蔗植株茎尖(2~3mm)为外植体,先诱导产生愈伤组织,再分化形成植株的方法,可快速获得大量脱毒组培苗,月繁殖系数达到5~10倍,适合工厂化育苗,可商品化生产。
具体实施方式
通过以下实施例对本发明作进一步的详细说明,但本发明的内容并不局限于此。
实施例1(甘蔗的顶芽为外植体)
1)外植体的选取与灭菌:于6月~11月,取甘蔗的顶芽,经75%酒精浸泡0.5~1.0min,再用0.1%升汞溶液灭菌10min,最后用无菌水冲洗3~5次,作为脱毒组培用的外植体;
2)基本培养基:用MS基本培养基,白糖20g/L,琼脂9g/L,pH5.6;
3)愈伤组织诱导培养:在无菌条件下从步骤(1)灭菌后外植体中摘取2~3mm的茎尖组织,接种在MS+2,4-D 1mg/L+NAA 0.1mg/L的愈伤组织诱导培养基上,至诱导形成愈伤组织;
4)分化培养:将步骤(3)诱导形成的愈伤组织移植至MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.1mg/L的分化培养基上诱导出丛芽;
5)增殖培养:将步骤(4)分化的丛芽切成单株接种在MS+6-BA0.5mg/L+NAA 0.1mg/L的增殖培养基上,再分化出丛芽;
6)生根培养:将步骤(5)增殖形成的丛芽切成单株接种在1/2MS+NAA0.1mg/L的生根培养基中进行生根培养;
7)移栽:当生根组培苗生长至3~5cm,根数5根以上时,移栽入由泥炭∶珍珠岩∶蛭石按体积比3∶1∶2配制而成的基质中;
8)病毒检测:利用RT-PCR扩增技术,构建其基因组序列克隆,原核表达制备病毒特异性的抗血清,建立ELISA检测技术进行甘蔗花叶病毒和高粱花叶病毒的检测。
实施例2:(以甘蔗的腋芽为外植体1)
1)外植体的选取与灭菌:于11月份,取甘蔗的腋芽,经75%酒精浸泡0.5~1.0min,再用0.1%升汞溶液灭菌15min,最后用无菌水冲洗3~5次,作为脱毒组培用的外植体;
2)基本培养基:用MS基本培养基,白糖25g/L,琼脂8g/L,pH5.7;
3)愈伤组织诱导培养:在无菌条件下从步骤(1)灭菌后外植体中摘取2~3mm的茎尖组织,接种在MS+2,4-D 2mg/L+NAA 0.2mg/L的愈伤组织诱导培养基上,诱导形成愈伤组织;
4)分化培养:将步骤(3)诱导形成的愈伤组织移植至MS+6-BA 3.0mg/L+NAA 0.3mg/L的分化培养基上诱导出丛芽;
5)增殖培养:将步骤(4)分化的丛芽切成单株接种在MS+6-BA1.0mg/L+NAA 0.1mg/L的增殖培养基上,再分化出丛芽;
6)生根培养:将步骤(5)增殖形成的丛芽切成单株接种在1/2MS+NAA0.5mg/L的生根培养基中进行生根培养;
7)移栽:当生根组培苗生长至3~5cm,根数5根以上时,移栽入由泥炭∶珍珠岩∶蛭石按体积比3∶1∶2配制而成的基质中;
8)病毒检测:利用RT-PCR扩增技术,构建其基因组序列克隆,原核表达制备病毒特异性的抗血清,建立ELISA检测技术进行甘蔗花叶病毒和高粱花叶病毒的检测。
实施例3:(以甘蔗的腋芽为外植体2)
1)外植体的选取与灭菌:于11月份,取甘蔗的腋芽,经75%酒精浸泡0.5~1.0min,再用0.1%升汞溶液灭菌10min,最后用无菌水冲洗3~5次,作为脱毒组培用的外植体;
2)基本培养基:用MS基本培养基,白糖30g/L,琼脂7g/L,pH5.8;
3)愈伤组织诱导培养:在无菌条件下从步骤(1)灭菌后外植体中摘取2~3mm的茎尖组织,接种在MS+2,4-D 1.5mg/L+NAA 0.15mg/L的愈伤组织诱导培养基上,诱导形成愈伤组织;
4)分化培养:将步骤(3)诱导形成的愈伤组织移植至MS+6-BA 2.5mg/L+NAA 0.15mg/L的分化培养基上诱导出丛芽;
5)增殖培养:将步骤(4)分化的丛芽切成单株接种在MS+6-BA 0.75mg/L+NAA 0.1mg/L的增殖培养基上,再分化出丛芽;
6)生根培养:将步骤(5)增殖形成的丛芽切成单株接种在1/2MS+NAA 0.25mg/L的生根培养基中进行生根培养;
7)移栽:当步骤(6)生根组培苗生长至3~5cm,根数5根以上时,移栽入由泥炭∶珍珠岩∶蛭石按体积比3∶1∶2配制而成的基质中;
8)病毒检测:利用RT-PCR扩增技术,构建其基因组序列克隆,原核表达制备病毒特异性的抗血清,建立ELISA检测技术进行甘蔗花叶病毒和高粱花叶病毒的检测。
试验例:(病毒检测)
对照材料:从田间采集的甘蔗病叶为材料。
处理材料:以实施例1获得的组培苗为材料。
1)抗血清制备:
a)根据已报道的甘蔗花叶病毒(sugarcan mosaic virus,SCMV)、和高粱花叶病毒(sorghummosaicvirus,SrMV)的检测已发表的序列设计相关病毒外壳蛋白表达引物;
b)扩增相关病毒外壳蛋白基因并构建原核表达质粒,在大肠杆菌中表达;
c)将目的蛋白与2×SDS上样缓冲液按1∶1(v/v)混合,煮沸变性后用12%的SDS聚丙烯凝胶电泳分离,电泳完毕后用0.25M KCl溶液染色;
d)切下的目的蛋白条带用适量1×SDS上样缓冲液匀浆后,再用5-20%梯度的SDS聚丙烯凝胶电泳分离,电泳完毕后用0.25M KCl溶液染色;
e)切下目的蛋白条带免疫小鼠,共免疫4次,前3次间隔7天,第4次免疫3天后断头取血。
2)ELISA检测技术:
a)包被:称取病样和健康对照各0.2g,分别加入包被液(0.05mol/L碳酸盐缓冲液,pH 9.6)各1mL研磨,6000rpm离心后包被96孔板,每孔100uL,4℃,12h;
b)封闭:加封闭液,每孔150uL,37℃孵育1h;
c)加一抗:加入适当稀释的抗血清(ELISA缓冲液稀释),37℃孵育2h;
d)加酶标二抗:加入1/5000的羊抗鼠IgG-碱性磷酸酶(Sigma,ELISA缓冲液稀释),37℃孵育2h;
e)加底物:1mg/mL的p-NPP(Sigma,溶于10%二乙醇胺,pH 9.8),37℃黑暗中孵育,分别在40min、1h和2h测OD405值。
3)检测结果如下表所示:
  处理   检测的结果
  对照   阳性
  脱毒组培苗   阴性

Claims (4)

1.一种甘蔗脱毒组培快繁的方法,其特征在于按以下步骤进行:
1)培养基的配制,包括基本培养基和组培各阶段培养基的各组分与每升所含重量为:
(1)基本培养基:用MS培养基,蔗糖或白糖20~30g/L,琼脂7~9g/L,pH5.6~5.8;
(2)愈伤组织诱导培养基:MS中添加2,4-D 1~2mg/L和NAA 0.1~0.2mg/L;
(3)分化培养基:MS中添加6-BA2.0~3.0mg/L和NAA 0.1~0.3mg/L;
(4)增殖培养基:MS中添加6-BA0.5~1.0mg/L和NAA0.1mg/L;
(5)生根培养基:1/2MS中添加NAA0.1~0.5mg/L;
2)外植体的选取与灭菌:取甘蔗的顶芽或腋芽,经灭菌处理,作为脱毒组培用的外植体;
3)愈伤组织诱导培养:将步骤2)灭菌处理后的顶芽或腋芽在无菌条件下,摘取其2~3mm的茎尖组织,接种在愈伤组织诱导培养基上,诱导形成愈伤组织;
4)分化培养:将步骤3)诱导形成的愈伤组织移植至分化培养基分化出丛芽;
5)增殖培养:将步骤4)分化的丛芽切成单株接种在增殖培养基上,再分化出丛芽;
6)生根培养:将步骤5)增殖形成的丛芽切成单株接种在生根培养基中进行生根培养;
7)移栽:当步骤6)的生根组培苗生长至3~5cm,根数5根以上时,移栽基质培养至成苗。
2.根据权利要求1所述的甘蔗脱毒组培快繁的方法,其特征在于:所述的培养基,包括基本培养基和组培各阶段培养基的各组分与每升所含重量为:
(1)基本培养基:用MS基本培养基,白糖30g/L,琼脂7g/L,pH5.8;
(2)愈伤组织诱导培养基:MS+2,4-D 1.5mg/L+NAA 0.15mg/L;
(3)分化培养基:MS+6-BA 2.5mg/L+NAA 0.15mg/L;
(4)增殖培养基:MS+6-BA 0.75mg/L+NAA 0.1mg/L;
(5)生根培养基:1/2MS+NAA 0.25mg/L。
3.根据权利要求1所述的甘蔗脱毒组培快繁的方法,其特征在于:所述的灭菌处理是将外植体先经75%酒精浸泡0.5~1.0min,再用0.1%升汞溶液灭菌10~15min,最后用无菌水冲洗3~5次。
4.根据权利要求1所述的甘蔗脱毒组培快繁的方法,其特征在于:所述的移栽基质由泥炭∶珍珠岩∶蛭石按体积比3∶1∶2配制而成。
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CN101138321B (zh) 2011-03-30

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