CH694204A5 - Mit dem IGF-1 Rezeptor wechselwirkende Proteine (IIPs), Nukleinsaeuren, die fuer diese codieren, und deren Verwendungen - Google Patents
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft mit dem IGF-1-Rezeptor wechselwirkende Proteine (IGF-1 receptor interacting proteins, IIPs), Nukleinsäuren, die für diese Proteine codieren, deren Verwendung für diagnostische und therapeutische Zwecke, insbesondere bei Krebserkrankungen. Inbesondere betrifft die Erfindung die Diagnose solcher Gene in Säugerzellen, insbesondere in bösartigen Tumorzellen, des Weiteren Therapiemethoden zur Inhibierung der Wechselwirkung zwischen dem IGF-1-Rezeptor und lIPs, Verfahren zum Screenen für potenzielle Krebstherapiemittel, sowie Zelllinien und Tiermodelle, die für das Screening und für die Auswertung potentiell nützlicher pharmazeutischer Mittel, welche die Wechselwirkung zwischen IIPs und dem IGF-1-Rezeptor hemmen, geeignet sind. Die vorliegende Erfindung betrifft insbesondere die Klonierung und Charakterisierung des Gens IIP-10 und dessen Genprodukte. Die Genprodukte (Polypeptide, mRNA) sind insbesondere dadurch gekennzeichnet, dass sie die Fähigkeit besitzen, die Signalübertragung durch den IGF-1-Rezeptor modulieren zu können. Die Funktion dieser erfindungsgemässen Genprodukte ist somit die Modulierung der Signaltransduktion durch den IGF-1-Rezeptor. Eine erzwungene Aktivierung von IIPs korreliert somit mit erhöhter Tumorzellproliferation, Überleben dieser Zellen und dem Nichteintreten der Apoptose. Das IGF-1-Rezeptorsignalsystem spielt bei der Tumorproliferation und dem Überleben von Tumoren eine wichtige Rolle. Möglicherweise ist es auch an der Inhibierung der Tumorapoptose beteiligt. Zusätzlich und unabhängig von ihren mitogenen Eigenschaften kann die IGF-1-R-Aktivierung in vitro und in vivo vor einem programmierten Zelltod schützen oder diesen zumindest verzögern (Harrington et al., EMBO J. 13 (1994) 3286-3295; Sell et al., Cancer Res. 55 (1995) 303-305; Singleton et al., Cancer Res. 56 (1996) 4522-4529). Es wurde ebenfall gezeigt, dass eine Abnahme der IGF-1-R-Konzentration unterhalb der Wildtypkonzentrationen in vivo eine massive Apoptose von Tumorzellen hervorruft (Resnicoff et al., Cancer Res. 55 (1995) 2463-2469; Resnicoff et al., Cancer Res. 55 (1995) 3739-3741). Die Überexpression entweder des Liganden (IGF) und/oder des Rezeptors ist eine Eigenschaft von verschiedenen Tumorzelllinien und kann in Tiermodellen zur Tumorbildung führen. Eine Überexpression von humanem IGF-1R führte zu einem ligandenabhängigen, ankerunabhängigen Wachstum von NIH 3T3 oder Rat-1-Fibroblasten. Wurden nackte (engl. "nude") Mäuse mit diesen Zellen inokuliert, erfolgte eine rasche Tumorbildung (Kaleko et al., Mol. Cell. Biol. 10 (1990) 464-473; Prager et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91 (1994) 2181-2185). Transgene Mäuse, die IGF-II spezifisch in den Milchdrüsen überexprimieren, entwickeln Milchdrüsenadenokarzinome (Bates et al., Br. J. Cancer 72 (1995) 1189-1193), und transgene Mäuse, die IGF-II unter der Kontrolle eines allgemeineren Promotors überexprimieren, entwickeln eine erhöhte Anzahl und ein weites Spektrum von Tumorarten (Rogler et al., J. Biol. Chem. 269 (1994) 13779-13784). Kleinzellenlungenkarzinmoe (Small Cell Lung Carcinomas) sind ein Beispiel unter vielen für IGF-l oder IGF-II mit sehr hoher Frequenz (> 80%) überexprimierende humane Tumore (Quinn et al., J. Biol. Chem. 21 (1996) 11477-11483). Die Signalübertragung durch das IGF-System scheint ebenfalls für die Transformierungsaktivität bestimmter Onkogene erforderlich zu sein. Fötale Fibroblasten mit einem fehlerhaften IGF-1-R-Gen können nicht mit dem SV40-T-Antigen, aktiviertem Ha-ras, einer Kombination von den beiden transformiert werden (Sell et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90 (1993) 11217-11221; Sell et al., Mol. Cell. Biol. 14 (1994) 3604-3612), und auch das E5-Protein des Rinderpapillomavirus ist nicht mehr transformierend (Morrione et al., J. Virol. 69 (1995) 5300-5303). Es wurde gezeigt, dass eine Störung des IGF/IGF-1R-Systems auch den transformierten Phenotyp umkehrt und Tumorwachstum hemmt (Trojan et al., Science 259 (1993) 94-97; Kalebic et al., Cancer Res. 54 (1994) 5531-5534; Prager et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91 (1994) 2181-2185; Resnicoff et al., Cancer Res. 54 (1994), 2218-2222; Resnicoff et al., Cancer Res. 54 (1994) 4848-4850; Resnicoff et al., Cancer Res. 55 (1995) 2463-2469). Beispielsweise entwickeln mit Prostataadenokarzinomzellen aus der Ratte (PA-III) injizierte Mäuse, die mit Antisense cDNA (729 bp) gegen IGF-1 transfiziert worden waren, 90% kleinere Tumoren als Kontrolltiere, oder sie blieben auch nach 60 Tagen Beobachtung tumorfrei (Burfeind et al., Proc. Natl. Acad. Sci. 93 (1996) 7263-7268). Ein IGF-1R-vermittelter Apoptoseschutz ist unabhängig von der de-novo-Genexpression und Proteinsynthese. Somit übt der IGF-1 seine antiapoptotische Funktion wahrscheinlich über die Aktivierung von bereits gebildeten cytosolischen Mediatoren aus. Einige an IGF-1-R-bindende Signalsubstrate wurden bereits beschrieben (z.B. IRS-1, SHC, p85 PI3 Kinase etc., siehe unten). Keiner dieser Signalüberträger ist jedoch spezifisch für den IGF-1R und kann somit nicht ausschliesslich für die einzigartigen biologischen Eigenschaften des IGF-1R im Vergleich mit anderen Rezeptortyrosinkinasen, einschliesslich des Insulinrezeptors, verantwortlich sein. Dies zeigt, dass spezifische Zielsubstanzen des IGF-1R (oder zumindest der IGF-Rezeptorunterfamilie) existieren könnten, welche das Überleben auslösen und der Apoptose entgegenwirken und somit ausgezeichnete pharmazeutische Zielsubstanzen für eine Antikrebstherapie wären. Mithilfe des Hefen-Zweihybridensystems (yeast two-hybrid system) wurde gezeigt, dass p85, die regulatorische Domäne der Phosphatidylinositol-3-Kinase (PI3K) mit dem IGF-1R wechselwirkt (Lamothe, B., et al., FEBS Lett. 373 (1995) 51-55; Tartare-Deckert, S., et al., Endocrinology 137 (1996) 1019-1024). Man beobachtet jedoch auch eine Bindung von p85 an viele andere Rezeptortyrosinkinasen fast aller Familien. Ein weiterer Bindungspartner des IGF-1R, der mithilfe des Zwei-Hybridenscreenings identifiziert wurde, ist SHC. SHC bindet auch andere Tyrosinkinasen, wie etwa trk, met, EGF-R und den Insulinrezeptor (Tartare-Deckert, S., et al., J. Biol. Chem. 270 (1995) 23456-23460). Das Insulinrezeptorsubstrat 1 (IRS-1) und das Insulinrezeptorsubstrat 2 (IRS-2) binden sowohl an den IGF-1R als auch an den Insulinrezeptor (Tartare-Deckert, S., et al., J. Biol. Chem. 270 (1995) 23456-23460; He, W., et al., J. -Biol. Chem. 271 (1996) 11641-11645; Dey, R.B., et al., Mol. Endocrinol. 10 (1996) 631-641). Grb 10, welches mit dem IGF-1R wechselwirkt, besitzt auch viele Tyrosinkinasen als Bindepartner, z.B. met, Insulinrezeptor, kit und abl (Dey, R.B., et al., Mol. Endocrinol. 10 (1996) 631-641; Morrione, A., et al., Cancer Res. 56 (1996) 3165-3167). Auch die Phosphatase PTP1D (syp) zeigt eine starke Promiskuität in ihrer Bindungsfähigkeit, d.h. sie bindet an IGF-1R, den Insulinrezeptor, met und andere (Rocchi, S., et al., Endocrinology 137 (1996) 4944-4952). Kürzlich wurden mSH2-B und vav als Bindepartner des IGF-1R beschrieben, man beobachtet jedoch auch eine Wechselwirkung mit anderen Tyrosinkinasen, z.B. bindet mSH2-B auch an ret und den Insulinrezeptor (Wang, J. und Riedel, H., J. Biol. Chem. 273 (1998) 3136-3139). Insgesamt stellen die bisher beschriebenen IGF-1-R-Bindungsproteine relativ unspezifische Ziele für therapeutische Ansätze dar, oder sie sind, wie z.B. im Fall von Insulinrezeptorsubstraten (IRS-1, IRS-2) für Insulin-gesteuerte Aktivitäten unerlässlich. Eine Aufgabe der vorliegenden Erfindung war es, neue Gene bereitzustellen, welche für Bindungsproteine des IGF-1R codieren, sowie die entsprechenden Polypeptide bereitzustellen, welche die Basis für eine neue Krebstherapie auf der Grundlage der Modulierung (bevorzugt der Inhibition) der Wechselwirkung zwischen IGF-1R und IIPs gemäss der Erfindung bilden. Die Erfindung umfasst bevorzugt eine Nukleinsäure, die für ein Protein (IIP-10) codiert, welches an den IGF-1-Rezeptor bindet, ausgewählt aus der Gruppe umfassend a) die in SEQ ID NO:5 dargestellten Nukleinsäuren oder eine dazu komplementäre Nukleinsäuresequenz, b) Nukleinsäuren, welche unter stringenten Bedingungen mit einer der Nukleinsäuren aus a) hybridisieren, die für ein Polypeptid codieren, welches mindestens 75% Homologie mit dem Polypeptid der SEQ ID NO:6 aufweist, oder c) Sequenzen, welche auf Grund der Degeneration des genetischen Codes für IIP-10-Polypeptide mit der Aminosäuresequenz der von den Sequenzen von a) und b) codierten Polypeptide codieren. Die cDNA von IIP-10 codiert für ein neues Protein mit 226 Aminosäuren mit einem berechneten Molekulargewicht von 25.697. IIP-10 ist ein lysinreiches Protein (11%). IIP-10 enthält eine N-Glykosylierungsstelle, mehrere N-Myristoylierungsstellen, Ck2- und PKC-Phosphorylierungsstellen, eine Tyrosinkinasephosphorylierungsstelle und ein putatives Kernlokalisierungssignal (Fig. 5). Die cDNA-Sequenz von IIP-10 zeigt 65% Homologie mit der cDNA-Sequenz des Gallus Gallus Thymozytenproteins cthy28kD (EMBL Datenbank, Zugriffsnummer GG34350). Die Aminosäuresequenzen von IIP-10 und cthy28kD zeigen 70% Identität. Die Nukleotidpositionen 383 bis 584 der IIP-10-cDNA sind zu 94% identisch mit einer Teil-cDNA, die in WO 95/14772 beschrieben ist (human gene signature HUMGS06271; Zugriffsnummer T24253). Mit einem Immunofluoreszenz-Flag markiertes IIP-10 zeigt sowohl cytoplasmatische Lokalisation als auch Kernlokalisation in NIH3T3-Zellen, welche den IGF-1-Rezeptor überexprimieren. Weitere Hefen-Zweihybriden-Analysen zeigten, dass IIP-10 auf eine phosphorylierungsabhängige Weise mit dem IGF-1-Rezeptor wechselwirkt. IIP-10 bindet nicht an den Insulinrezeptor. Eine Deletionsanalyse von IIP-10 zeigte, dass für eine Bindung an den IGF-1-Rezeptor die Aminosäuren 19 bis 226 ausreichend sind. "Wechselwirkung oder Bindung zwischen IIP-10 und IGF-1-Rezeptor" bedeutet eine spezifische Bindung des IIP-10-Polypeptids an den IGF-1- Rezeptor, jedoch nicht an Kontrollproteine, wie etwa Lamin, im Hefen-Zweihybriden-System. Eine spezifische Bindung an den IGF-1-Rezeptor kann unter Verwendung von Glutathion-S-Transferase(GST)-IIP-Fusionsproteinen, die in Bakterien exprimiert werden, und IGF-1-Rezeptoren, die in Säugerzellen exprimiert werden, gezeigt werden. Des Weiteren kann in Säugerzellsystemen eine Bindung zwischen einem Flag-markierten IIP-10-Fusionsprotein (siehe Weidner, M., et al., Nature 384 (1996) 173-176) und dem IGF-1-Rezeptor überwacht werden. Zu diesem Zweck werden eukaryontische Expressionsvektoren verwendet, um die jeweiligen cDNAs zu transfizieren. Die Wechselwirkung zwischen den Proteinen wird durch Coimmunopräzipitationsexperimente oder Studien zur subzellulären Lokalisation unter Verwendung von Anti-Flag- oder Anti-IGF-1-Rezeptor-Antikörpern sichtbar gemacht. Weiterhin stellt die Erfindung Sonden und Primer für die erfindungsgemässen Gene, sowie Nukleinsäuren, welche für antigene Determinanten der erfindungsgemässen Genprodukte codieren, bereit. Daher umfassen bevorzugte Ausführungsformen Nukleinsäuren mit bevorzugt 10 bis 50 oder stärker bevorzugt 10 bis 20 aufeinander folgenden Nukleotiden einer der offenbarten Sequenzen. Der Ausdruck "Nukleinsäure" bedeutet ein Polynukleotid, welches beispielsweise eine DNA, RNA oder derivatisierte aktive DNA oder RNA sein kann. DNA- und mRNA-Moleküle sind jedoch bevorzugt. Der Ausdruck "unter stringenten Bedingungen hybridisieren" bedeutet, dass zwei Nukleinsäurefragmente in der Lage sind, unter Standard-Hybridisierungsbedingungen, die in Sambrook et al., Molecular Cloning: A laboratory manual (1989) Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, USA beschrieben sind, miteinander zu hybridisieren. Genauer ausgedrückt bedeutet "stringente Bedingungen", wie hierin verwendet, eine Hybridisierung in 5,0 x SSC, 5 x Denhardt, 7% SDS, 0,5 M Phosphatpuffer pH 7,0, 10% Dextransulfat und 100 mu g/ml Lachsspermien-DNA bei ungefähr 50 DEG C bis 68 DEG C, gefolgt von zwei Waschschritten mit 1 x SSC bei 68 DEG C. Zusätzlich kann die Temperatur im Waschschritt von Bedingungen geringer Stringenz bei Raumtemperatur, ungefähr 22 DEG C, auf Bedingungen hoher Stringenz bei ungefähr 68 DEG C erhöht werden. Die Erfindung umfasst weiterhin rekombinante Expressionsvektoren, welche für die Expression von IIP-10 geeignet sind, rekombinante Wirtszellen, die mit derartigen Expressionsvektoren transfiziert sind, sowie ein Verfahren zur rekombinanten Herstellung eines Proteins, welches von dem IIP-10-Gen codiert wird. Die Erfindung umfasst weiterhin synthetische und rekombinante Polypeptide, welche von den erfindungsgemässen Nukleinsäuren codiert werden, und bevorzugt solche, die von der in SEQ ID NO:5 dargestellten DNA-Sequenz codiert werden, sowie Peptidmimetika, die auf diesen Polypeptiden basieren. Solche Peptidmimetika haben eine hohe Affinität für Zellmembranen und werden von den Zellen rasch aufgenommen. Peptidmimetika sind bevorzugt Verbindungen, die von Peptiden und Proteinen abgeleitet sind, und werden durch strukturelle Modifizierung unter Verwendung von nicht natürlichen Aminosäuren, Konformationsbeschränkungen, isosterische Stellung, Zyklisierung usw. erhalten. Sie basieren bevorzugt auf 24 oder weniger, bevorzugt 20 oder weniger Aminosäuren, wobei eine Basislänge von ungefähr 12 Aminosäuren besonders bevorzugt ist. Die Polypeptide und Peptidmimetika können durch ihre entsprechende DNA-Sequenz und durch die davon abgeleitete Aminosäuresequenz definiert werden. Das isolierte IIP-Polypeptid kann in natürlichen allelischen Variationen auftreten, welche von Individuum zu Individuum verschieden sind. Solche Variationen der Aminosäuren sind im Allgemeinen Aminosäuresubstitutionen. Sie können jedoch auch Deletionen, Insertionen oder Additionen von Aminosäuren zu der Gesamtsequenz sein, die zu biologisch aktiven Fragmenten führen. Das erfindungsgemässe IIP-Protein kann je nach Zelle und Zelltyp, in dem es exprimiert wird, sowohl bezüglich des Ausmasses und Typs in glykosylierter oder nicht-glykosylierter Form vorliegen. Polypeptide mit tumorizider und/oder metastatischer Aktivität können leicht durch einen Tumorprogressionsinhibitionsassay unter Verwendung von Karzinomzellen, welche die Polypeptide exprimieren, und durch Messen der Proliferationsfähigkeit und Apoptose in Bezug auf Karzinomzellen, welche die Polypeptide nicht exprimieren, identifiziert werden. "Polypeptid mit IIP-10-Aktivität oder IIP-10" bezeichnet daher Proteine mit kleineren Aminosäurevariationen, jedoch mit im Wesentlichen derselben Aktivität wie IIP-10. Im Wesentlichen dieselbe bedeutet hier, dass die Aktivitäten die gleichen biologischen Eigenschaften aufweisen, und dass die Polypeptide in ihren Aminosäuresequenzen mindestens 75% Homologie (Identität) mit IIP-10 zeigen. Besonders bevorzugt sind die Aminosäuresequenzen mindestens 90% identisch. Homologie im Sinne der Erfindung kann mithilfe von Computerprogrammen, wie etwa Gap oder BestFit (University of Wisconsin; Needleman und Wunsch, J. Biol. Chem. 48 (1970) 443-453; Smith und Waterman, Adv. Appl. Math. 2 (1981) 482-489) bestimmt werden. Weitere erfindungsgemässe IIPs, welche für die Erfindung geeignet sind, sind insbesondere: IIP-1 Es wurde eine cDNA isoliert, die für ein mit dem IGF-1-Rezeptor wechselwirkendes Protein codierte, welches IIP-1 genannt wurde (SEQ ID NO:1). Die cDNA von IIP-1 codiert für ein neues Protein von 333 Aminosäuren Länge mit einem berechneten Molekulargewicht von 35.727. JIP-1 ist glycinreiches Protein (13%). IIP-1 enthält mehrere N-Myristoylierungsstellen, PKC- und Ck2-Phosphorylierungsstellen und zwei putative Kernlokalisationssignale. Eine zweite Isoform, IIP-1 (p26) mit 236 Aminosäuren Länge und mit einem berechneten Molekulargewicht von 26.071 wurde ebenfalls identifiziert. Dieses Produkt wurde wahrscheinlich durch alternatives Spleissen (Fig. 3) erzeugt. Beide Isoformen binden an den IGF-1-Rezeptor. Es wurden bereits cDNA-Sequenzen von IIP-1 veröffentlicht (EMBL-Datenbank-Zugriffsnummern AF089818 und AF061263; DeVries, L. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95 (1998) 12340-12345). Es wurden zwei überlappende cDNA-KIone (Fig. 4) identifiziert, welche mit einer partiellen TIP-2-cDNA (GenBank-Zugriffsnummer AF028824) (Rousset, R., et al., Oncogene 16 (1998) 643-654) starke Homologie zeigten und als IIP-1a und IIP-1b bezeichnet wurden. Die IIP-1a-cDNA entspricht den Nukleotidpositionen 117 bis 751 von TIP-2. Die IIP-1b-cDNA zeigt neben TIP-2-Sequenzen (Nukleotidposition 1 bis 106) zusätzliche 5'-Sequenzen, welche zu der Sequenz Y2H35 in WO 97/27296 (Nukleotide (nt) 25 bis 158) homolog sind. IIP-1a und IIP-1b weisen beide die Sequenz auf, welche für die PDZ-Domäne von TIP-2 codiert (Nukleotide 156 bis 410), welche bekanntlich eine Domäne für eine Protein-Protein-Wechselwirkung ist (Ponting, CD., et al., BioEssays 19 (1997) 469-479). Die PDZ-Domäne wurde mithilfe von Deletionsanalysen als die essentielle und ausreichende IGF-1-Rezeptorbindungsdomäne von IIP-1 identifiziert (Fig. 4). Weitere Hefen-Zweihybriden-Analysen offenbarten, dass die Bindung von IIP-1-Protein an den IGF-1-Rezeptor spezifisch für diese Rezeptortyrosinkinase ist. Man beobachtete keine Wechselwirkung mit dem Insulinrezeptor oder Ros. Rezeptortyrosinkinasen anderer Familien binden nicht an IIP-1 (z.B. Met, Ret, Kit, Fms, Neu, EGF-Rezeptor). Somit ist IIP-1 höchstwahrscheinlich das erste Bindungsprotein, für welches gezeigt wurde, dass es für die IGF-1-Rezeptortyrosinkinase spezifisch ist. IIP-1 bindet ebenfalls an die kinaseinaktive Mutante des IGF-1-Rezeptors. IIP-2 IIP-2 wurde als neues Bindungsprotein für den cytoplasmatischen Teil des IGF-1-Rezeptors identifiziert, welches dem humanen APS entspricht (EMBL-Zugriffsnummer: HSAB520). APS war zuvor in einem Hefen-Zweihybriden-Screen-Experiment isoliert worden, wobei die onkogene c-kit-Kinasedomäne als Köder verwendet wurde (Yokouchi, M., et al., Oncogene 15 (1998) 7-15). IIP-2 bindet an den IGF-1-Rezeptor auf kinaseabhängige Art und Weise. Es wurde ebenfalls eine Bindung von IIP-2 an andere Mitglieder der Insulinrezeptorfamilie beobachtet (Insulinrezeptor, Ros), aber nicht an eine nicht verwandte Rezeptortyrosinkinase (Met). Die Region von IIP-2, von der sich herausstellte, dass sie mit dem IGF-1-Rezeptor wechselwirkt, entspricht dem humanen APS (Nukleotide 1126 bis 1674, EMBL-Zugriffsnummer AB000520) und enthält die SH2-Domäne von APS (Nukleotide 1249 bis 1545). IIP-3 IIP-3 wurde als neues an den IGF-1-Rezeptor bindendes Protein isoliert und ist mit PSM identisch (GenBank-Zugriffsnummer AF020526). PSM ist als Signaltransduktionsprotein bekannt, welches PH- und SH2-Domänen enthält und welches an den aktivierten Insulinrezeptor bindet (Riedel, Hl., et al., Biochem. 122 (1997) 1105-1113). Es wurde ebenfalls eine Variante von PSM beschrieben (Riedel, H., et al., J. Biochem. 122 (1997) 1105-1113). Die Bindung von IIP-3 an den IGF-1-Rezeptor ist abhängig von einer Tyrosylphosphorylierung des Rezeptors. Es wurde ein den Nukleotiden 1862 bis 2184 der Variante von PSM entsprechender cDNA-Klon identifiziert. Es stellte sich heraus, dass der isolierte cDNA-Klon für die IGF-1-Rezeptorbindungsregion codiert. Die Sequenz des isolierten cDNA-Teilklons von IIP-3 codiert für die SH2-Domäne von PSM (Nukleotide 1864 bis 2148, EMBL-Zugriffsnummer AF020526). IIP-4 IIP-4 wurde als neues mit der cytoplasmatischen Domäne des IGF-1-Rezeptors wechselwirkendes Protein isoliert. IIP-4 entspricht p59fyn, einer src-artigen Tyrosinkinase (EMBL-Zugriffsnummer MMU70324 und humanes fyn EM_HUM1:HS66H14) (Cooke, M.P., und Perlmutter, R.M., New Biol. 1 (1989) 66-74). IIP-4 bindet auf kinaseabhängige Weise an den IGF-1-Rezeptor und an mehrere weitere Rezeptortyrosinkinasen, wie auch an den Insulinrezeptor und Met. Die an den IGF-1-Rezeptor (Nukleotide 665-1044) bindende Region von IIP-4 enthält die SH2-Domäne von p59fyn (EMBL-Zugriffsnummer U70324). IIP-5 IIP-5 wurde als neues an den IGF-1-Rezeptor bindendes Protein isoliert. IIP-5 zeigt eine starke Homologie mit dem Zinkfingerprotein Zfp38 (EMBL-Zugriffsnummer MMZFPTA) und ist mindestens 80% homolog zu dem entsprechenden humanen Gen. Zfp-38 ist als Transkriptionsfaktor bekannt (Chowdhury, K., et al., Mech. Dev. 39 (1992) 129-142). IIP-5 bindet ausschliesslich an den aktivierten und phosphorylierten IGF-1-Rezeptor, jedoch nicht an eine kinaseinaktive Mutante. Zusätzlich zur Bindung von IIP-5 an den IGF-1-Rezeptor beobachtete man eine Wechselwirkung von IIP-5 mit Rezeptortyrosinkinasen der Insulinrezeptorfamilie (Insulinrezeptor, Ros). IIP-5 bindet nicht an die entfernter verwandte Rezeptortyrosinkinase Met. Es wurde ein cDNA-Klon isoliert, welcher an den IGF-1-Rezeptor bindet und der für Nukleotide 756 bis 1194 von Zfp38 codiert (EMBL-Zugriffsnummer MMZFPTA) und welcher den ersten Zinkfinger (Nukleotide 1075 bis 1158) enthält. Diese Domäne ist ausreichend für eine Bindung an den aktivierten IGF-1-Rezeptor. IIP-6 IIP-6 wurde als neues an den IGF-1-Rezeptor bindendes Protein identifiziert. IIP-6 zeigt eine schwache Ähnlichkeit mit der Zinkfinger-Domäne von Zfp29 (EMBL-Zugriffsnummer MMZFP29). Zfp29 besteht aus einer N-terminalen Transkriptionsaktivierungs-Domäne und 14 C-terminalen Cys<2>His<2>-Zinkfingern (Denny P., und Ashworth A., Gene 106 (1991) 221-227). Die Bindung von IIP-6 an den IGF-1-Rezeptor hängt von der Phosphorylierung der IGF-1-Rezeptorkinase ab. IIP-6 bindet ebenfalls an den Insulinrezeptor, jedoch nicht an Met. Die Region von IIP-6, welche an den IGF-1-Rezeptor bindet (SEQ ID NO:3, SEQ ID NO:4), enthält zwei Zinkfingerdomänen des Typs Cys<2>His<2>. IIP-7 IIP-7 wurde als neues an den IGF-1-Rezeptor bindendes Protein isoliert, welches Pax-3 entspricht (EMBL-Zugriffsnummer MMPAX3R und humanes Pax3 EM-HUM2:S69369). Pax-3 ist als DNA-bindendes Protein bekannt und wird während der frühen Embryogenese exprimiert (Goulding, M.D., et al., EMBO J. 10 (1991) 1135-1147). IIP-7 bindet auf phosphorylierungsabhängige Weise an den IGF-1-Rezeptor. IIP-7 bindet ebenfalls an den Insulinrezeptor und an Met. Ein Teilklon der IIP-7-cDNA codiert für die IGF-1-Rezeptorbindungsdomäne von Pax3 (Nukleotide 815 bis 1199, EMBL-Zugriffsnummer MMPAX3R). Diese Region enthält das Octapeptid für die gepaarte Domäne von Pax3 (Pax3 paired domain) (Nukleotide 853 bis 876) und die Homöodomäne des gepaarten Typs (paired-type homeo domain) (Nukleotide 952 bis 1134). IIP-8 IIP-8 codiert für die vollständige cDNA von Grb7 (EMBL-Zugriffsnummer MMGRB7P, humanes Grb7 EM-HUM1:AB008789). Grb7, ein eine PH-Domäne und eine SH3-Domäne enthaltendes Signaltransduktionsprotein wurde zuerst als EGF-Rezeptor-bindendes Protein veröffentlicht (Margolis, B.L., et al., Proc. Natl. Acad. Aci. USA 89 (1992) 8894-8898). IIP-8 bindet nicht an die kinaseinaktive Mutante des IGF-1-Rezeptors. Es wurde auch eine Bindung von IIP-8 an mehrere weitere Rezeptortyrosinkinasen (z.B. den Insulinrezeptor, Ros und Met) beobachtet. IIP-9 IIP-9 wurde als neues an den IGF-1-Rezeptor bindendes Protein identifiziert. IIP-9 ist identisch mit nck-beta (EMBL-Zugriffsnummer AF043260). Nck ist ein cytoplasmatisches Signaltransduktionsprotein, welches aus SH2- und SH3-Domänen besteht (Lehmann, J.M., et al., Nucleic Acids Res. 18 (1990) 1048). Die Bindung von IIP-9 an den IGF-1-Rezeptor ist phosphorylierungsabhängig. Nck bindet an die membranangrenzende Region des IGF-1-Rezeptors. Ausser der Bindung von IIP-9 an den IGF-1-Rezeptor beobachtete man eine Bindung an den Insulinrezeptor, aber nicht an Ros oder Met. Eine bevorzugte Ausführungsform der Erfindung sind Polypeptide, welche mit den Polypeptiden der SEQ ID NO:6 (IIP-10) homolog, und stärker bevorzugt im Wesentlichen identisch sind. Die Homologie kann unter Verwendung des von Pearson, W.R., Methods in Enzymology 183 (1990) 63-68, Academic Press, San Diego, US beschriebenen FastA-Algorithmus untersucht werden. "Im Wesentlichen identisch" bedeutet, dass die Aminosäuresequenz sich nur durch konservative Aminosäuresubstitutionen unterscheidet, beispielsweise durch Substitutionen einer Aminosäure für eine andere derselben Klasse (z.B. Valin für Glycin, Arginin für Lysin etc.), oder dass sie sich durch eine oder mehrere nicht-konservative Aminosäuresubstitutionen, Deletionen oder Insertionen unterscheidet, die sich an Positionen der Aminosäuresequenz befinden, welche die biologische Funktion des Polypeptids nicht zerstören. Dies umfasst eine Substitution von alternativen kovalenten Peptidbindungen im Polypeptid. "Polypeptid" bedeutet eine Kette von Aminosäuren, wobei die Länge oder die posttranslationale Modifikation (z.B. Glykosylierung oder Phosphorylierung) nicht ausschlaggebend sind, und kann auch durch den Begriff "Protein" ausgetauscht werden. Erfindungsgemäss bedeutet ein "biologisches aktives Fragment" ein Fragment, welches die physiologische Wirkung des vollständigen natürlich vorkommenden Proteins ausüben kann (beispielsweise die Bindung an sein biologisches Substrat, Verursachen einer Antigenantwort usw.). Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind Fragmente des erfindungsgemässen Polypeptids, welche antigen sind. Der Ausdruck "antigen", wie er hierin verwendet wird, bezeichnet Fragmente des Proteins, welche eine spezifische immunogene Antwort auslösen können, z.B. eine Immunantwort, welche Antikörper hervorruft, die spezifisch an das erfindungsgemässe Protein binden. Die Fragmente sind bevorzugt mindestens 8 Aminosäuren lang, bevorzugt bis zu 25 Aminosäuren. In einer bevorzugten Ausführungsform umfassen die Fragmente die Domäne, welche für die Bindung der IIPs an den IGF-1-Rezeptor verantwortlich ist (d.h. die PDZ-Domäne von IIP-1). "Domäne" bedeutet die Region von Aminosäuren in einem Protein, welche direkt an der Bindung mit seinem Bindepartner beteiligt ist. PDZ-Domänen sind Repeats mit ungefähr 90 Resten und finden sich in einer Anzahl von Proteinen, die möglicherweise in Ionen-, Tunnel- und Rezeptor-Clustering und bei der Bindung von Rezeptoren an Effektorenzyme eine Rolle spielen. Solche PDZ sind allgemein in Cabral, J.H., et al., Nature 382 (1996) 649-652 beschrieben. Die Erfindung umfasst weiterhin ein Verfahren zur Herstellung eines erfindungsgemässen Proteins, dessen Expression oder Aktivierung mit der Tumorproliferation korreliert, wobei eine exogene DNA in prokaryontischen oder eukaryontischen Wirtszellen exprimiert wird und das gewünschte Protein isoliert wird, oder indem die exogene DNA in vivo für pharmazeutische Mittel exprimiert wird, wobei das Protein bevorzugt von einer DNA-Sequenz, die für IIP-10 codiert, codiert wird. Bevorzugt handelt es sich dabei um die in SEQ ID NO:5 dargestellte DNA-Sequenz. Die erfindungsgemässen Polypeptide können auch auf rekombinante Art und Weise oder synthetisch hergestellt werden. Ein nicht-glykosyliertes IIP-10-Polypeptid wird erhalten, wenn es rekombinant in Prokaryonten erzeugt wird. Mithilfe der durch die Erfindung bereitgestellten Nukleinsäuresequenzen ist es möglich, in Genomen jedweder gewünschten Zelle nach dem IIP-10-Gen oder seinen Varianten zu suchen (z.B. ausser in humanen Zellen auch in Zellen anderer Säugetiere), um diese zu identifizieren und das erwünschte für das IIP-10-Protein codierende Gen zu isolieren. Solche Verfahren und geeignete Hybridisierungsbedingungen (siehe oben, "stringente Bedingungen") sind dem Fachmann auf dem Gebiet bekannt und beispielsweise bei Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual (1989) cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, USA, und bei Harnes, B. D., Higgins, S.G., Nucleic acid hybridisation - a practical approach (1985) IRL Press, Oxford, England, beschrieben. In diesem Fall werden im Allgemeinen für die Experimente die in diesen Publikationen beschriebenen Standardprotokolle verwendet. Die Verwendung gentechnologischer Methoden ermöglicht die Herstellung von vielen aktiven IIP-10-Derivaten. Solche Derivate können beispielsweise an einzelnen oder mehreren Aminosäuren modifiziert sein, beispielsweise durch Substitution, Deletion oder Addition. Die Derivatisierung kann beispielsweise mithilfe von ortsspezifischer Mutagenese durchgeführt werden. Solche Variationen können vom Fachmann auf dem Gebiet leicht durchgeführt werden (J. Sambrook, B.D. Harnes, supra). Es muss lediglich mithilfe des unten erwähnten Inhibitionsassays für Tumorzellwachstum sichergestellt werden, dass die charakteristischen Eigenschaften von IIP-10 erhalten bleiben. Mithilfe solcher für ein IIP-10 Protein codierende Nukleinsäuren kann das erfindungsgemässe Protein auf reproduzierbare Art und Weise und in grossen Mengen erhalten werden. Für die Expression in prokaryontischen oder eukaryontischen Organismen, wie etwa prokaryontischen Wirtszellen oder eukaryontischen Wirtszellen, wird die Nukleinsäure in geeignete Expressionsvektoren integriert, wobei der Fachmann auf dem Gebiet mit solchen Methoden vertraut ist. Ein solches Expressionsvektor enthält bevorzugt einen regulierbaren/induzierbaren Promotor. Diese rekombinanten Vektoren werden dann für die Expression in geeignete Wirtszellen eingebracht, beispielsweise E.coli als prokaryontische Wirtszelle oder Saccharomyces cerevisiae, die Teratokarzinomzelllinie PA-1 sc 9117 (Büttner et al., Mol. Cell. Biol. 11 (1991) 3573-3583), Insektenzellen, CHO- oder COS-Zellen als eukaryontische Wirtszellen. Die transformierten oder transduzierten Wirtszellen werden unter Bedingungen kultiviert, welche die Expression des heterologen Gens erlauben. Die Isolierung des Proteins aus der Wirtszelle oder aus dem Kulturüberstand der Wirtszelle kann nach bekannten Verfahren durchgeführt werden. Solche Verfahren sind beispielsweise bei Ausubel I., Frederick M., Current Protocols in Molecular Biology (1992), John Wiley and Sons, New York, beschrieben. Es kann auch eine In-vitro-Reaktivierung des Proteins notwendig sein, wenn es sich in der Zellkultur nicht in löslicher Form befindet. Die Erfindung betrifft daher auch ein IIP-Polypeptid, welches das Produkt einer prokaryontischen oder eukaryontischen Expression einer exogenen DNA ist. Das Protein kann aus den Zellen oder dem Kulturüberstand isoliert werden und mithilfe von chromatografischen Verfahren, bevorzugt durch lonenaustauschchromatografie, Affinitätschromatografie und/oder Reverse-Phase-HPLC aufgereinigt werden. IIP-10 kann nach der rekombinanten Produktion mithilfe von Affinitätschromatografie unter Verwendung von bekannten Protein-Aufreinigungs-Techniken, einschliesslich Immunopräzipitation, Gelfiltration, lonenaustauschchromatografie, Chromatofokussierung, isoelektrischer Fokussierung, selektiver Präzipitation, Elektrophorese oder dgl. erhalten werden. Diagnostische Verfahren: Die Erfindung umfasst weiterhin ein Verfahren für die Detektion eines für ein IIP-Gen codierenden Nukleinsäuremoleküls, umfassend Inkubieren einer Probe (beispielsweise Körperflüssigkeiten, wie etwa Blut, Zellysate) mit einem erfindungsgemässen Nukleinsäuremolekül und Bestimmen der Hybridisierung des Nukleinsäuremoleküls mit einem Zielnukleinsäuremolekül unter stringenten Bedingungen zur Bestimmung des Vorhandenseins eines Nukleinsäuremoleküls, welches das IIP-Gen ist. Somit betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Identifizierung der IGF-1R-Aktivierung oder -Inhibition in Säugerzellen oder Körperflüssigkeiten. Daher umfasst die Erfindung ebenfalls ein Verfahren für die Detektion des Proliferationspotenzials einer Tumorzelle, umfassend a) Inkubieren einer Probe einer Körperflüssigkeit eines Patienten, der unter Krebs leidet, einer Probe von Krebszellen oder einer Probe eines Zellextrakts oder eines Zellkulturüberstands der Krebszellen, worin die Probe Nukleinsäuren enthält, mit einer Nukleinsäuresonde, die ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus (i) die in SEQ ID NO:1, 3 oder 5 dargestellten Nukleinsäuren oder dazu komplementären Nukleinsäuren und (ii) Nukleinsäuren, welche unter stringenten Bedingungen mit einer der Nukleinsäuren aus (i) hybridisieren und b) Detektieren der Hybridisierung mithilfe eines weiteren Bindungspartners der Nukleinsäure der Probe und/oder der Nukleinsäuresonde oder mithilfe von Röntgen-Radiografie. Die Hybridisierung zwischen der Sonde und Nukleinsäuren aus der Probe zeigt das Vorhandensein der RNA solcher Proteine an. Solche Verfahren sind dem Fachmann bekannt und sind beispielsweise in WO 89/06698, EP-A 0 200 362, USP 2 915 082, EP-A 0 063 879, EP-A 0 173 251, EP-A 0 128 018 beschrieben. In einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung wird die codierende Nukleinsäure der Probe vor dem Test amplifiziert, beispielsweise mithilfe der bekannten PCR-Technik. Im Allgemeinen wird im Rahmen der Nukleinsäurediagnostik eine derivatisierte (markierte) Nukleinsäuresonde verwendet. Diese Sonde wird mit einer denaturierten DNA oder RNA aus der Probe, welche an einen Träger gebunden ist, in Kontakt gebracht, und es werden die Temperatur, die lonenstärke, der pH-Wert und andere Puffer-Bedingungen in diesem Verfahren so ausgewählt - je nach der Länge und Zusammensetzung der Nukleinsäuresonde und der resultierenden Schmelztemperatur des erwarteten Hybrids - dass die markierte DNA oder RNA an die homologe DNA oder RNA binden kann (zur Hybridisierung siehe auch Wahl, G.M., et al., Proc. Natl. Acad. Aci. USA 76 (1979) 3683-3687). Geeignete Träger sind Membranen oder Trägermaterialien auf Nitrocellulosebasis (z.B. Schleicher und Schüll, BA 85, Amersham Hybond, C.), verstärkte oder gebundene Nitrocellulose in Pulverform oder Nylonmembranen, die mit verschiedenen funktionellen Gruppen derivatisiert sind (z.B. Nitrogruppen) (z.B Schleicher und Schüll, Nytran; NEN, Gene Screen; Amersham Hybond M.; Pall Biodyne). Die Hybridisierung von DNA oder RNA wird dann durch Inkubieren des Trägers mit einem Antikörper oder einem Antikörperfragment detektiert, nachdem zuvor ausgiebig gewaschen und gesättigt wurde, um unspezifische Bindungen zu vermeiden. Der Antikörper oder das Antikörperfragment ist gegen die Substanz gerichtet, die während der Derivatisierung in die Nukleinsäuresonde eingebracht wurde. Der Antikörper ist ebenfalls wiederum markiert. Es ist jedoch auch möglich, eine direkt markierte DNA zu verwenden. Nach der Inkubation mit den Antikörpern werden wieder Waschschritte vorgenommen, um lediglich spezifisch gebundene Antikörperkonjugate zu detektieren. Die Bestimmung wird dann nach bekannten Verfahren mithilfe der Markierung auf dem Antikörper oder dem Antikörperfragment durchgeführt. Die Detektion der Expression kann beispielsweise wie folgt durchgeführt werden: - in situ-Hybridisierung mit fixierten ganzen Zellen, mit fixierten Gewebeabstrichen und isolierten Metaphasechromosomen, - Koloniehybridisierung (Zellen) und Plaquehybridisierung (Phagen und Viren), - Southern-Hybridisierung (DNA-Detektion), - Northern-Hybridisierung (RNA-Detektion), - Serumanalyse (z.B. Zelltypanalyse von Zellen im Serum durch Slot-Blot-Analyse), - nach der Amplifikation (z.B. PCR-Technik). Die Nukleinsäuresonde wird bevorzugt mit der Nukleinsäure der Probe inkubiert, und die Hybridisierung wird gegebenenfalls mithilfe eines weiteren Bindungspartners für die Nukleinsäure in der Probe und/oder die Nukleinsäuresonde detektiert. Die Nukleinsäuren gemäss der vorliegenden Erfindung sind somit wertvolle prognostische Marker bei der Diagnose des metastatischen und Progressionspotenzials von Tumorzellen eines Patienten. Screening für Antagonisten und Agonisten von IIPs oder Inhibitoren Gemäss der Erfindung können Antagonisten von IIP-10 oder Inhibitoren der Expression von IIP (z.B. Antisense-Nukleinsäuren) verwendet werden, um die Tumorprogression zu hemmen und um massive Apoptose von Tumorzellen in vivo zu verursachen, bevorzugt mithilfe von somatischer Gentherapie. Daher betrifft die vorliegende Erfindung auch Verfahren zum Screenen für potenzielle Therapeutika für Krebs, Diabetes, neurodegenerative Krankheiten, Knochenkrankheiten. Sie betrifft auch Verfahren für die Behandlung von Krankheiten sowie Zelllinien und Tiermodelle, die für das Screenen und die Beurteilung von potentiell nützlichen Therapien solcher Krankheiten geeignet sind. Es war daher eine weitere Aufgabe der Erfindung, Verfahren zur Identifizierung von Verbindungen bereitzustellen, welche bei der Behandlung der erwähnten Krankheiten und verwandten Krankheiten von Nutzen sind. Diese Verfahren umfassen Verfahren zur Modulierung der Expression der erfindungsgemässen Polypeptide, Verfahren zur Identifizierung von Verbindungen, welche selektiv an die erfindungsgemässen Proteine binden können, und Verfahren zur Identifizierung von Verbindungen, welche die Aktivität der Polypeptide modulieren können. Diese Verfahren können in vitro und in vivo durchgeführt werden und können die erfindungsgemässen transformierten Zelllinien und transgenen Tiermodelle zum Einsatz kommen lassen. Ein Antagonist von IIPs oder ein Inhibitor von IIP wird als Substanz oder Verbindung definiert, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und IIP, bevorzugt IIP-10, hemmt. Daher nimmt die biologische Aktivität des IGF-1R in Gegenwart einer solchen Verbindung ab. Im Allgemeinen beinhalten Screeningverfahren für IIP-Antagonisten das In-Kontakt-Bringen von möglichen Substanzen mit IIP-enthaltenden Wirtszellen unter eine Bindung begünstigenden Bedingungen, und Messen des Ausmasses der abnehmenden Rezeptor-vermittelten Signalübertragung (im Fall eines Antagonisten). Ein solcher Antagonist ist als pharmazeutisches Mittel für den Einsatz in der Tumortherapie geeignet. Für die Behandlung von Dia-betes, neuronalen Krankheiten oder Knochenkrankheiten ist eine Stimulierung des Signalübertragungsweges erforderlich, d.h. das Screening für Agonisten ist hier nützlich. Die IIP-Aktivierung kann auf verschiedene Art und Weise gemessen werden. Im Allgemeinen zeigt sich die Aktivierung durch eine Veränderung in der Zellphysiologie, beispielsweise durch eine Zunahme oder Abnahme der Wachstumsrate oder durch eine Veränderung im Differenzierungsstadium oder durch eine Veränderung des Zellmetabolismus, welcher mit Standard-Zell-Assays, z.B. MTT- oder XTT-Assays (Roche Diagnostics GmbH, DE) detektiert werden kann. Die erfindungsgemässen Nukleinsäuren und Proteine könnten daher zur Identifizierung und Entwicklung von Arzneimitteln verwendet werden, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und IIPs stören. Beispielsweise könnte ein Mittel, welches an eines der Proteine bindet, bevorzugt dieses Protein binden, anstatt eine Bindung mit seinem natürlichen Bindepartner zu erlauben. Jedes Mittel, welches an den IGF-1-Rezeptor binden kann und daher die Bindung eines IIPs verhindern kann, oder umgekehrt an ein IIP bindet und dadurch die Bindung an den IGF-1-Rezeptor verhindern kann, wäre denkbar. In beiden Fällen würde eine Signaltransduktion des IGF-1-Rezeptorsystems moduliert (bevorzugt inhibiert). Das Screening für Substanzen mit dieser Fähigkeit geschieht durch Aufstellen eines Kompetitionsassays (Assay ist Standard im Stand der Technik) zwischen der Testverbindung und der Wechselwirkung mit IIP und dem IGF-1-Rezeptor unter Verwendung von aufgereinigtem Protein oder Fragmenten mit denselben Eigenschaften wie die Bindungspartner. Das erfindungsgemässe Protein ist geeignet für die Verwendung in einem Assayverfahren zur Identifizierung von Verbindungen, welche die Aktivität der erfindungsgemässen Proteine modulieren. Die hier beschriebene Modulierung der Aktivität umfasst die Inhibition oder Aktivierung des Proteins und umfasst die direkte oder indirekte Beeinflussung der normalen Regulierung der Proteinaktivität. Verbindungen, welche die Proteinaktivität modulieren, umfassen Agonisten, Antagonisten und Verbindungen, welche einen direkten oder indirekten Einfluss auf die Regulierung der Aktivität des erfindungsgemässen Proteins ausüben. Das erfindungsgemässe Protein kann sowohl aus nativen und rekombinanten Quellen zur Verwendung in einem Assay-Verfahren zur Identifizierung von Modulatoren erhalten werden. Im Allgemeinen enthält ein Assay-Verfahren zur Identifizierung von Modulatoren den IGF-Rezeptor, ein Protein der vorliegenden Erfindung und eine Testverbindung oder eine Probe, welche einen putativen Modulator der besagten Proteinaktivität enthält. Die Testverbindungen oder Proben können direkt auf beispielsweise aufgereinigtem erfindungsgemässem Protein getestet werden, wobei es gleich ist, ob dieses nativ oder rekombinant ist. Weiterhin können sie auf subzellulären Fraktionen von Zellen, welches das Protein, welches wiederum nativ oder rekombinant sein kann, produzieren, und/oder auf ganzen Zellen, die das Protein in nativer oder rekombinanter Form exprimieren, getestet werden. Die Testverbindung oder die Probe kann dem erfindungsgemässen Protein in Gegenwart oder Abwesenheit von bekannten Modulatoren des Proteins zugefügt werden. Die Modulierungsaktivität der Testverbindung oder der Probe kann beispielsweise durch Analyse der Fähigkeit der Testverbindung oder der Probe, an das Protein zu binden, das Protein zu aktivieren, seine Aktivität zu inhibieren, die Bindung von anderen Verbindungen an das Protein zu inhibieren oder zu verstärken, die Rezeptorregulierung zu modifizieren oder die intrazelluläre Aktivität zu modifizieren, bestimmt werden. Die Identifizierung von Modulatoren der Proteinaktivität ist nützlich für die Behandlung von Krankheitszuständen, bei denen die Proteinaktivität eine Rolle spielt. Weitere Verbindungen können zur Stimulierung oder Inhibition der Aktivität des erfindungsgemässen Proteins nützlich sein. Solche Verbindungen könnten für die Behandlung von Krankheiten eingesetzt werden, bei denen die Aktivierung oder Inaktivierung des erfindungsgemässen Proteins zu einer Zellproliferation, Zelltod, Nichtproliferation, Induktion von zellulären neoplastischen Transformationen oder metastatischem Tumorwachstum führt, und könnten somit für die Prävention und/oder Behandlung von Krebskrankheiten, wie etwa z.B. Prostata- und Brustkrebs, verwendet werden. Die Isolierung und Aufreinigung eines für das erfindungsgemässe Protein codierenden DNA-Moleküls wäre geeignet zur Bestimmung der Gewebeverteilung der Proteine sowie für die Entwicklung eines Verfahrens zur Identifizierung von Verbindungen, welche die Aktivität des Proteins und/oder seine Expression modulieren. Eine weitere Ausführungsform der Erfindung ist daher ein Verfahren zum Screenen einer Verbindung, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und IIP-1 oder IIP-10 inhibiert, umfassend a) In-Kontakt-Bringen von IGF-1R und eines IIP-1- oder IIP-10-Polypeptids mit einer Lösung, die eine in Frage kommende Verbindung enthält, sodass der IGF-1R und das IIP-1- oder IIP-10-Polypeptid in der Lage sind, einen Komplex zu bilden, und b) Bestimmen der Menge an Komplexen in Bezug auf das vorbestimmte Ausmass an Bindung in Abwesenheit der in Frage kommenden Verbindung und daraus Bewerten der Fähigkeit der in Frage kommenden Verbindung, die Bindung zwischen dem IGF-1 R und dem IIP-1 oder IIP-10 Polypeptid zu hemmen. Ein solcher Screening-Assay wird bevorzugt als ELISA-Assay durchgeführt, wobei der IGF-1R oder IIP-1 oder IIP-10 an eine feste Phase gebunden sind. Eine weitere Ausführung der vorliegenden Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung eines therapeutischen Mittels zur Behandlung von Karzinomen in einem Patienten, umfassend Kombinieren einer therapeutisch wirksamen Menge einer Verbindung, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und IIP in biochemischen und/oder zellulären Assays mindestens bis zu 50% inhibiert. Biochemische Assays basieren bevorzugt auf ELISA-Assays oder homogenen Assays. Im Falle des ELISA-Systems werden zur Detektion der Komplexe Antikörper verwendet, die spezifisch für die beiden Bindungspartner sind. Im Falle des homogenen Assays wird mindestens ein Bindungspartner mit Fluorophoren markiert, wodurch die Analyse der Komplexe ermöglicht wird. Zelluläre Assays sind bevorzugt Tests, in denen Tumorzellen oder mit den Expressionskonstrukten des IGF-1R und der jeweiligen Bindungsproteine transfiziert wurden, mit oder ohne Substanzen behandelt werden und die Komplexbildung zwischen den beiden Komponenten unter Verwendung von Standard-Zellassays analysiert wird. Eine bevorzugte Ausführungsform der Erfindung ist ein Verfahren zur Herstellung eines therapeutischen Mittels zur Behandlung von Karzinomen in einem Patienten, umfassend In-Kontakt-Bringen eines pharmazeutisch annehmbaren Trägers mit einer therapeutisch wirksamen Menge einer Verbindung, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und IIP-1 oder IIP-10 in einem zellulären Assay inhibiert, wobei in dem zellulären Assay Tumorzellen oder mit Expressionskonstrukten des IGF-1R und der jeweiligen IIPs transfizierte Zellen mit der Verbindung behandelt werden und die Komplexbildung zwischen IGF-1R und dem jeweiligen IIP analysiert wird, und das Ausmass der Komplexbildung im Fall einer Inhibition 50% nicht übersteigt, wobei man für die Komplexbildung ohne die Verbindung im selben zellulären Assay 100% annimmt. Eine weitere Ausführungsform der Erfindung ist ein Verfahren zur Behandlung eines Patienten, der unter einem Karzinom leidet, mit einer therapeutisch wirksamen Menge einer Verbindung, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und IIP-1 oder IIP-10 in einem zellulären Assay inhibiert, wobei in dem zellulären Assay Tumorzellen oder mit Expressionskonstrukten des IGF-1R und des jeweiligen IIPs transfizierte Zellen mit der Verbindung behandelt werden und eine Komplexbildung zwischen 1GF-1R und dem jeweiligen IIP analysiert wird und das Ausmass der Komplexbildung im Fall einer Inhibition 50% nicht übersteigt, bezogen auf 100% für die Komplexbildung ohne die Verbindung im selben zellulären Assay. Eine weitere Ausführungsform der Erfindung ist ein Antikörper gegen erfindungsgemässes IIP-1 oder IIP-10. Antikörper wurden aus humanen, Mäuse- oder Rattenpolypeptiden erzeugt. Durch die Erfindung mit umfasst sind Antikörper, welche IIP-1 oder IIP-10 spezifisch erkennen. Solche Antikörper werden unter Verwendung von standardmässigen immunologischen Techniken hergestellt. Die Antikörper können polyklonal oder monoklonal sein und können auch rekombinant hergestellt werden, wie z.B. für einen humanisierten Antikörper. Ein Antikörperfragment, welches die Fähigkeit zur Wechselwirkung mit IIP-1 oder IIP-10 beibehält, wird ebenfalls durch die vorliegende Erfindung bereitgestellt. Ein solches Fragment kann durch die proteolytische Spaltung eines vollständigen Antikörpers oder auf gentechnologische Weise hergestellt werden. Erfindungsgemässe Antikörper sind geeignet für diagnostische und therapeutische Anwendungen. Sie werden zur Detektion und Quantifizierung von IIP-1 oder IIP-10 in biologischen Proben, insbesondere in Gewebeproben und Körperflüssigkeiten verwendet. Sie werden ebenfalls zur Modulierung der Aktivität von IIP-1 oder IIP-10 eingesetzt, indem sie entweder als Agonist oder Antagonist fungieren. Die folgenden Beispiele, Verweise, Sequenzprotokolle und Zeichnungen sollen dem Verständnis der vorliegenden Erfindung dienen, deren Schutzumfang durch die zugehörigen Ansprüche dargestellt ist. Es versteht sich von selbst, dass in den hier beschriebenen Verfahren Modifizierungen vorgenommen werden können, ohne vom Schutzumfang der Erfindung abzuweichen. Beschreibung der Figuren und Sequenzen Fig. 1 Domänenstruktur von Hefen-Zweihybriden-Ködern, die für das Screening von cDNA-Bibliotheken verwendet wurden, um cytoplasmatische Bindungsproteine des IGF-1-Rezeptors zu finden. Die -LexA-DNA-Bindungsdomäne wurde mit der cytoplasmatischen (cp) Domäne (Nukleotide 2923 bis 4154) des Wildtyp-IGF-1-Rezeptors (a) oder der kinaseinaktiven Mutante (K/A-Mutation an Aminosäureposition 1003) (b) (Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512; Weidner, M., et al., Nature 384 (1996) 173-176) fusioniert. Die Nukleotid- und Aminosäuresequenz von zwei verschiedenen zwischen die LexA-DNA-Bindungsdomäne und die Rezeptordomäne inserierten Linkern ist unten gezeigt. Die I1-(Wildtyp-IGF-1-Rezeptor) und K1- (kinaseinaktive Mutante des IGF-1-Rezeptors) Konstrukte enthalten ein zusätzliches Prolin und Glycin im Vergleich zu den I2- und K2-Konstrukten. Fig. 2 Modifizierung des Hefen-Zweihybriden-LexA/IGF-1-Rezeptor-Köderkonstrukts. a) Schmeatische Darstellung der cytoplasmatischen Bindungsstellen des IGF-1-Rezeptors. Die alpha -Untereinheiten des IGF-1-Rezeptors sind über Disulfidbindungen mit den beta -Ketten verbunden. Der cytoplasmatische Teil der beta -Kette enthält Bindungsstellen für Substrate in der membranangrenzenden Region und der C-terminalen Domäne. b) Domänenstruktur des Zweihybriden-Köders, die lediglich die membranangrenzenden IGF-1-Rezeptorbindungsstellen enthält. Die membranangrenzende Domäne des IGF-1-Rezeptors (Nukleotide 2923 bis 3051) (Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512) wurde mit der Kinasedomäne von tprmet (Nukleotide 3456 bis 4229) (GenBank-Zugriffsnummer HSU19348) fusioniert. c) Die Domänenstruktur des Zweihybriden-Köders, der lediglich die C-terminalen IGF-1-Rezeptorbindungsstellen enthält. Die C-terminale Domäne des IGF-1-Rezeptors (Nukleotide 3823 bis 4149) (Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512) wurde mit der Kinasedomäne von tprmet (Nukleotide 3456 bis 4229) (GenBank-Zugriffsnummer HSU 19348) fusioniert. Fig. 3 Isoformen von IIP-1. a) Darstellung der cDNA-Sequenzen von IIP-1 und IIP-1 (p26). Die Nukleotide sind oben nummeriert. Die potenzielle Translationsstartstelle innerhalb der IIP-1-cDNA befindet sich an Position 63. Das erste ATG als potenzielle Translationsstartstelle in der alternativen Spleissvariante IIP-1 (p26) befindet sich an Position 353. Beide cDNAs enthalten ein Stopcodon an Position 1062. b) Domänenstruktur von IIP-1 und IIP-1 (p26). Die Aminosäurepositionen sind oben angezeigt. Im Vergleich zu IIP-1 (p26) enthält IIP-1 zusätzliche 97 Aminosäuren am N-Terminus. Beide Isoformen von IIP-1 enthalten eine PDZ-Domäne, welche sich in der Region zwischen Aminosäuren 129 und 213 befindet. Fig. 4 Darstellung der IGF-1-Rezeptorbindungsdomäne von IIP-1. Es wurden vollständiges IIP-1, seine cDNA-Teilklone (IIP-1a und IIP-1b) sowie Deletionsmutanten (IIP-1a/mu1, IIP-1a/mu2, IIP-1a/mu3, IIP-1 b/mu1) auf eine Wechselwirkung mit dem IGF-1-Rezeptor im Hefen-Zweihybridensystem untersucht. Hefezellen wurden mit einem LexA-IGF-1-Rezeptor-Fusionskonstrukt und einem Aktivierungsplasmid, welches für mit der VP16-Aktivierungs-Domäne fusioniertes IIP-1 oder verschiedene IIP-1-Mutanten codiert, kotransfiziert. Die Bindung zwischen IIP-1 oder seinen Mutanten und dem IGF-1-Rezeptor wurde durch Überwachung des Wachstums von Hefetransfektanten analysiert, die auf Histidin-defizientes Medium plattiert worden und für 6 Tage bei 30 DEG C inkubiert worden waren (Durchmesser der Hefekolonien: + + +, > 1 mm in 2 Tagen, + +, > 1 mm in 4 Tagen; +, > 1 mm in 6 Tagen; -, kein Wachstum detektiert). Die PDZ-Domäne kann als essentiell und ausreichend für das Zu-Stande-Kommen einer Bindung an den IGF-1-Rezeptor definiert werden. Die Nukleotidpositionen bezüglich des vollständigen IIP-1 sind oben angezeigt. Fig. 5 Proteinsequenzmotive von IIP-10. Die Aminosäuresequenz von IIP-10 wurde unter Verwendung des Computerprogramms "Motifs" analysiert, welches nach Proteinmotiven sucht, indem es nach im PROSITE Dictionary beschriebenen Proteinsequenzen für reguläre Expressionsmuster sucht. <tb><TABLE> Columns = 2 <tb><SEP> SEQ ID NO:1<SEP> Nukleotidsequenz von IIP-1 (cDNA). <tb><SEP> SEQ ID NO:2<SEP> Erwartete Aminosäuresequenz von IIP-1. <tb><SEP> SEQ ID NO:3<SEP> Nukleotidsequenz des partiellen cDNA-Klons von IIP-6. <tb><SEP> SEQ ID NO:4<SEP> Abgeleitete Aminosäuresequenz des partiellen cDNA-Klons von IIP-6. Cystein- und Histidinreste der zwei Cys 2 His 2 -Zinkfingerdomänen sind die Aminosäuren 72, 75, 88, 92, 100, 103, 116 und 120. <tb><SEP> SEQ ID NO:5<SEP> Nukleotidsequenz von IIP-10 (cDNA). <tb><SEP> SEQ ID NO:6<SEP> Abgeleitete Aminosäuresequenz von IIP-10. <tb><SEP> SEQ ID NO:7<SEP> Primer TIP2c-s. <tb><SEP> SEQ ID NO:8<SEP> Primer TIP2b-r. <tb><SEP> SEQ ID NO:9<SEP> Primer Hcthy-s. <tb><SEP> SEQ ID NO:10<SEP> Primer Hcthy-r. <tb></TABLE> Beispiel 1 Isolierung und Charakterisierung von IGF-1R-Bindeproteinen Es wurde das Hefen-Zweihybridensystem (Fields, S., und Song, O., Nature 340 (1989) 245-246) verwendet, um unbekannte cytosolische IGF-1-Rezeptorbindeproteine zu isolieren. Für das Screening wurde eine modifizierte Version des Hefen-Zweihybridensystems verwendet, welche in der Hefe eine Tyrosylphosphorylierung der Rezeptoren zwischen den Ketten (interchain tyrosyl phosphorylation) erlaubt. Das Hefen-Zweihybriden-Köderplasmid (BTM116-cplGF-1-Rezeptor) wurde durch Fusion der cytoplasmatischen Domäne der beta -Untereinheit des IGF-1-Rezeptors (Nukleotide 2923 bis 4154) (Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512) mit der LexA-DNA-Bindedomäne fusioniert, welche Dimere bildet und die Situation des aktivierten Wildtyprezeptors nachahmt (siehe Weidner, M., et al., Nature 384 (1996) 173-176). Durch Einführung eines Prolin-Glycin-Spacers zwischen die LexA-DNA-Bindedomäne und die Rezeptordomäne wurde die Fähigkeit des Köders, bekannte Substrate des IGF-1-Rezeptors zu binden, bemerkenswert erhöht im Vergleich mit anderen Spaceraminosäuren (Fig. 1). Alternativ hierzu wurde ein Köder konstruiert, der nur die membranangrenzende oder C-terminale Region des IGF-1-Rezeptors enthält (Nukleotide 2923 bis 3051 oder Nukleotide 3823 bis 4146) (Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512) fusioniert mit der Kinasedomäne einer nicht verwandten, sehr potenziellen Rezeptortyrosinkinase. Es wurde hier die Kinasedomäne von tpr met (Nukleotide 3456 bis 4229) (GenBank-Zugriffsnummer HSU19348) (Fig. 2) verwendet. Somit war es möglich, die Region des IGF-1-Rezeptors, welche die Bindung an Downstream-Effektoren steuert, darzustellen. Das IGF-1-Rezeptorköderplasmid wurde verwendet, um cDNA-Bibliotheken auf Aktivierungsdomänen zu screenen (z.B. Aktivierungsdomänen auf VP16- oder Gal4-Basis) (siehe Weidner, M., et al., Nature 384 (1996) 173-176). Die Köder- und Beuteplasmide wurden in den Saccaromyces cerevisiae-Stamm L40 cotransfiziert, welcher ein His3- und lacZ-Reportergen enthält. Bibliothekenplasmide wurden aus in Histidin-defizientem Medium wachsenden Hefekolonien isoliert, sequenziert und wieder in den Hefestamm 1140 eingebracht. Mithilfe von Cotransfektionsexperimenten mit verschiedenen Testködern, d.h. BTM116-Plasmiden, die für eine kinaseinaktive Mutante des IGF-1-Rezeptors (L1033A) oder für die cytoplasmatische Domäne von Rezeptortyrosinkinasen der Insulinrezeptorfamilie (Insulinrezeptor, Ros) und für nicht verwandte Rezeptortyrosinkinasenfamilien (Met, EGF-Rezeptor, Kit, Fms, Neu) codieren, wurde die Spezifität der putativen Wechselwirkungen zwischen Köder und Beute ausgewertet. Es wurden mehrere cDNAs identifiziert, welche für zuvor unbekannte an den IGF-1-Rezeptor-bindende Proteine (IIPs) codieren. Zusätzlich wurden Bindungsdomänen von bekannten Substraten des IGF-1-Rezeptors gefunden, wie etwa die C-terminale SH2-Domäne von p85PI3K und die SH2-Domäne von Grb10. Die Ergebnisse sind in Tabelle 1 gezeigt. Tabelle 1 <tb><TABLE> Columns = 6 <tb>Head Col 1: IIP <tb>Head Col 2: wt IGF-1R <tb>Head Col 3: mu IGF-1R <tb>Head Col 4: IR <tb>Head Col 5: Ros <tb>Head Col 6: Met <tb><SEP> IIP-1<SEP> +<SEP> +<SEP> -<SEP> -<SEP> - <tb><SEP> IIP-2<SEP> +<SEP> -<SEP> +<SEP> +<SEP> - <tb><SEP> IIP-3<SEP> +<SEP> -<SEP> +<SEP> +<SEP> + <tb><SEP> IIP-4<SEP> +<SEP> -<SEP> +<SEP> nd<SEP> + <tb><SEP> IIP-5<SEP> +<SEP> -<SEP> +<SEP> +<SEP> - <tb><SEP> IIP-6<SEP> +<SEP> -<SEP> +<SEP> nd<SEP> - <tb><SEP> IIP-7<SEP> +<SEP> -<SEP> +<SEP> nd<SEP> + <tb><SEP> IIP-8<SEP> +<SEP> -<SEP> +<SEP> +<SEP> + <tb><SEP> IIP-9<SEP> +<SEP> -<SEP> +<SEP> -<SEP> - <tb><SEP> IIP-10<SEP> +<SEP> -<SEP> -<SEP> nd<SEP> nd <tb></TABLE> Darstellung der Bindungsspezifizität der IIPs bezüglich verschiedener Rezeptortyrosinkinasen, die im Hefen-Zweihybridensystem getestet wurden. Hefezellen wurden mit einem LexA-Fusionskonstrukt, welches für verschiedene Rezeptortyrosinkinasen codiert, und einem Aktivierungsplasmid, welches für verschiedene IIPs codiert, die mit der VP16-Aktivierungsdomäne fusioniert sind, cotransfiziert. Die Wechselwirkung zwischen den IIPs und den verschiedenen Rezeptortyrosinkinasen wurde durch Überwachung des Wachstums von Hefetransfektanten analysiert, die auf Histidin-defizientem Medium plattiert wurden und für 3 Tage bei 30 DEG C inkubiert wurden (wt IGF-1R: kinaseaktiver IGF-1-Rezeptor, mu IGF-1R: kinaseinaktive Mutante des IGF-1-Rezeptors, IR: Insulinrezeptor, Ros: Ros-Rezeptortyrosinkinase, Met: Met-Rezeptortyrosinkinase; +, Wachstum von Hefetransfektanten innerhalb von 3 Tagen auf > 1 mm Durchmesser; -, kein Wachstum nachgewiesen, nd, nicht bestimmt). Beispiel 2 Assaysysteme: A) In vitro/biochemische Assays: Assay auf ELISA-Basis/homogener Assay IGF-1R und die Bindungsproteine (IIPs) werden mit oder ohne Tag-Enzyme in E.coli oder eukaryontischen Zellen exprimiert und bis zur Homogenität aufgereinigt. Die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und den jeweiligen Bindungsproteinen wird in Gegenwart oder Abwesenheit von Substanzen analysiert. Verbindungen, welche die Bindung zwischen IGF-1R und den jeweiligen Bindungsproteinen entweder inhibieren oder fördern, werden ausgewählt. Im Fall des ELISA-Systems werden Antikörper, die spezifisch für die zwei Bindepartner sind, zur Detektion der Komplexe ausgewählt. Im Fall des homogenen Assays wird mindestens ein Bindepartner mit Fluorophoren markiert, was die Analyse der Komplexe erlaubt. Alternativ hierzu werden Anti-Tag-Antikörper zur Überwachung der Wechselwirkung verwendet. B) Zelluläre Assays: Tumorzellen oder Zellen, die mit Expressionskonstrukten des IGF-1R und den jeweiligen Bindungsproteinen transfiziert wurden, werden mit oder ohne Substanzen behandelt, und anschliessend wird die Komplexbildung zwischen den beiden Komponenten unter Verwendung von Standardassays analysiert. Beispiel 3 cDNA-Klonierung von IIP-1 und IIP-10 (und RT-PCR-Assay) Unter Verwendung von Datenbankeninformation (ESTs) wurde die Nukleotidsequenz des vollständigen IIP-1 mit Sequenzen der partiellen cDNA-Klone von IIP-1 (IIP-1a, IIP-1b) einem Alignment unterzogen. cDNA-Klonierung von vollständigem IIP-1 wurde mithilfe von RT-PCR auf der Grundlage von Gesamt-RNA durchgeführt, die aus einer MCF7 ADR -Brustzelllinie isoliert worden war. RT-PCR mit zwei Oligonukleotidprimern: TIP2c-s (SEQ ID NO:7) und TIP2b-r (SEQ ID NO:8) führte zur Amplifikation von zwei DNA-Fragmenten von 1 kb Länge (IIP-1) und 0,7 kb Länge (IIP-1 [p26]). Die Nukleotidsequenz des vollständigen IIP-10 wurde unter Verwendung von Datenbankeninformationen (ESTs) mit der Sequenz cDNA-Teilklon von IIP-10 einem Alignment unterzogen. cDNA-Klonierung von IIP-10 wurde auf der Basis von Gesamt-RNA durchgeführt, die aus der Darmkrebszelllinie SW480 isoliert wurde. RT PCR mit zwei Oligonukleotidprimern Hcthy-s (SEQ ID NO:9) und Hcthy-r (SEQ ID NO: 10) führte zur Amplifikation eines cDNA-Fragments von 676 Basenpaaren Länge (IIP-10). DNA-Sequenzierung wurde unter Verwendung der Dideoxynukleotid-Kettenterminationsmethode auf einem ABI-373A-Sequenzierer durchgeführt unter Verwendung des Ampli-Taq< <TM> >-FS-Dideoxyterminatorkits (Perkin Elmer, Foster City, CA). Ein Vergleich zwischen der cDNA und den abgeleiteten Proteinsequenzen wurde unter Verwendung von Advanced Blast Search (Altschul, S.F., et al., J. Mol. Biol. 215 (1990) 403-410; Altschul, S.F., et al., Nucleic Acids Res. 25 (1997) 3389-3402) durchgeführt. Beispiel 4 Western Blot-Analyse von IIP-1 und IIP-10 Gesamtzellysate wurden in einem Puffer, enthaltend 50 mM Tris pH 8,0, 150 mM NaCI, 1% NP40, 0,5% Deoxycholsäure, 0,1% SDS und 1 mM EDTA pH 8.0 hergestellt und durch Zentrifugieren bei 4 DEG C für 15 Minuten geklärt. Die Proteinkonzentration der Überstände wurde mit dem Mikro-BCA-Proteinassaykit (Pierce Chemcial Co., Rockford, IL) nach dem Herstellerhandbuch gemessen. IGF-1-Rezeptoren wurden unter Verwendung von Anti-IGF-1-Rezeptorantikörpern immunopräzipitiert (Santa Cruz). Die Proteine wurden durch SDS-PAGE fraktioniert und elektrophoretisch auf Nitrocellulosefilter übertragen. Die Nitrocellulosefilter wurden mit 10% (Gewicht/Volumen) fettfreiem Milchpulver in 20 mM Tris pH 7,5, 150 mM NaCI, 0,2% Tween-20 vorinkubiert. Die Bindung eines monoklonalen Antikörpers aus der Maus, welcher gegen das Flag-Epitop gerichtet ist, wurde mit einem Ziegen-Antimaus-lgG-Antiserum, welches Meerrettich-Peroxidase-markiert war, detektiert (Biorad, München, DE) und mit einem verstärkten Chemolumineszenzdetektionssystem ECL <TM> (Amersham, Braunschweig, DE) visualisiert. Beispiel 5 Überexpression in IIP-1 bis IIP-10 in Säugerzellen durch Liposom-vermittelte Transfektion Die cDNAs für IIP-1 bis IIP-10 wurden in die Notl-Stelle von pBATflag oder pcDNA3flag kloniert (Weidner, M., et al., Nature 384 (1996) 173-176; Behrens, J., et al., Nature 382 (1996) 638-642; Behrens, J., et al., Science 280 (1998) 596-599). NIH3T3-Zellen oder andere Empfängerzellen wurden mit pcDNAflagllP-1 bis pcDNAflagllP-10 oder alternativ mit pBATflagllP-1 bis pBATIfagllP-10 unter Verwendung von FuGENE6 (Roche Biochemicals) als Transfektionsmittel transfiziert. Die Zellen wurden in 0,4 mg/ml G418 selektiert. Einzelne Klone wurden gepickt und auf die Expression von IIP-1 bis IIP-10 analysiert und bezüglich ihrer Proliferation funktionell charakterisiert. Northern Blot Analyse Northern Blots für Multigewebe-mRNA des Menschen und der Maus wurden von Klontech erhalten (Palo Alto, CA, US). Eine cDNA-Sonde, welche die Nukleotide 343 bis 676 der codierenden Region für IIP-10 umfasst, wurde unter Verwendung des PCR-DIG-Labeling Mix (Roche Diagnostics GmbH, DE) mit DIG-dUTP markiert. Eine Digoxygenin-markierte Aktin-RNA-Sonde wurde von Roche Diagnostics GmbH, DE, erhalten. Die Hybridisierung wurde unter Verwendung der DIG EasyHyb Hybridisierungslösung (Roche Diagnostics GmbH, DE) durchgeführt. IIG-10-mRNA wurde mithilfe von mit alkalischer Phosphatase konjugierten DIG-spezifischen Antikörpern und dem CSPD-Substrat (Roche Diagnostics GmbH, DE) detektiert. Beispiel 6 Detektion von mRNA in Krebszellen Um zu detektieren, ob Proteine, die von Nukleinsäuren codiert werden, welche mit SEQ ID NO:1 oder mit SEQ ID NO:5 oder den Komplementärsequenzen davon hybridisieren, in Krebszellen exprimiert werden, und somit um nachzuweisen, ob mRNA vorhanden ist, ist es auf der einen Seite möglich, etablierte Verfahren der Nukleinsäurehybridisierung anzuwenden, wie etwa Northern-Hybridisierung, in situ-Hybridisierung, Dot- oder Slot-Hybridisierung und davon abgeleitete diagnostische Techniken (Sambrook et al., Molecular Cloning: A laboratory manual (1989) Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, USA; Hames, B. D., Higgins, S.G., Nucleic acid hybridisation - a practical approach (1985) IRL Press, Oxford, England; WO 89/06698; EP-A 0 200 362; EP-A 0 063 879; EP-A 0 173 251; EP-A 0 128 018). Auf der anderen Seite ist es auch möglich, Verfahren aus dem grossen Repertoire von Amplifikationstechniken anzuwenden, die spezifische Primer verwenden (PCR Protocols - A Guide to Methods and Applications (1990), publ. M.A. Innis, D.H. Gelfand, J.J. Sninsky, T.J. White, Academic Press Inc.; PCR - A Practical Approach (1991), publ. M. J. McPherson, P. Quirke, G. R. Taylor, IRL Press). Die RNA für diese Verfahren wird nach der Methode von Chomcszynski und Sacchi, Anal. Biochem. 162 (1987) 156-159 aus Krebsgewebe isoliert. 20 mu g Gesamt-RNA wurde auf einem 1,2%igen Agarose-Formaldehydgel aufgetrennt und auf Nylonmembranen übertragen (Amersham, Braunschweig, DE). Dies geschah nach Standardverfahren (Sambrook et al., Molecular Cloning: A laboratory manual (1989) Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, USA). Die DNA-Sequenzen SEQ ID NO:1 oder SEQ ID NO:5 wurden als Sonden radioaktiv markiert (Feinberg, A.P. und Vogelstein, B. Anal. Biochem. 137 (1984) 266-267). Die Hybridisierung wurde bei 68 DEG C in 5 x SSC, 5 x Denhardt, 7% SDS/0,5 M Phosphatpuffer pH 7,0, 10% Dextransulfat und 100 mu g/ml Lachsspermien-DNA durchgeführt. Anschliessend wurden die Membranen zweimal jeweils für eine Stunde in 1 x SSC bei 68 DEG C gewaschen und dann auf Röntgenfilm gelegt. Beispiel 7 Verfahren zur Identifizierung von Modulatoren der Aktivität des erfindungsgemässen Proteins Der Expressionsvektor von Beispiel 5 (entweder für IIP-1 oder IIP-10, 10 mu g/10<6> Zellen) wird unter Verwendung von bekannten Standardverfahren in NIH 3T3-Zellen eingebracht (Sambrook et al.). Zellen, welche den Vektor aufgenommen haben, werden durch ihre Fähigkeit, in Gegenwart der Selektion oder unter selektiven Bedingungen (0,4 mg/ml G418) zu wachsen, identifiziert. Zellen, welche die für IIP codierende DNA exprimieren, stellen RNA her, welche wie in Beispiel 5 beschrieben durch Northern Blot-Analyse detektiert wird. Alternativ hierzu werden das Protein exprimierende Zellen durch die Identifizierung des Proteins durch Western Blot-Analyse unter Verwendung der in Beispiel 4 beschriebenen Antikörper identifiziert. Zellen, die das Protein von dem Expressionsvektor exprimieren, zeigen eine veränderte Morphologie und/oder verstärkte Wachstumseigenschaften. Zellen, welche das Protein exprimieren und eine oder mehrere der oben beschriebenen veränderten Eigenschaften aufweisen, werden mit und ohne eine putative Modulatorverbindung kultiviert. Durch Screening von chemischen und natürlichen Bibliotheken können solche Verbindungen identifiziert werden, indem High-Throughput-Zell-Assays, die Zellwachstum überwachen, verwendet werden (z.B. Zellproliferationsassays, die als chromogene Substrate die Tetrazoliumsalze WST-1, MTT oder XTT verwenden, oder ein ELISA-Detektionssystem zur Detektion von Zelltod unter Verwendung von Bromdesoxyuridin (BrdU), siehe Boehringer Mannheim GmbH, Apoptosis and Cell Proliferation, 2. Auflage, 1998, S. 70-84). Die Modulatorverbindung verursacht eine Zunahme oder eine Abnahme der Zellantwort auf die IIP-Proteinaktivität und wird entweder ein Aktivator oder ein Inhibitor der IGF-Funktion sein. Alternativ hierzu werden putative Modulatoren zu Tumorzellkulturen hinzugegeben, und die Zellen zeigen eine veränderte Morphologie und/oder reduzierte oder verstärkte Wachstumseigenschaften. Es wird eine putative Modulatorverbindung mit und ohne IIP-Protein zu den Zellen hinzugegeben, und eine Zellantwort wird durch direkte Beobachtung der morphologischen Charakteristika der Zellen gemessen, und/oder die Zellen werden auf ihre Wachstumseigenschaften hin überwacht. Die Modulatorverbindung wird eine Zunahme oder eine Abnahme in der Zellantwort auf das IIP-Protein verursachen und wird entweder ein Aktivator oder Inhibitor der IGF-1-Rezeptoraktivität sein. Literatur Altschul, S.F., et al., J. Mol. Biol. 215 (1990) 403-410 Altschul, S.F., et al., Nucleic Acids Res. 25 (1997) 3389-3402 Ausubel 1., Frederick M., Current Protocols in Mol. Biol. (1992), John Wiley and Sons, New York Bates et al., Br. J. Cancer 72 (1995) 1189-1193 Behrens, J., et al., Nature 382 (1996) 638-642 Behrens, J., et al., Science 280 (1998) 596-599 Boehringer Mannheim GmbH, Apoptosis and Cell Proliferation, 2nd edition, 1998, pp.70-84 Burfeind et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93 (1996) 7263-7268 Büttner et al., Mol. Cell. Biol. 11 (1991) 3573-3583 Cabral, J.H., et al., Nature 382 (1996) 649-652 Chomcszynski and Sacchi, Anal. Biochem. 162 (1987) 156-159 Chowdhury, K., et al., Mech. Dev. 39 (1992) 129-142 Cooke, M.P., and Perlmutter, R.M., New Biol. 1 (1989) 66-74 Database EMBL Nos. AF089818 and AF061263 Denny, P., and Ashworth, A., Gene 106 (1991) 221-227 DeVries, L, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95 (1998) 12340-12345 Dey, R.B., et al., Mol. Endocrinol. 10 (1996) 631-641 EP-A 0 063 879 EP-A 0 128 018 EP-A 0 173 251 EP-A 0 200 362 Feinberg, A.P., and Vogelstein, B., Anal. Biochem. 137 (1984) 266-267 Fields, S., and Song, O., Nature 340 (1989) 245-246 Goulding, M.D., et al., EMBO j. 10 (1991) 1135-1147 Hames, B.D., Higgins, S.G., Nucleic acid hybridisation - a practical approach (1985) IRL Press, Oxford, England Harrington et al., EMBO j. 13 (1994) 3286-3295 He, W., et al., J. Biol. Chem. 271 (1996) 11641-11645 Kalebic et al., Cancer Res. 5'4 (1994) 5531-5534 Kaleko et al., Mol. Cell. Biol. 10 (1990) 464-473 Lamothe, B., et al., FEBS Lett. 373 (1995) 51-55 Lehmann, J.M., et al., Nucleic Acids Res. 18 (1990) 1048) Margolis, B.L., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89 (1992) 8894-8898 Morrione et al., J. Virol. 69 (1995) 5300-5303 Morrione, A., et al., Cancer Res. 56 (1996) 3165-3167 Needleman and Wunsch, J. Biol. Chem. 48 (1970) 443-453 PCR-A Practical Approach (1991), publ. M.j. McPherson, P. Quirke, G.R. Taylor, IRL Press Pearson, W.R., Methods in Enzymology 183 (1990) 63-68, Academic Press, San Diego, US Ponting, C.P., et al., BioEssays 19 (1997) 469-479 Prager et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91 (1994) 2181-2185 PRC Protocols - A Guide to Methods and Applications (1990), publ. M.A. Innis, D.H. Gelfand, J.J. Sninsky, T.J. White, Academic Press Inc. Quinn et al., J. Biol. Chem. 271 (1996) 11477-11483 Resnicoff et al., Cancer Res. 54 (1994) 2218-2222 Resnicoff et al., Cancer Res. 54 (1994) 4848-4850 Resnicoff et al., Cancer Res. 55 (1995) 2463-2469 Resnicoff et al., Cancer Res. 55 (1995) 3739-3741 Riedel, H., et al., J. Biochem. 122 (1997) 1105-1113 Rocchi, S., et al., Endocrinology 137 (1996) 4944-4952 Rogler et al., J. Biol. Chem. 269 (1994) 13779-13784 Rousset, R., et al., Oncogene 16 (1998) 643-654 Sambrook et al., Molecular Cloning: A laboratory manual (1989) Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, USA Sell et al., Cancer Res. 55 (1995) 303-305 Sell et al., Mol. Cell. Biol. 14 (1994) 3604-3612 Sell et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90 (1993) 11217-11221 Singleton et al., Cancer Res. 56 (1996) 4522-4529 Smith and Waterman, Adv. Appl. Math. 2 (1981) 482-489 Tartare-Deckert, S., et al., Endocrinology 137 (1996) 1019-1024 Tartare-Deckert, S., et al., J. Biol. Chem. 270 (1995) 23456-23460 Trojan et al., Science 259 (1993) 94-97 Ullrich, A., et al., EMBO j. 5 (1986) 2503-2512 USP 291 5082 Wahl, G.M., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 76 (1979) 3683-3687 Wang, J., and Riedel, H., J. Biol. Chem. 273 (1998) 3136-3139 Weidner, M., et al., Nature 384 (1996) 173-176 WO 97/27296 WO 89/06698 WO 95/14772 Yokouchi, M., et al., Oncogene 15 (1998) 7-15
Claims (13)
1. Nukleinsäuresequenzen, dadurch gekennzeichnet, dass sie für ein an den IGF-1-Rezeptor bindendes Protein codieren, ausgewählt aus der Gruppe umfassend: (a) die in SEQ ID NO:5 dargestellte Nukleinsäuresequenz oder Komplementärsequenz dazu, (b) Nukleinsäuresequenz, welche unter stringenten Bedingungen mit einer der Nukleinsäuren aus (a), die für ein Polypeptid mit Homologie zu der in SEQ ID NO:6 dargestellten Polypeptidsequenz codieren, hybridisieren, (c) Nukleinsäuresequenzen, welche auf Grund der Degeneration des genetischen Codes für Polypeptide codieren, welche die Aminosäuresequenz der von einer der Nukleinsäuresequenzen aus (a) und/oder (b) codierten Polypeptide aufweisen.
2. Nukleinsäuresequenzen nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass sie eine Sequenz gemäss SEQ ID NO:5 aufweisen.
3.
Nukleinsäuresequenzen nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Hybridisierung in 5,0 x SSC, 5 x Denhardt, 7% SDS, 0,5 M Phosphatpuffer pH 7,0, 10% Dextransulfat und 100 g/ml Lachsspermien-DNA bei ungefähr 50 DEG C bis 68 DEG C, gefolgt von zwei Waschschritten mit 1 x SSC bei 68 DEG C durchgeführt wird.
4. Rekombinanter Expressionsvektor, dadurch gekennzeichnet, dass er für die Expression einer der Nukleinsäuresequenzen nach einem der Ansprüche 1 bis 3 geeignet ist.
5. Wirtszelle, dadurch gekennzeichnet, dass sie mit einer der Nukleinsäuresequenzen nach einem der Ansprüche 1 bis 3, oder einem rekombinanten Expressionsvektor nach Anspruch 4 transformiert ist.
6.
Rekombinantes Polypeptid, dadurch gekennzeichnet, dass es von einer der Nukleinsäuresequenzen nach einem der Ansprüche 1-3, codiert ist und an den IGF-1-Rezeptor bindet.
7. Verfahren zur Herstellung eines Proteins, welches an den IGF-1-Rezeptor bindet, umfassend: Exprimieren einer exogenen DNA in prokaryontischen oder eukaryontischen Wirtszellen und Isolieren des gewünschten Proteins, dadurch gekennzeichnet, dass das Protein codiert ist von der in SEQ ID NO:5 dargestellten DNA-Sequenz oder einer Nukleinsäuresequenz, welche unter stringenten Bedingungen mit einer zu der in SEQ ID NO:5 dargestellten Nukleinsäuresequenz komplementären Nukleinsäuresequenz hybridisiert.
8.
Verfahren zur Detektion des Proliferationspotenzials einer Krebszelle, umfassend: (a) Inkubieren einer Probe, ausgewählt aus einer Körperflüssigkeit eines an Krebs leidenden Patienten, Tumorzellen, Zellextrakten und/oder Zellkulturüberständen von Tumorzellen, wobei die Probe Nukleinsäuresequenzen enthält, mit einer Nukleinsäuresequenzsonde, die ausgewählt wird aus der Gruppe, bestehend aus: (i) der in SEQ ID NO:5 dargestellten Nukleinsäuresequenz, die für den IGF-1-Rezeptor bindendes Protein codiert, oder dazu komplementären Nukleinsäuresequenzen, (ii) Nukleinsäuresequenzen, welche mit einer der Nukleinsäuresequenzen aus (i) hybridisieren, und (b) Detektieren der Hybridisierung mithilfe eines weiteren Bindepartners der Nukleinsäuresequenz der Probe und/oder der Nukleinsäuresequenzsonde.
9.
Verfahren nach Anspruch 8, worin eine Hybridisierung mit mindestens einem Nukleinsäure-sequenzfragment der in SEQ ID NO:5 dargestellten Nukleinsäuresequenz oder einem Komplementärsequenzfragment davon bewirkt wird.
10. Verfahren nach Anspruch 8 oder 9, worin die zu detektierende Nukleinsäuresequenz vor der Detektion amplifiziert wird.
11.
Verfahren zum Screenen einer Verbindung, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und einem der Polypeptide IIP-1 bis IIP-10 hemmt, umfassend: (a) In-Kontakt-Bringen von IGF-1R und dem IIP-Polypeptid nach Anspruch 6 mit einer eine in Frage kommende Verbindung enthaltenden Lösung, sodass der IGF-1R und das IIP-Polypeptid in der Lage sind, einen Komplex zu bilden, und (b) Bestimmen der Menge an Komplex im Vergleich zu dem vorbestimmten Ausmass an Bindung in Abwesenheit der Verbindung und daraus Bewerten der Fähigkeit der Verbindung, die Bindung des IGF-1R an das IIP-Polypeptid zu hemmen.
12.
Verfahren zur Herstellung eines Arzneimittels für die Behandlung von Karzinomen in einem Patienten, umfassend: Mischen eines pharmazeutisch annehmbaren Trägers mit einer therapeutisch wirksamen Menge einer Verbindung, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und dem Polypeptid nach Anspruch 6 in einem Zell-Assay moduliert, wobei in dem Zell-Assay Tumorzellen oder mit Expressionskonstrukten von IGF-1R und IIP transformierte Zellen mit der Verbindung behandelt werden und eine Komplexbildung zwischen IGF-1R und dem jeweiligen IIP analysiert wird und das Ausmass an Komplexbildung im Fall einer Inhibition 50%, bezogen auf 100% Komplexbildung ohne die Verbindung im selben Zell-Assay, nicht übersteigt.
13. Verfahren nach Anspruch 12, worin die Verbindung die Wechselwirkung inhibiert.
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