BRPI0906752B1 - Promotor aprimorado e método para a produção de l-lisina usando o mesmo - Google Patents

Promotor aprimorado e método para a produção de l-lisina usando o mesmo Download PDF

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Jong Soo Choi
Sang Jo Lim
Hyung Joo Kim
Ju Ok Moon
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Abstract

promotor aprimorado e método para a produção de lisina usando o mesmo. a presente invenção refere-se a: uma molécula de ácido nucleico derivada da corynebacterium glutamicum com atividade promotora aprimorada e operavelmente ligada a um óperon que codifica a aspartato quinase e a aspartato semialdeído dehidrogenase; um vetor contendo a molécula de ácido nucléico; um transformante transformado com o vetor; e um método para produzir l-lisina usando o transformante.

Description

Campo Técnico
A presente invenção refere-se a um promotor aprimorado e a um método para produzir L-lisina usando o mesmo. Mais especificamente, a presente invenção refere-se a: uma molécula de ácido nucleico derivada da Corynebacterium glutamicum apresentando atividade promotora aprimorada e operavelmente ligada a um óperon que codifica a aspartato quinase e a aspartato semialdeído dehidrogenase; um vetor contendo a molécula de ácido nucléico; um transformante com o vetor introduzido nele; e um método para produzir L-lisina usando o transformante.
Estado da Técnica
Bactérias corineformes são tradicionalmente microorganismos industriais usados em sua maioria para a produção de uma série de materiais químicos úteis nos setores de rações para animais, medicina e alimentos, incluindo aminoácidos, tal como a L-treonina, a L-arginina e o ácido glumático, e materiais relacionados a ácidos nucleicos. Esses microorganismos são gram-positivos e precisam da biotina para seu crescimento. Eles se dividem por fissão e sua baixa capacidade de degradar os metabólicos que produzem pode ser usada de forma vantajosa. Exemplos representativos de bactérias corineformes incluem o gênero Corynebacterium, tal como a Corynebacterium glutamicum, o gênero Brevibacterium, tal como a Brevibacterium flavum, a spp. Athrobacter, a spp. Microbacterium etc.
O L-lisina é um L-aminoácido importante do ponto de vista comercial que é usado como aditivo alimentício na nutrição animal graças à sua capacidade de ajudar o corpo a absorver outros aminoácidos, melhorando assim a qualidade dos alimentos. Para o corpo, a L-lisina é usada como um dos ingredientes de uma solução de injeção, além de ter aplicações no campo farmacêutico. Sendo assim, a produção industrial de L- lisina é um processo industrial importante do ponto de vista econômico.
O rendimento da produção de lisina está relacionado à atividade enzimática na via de biossíntese, o que pode ser tipicamente aprimorado ampliando-se um ou mais genes na via da biossíntese de lisina ou usando-se um promotor modificado para os genes. As linhagens de Corynebacterium com genes associados à biossíntese da lisina aprimorados e a produção de L-lisina usando-as são bem conhecidas. Por exemplo, a patente dos Estados Unidos n° 6.746.855 revela um processo para a produção de L-lisina fermentando-se corynebacteria produtoras de L-lisina com um gene LysE aprimorado (gene portador- exportador de lisina) em que genes adicionalmente escolhidos dentre o grupo composto por gene dapA, gene lysC, gene pyc e gene dapB são aprimorados. A patente dos Estados Unidos rr 6.221.636 revela corynebacteria transformadas com um DNA recombinante compreendendo uma sequência de nucleotídeos que codifica uma aspartato quinase em que a retroinibição pela L- lisina e pela L-treonina é substancialmente dessensibilizada e uma sequência de nucleotídeos que codifica uma diaminopimelato decarboxilase.
Para o desenvolvimento de bactérias corineformes em variantes capazes de produzir produtos-alvo a títulos elevados, necessita-se de uma técnica de engenharia genética ou metabólica pela qual os genes envolvidos no metabolismo possam ser controlados seletivamente. Para tanto, é importante modificar a atividade de um promotor, uma região reguladora do DNA que oferece um sítio de ligação inicial seguro para a RNA polimerase controlar a transcrição de genes regulados.
No entanto, até então, não se há notícia de bactérias corineformes aprimoradas quanto à atividade do óperon lysC-asd, que tem papel fundamental na via da biossíntese de lisina, com um promotor aprimorado.
Revelação Problema Técnico
Voltando-se à presente invenção, pesquisas intensivas e meticulosas sobre a produção de L-lisina resultaram na descoberta de que, quando transformado com um promotor do óperon lysC-asd modificado em bases particulares no genoma da corynebacterium, um microorganismo do gênero corynebacterium apresenta atividades de aspartato quinase e aspartato semialdeído dehidrogenase aprimoradas em relação à atividade de endógenos.
Solução Técnica
Um dos objetivos da presente invenção é o de propor uma molécula de ácido nucleico derivada da Corynebacterium glutamicum que apresente atividade promotora aprimorada.
Outro objetivo da presente invenção é o de propor um vetor contendo a molécula de ácido nucleico que apresenta atividade promotora aprimorada.
Ainda outro objetivo da presente invenção é o de propor um transformante com o vetor ligado a ele.
Ainda outro objetivo adicional da presente invenção é o de propor um método para produzir L-lisina fermentando-se o transformante.
Efeitos Vantajosos
Quando operavelmente ligada a um gene LysC- asd, a molécula de ácido nucleico derivada da Corynebacterium C. glutamicum, que apresenta atividade promotora aprimorada, de acordo com a presente invenção apresenta maior atividade promotora do que o promotor do tipo selvagem e, portanto, pode aumentar os níveis de aspartato quinase e aspartato semialdeído dehidrogenase. Sendo assim, a linhagem produtora de lisina transformada com a molécula de ácido nucleico pode produzir lisina a taxas mais elevadas.
Descrição dos Desenhos
A Fig. 1 é um diagrama ilustrando um mapa genético do vetor pDZ para a integração no genoma de uma corynebacterium.
A Fig. 2 é um diagrama ilustrando um mapa genético do vetor pDZ-LysCPl para o promotor.
Melhor Modo
De acordo com um de seus aspectos, a presente invenção refere-se a uma molécula de ácido nucleico derivada da Corynebacterium glutamicum com a sequência de nucleotídeos de Nθ ID SEQ 2, que é operavelmente ligada ao óperon que codifica a aspartato quinase e a aspartato semialdeído dehidrogenase e apresenta uma atividade promotora aprimorada.
O termo “promotor”, conforme usado no presente documento, refere-se a uma região do DNA que contém um sítio de ligação inicial para a RNA polimerase e facilita a transcrição de um gene específico a jusante dele. Ou seja, um promotor é uma sequência de nucleotídeos não-traduzida a montante de uma região de codificação a que a RNA polimerase se liga para iniciar a transcrição de um gene e se localiza tipicamente perto dos genes que regula na mesma fita e a montante (rumo à região 5’ da fita em sentido).
A molécula de ácido nucleico da presente invenção, derivada da Corynebacterium glutamicum e com atividade promotora, é operavelmente ligada ao óperon que codifica a aspartato quinase e a aspartato semialdeído dehidrogenase. Os genes lysC e asd, que codificam respectivamente a aspartato quinase e a aspartato semialdeído dehidrogenase, desempenham um papel importante na via da biossíntese de lisina na spp. Corynebacterium.
Em bactérias corineformes, um gene lysC é composto por dois genes sobrepostos, a saber, lysC alfa e lysC beta, que são adjacentes ao terceiro quadro de leitura aberto (ORF3) responsável pelo asd, que é conhecido por ser expresso como parte do óperon de lysC com o códon de iniciação do asd começando na posição 24 bp a jusante do final do ORF lysC. O termo “óperon”, conforme usado no presente documento, refere- se a um aglomerado funcional de genes adjacentes sob controle de um sinal regulador único composto por um operador, um promotor e um gene estrutural. Na presente invenção, os genes lysC e asd pertencem ao óperon lysC-asd e estão sob controle do mesmo promotor.
O termo “operavelmente ligado”, conforme usado no presente documento, destina-se a designar uma ligação entre a sequência de nucleotídeos com uma atividade promotora de acordo com a presente invenção e a sequência promotora em uma relação funcional tal que o promotor possa servir para iniciar e mediar a transcrição de genes que codificam, respectivamente, a aspartato quinase e a aspartato semialdeído dehidrogenase. Em outras palavras, quando ligado operavelmente a um gene do óperon lysC-asd, a sequência de nucleotídeos com atividade promotora de acordo com a presente invenção pode controlar a atividade de transcrição do gene do óperon.
A sequência de nucleotideos com uma atividade promotora de acordo com a presente invenção, derivada de um promotor de tipo selvagem do óperon lysC-asd de Corynebacterium glutamicum, é modificada para garantir uma atividade enzimática superior à atividade endógena. Por atividade endógena queremos dizer uma atividade enzimática nas bactérias corineformes do tipo selvagem. E possível chegar a modificações para garantir a maior atividade promotora usando técnicas conhecidas na técnica, de preferência induzindo uma mutação na sequência de nucleotideos do promotor do óperon lysC-asd por deleção, inserção, substituição não-conservadora ou conservadora ou uma combinação destas.
A molécula de ácido nucleico com uma atividade promotora de acordo com a presente invenção pode ser isolada ou preparada usando-se uma técnica biológica padrão. Por exemplo, é possível realizar a reação em cadeia de polimerase (PCR) para o isolamento na presença de oligonucleotídeo iniciadores adequados. Como alternativa, é possível sinterizá-la com técnicas biológicas padrão usando um sinterizador de DNA automatizado. Em uma concretização, na base de uma sequência de nucleotideos (N2 ID SEQ 1) contendo uma região promotora de um gene lysC-asd (gene NCBI ID: NCglO247) obtida a partir dos dados do NIH GenBank, sinterizam-se quatro oligonucleotídeo iniciadores (N~ ID SEQ 3 ~ 6). Na presença de oligonucleotídeos iniciadores, realizamos uma PCR para obter uma molécula de ácido nucleico com promotor que sofreu modificações em posições de base específicas (N° ID SEQ 2) com o DNA genômico do Corynebacterium glutamicum KFCC10881 servindo como modelo.
De preferência, a molécula de ácido nucleico com atividade promotora da Corynebacterium glutamicum de acordo com a presente invenção é útil como um promotor para a expressão gênica em procariontes, em especial em bactérias E. coli ou corineformes. Conforme usado no presente documento, o termo “bactérias corineformes” refere-se aos microorganismos que pertencem aos gêneros Corynebacterium ou Brevibacterium. Exemplos de bactérias corineformes úteis na presente invenção incluem, entre outras, Corynebacterium glutamicum ATCC13032, Corynebacterium thermoaminogenes FERM BP-1539, Brevibacterium flavum ATCC 14067, Brevibacterium lactofermentum ATCC 13869 e mutantes produtores de L- aminoácidos ou linhagens derivadas deles, tais como Corynebacterium glutamicum KFCC10881 e Corynebacterium glutamicum KFCC 11001, com preferência pela Corynebacterium glutamicum KFCC 10881.
De acordo com outro de seus aspectos, a presente invenção refere-se a um vetor onde se encontra a molécula de ácido nucleico com atividade promotora aprimorada.
Conforme usado no presente documento, o termo “vetor” refere-se a uma construção de DNA em que um gene de interesse é operavelmente ligado a um elemento regulador para que o gene possa ser expresso em um hospedeiro adequado que liga o vetor a ele. O elemento regulador inclui um promotor para iniciar a transcrição, um operador para controlar a transcrição, um código de sequência para um sítio de ligação de mRNA ribossomo e uma sequência para controlar o término da transcrição e tradução.
Contanto que seja ele replicável em hospedeiros, é possível usar qualquer vetor conhecido na técnica na presente invenção sem restrições em específico. Por exemplo, o vetor usado na presente invenção pode ser um plasmídeo, uma partícula de fago ou simplesmente um inserto genômico potencial, mas a presente invenção não se limita a eles. Um vetor preferível é o pACYC177 (New England Biolab, número de acesso GenBank X06402). Após ser transformado em um hospedeiro adequado, o vetor pode ser replicado ou realizar sua função independente do genoma hospedeiro ou ser integrado ao genoma em si.
Mais especificamente, quando o vetor de acordo com a presente invenção é inserido em uma célula hospedeira, a molécula de ácido nucleico com atividade promotora dentro do vetor pode passar por recombinação homóloga com uma região promotora para um promotor endógeno do óperon lysC-asd no genoma hospedeiro, resultando na integração do vetor no cromossomo da célula hospedeira. Portanto, o vetor de acordo com a presente invenção pode compreender ainda um marcador de seleção para indicar a inserção dele no cromossomo hospedeiro. Adaptado para indicar uma célula transformada com o vetor, ou seja, se um gene de interesse foi inserido no genoma da célula hospedeira, o marcador de seleção pode manter a célula com a capacidade de apresentar resistência a fármacos, resistência a agentes citotóxicos, auxotrofía ou expressão de fenótipo selecionável, tal como a expressão de uma proteína de superfície. Na presença de um agente seletivo, as células transformadas podem ser selecionadas, pois somente células que expressam o processamento do marcador de seleção sobrevivem ou demonstram outro fenótipo. De preferência, o vetor pode compreender um gene lacZ como marcador de seleção.
Em uma concretização da presente invenção, constrói-se um vetor para conter um promotor ddh modificado aprimorado quanto à atividade que pode ser substituído pelo promotor ddh endógeno da Corynebacterium glutamicum por recombinação homóloga. Para tanto, em primeiro lugar, o vetor pACYC177 para a clonagem de E. coli é digerido com enzimas de restrição e tem suas extremidades cegadas com fragmento Klenow. Separadamente, uma sequência de nucleotideos que contém um gene lacZ e seu promotor é amplificada a partir do DNA genômico da E. coli K12W3110 por PCR. Esses dois fragmentos de DNA assim obtidos são ligados uma ao outro para gerar uma molécula de ácido nucleico circular, seguido pela inserção de uma sequência adaptadora que contém vários sítios enzimáticos de restrição nela na molécula de ácido nucleico circular para preparar o vetor pDZ para a inserção no cromossomo da Corynebacterium (FIG. 1). Em seguida, insere-se um promotor de gene ddh modificado em bases específicas para apresentar atividade elevada na sequência adaptadora do vetor pDZ para obter o vetor pDZ-lysCPl compreendendo a sequência de nucleotídeos de N2 ID SEQ 2 (FIG. 2).
De acordo com outro de seus aspectos, a presente invenção refere-se a um transformante com o vetor ligado a ele.
O termo “transformação”, conforme usado na presente invenção, refere-se à introdução de um material de DNA exógeno em uma célula hospedeira em que o material de DNA exógeno é replicável como um elemento separado do genoma hospedeiro ou incorporado a ele. Como resultado da transformação do vetor dentro de uma célula hospedeira, o transformante liga-se ao vetor na forma de um plasmídeo ou como se incorpora ao cromossomo da célula hospedeira após a sequência de nucleotídeos com atividade promotora passar por recombinação homóloga com um promotor endógeno do óperon lysC-asd no genoma da célula hospedeira.
Contanto que seja usada para introduzir o vetor da presente invenção em uma célula hospedeira, a presente invenção admite o uso de qualquer técnica. Dependendo da célula hospedeira, é possível escolher uma técnica padrão, por exemplo, dentre eletroporação, precipitação de fosfato de cálcio (CaPO4), precipitação de cloreto de cálcio (CaCl2), microinjeção, uma técnica com polietilenoglicol (PEG), uma técnica com DEAE- dextrano, uma técnica com lipossoma catiônica e uma técnica com acetato de lítio-DMSO.
E possível usar uma célula altamente eficiente na absorção e expressão de materiais de DNA estranhos e isso se aplica a todos os microorganismos, incluindo procariontes e eucariontes. De preferência, utilizam-se bactérias E. coli ou corineformes e, mais preferencialmente, a Corynebacterium glutamicum KFCC 10881.
Nas células transformadas com o vetor da presente invenção, o promotor modificado do óperon lysC-asd com atividade aprimorada é substituído pelo promotor endógeno por recombinação homóloga, potencializando o nível de mRNA do gene de óperon lysC-asd. Como resultado, o transformante tem maior atividade de aspartato quinase e aspartato semialdeído dehidrogenase do que o tipo selvagem.
Em uma concretização da presente invenção, o vetor pDZ-lysCPl em que o promotor com uma sequência de nucleotídeos de N° ID SEQ 2 de acordo com a presente invenção foi inserido foi transformado em Corynebacterium glutamicum KFCC10881 para obter um transformante (KFCC 10881-lysCPl), chamado de CA01-0135, apresentando atividade aprimorada de aspartato quinase e aspartato semialdeído, que foi então depositado junto ao Centro de Cultura de Microorganismos da Coreia (doravante chamado de “KCCM”) sob o número de acesso KCCM10919P no dia 18 de janeiro de 2008.
De acordo com ainda outro de seus aspectos, a presente invenção refere-se a um método para a produção de lisina compreendendo a fermentação do transformante.
Em comparação ao tipo selvagem, o transformante de acordo com a presente invenção é aprimorado quanto às atividades da aspartato quinase e da aspartato semialdeído dehidrogenase. Visto que a aspartato quinase e a aspartato semialdeído dehidrogenase são as enzimas mais essenciais na via da biossíntese de lisina, a fermentação do transformante leva à produção de lisina a uma taxa elevada.
Na presente invenção, é possível realizar a fermentação do transformante usando-se um método bem conhecido e controlar as condições para a fermentação, incluindo temperatura, tempo, pH etc., de forma adequada. Os documentos a seguir apresentam uma descrição detalhada da fermentação: Chmiel; Bioprozesstechnik 1. Einfuhrung in die Bioverfahrenstechnik (Gustav Fischer Verlag, Stuttgart, 1991) e Storhas; Bioreaktoren und periphere Einrichtungen (Vieweg Verlag, Braunschweig / Wiesbaden, 1994). É possível chegar à fermentação por cultivo de lotes, cultivo contínuo ou cultivo de lotes alimentados. De preferência, o processo de lotes alimentados ou o processo de lotes alimentados repetido são usados de forma contínua para a fermentação, mas a presente invenção não se restringe a isso.
Para ser usado na fermentação, um meio deve satisfazer aos requisitos da linhagem empregada. Meios de cultura adequados para uso no cultivo de vários microorganismos são bem conhecidos na técnica (por exemplo, o Manual of Methods for General Bacteriology da American Society for Bacteriology, Washington D.C., USA, 1981). Os meios de cultura podem conter, como fontes de carbono, sacarídeos e carboidratos (por exemplo, glicose, sacarose, lactose, frutose, maltose, molasso, amido e celulose), lipídios e gorduras (por exemplo, óleo de soja, óleo de semente de girassol, óleo de amendoim e óleo de coco), ácidos graxos (por exemplo, ácido palmítico, ácido esteárico, ácido linoleico), alcoóis (por exemplo, glicerol e etanol) e ácidos orgânico (por exemplo, ácido acético). Esses materiais podem ser usados sozinhos ou em combinação. Como fontes de nitrogênio, compostos orgânicos que contêm nitrogênio (por exemplo, peptona, extrato de levedura, caldo, extrato de malte, água de maceração de milho, farinha de soja e ureia) ou compostos inorgânicos que contêm nitrogênio (por exemplo, sulfato de amônio, cloreto de amônio, fosfato de amônio, carbonato de amônio e nitrato de amônio) podem ser usados sozinhos ou em combinação. Exemplos de fontes de fósforo que podem ser usadas nos meios de cultura incluem hidrogenofosfato de dipotássio, dihidrogenofosfato de potássio e sais de sódio correspondentes.
Além disso, os meios de cultura contêm sais metálicos essenciais ao crescimento das células (por exemplo, sulfato de magnésio ou sulfato ferroso) e podem ser suplementados com nutrientes essenciais para estimular o crescimento, tais como aminoácidos e vitaminas. Ademais, é possível adicionar precursores adequados aos meios de cultura. Os nutrientes ou suplementos podem ser adicionados juntos de uma vez ou separadamente durante a fermentação.
O pH dos meios de cultura pode ser ajustado por meio de um composto alcalino (por exemplo, hidróxido de sódio, hidróxido de potássio ou amónia) ou um composto ácido (por exemplo, ácido fosfórico ou ácido sulfúrico). A geração de espumas nos meios de cultura pode ser restrita usando-se um agente antiespumante tal como poliglicol éster de ácido graxo. Os meios de cultura podem ser mantidos em condição aeróbica introduzindo-se oxigênio ou uma mistura de gás que contêm oxigênio neles. Quanto à temperatura da cultura, ela é tipicamente entre 20° e 45° C e, de preferência, entre 25° e 40° C. A fermentação continua até produzir uma quantidade máxima de L- aminoácido. Sendo assim, ela pode levar entre 10 e 160 horas. Após a produção, a L-lisina pode ser exportada aos meios de cultura ou mantida dentro das células.
Como alternativa, o método para a produção de lisina de acordo com a presente invenção pode compreender ainda coletar a lisina produzida. A L-lisina pode ser isolada dos meios de cultura ou células usando-se métodos bem conhecidos. Exemplos de métodos de coleta que podem ser usados na presente invenção incluem filtragem, cromatografia de troca aniônica, cristalização e cromatografia líquida de alta eficiência (HPLC), entre outros.
Será possível entender melhor a presente invenção em vista aos exemplos a seguir, apresentados apenas para ilustrar a presente invenção e que, portanto, não devem ser interpretados de modo a limitá-la.
Modo para a Invenção
Nos exemplos a seguir, construímos um vetor recombinante para conter um promotor do óperon lysC-asd de Corynebacterium glutamicum modificado para ter sua atividade aprimorada. O vetor recombinante foi transformado em Corynebacterium glutamicum KFCC10881 na qual o promotor modificado foi, então, incorporado ao genoma da célula por recombinação homóloga com o promotor endógeno, resultando em uma nova linhagem capaz de produzir lisina a taxas mais elevadas.
Artificialmente mutada a partir de uma linhagem selvagem da Corynebacterium glutamicum (ATCC13032), a Corynebacterium glutamicum KFCC10881 usada na presente invenção é resistente à S-(2-aminoetil) cisteína (doravante chamada de “AEC”) e isenta de homosserina (patentes coreanas de ne 0159812 e 0397322).
EXEMPLO 1: Construção do Vetor Recombinante Contendo o Promotor Aprimorado (1) Construção de um vetor para integração no genoma (pDZ)
Neste exemplo, construímos um pDZ, vetor que será integrado ao genoma da Corynebacterium, com base no pACYC177 (New England Biolab, número de acesso GenBank X06402), um vetor para uso na E. coli.
Após tratá-lo com Acul e Bani, cegamos as extremidades do vetor pACYC177 com um fragmento Klenow. Para uso como marcador de seleção, preparamos um gene lacZ derivado da E. coli amplificando um DNA genômico da E. coli K12 W3110 compreendendo o gene e seu promotor por PCR, seguido pelo tratamento do produto da PCR com T4 DNA polimerase e polinucleotfdeo quinase para fosforilato na extremidade 5' e tornamos as extremidades opostas cegas, respectivamente. Os dois fragmentos de DNA assim obtidos foram ligados um ao outro para obter uma molécula de ácido nucleico circular, na qual uma sequência adaptadora sinterizada artificialmente contendo vários sítios de enzima de restrição foi então inserida para preparar o vetor pDZ para a inserção no cromossomo da Corynebacterium. A FIG. 1 ilustra esquematicamente o vetor pDZ para integração no cromossomo da Corynebacterium.
(2) Construção de um vetor contendo um promotor aprimorado para o óperon lysC-asd
Neste exemplo, construímos um vetor recombinante para conter um promotor aprimorado do óperon lysC-asd de Corynebacterium glutamicum da linhagem produtora de lisina.
Com base nos dados do NIH GenBank, em primeiro lugar, obtemos uma sequência de nucleotídeos (SEQ N1) compreendendo uma região promotora (NCBI ID N2 NCglO247) do gene lysC-asd. A partir desta sequência de nucleotídeos, preparamos um fragmento de DNA que foi mutado em posições de base específicas. Cada sequência promotora 5 modificada foi projetada com base em uma sequência promotora de consenso típico encontrada em microorganismos.
Para uso na preparação das sequências promotoras modificadas, sinterizamos quatro oligonucleotídeo iniciadores (N— ID SEQ 3 ~ 6, Tabela 1) com base nas sequências 10 de base.TABELA 1
Figure img0001
Preparamos uma sequência promotora do óperon lysC-asd de Corynebacterium glutamicum por PCR 15 usando conjuntos dos oligonucleotídeos iniciadores da Tabela 1 na presença de DNA Polimerase de Alta Fidelidade da PfuUltra™ (Stratagene) com o DNA genômico de Corynebacterium glutamicum KFCC 10881 servindo de modelo. Realizamos a PCR com 30 ciclos de desnaturação a 96° C por 30 segundos, anelamento a 53° C por 30 segundos e extensão a 72° C por 30 segundos. Como resultado, o produto da PCR foi um fragmento de DNA de 300 bp com a parte de substituição localizada em uma região terminal. O lysCPl-1 foi amplificado com um conjunto dos 5 oligonucleotídeos iniciadores de Nos ID SEQ 3 e 6 e, o lysCPl-2, com um conjunto dos oligonucleotídeos iniciadores de Nos ID SEQ 4 e 5. O produto da PRC foi digerido com Xbal e clonado em pDZ usando-se um kit de clonagem em fusão (TAKARA) para preparar o vetor recombinante pDZ-lysCPl.
A FIG. 2 é um mapa do vetor pDZ-lysCPlcontendo a sequência promotora de No ID SEQ 2 integrada ao genoma da Corynebacterium.
EXEMPLO 2: Introdução do Vetor 4
Recombinante na linhagem Corynebacterium glutamicumNeste exemplo, introduzimos o vetorrecombinante preparado acima na linhagem de produção de lisina Corynebacterium glutamicum KFCC-10881 de modo que a sequência promotora ddh modificada no vetor fosse integrada ao genoma da célula por recombinação homólogo com o promotorendógeno do óperon lysC-asd no genoma.
Para tanto, transformamos o vetor recombinante pDZ-lysCPl contendo o fragmento de DNA correspondente à sequência promotora modificada em Corynebacterium glutamicum KFCC 10881 usando um método de eletroporação 25 (com base na publicação Appl. Microbiol. Biotechnol. (1999) 52: 541 a 545), seguido pela escolha de um meio de seleção contendo canamicina em uma quantidade de 25 mg/L, os transformantes em que o promotor modificado foi integrado ao genoma por recombinação homóloga com o promotor endógeno.
Confirmamos o êxito na inserção do vetor no genoma pelo surgimento de uma coloração azulada na placa que contém X-gal (5-bromo-4-cloro-3-indolil-â-D-galactosídeo). Cruzamentos únicos com o vetor incorporado no genoma dele foram cultivados em um caldo nutritivo com agitação (30° C, 8 horas); em seguida, diluímos a cultura a uma concentração de 10- 4 para 10-10 antes de espalhá-la em placas contendo X-gal. Embora a maioria das colônias que cresceram nas placas fosse azul, apenas uma baixa proporção delas permaneceu branca. As colônias brancas foram selecionadas como colônias de duplo- cruzamento que ligaram o promotor do óperon lysC-asd que foi mutado em posições de base específicas. Para confirmar, examinamos as linhagens específicas quanto à substituição de base por PCR e à sequência de base. A linhagem transformada com o pDZ-lysCPl foi examinada quanto à substituição de base no promotor usando um conjunto de oligonucleotídeos iniciadores de Nos ID SEQ 4 e 7 por PCR e sequência de base.
A linhagem de produção de lisina Corynebacterium glutamicum KFCC10881-lysCPl em que o promotor do óperon lysC-asd mutado em posições de base específicas foi integrado ao genoma foi, enfim, confirmada por cruzamento duplo.
EXEMPLO 3: Ensaio da Linhagem com o Promotor Aprimorado lysC-asd quanto à Atividade da Aspartato Quinase
A linhagem-mãe Corynebacterium glutamicum KFCC 10881 e a linhagem de produção de lisina Corynebacterium glutamicum KFCC 10881-lysCPl preparada por último no Exemplo 2 foram cultivadas e as proteínas foram isoladas das culturas e analisadas quanto à atividade do aspartato quinase conforme o seguinte.
Cada uma das culturas que cresceram até a fase logarítmica foi inoculada em 50 mL do meio de semeadura a seguir para obter OD600 de 0,3 e, então, encubada até que a densidade óptica a 600 nm atingisse 15. Após coletá-la por centrifugação (5.000 rpm, 15 min), lavamos a massa celular duas vezes com Tris HCI (pH 8,0) a 0,1% e a suspendemos no mesmo tampão para obter uma absorção óptica a 610 nm de turvação 160. Rompemos as células por 6 minutos em um batedor de vidro com contas de vidro acrescentadas a 1,25 g/1,5 ml da suspensão. Após a centrifugação (15.000 rpm, 20 min), o supernadante foi medido quantativamente quanto ao teor de proteínas pelo método de Bradford (Bradford, M.M 1976. Anal. Biochem. 72: 248 a 254) e usado como uma solução de proteína bruta para medir a atividade da aspartato quinase.
A fim de medir a atividade da aspartato quinase, misturamos cerca de 0,005 mL da solução de proteína bruta a uma solução de reação contendo 0,1 M de Tris HCI (pH 8,0), 0,01 M de MgC12, 0,6 M de hidroxilamina HCl (pH 7,0), 4 mM de ATP e 0,2 M de aspartato e permitimos que ela reagisse a 30° C por 30 min, seguido pela adição de uma solução de parada (FeC12 a 10%, TCA a 3,3%, 0,7 de N HCl) para terminar a reação. Após a centrifugação, medimos o supemadante assim obtido quanto à absorvência a 540 nm. Definimos a atividade da aspartato quinase em nmoles de aspartato hidroxamato gerados por 1 mg de proteína por minuto e a expressamos em unidade (U).
Observamos, na Corynebacterium glutamicum KFCC 10881-lysCPl, uma atividade da aspartato quinase 5,08 vezes maior do que na linhagem-mãe KFCC 10881 (Tabela 2).TABELA 2
Figure img0002
* Meio de semeadura (pH 7,0)
Vinte gramas de açúcar bruto, 10 g de peptona, 5 g de extrato de levedura, 1,5 g de uréia, 4 g de KH2PO4, 8 g de K2HPO4, 0,5 g de MgSO4 7H2O, 100 μg de biotina, 1.000 μg de tiamina HCl, 2.000 μg de pantotenato de cálcio, 2.000 μg de nicotinamida (por litro de água destilada)
EXEMPLO 4: Produção de Lisina na Linhagem com o Promotor Aprimorado lysC-asd
A linhagem-mãe Corynebacterium glutamicum KFCC 10881 e a linhagem de produção de L-lisina Corynebacterium glutamicum KFCC10881-lysCPl preparada no Exemplo 2 foram fermentadas para produzir L-lisina de acordo com o seguinte.
A linhagem-mãe Corynebacterium glutamicum KFCC10881 e a KFCC10881-lysCPl foram inoculadas em fracos de fundo baffled de 250 mL, cada um contendo 25 mL do meio de semeadura a seguir e cultivado a 30° C por 20 horas com agitação a 200 rpm. Para 24 mL do meio de produção a seguir em um frasco de fundo baffled de 250 mL, acrescentamos 1 mL da cultura de semeadura, seguido pela incubação a 30° C por 120 horas com agitação (200 rpm).
Após o término da cultura, realizou-se a análise HPLC para determinar as quantidades de L-lisina produzidas pelas linhagens. Resumimos as concentrações de L-lisina nas culturas de Corynebacterium glutamicum KFCC-10881 e KFCC10881-lysCPl na Tabela 3 abaixo.TABELA 3
Figure img0003
* Meio de semeadura (pH 7,0)
Vinte gramas de açúcar bruto, 10 g de peptona, 5 g de extrato de levedura, 1,5 g de uréia, 4 g de KH2PO4, 8 g de K2HPO4, 0,5 g de MgSO4 7H2O, 100 μg de biotina, 1.000 μg de tiamina HC1, 2.000 μg de pantotenato de cálcio, 2.000 μg de nicotinamida (por litro de água destilada)
* Meio de produção (pH 7,0)
Cem gramas de glicose, 40 g de (NH4)2SO4, 2,5 g de proteína de soja, 5 g de concentrado de água de lavagem do milho, 3 g de ureia, lg de KH2PO4, 0,5 g de MgSO4 7H2O, 100 μg de biotina, 1.000 μg de cloreto de tiamina, 2.000 μg de pantotenato de cálcio, 3.000 μg de nicotinamida, 30 g de CaCO3 (por litro de água destilada)
Conforme ilustra a Tabela 3, descobrimos que a Corynebacterium glutamicum KFCC-lysCPl com atividade da aspartato quinase aprimorada em cerca de 5 vezes aumenta a produtividade de lisina em cerca de 5% em comparação à linhagem-mãe KFCC 10881.
Aplicabilidade Industrial
Com a atividade promotora mais elevada do que a do tipo selvagem, como descrito até agora, a molécula de ácido nucleico derivada da Corynebacterium glutamicum de acordo com a presente invenção pode melhorar as atividades da aspartato quinase e da aspartato semialdeído dehidrogenase, aumentando assim a eficiência da biossíntese de lisina. Como consequência, a linhagem que liga o promotor aprimorado pode produzir L-lisina, um aminoácido importante do ponto de vista industrial, a taxas elevadas.

Claims (10)

1. - Molécula de ácido nucleico caracterizada pela sequência de nucleotídeos de posição 1 a 353 da SEQ ID No: 2, que é operacionalmente ligada a um operon que codifica a aspartato quinase e aspartato semialdeído desidrogenase.
2. - Vetor caracterizado por compreender a molécula de ácido nucleico conforme definida na reivindicação 1.
3. - Vetor, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado por ser um pDZ-lysCP1.
4. - Bactérias corineformes transformadas, caracterizado por incluir o vetor conforme definido na reivindicação 2.
5. - Bactérias corineformes transformadas, de acordo com a reivindicação 4, sendo caracterizado por pertencer aos gêneros Corynebacterium ou Brevibacterium.
6. - Bactérias corineformes transformadas, de acordo com a reivindicação 4, caracterizado por ser chamado de CA01-0135 com o número de acesso KCCM10919P.
7. - Bactérias corineformes transformadas, de acordo com a reivindicação 4, caracterizado pelo fato de a molécula de ácido nucleico da reivindicação 1 ser incorporada a um genoma do microrganismo transformado por meio de recombinação homóloga.
8. - Bactérias corineformes transformadas, de acordo com a reivindicação 4, caracterizado por incluir a molécula conforme definida na reivindicação 1 como um plasmídeo.
9. - Método para produzir lisina, caracterizado por compreender fermentar as bactérias corineformes transformadas conforme definido na reivindicação 4.
10. - Método, de acordo com a reivindicação 9, caracterizado por compreender ainda coletar a lisina gerada durante a fermentação.
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Free format text: PRAZO DE VALIDADE: 20 (VINTE) ANOS CONTADOS A PARTIR DE 23/01/2009, OBSERVADAS AS CONDICOES LEGAIS. PATENTE CONCEDIDA CONFORME ADI 5.529/DF, QUE DETERMINA A ALTERACAO DO PRAZO DE CONCESSAO.