WO2014030590A1 - エキソソームの分析方法、エキソソーム分析装置、抗体－エキソソーム複合体、及びエキソソーム電気泳動チップ - Google Patents

エキソソームの分析方法、エキソソーム分析装置、抗体－エキソソーム複合体、及びエキソソーム電気泳動チップ Download PDF

Info

Publication number
WO2014030590A1
WO2014030590A1 PCT/JP2013/071967 JP2013071967W WO2014030590A1 WO 2014030590 A1 WO2014030590 A1 WO 2014030590A1 JP 2013071967 W JP2013071967 W JP 2013071967W WO 2014030590 A1 WO2014030590 A1 WO 2014030590A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
exosome
antibody
complex
zeta potential
electrophoresis
Prior art date
Application number
PCT/JP2013/071967
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
一木　隆範
貴則 赤木
博文 塩野
Original Assignee
国立大学法人東京大学
株式会社ニコン
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 国立大学法人東京大学, 株式会社ニコン filed Critical 国立大学法人東京大学
Priority to JP2014531606A priority Critical patent/JP6230027B2/ja
Priority to EP13831760.7A priority patent/EP2889623B1/en
Publication of WO2014030590A1 publication Critical patent/WO2014030590A1/ja
Priority to US14/629,028 priority patent/US9952215B2/en

Links

Images

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/566—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor using specific carrier or receptor proteins as ligand binding reagents where possible specific carrier or receptor proteins are classified with their target compounds
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/574—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer
    • G01N33/57484—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer involving compounds serving as markers for tumor, cancer, neoplasia, e.g. cellular determinants, receptors, heat shock/stress proteins, A-protein, oligosaccharides, metabolites
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54313—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being characterised by its particulate form
    • G01N33/5432—Liposomes or microcapsules
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54313—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being characterised by its particulate form
    • G01N33/54346—Nanoparticles
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/558—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor using diffusion or migration of antigen or antibody
    • G01N33/561—Immunoelectrophoresis
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G01N2333/705—Assays involving receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • G01N2333/70596—Molecules with a "CD"-designation not provided for elsewhere in G01N2333/705
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2550/00—Electrophoretic profiling, e.g. for proteome analysis
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/416—Systems
    • G01N27/447—Systems using electrophoresis
    • G01N27/44704—Details; Accessories
    • G01N27/44752—Controlling the zeta potential, e.g. by wall coatings
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/416—Systems
    • G01N27/447—Systems using electrophoresis
    • G01N27/44756—Apparatus specially adapted therefor
    • G01N27/44791—Microapparatus

Definitions

  • the present invention relates to an exosome analysis method, an exosome analyzer, an antibody-exosome complex, and an exosome electrophoresis chip.
  • This application claims priority based on Japanese Patent Application No. 2012-185666 for which it applied to Japan on August 24, 2012, and uses the content here.
  • Exosomes are small lipid vesicles with a diameter of 30 to 100 nm.
  • various cells such as tumor cells, dendritic cells, T cells, B cells, blood, urine, saliva, etc. Secreted into body fluids.
  • Abnormal cells such as cancer cells may express a protein specific to the cell membrane.
  • the membrane surface of the exosome expresses a protein derived from a secretory cell. Therefore, by analyzing the protein on the surface of the exosome membrane in body fluids, it is possible to know the nature of the secretory cell and to establish a testing technique that can investigate abnormalities in the living body without performing a biopsy test.
  • the biopsy test refers to a clinical test for examining a disease diagnosis or the like by collecting a tissue of a lesion site and observing the lesion site with a microscope or the like.
  • CD63-positive exosomes are captured and labeled with a fluorescence-modified antibody using beads modified with CD63-expressed antibodies expressed on the exosome membrane surface, and flow cytometry is used.
  • a method of analyzing the membrane surface of exosomes by measuring them is proposed (see Non-Patent Document 1).
  • Non-Patent Document 1 captures multiple particles of exosomes on antibody-modified beads using a large amount of sample. Without it, the expression of glycoproteins on the surface of the exosome membrane cannot be detected.
  • the exosome analysis method described in Non-Patent Document 1 has room for improvement in terms of simple and highly sensitive analysis of sample-derived exosomes.
  • the present invention has been made in view of the above circumstances, and an object thereof is to provide an exosome analysis method, an exosome analyzer, an antibody-exosome complex, and an exosome electrophoresis chip, which can analyze exosomes with high sensitivity.
  • One embodiment of the present invention provides the following (1) to (7).
  • the method for analyzing exosomes in one embodiment of the present invention is a method for analyzing exosomes, (A) preparing an exosome from the sample; (B) contacting the exosome prepared in the step (a) with an antibody having a protein present on the surface of the exosome as an antigen to form a first antibody-exosome complex; (C) measuring the zeta potential of the first antibody-exosome complex;
  • the exosome analyzer in one embodiment of the present invention is an exosome analyzer, A preparation means for preparing exosomes from a sample; A complex forming means for forming an antibody-exosome complex by contacting the exosome with an antibody whose antigen is a protein present on the surface of the exosome; Measuring means for measuring the zeta potential of the antibody-exosome complex; Is provided.
  • the antibody-exosome complex in one embodiment of the present invention is an antibody-exosome complex, An exosome prepared from a sample, and an antibody having a protein present on the surface of the exosome as an antigen,
  • the zeta potential of the antibody-exosome complex calculated by electrophoretic mobility has a positive charge compared to the zeta potential of the exosome.
  • the exosome electrophoresis chip in one embodiment of the present invention is an exosome electrophoresis chip, wherein an exosome prepared from a sample is contacted with an antibody having a protein present on the surface of the exosome as an antigen.
  • the exosome analysis method is an exosome analysis method, (A) preparing an exosome from the sample; (B) contacting the exosome prepared in the step (a) with a molecule that specifically binds to a biomolecule present on the surface of the exosome to form a complex; (C) measuring the zeta potential of the complex; Have (6)
  • the exosome analyzer in one embodiment of the present invention is an exosome analyzer, A preparation means for preparing exosomes from a sample; A complex forming means for forming a complex by contacting the exosome with a molecule that specifically binds to a biomolecule present on the surface of the exosome; Measuring means for measuring the zeta potential of the complex; Is provided.
  • the exosome electrophoresis chip in one embodiment of the present invention is an exosome electrophoresis chip, A reservoir into which a suspension containing a complex is injected, in which an exosome prepared from a sample is contacted with a molecule that specifically binds to a biomolecule present on the surface of the exosome; A flow path for electrophoresis of a suspension containing the complex; Is provided.
  • exosomes can be analyzed with high sensitivity.
  • FIG. 2 is a measurement result of zeta potential of antibody-exosome complex in Example 1.
  • FIG. 6 is a schematic diagram showing a step of measuring the zeta potential of an antibody-exosome complex using microcapillary electrophoresis in Example 2.
  • FIG. 3 is a result of zeta potential measurement of an antibody-exosome complex using microcapillary electrophoresis in Example 2.
  • the exosome analysis method of this embodiment is an exosome analysis method for detecting cell abnormalities, (A) preparing the exosome from a sample containing the exosome secreted by the cell to be detected; (B) contacting the exosome prepared in the step (a) with an antibody having a protein present on the surface of the exosome as an antigen to form a first antibody-exosome complex; (C) measuring the zeta potential of the first antibody-exosome complex;
  • An exosome is a secreted product of a cell and expresses a cell-derived protein as a secretory source on its surface.
  • Abnormal cells such as cancer cells existing in the body express a protein specific to the cell membrane. Therefore, it is possible to detect abnormalities in the secretory cell by analyzing the protein expressed on the surface of the exosome.
  • the surface of the exosome is a membrane surface of a membrane vesicle secreted from a cell, and refers to a portion where the secreted exosome is in contact with the environment in the living body. Furthermore, since exosomes are detected in blood circulating in the living body, abnormalities in the living body can be detected by analyzing exosomes without performing a biopsy test. Hereinafter, each step will be described.
  • Step (a) is a step of preparing the exosome from a sample containing the exosome secreted by the detection target cell.
  • a sample is not particularly limited as long as it is a sample obtained from an environment surrounding cells to be detected and contains exosomes secreted by the cells.
  • a sample also includes a cell culture medium containing exosomes secreted by cultured cells.
  • Examples of cells to be detected include cancer cells, mast cells, dendritic cells, reticulocytes, epithelial cells, B cells, and nerve cells that are known to produce exosomes.
  • Examples of methods for preparing exosomes from such samples include ultracentrifugation, ultrafiltration, continuous flow electrophoresis, chromatography, and the like.
  • Examples of filtration and chromatography include filtration methods using size filters and gel filtration chromatography methods.
  • Step (b) is a step of forming a first antibody-exosome complex by contacting the exosome prepared in step (a) with an antibody having a protein present on the surface of the exosome as an antigen. is there.
  • the contact means for example, that a protein present on the surface of an exosome and an antibody having the protein as an antigen interact so as to cause an antigen-antibody reaction.
  • An abnormal cell that secretes an exosome expresses a specific protein on the cell surface, or the abnormal cell lacks the expression of the specific protein. Therefore, cell abnormalities can be detected by using an antibody whose antigen is a protein having a different expression pattern compared to normal cells.
  • the first antibody includes, as an example, a protein that is highly expressed in abnormal cells or normal cells as an antigen, and as an example, a protein that is expressed in abnormal cells or normal cells. Let it be an antigen.
  • proteins such as CD10, CD5 / 6, CAV1, MOESIN, and ETS1 are highly expressed in normal breast epithelial cell lines, while the expression of these proteins is decreased in breast cancer cell lines.
  • these antibodies are used as the first antibody.
  • the antigen recognized by the first antibody is not particularly limited as long as it is a protein present on the surface of the exosome, and a part of the protein present in the cell may be exposed on the surface.
  • cancer antigens components that are attacked by immune cells in cancer cells
  • cancer antigens are decomposed into peptides in the cytoplasm of the cancer cells and cancer antigens together with class IMHC molecules on the cell membrane surface of the cancer cells.
  • the antigen recognized by the first antibody may be such a cancer antigen peptide.
  • a membrane protein such as a receptor is used as an antigen as an example. Therefore, when detecting an abnormality of mammary epithelial cells, for example, the first antibody uses a membrane protein such as CD10, CD5 / 6, CD44 or the like as an antigen.
  • the first antibody may be composed of a plurality of types of antibodies, and the plurality of types of antibodies may recognize different epitopes of the same antigen. By using such an antibody, the recognition accuracy of an exosome having a specific antigen can be increased. Moreover, multiple types of antibodies may recognize different antigens. For example, by using a plurality of types of antibodies whose antigens are a plurality of types of proteins that are highly expressed in breast cancer cells or normal mammary epithelial cells, the accuracy in detecting abnormalities in the mammary epithelial cells can be increased.
  • the first antibody is not limited to an antibody related to cancer.
  • an antibody related to obesity, diabetes, neurodegenerative disease, etc. as the first antibody, abnormalities related to these diseases in the target cells can be detected.
  • Step (c) is a step of measuring the zeta potential of the first antibody-exosome complex.
  • the zeta potential is an indicator of the charge on the surface of particles dispersed in an aqueous solution. Strictly speaking, the potential of a “slip plane” when particles dispersed in an aqueous solution move by applying an electric field. Defined. The mobility of particles that can be measured by an electrophoresis experiment is obtained by applying the Smolkovski equation or the like. Since the exosome is negatively charged while the antibody is positively charged, when the first antibody and the exosome form a complex, the zeta potential of the complex is the zeta potential of the exosome alone. Compared with the positive shift.
  • the analysis method of the present embodiment does not need to capture a large number of exosomes using beads modified with an antibody. Therefore, according to the analysis method of the present embodiment, a cell abnormality can be easily detected with high sensitivity.
  • step (c) is, for example, a step of separating the first antibody-exosome complex by electrophoresis and measuring the zeta potential of the first antibody-exosome complex at the level of one particle.
  • the types and expression levels of proteins present on the membrane surface of exosomes are: Different for each particle. Therefore, in order to analyze such exosomes in detail, as an example, the exosomes are separated and analyzed by electrophoresis at the level of one particle. The greater the number of antibodies that bind to one particle exosome, the more positive the complex is charged and the slower the rate of movement of the complex in electrophoresis.
  • step (c) includes, as an example, a step of measuring the zeta potential of the first antibody-exosome complex based on the optically measured mobility. For example, at the time of electrophoresis, for example, an antibody-exosome complex is irradiated with a laser beam having a wavelength of 488 nm and an intensity of 50 mW, a particle image is obtained by Rayleigh scattered light, and the electrophoretic degree of the antibody-exosome complex is measured. .
  • Cancer stem cells are cells that form the basis of tumor tissue formation and are highly resistant to treatment, and are therefore considered to be the origin of cancer recurrence and metastasis. As an example, even if most cancer cells are removed by treatment, recurrence can occur if only a few cancer stem cells survive, which is thought to be the reason why cancer often recurs. Yes. Therefore, if cancer stem cells can be targeted and removed, it is expected to lead to the development of therapeutic methods useful for preventing cancer metastasis and recurrence. In solid cancers such as breast cancer, pancreatic cancer, stomach cancer, and colon cancer, CD44-positive cancer cells have a high tumor-forming ability in immunodeficient mice, and CD44-positive cancer cells have cancer stem cell-like properties.
  • exosomes are prepared from blood circulating in the living body, an antibody having CD44 as an antigen is used as the first antibody, and the anti-CD44 antibody-exosome complex is separated by electrophoresis.
  • an antibody having CD44 as an antigen is used as the first antibody
  • the anti-CD44 antibody-exosome complex is separated by electrophoresis.
  • the exosome analysis method of the present embodiment further includes, as an example, after the step (c), (D) contacting the exosome prepared in the step (a) with a second antibody having a protein present on the membrane surface of the exosome as an antigen to form the second antibody-exosome complex.
  • the exosome analysis method of the present embodiment uses a second antibody different from the first antibody, apart from the step of measuring the zeta potential of the complex with the exosome using the first antibody described above. And measuring the zeta potential of the complex with the exosome.
  • each step will be described in detail.
  • the exosome prepared in the step (a) is brought into contact with a second antibody having a protein present on the membrane surface of the exosome as an antigen to contact the second antibody-exosome complex.
  • the second antibody is different from the first antibody, and can specify a property different from the property of the detection cell specified by using the first antibody.
  • the first antibody is a protein that expresses cancer-specific expression as an antigen
  • the second antibody is the one that uses an organ-specific protein expressed as an antigen.
  • proteins expressed in an organ-specific manner include prostate cancer markers such as PSA, PSCA, and PSMA; breast cancer markers such as CA15-3, BCA225, and HER2.
  • prostate cancer markers such as PSA, PSCA, and PSMA
  • breast cancer markers such as CA15-3, BCA225, and HER2.
  • Step (e) is a step of measuring the zeta potential of the second antibody-exosome complex.
  • the step is the same as the step (c) except that the second antibody-exosome complex is used instead of the first antibody-exosome complex.
  • the second antibody-exosome complex is separated by electrophoresis, and the zeta potential of the second antibody-exosome complex is set to one particle. It is a process of measuring by level.
  • the step (e) includes, as an example, a step of measuring the zeta potential of the second antibody-exosome complex based on the optically measured mobility.
  • the exosome analysis method of the present embodiment is an exosome analysis method for detecting cell abnormalities, (A) preparing an exosome from the sample; (B) contacting the exosome prepared in the step (a) with a molecule that specifically binds to a biomolecule present on the surface of the exosome to form a complex; (C) measuring the zeta potential of the complex; Have As an example, the step (c) is a step of separating the complex by electrophoresis and measuring the zeta potential of the complex at the level of one particle.
  • the exosome analyzer of this embodiment is an exosome analyzer for detecting cell abnormalities, A preparation means for preparing exosomes from a sample containing exosomes secreted by cells to be detected; A complex forming means for forming an antibody-exosome complex by contacting the exosome with an antibody whose antigen is a protein present on the surface of the exosome; Measuring means for measuring the zeta potential of the antibody-exosome complex; Is provided.
  • the exosome analyzer includes an electrophoresis means for separating the antibody-exosome complex by electrophoresis.
  • ⁇ -TAS means a microfluidic device that uses a micro-electro mechanical systems (MEMS) technology to provide microchannels, reaction chambers, and mixing chambers on a chip and analyze biomolecules on a single chip.
  • MEMS micro-electro mechanical systems
  • ⁇ -TAS is superior to conventional inspection devices in that it can be measured and analyzed with a small amount of sample, can be carried, and can be disposable at low cost.
  • the exosome analyzer of this embodiment has, as an example, at least a part of a microfluidic device.
  • an example of the exosome analyzer according to the present embodiment will be described with reference to FIG.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing a basic configuration of an exosome analyzer 1 of the present embodiment.
  • the exosome analyzer 1 of this embodiment is used as an apparatus for preparing an exosome from a blood sample and detecting an abnormality of a secretory cell through the analysis of the exosome.
  • the exosome analyzer 1 of this embodiment includes a preparation unit (preparation part) 21 including a liquid reservoirs 4 and 7, a drive source 2, a valve 9, and a purification device 11, A composite body forming means (composite forming section) 20 composed of the valve 8 and the merging section 13 and a measuring means (measuring section) 22 composed of the electrophoresis tank 12 are configured. As shown in FIG.
  • the exosome analyzer 1 of the present embodiment has liquid reservoirs 3 and 4 downstream of the drive source 2, and the liquid reservoir 3 stores antibodies and blood, respectively. It has been.
  • a driving liquid is stored in the liquid reservoir 7 located upstream of the driving source 2.
  • valves 8 and 9 for controlling the flow of fluid are provided in the flow path upstream of the liquid reservoirs 3 and 4.
  • the valve 9 is opened, the blood source stored in the liquid reservoir 4 is pushed out by the drive source 2, and the pushed blood sample passes through the purification device 11.
  • the purification device 11 includes a filter unit that selects only plasma from blood, and a gel filtration column that selects components in plasma by size.
  • the exosome fraction that has passed through the purifying device 11 is stored in the merging portion 13 with the valve in a closed state.
  • the valve 8 is opened, and the antibody stored in the liquid reservoir 3 is pushed out by the drive source 2, and the exosome comes into contact with the antibody at the junction 13 to form an antibody-exosome.
  • the valve attached to the junction 13 is opened, and the antibody-exosome passes through the electrophoresis tank 12.
  • the electrophoresis tank 12 is connected to an electrophoresis apparatus (not shown), and the zeta potential of the antibody-exosome complex is measured by the electrophoresis apparatus.
  • an electrophoresis apparatus not shown
  • the exosome analyzer 1 of this embodiment a very small amount of exosomes in a living body can be analyzed easily and with high sensitivity.
  • the exosome analyzer of this embodiment is an exosome analyzer for detecting cell abnormalities, A preparation means for preparing exosomes from a sample; A complex forming means for forming a complex by contacting the exosome with a molecule that specifically binds to a biomolecule present on the surface of the exosome; Measuring means for measuring the zeta potential of the complex; Is provided.
  • the exosome analyzer includes an electrophoresis means for separating the complex by electrophoresis.
  • the antibody-exosome complex of the present embodiment is an antibody-exosome complex for detecting a cell abnormality, An exosome prepared from a sample; An antibody whose antigen is a protein present on the surface of the exosome, The zeta potential of the antibody-exosome complex calculated by electrophoretic mobility has a positive charge compared to the zeta potential of the exosome.
  • the antibody-exosome complex of the present embodiment is used for the zeta potential measurement described above as an example.
  • the zeta potential of the antibody-exosome complex is shifted by 0.1 mV or more, or 1 mV or more, as an example, compared to the zeta potential of the exosome alone. Further, the zeta potential of the antibody-exosome complex is shifted by, for example, 0.5, 1, 2, 3, 4, or 5 mV or more compared to the zeta potential of the exosome alone.
  • the antibody-exosome complex of the present embodiment is the same as that described in the above-described exosome analysis method of the present embodiment, and the description thereof is omitted.
  • the exosome electrophoresis chip of this embodiment is an exosome electrophoresis chip for detecting cell abnormalities, and an exosome prepared from a sample is brought into contact with an antibody having a protein present on the surface of the exosome as an antigen.
  • the exosome electrophoresis chip includes, for example, two portions into which electrodes for applying a voltage to the channel are placed. Each of the two parts is provided at an arbitrary position in the two reservoirs.
  • the exosome electrophoresis chip includes, for example, an electrode for applying a voltage to the flow path.
  • the flow path has a portion irradiated with light in order to calculate the zeta potential of the antibody-exosome complex.
  • at least a part of the channel is coated with a polymer in order to suppress nonspecific adsorption of biomolecules.
  • the polymer include polymers used for protein adsorption blocking such as PEG (polyethylene glycol) and BSA (bovine serum albumin).
  • MPC (2 from the viewpoint of suppressing non-specific protein adsorption. -Methacryloyloxyethyl phosphorylcholine) is preferred.
  • the exosome electrophoresis chip of this embodiment is an exosome electrophoresis chip for detecting cell abnormalities, A reservoir into which a suspension containing a complex is injected, in which an exosome prepared from a sample is contacted with a molecule that specifically binds to a biomolecule present on the surface of the exosome; A flow path for electrophoresis of a suspension containing the complex; Is provided.
  • Example 1 [Preparation of exosome suspension] Human mammary epithelial cells MCF10A were cultured using a mammary epithelial cell culture medium kit (Lonza) until they reached confluence. In addition, human breast cancer cells MDA-MB-231 were treated with 10% fetal bovine serum (Invitrogen), 100 units / mL penicillin (Invitrogen), 100 ⁇ g / mL streptomycin (Invitrogen), and 100 ⁇ g / mL kanamycin (Invitrogen). Using RPMI medium (manufactured by Invitrogen), the cells were cultured until they reached confluence.
  • RPMI medium manufactured by Invitrogen
  • MCF10A and MDA-MB-231 were mixed with serum-free medium (100 units / mL penicillin (Invitrogen), 100 ⁇ g / mL streptomycin (Invitrogen), and 100 ⁇ g / mL kanamycin (Invitrogen)).
  • serum-free medium 100 units / mL penicillin (Invitrogen), 100 ⁇ g / mL streptomycin (Invitrogen), and 100 ⁇ g / mL kanamycin (Invitrogen)
  • serum-free medium 100 units / mL penicillin (Invitrogen), 100 ⁇ g / mL streptomycin (Invitrogen), and 100 ⁇ g / mL kanamycin (Invitrogen)
  • RPMI medium manufactured by Invitrogen
  • the cells were cultured for 1 day, and the culture supernatant was collected.
  • the culture supernatant is centrifuged at 2000 ⁇ g for 15 minutes to recover the supern
  • the mouse IgG1, ⁇ antibody-exosome suspension for Isotype control does not form the mouse IgG1, ⁇ antibody-exosome complex for Isotype control, whereas the anti-human CD10 antibody-exosome suspension does not It was confirmed that an anti-human CD10 antibody-exosome complex was formed.
  • MDA-MB-231 since there is no difference in zeta potential between mouse IgG1, ⁇ antibody-exosome suspension for isotype control and anti-human CD10 antibody-exosome suspension, both suspensions are combined. It was confirmed that no body was formed.
  • CD10 is highly expressed in normal cells, MCF10A, and not expressed in cancer cells, MDA-MB-231 (Charafe-Jaufflet E, et.al., Oncogene ( 2006) vol.25, pp 2273-2284.).
  • MCF10A normal cells
  • MDA-MB-231 Charafe-Jaufflet E, et.al., Oncogene ( 2006) vol.25, pp 2273-2284.
  • Example 1 the presence of a cell that is a secretory source of exosome can be confirmed by measuring the zeta potential of an antibody-exosome complex using an antibody whose antigen is a protein that is highly expressed in a certain cell. .
  • Example 2 [Preparation of exosome suspension] An exosome suspension derived from human breast cancer cell MDA-MB-231 was prepared in the same manner as in Example 1.
  • a PDMS electrophoresis chip was produced by a soft lithography method.
  • the size of the flow path in the electrophoresis chip is 200 ⁇ m wide, 50 ⁇ m high, and 1000 ⁇ m long.
  • the inner wall of the flow channel was coated with MPC (2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine) polymer.
  • the antibody-exosome suspension is added to one of the reservoirs provided at both ends of the prepared PDMS electrophoresis chip, and sucked with a syringe from the other, and the exosome suspension or the antibody-exosome suspension is electrophoresed. It introduced into the flow path in the chip. Electrophoresis was performed by placing platinum electrodes in both reservoirs and applying a voltage for 10 seconds at an electric field strength of 50 V / cm.
  • the left figure of FIG. 3 shows an enlarged view of electrophoresis of each of the exosome and the antibody-exosome complex.
  • the zeta potential of the antibody-exosome complex has a positive charge compared to the zeta potential of the exosome alone. Accordingly, the mobility of the antibody-exosome complex is smaller than that of the exosome. Further, laser light having a wavelength of 488 nm and an intensity of 50 mW was irradiated from the lower side of the electrophoresis chip, and the exosome-derived scattered light as the emitted light was collected by an objective lens (magnification x60) below the electrophoresis chip.
  • the left side of FIG. 4 shows the distribution of zeta potential in the exosome suspension.
  • the horizontal axis indicates the zeta potential, and the vertical axis indicates the number of exosomes.
  • a total of 110 exosome zeta potentials were measured.
  • the average value of the zeta potential in the exosome suspension was ⁇ 9.94 ⁇ 2.44 mV.
  • the average value of the zeta potential in the control mouse IgG2a antibody-exosome suspension was ⁇ 7.52 ⁇ 1.48 mV, which was close to the average value of the zeta potential in the exosome suspension.
  • the right side of FIG. 4 shows the distribution of zeta potential in the anti-human CD63 antibody-exosome suspension.
  • the horizontal axis indicates the zeta potential
  • the vertical axis indicates the number of exosomes.
  • a total of 32 exosome zeta potentials were measured.
  • Table 1 the average value of the zeta potential in the anti-human CD63 antibody-exosome suspension is -2.88 ⁇ 3.87 mV, and the exosome suspension and the control mouse IgG2a antibody-exosome suspension It was confirmed that the zeta potential was increased compared to. Therefore, the isotype control mouse IgG2a antibody-exosome suspension does not form the isotype control mouse IgG2a antibody-exosome complex, while the antihuman CD63 antibody-exosome suspension does not form the antihuman CD63. It was confirmed that an antibody-exosome complex was formed.
  • Example 2 Furthermore, from the results of Example 1 and Example 2, for example, first, using an antibody whose antigen is a protein specifically expressed as a cancer cell as the first antibody, the zeta of the first antibody-exosome complex is used. By measuring the potential and then measuring the zeta potential of the second antibody-exosome complex using an antibody whose antigen is a protein that is specifically expressed as an organ as the second antibody, It is possible to identify which organ-derived cancer cell. In addition to cancer cells, cell abnormalities in a living body can be specified in detail by changing the combination of antibodies used.
  • exosomes can be analyzed in detail simply and with high sensitivity.
  • the present invention can provide an exosome analysis method and an exosome analysis apparatus that can analyze exosomes easily and with high sensitivity.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Electrochemistry (AREA)
  • Nanotechnology (AREA)
  • Hospice & Palliative Care (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)

Abstract

　本発明のエキソソームの分析方法は、細胞の異常を検出するためのエキソソームの分析方法であって、（ａ）試料からエキソソームを調製する工程と、（ｂ）前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて第１の抗体－エキソソーム複合体を形成させる工程と、（ｃ）前記第１の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、を有する。

Description

エキソソームの分析方法、エキソソーム分析装置、抗体－エキソソーム複合体、及びエキソソーム電気泳動チップ
　本発明は、エキソソームの分析方法、エキソソーム分析装置、抗体－エキソソーム複合体、及びエキソソーム電気泳動チップに関する。
　本願は、２０１２年８月２４日に、日本に出願された特願２０１２－１８５６６６号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
エキソソームは、直径３０～１００ｎｍの小型脂質小胞であり、エンドソームと細胞膜との融合体として、腫瘍細胞、樹状細胞、Ｔ細胞、Ｂ細胞等、種々の細胞から、血液、尿、唾液等の体液中に分泌される。
　がん細胞等の異常細胞は、細胞膜に特有のタンパク質を発現している場合がある。エキソソームの膜表面は、分泌源の細胞由来のタンパク質を発現している。そのため、体液中のエキソソーム膜表面のタンパク質を分析することで分泌源の細胞の性質がわかり、バイオプシー検査をしなくとも生体内の異常を調べることができる検査技術が確立できる可能性がある。なお、バイオプシー検査とは、病変部位の組織を採取し顕微鏡等で病変部位を観察することによって、病気の診断等を調べる臨床検査をいう。
　このような期待に対して、エキソソームの膜表面に発現しているＣＤ６３を抗原とする抗体で修飾したビーズを用いて、ＣＤ６３陽性のエキソソームを捕捉し蛍光修飾抗体で標識し、フローサイトメトリーを用いて計測することにより、エキソソームの膜表面を分析する方法が提案されている（非特許文献１参照）。
Ｌａｓｓｅｒ　Ｃ.，ｅｔ．ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｓ．Ｅｘｐ．，（２０１２） ｖｏｌ．５９，ｅ３０３７．
　しかし、エキソソームの膜表面におけるＣＤ６３等の糖タンパク質の発現量は少ないため、非特許文献１に記載のエキソソームの分析方法は、多量のサンプルを用いて、複数粒子のエキソソームを抗体修飾ビーズに捕捉させなければ、エキソソームの膜表面における糖タンパク質の発現を検出できない。非特許文献１に記載のエキソソームの分析方法は、簡便かつ高感度にサンプル由来のエキソソームを分析するという点においては改良の余地がある。
　本発明は、上記事情に鑑みてなされ、高感度にエキソソームを分析できる、エキソソームの分析方法及びエキソソーム分析装置、抗体－エキソソーム複合体、並びに、エキソソーム電気泳動チップを提供することを目的とする。
　本発明者らは上記の課題を解決するため、鋭意研究を行った結果、エキソソームの膜表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体とエキソソームとからなる複合体のゼータ電位を計測することにより課題を解決できることを見出した。本発明の一実施態様は、下記（１）～（７）を提供する。
　（１）本発明の一実施態様におけるエキソソームの分析方法は、エキソソームの分析方法であって、
（ａ）試料からエキソソームを調製する工程と、
（ｂ）前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて第１の抗体－エキソソーム複合体を形成させる工程と、
（ｃ）前記第１の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する。
　（２）本発明の一実施態様におけるエキソソーム分析装置は、エキソソーム分析装置であって、
　試料からエキソソームを調製する調製手段と、
　前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて抗体－エキソソーム複合体を形成させる複合体形成手段と、
　前記抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
　を備える。
　（３）本発明の一実施態様における抗体－エキソソーム複合体は、抗体－エキソソーム複合体であって、
　試料から調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、からなり、
　電気泳動移動度によって算出される前記抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位が、前記エキソソームのゼータ電位と比較して正の電荷を有する。
　（４）本発明の一実施態様におけるエキソソーム電気泳動チップは、エキソソーム電気泳動チップであって
　試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させた、抗体－エキソソーム複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
　前記抗体－エキソソーム複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
　を備える。
　（５）本発明の一実施態様におけるエキソソームの分析方法は、エキソソームの分析方法であって、
（ａ）試料からエキソソームを調製する工程と、
（ｂ）前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる工程と、
（ｃ）前記複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する。
　（６）本発明の一実施態様におけるエキソソーム分析装置は、エキソソーム分析装置であって、
　試料からエキソソームを調製する調製手段と、
　前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる複合体形成手段と、
　前記複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
　を備える。
　（７）本発明の一実施態様におけるエキソソーム電気泳動チップは、エキソソーム電気泳動チップであって、
　試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させた、複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
　前記複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
　を備える。
　本発明によれば、高感度にエキソソームを分析できる。
本実施形態におけるエキソソーム分析装置の一態様の模式図である。 実施例１における抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位計測結果である。 実施例２におけるマイクロキャピラリー電気泳動を用いて、抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程を示す模式図である。 実施例２におけるマイクロキャピラリー電気泳動を用いた抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位計測結果である。
　以下、本発明の好ましい例を説明するが、本発明はこれら例に限定されることはない。本発明の趣旨を逸脱しない範囲で、構成の付加、省略、置換、およびその他の変更が可能である。
≪エキソソームの分析方法≫
　本実施形態のエキソソームの分析方法は、細胞の異常を検出するためのエキソソームの分析方法であって、
（ａ）検出対象の細胞が分泌したエキソソームを含有する試料から前記エキソソームを調製する工程と、
（ｂ）前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて第１の抗体－エキソソーム複合体を形成させる工程と、
（ｃ）前記第１の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する。
　エキソソームは、細胞の分泌物であり、その表面に分泌源の細胞由来のタンパク質を発現している。生体内に存在するがん細胞等の異常細胞は、その細胞膜に特有のタンパク質を発現している。
　そのため、エキソソームの表面に発現しているタンパク質を分析することで分泌源の細胞の異常を検出することができる。ここで、エキソソームの表面とは、細胞から分泌される膜小胞の膜表面であって、分泌されたエキソソームが生体内の環境と接する部分をいう。
　更に、エキソソームは、生体内で循環している血液中で検出されるため、エキソソームを分析することで、バイオプシー検査をしなくとも、生体内の異常を検出することができる。
　以下、各工程について説明する。
　工程（ａ）は、検出対象の細胞が分泌したエキソソームを含有する試料から前記エキソソームを調製する工程である。係る試料としては、検出対象の細胞をとりまく環境から得られる試料であって、前記細胞が分泌したエキソソームを含有する試料であれば特に限定されず、血液、尿、母乳、気管支肺胞洗浄液、羊水、悪性滲出液、唾液等の試料が挙げられる。血液又は尿は、エキソソームを検出しやすい。更に一例として、血液においては、エキソソームの検出のしやすさから、血漿が挙げられる。
　また、係る試料には、培養細胞が分泌したエキソソームを含有する細胞培養液も含まれる。
　検出対象の細胞としては、エキソソームを産生することが知られているがん細胞、肥満細胞、樹状細胞、網赤血球、上皮細胞、Ｂ細胞、神経細胞等が挙げられる。
　係る試料からエキソソームを調製する方法としては、超遠心分離、限外ろ過、連続フロー電気泳動、クロマトグラフィー等の方法が挙げられる。ろ過及びクロマトグラフィーの中では、サイズフィルターを用いたろ過方法やゲルろ過クロマトグラフィー法等の方法が挙げられる。
　工程（ｂ）は、前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて第１の抗体－エキソソーム複合体を形成させる工程である。
　工程（ｂ）において、接触とは、例えば、エキソソームの表面に存在するタンパク質と前記タンパク質を抗原とする抗体とが、抗原－抗体反応を起こすほどに、相互作用することを意味する。
　エキソソームを分泌する異常細胞は、その細胞表面に特有のタンパク質を発現しているか、又は、前記異常細胞において、特有のタンパク質の発現が欠損している。従って、正常細胞と比較して、発現パターンの異なるタンパク質を抗原とする抗体を用いることで、細胞の異常を検出できる。
　係る観点から、第１の抗体は、一例として、異常細胞又は正常細胞に高発現が認められるタンパク質を抗原とし、また、一例として、異常細胞特異的又は正常細胞特異的に発現が認められるタンパク質を抗原とする。
　例えば、正常の乳腺上皮細胞株において、ＣＤ１０、ＣＤ５／６、ＣＡＶ１、ＭＯＥＳＩＮ、ＥＴＳ１等のタンパク質が高発現している一方、乳がん細胞株においては、これらのタンパク質の発現が低下している旨の報告がなされている（Ｃｈａｒａｆｅ－Ｊａｕｆｆｒｅｔ Ｅ，ｅｔ．ａｌ．，Ｏｎｃｏｇｅｎｅ（２００６） ｖｏｌ．２５，ｐｐ２２７３－２２８４．）。一例として乳腺上皮細胞の異常を検出する場合、これらの抗体を第１抗体として用いる。
　第１の抗体が認識する抗原としては、エキソソームの表面に存在するタンパク質であれば特に限定されず、細胞内に存在するタンパク質の一部が表面に露呈されていてもよい。例えば、がん細胞において免疫細胞に攻撃される成分（以下、がん抗原という。）は、がん細胞の細胞質内でペプチドに分解され、がん細胞の細胞膜表面にクラスＩＭＨＣ分子と共にがん抗原ペプチドとして発現される。第１の抗体が認識する抗原は、係るがん抗原ペプチドであってもよい。
　第１の抗体がエキソソームとの複合体を形成しやすいという観点から、一例としてレセプター等の膜タンパク質を抗原とする。
　従って、乳腺上皮細胞の異常を検出する場合、一例として第１の抗体がＣＤ１０、ＣＤ５／６、ＣＤ４４等の膜タンパク質を抗原とする。
　また、第１の抗体は、複数種類の抗体からなるものであってもよく、前記複数種類の抗体は、同一の抗原の異なるエピトープを認識してもよい。係る抗体を用いることにより、特定の抗原を有するエキソソームの認識精度を高めることができる。
　また、複数種類の抗体は、異なる抗原を認識してもよい。例えば、乳がん細胞又は乳腺上皮正常細胞に高発現が認められる複数種類のタンパク質を抗原とする複数種類の抗体を用いることによって、乳腺上皮細胞の異常を検出する際の精度を高めることができる。
　また、第１の抗体は、がんに関連する抗体に限定されない。第１の抗体として、肥満、糖尿病、神経変性疾患等に関連する抗体を用いることにより、対象細胞におけるこれらの疾患に関連する異常を検出することができる。
　工程（ｃ）は、前記第１の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程である。なお、ゼータ電位とは、水溶液中に分散された粒子の表面の帯電の指標であり、厳密には、水溶液中に分散する粒子が電場を印加されて移動する際の「すべり面」の電位として定義される。電気泳動実験により計測できる粒子の移動度に対し、スモルコフスキー（Ｓｍｏｌｕｃｈｏｗｓｋｉ）の式等を適用することで求められる。エキソソームは負に帯電している一方、抗体は正に帯電しているため、第１の抗体とエキソソームとが複合体を形成する場合には、前記複合体のゼータ電位は、エキソソーム単独のゼータ電位と比較して正にシフトしている。
　従って、複合体のゼータ電位を計測することによって、エキソソームの膜表面における、第１抗体が認識するタンパク質の発現を検出でき、分泌源の細胞の異常を検出することができる。
　また、本実施形態の分析方法は、従来のエキソソームの分析方法と異なり、抗体で修飾したビーズを用いて、エキソソームを多数捕捉する必要が無い。そのため、本実施形態の分析方法によれば、細胞の異常を高感度にかつ簡便に検出できる。
　更に、工程（ｃ）は、一例として、前記第１の抗体－エキソソーム複合体を電気泳動により分離して、前記第１の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を１粒子レベルで計測する工程である。
　例えば、生体内を循環している血液からエキソソームを調製する場合、前記エキソソームは複数の臓器由来の複数種類の細胞から分泌される為、エキソソームの膜表面に存在するタンパク質の種類及び発現量は、粒子ごとに異なる。従って、係るエキソソームを詳細に分析するためには、一例として、電気泳動により１粒子レベルで分離して、分析する。１粒子のエキソソームに結合する抗体の分子数が多いほど、複合体は正に帯電し、電気泳動における複合体の移動速度は遅くなる。
　更に、工程（ｃ）は、一例として、光学的に測定した移動度に基づいて前記第１の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程を含む。
　例えば、電気泳動の際、例えば、波長４８８ｎｍ、強度５０ｍＷのレーザ光を抗体－エキソソーム複合体に照射して、レイリー散乱光による粒子画像を取得し、抗体－エキソソーム複合体の電気泳動度を測定する。複数種類の抗体－エキソソーム複合体を電気泳動により分離し、スモルコフスキー（Ｓｍｏｌｕｃｈｏｗｓｋｉ）の式：
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000001
 を用いて複合体の電気泳動移動度からゼータ電位を算出することで、試料中のエキソソームを１粒子レベルで分析することができる。
　がん幹細胞は、腫瘍組織形成の大本になる細胞であり、治療に対する抵抗性が高いことから、がんの再発・転移等の起源になると考えられている。一例として、治療によって大部分のがん細胞を除いても、ごく少数のがん幹細胞が生き残っていれば再発が起こりうることになり、これが、がんにおいてしばしば再発が起きる理由だと考えられている。従って、がん幹細胞を標的として除去することができれば、がんの転移や再発の防止にも有用な治療法の開発につながることが期待されている。
　乳がん、すい臓がん、胃がん、大腸がん等の固形がんにおいては、ＣＤ４４陽性のがん細胞は免疫不全マウスでの腫瘍形成能力が高く、ＣＤ４４陽性のがん細胞はがん幹細胞様の性質を有することが報告されている。
　従って、本実施形態によれば、生体内を循環している血液からエキソソームを調製し、第１の抗体としてＣＤ４４を抗原とする抗体を用い、抗ＣＤ４４抗体－エキソソーム複合体を電気泳動により分離して、抗ＣＤ４４抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を１粒子レベルで計測することにより、ＣＤ４４を高発現する微量の転移性乳がん細胞等を検出することができる。
　本実施形態のエキソソームの分析方法は、更に、前記工程（ｃ）の後、一例として、
（ｄ）前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの膜表面に存在するタンパク質を抗原とする第２の抗体と、を接触させて前記第２の抗体－エキソソーム複合体を形成させる工程と、
（ｅ）前記第２の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する。
　即ち、一例として、本実施形態のエキソソームの分析方法は、上述した第１の抗体を用いて、エキソソームとの複合体のゼータ電位を計測する工程とは別に、第１の抗体とは異なる第２の抗体を用いて、エキソソームとの複合体のゼータ電位を計測する工程を有する。
　以下、各工程について詳細に説明する。
　工程（ｄ）は、前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの膜表面に存在するタンパク質を抗原とする第２の抗体と、を接触させて前記第２の抗体－エキソソーム複合体を形成させる工程である。
　第２の抗体は、一例として、第１の抗体とは異なり、第１の抗体を用いることにより特定される検出細胞の性質とは異なる性質を特定できる。例えば、第１の抗体としてがん特異的に発現するタンパク質を抗原とするものを用いた場合、第２の抗体として臓器特異的に発現するタンパク質を抗原とするものを用いる。これにより、エキソソームの分泌源の細胞ががん細胞であるかどうかを特定できるだけではなく、エキソソームの分泌源の細胞が生体内のどの臓器由来であるかを特定できる。
　例えば、臓器特異的に発現しているタンパク質としては、ＰＳＡ、ＰＳＣＡ、ＰＳＭＡ等の前立腺がんマーカー；ＣＡ１５－３、ＢＣＡ２２５、ＨＥＲ２等の乳がんマーカー等が挙げられる。これを抗原とする抗体を第２の抗体として用いることにより、検出対象のがん細胞の癌腫を特定できる。
　工程（ｅ）は、前記第２の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程である。前記工程は、第１の抗体－エキソソーム複合体に代えて、第２の抗体－エキソソーム複合体を用いる以外は、前記工程（ｃ）と同様である。
　エキソソームを詳細に分析する観点から、工程（ｅ）も、一例として、前記第２の抗体－エキソソーム複合体を電気泳動により分離して、前記第２の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を１粒子レベルで計測する工程である。
　また、工程（ｅ）は、一例として、光学的に測定した移動度に基づいて前記第２の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程を含む。
　本実施形態のエキソソーム分析方法は、細胞の異常を検出するためのエキソソームの分析方法であって、
（ａ）試料からエキソソームを調製する工程と、
（ｂ）前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる工程と、
（ｃ）前記複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する。
　一例として、前記工程（ｃ）は、前記複合体を電気泳動により分離して、前記複合体のゼータ電位を１粒子レベルで計測する工程である。
≪エキソソーム分析装置≫
　本実施形態のエキソソーム分析装置は、細胞の異常を検出するためのエキソソーム分析装置であって、
　検出対象の細胞が分泌したエキソソームを含有する試料からエキソソームを調製する調製手段と、
　前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて抗体－エキソソーム複合体を形成させる複合体形成手段と、
前記抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
を備える。
　一例として、前記エキソソーム分析装置は、前記抗体－エキソソーム複合体を電気泳動により分離する電気泳動手段を含む。
　近年、体外診断分野における試験の高速化、高効率化、及び集積化、又は、検査機器の超小型化を目指したμ－ＴＡＳ（Ｍｉｃｒｏ－Ｔｏｔａｌ　Ａｎａｌｙｓｉｓ　Ｓｙｓｔｅｍｓ)の開発が進められている。
　μ－ＴＡＳとは、ＭＥＭＳ（Ｍｉｃｒｏ Ｅｌｅｃｔｒｏ　Ｍｅｃｈａｎｉｃａｌ　Ｓｙｓｔｅｍｓ）技術を用いて、チップ上に微小な流路、反応室、及び混合室を設け、一つのチップ上で生体分子を分析するマイクロ流体デバイスを意味する。μ－ＴＡＳは、少量の試料で測定、分析が可能なこと、持ち運びが可能となること、低コストで使い捨てが可能なこと等、従来の検査機器に比べて優れている。
　更に、μ－ＴＡＳは、高価な試薬を使用する場合や少量多検体を検査する場合において、有用性が高い方法として注目されている。
　従って、検出対象の細胞が分泌した微量のエキソソームを分析するため、本実施形態のエキソソーム分析装置は、一例として、マイクロ流体デバイスを少なくとも一部に有する。
　以下、図１を用いて、本実施形態のエキソソーム分析装置の一例について説明する。
　図１は、本実施形態のエキソソーム分析装置１の基本構成を示す模式図である。本実施形態のエキソソーム分析装置１は、血液検体からエキソソームを調製し、前記エキソソームの分析を介して、分泌源の細胞の異常を検出するための装置として用いられる。
　本実施形態のエキソソーム分析装置１は、液溜部４，７、駆動源２、バルブ９、及び精製装置１１からなる調製手段（調製部）２１と、液溜部３，７、駆動源２、バルブ８、及び合流部１３からなる複合体形成手段（複合体形成部）２０と、電気泳動槽１２からなる計測手段（計測部）２２と、から構成されている。
　図１に示すように、本実施形態のエキソソーム分析装置１は、駆動源２の下流に、液溜部３，４を有しており、液溜部３には、それぞれ、抗体、血液が溜められている。駆動源２の上流に位置する液溜部７には、駆動液が溜められている。更に、液溜部３，４の上流の流路には、流体の流れを制御するバルブ８，９が設けられている。
　先ず、バルブ９を開け、駆動源２によって、液溜部４に溜められている血液検体が押出され、押出された血液検体が精製装置１１を通る。精製装置１１は、血液から血漿のみを選り分けるフィルター部と、血漿中の成分をサイズで選り分けるゲルろ過カラムからなる。精製装置１１を通ったエキソソーム画分は、バルブが閉状態にある前記バルブ付きの合流部１３に溜められる。
　次いで、バルブ８を開け、駆動源２によって、液溜部３に溜められている抗体が押出され、合流部１３にて、エキソソームが抗体と接触し、抗体－エキソソームが形成される。
　次いで、合流部１３に付されたバルブを開け、抗体－エキソソームは電気泳動槽１２を通る。電気泳動槽１２は、図示略の電気泳動装置に接続されており、前記電気泳動装置によって、抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位が計測される。
　このように本実施形態のエキソソーム分析装置１によれば、生体内の微量のエキソソームを簡便かつ高感度に分析できる。
　本実施形態のエキソソーム分析装置は、細胞の異常を検出するためのエキソソーム分析装置であって、
　試料からエキソソームを調製する調製手段と、
　前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる複合体形成手段と、
　前記複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
　を備える。
　一例として、前記エキソソーム分析装置は、前記複合体を電気泳動により分離する電気泳動手段を含む。
≪抗体－エキソソーム複合体≫
　本実施形態の抗体－エキソソーム複合体は、細胞の異常を検出するための抗体－エキソソーム複合体であって、
　試料から調製されたエキソソームと、
　前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、からなり、
　電気泳動移動度によって算出される前記抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位が、前記エキソソームのゼータ電位と比較して正の電荷を有する。
　また、本実施形態の抗体－エキソソーム複合体は、一例として上述したゼータ電位計測に用いられる。
　更に、本実施形態の抗体－エキソソーム複合体の物性は、抗体―エキソソーム複合体のゼータ電位がエキソソーム単体のゼータ電位に比べて、一例として０．１ｍＶ以上、あるいは１ｍＶ以上、シフトしている。また、抗体―エキソソーム複合体のゼータ電位は、エキソソーム単体のゼータ電位に比べて、例えば、０．５、１、２、３、４、または５ｍＶ以上シフトしている。
　本実施形態の抗体－エキソソーム複合体は、上述した本実施形態のエキソソームの分析方法において説明されたものと同様であり、その説明を省略する。
≪エキソソーム電気泳動チップ≫
　本実施形態のエキソソーム電気泳動チップは、細胞の異常を検出するためのエキソソーム電気泳動チップであって
　試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させた、抗体－エキソソーム複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
　前記抗体－エキソソーム複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
　を備えたものである。
　前記エキソソーム電気泳動チップは、一例として電圧を前記流路に印加するための電極が入れられる２つの部分を備える。前記２つの部分は、２つのリザーバー内の任意の位置にそれぞれ１つずつ設けられる。また、前記エキソソーム電気泳動チップは、一例として電圧を前記流路に印加するための電極を備える。
　前記流路は、一例として、前記抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を算出するために光照射される部分を有する。また、一例として前記流路の少なくとも一部は、生体分子の非特異的吸着を抑制するために、ポリマーでコーティングされている。前記ポリマーの例としては、ＰＥＧ（ポリエチレングリコール）や、ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）などタンパク質の吸着ブロッキングで用いられるポリマー等が挙げられるが、特にタンパク質の非特異的吸着を抑制する観点からＭＰＣ（２－メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン）が好ましい。
　本実施形態のエキソソーム電気泳動チップは、細胞の異常を検出するためのエキソソーム電気泳動チップであって、
　試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させた、複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
　前記複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
　を備える。
　以下、実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
≪実施例１≫
［エキソソーム懸濁液の調製］
　ヒト乳腺上皮細胞ＭＣＦ１０Ａを、乳腺上皮細胞培地キット（Ｌｏｎｚａ社製）を用いて、コンフルエントに達するまで培養した。また、ヒト乳がん細胞ＭＤＡ－ＭＢ－２３１を、１０％ ウシ胎児血清（インビトロジェン社製)、１００ｕｎｉｔｓ／ｍＬペニシリン（インビトロジェン社製)、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン（インビトロジェン社製)、及び１００μｇ／ｍＬカナマイシン（インビトロジェン社製)含有ＲＰＭＩ培地（インビトロジェン社製) を用いて、コンフルエントに達するまで培養した。
　次いで、培地交換を行い、ＭＣＦ１０Ａ及びＭＤＡ－ＭＢ－２３１を、無血清培地（１００ｕｎｉｔｓ／ｍＬペニシリン（インビトロジェン社製)、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン（インビトロジェン社製)、及び１００μｇ／ｍＬカナマイシン（インビトロジェン社製)含有ＲＰＭＩ培地（インビトロジェン社製)）で、１日培養し、培養上清を回収した。
　この培養上清を、２０００×ｇで１５分間遠心分離して上清を回収し、回収した上清を１６８００×ｇで３５分間遠心分離して上清を回収し、更に回収した上清を１５１０００×ｇで７０分間遠心分離した。上清を廃棄して沈殿をＰＢＳで懸濁し、懸濁液を１５１０００×ｇで７０分間遠心分離した。更に、上清を廃棄して沈殿をＰＢＳで懸濁し、エキソソーム懸濁液を得た。
［抗体－エキソソーム複合体の形成］
　ＭＣＦ１０Ａ及びＭＤＡ－ＭＢ－２３１の培養上清から調製したエキソソーム懸濁液それぞれに、抗ヒトＣＤ１０抗体（日本ＢＤ社製、型番５５５７４６）懸濁液又はＩｓｏｔｙｐｅコントロール用マウスＩｇＧ１,κ抗体（日本ＢＤ社製、型番３４９０５０）懸濁液を加えてなる抗体－エキソソーム懸濁液を、４℃で３０分間撹拌して反応させ、抗体－エキソソーム複合体の形成を試みた。
［抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位計測］
　抗体－エキソソーム懸濁液７５０μＬをサンプルセルに入れ、ゼータ電位計測装置（マルバーン社製、商品名：Ｚｅｔａｓｉｚｅｒ Ｎａｎｏ）を用いて、２５℃、２０Ｖの条件下、ゼータ電位を計測した。尚、試験を３回連続で行った。計測結果を図２に示す。
　図２に示すように、ＭＣＦ１０Ａにおいて、抗ヒトＣＤ１０抗体－エキソソーム懸濁液は、Ｉｓｏｔｙｐｅコントロール用マウスＩｇＧ１,κ抗体－エキソソーム懸濁液と比較して、そのゼータ電位が上昇していることが確認された。
　このことから、Ｉｓｏｔｙｐｅコントロール用マウスＩｇＧ１,κ抗体－エキソソーム懸濁液においては、Ｉｓｏｔｙｐｅコントロール用マウスＩｇＧ１,κ抗体－エキソソーム複合体を形成していない一方、抗ヒトＣＤ１０抗体－エキソソーム懸濁液においては、抗ヒトＣＤ１０抗体－エキソソーム複合体を形成していることが確認された。
　一方、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１においては、Ｉｓｏｔｙｐｅコントロール用マウスＩｇＧ１,κ抗体－エキソソーム懸濁液及び抗ヒトＣＤ１０抗体－エキソソーム懸濁液のゼータ電位に差がないことから、どちらの懸濁液も複合体を形成していないことが確認された。
　ＣＤ１０は、正常細胞であるＭＣＦ１０Ａに高発現が認められ、がん細胞であるＭＤＡ－ＭＢ－２３１に発現が認められないことが報告されている（Ｃｈａｒａｆｅ－Ｊａｕｆｆｒｅｔ Ｅ，ｅｔ．ａｌ．，Ｏｎｃｏｇｅｎｅ（２００６） ｖｏｌ．２５，ｐｐ２２７３－２２８４．）。
　実施例１によれば、ある細胞で発現量が多いタンパク質を抗原とする抗体を用いて、抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を測定することにより、エキソソームの分泌源である細胞の存在を確認できる。すなわち、がん細胞特異的に発現するタンパク質又はがん細胞に高発現するタンパク質を抗原とする抗体を用いて、抗体－エキソソーム懸濁液のゼータ電位を測定することにより、エキソソームの分泌源の細胞の異常を検出し、生体内に存在するがんを簡便かつ高感度に検出できることが明らかである。
≪実施例２≫
［エキソソーム懸濁液の調製］
　実施例１と同様の方法にて、ヒト乳がん細胞ＭＤＡ－ＭＢ－２３１由来のエキソソーム懸濁液を調製した。
［抗体－エキソソーム複合体の形成］
　ＭＤＡ－ＭＢ－２３１の培養上清から調製したエキソソーム懸濁液それぞれに、抗ヒトＣＤ６３抗体（日本ＢＤ社製、型番５５６０１９）懸濁液又はＩｓｏｔｙｐｅコントロール用マウスＩｇＧ２ａ抗体（日本ＢＤ社製、型番５５５７４６）懸濁液を加えてなる抗体－エキソソーム懸濁液を、４℃で３０分間撹拌して反応させ、抗体－エキソソーム複合体の形成を試みた。また、ネガティブコントロールとして、抗体懸濁液を加えないエキソソーム懸濁液を同様の条件にて用意した。
［電気泳動チップによる抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位計測］
　図３右図に示すチップ電気泳動システムを用いて、抗体－エキソソーム懸濁液の電気泳動を行い、抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測した。詳細を以下に示す。
（ＰＤＭＳ（ポリジメチルシロキサン）電気泳動チップの作製）
　ＰＤＭＳ製電気泳動チップをソフトリソグラフィー法で作製した。電気泳動チップ内の流路のサイズは幅２００μｍ、高さ５０μｍ、長さ１０００μｍである。タンパク質の非特異吸着を抑制すべく、流路内壁をＭＰＣ（２－メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン）ポリマーでコーティングした。
（抗体－エキソソーム複合体を用いたマイクロキャピラリー電気泳動）
　作製したＰＤＭＳ製電気泳動チップの両端に備えられたリザーバーの一方に、抗体－エキソソーム懸濁液を加え、他方からシリンジで吸引して、エキソソーム懸濁液又は抗体－エキソソーム懸濁液を、電気泳動チップ内の流路内に導入した。両方のリザーバーにプラチナ電極を入れ、電界強度５０Ｖ／ｃｍで１０秒間電圧を印加して、電気泳動を行った。
　図３左図は、エキソソーム及び抗体－エキソソーム複合体それぞれの電気泳動の拡大図を示す。エキソソームは負に帯電する一方、抗体は正に帯電するため、抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位は、エキソソーム単独のゼータ電位と比較して正の電荷を有している。従って、抗体－エキソソーム複合体の泳動度は、エキソソームの泳動度より小さいものとなる。
　更に、電気泳動チップの下側方から波長４８８ｎｍ、強度５０ｍＷのレーザ光を照射し、出射光であるエキソソーム由来の散乱光を、電気泳動チップ下方にある対物レンズ（倍率ｘ６０）で集光した。
　次いで、Ａｎｄｏｒ社製の高感度カメラＥＭＣＣＤ ｉＸｏｎ３を用いて、エキソソーム及び抗体－エキソソーム複合体それぞれの像を取得し、エキソソーム及び抗体－エキソソーム複合体それぞれの移動速度を電界強度で除して、電気泳動移動度を算出した。また、無電荷ビーズの電気泳動度を測定して、流路内の電気浸透流の電気泳動移動度を算出し、エキソソーム及び抗体－エキソソーム複合体それぞれの電気泳動移動度から無電荷ビーズの電気泳動移動度を差し引いて、エキソソーム及び抗体－エキソソーム複合体それぞれの真の電気泳動移動度を算出した。
　次いで、スモルコフスキー（Ｓｍｏｌｕｃｈｏｗｓｋｉ）の式を用いてエキソソーム及び抗体－エキソソーム複合体それぞれの真の電気泳動移動度からゼータ電位を算出した。
結果を図３及び表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　図４左は、エキソソーム懸濁液におけるゼータ電位の分布を示す。横軸は、ゼータ電位を示し、縦軸は、エキソソームの数を示す。合計１１０個のエキソソームのゼータ電位が計測された。表１に示すように、エキソソーム懸濁液におけるゼータ電位の平均値は、－９．９４±２．４４ｍＶであった。また、コントロール用マウスＩｇＧ２ａ抗体－エキソソーム懸濁液におけるゼータ電位の平均値は、－７．５２±１．４８ｍＶであり、エキソソーム懸濁液におけるゼータ電位の平均値と近い値を示した。
　図４右は、抗ヒトＣＤ６３抗体－エキソソーム懸濁液におけるゼータ電位の分布を示す。横軸は、ゼータ電位を示し、縦軸は、エキソソームの数を示す。合計３２個のエキソソームのゼータ電位が計測された。表１に示すように、抗ヒトＣＤ６３抗体－エキソソーム懸濁液におけるゼータ電位の平均値は、－２．８８±３．８７ｍＶであり、エキソソーム懸濁液及びコントロール用マウスＩｇＧ２ａ抗体－エキソソーム懸濁液と比較して、そのゼータ電位が上昇していることが確認された。
　このことから、Ｉｓｏｔｙｐｅコントロール用マウスＩｇＧ２ａ抗体－エキソソーム懸濁液においては、Ｉｓｏｔｙｐｅコントロール用マウスＩｇＧ２ａ抗体－エキソソーム複合体を形成していない一方、抗ヒトＣＤ６３抗体－エキソソーム懸濁液においては、抗ヒトＣＤ６３抗体－エキソソーム複合体を形成していることが確認された。
　図４右に示すように、電気泳動チップを用いることにより、抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位の平均値だけでなく、抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を１粒子レベルで計測することができる。そのため、ゼータ電位の平均値からは、抗体が認識する抗原を有するエキソソームが試料中に存在しないように思われる場合であっても、電気泳動チップによって、マイナーポピュレーションとして存在する前記抗原を有するエキソソームを検出することができる。
　即ち、実施例２によれば、例えば、生体内に微量に存在する悪性度の高いがん細胞を高感度に検出し、がんの浸潤・転移を早期に発見できることが明らかである。
　更に、実施例１及び実施例２の結果から、例えば、先ず、第１の抗体としてがん細胞特異的に発現するタンパク質を抗原とする抗体を用いて、第１の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測し、次いで、第２の抗体として臓器特異的に発現するタンパク質を抗原とする抗体を用いて、第２の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測することにより、検出対象の細胞がどの臓器由来のがん細胞であるかを特定できる。また、がん細胞に限らず、用いる抗体の組合せを変えることにより、生体内における細胞の異常を詳細に特定することができる。
　以上の結果から、本実施形態によれば、簡便かつ高感度にエキソソームを詳細に分析できることが明らかである。
　本発明は、簡便かつ高感度にエキソソームを分析できる、エキソソームの分析方法及びエキソソーム分析装置を提供することができる。
　１　　エキソソーム分析装置
　２　　駆動源
　３，４，７　液溜部
　８，９　バルブ
　１１　精製装置
　１２　電気泳動槽
　１３　合流部
　２０　複合体形成手段
　２１　調製手段
　２２　計測手段

Claims (23)

  1. 　エキソソームの分析方法であって、
    （ａ）試料からエキソソームを調製する工程と、
    （ｂ）前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて第１の抗体－エキソソーム複合体を形成させる工程と、
    （ｃ）前記第１の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、
    を有するエキソソームの分析方法。
  2. 　前記工程（ｃ）は、前記第１の抗体－エキソソーム複合体を電気泳動により分離して、前記第１の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を１粒子レベルで計測する工程である請求項１に記載のエキソソームの分析方法。
  3. 　前記工程（ｃ）は、光学的に測定した移動度に基づいて前記第１の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程を含む請求項２に記載のエキソソームの分析方法。
  4. 　前記第１の抗体は、異常細胞又は正常細胞に高発現が認められるタンパク質を抗原とする請求項１～３のいずれか一項に記載のエキソソームの分析方法。
  5. 　前記第１の抗体は、異常細胞特異的又は正常細胞特異的に発現が認められるタンパク質を抗原とする請求項１～４のいずれか一項に記載のエキソソームの分析方法。
  6. 　前記第１の抗体は、複数種類の抗体からなる請求項１～５のいずれか一項に記載のエキソソームの分析方法。
  7. 　前記工程（ｃ）の後、
    （ｄ）前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする第２の抗体と、を接触させて第２の抗体－エキソソーム複合体を形成させる工程と、
    （ｅ）前記第２の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、
    を有する請求項１～６のいずれか一項に記載のエキソソームの分析方法。
  8. 　前記工程（ｅ）は、前記第２の抗体－エキソソーム複合体を電気泳動により分離して、前記第２の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を１粒子レベルで計測する工程である請求項７に記載のエキソソームの分析方法。
  9. 　前記工程（ｅ）は、光学的に測定した移動度に基づいて前記第２の抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程を含む請求項８に記載のエキソソームの分析方法。
  10. 　前記第２の抗体は、臓器特異的に高発現が認められるタンパク質を抗原とする請求項７～９のいずれか一項に記載のエキソソームの分析方法。
  11. 　エキソソーム分析装置であって、
    　試料からエキソソームを調製する調製手段と、
    　前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて抗体－エキソソーム複合体を形成させる複合体形成手段と、
    　前記抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
    　を備えたエキソソーム分析装置。
  12. 　前記抗体－エキソソーム複合体を電気泳動により分離する電気泳動手段を含む請求項１１に記載のエキソソーム分析装置。
  13. 　抗体－エキソソーム複合体であって、
    　試料から調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、からなり、
    　電気泳動移動度によって算出される前記抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位が、前記エキソソームのゼータ電位と比較して正の電荷を有する抗体－エキソソーム複合体。
  14. 　エキソソーム電気泳動チップであって
    　試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させた、抗体－エキソソーム複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
    　前記抗体－エキソソーム複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
    　を備えたエキソソーム電気泳動チップ。
  15. 　電圧を前記流路に印加するための電極が入れられる２つの部分を備える請求項１４に記載のエキソソーム電気泳動チップ。
  16. 　電圧を前記流路に印加するための電極を備える請求項１４又は１５に記載のエキソソーム電気泳動チップ。
  17. 　前記流路は、前記抗体－エキソソーム複合体のゼータ電位を算出するために光照射される部分を有する請求項１４～１６のいずれか一項に記載のエキソソーム電気泳動チップ。
  18. 　前記流路の少なくとも一部は、生体分子の非特異的吸着を抑制するために、ポリマーでコーティングされている請求項１４～１７のいずれか一項に記載のエキソソーム電気泳動チップ。
  19. 　エキソソームの分析方法であって、
    （ａ）試料からエキソソームを調製する工程と、
    （ｂ）前記工程（ａ）で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる工程と、
    （ｃ）前記複合体のゼータ電位を計測する工程と、
    を有するエキソソームの分析方法。
  20. 　前記工程（ｃ）は、前記複合体を電気泳動により分離して、前記複合体のゼータ電位を１粒子レベルで計測する工程である請求項１９に記載のエキソソームの分析方法。
  21. 　エキソソーム分析装置であって、
    　試料からエキソソームを調製する調製手段と、
    　前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる複合体形成手段と、
    　前記複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
    　を備えたエキソソーム分析装置。
  22. 　前記複合体を電気泳動により分離する電気泳動手段を含む請求項２１に記載のエキソソーム分析装置。
  23. 　エキソソーム電気泳動チップであって、
    　試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させた、複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
    　前記複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
    　を備えたエキソソーム電気泳動チップ。
PCT/JP2013/071967 2012-08-24 2013-08-15 エキソソームの分析方法、エキソソーム分析装置、抗体－エキソソーム複合体、及びエキソソーム電気泳動チップ WO2014030590A1 (ja)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2014531606A JP6230027B2 (ja) 2012-08-24 2013-08-15 エキソソームの分析方法、エキソソーム分析装置、抗体−エキソソーム複合体、及びエキソソーム電気泳動チップ
EP13831760.7A EP2889623B1 (en) 2012-08-24 2013-08-15 Exosome analysis method, exosome analysis apparatus, and use of exosome electrophoresis chip
US14/629,028 US9952215B2 (en) 2012-08-24 2015-02-23 Exosome analysis method, exosome analysis apparatus, antibody-exosome complex, and exosome electrophoresis chip

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2012-185666 2012-08-24
JP2012185666 2012-08-24

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
US14/629,028 Continuation US9952215B2 (en) 2012-08-24 2015-02-23 Exosome analysis method, exosome analysis apparatus, antibody-exosome complex, and exosome electrophoresis chip

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2014030590A1 true WO2014030590A1 (ja) 2014-02-27

Family

ID=50149899

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2013/071967 WO2014030590A1 (ja) 2012-08-24 2013-08-15 エキソソームの分析方法、エキソソーム分析装置、抗体－エキソソーム複合体、及びエキソソーム電気泳動チップ

Country Status (4)

Country Link
US (1) US9952215B2 (ja)
EP (1) EP2889623B1 (ja)
JP (1) JP6230027B2 (ja)
WO (1) WO2014030590A1 (ja)

Cited By (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2015163194A1 (ja) * 2014-04-25 2015-10-29 国立大学法人東京大学 細胞外小胞体分析チップ、細胞外小胞体分析方法、細胞外小胞体分析装置
JP2016024021A (ja) * 2014-07-18 2016-02-08 国立大学法人 東京大学 電気泳動分析チップおよび電気泳動分析装置
WO2016031980A1 (ja) * 2014-08-28 2016-03-03 国立大学法人東京大学 電気泳動デバイス、電気泳動デバイス製造方法および細胞外小胞体分離装置
WO2016063912A1 (ja) * 2014-10-24 2016-04-28 国立大学法人東京大学 粒子検出方法、粒子検出装置および粒子検出システム
WO2016125243A1 (ja) * 2015-02-03 2016-08-11 株式会社日立製作所 エクソソーム測定方法及びエクソソーム抽出方法
WO2016171198A1 (ja) * 2015-04-21 2016-10-27 国立大学法人東京大学 微粒子検出システム及び微粒子検出プログラム
WO2018159264A1 (ja) * 2017-02-28 2018-09-07 国立大学法人東京大学 電気泳動分析チップおよび電気泳動分析装置
WO2019168184A1 (ja) * 2018-03-02 2019-09-06 公益財団法人川崎市産業振興財団 細胞外小胞の集団、及びその製造方法
WO2020045342A1 (ja) * 2018-08-28 2020-03-05 国立大学法人東京大学 前処理試薬、並びに、ナノ粒子の分析及び回収方法
WO2022124288A1 (ja) * 2020-12-07 2022-06-16 大日本塗料株式会社 粒状物質をイムノクロマトグラフィー法によって検出する方法及びそのためのキット
CN115887758A (zh) * 2022-11-15 2023-04-04 西南交通大学 负载外泌体促进糖尿病创面修复的共聚水凝胶
WO2024014502A1 (ja) * 2022-07-15 2024-01-18 住友化学株式会社 細胞外小胞に対して結合性を有する抗体の製造方法

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11243215B2 (en) 2016-01-14 2022-02-08 The Regents Of The University Of California 3D-exoquant method for the analysis of surface molecules and quantification of tissue-specific exosomes in biological fluids
US10914748B2 (en) 2016-09-08 2021-02-09 UNIVERSITé LAVAL Erythrocyte-derived extracellular vesicles as a biomarker for clinically assessing Parkinson's disease
WO2018075825A1 (en) * 2016-10-19 2018-04-26 Northwestern University Extracellular vesicle-based diagnostics and engineered exosomes for targeted therapeutics against cancer
KR102107844B1 (ko) 2017-07-26 2020-05-07 ㈜로제타엑소좀 양이온을 이용한 세포밖 소포체의 분리 방법
US20210262931A1 (en) * 2018-06-21 2021-08-26 Codiak Biosciences, Inc. Methods of measuring extracellular vesicles and nanoparticles in complex matrices by light scattering

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2924815B2 (ja) * 1996-09-27 1999-07-26 日本電気株式会社 ゼータ電位測定装置
JP2003066005A (ja) * 2001-08-23 2003-03-05 Kikuchi Jun 細胞の電気泳動方法及び装置
JP2010537158A (ja) * 2007-08-16 2010-12-02 ザ ロイヤル インスティチューション フォー ザ アドバンスメント オブ ラーニング／マギル ユニバーシティ 腫瘍細胞由来微小胞
JP2011510309A (ja) * 2008-01-25 2011-03-31 ハンサビオメド・オサウヒング ヒト体液中の微小胞を測定し、特徴付けるための新規な方法
JP2011106915A (ja) * 2009-11-16 2011-06-02 Toyo Univ ゼータ電位測定装置及びゼータ電位測定方法
US20120070858A1 (en) * 2009-04-23 2012-03-22 Lionel Fernel Gamarra Contreras Method for isolating exosomes from biological solutions using iron oxide nanoparticles

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH06265551A (ja) * 1993-03-11 1994-09-22 Hoechst Japan Ltd ゼータ電位を用いた免疫学的測定方法及び免疫学的測定用キット
EP0642021B1 (en) * 1993-09-07 2000-11-02 Wako Pure Chemical Industries Ltd Process for measuring complement activity and reagent used therefor
US20100255514A1 (en) 2007-08-16 2010-10-07 The Royal Institution For The Advancement Of Learning/Mcgill University Tumor cell-derived microvesicles
US20100332183A1 (en) * 2008-01-17 2010-12-30 Robert Nooney Dye-doped nanoparticles, a method of manufacture of the same, and a method of determining a percentage weight of a dye which yields a required relative fluorescent intensity from a dye-doped nanoparticle
WO2010109920A1 (ja) * 2009-03-27 2010-09-30 旭化成メディカル株式会社 高濃度モノクローナル抗体溶液中のウイルス除去方法

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2924815B2 (ja) * 1996-09-27 1999-07-26 日本電気株式会社 ゼータ電位測定装置
JP2003066005A (ja) * 2001-08-23 2003-03-05 Kikuchi Jun 細胞の電気泳動方法及び装置
JP2010537158A (ja) * 2007-08-16 2010-12-02 ザ ロイヤル インスティチューション フォー ザ アドバンスメント オブ ラーニング／マギル ユニバーシティ 腫瘍細胞由来微小胞
JP2011510309A (ja) * 2008-01-25 2011-03-31 ハンサビオメド・オサウヒング ヒト体液中の微小胞を測定し、特徴付けるための新規な方法
US20120070858A1 (en) * 2009-04-23 2012-03-22 Lionel Fernel Gamarra Contreras Method for isolating exosomes from biological solutions using iron oxide nanoparticles
JP2011106915A (ja) * 2009-11-16 2011-06-02 Toyo Univ ゼータ電位測定装置及びゼータ電位測定方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHARAFE-JAUFFRET E ET AL., ONCOGENE, vol. 25, 2006, pages 2273 - 2284
LASSER C. ET AL., J. VIS. EXP., vol. 59, 2012, pages E3037
See also references of EP2889623A4

Cited By (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPWO2015163194A1 (ja) * 2014-04-25 2017-04-13 国立大学法人 東京大学 細胞外小胞体分析チップ、細胞外小胞体分析方法、細胞外小胞体分析装置
WO2015163194A1 (ja) * 2014-04-25 2015-10-29 国立大学法人東京大学 細胞外小胞体分析チップ、細胞外小胞体分析方法、細胞外小胞体分析装置
JP2016024021A (ja) * 2014-07-18 2016-02-08 国立大学法人 東京大学 電気泳動分析チップおよび電気泳動分析装置
WO2016031980A1 (ja) * 2014-08-28 2016-03-03 国立大学法人東京大学 電気泳動デバイス、電気泳動デバイス製造方法および細胞外小胞体分離装置
US10429345B2 (en) 2014-08-28 2019-10-01 The University Of Tokyo Electrophoresis device, method for manufacturing electrophoresis device, and device for separating extracellular vesicles
JPWO2016031980A1 (ja) * 2014-08-28 2017-06-15 国立大学法人 東京大学 電気泳動デバイス、電気泳動デバイス製造方法および細胞外小胞体分離装置
US10113948B2 (en) 2014-10-24 2018-10-30 The University Of Tokyo Particle detection method, particle detection device and particle detection system
JPWO2016063912A1 (ja) * 2014-10-24 2017-08-03 国立大学法人 東京大学 粒子検出方法、粒子検出装置および粒子検出システム
WO2016063912A1 (ja) * 2014-10-24 2016-04-28 国立大学法人東京大学 粒子検出方法、粒子検出装置および粒子検出システム
WO2016125243A1 (ja) * 2015-02-03 2016-08-11 株式会社日立製作所 エクソソーム測定方法及びエクソソーム抽出方法
US10295454B2 (en) 2015-04-21 2019-05-21 The University Of Tokyo Nikon Corporation Microparticle detection system and microparticle detection program
JPWO2016171198A1 (ja) * 2015-04-21 2018-03-22 国立大学法人 東京大学 微粒子検出システム及び微粒子検出プログラム
WO2016171198A1 (ja) * 2015-04-21 2016-10-27 国立大学法人東京大学 微粒子検出システム及び微粒子検出プログラム
JP2018141760A (ja) * 2017-02-28 2018-09-13 国立大学法人 東京大学 電気泳動分析チップおよび電気泳動分析装置
WO2018159264A1 (ja) * 2017-02-28 2018-09-07 国立大学法人東京大学 電気泳動分析チップおよび電気泳動分析装置
WO2019168184A1 (ja) * 2018-03-02 2019-09-06 公益財団法人川崎市産業振興財団 細胞外小胞の集団、及びその製造方法
JPWO2019168184A1 (ja) * 2018-03-02 2021-02-12 公益財団法人川崎市産業振興財団 細胞外小胞の集団、及びその製造方法
JP7296937B2 (ja) 2018-03-02 2023-06-23 公益財団法人川崎市産業振興財団 細胞外小胞の集団の製造方法
WO2020045342A1 (ja) * 2018-08-28 2020-03-05 国立大学法人東京大学 前処理試薬、並びに、ナノ粒子の分析及び回収方法
WO2022124288A1 (ja) * 2020-12-07 2022-06-16 大日本塗料株式会社 粒状物質をイムノクロマトグラフィー法によって検出する方法及びそのためのキット
JP2022090191A (ja) * 2020-12-07 2022-06-17 大日本塗料株式会社 粒状物質をイムノクロマトグラフィー法によって検出する方法及びそのためのキット
JP7451385B2 (ja) 2020-12-07 2024-03-18 大日本塗料株式会社 粒状物質をイムノクロマトグラフィー法によって検出する方法及びそのためのキット
WO2024014502A1 (ja) * 2022-07-15 2024-01-18 住友化学株式会社 細胞外小胞に対して結合性を有する抗体の製造方法
CN115887758A (zh) * 2022-11-15 2023-04-04 西南交通大学 负载外泌体促进糖尿病创面修复的共聚水凝胶
CN115887758B (zh) * 2022-11-15 2024-01-26 西南交通大学 负载外泌体促进糖尿病创面修复的共聚水凝胶

Also Published As

Publication number Publication date
EP2889623A1 (en) 2015-07-01
EP2889623B1 (en) 2017-10-04
US9952215B2 (en) 2018-04-24
EP2889623A4 (en) 2016-07-06
JP6230027B2 (ja) 2017-11-15
US20150168400A1 (en) 2015-06-18
JPWO2014030590A1 (ja) 2016-07-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6230027B2 (ja) エキソソームの分析方法、エキソソーム分析装置、抗体−エキソソーム複合体、及びエキソソーム電気泳動チップ
Wang et al. Towards microfluidic-based exosome isolation and detection for tumor therapy
Wang et al. Recent progress in isolation and detection of extracellular vesicles for cancer diagnostics
US9733250B2 (en) Device for capturing circulating cells
Low et al. Benchtop technologies for circulating tumor cells separation based on biophysical properties
Sunkara et al. Emerging techniques in the isolation and characterization of extracellular vesicles and their roles in cancer diagnostics and prognostics
JP6025982B2 (ja) 粒子および細胞の高効率分離およびマニピュレーション
EP2542888B1 (en) Method and kit for isolating target cell
JP2020531863A (ja) 粒子分離システムおよび方法
Hao et al. Microfluidic screening of circulating tumor biomarkers toward liquid biopsy
WO2015029979A1 (ja) エキソソームの分析方法、エキソソーム分析チップ、及びエキソソーム分析装置
JP6781989B2 (ja) 微粒子検出システム及び微粒子検出プログラム
WO2019196270A1 (zh) 微纳粒子检测系统及方法
JP6639906B2 (ja) 生物試料検出方法
Bano et al. A perspective on the isolation and characterization of extracellular vesicles from different biofluids
Wu et al. Microfluidic technology for the isolation and analysis of exosomes
JP6936984B2 (ja) 希少細胞を用いて癌患者の予後を予測する方法
Kumar et al. Recent advances in microfluidic approaches for the isolation and detection of exosomes
Kang et al. Epithelial and mesenchymal circulating tumor cell isolation and discrimination using dual-immunopatterned device with newly-developed anti-63B6 and anti-EpCAM
Kwak et al. Electrokinetically enhanced label-free plasmonic sensing for rapid detection of tumor-derived extracellular vesicles
US20190369046A1 (en) Electrophoretic analysis chip and electrophoretic analysis apparatus
JP2017129425A (ja) 抗癌剤の評価方法
WO2015163194A1 (ja) 細胞外小胞体分析チップ、細胞外小胞体分析方法、細胞外小胞体分析装置
WO2016031980A1 (ja) 電気泳動デバイス、電気泳動デバイス製造方法および細胞外小胞体分離装置
WO2018063999A1 (en) Detection of target analytes at picomolar concentrations

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 13831760

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2014531606

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

REEP Request for entry into the european phase

Ref document number: 2013831760

Country of ref document: EP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2013831760

Country of ref document: EP