WO2010050178A1

WO2010050178A1 - トレハロース化合物、その製造方法、及び該化合物を含有する医薬

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Publication number: WO2010050178A1
Application number: PCT/JP2009/005650
Authority: WO
Inventors: 西沢麦夫; 今川洋; 山本博文; 櫻井純; 小田真隆
Original assignee: 大塚化学株式会社
Priority date: 2008-10-31
Filing date: 2009-10-27
Publication date: 2010-05-06
Also published as: TW201016221A; EP2351764A4; JP5552056B2; US8741871B2; US20110218171A1; KR20110082584A; CN102203110A; EP2351764A1; EP2567963A1; EP2351764A8; US20140248317A1; JPWO2010050178A1

Abstract

【課題】本発明は、免疫賦活活性が高く、毒性の低いトレハロース化合物を提供することを目的とする。【解決手段】本発明のトレハロース化合物は、以下の式（１）［式中、ＸおよびＸ’は、フェニル、ナフチル、または、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－等を示し、Ｒ _１およびＲ_２は各々Ｃ_７－Ｃ_２１アルキル基等を示し、ｎ及びｎ’は、それぞれ独立に、０から３の整数を示す。］で表される。本発明の化合物は、マクロファージ、好中球に対し高い活性化作用を示す。

Description

トレハロース化合物、その製造方法、及び該化合物を含有する医薬

　本発明は、トレハロース化合物、その製造方法、及び該化合物を含有する医薬に関する。

　感染症として、細菌、ウィルス、真菌による感染症など種々のものが知られている。細菌による感染症に対する治療法としては、抗生物質の投与が行われているが、抗生物質に対する耐性菌の出現が問題となり、また、耐性菌が院内感染する問題も生じている。さらに、ＨＩＶ感染や、抗癌剤治療、老人・子供等の免疫力低下状況における感染症として、日和見感染症が生じる問題もある。

　さらに、Ｏ－１５７などの病原性大腸菌や志賀赤痢菌による感染の場合には、体内でベロ毒素が産生され、特に抵抗力の弱い老人や子供では、溶血性尿毒症症候群を併発するなど重篤な症状を呈することがある。このような感染症に対しては、抗生物質の投与が行われる場合もあるが、抗生物質を投与して細菌が死滅し、細菌内部の毒素が一度に菌外部へ放出されることによって、かえって状態が悪化する危険性があることが指摘されている。しかしながら、一方で、Ｏ－１５７のように、数百から数千個の細菌を摂取するだけで発症するような伝染性の強い感染症の場合には、二次感染を予防するためにも、抗生物質の投与を選択せざるを得ない場面も生じている。その他の治療方法として、Ｏ－１５７では約１０％のケースで溶血性尿毒症症候群を併発することがあるとされ、この場合には、血漿交換や透析療法などが行われるが、いずれも患者に負担の大きい治療方法であるといえる。

　また、細菌の産生する毒素への対処方法としては、対症療法が優先であり、その他の方法としては、毒素吸着剤の使用や毒素に対する抗体の使用等が挙げられるが、活性炭などによる吸着の方法では便秘になるなどの副作用もあり、また、抗体の使用については、各毒素に対して抗体を開発しなければならない点で不便である。

　そこで、このような病原菌による感染症に対する治療ないし発症抑制方法が模索されており、最近では、抗生物質の投与ではなく、患者自身の免疫力を高めることによって、感染症を治療ないし予防する試みもなされている。

　患者の免疫力を高める物質としては、種々の化合物が模索されているが、天然物由来成分の一例として、トレハロースのジエステル化合物である、トレハロースジミコレート（ＴＤＭ）とトレハロースジコリノミコレート（ＴＤＣＭ）が知られている。ＴＤＭは結核菌（Mycobacterium tuberculosis）の細胞表層に存在する糖脂質として見出され、免疫賦活活性および抗癌活性を示すことが知られている。また、同族のジフテリア菌（Corynebacterium spp）から、ＴＤＭより炭素数の短い同族体であるＴＤＣＭが単離され、ＴＤＣＭとその立体異性体が、それぞれ免疫賦活活性及び抗癌活性を示すことが明らかにされている。

　しかしながら、ＴＤＭ及びＴＤＣＭは毒性が強く、医薬として用いることができない。したがって、医薬として用いるためには、活性を維持ないし増強しつつ、毒性を低下させた化合物を合成することが必要であった。

　そこで、ＴＤＭ誘導体として、トレハロースと脂肪酸のエステルである、トレハロース６，６'位－ジエステル化合物が合成され、毒性試験やマクロファージ賦活作用等の試験がなされた（非特許文献１を参照）。当該文献においてはβ水酸基の有無や、脂質のアルキル部分の長さが炭素数３０，３２，４８の化合物、糖と脂質の間のエステル結合をアミド結合に代えた化合物などについて検討され、毒性の面においては、エステル結合と長鎖脂肪酸とが毒性に重要な寄与をしているものと考察された。しかしながら、当該文献には、側鎖脂肪酸部分の炭素数が３０の化合物なども記載されているものの、糖と側鎖の結合様式や、側鎖脂肪酸に対する置換基の有無、側鎖脂肪酸を構成するアルキル基の長さなどについて、活性が高く毒性が低い化合物を得るために網羅的に検討して最適化がなされたわけではない。ただ、上記したようないくつかの化合物に関して散発的に試験がなされたものである。また、免疫賦活作用に関しても、その内容が詳細に検討されたものでもない。

　一方で、本発明者らは、ＴＤＭ誘導体に関して、エステル結合またはアミド結合を有し、β位水酸基を水素原子やメトキシ基に変更した誘導体等を合成した（特許文献１を参照）。しかしながら、当該文献記載の誘導体は、脂肪酸のアルキル部分が炭素原子７個程度の比較的短いものであり、また、活性としても、アデノシンＡ３受容体アンタゴニストとしての活性を測定したにすぎない。

　そこで、本発明者らは、ＴＤＣＭの水酸基を水素原子に変え、不斉炭素でなくするとともに、エステル結合をアミド結合に変えたＴＤＣＭのアミド誘導体を合成することに成功し、これらのアミド誘導体の免疫賦活作用を確認した（特許文献２を参照）。しかしながら、これらのアミド誘導体は、癌を誘発する作用があることが後に判明し、医薬化合物として用いることは断念せざるを得ないものであった。

　よって、ＴＤＭないしＴＤＣＭ誘導体として、病原菌に由来する諸症状に対し、いまだ十分有効でありながら安全性の高い治療ないし発症抑制方法は確立されておらず、有効かつ安全な治療ないし発症抑制方法の確立が望まれている。

国際公開第２００７／１１１２１４号パンフレット国際公開第２００８／０９３７００号パンフレット

Numata et al., Chem.Pharm.Bull.(1985),33(10),4544-4555

　ＴＤＭ，ＴＤＣＭの誘導体を合成する場合、ＴＤＭ，ＴＤＣＭそれ自体は毒性の強いものであるため、活性を有し、かつ、毒性の低い化合物を合成することが必要となる。従来技術としては、ＴＤＭまたはＴＤＣＭの改変体もいくつか知られてはいたが、ＴＤＭ及びＴＤＣＭが糖脂質であり、糖鎖は水酸基が多く極性も高く、合成において困難性を伴うこともあり、どの構造がどのような活性に結びつくのか、という構造活性相関は、いまだ明らかにされたとはいえなかった。

　そこで、本発明は、ＴＤＭ及びＴＤＣＭの誘導体を数多く製造し、活性が高く毒性の低い化合物、及び、当該化合物を含有する医薬を提供することを目的とする。

　また、従来技術としての病原菌に対する抗生物質の使用は、大腸菌の成長を阻害し、大腸菌を死滅させるなどして、大腸菌に毒素を放出させないようにすることを目的としたものであって、産生された毒素自体に対して無毒化することはできないものであるところ、本発明は、細菌が増殖して毒素を産生する状態に至った場合にも、毒素の毒性を低減させることが可能な医薬を提供することを目的とする。

　本発明者らは、式（１）で表されるトレハロースジエステル化合物が、病原菌による感染症に対して優れた抗菌活性を示し、かつ、低毒性であることを見出した。また、式（１）で表されるトレハロースジエステル化合物のうち、Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－であり、Ｘ’が、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－である化合物であって、脂質部分の分岐の形状として、特にｎ及びｎ’が０である化合物（以下、α－分岐型化合物、という。）、及び、特にｎ及びｎ’が１である化合物（以下、β－分岐型化合物、という。）が特に優れたものであることを見出した。さらに、式（１）で表されるトレハロースジエステル化合物のうち、式（１）におけるＲ_１、Ｒ_２、Ｒ_１’またはＲ_２’で示されるアルキル鎖部分において、炭素数が１０及び１４などの特定の長さの場合に活性が極大化する傾向にあることを見出した。さらに、トレハロースジエステル化合物に関して、前記文献等においても、菌の産生する毒素自体を投与した場合においても抗菌剤として有用であることはこれまで知られていなかったところ、本発明者らは、マウスのｉｎ　ｖｉｖｏ試験において、菌を投与された場合のみならず、菌から産生される毒素自体を投与された場合にも有効であることを見出した。

　本発明は、以下の式（１）：

　　　　　　（式１）
［式中、
　Ｘは、フェニル、ナフチル、または、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり、
　Ｘ’は、フェニル、ナフチル、または、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり、
　ここで、
　　　　　Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、水素原子またはＣ_１－Ｃ_２１アルキル基であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく、各アルキル基の全部または一部は４－８員環を形成していてもよく、また、Ｒ_１及びＲ_２、Ｒ_１’及びＲ_２’は、それぞれ互いに連結して４－８員環を形成していてもよく、
　　　　　ｎ及びｎ’は、それぞれ独立に、０から３の整数である。
但し、
　（１）Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－であり、Ｘ’が、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’が、それぞれ独立に、水素原子または無置換かつ直鎖のＣ_１－Ｃ_６アルキル基であり、ｎ及びｎ’が０である化合物、及び、
　（２）Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－であり、Ｘ’が、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’がＣ_１４直鎖アルキル基であり、ｎ及びｎ’が０である化合物
を除く］
で表される化合物を提供する。

　また、本発明は、式（１）で表される化合物及び薬理学的に許容できるキャリアを含有する医薬組成物を提供する。

　また、本発明は、式（１）で表される化合物及び薬理学的に許容できるキャリアを含有する医薬であって、免疫賦活剤、マクロファージ賦活剤、好中球賦活剤、貪食細胞の食菌作用賦活剤、抗細菌感染症剤、または、菌産生毒素中和剤として用いられる医薬組成物を提供する。

　また、本発明は、免疫賦活剤、マクロファージ賦活剤、好中球賦活剤、貪食細胞の食菌作用賦活剤、抗細菌感染症剤、または、菌産生毒素中和剤として用いられる医薬組成物の製造のための、式（１）で表される化合物の使用を提供する。

　また、本発明は、ヒトを含む哺乳動物の感染症の予防方法又は治療方法であって、
　治療上有効量の式（１）で表される化合物を当該哺乳動物に投与することを含む方法を提供する。

　また、本発明は、以下の式（２）：

　　　　　　（式２）
［式中、
　Ｘは、フェニル、ナフチル、または、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり、
　Ｘ’は、フェニル、ナフチル、または、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり、
　ここで、
　　　　　Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、水素原子またはＣ_１－Ｃ_２１アルキル基であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく、各アルキル基の全部または一部は４－８員環を形成していてもよく、また、Ｒ_１及びＲ_２、Ｒ_１’及びＲ_２’は、それぞれ互いに連結して４－８員環を形成していてもよく、
　　　　　ｎ及びｎ’は、それぞれ独立に、０から３の整数である。］
で表される化合物を含有することを特徴とする菌産生毒素中和剤を提供する。

　本発明のトレハロース化合物は、免疫賦活活性が高く、さらに、毒性も低いので、病原菌による感染症に対して優れた医薬品を提供するために有用である。

　本発明のトレハロース化合物は、細胞性免疫を賦活化する作用を有し、好中球やマクロファージを活性化し、その貪食作用を高めることによって、抗菌作用を発揮するものである。すなわち本発明の化合物によれば、細菌自体を好中球やマクロファージ内に取り込むために、細菌外への毒素放出が少なく、抗生物質投与の際の大腸菌破壊による毒素放出のような危険性の少ない医薬を提供することができる。

　また、本発明のトレハロース化合物は、毒素自体に対しても毒性低減作用を示す。したがって、本発明によれば、大腸菌等による感染症において、感染の程度が進行し、大腸菌等が増殖して菌外へ毒素が産生される状況に至った場合においても有効な医薬を提供することができる。

　また、本発明のトレハロース化合物の投与による好中球やマクロファージの活性化により、抗生物質投与により生じた多剤耐性菌をも非耐性菌と同様に捕食することが可能である。したがって、多剤耐性菌による感染症にも治療効果のある医薬を提供することができる。

　また、本発明のトレハロース化合物は、細胞性免疫を賦活化するが、過剰な免疫応答が生じにくい。したがって本発明によれば、例えば、抗体医薬に対し、生体内において、医薬として投与された抗体に対する抗体が産生され、過剰な免疫応答が生じるような危険性の少ない医薬を提供することができる。

　また、本発明のトレハロース化合物には、不斉炭素原子を含まない化合物が含まれる。すなわち、本発明のトレハロース化合物の製造方法により、不斉合成を含まずに、本発明に係るトレハロース化合物を大量に効率よく合成することができる。

は、マウス腹腔マクロファージにＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を作用させた場合のマウス腹腔マクロファージからの活性酸素遊離量を示す。は、マウス腹腔マクロファージにＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を作用させた場合のマウス腹腔マクロファージ貪食能を示す。は、ウサギ好中球にＴＤＣＭ、または本発明の試験化合物を作用させた場合のウサギ好中球からの活性酸素遊離量を示す。は、ウサギ好中球にＴＤＣＭ、または本発明の試験化合物を作用させた場合のウサギ好中球貪食能を示す。は、ヒト由来のＴＨＰ－１細胞にＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を作用させた場合のＴＨＰ－１細胞からのＩＬ－８遊離量を示す。は、マウスにＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を投与した場合における、マウス血漿中のＩＬ－６濃度を示す。は、マウスにＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を投与した場合における、マウス血漿中のＩＦＮ－γ濃度を示す。は、マウスにＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を投与した場合における、マウス血漿中のＴＮＦ－α濃度を示す。は、ヒト由来細胞にＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を作用させた場合のヒト由来細胞からのＭＩＰ－１βおよびＴＮＦ－α遊離量を示す。値はｍｅａｎ±Ｓ．Ｄ.（ｎ＝５）で示した。＊は、コントロールと比較してＰ<０．０１の場合を示す。は、ヒト由来のＴＨＰ－１細胞における、ＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物の細胞毒性を示す。白色のバーは２時間、黒色のバーは２４時間、試験化合物で処理した場合の結果をそれぞれ示す。値はｍｅａｎ±Ｓ．Ｄ.（ｎ＝５）で示した。＊は、コントロールと比較してＰ<０．０１の場合を示す。は、Ａｍｅｓ試験による、ＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物の変異原性の測定結果を示す。は、マウス腹腔内浸潤細胞にＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を作用させた場合の細胞数および顕微鏡像を示す。値はｍｅａｎ±Ｓ．Ｄ.（ｎ＝５）で示した。＊は、コントロールと比較してＰ<０．０１の場合を示す。は、マウス腹腔内浸潤細胞にＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を作用させた場合のギムザ染色の結果を示す。は、ＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を作用させたマウス腹腔内浸潤細胞における、蛍光顕微鏡によるＣＤ－８陽性細胞像を示す。は、ＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を作用させたマウス腹腔内浸潤細胞における、フローサイトメトリーによるＣＤ－８陽性細胞の測定結果を示す。は、ＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を投与したマウスに、ウェルシュ菌を投与した場合における、前記化合物のマウス生存数への影響を示す。＊は、コントロールと比較してＰ<０．０１の場合を示す。試験を８回行ったうちの、標準的な結果を示す。は、ＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を投与したマウスに、緑膿菌を投与した場合における、前記化合物のマウス生存数への影響を示す。＊は、コントロールと比較してＰ<０．０１の場合を示す。試験を８回行ったうちの、標準的な結果を示す。は、マウスに緑膿菌投与後に、ＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を投与した場合における、化合物のマウス生存数への影響を示す。＊は、コントロールと比較してＰ<０．０１の場合を示す。試験を８回行ったうちの、標準的な結果を示す。は、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物を投与したマウスに、緑膿菌を投与した場合における、マウスの血中の緑膿菌数を示す。は、乳癌細胞接種マウスにおける、ＴＤＣＭ、ｖｅｈｉｃｌｅまたは本発明の試験化合物の癌転移への影響を示す。

　以下、本発明の好適な実施形態について説明する。なお、式（１）で表される化合物は、その薬理学的に許容される塩または溶媒和物の形態で存在していてもよい。

　本明細書において、「Ｃ_１－Ｃ_２１アルキル基」とは、炭素数１から２１の直鎖状又は分岐鎖状の脂肪族炭化水素基のほか、脂肪族炭化水素基の全部または一部が４－８員環を形成している脂環式炭化水素基をも含む。好ましい態様の１つにおいて、本発明の式（１）で表される化合物の「Ｃ_１－Ｃ_２１アルキル基」は、直鎖状の脂肪族炭化水素基である。直鎖状の脂肪族炭化水素基である「Ｃ_１－Ｃ_２１アルキル基」の例として、メチル基、エチル基、ｎ－プロピル基、ｎ－ブチル基、ｎ－ペンチル基、ｎ－ヘキシル基、ｎ－ヘプチル基、ｎ－オクチル基、ｎ－ノニル基、ｎ－デシル基、ｎ－ウンデシル基、ｎ－ドデシル基、ｎ－トリデシル基、ｎ－テトラデシル基、ｎ－ペンタデシル基、ｎ－ヘキサデシル基、ｎ－ヘプタデシル基、ｎ－オクタデシル基、ｎ－ノナデシル基、ｎ－イコシル基、ｎ－ヘンイコシル基、等を挙げることができる。脂肪族炭化水素基の全部が環を形成している脂環式炭化水素基の例としては、シクロブチル基、シクロペンチル基、シクロへキシル基、シクロヘプチル基、シクロオクチル基等を挙げることができ、脂肪族炭化水素基の一部が環を形成している脂環式炭化水素基の例としては、シクロへキシル－ｎ－オクチル基、シクロへキシル－ｎ－ノニル基、シクロヘプチル－ｎ－オクチル基、等を挙げることができる。Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、またはＲ_２’としては、直鎖状のアルキル基が好適であり、より好ましくは、炭素数１０から１６の直鎖状アルキル基であり、特に好ましくは、ｎが０の場合、炭素数１０の直鎖状のアルキル基であるｎ－デシル基であり、ｎが１の場合、炭素数９の直鎖状のアルキル基であるｎ－ノニル基、炭素数１３の直鎖状のアルキル基であるｎ－トリデシル基または炭素数１４の直鎖状のアルキル基であるｎ－テトラデシル基であり、最も好ましくは、ｎ－デシル基である。

　Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよい。ここで、アルコキシ基とは、炭素数１から２１の直鎖状又は分岐鎖状の脂肪族炭化水素が酸素原子と結合した構造の置換基であり、例えば、メトキシ基、エトキシ基、プロポキシ基、ブトキシ基、ペンチルオキシ基、ヘキシルオキシ基、ヘプチルオキシ基等を挙げることができる。好ましくは、直鎖アルコキシ基であり、アルコキシ基によって置換されたアルキル基として、例えば、メトキシドデシル基、エトキシウンデシル基、プロポキシデシル基、ペンチルオキシノニル基、ヘキシルオキシオクチル基、ヘキシルオキシヘプチル基、ペンチルオキシオクチル基、などを挙げることができる。各アルキル基中の水素原子が、水酸基またはアルコキシ基によって置換されている場合、置換の位置は各アルキル基中のいずれでもよいが、好ましくは、アルキル基の末端炭素原子に結合した水素原子が、水酸基またはアルコキシ基によって置換された化合物である。アルキル基の末端炭素原子にアルコキシ基が結合した場合には、炭化水素基が酸素原子を介して結合した直鎖エーテル状の構造となり、介在する酸素原子と炭化水素基を構成する炭素原子との数の総和が、上記炭化水素基のアルキル基の長さと同様に、アルコキシアルキル基を構成する炭素及び酸素原子の数が２から２１であることが好ましく、より好ましくは、ｎが０の場合、１０から１６であり、ｎが１の場合、９から１５である。

　Ｒ_１及びＲ_２、Ｒ_１’及びＲ_２’は、それぞれ互いに連結して４－８員環を形成していてもよく、Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－である場合に、Ｒ_１及びＲ_２が結合している炭素原子と、Ｒ_１及びＲ_２とは、いずれも４－８員環の構成原子となる。また、Ｒ_１及びＲ_２を構成するアルキル基は、分岐状アルキル基でもよいので、その場合には、分岐状アルキル基の一部が４－８員環を構成し、アルキル基で置換されたシクロアルキルのような構造となってもよい。また、環を形成している場合にも、前記と同様の置換基によって置換されている場合をも含む。これらは、ＸのみならずＸ’についても同様である。４－８員環の例としては、シクロブチル基、シクロペンチル基、シクロヘキシル基、シクロヘプチル基、シクロオクチル基などを挙げることができる。化合物の構造上の安定性の観点から、好ましくは、シクロヘキシル基またはシクロヘプチル基である。

　Ｒ_１とＲ_１’、Ｒ_２とＲ_２’は、同一でも異なっていてもよく、合成の効率の観点からは、好ましくは、Ｒ_１がＲ_１’と同一であり、Ｒ_２がＲ_２’と同一である。

　また、Ｒ_１とＲ_２との関係については、Ｒ_１とＲ_２とは、同一でも異なっていてもよく、１つの好ましい態様としては、Ｒ_１の炭素数がＲ_２の炭素数と比べて同一、Ｒ_２の炭素数よりも炭素数が１若しくは２多いまたは１もしくは２少ない化合物である。例えば、Ｒ_１が炭素数１４であり、Ｒ_２が炭素数１６である化合物などが挙げられる。また、上記以外にも、Ｒ_１が炭素数１～５のような短鎖アルキル基であり、Ｒ_２が炭素数１０～１６のような長鎖アルキル基であるものや、その逆に、Ｒ_１が１０～１６のような長鎖アルキル基であり、Ｒ_２が炭素数１～５のような短鎖アルキル基であるものも好ましい。なお、Ｒ_１’とＲ_２’との関係も、上記Ｒ_１とＲ_２との関係と同様であり、上記Ｒ_１とＲ_２との関係において、Ｒ_１をＲ_１’に、Ｒ_２をＲ_２’に読み替えることが可能である。

　ｎとｎ’とは、同一でも異なっていてもよく、合成の効率の観点からは、ｎとｎ’とが同一であることが好ましい。また、活性の観点からは、ｎないしｎ’が０の化合物、及び、ｎないしｎ’が１の化合物が好ましい。

　また、トレハロースには、α，α’体、α，β’体、β，β’体という３つの異性体が存在する。本発明のトレハロース化合物としては、α，α’体が好適である。

　式（１）の化合物とその塩は溶媒和物として存在し得るが、これも本発明の範囲内である。また、本発明範囲には、生物学研究に有用な式（１）の化合物の放射性標識化合物も含まれる。

　本発明の好ましい化合物は、上述の式（１）で表される化合物であり、式中の各置換基が以下の特徴を有するものである。以下の特徴は、矛盾しない限りにおいて、それぞれ独立に、１つのみ又は組み合わせて選択することができる。
（Ａ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基である。
（Ｂ）Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基である。
（Ｃ）Ｒ_１及びＲ_１’は、それぞれ独立に、無置換のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｄ）Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、水素原子または無置換のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｅ）Ｒ_１及びＲ_１’は、それぞれ独立に、直鎖のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｆ）Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、水素原子または直鎖のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｇ）Ｒ_１及びＲ_１’は、それぞれ独立に、無置換かつ直鎖のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｈ）Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、水素原子または無置換かつ直鎖のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｉ）Ｒ_１及びＲ_１’は、それぞれ独立に、無置換かつ直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｊ）Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、無置換かつ直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｋ）Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、無置換のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｌ）Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、水素原子または無置換のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｍ）Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、直鎖のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｎ）Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、水素原子または直鎖のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｏ）Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｐ）Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、水素原子または無置換かつ直鎖のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｑ）Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｒ）Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基である。
（Ｓ）ｎ及びｎ’は、それぞれ独立に、０または１である。
（Ｔ）ｎ及びｎ’は、０である。
（Ｕ）ｎ及びｎ’は、１である。

　本発明の好ましい化合物は、式（１）で表される化合物、またはその薬理学的に許容可能な塩若しくは溶媒和物であり、以下の構造を有するものである。
（Ｖ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり、ここで、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、水素原子またはＣ_１－Ｃ_２１アルキル基であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく、各アルキル基の全部または一部は４－８員環を形成していてもよく、また、Ｒ_１及びＲ_２、Ｒ_１’及びＲ_２’は、それぞれ互いに連結して４－８員環を形成していてもよく；ｎ及びｎ’は、それぞれ独立に、０から３の整数である。
（Ｗ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり、ここで、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく、各アルキル基の全部または一部は４－８員環を形成していてもよく；ｎ及びｎ’は、それぞれ独立に、０または１である。
（Ｘ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；ここで、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、直鎖のＣ_８－Ｃ_１６アルキル基であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく、各アルキル基の全部または一部は４－８員環を形成していてもよく；ｎ及びｎ’は、０である。
（Ｙ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり、ここで、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、直鎖のＣ_８－Ｃ_１４アルキル基であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく、各アルキル基の全部または一部は４－８員環を形成していてもよく；ｎ及びｎ’は、１である。
（Ｚ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；ここで、Ｒ_１及びＲ_１’は同一であって、水素原子またはＣ_１－Ｃ_２１アルキル基であり、Ｒ_１、Ｒ_１’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく、各アルキル基の全部または一部は４－８員環を形成していてもよく；Ｒ_２及びＲ_２’は同一であって、水素原子またはＣ_１－Ｃ_２１アルキル基であり、Ｒ_２、Ｒ_２’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく、各アルキル基の全部または一部は４－８員環を形成していてもよく；また、Ｒ_１及びＲ_２、Ｒ_１’及びＲ_２’は、それぞれ互いに連結して４－８員環を形成していてもよく；ｎ及びｎ’は同一であって、０から３の整数である。
（ＡＡ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、Ｃ_１－Ｃ_２１アルキル基であり、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく；Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、Ｃ_７－Ｃ_２１アルキル基であり、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく；ｎ及びｎ’は、同一であって、０または１である。
（ＢＢ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、Ｃ_７－Ｃ_２１アルキル基であり、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく；Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、水素原子、または、Ｃ_１－Ｃ_２１アルキル基であり、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく；ｎ及びｎ’は、同一であって、０または１である。
（ＣＣ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基であり、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく；Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基であり、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく；ｎ及びｎ’は、同一であって、０または１である。
（ＤＤ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基であり；Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、水素原子、または、無置換かつ直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基であり；ｎ及びｎ’は、同一であって、０または１である。（ＥＥ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基であり；Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、水素原子、または、無置換かつ直鎖のＣ_１－Ｃ_２１アルキル基であり；ｎ及びｎ’は、同一であって、０または１である。
（ＦＦ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基であり；Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_７－Ｃ_２１アルキル基であり；ｎ及びｎ’は、同一であって、０または１である。
（ＧＧ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_８－Ｃ_１６アルキル基であり；Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_８－Ｃ_１６アルキル基であり；ｎ及びｎ’は、同一であって、０または１である。
（ＨＨ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_８－Ｃ_１６アルキル基であり；Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_８－Ｃ_１６アルキル基であり；ｎ及びｎ’は、０である。
（ＩＩ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１及びＲ_１’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_９－Ｃ_１４アルキル基であり；Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_９－Ｃ_１４アルキル基であり；ｎ及びｎ’は、１である。
（ＪＪ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_１０アルキル基であり；ｎ及びｎ’は、０である。
（ＫＫ）Ｘは、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり；Ｘ’は、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり；Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、同一であって、無置換かつ直鎖のＣ_９、Ｃ_１３、または、Ｃ_１４アルキル基であり；ｎ及びｎ’は、１である。

　本発明のトレハロース化合物の具体例として、以下の化合物を例示することができる。

　６，６’－ビス－Ｏ－（２－オクチルデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ノニルウンデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ウンデシルトリデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ドデシルテトラデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－トリデシルペンタデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ペンタデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ヘキサデシルオクタデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－デシルトリデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ウンデシルテトラデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ドデシルペンタデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（ベンゾイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ナフチルカルボニル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（シクロヘキサンカルボニル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（シクロヘプタンカルボニル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－テトラデシルオクタデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（１４－メトキシ－２－（１２－メトキシドデシル）－テトラデカノイル）－α，α’－トレハロース、または、
　６，６’－ビス－Ｏ－（１５－ヒドロキシ－２－（１３－ヒドロキシトリデシル）－ペンタデカノイル）－α，α’－トレハロース。

　本発明のトレハロース化合物として好適な化合物として、以下のものを例示することができる。

　６，６’－ビス－Ｏ－（２－オクチルデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ノニルウンデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ウンデシルトリデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ドデシルテトラデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－トリデシルペンタデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ペンタデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロース、または、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ヘキサデシルオクタデカノイル）－α，α’－トレハロース。

　また、本発明のトレハロース化合物として好適な化合物として、以下のものを例示することができる。

　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－デシルトリデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ウンデシルテトラデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ドデシルペンタデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－α，α’－トレハロース、または、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロース。

　また、本発明のトレハロース化合物としてより好適な化合物として、以下のものを例示することができる。

　６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－α，α’－トレハロース、または、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロース。

　また、本発明の好適な菌産生毒素中和剤として、以下のいずれかの化合物：
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－テトラデシルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－α，α’－トレハロース、または、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロースを含有することを特徴とする菌産生毒素中和剤を例示することができる。

　本発明の医薬組成物及び免疫賦活剤等は、上記トレハロース化合物を含有することを特徴とする。

　本発明のトレハロース化合物は、マクロファージや好中球に対する高い活性化作用を有する免疫賦活剤である。よって、本発明のトレハロース化合物は、細菌感染症、ウィルス感染症、真菌感染症などの感染症、日和見感染症、多剤耐性感染症など、免疫による生体防御反応の関連する疾患の予防剤または治療剤として有効である。
<製造方法>
　本発明の式（１）で表される化合物は、以下の（ａ）及び（ｂ）で示される二つの工程により合成することができる。

　（ａ）式（３）で表されるトレハロース化合物に、式（４）及び式（６）で表されるカルボニル化合物を同時にまたは順次に作用させ、エステル化反応を行う工程。

　（ｂ）前記工程（ａ）で得られる式（５）で表されるトレハロース化合物の水酸基の保護基を脱保護する工程。

　工程（ａ）において、「式（４）及び式（６）で表されるカルボニル化合物を同時にまたは順次に作用させ」るとは、以下の合成スキーム１に表されるように、式（４）及び式（６）で表されるカルボニル化合物を順次作用させてもよく、また、以下の合成スキーム２に表されるように、式（４）及び式（６）で表されるカルボニル化合物を同時に作用させてもよく、さらに、式（４）及び式（６）で表されるカルボニル化合物が同一である場合には、これを式（４）で表されるカルボニル化合物として、以下の合成スキーム３に表されるように、同時に、すなわち一段階の反応において作用させてもよいことを意味する。なお、式（２）で表される化合物も式（１）で表される化合物と同様にして合成することができる。

　本発明の式（１）で表される化合物は、以下の合成スキーム１に表される方法により製造することができる。
<合成スキーム１>

　上記合成スキーム中、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’、ｎ及びｎ’は、前記と同様である。Ｒ_３及びＲ_３’は、糖の水酸基の保護基を示す。Ｙ及びＹ’は、それぞれ独立に、水酸基またはハロゲン原子を表す。なお、上記スキームにおいて、式（３）で表されるトレハロース化合物はα，α’体であるが、α，β’体とβ，β’体も同様に合成することができる。ただ、本発明においては、α，α’体が好適である。

　ここで、Ｒ_３及びＲ_３’としては、水酸基の保護基として公知のものを使用することができる。例えば、Protecting groups in Organic chemistry(John Wiley &Sons INC., New York 1991, ISBN 0-471-62301-6)に記載の水酸基の保護基が挙げられる。具体的には、ベンジル基、ｐ－メトキシベンジル基、ビフェニルメチル基等のアリールアルキル基；アセチル基等のアシル基；メトキシカルボニル基、tert-ブトキシカルボニル基等のアルコキシカルボニル基；トリメチルシリル基等のトリアルキルシリル基等が挙げられる。好ましくはベンジル基である。Ｒ_３及びＲ_３’は、同一でも異なっていてもよく、好ましくは、同一である。

　また、Ｙ及びＹ’は、それぞれ独立に、水酸基またはハロゲン原子であり、ハロゲン原子としては、フッ素原子、塩素原子、ヨウ素原子、等を挙げることができる。Ｙ及びＹ’は、好ましくは、水酸基である。

<工程（ａ）：エステル化反応>
　式（３）で表されるトレハロース化合物に、式（４）及び式（６）で表されるカルボニル化合物を順次作用させ、トレハロース化合物とカルボニル化合物とのエステル化反応を行う工程である。

　式（３）で表されるトレハロース化合物は、トレハロースの６位及び６’位以外の水酸基が保護基により保護された化合物であり、市販のものを用いるか、或いはトレハロース等から公知の方法により合成したものを用いることができる。例えば、保護基がベンジル基である、２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンゾキシ－α，α’－トレハロースは、市販されており、これを好適に用いることができる。また、トレハロースのα，α’体は天然に存在するものであり入手容易である。トレハロースにおいて６位及び６’位の水酸基と他の水酸基とは反応性が異なるので、天然のトレハロースに対し、公知の方法により、水酸基の保護基を導入することにより、６位及び６’位以外の水酸基が保護された式（３）で表されるトレハロース化合物を比較的容易に合成することができる。

　また、式（４）及び式（６）で表されるカルボニル化合物は、市販のものを用いるか、後述する合成スキーム４、５、または６により合成したもののほか、公知の方法により合成したものを用いることができる。

　式（３）で表されるトレハロース化合物に、式（４）で表されるカルボニル化合物を作用させる工程において、式（３）で表されるトレハロース化合物における６位及び６’位の水酸基のいずれもエステル化される可能性がある。６位及び６’位の水酸基のいずれもエステル化された化合物をジエステル体、いずれか一方のみがエステル化された中間化合物をモノエステル体と呼ぶ。式（３）で表されるトレハロース化合物に対し、式（４）で表されるカルボニル化合物を１当量程度用いる場合には、立体障害により、モノエステル体が多く生成される。所望の化合物の反応収率を高めるためには、反応後に所望の６位水酸基がエステル化されたモノエステル体を分離精製すればよい。あるいは、反応収率を高めるために、原料である式（３）で表されるトレハロース化合物の６位及び６’位の水酸基のうち、式（４）で表されるカルボニル化合物とのエステル化を望まない一方の水酸基を選択的に保護しておき、他方水酸基のエステル化反応の後に、選択的に脱保護してもよい。水酸基をエステル化する順番としては、６位水酸基を先にエステル化する場合の他、６’位水酸基を先にエステル化してもよい。

　当該エステル化反応は、一般的なエステル化反応として通常用いられる方法及び当業者等に公知の方法を広く用いることができる。

　式（４）または式（６）で表されるカルボニル化合物について、ＹまたはＹ’が水酸基である場合には、カルボン酸とアルコールとの公知のエステル化反応を広く適用することができる。例えば、脱水法（カルボジイミド法を含む）、混合酸無水物法、活性エステル化法等を挙げることができる。これらの方法は、好ましくは、不活性溶媒中、縮合剤を用いて行うことができる。

　これらの方法に用いられる縮合剤としては、脱水剤も含み、アルコールとカルボン酸とのエステル化反応において通常使用されるものを広く使用することができる。縮合剤の例としては、塩化水素、硫酸、塩酸等の鉱酸；パラトルエンスルホン酸、カンファースルホン酸等の有機酸；フッ化ホウ素エーテラート等のルイス酸等の脱水剤；三塩化リン、三臭化リン、五塩化リン、オキシ塩化リン、塩化チオニル等の酸ハロゲン化物生成剤；クロロぎ酸エチル、塩化メタンスルホニル等の混合酸無水物生成剤；Ｎ，Ｎ’－ジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ）、ジイソプロピルカルボジイミド、１－エチル－３－ジメチルアミノプロピルカルボジイミド等のカルボジイミド；またはその他の縮合剤、例えばＮ，Ｎ－カルボニルジイミダゾール、２－エトキシ－Ｎ－エトキシカルボニル－１，２－ジヒドロキノリン（ＥＥＤＱ）、トリフェニルホスフィン－四塩化炭素（錯体）等を挙げることができる。これらの縮合剤は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用しても良い。原料化合物と縮合剤の使用割合も特に限定されず、広い範囲内から適宜選択することができる。

　当該エステル化反応は、適当な溶媒中で行うことができる。溶媒としては、原料化合物に対して適度の溶解性を有し、エステル化反応に悪影響を及ぼさない不活性溶媒であればよく、公知の溶媒を広く使用することができる。上記エステル化反応に用いられる溶媒の例としては、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族炭化水素；クロロベンゼン、ジクロロベンゼン等のハロゲン化芳香族炭化水素：ｎ－ヘキサン、シクロヘキサン、石油エーテル等の脂肪族炭化水素；ジクロロメタン、１，２－ジクロロエタン、クロロホルム、四塩化炭素等の脂肪族ハロゲン化炭化水素；ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、ジオキサン、テトラヒドロフラン、エチレングリコールジメチルエーテル、エチレングリコールジエチルエーテル等のエーテル；アセトン、２－ブタノン、メチルイソブチルケトン等のケトン；アセトニトリル、プロピオニトリル、ベンゾニトリル等のニトリル；Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド、ヘキサメチルホスホリックトリアミド（ＨＭＰＡ）等のアミド；ジメチルスルホキシド等のスルホキシド等を挙げることができる。これらの溶媒は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用しても良い。

　また、当該エステル化反応において、公知の反応促進剤を広く使用することができる。反応促進剤の例としては、ジメチルホルムアミド、ジメチルアミドピリジン、４－ピロリジノピリジン等の触媒、無水硫酸マグネシウム、モレキュラーシーブ（４Ａ,５Ａ）等の乾燥剤を挙げることができる。これらの反応促進剤は、反応系内に添加すればよい。また、エステル化反応を促進するために、ディーン-スタークの水分離装置、ソックスレー抽出器等の装置を使用してもよい。これらの反応促進剤ないし装置は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用しても良く、触媒と乾燥剤を合わせて用いてもよい。原料化合物と反応促進剤の使用割合も特に限定されず、広い範囲内から適宜選択することができる。

　本反応に供される原料化合物の使用量は、特に限定されず広い範囲内から適宜選択される。式（４）で表される化合物及び式（６）で表される化合物を順次反応させる場合には、式（３）で表されるトレハロース化合物１モルに対して、式（４）で表されるカルボニル化合物を、通常０．５～１．８モル、好ましくは０．８～１．２モル使用する。また、式（５）で表されるモノエステル体１モルに対して、式（６）で表されるカルボニル化合物を、通常０．５～１．８モル、好ましくは０．８～１．２モル使用する。

　また、当該エステル化反応の反応温度も特に限定されないが、通常、－１０℃から使用する溶媒の沸点温度以下の範囲内とすればよい。通常、０～２００℃、好ましくは室温から１００℃で行われる。

　反応時間は、原料化合物の種類及びその使用量、反応温度等の反応条件によって異なるが、通常、１時間から１週間の範囲で適宜調節することができ、好ましくは１～２４時間、より好ましくは３～１０時間である。

　反応終了後は、反応混合液に対して副生物の分離除去、乾燥、溶媒の留去などの一般的な処理を行った後、シリカゲルカラムクロマトグラフィ等の一般的な方法により精製する。

　式（４）または式（６）で表されるカルボニル化合物について、ＹまたはＹ’がハロゲン原子である場合には、エステル化反応は、適当な溶媒中、必要に応じて塩基の存在下で行うことができる。

　溶媒は、上記エステル化反応で使用される不活性溶媒と同じものを使用することができる。

　塩基としては、例えば、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等のアルカリ金属の水酸化物；水酸化カルシウム等のアルカリ土類金属の水酸化物；炭酸ナトリウム、炭酸カリウム等のアルカリ金属の炭酸塩；炭酸水素ナトリウム、炭酸水素カリウム等のアルカリ金属の炭酸水素塩；酢酸ナトリウム、酢酸カリウム等のアルカリ金属の酢酸塩；酢酸カルシウム等のアルカリ土類金属の酢酸塩；水素化ナトリウム、水素化カリウム等のアルカリ金属の水素化物；水素化カルシウム等のアルカリ土類金属の水素化物；水酸化アンモニウム、炭酸アンモニウム、酢酸アンモニウム等のアンモニウム塩；トリメチルアミン、トリエチルアミン、Ｎ，Ｎ－ジメチルアニリン、ピリジン、４－（ジメチルアミノ）ピリジン、ジアザビシクロオクタン（ＤＡＢＣＯ）、ジアザビシクロノネン（ＤＢＮ）、ジアザビシクロウンデセン（ＤＢＵ）等の第三級アミンを挙げることができる。これら塩基は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用してもよい。

　本反応に供される原料化合物、及び、塩基の使用量も、特に限定されず広い範囲内から適宜選択される。式（４）で表される化合物及び式（６）で表される化合物を順次反応させる場合には、式（２）で表されるトレハロース化合物１モルに対して、式（４）で表されるカルボニル化合物を、通常０．５～１．８モル、好ましくは０．８～１．２モル使用し、塩基を、通常０．５～１．８モル、好ましくは０．８～１．２モル使用する。また、式（５）で表されるモノエステル体１モルに対して、式（６）で表されるカルボニル化合物を、通常０．５～１．８モル、好ましくは０．８～１．２モル使用し、塩基を、通常０．５～１．８モル、好ましくは０．８～１．２モル使用する。

　反応温度は、上記エステル化反応と同様、通常、－１０℃から使用する溶媒の沸点温度以下の範囲内とすればよい。反応時間は、上記エステル化反応と同様、前記の濃度、温度等によって変化するが、通常０．１～１０時間の範囲で適宜調整することができる。

　式（４）で表される化合物及び式（６）で表される化合物として、Ｘが水酸基であるカルボニル化合物とＸ’がハロゲン原子であるカルボニル化合物とを使用する場合、及び、Ｘがハロゲン原子であるカルボニル化合物とＸ’が水酸基である化合物とを使用する場合にも、上記反応条件の中から適宜選択することによって、同様に、式（７）で表わされる化合物を合成することができる。

<工程（ｂ）>
　上記工程（ａ）において得られた、トレハロースの６位及び６’位がエステル化され、糖の水酸基が保護された、式（７）で表される化合物に対し、糖の水酸基の脱保護を行うことにより、目的とする、式（１）で表されるトレハロースジエステル化合物を得る。

　式（７）で表される化合物における保護された水酸基から保護基を脱離するには、例えば、前記文献に記載の当該保護基に適した脱保護方法を適宜適用することができる。

　例えば、Ｒ_３の保護基がベンジル基である場合には、接触水素添加反応を適用することができる。接触水素添加反応は、水素雰囲気下、触媒の存在下で行われる。

　触媒は、接触水素添加反応に使用されるものである限り公知の触媒を広く使用でき、例えば、酸化白金、白金炭素、水酸化パラジウム、パラジウム炭素、ラネーニッケル等が挙げられる。

　触媒の使用量は、式（７）で表される化合物に対して、通常０．００１～５０重量％程度、好ましくは０．０１～１０重量％程度である。

　水素圧は、特に制限されず、広い範囲内から適宜選択することができる。水素圧は、通常、０．８～１００気圧程度であり、好ましくは１～３気圧程度である。

　当該反応は、通常、適当な溶媒中で行われ、溶媒としては、反応に悪影響を与えない不活性なものであれば広く用いることができる。使用する溶媒としては、例えば、ジクロロメタン、１，２－ジクロロエタン、クロロホルム、四塩化炭素等の脂肪族ハロゲン化炭化水素；メタノール、エタノール、イソプロパノール等のアルコール；ギ酸メチル、酢酸メチル、酢酸エチル等のエステル；ギ酸、酢酸等のカルボン酸又はこれらの混合溶媒を挙げることができる。

　本反応の温度は、通常、０～１００℃程度であり、好ましくは１０～４０℃程度である。反応時間は、基質量、温度、触媒の種類等によって異なるが、水素消費の理論量を目安に反応を終結させればよい。通常、１～５０時間程度であり、好ましくは１～３０時間である。

　反応終了後は、触媒の濾別、溶媒の留去などの一般的な処理を行った後、溶媒抽出、シリカゲルカラムクロマトグラフィ等の一般的な方法により精製する。

　本発明の式（１）で表される化合物は、以下の合成スキーム２または合成スキーム３に示される方法により製造することもできる。
<合成スキーム２>

　上記合成スキーム中、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’、Ｒ_３、Ｒ_３’、ｎ及びｎ’は、前記と同様である。

　合成スキーム２は、エステル化反応である工程（ａ）において、式（３）で表されるトレハロース化合物に、式（４）及び式（６）で表されるカルボニル化合物を同時に作用させるスキームであり、脱保護反応である工程（ｂ）は合成スキーム１と同様である。

　エステル化反応及び脱保護反応は、工程（ａ）において、式（３）で表されるトレハロース化合物に、式（４）及び式（６）で表されるカルボニル化合物を同時に作用させる他は、合成スキーム１と同様にして行うことができる。

　式（４）で表されるカルボニル化合物及び式（６）で表されるカルボニル化合物を同時に作用させた場合には、生成物の中から、目的化合物を分離精製することにより得ることができる。

　式（１）で表される化合物において、Ｒ_１及びＲ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’、ｎ及びｎ’がそれぞれ同一である場合には、上記合成スキーム２は、特に以下の合成スキーム３のように表すことができる。なお、式（１）で表される化合物が、Ｒ_１及びＲ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’、ｎ及びｎ’がそれぞれ同一である化合物でない場合には、反応収率を高める観点からは、合成スキーム１で表される方法により合成する方が好ましい。

<合成スキーム３>

　上記合成スキーム中、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_３’及びｎは、前記と同様である。

　合成スキーム３は、エステル化反応である工程（ａ）において、式（３）で表されるトレハロース化合物に対し、作用させるカルボニル化合物（４）は一種類のみであるので、エステル化反応を同時に、すなわち、一段階の反応により行うスキームであり、脱保護反応である工程（ｂ）は合成スキーム１と同様である。

　合成スキーム３におけるエステル化反応及び脱保護反応は、は、式（４）で表されるカルボニル化合物の使用量を増やす以外は、上記合成スキーム１の反応と同様にして行うことができる。使用量に関しては、具体的には、式（３）で表されるトレハロース化合物１モルに対して、式（４）で表されるカルボニル化合物を通常１．８～５モル、好ましくは２～３モル、縮合剤を通常１．８～５モル、好ましくは２～４モル、塩基を通常１．８～８モル、好ましくは２～６モル使用する。

　また、式（７）で表される化合物は、単離精製せずに次反応に使用することもできるが、エステル化反応に使用した試薬及び副生成物を除去しておくのが好ましい。

<原料となるカルボニル化合物>
　上記合成スキーム１、２、または３において、原料化合物である式（４）または式（６）で表されるカルボニル化合物は、市販のものを用いる他、当業者に公知の方法により製造することができる。例えば、式（４）または式（６）において、ＸないしＸ’がフェニル基であり、ｎないしｎ’が０である化合物としては、安息香酸または安息香酸のハロゲン化物を用いることができる。

　式（４）で表される化合物のうち、Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－であり、ｎが０である化合物は、以下の合成スキーム４または５により製造することもできる。

　以下では、式（４）で表されるカルボニル化合物が目的化合物として記載されているが、式（６）で表されるカルボニル化合物も、同様に製造することができる。
<合成スキーム４>

　上記合成スキーム中、Ｒ_１及びＲ_２は前記と同様である。Ｒ_４は炭素数１～６のアルキル基を表し、Ｈａｌはハロゲン原子を表す。

　合成スキーム４は、式（８）で表される化合物を、通常のアルキル化反応に付して、式（４）で表されるカルボニル化合物を得る工程である。原料化合物である式（８）で表される化合物は、市販のものを用いることができ、例えば、Ｒ_１が炭素数１０の直鎖アルキル基である場合には、ドデカン酸エチルなどを用いることができる。目的化合物の側鎖アルキルとして所望の長さを有する酸のエステルを用いればよい。

　アルキル化反応には、例えば、Creger,J.Am.Chem.Soc.,　92巻，1397-98頁，1970年に記載の方法等の種々の方法を用いることができる。より具体的には、式（８）で表される化合物の溶液に強塩基を加えて２位の水素原子を引き抜いた後、ハロゲン化アルキルを反応させればよい。例として、以下のような反応によりアルキル化を行うことができる。

　まず、式（８）で表される化合物と強塩基を反応させる。強塩基としては、水素原子を引き抜く作用のあるものであればよく、例えば、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等のアルカリ金属の水酸化物；水酸化カルシウム等のアルカリ土類金属の水酸化物等を挙げることができる。これら塩基は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用してもよい。また、リチウムジイソプロピルアミドを併用して、プロトン－リチウム交換反応を行なってもよい。溶媒としては、原料化合物に対して適度の溶解性を有し、エステル化反応に悪影響を及ぼさない不活性溶媒であればよく、公知の溶媒を広く使用することができる。上記アルキル化反応に用いられる溶媒の例としては、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族炭化水素；ｎ－ヘキサン、シクロヘキサン、石油エーテル等の脂肪族炭化水素；ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、ジオキサン、テトラヒドロフラン、エチレングリコールジメチルエーテル、エチレングリコールジエチルエーテル等のエーテル等を挙げることができる。これらの溶媒は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用しても良い。

　当該反応において、式（８）で表される化合物と強塩基の割合は、広い範囲内から適宜選択することができるが、通常は式（８）で表される化合物に対して強塩基等を０．９～５倍モル程度用いる。この際の反応温度は、通常－８０～６０℃程度、好ましくは０℃～６０℃程度である。反応時間は５分～６時間程度とし、好ましくは５分～１時間程度である。

　次いで、反応混合液にハロゲン化アルキルを加える。ハロゲン化アルキルとしては、例えば、１－ヨードオクタン、１－ヨードへプタン、１－ヨードデカン、１－ヨードウンデカン、１－ヨードドデカン、１－ヨードトリデカン、など、目的化合物の側鎖のアルキル基として、炭素鎖部分が所望の長さを有するアルカンのハロゲン化物を用いればよい。ハロゲン化物としては、塩素化物、ヨウ素化物、臭素化物などが挙げられるが、好ましくは、ヨウ素化物である。当該反応において、式（８）で表される化合物とハロゲン化アルキルの割合は、広い範囲内から適宜選択することができるが、通常は式（８）で表される化合物に対してハロゲン化アルキルを１．１～３倍モル程度用いる。この際の反応温度は、通常は室温程度にすればよい。また、反応時間は、通常２～１２時間程度とする。

　反応終了後においては、シリカゲルカラムクロマトグラフィ、減圧蒸留などの公知の単離及び精製方法を適用することによって、目的化合物を単離し、精製する。

　式（４）で表される化合物のうち、Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－であり、ｎが０である化合物は、以下の合成スキーム５により製造することもできる。

<合成スキーム５>

　上記合成スキーム中、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_４及びＨａｌは前記と同様である。

　合成スキーム５は、式（１１）で表される化合物を、通常のアルキル化反応に付して、式（４）で表されるカルボニル化合物を得る工程である。原料化合物である式（１１）で表される化合物は、市販のものを用いることができ、例えば、マロン酸ジエチル、マロン酸ジメチル、マロン酸ジプロピル、マロン酸ジジブチル、マロン酸ジイソプロピル、マロン酸ジ－ｔｅｒｔ－ブチル、マロン酸ジシクロヘキシル、マロン酸ジフェニル、マロン酸ジベンジルなどが挙げられる。

　アルキル化反応は、上記と同様に、原料化合物である式（１１）で表される化合物に強塩基を反応させ、次いで、ハロゲン化アルキルを作用させて行うことができる。

　式（１１）で表される化合物に強塩基を反応させる工程において、式（１１）で表される化合物と強塩基の割合は、広い範囲内から適宜選択することができるが、通常は式（１１）で表される化合物に対して強塩基等を０．９～５倍モル程度用いる。この際の反応温度は、通常－８０～６０℃程度、好ましくは０℃～６０℃程度である。反応時間は５分～６時間程度とし、好ましくは５分～１時間程度である。

　次いで、ハロゲン化アルキルを加える工程において、式（１１）で表される化合物とハロゲン化アルキルの割合は、広い範囲内から適宜選択することができるが、通常は式（１１）で表される化合物に対して、式（１２）で表されるハロゲン化アルキル、及び、式（９）で表されるハロゲン化アルキルを、それぞれ、０．８～１．２倍モル程度用いる。目的化合物が、Ｒ_１及びＲ_２が同一である化合物である場合には、ハロゲン化アルキルは１種類でよく、通常は式（１１）で表される化合物に対して、ハロゲン化アルキルを２．２～４倍モル程度用いる。目的化合物において、Ｒ_１及びＲ_２が同一でない場合には、上記のように、式（１２）で表されるハロゲン化アルキル、及び、式（９）で表されるハロゲン化アルキルを同時に作用させて目的化合物のみを単離精製する場合の他、異なるハロゲン化アルキルを順次作用させることとし、一方のハロゲン化アルキルを作用させた後、単離精製し、他方のハロゲン化アルキルを作用させ、目的化合物を単離精製してもよい。単離精製の方法としては、シリカゲルカラムクロマトグラフィ、減圧蒸留などの公知の単離及び精製方法を適用することができる。

　式（４）で表される化合物のうち、Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－であり、ｎが１である化合物は、以下の合成スキーム６により製造することもできる。

<合成スキーム６>
　合成スキーム６は、以下の合成スキーム６－１から６－５として説明することができる
。
<合成スキーム６－１>

　上記合成スキーム中、Ｒ_１は前記と同様である。

　合成スキーム６－１は、原料化合物であるカルボン酸にＮ，Ｏ－ジメチルヒドロキシアミンを脱水結合する反応である。

　式（１３）で表されるカルボン酸に、塩基性縮合剤を作用させる。公知の塩基性縮合剤であれば広く使用することができ、塩基性縮合剤の例としては、カルボニルジイミダゾールの他、４－ジメチルアミノピリジン、ピペリジン、ピロリジン、ピリジン、イミダゾール、Ｎ，Ｎ，Ｎ'，Ｎ'－テトラメチルウレア、ビス（ペンタメチレン）ウレア、１，１－カルボニルジピロール、などが挙げられる。原料化合物であるカルボン酸は、市販のものを用いることができ、例えば、へプタン酸、オクタン酸、デカン酸、ウンデカン酸などが挙げられる。目的化合物の側鎖アルキルとして所望の長さを有する酸を用いればよい。溶媒としては、原料化合物に対して適度の溶解性を有し、エステル化反応に悪影響を及ぼさない不活性溶媒であればよく、公知の溶媒を広く使用することができる。上記エステル化反応に用いられる溶媒の例としては、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族炭化水素；クロロベンゼン、ジクロロベンゼン等のハロゲン化芳香族炭化水素：ｎ－ヘキサン、シクロヘキサン、石油エーテル等の脂肪族炭化水素；ジクロロメタン、１，２－ジクロロエタン、クロロホルム、四塩化炭素等の脂肪族ハロゲン化炭化水素；ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、ジオキサン、テトラヒドロフラン、エチレングリコールジメチルエーテル、エチレングリコールジエチルエーテル等のエーテル等を挙げることができる。これらの溶媒は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用しても良い。

　当該反応において、式（１３）で表されるカルボン酸とカルボニルジイミダゾール等との使用割合は、広い範囲から適宜選択することができ、通常、０．８～２．０モル程度である。この際の反応温度は、通常－８０～６０℃程度、好ましくは０℃～６０℃程度である。反応時間は５分～６時間程度とし、好ましくは３０分～３時間程度である。

　次いで、式（１４）で表されるＮ，Ｏ－ジメチルヒドロキシアミンを反応させる。Ｎ，Ｏ－ジメチルヒドロキシアミンに代えて、１－ホドロキシベンゾトリアゾールなども使用することができる。式（１３）で表されるカルボン酸とＮ，Ｏ－ジメチルヒドロキシアミンとの割合は、広い範囲から適宜選択することができ、通常、式（１３）で表されるカルボン酸に対し、Ｎ，Ｏ－ジメチルヒドロキシアミンを０．８～１．５モル程度用いればよい。反応は、通常－８０～６０℃程度、好ましくは０℃～６０℃程度である。反応時間は、１０分から１０時間程度とすればよい。

　反応終了後においては、シリカゲルカラムクロマトグラフィ、減圧蒸留などの公知の単離及び精製方法を適用することによって、目的化合物を単離し、精製する。
<合成スキーム６－２>

　上記合成スキーム中、Ｒ_１、Ｒ_２及びＨａｌは前記と同様である。

　合成スキーム６－２は、式（１５）で表される化合物にハロゲン化アルキルを作用させてケトン体を合成する反応である。

　当該反応において、式（９）で表されるハロゲン化アルキルをエーテル系溶媒中において金属マグネシウムと作用させ、Ｇｒｉｇｎａｒｄ試薬を調製して反応に用いることができる。金属マグネシウムとしては、研磨した削状マグネシウムが好適に用いられる他、リチウム、ナトリウム、亜鉛、インジウムなども使用することができる。

　式（９）で表されるハロゲン化アルキルは、前記と同様のものを用いることができる。

　当該反応は、エーテル溶媒系において行われ、エーテル溶媒系としては、ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、ジオキサン、テトラヒドロフラン、テトラヒドロピラン、エチレングリコールジメチルエーテル、エチレングリコールジエチルエーテル等を挙げることができる。これらの溶媒は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用しても良い。

　当該反応において、式（１５）で表される化合物とハロゲン化アルキルの割合は、広い範囲内から適宜選択することができるが、通常は式（１５）で表される化合物に対してハロゲン化アルキルを０．８～５倍モル程度用いる。この際の反応温度は、通常０℃～８０℃程度である。反応時間は５分～６時間程度である。

　反応終了後においては、シリカゲルカラムクロマトグラフィ、減圧蒸留などの公知の単離及び精製方法を適用することによって、目的化合物を単離し、精製する。
<合成スキーム６－３>

　上記合成スキーム中、Ｒ_１、Ｒ_２及びＲ_４は前記と同様である。Ｒ_５及びＲ_６は、アルキル基、アルコキシ基、アリール基またはアリールオキシ基を表し、これらはハロゲン原子等により置換されていてもよい。

　合成スキーム６－３は、式（１６）で表されるケトン化合物に強塩基の存在下において、Ｗｉｔｔｉｇ試薬またはＨｏｒｎｅｒ－Ｅｍｍｏｎｓ試薬を反応させて、炭素－炭素二重結合を形成する反応である。上記合成スキームに記載の、式（１７）で表される化合物は、Ｈｏｒｎｅｒ－Ｅｍｍｏｎｓ試薬であるが、代わりにＷｉｔｔｉｇ試薬を用いてもよい。

　強塩基としては、水素原子を引き抜く作用のあるものであればよく、例えば、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等のアルカリ金属の水酸化物；水酸化カルシウム等のアルカリ土類金属の水酸化物等を挙げることができる。これら塩基は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用してもよい。溶媒としては、原料化合物に対して適度の溶解性を有し、エステル化反応に悪影響を及ぼさない不活性溶媒であればよく、公知の溶媒を広く使用することができる。当該反応に用いられる溶媒の例としては、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族炭化水素；ｎ－ヘキサン、シクロヘキサン、石油エーテル等の脂肪族炭化水素；ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、ジオキサン、テトラヒドロフラン、エチレングリコールジメチルエーテル、エチレングリコールジエチルエーテル等のエーテル等を挙げることができる。これらの溶媒は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用しても良い。

　当該反応において、式（１６）で表される化合物と強塩基の割合は、広い範囲内から適宜選択することができるが、通常は式（１６）で表される化合物に対して強塩基等を１．１～８倍モル程度用いる。この際の反応温度は、通常－８０～６０℃程度である。反応時間は、通常５分～３時間程度とする。

　次いで、反応混合液に、Ｗｉｔｔｉｇ試薬またはＨｏｒｎｅｒ－Ｅｍｍｏｎｓ試薬を反応させる。Ｗｉｔｔｉｇ試薬またはＨｏｒｎｅｒ－Ｅｍｍｏｎｓ試薬としては、公知のものを広く用いることができる。当該工程においては、式（１６）で表されるケトン化合物と、酢酸エステルとの間で炭素－炭素二重結合を形成させるものであればよく、Ｗｉｔｔｉｇ試薬の例としては、エトキシカルボニルメチル（トリフェニル）フォスフォニウムブロミドや、エチル（トリフェニルフォスフォラニリデン）アセテート、ホルナー－エモンズ試薬の例としては、エチルジフェニルフォスフォノアセテートなどのエチル（ジアリール）フォスフォノアセテートや、エチルジエチルフォスフォノアセテートなどのエチル（ジアルキル）フォスフォノアセテートなどを挙げることができる。好ましくは、エチルジエチルフォスフォノアセテートである。

　当該反応において、式（１６）で表される化合物とエチルジエチルフォスフォノアセテートの割合は、広い範囲内から適宜選択することができるが、通常は式（１６）で表される化合物に対してエチルジエチルフォスフォノアセテートを１．１～１０倍モル程度用いる。この際の反応温度は、通常は室温程度にすればよい。また、反応時間は、通常２～３０時間程度とする。

　反応終了後においては、シリカゲルカラムクロマトグラフィ、減圧蒸留などの公知の単離及び精製方法を適用することによって、目的化合物を単離し、精製する。
<合成スキーム６－４>

　上記合成スキーム中、Ｒ_１、Ｒ_２及びＲ_４は前記と同様である。

　合成スキーム６－４は、式（１８）で表される不飽和結合を有するカルボン酸エステルに対し、接触水素添加反応を行い、飽和カルボン酸エステルとする反応である。

　接触水素添加反応は、水素雰囲気下、触媒の存在下で行われる。

　触媒の使用量は、式（１８）で表される化合物に対して、通常０．００１～５０重量％程度、好ましくは０．０１～１０重量％程度である。

　当該反応は、通常、適当な溶媒中で行われ、溶媒としては、反応に悪影響を与えない不活性なものであれば広く用いることができる。使用する溶媒としては、例えば、ジクロロメタン、１，２－ジクロロエタン、クロロホルム、四塩化炭素等の脂肪族ハロゲン化炭化水素；メタノール、エタノール、イソプロパノール等のアルコール；ギ酸メチル、酢酸メチル、酢酸エチル等のエステル；ギ酸、酢酸等のカルボン酸又はこれらの混合溶媒を挙げ
ることができる。

　本反応の温度は、通常、０～１００℃程度であり、好ましくは１０～４０℃程度である。反応時間は、基質量、温度、触媒の種類等によって異なるが、水素消費の理論量を目安に反応を終結させればよい。通常、１～５０時間程度であり、好ましくは１～３０時間程度である。

　反応終了後は、触媒の濾別、溶媒の留去などの一般的な処理を行った後、溶媒抽出、シリカゲルカラムクロマトグラフィ等の一般的な方法により精製する。
<合成スキーム６－５>

　合成スキーム６－５は、式（１９）で表されるカルボン酸エステルの加水分解を行い、所望のカルボン酸を得る工程である。

　加水分解反応としては、公知の種々の反応を用いることができる。酸性条件下、または、塩基性条件下で行われ、あるいは酵素反応として行われてもよい。

　塩基性条件は、塩基を溶媒に加えればよく、塩基として水素化物イオンを出す物質であれば広く使用することができ、例えば、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等のアルカリ金属の水酸化物；水酸化カルシウム等のアルカリ土類金属の水酸化物；炭酸ナトリウム、炭酸カリウム等のアルカリ金属の炭酸塩；炭酸水素ナトリウム、炭酸水素カリウム等のアルカリ金属の炭酸水素塩；酢酸ナトリウム、酢酸カリウム等のアルカリ金属の酢酸塩；酢酸カルシウム等のアルカリ土類金属の酢酸塩；水素化ナトリウム、水素化カリウム等のアルカリ金属の水素化物；水素化カルシウム等のアルカリ土類金属の水素化物；水酸化アンモニウム、炭酸アンモニウム、酢酸アンモニウム等のアンモニウム塩；トリメチルアミン、トリエチルアミン、Ｎ，Ｎ－ジメチルアニリン、ピリジン、４－（ジメチルアミノ）ピリジン、ジアザビシクロオクタン（ＤＡＢＣＯ）、ジアザビシクロノネン（ＤＢＮ）、ジアザビシクロウンデセン（ＤＢＵ）等の第三級アミンを挙げることができる。これら塩基は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用してもよい。

　溶媒としては、原料化合物に対して適度の溶解性を有し、エステル化反応に悪影響を及ぼさない不活性溶媒であればよく、公知の溶媒を広く使用することができる。上記エステル化反応に用いられる溶媒の例としては、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族炭化水素；クロロベンゼン、ジクロロベンゼン等のハロゲン化芳香族炭化水素：ｎ－ヘキサン、シクロヘキサン、石油エーテル等の脂肪族炭化水素；ジクロロメタン、１，２－ジクロロエタン、クロロホルム、四塩化炭素等の脂肪族ハロゲン化炭化水素；ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、ジオキサン、テトラヒドロフラン、エチレングリコールジメチルエーテル、エチレングリコールジエチルエーテル等のエーテル；アセトン、２－ブタノン、メチルイソブチルケトン等のケトン；アセトニトリル、プロピオニトリル、ベンゾニトリル等のニトリル；Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド、ヘキサメチルホスホリックトリアミド（ＨＭＰＡ）等のアミド；ジメチルスルホキシド等のスルホキシド等を挙げることができる。これらの溶媒は、１種単独で使用しても良いし、２種以上混合して使用しても良い。

　当該反応において、反応温度、反応時間等は、広い範囲から適宜選択することができ、反応温度は、通常、０℃から１００℃程度とし、反応時間は、通常、３０分から２０時間程度とすることができる。

　式（４）で表される化合物のうち、Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－であり、ｎが２である化合物は、例えば、以下の合成スキーム７で表される反応により合成することもできる。
<合成スキーム７>

　上記合成スキーム中、Ｒ_１及びＲ_２は前記と同様である。

　合成スキーム７は、式（１６）で表されるケトン化合物に対し、式（２１）で表されるジエチル３－ヒドロキシプロパノイルフォスフォネートをＨｏｒｎｅｒ－Ｅｍｍｏｎｓ試薬として反応させ、炭素－炭素二重結合を形成して式（２２）で表される化合物を得て、接触水素添加反応を行い式（２３）で表される化合物を得て、アルコールの酸化反応を行い、カルボニル化合物としての式（２４）で表される化合物を得る反応である。なお、上記合成スキーム中には、式（２２）で表される化合物について、二重結合のシス－トランス立体異性体の一方のみを記載しているが、当該立体異性体に限られるものではない。

　Ｈｏｒｎｅｒ－Ｅｍｍｏｎｓ試薬を用いた反応、及び、接触水素添加反応は、それぞれ合成スキーム６－３、合成スキーム６－４を参照して同様に行うことができる。また、アルコールの酸化反応は、アルコールを強い酸化剤で酸化することにより行うことができ、クロム酸酸化、ジョーンズ酸化などの公知の方法を用いて適宜行うことができる。例として、クロム酸酸化においては、無水クロム酸、クロム酸、二クロム酸などの塩や錯体を用いて行うことができる。

　本明細書において、免疫賦活とは、細胞性免疫、液性免疫など、種々の免疫作用を活性化することを指し、免疫賦活剤とは、これらの免疫活性化作用のうちのいずれかを示すものであればよい。本発明のトレハロース化合物は、免疫系の中でも、少なくとも、細胞性免疫と呼ばれる、マクロファージや好中球などの免疫作用の活性化を行うことが想定されるが、細胞性免疫が活性化された結果、これらの細胞がサイトカインを遊離することなどにより、さらに液性免疫をも活性化される状況等をも広く含めるものである。

　本明細書において、マクロファージ賦活とは、元来マクロファージは外界からの異物に対する食作用を有するものであるところ、マクロファージの食作用を高めるように作用することであって、マクロファージの組織への付着性、及び運動性が向上し、外部から侵入した細菌や変性した自己成分を貪食する状態を指す。マクロファージが活性化した状態においては、一酸化窒素（ＮＯ）の放出、活性酸素の遊離が増大することが知られている。これらの遊離物質の放出量を測定してマクロファージ活性化の指標とすることができ、また、食作用の亢進そのものを測定し、これをマクロファージ活性化の指標とすることもできる。

　本明細書において、好中球賦活とは、元来好中球自身もマクロファージと同様の異物に対する食作用を有するものであるところ、好中球の食作用を亢進させ、細菌などを貪食する状態である。好中球が活性化した状態においても、一酸化窒素（ＮＯ）の放出、活性酸素の遊離が増大することが知られている。また、好中球の活性化により、微小顆粒やアズール顆粒の脱顆粒による生理活性物質の遊離が見られることも知られている。これらの遊離物質の放出量を測定して好中球活性化の指標とすることができ、また、食作用の亢進そのものを測定し、これを好中球活性化の指標とすることもできる。

　本明細書において、貪食細胞としては、マクロファージ及び単球、多核白血球、樹状細胞等が挙げられ、その食菌作用とは、免疫系細胞として、外界からの異物としての病原菌等をその細胞内の小胞にとりこみ、その小胞と細胞内のリソソームを融合させることにより、当該異物を消化する作用をいう。貪食細胞の食菌作用賦活とは、これらの貪食細胞のいずれかを活性化してその食菌作用を高めるものであれば特に限定されない。好ましくは、マクロファージ及び好中球のうちの１方ないし双方の食菌作用を亢進するものをいう。

　本明細書において、抗細菌感染症剤とは、細菌による感染症、すなわち、細菌が体内に存在することにより引き起こされる諸症状を軽減するものであればよい。細菌としては、例えば、ウェルシュ菌などのほか、緑膿菌、病原性大腸菌などを含む。

　本明細書において、菌産生毒素中和剤とは、細菌の産生する毒素の作用を軽減するものをいう。抗細菌感染症剤という場合には、細菌の増殖ないし細菌からの毒素の放出を抑制することにより、細菌による諸症状を軽減するものも含まれるのに対し、毒素中和剤としう場合には、毒素のみが生体に作用しようという状況においても、毒素の作用を低減させるものであり、毒素を吸着し、または、毒素を不活性なものに改変する、毒素を貪食細胞にとりこむ、さらには取り込んだ毒素を消化するなどの作用をいう。

　本発明において、抗癌剤とは、抗腫瘍活性を有し、癌の予防または治療のために用いられる薬剤を意図する。本発明において抗癌剤が作用する腫瘍は、原発性の腫瘍、転移腫瘍であるとを問わない。したがって、本発明の抗癌剤は、原発性癌および転移腫瘍の治療のみならず、原発性癌の治療と同時または治療後に転移腫瘍の予防のために用いられてもよい。また、本発明において抗癌剤が作用する腫瘍として、例えば、乳癌、精巣癌、睾丸腫瘍、膵臓癌、横隔膜腫瘍、肺癌、卵巣癌、胃癌、胆嚢癌、腎臓癌、前立腺癌、食道癌、肝臓癌、口腔癌、結腸癌、大腸癌、直腸癌、子宮癌、胆管癌、膵島細胞癌、副腎皮質癌、膀胱癌、甲状腺癌、皮膚癌、悪性カルチノイド腫瘍、メラノーマ、グリオーマ、骨肉腫、骨髄腫、軟部組織肉腫、神経芽細胞腫、悪性リンパ腫や白血病等が挙げられるが、なかでも、乳癌、精巣癌、膵臓癌または横隔膜腫瘍を好適に例示することができる。

　本明細書において、本発明のトレハロース化合物、または、当該化合物と薬理学的に許容できるキャリアとを含有する医薬組成物を、免疫賦活剤、細菌毒素中和剤、抗癌剤などの医薬用途に用いることができる。

　本明細書において、薬理学的に許容できるキャリアとは、薬理学的及び製剤学的に許容されるものであればよく、特に制限されない。例えば、賦形剤、結合剤、分散剤、増粘剤、滑沢剤、pH調整剤、可溶化剤等の一般に製剤の製造に使用される担体のほか、抗生物質、抗菌剤、殺菌剤、防腐剤、ビルダー、漂白剤、酵素、キレート剤、消泡剤、着色料(染料、顔料等)、柔軟剤、保湿剤、界面活性剤、酸化防止剤、香料、矯味剤、矯臭剤、溶媒等が含まれる。薬理学的に許容できるキャリアは、本発明のトレハロース化合物（１）の活性を妨げない範囲で配合することができ、キャリアを配合することにより、本発明のトレハロース化合物（１）の吸収性や血中濃度に影響を及ぼし、体内動態の変化をもたらす
ことも可能である。

　本明細書において、本件化合物を投与する方法とは、本発明のトレハロース化合物それ自体または当該化合物を含有する医薬組成物をヒトまたは動物に投与する方法であり、本件化合物または医薬組成物は、通常の医療製剤の形態に製剤することができる。当該医療製剤としては、上記薬理学的キャリア用いて適宜調製される。投与形態としては特に限定はなく、治療目的に応じて適宜選択して使用される。その代表的なものとして錠剤、丸剤、散剤、液剤、懸濁剤、乳剤、顆粒剤、カプセル剤、坐剤、注射剤（液剤、懸濁剤、乳剤）等が挙げられる。これら製剤は、通常用いられる方法により製造すればよい。

　上記医療製剤の投与量は、用法、患者の年齢、性別、疾患の程度、その他の条件に応じて適宜選択すればよく、通常、有効成分であるトレハロース化合物（１）を、１日あたり体重１ｋｇに対して０．０１～１００ｍｇ、好ましくは０．１～５０ｍｇを１回～数回に分けて投与される。

　上記投与量は、種々の条件で変動するので、上記範囲より少ない投与量で充分な場合もあるし、また上記範囲を超えた投与量が必要な場合もある。

　なお、本明細書において用いられる用語は、特定の実施態様を説明するために用いられるのであり、発明を限定する意図ではない。
　また、本明細書において用いられる「含む」との用語は、文脈上明らかに異なる理解をすべき場合を除き、記述された事項（部材、ステップ、要素、数字など）が存在することを意図するものであり、それ以外の事項（部材、ステップ、要素、数字など）が存在することを排除しない。
　異なる定義が無い限り、ここに用いられるすべての用語（技術用語及び科学用語を含む。）は、本発明が属する技術の当業者によって広く理解されるのと同じ意味を有する。ここに用いられる用語は、異なる定義が明示されていない限り、本明細書及び関連技術分野における意味と整合的な意味を有するものとして解釈されるべきであり、理想化され、又は、過度に形式的な意味において解釈されるべきではない。
　本発明の実施態様は模式図を参照しつつ説明される場合があるが、模式図である場合、説明を明確にするために、誇張されて表現されている場合がある。
　第一の、第二のなどの用語が種々の要素を表現するために用いられるが、これらの要素はそれらの用語によって限定されるべきではないことが理解される。これらの用語は一つの要素を他の要素と区別するためのみに用いられているのであり、例えば、第一の要素を第二の要素と記し、同様に、第二の要素は第一の要素と記すことは、本発明の範囲を逸脱することなく可能である。

　以下、実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明はもとより下記実施例により制限を受けるものではなく、前・後記の趣旨に適合し得る範囲で適当に変更を加えて実施することも可能であり、それらはいずれも本発明の技術的範囲に含まれる。

<実施例　トレハロースジエステル化合物の化学合成>
　合成スキーム１で示された式（３）で表される糖の水酸基が保護されたトレハロース化合物と、式（４）または式（６）で表されるそれぞれ所望のカルボニル化合物とのエステル化反応を行い、式（７）で表される化合物を合成した後、糖の水酸基の脱保護を行い、所望のトレハロースジエステル化合物を得た。

　以下にその一部の製造例を示すが、本発明は、以下の製造例に限られるものではない。
製造例Ａ－１
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ｃ－１に記載の方法により得られたカルボン酸（２－デシルドデカン酸）（１４５ｍｇ，４２５μｍｏｌ）とトレハロース誘導体（２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンゾキシ－α，α’－トレハロース）（１５０ｍｇ，１７０μｍｏｌ）を無水ジクロロメタン溶液（２ｍｌ）に溶かし、粉末モレキュラーシーブス４Ａ（０．３ｇ）、４-ジメチルアミノピリジン（２０．８ｍｇ，１７０μｍｏｌ）、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩［以下、ＥＤＣＩと略す］（９７．８ｍｇ，５１０μｍｏｌ）を順次加えて４時間加熱還流反応した。セライト－５３５を用いて濾過し、蒸留水を加えジクロロメタンで３回抽出した。有機層に無水硫酸マグネシウムを加えて乾燥し、濾過後濃縮した。残渣をカラムクロマトグラフィー（ヘキサン：酢酸エチル＝１０：１）を用いて精製し、ジエステル体である６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロース（２４２ｍｇ，９３％）を無色無定形固体として得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +57.7^o(c 0.9 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2941, 2862, 1946, 1869, 1804, 1741 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.87 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.14-1.32 (64H, m), 1.43 (4H, m), 1.55 (4H, m), 2.32 (2H, m), 3.54 (2H, dd, J = 9.0, 3.6 Hz), 3.56 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.04 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.10 (2H, m), 4.19 (4H, m), 4.53 (2H, d, J = 10.8 Hz), 4.67 (2H, d, J = 11.7 Hz), 4.72 (2H, d, J = 11.7 Hz), 4.85 (2H, d, J = 10.8 Hz), 4.87 (2H, d, J = 10.8 Hz), 4.99 (2H, d, J = 10.8 Hz), 5.18 (2H, d, J = 3.6 Hz), 7.22-7.37 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.13, 22.69, 27.41, 27.45, 29.33, 29.35, 29.51, 29.53, 29.63, 31.90, 32.32, 45.70, 62.07, 69.16, 73.04, 75.28, 75.71, 77.82, 79.68, 81.55, 93.78, 127.38, 127.61, 127.73, 127.86, 127.92, 128.34, 128.43, 137.79, 137.94, 138.59, 176.16.

製造例Ａ－２
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－オクチルデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｃ－２に記載の方法により得られた２－オクチルデカン酸を用い、製造例Ａ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－オクチルデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ¹⁶ +62.3^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2927, 2855, 1947, 1868, 1808, 1737 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.85 (6H, t, J = 6.9 Hz), 0.86(6H, t, J = 6.9 Hz), 1.12-1.34 (48H, m), 1.43 (4H, m), 1.55 (4H, m), 2.32 (2H, m), 3.54 (2H, dd, J = 9.6, 3.6 Hz), 3.57 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.04 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.10 (2H, m), 4.19 (4H, m), 4.53 (2H, d, J = 10.5 Hz),4.67 (2H, d, J = 11.7 Hz), 4.71 (2H, d, J = 11.7 Hz), 4.85 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.87 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.99 (2H, d, J = 10.5 Hz), 5.18 (2H, d, J = 3.6 Hz), 7.22-7.38 (30H, m); ¹³CNMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.12, 22.64, 22.67, 27.40, 27.45, 29.27, 29.45, 29.48, 29.62, 31.83, 31.85, 32.34, 45.71, 62.06, 69.15, 73.04, 75.27, 75.71, 77.24, 77.82, 79.68, 81.55, 93.75,127.37, 127.61, 127.72, 127.84, 127.91, 127.93, 128.38, 128.44, 137.80, 137.95, 138.59, 176.15; FABMS m/z (%)1438 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₉₀H₁₂₆O₁₃Na (M⁺+Na) 1437.9096, Found 1437.9126.

製造例Ａ－３
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－ノニルウンデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｃ－３に記載の方法により得られた２－ノニルウンデカン酸を用い、製造例Ａ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－ノニルウンデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ¹⁶ +64.8^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2926, 2854, 1946, 1871, 1806, 1738 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.86 (6H, t, J = 7.0 Hz), 0.87(6H, t, J = 7.0 Hz), 1.10-1.34 (56H, m), 1.43 (4H, m), 1.55 (4H, m), 2.32 (2H, m), 3.55 (2H, dd, J = 9.6, 3.6 Hz), 3.57 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.04 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.11 (2H, m), 4.19 (4H, m), 4.53 (2H, d, J = 10.2 Hz),4.67 (2H, d, J = 11.7 Hz), 4.72 (2H, d, J = 11.7 Hz), 4.85 (2H, d, J = 10.2 Hz), 4.87 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.99 (2H, d, J = 10.5 Hz), 5.18 (2H, d, J = 3.6 Hz), 7.22-7.37 (30H, m); ¹³CNMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.11, 22.67, 27.39, 27.45, 29.28, 29.30, 29.48, 29.51, 29.56, 29.57, 29.61, 31.85, 31.88, 32.33, 45.69, 62.06, 69.15, 73.03, 75.26, 75.70, 77.23, 77.82, 79.68,81.54, 93.75, 127.36, 127.59,127.71, 127.83, 127.90, 127.91, 128.37, 128.42, 137.79, 137.93, 138.58, 176.12;FABMS m/z (%) 1934 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₉₄H₁₃₄O₁₃Na (M⁺+Na) 1493.9722, Found 1493.9701.

製造例Ａ－４
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－ウンデシルトリデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｃ－４に記載の方法により得られた２－ウンデシルトリデカン酸を用い、製造例Ａ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－ウンデシルトリデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +60.0^o(c 0.9 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2940, 2862, 1946, 1869, 1805, 1740 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.87 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.14-1.34 (72H, m), 1.43 (4H, m), 1.56 (4H, m), 2.32 (2H, m), 3.54 (2H, dd, J = 10.2, 3.6 Hz), 3.56 (2H, t, J = 8.7 Hz), 4.04 (2H, t, J = 10.2 Hz), 4.12 (2H, m), 4.19 (4H, m), 4.53 (2H, d, J =10.5 Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.0Hz), 4.72 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.85 (2H, d, J = 10.8 Hz), 4.88 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.99 (2H, d, J = 10.8 Hz), 5.18 (2H, d, J = 3.6 Hz), 7.22-7.37 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃)δ14.12, 22.67, 27.40, 27.44, 29.34, 29.50, 29.52, 29.62, 31.90, 32.30, 45.68, 62.05, 69.14,73.03, 75.25, 75.69, 77.80, 79.66, 81.52,93.76, 127.35, 127.58, 127.70, 127.82, 127.90, 128.36, 128.40, 137.76, 137.92, 138.57, 176.12.

製造例Ａ－５
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－ドデシルテトラデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｃ－５に記載の方法により得られた２－ドデシルテトラデカン酸を用い、製造例Ａ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－ドデシルテトラデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +60.8^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2940, 2862, 1946, 1869, 1804, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.14-1.34 (80H, m), 1.43 (4H, m), 1.56 (4H, m), 2.32 (2H, m), 3.54 (2H, dd, J = 9.6, 3.6 Hz), 3.57 (2H, t, J = 8.4 Hz), 4.04 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.12 (2H, m), 4.19 (4H, m), 4.53 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.72 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.86 (2H, d, J = 10.8 Hz), 4.87 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.99 (2H, d, J = 10.8 Hz), 5.18 (2H, d, J = 3.6 Hz), 7.24-7.37 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.12, 22.69, 27.41, 27.46, 29.36, 29.53, 29.66, 31.92, 32.32, 45.70, 62.09, 69.19, 73.07, 75.27, 75.71, 77.86, 79.72, 81.56, 93.78, 127.71, 127.62, 127.74, 127.86, 127.94, 128.40, 128.45, 137.83, 138.00, 138.64, 176.17.

製造例Ａ－６
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－トリデシルペンタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｃ－６に記載の方法により得られた２－トリデシルペンタデカン酸を用い、製造例Ａ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－トリデシルペンタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +50.2^o(c 1.1 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2929, 2855, 1945, 1868, 1804, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (12H, t, J = 6.6 Hz), 1.10-1.34 (88H, m), 1.44 (4H, m), 1.56 (4H, m), 2.32 (2H, m), 3.54 (2H, dd, J = 9.8, 3.6 Hz), 3.58 (2H, t, J = 9.8 Hz), 4.04 (2H, t, J = 9.8 Hz), 4.13 (2H, m), 4.19 (4H, m), 4.53 (2H, d, J = 10.8 Hz), 4.66 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.73 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.85 (2H, d, J = 11.0 Hz), 4.87 (2H, d, J = 10.8 Hz), 4.99 (2H, d, J = 11.0 Hz), 5.18 (2H, d, J = 3.6 Hz), 7.20-7.38 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.11, 22.70, 27.42, 27.46, 29.37, 29.54, 29.66, 31.93, 32.33, 45.72, 62.12, 69.23, 73.10, 75.26, 75.69, 77.23, 77.67, 77.91, 79.77, 81.58, 93.77, 127.42, 127.61, 127.74, 127.85, 127.94, 128.40, 128.44, 128.46, 137.86, 138.05, 138.68, 176.15.

製造例Ａ－７
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－ペンタデシルヘプタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｃ－８に記載の方法により得られた２－ペンタデシルヘプタデカン酸を用い、製造例Ａ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－ペンタデシルヘプタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +44.3^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2941, 2861, 1945, 1868, 1812, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (12H, t, J = 7.2 Hz), 1.12-1.38 (104H, m), 1.43 (4H, m), 1.56 (4H, m), 2.32 (2H, m), 3.54 (2H, dd, J = 9.6, 3.6 Hz), 3.57 (2H, t, J = 8.7 Hz), 4.04 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.12 (2H, m), 4.20 (4H, m), 4.53 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.72 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.86 (2H, d, J = 10.8 Hz), 4.87 (2H, d, J = 10.8Hz), 4.99 (2H, d, J = 10.5 Hz), 5.18 (2H, d, J = 3.6 Hz), 7.22-7.37 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.14, 22.70, 27.25, 27.42, 27.45, 29.38, 29.55, 29.68, 29.72, 31.94, 32.32, 45.70, 62.07, 69.16, 73.05, 75.29, 75.72, 77.82, 79.68, 81.55, 93.78, 127.40, 127.62, 127.75,127.95, 128.41, 128.45, 137.81, 137.95, 138.61, 176.19.

製造例Ａ－８
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－ヘキサデシルオクタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｃ－９に記載の方法により得られた２－ヘキサデシルオクタデカン酸を用い、製造例Ａ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－ヘキサデシルオクタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +48.8^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2938, 2857, 1944, 1869, 1808, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.10-1.36 (112H, m), 1.43 (4H, m), 1.56 (4H, m), 2.32 (2H, m), 3.55 (2H, dd, J = 9.3, 3.6 Hz), 3.57 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.04 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.11 (2H, m), 4.19 (4H, m), 4.53 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.72 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.86 (2H, d, J =10.8 Hz), 4.87 (2H, d, J = 10.5Hz), 4.99 (2H, d, J = 10.8 Hz), 5.18 (2H, d, J = 3.6 Hz), 7.22-7.37 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.15, 22.71, 27.43, 29.39, 29.56, 29.69, 29.73, 31.94, 32.31, 45.70, 62.08, 69.17, 73.05, 75.31, 75.74, 77.83, 79.68, 81.56, 93.81, 127.41, 127.64, 127.76, 127.96, 128.42, 128.47, 137.83, 138.00, 138.62, 176.22.

実施例１：製造例α－１
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ａ－１に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロース（２００ｍｇ，１３１μｍｏｌ）をクロロホルム：メタノール：酢酸（１：１：０．０５）の混合溶媒（４ｍｌ）に溶かし、水酸化パラジウム（２０ｗ／ｗ％，８ｍｇ，１１．４μｍｏｌ）を加えて１気圧水素下、６時間撹拌した。反応混合液を濾過後濃縮し、残渣をカラムクロマトグラフィー（ジクロロメタン：メタノール＝１０：１）で精製して、６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－α，α’－トレハロース（１２５ｍｇ，９７％）を無色無定形固体として得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +61.8^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3358, 2940, 2861, 1746 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.88 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.25 (56H, m),1.45 (8H, m), 1.58 (4H, m), 1.83 (4H, m), 2.58 (2H, m), 4.18 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.29 (2H, dd, J = 9.3, 3.6 Hz), 4.73 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.88 (2H, dd, J = 11.7, 5.1 Hz), 5.07 (4H, m), 5.87 (2H, d, J = 3.6 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N) δ14.29, 22.95, 27.75, 27.80, 29.62, 29.80, 29.90, 29.95, 32.14, 32.82, 46.16, 63.93, 71.54, 71.94, 73.31, 74.81, 95.69, 176.26; FABMS m/z (%) 1010 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₅₆H₁₀₆O₁₃Na (M⁺+Na) 1009.7532, Found 1009.7498.

実施例２：製造例α－２
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－オクチルデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ａ－２に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（２－オクチルデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例α－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－オクチルデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。

　colorless syrup; [α]_D ¹⁴ +70.2^o(c 0.6 CHCl₃); FT IR (neat) 3300, 2929, 2856, 1743 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.86 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.21 (40H, m),1.46 (8H, m), 1.57 (4H, m), 1.80 (4H, m), 2.56 (2H, m), 4.19 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.29 (2H, dd, J = 9.6, 3.6 Hz), 4.74 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.88 (2H, dd, J = 12.0, 4.8 Hz), 5.08 (4H, m), 5.87 (2H, d, J = 3.6 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N) δ13.69, 22.32, 27.12, 27.19, 28.96, 29.11, 29.33, 31.47, 32.23, 45.55, 63.25, 70.94, 71.30, 72.69, 74.18, 95.14, 175.68; FABMS m/z (%) 898 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺)m/z calcd for C₄₈H₉₀O₁₃Na (M⁺+Na) 897.6279, Found 897.6249.

実施例３：製造例α－３
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－ノニルウンデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ａ－３に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（２－ノニルウンデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例α－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－ノニルウンデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
colorless syrup; [α]_D ¹⁴+64.9^o (c 0.6 CHCl₃); FT IR (neat) 3306, 2928, 2855, 1742 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.87 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.22 (48H, m), 1.42 (8H, m), 1.54 (4H, m), 1.79 (4H, m), 2.56 (2H, m), 4.19 (2H, t, J = 9.0 Hz),4.39 (2H, dd, J = 9.0, 3.6 Hz), 4.74 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.88 (2H, dd, J = 11.7, 4.8 Hz), 5.08 (4H, m), 5.88 (2H, d, J = 3.6 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N) δ13.69, 22.32, 27.14, 27.20, 28.97, 29.17, 29.27, 29.34, 31.51, 32.22, 45.55, 63.28, 70.94, 71.31, 72.69, 74.18, 95.13, 175.67; FABMS m/z (%) 954 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₅₂H₉₈O₁₃Na (M⁺+Na) 953.6905,Found 953.6862.
実施例４：製造例α－４
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－ウンデシルトリデカノイル）－α，α’－トレハロースの
合成］

　製造例Ａ－４に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（２－ウンデシルトリデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例α－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－ウンデシルトリデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ¹⁴ +58.5^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3297, 2934, 2856, 1742 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.88 (12H, t, J = 6.6 Hz), 1.26 (64H, m),1.45 (8H, m), 1.58 (4H, m), 1.82 (4H, m), 2.58 (2H, m), 4.18 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.29 (2H, dd, J = 9.0, 3.6 Hz), 4.73 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.88 (2H, dd, J = 11.7, 5.1 Hz), 5.07 (4H, m), 5.88 (2H, d, J = 3.6 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N) δ14.29, 22.94, 27.75, 27.80, 29.63, 29.81, 29.96, 32.14, 32.81, 46.15, 63.93, 71.54, 71.94, 73.31, 74.81, 95.67, 176.25; FABMS m/z (%) 1066 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₆₀H₁₁₄O₁₃Na (M⁺+Na) 1065.8157, Found 1065.8160.

実施例５：製造例α－５
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－ドデシルテトラデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ａ－５に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（２－ドデシルテトラデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例α－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－ドデシルテトラデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ¹⁴ +54.6^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3310, 2937, 2857, 1742 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.88 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.28 (72H, m),1.46 (8H, m), 1.58 (4H, m), 1.82 (4H, m), 2.59 (2H, m), 4.18 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.29 (2H, dd, J = 9.0, 3.6 Hz), 4.73 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.88 (2H, dd, J = 11.7, 5.1 Hz), 5.08 (4H, m), 5.87 (2H, d, J = 3.6 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N) δ14.30, 22.97, 27.77, 27.82, 29.66, 29.83, 29.99, 32.17, 32.82, 46.16, 63.94, 71.53, 71.95, 73.31, 74.80, 95.66, 176.24; FABMS m/z (%) 1122 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₆₄H₁₂₂O₁₃Na (M⁺+Na) 1121.8784, Found 1121.8831.

実施例６：製造例α－６
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－トリデシルペンタデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ａ－６に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（２－トリデシルペンタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例α－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－トリデシルペンタデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ¹⁹ +52.7^o(c 0.6 CHCl₃); FT IR (neat) 3313, 2927, 2854, 1741 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.88 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.29 (80H, m),1.46 (8H, m), 1.58 (4H, m), 1.83 (4H, m), 2.59 (2H, m), 4.19 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.29 (2H, dd, J = 9.6, 3.6 Hz), 4.74 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.89 (2H, dd, J = 11.7, 5.1 Hz), 5.08 (4H, m), 5.88 (2H, d, J = 3.6 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N) δ14.28, 22.94, 27.75, 27.80, 29.63, 29.82, 29.98, 32.14, 32.80, 46.14, 63.92, 71.53, 71.94, 73.30, 74.79, 95.66, 176.21; FABMS m/z (%) 1178 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₆₈H₁₃₀O₁₃Na (M⁺+Na) 1177.9409, Found 1177.9404.

実施例７：製造例α－７
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－ペンタデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ａ－７に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（２－ペンタデシルヘプタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例α－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－ペンタデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ¹⁹ +44.8^o(c 0.5 CHCl₃); FT IR (neat) 3330, 2925, 2853, 1741 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.87 (12H, t, J = 7.2 Hz), 1.31 (96H, m),1.47 (8H, m), 1.58 (4H, m), 1.83 (4H, m), 2.59 (2H, m), 4.19 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.29 (2H, dd, J = 9.0, 3.6 Hz), 4.74 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.88 (2H, dd, J = 11.4, 4.8 Hz), 5.08 (4H, m), 5.87 (2H, d, J = 3.6 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N) δ14.23, 22.89, 27.73, 27.79, 29.58, 29.80, 29.91, 29.97, 32.09, 32.78, 46.13, 63.92, 71.55, 71.95, 73.32, 74.80, 95.67, 176.21; FABMS m/z (%) 1290 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₇₆H₁₄₆O₁₃Na (M⁺+Na) 1290.0661, Found 1290.0677.

実施例８：製造例α－８
［６，６’－ビス－Ｏ－（２－ヘキサデシルオクタデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ａ－８に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（２－ヘキサデシルオクタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例α－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（２－ヘキサデシルオクタデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ¹⁷ +45.1^o(c 0.5 CHCl₃); FT IR (neat) 3308, 2937, 2856, 1741 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.87 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.31 (104H, m), 1.46 (8H, m), 1.57 (4H, m), 1.80 (4H, m), 2.56 (2H, m), 4.19 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.29 (2H, dd, J = 9.3, 3.6 Hz), 4.74 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.88 (2H, dd, J = 11.4, 4.8 Hz), 5.08 (4H, m), 5.87 (2H, d, J = 3.6 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N)δ14.25, 22.90, 27.75, 27.80, 29.60, 29.82, 29.91, 29.99, 32.10, 32.80, 46.14, 63.91, 71.55,71.95, 73.32, 74.80, 95.66, 176.24; FABMS m/z (%) 1346 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₈₀H₁₅₄O₁₃Na (M⁺+Na) 1346.1288, Found 1346.1287.

製造例Ｂ－１
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ｄ－１に記載の方法により得られたカルボン酸（３－ノニルドデカン酸）（２３６ｍｇ，７２４μｍｏｌ）とトレハロース誘導体（２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンゾキシ－α，α’－トレハロース）（２５６ｍｇ，２９０μｍｏｌ）を無水ジクロロメタン溶液（１０ｍｌ）に溶かし、粉末モレキュラーシーブス４Ａ（１ｇ）、４-ジメチルアミノピリジン（３５．４ｍｇ，２９０μｍｏｌ）、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩［以下、ＥＤＣＩと略す］（２２２ｍｇ，１．１６ｍｍｏｌ）を順次加えて１０時間加熱還流反応した。セライト－５３５を用いて濾過し、飽和食塩水を加えジクロロメタンで２回抽出した。有機層に無水硫酸マグネシウムを加えて乾燥し、濾過後濃縮した。残渣をカラムクロマトグラフィー（ヘキサン：酢酸エチル＝１５：１）を用いて精製し、ジエステル体である６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロース（３５０ｍｇ，８０％）を無色無定形固体として得た。
　colorless syrup; [α]_D ²¹ +65.3^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3063, 3031, 2925, 2853, 1944, 1871, 1806, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.87 (12H, t, J = 5.1 Hz), 1.20 (64H, m), 1.81 (2H, m), 2.20 (4H, d, J = 6.9 Hz), 3.54 (2H,t, J = 9.3 Hz), 3.56 (2H, m), 4.04 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.09 (4H, m), 4.23 (2H,m), 4.51 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.72 (2H, d, J = 12.0Hz), 4.86 (4H, d, J = 10.5 Hz), 5.00 (2H, d, J = 10.5 Hz), 5.17 (2H, d, J = 3.6Hz), 7.23-7.37 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.13, 22.68, 26.51, 29.33, 29.56, 29.64, 29.92, 31.89, 33.65, 33.76, 34.89, 39.08, 62.35, 69.12, 72.94, 75.30, 75.70, 77.60, 79.38, 81.56, 94.02, 127.44, 127.63, 127.78, 127.92, 128.09,128.41, 128.47, 137.78, 137.84, 138.60, 173.24; FABMS m/z (%) 1522 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₉₆H₁₃₈O₁₃Na (M⁺+Na) 1522.0036, Found 1522.0020.

製造例Ｂ－２
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－オクチルウンデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｄ－２に記載の方法により得られた３－オクチルウンデカン酸を用い、製造例Ｂ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－オクチルウンデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +41.8^o(c 2.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2932, 2855, 1947, 1867, 1806, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.86 (6H, t, J = 6.9 Hz), δ0.87 (6H, t, J = 6.9 Hz), 1.20 (56H, m), 1.81 (2H, m), 2.20 (4H, d, J = 6.9 Hz), 3.54 (2H, t, J = 8.4 Hz), 3.56 (2H, m), 4.04 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.09 (4H, m), 4.23 (2H, m), 4.51 (2H, d, J =10.5 Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.0Hz), 4.72 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.86 (4H, d, J = 10.5 Hz), 5.00 (2H, d, J = 10.5 Hz), 5.17 (2H, d, J = 3.6 Hz), 7.23-7.37 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.14, 22.69, 26.52, 29.32, 29.61, 29.94, 31.89, 33.69, 33.80, 34.91, 39.10, 62.38, 69.14,72.96, 75.29, 75.70, 77.62, 79.40, 81.58, 93.95, 94.04, 127.44, 127.62, 127.77, 127.91, 128.07, 128.41, 128.46, 137.78, 137.85, 138.59, 173.23; FABMS m/z (%) 1466 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₉₂H₁₃₀O₁₃Na (M⁺+Na) 1465.9409, Found 1465.9392.

製造例Ｂ－３
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－デシルトリデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｄ－３に記載の方法により得られた３－デシルトリデカン酸を用い、製造例Ｂ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－デシルトリデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +53.6^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3063, 3030, 2926, 2854, 1946, 1874, 1804, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.87 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.21 (72H, m), 1.81 (2H, m), 2.19 (4H, d, J = 6.9 Hz), 3.54 (2H,t, J = 8.4 Hz), 3.56 (2H, m), 4.04 (2H, t, J = 8.4 Hz), 4.11 (4H, m), 4.21 (2H,m), 4.51 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.72 (2H, d, J = 12.0Hz), 4.86 (4H, d, J = 10.5 Hz), 5.00 (2H, d, J = 10.5 Hz), 5.17 (2H, d, J = 3.6Hz), 7.23-7.36 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.14, 22.70, 26.51, 29.36, 29.66, 29.95, 31.93, 33.67, 77.23, 77.62, 79.40, 81.58, 94.04, 127.46, 127.65,127.80, 127.93, 128.10, 128.43, 128.49, 137.80, 137.87, 138.62, 173.27; FABMS m/z (%) 1579 (M⁺+H+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₁₀₀H₁₄₇O₁₃Na (M⁺+H+Na) 1579.0787, Found 1579.0763.

製造例Ｂ－４
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－ウンデシルテトラデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｄ－４に記載の方法により得られた３－ウンデシルテトラデカン酸を用い、製造例Ｂ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－ウンデシルテトラデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +58.1^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2926, 2854, 1946, 1867, 1806, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (12H, t, J = 7.2 Hz), 1.21 (80H, m), 1.81 (2H, m), 2.19 (4H, d, J = 6.9 Hz), 3.54 (2H,t, J = 8.4 Hz), 3.55 (2H, m), 4.04 (2H, t, J = 6,9 Hz), 4.10 (4H, m), 4.20 (2H,m), 4.51 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.71 (2H, d, J = 12.0Hz), 4.86 (4H, d, J = 10.5 Hz), 5.00 (2H, d, J = 10.5 Hz), 5.17 (2H, d, J = 3.6Hz), 7.19-7.36 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.14, 22.71, 26.53, 29.38, 29.67, 29.95, 31.93, 33.68, 33.79, 34.91, 39.10, 62.37, 69.14, 72.96, 75.31, 75.71, 77.63, 79.40, 81.58, 94.04, 127.46, 127.64, 127.80, 127.93, 128.10, 128.43, 128.49, 137.80, 137.87, 138.62, 173.27; FABMS m/z (%) 1635 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₁₀₄H₁₅₄O₁₃Na (M⁺+Na) 1634.1288, Found 1634.1298.

製造例Ｂ－５
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－ドデシルペンタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，
４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｄ－５に記載の方法により得られた３－ドデシルペンタデカン酸を用い、製造例Ｂ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－ドデシルペンタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +68.9^o(c 0.9 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3063, 3031, 2925, 2853, 1944, 1867, 1806, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.21 (88H, m), 1.81 (2H, m), 2.20 (4H, d, J = 6.9 Hz), 3.54 (2H,t, J = 8.7 Hz), 3.57 (4H, m), 4.05 (2H, t, J = 8.7 Hz), 4.05 (2H, t, J = 8.7 Hz), 4.11 (2H, m), 4.21 (2H, m), 4.52 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.3 Hz), 4.72 (2H, d, J = 12.3 Hz), 4.86 (4H, d, J = 10.5 Hz), 5.01 (2H, d, J = 10.5Hz), 5.18 (2H, d, J = 3.3 Hz), 7.21-7.37 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.14, 22.70,26.53, 29.38, 29.67, 29.95, 31.92, 33.67, 33.78, 34.91, 39.10, 62.37, 69.14, 72.96, 75.30, 75.71, 77.63, 79.40, 81.57, 94.03, 127.45, 127.63, 127.79, 127.93, 128.09, 128.42, 128.48, 137.79, 137.87, 138.62, 173.26; FABMS m/z (%) 1691 (M⁺+H+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₁₀₈H₁₆₃O₁₃Na (M⁺+H+Na) 1691.1993, Found 1691.1992.

製造例Ｂ－６
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－２，３，４，２’，３’
，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、市販の３－トリデシルヘキサデカン酸（和光純薬工業株式会社製）を用い、製造例Ｂ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +49.5^o(c 0.9 CHCl₃); FT IR (neat) 3088, 3064, 3031, 2925, 2853, 1944, 1871, 1806, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.23 (96H, m), 1.81 (2H, m), 2.20 (4H, d, J = 6.9 Hz), 3.54 (4H,m), 4.04 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.11 (4H, m), 4.21 (2H, m), 4.51 (2H, d, J = 10.8Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.72 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.86 (4H, d, J = 10.8 Hz), 5.00 (2H, d, J = 10.8 Hz), 5.17 (2H, d, J = 3.6 Hz), 7.23-7.37 (30H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃)δ14.16, 22.72, 26.54, 29.40, 29.69, 29.72, 29.97, 31.95, 33.68, 33.79, 34.92, 39.11, 62.37,69.14, 72.96, 75.33, 75.72, 77.24, 77.62,79.40, 81.59, 94.07, 127.46, 127.66, 127.81, 127.94, 128.11, 128.44, 128.50, 137.80, 137.87,138.63, 173.28; FABMS m/z (%) 1691 (M⁺+H+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₁₁₂H₁₇₁O₁₃Na (M⁺+H+Na) 1747.2619, Found 1747.2618.

製造例Ｂ－７
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースの合成］

　カルボン酸として、製造例Ｄ－６に記載の方法により得られた３－テトラデシルヘプタデカン酸を用い、製造例Ｂ－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²⁰ +43.7^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3087, 3064, 3032, 2924, 2853, 1943, 1871, 1796, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.23 (104H, m), 1.80 (2H, m), 2.19 (4H, d, J = 6.9 Hz), 3.54 (4H, m), 4.04 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.11(4H, m), 4.21 (2H, m), 4.51 (2H, d, J = 10.5 Hz), 4.67 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.72 (2H, d, J = 12.0 Hz), 4.86 (4H, d, J = 10.5 Hz), 5.00 (2H, d, J = 10.5 Hz), 5.17 (2H, d, J = 3.3 Hz), 7.22-7.37 (30H, m);¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.16, 22.72, 26.55, 29.39, 29.70, 29.73, 29.97, 31.95, 33.68, 33.79, 34.92, 39.11, 62.38, 69.15, 72.97, 75.32, 75.72, 77.23, 77.63, 79.41, 81.59, 94.06, 127.46, 127.65, 127.81, 127.94, 128.11, 128.44, 128.49, 137.81, 137.88, 138.63, 173.27; FABMS m/z (%) 1802 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcdfor C₁₁₆H₁₇₈O₁₃Na (M⁺+Na) 1802.3185, Found 1802.3175.

実施例９：製造例β－１
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ｂ－１に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロース（３５０ｍｇ，２３３μｍｏｌ）をクロロホルム：メタノール：酢酸（５：１：０．５）の混合溶媒（５ｍｌ）に溶かし、水酸化パラジウム（３ｗ／ｗ％，１３ｍｇ，１８．５μｍｏｌ）を加えて１気圧水素下、２７時間撹拌した。反応混合液を濾過後濃縮し、残渣をカラムクロマトグラフィー（ジクロロメタン：メタノール＝１５：１）で精製して、６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－α，α’－トレハロース（１３５ｍｇ，６１％）を無色無定形固体として得た。
　colorless syrup; [α]_D ²¹ +62.8^o(c 0.7 CHCl₃); FT IR (neat) 3316, 2926, 2854, 1743 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.81 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.23 (64H, m),1.99 (2H, m), 2.33 (4H, d, J = 6.6 Hz), 4.13 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.25 (2H, dd,J = 9.6, 3.9 Hz), 4.74 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.78 (2H, d, J = 12.3 Hz), 4.93 (2H, d, J = 12.3 Hz), 4.98 (2H, m), 5.81 (2H, d, J = 3.9 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N) δ14.29, 22.94, 29.84, 29.62, 29.91, 29.94, 30.22, 32.12, 34.10, 35.23, 39.33, 64.26, 71.48, 71.96,73.35, 74.82, 95.82, 173.51; FABMS m/z (%) 982 (M⁺+Na);HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₅₄H₁₀₂O₁₃Na (M⁺+Na) 981.7218, Found 981.7198.

実施例１５：製造例β－２
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－オクチルウンデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ｂ－２に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（３－オクチルウンデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例β－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－オクチルウンデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²¹ +70.7^o(c 0.4 CHCl₃); FT IR (neat) 3275, 2925, 2854, 1742 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.86 (12H, t, J = 7.2 Hz), 1.24 (56H, m),2.03 (2H, m), 2.37 (4H, d, J = 6.6 Hz), 4.19 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.31 (2H, dd,J = 9.6, 3.6 Hz), 4.74 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.85 (2H, dd, J = 11.7, 5.7 Hz), 5.01 (2H, d, J = 11.7 Hz), 5.11 (2H, m), 5.89 (2H, d, J = 3.9 Hz); ¹³C NMR (75 MHzin C₅D₅N) δ14.28, 22.93, 26.83, 26.87, 29.59, 29.87, 30.21, 32.11, 34.10, 35.23, 39.32, 64.26, 71.48, 71.95, 73.35, 74.83, 95.82, 173.52; FABMS m/z (%) 926 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₅₀H₉₄O₁₃Na (M⁺+Na) 925.6592, Found 925.6585.

実施例１０：製造例β－３
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－デシルトリデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ｂ－３に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（３－デシルトリデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例β－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－デシルトリデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²¹ +60.9^o(c 0.9 CHCl₃); FT IR (neat) 3279, 2924, 2854, 1742 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.83 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.24 (72H, m),2.00 (2H, m), 2.35 (4H, d, J = 6.6 Hz), 4.14 (2H, t, J = 8.7 Hz), 4.26 (2H, dd,J = 9.6, 3.3 Hz), 4.74 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.78 (2H, dd, J = 11.7, 5.4 Hz), 4.95 (2H, d, J = 12.0 Hz), 5.01 (2H, m), 5.82 (2H, d, J = 3.9 Hz); ¹³C NMR (75 MHzin C₅D₅N) δ14.10, 22.74, 26.65, 29.41, 29.73, 30.00, 31.92, 33.87, 35.03, 39.16, 64.10, 71.10, 71.57, 72.92, 74.38, 95.14, 173.52; FABMS m/z (%) 1037 (M⁺+Na);HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₅₈H₁₁₀O₁₃Na (M⁺+Na) 1037.7903, Found 1037.7874.

実施例１１：製造例β－４
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－ウンデシルテトラデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ｂ－４に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（３－ウンデシルテトラデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例β－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－ウンデシルテトラデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²¹ +60.6^o(c 0.5 CHCl₃); FT IR (neat) 3289, 2925, 2853, 1743 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.86 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.28 (80H, m),2.04 (2H, m), 2.38 (4H, d, J = 6.6 Hz), 4.19 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.31 (2H, dd,J = 9.0, 3.6 Hz), 4.74 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.85 (2H, dd, J = 11.7, 5.1 Hz), 5.05 (2H, d, J = 11.7 Hz), 5.01 (2H, m), 5.89 (2H, d, J = 3.9 Hz); ¹³C NMR (75 MHzin C₅D₅N) δ14.30, 22.96, 26.92, 29.64, 30.00, 30.27, 32.14, 34.14, 35.26, 39.37, 64.30, 71.52, 72.00, 73.40, 74.87, 95.86, 173.53; FABMS m/z (%) 1094 (M⁺+Na);HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₆₂H₁₁₈O₁₃Na (M⁺+Na) 1093.8470, Found 1093.8458.

実施例１２：製造例β－５
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－ドデシルペンタデカノイル）－α，α’－トレハロースの
合成］

　製造例Ｂ－５に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（３－ドデシルペンタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例β－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－ドデシルペンタデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
colorless syrup; [α]_D ²¹+52.5^o (c 0.3 CHCl₃); FT IR (neat) 3271, 2923, 2853, 1743 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.84 (12H, t, J = 6.3 Hz), 1.25 (88H, m), 2.02 (2H, m),2.36 (4H, d, J = 6.6 Hz), 4.15 (2H, t, J = 9.0 Hz), 4.27 (2H, dd, J= 9.9, 3.6 Hz), 4.74 (2H, t, J = 9.6 Hz), 4.81 (2H, dd, J = 11.4, 4.8 Hz), 4.97(2H, d, J = 11.4 Hz), 5.02 (2H, m), 5.84 (2H, d, J = 2.4 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N) δ14.18, 22.82, 26.73, 29.50, 29.87, 30.12, 32.01, 33.97, 35.12, 39.25,64.18, 71.25, 71.71, 73.06, 74.51, 95.38, 173.52; FABMS m/z (%) 1150 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₆₆H₁₂₆O₁₃Na (M⁺+Na) 1149.9110, Found 1149.9103.

実施例１３：製造例β－６
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－α，α’－トレハロースの合成］

　製造例Ｂ－６に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例β－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²¹ +42.3^o(c 0.5 CHCl₃); FT IR (neat) 3321, 2925, 2853, 1742 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.83 (12H, t, J = 6.6 Hz), 1.27 (96H, m),2.02 (2H, m), 2.36 (4H, d, J = 6.9 Hz), 4.15 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.27 (2H, dd,J = 9.3, 3.3 Hz), 4.75 (2H, t, J = 9.3 Hz), 4.80 (2H, dd, J = 12.0, 5.4 Hz), 4.97 (2H, d, J = 12.0 Hz), 5.02 (2H, m), 5.84 (2H, d, J = 3.6 Hz); ¹³C NMR (75 MHzin C₅D₅N) δ14.30, 22.96, 26.91, 29.65, 30.03, 30.28, 32.15, 34.12, 35.25, 39.36, 64.28, 71.51, 71.99, 73.38, 74.85, 95.83, 173.51; FABMS m/z (%) 1206 (M⁺+Na);HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₇₀H₁₃₄O₁₃Na (M⁺+Na) 1205.9770, Found 1205.9746.

実施例１４：製造例β－７
［６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロー
スの合成］

　製造例Ｂ－７に記載の方法により得られた６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－２，３，４，２’，３’，４’－ヘキサベンジル－α，α’－トレハロースを原料化合物として用い、製造例β－１と同様の方法により、６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロースを得た。
　colorless syrup; [α]_D ²¹ +55.7^o(c 1.0 CHCl₃); FT IR (neat) 3310, 2925, 2853, 1743 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in C₅D₅N) δ0.84 (12H, t, J = 6.9 Hz), 1.26 (104H, m), 2.03 (2H, m), 2.37 (4H, d, J = 6.6 Hz), 4.15 (2H, t, J = 9.9 Hz), 4.28 (2H, dd, J = 9.6, 3.9 Hz), 4.74 (2H, t, J =9.9 Hz), 4.81 (2H, dd, J = 11.7, 5.4 Hz), 4.97 (2H, d, J = 11.7 Hz), 5.03 (2H, m), 5.84 (2H,d, J = 3.6 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in C₅D₅N) δ14.05, 22.67, 26.55, 29.36, 29.67, 29.74, 29.94,31.87, 33.74, 34.95, 39.14, 64.02, 70.91, 71.46, 72.77, 74.20, 94.69, 173.45; FABMS m/z (%) 1262 (M⁺+Na); HRMS (FAB⁺) m/z calcd for C₇₄H₁₄₂O₁₃Na (M⁺+Na) 1262.0348, Found 1262.0348.

［原料となるカルボン酸化合物の合成］
製造例Ｃ－１
［２－デシルドデカン酸の合成］

　乾燥させた二口フラスコに無水ＴＨＦ（１１ｍｌ）を加え、そこに水素化ナトリウム（６０ｗ／ｗ％，３９７ｍｇ，９．９３ｍｍｏｌ）を加えて、０℃に冷却し、マロン酸ジエチル（５３０ｍｇ，３．３１ｍｍｏｌ）を滴下した。０℃で１０分撹拌し、１－ヨードデカン（２．２２ｇ，８．２８ｍｍｏｌ）を加えて、室温で６時間撹拌した。飽和塩化アンモニウム水溶液を加えて、エーテルで３回抽出し、有機層を無水硫酸マグネシウムを用いて乾燥させて、濾過後濃縮した。得られた残渣を１０Ｎ水酸化ナトリウム水溶液（４ｍｌ）とn－ブタノール（８ｍｌ）の混合溶媒に溶かして、６時間加熱還流した。その後、室温まで冷却し、１Ｎ塩酸を加えて、エーテルで３回抽出し、有機層を無水硫酸ナトリウムを用いて乾燥させて、濾過後濃縮した。得られた残渣を酢酸（３．３ｍｌ）に溶かして、１８時間加熱還流した。冷却後、減圧濃縮して酢酸を除去した。残渣をシリカゲルカラムクロトマトグラフィー（ヘキサン：酢酸エチル＝７：１）で精製し、カルボン酸（２－デシルドデカン酸）（７１０ｍｇ，６３％）を無定形白色粉末として得た。
　white powder; FT IR (neat) 3041, 2943, 2857, 2689, 1714 cm^-1; ¹H NMR (300 MHzin CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 7.6Hz), 1.21 (32H, m), 1.48 (2H, m), 1.61 (2H, m),2.34 (1H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.13, 22.72, 27.40, 29.37, 29.50, 29.64, 31.95, 32.19, 45.61, 183.22; CIMS m/z (%) 341 (M⁺+H); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₂H₄₅O₂(M⁺+H) 341.3420, Found 341.3421.

製造例Ｃ－２
［２－オクチルデカン酸の合成］

　１－ヨードデカンに代えて、１－ヨードオクタンを用い、製造例Ｃ－１と同様の方法により、２－オクチルデカン酸を得た。
　white powder; FT IR (neat) 3032, 2927, 2856, 1707 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.9Hz), 1.26 (24H, m), 1.48 (2H, m), 1.63 (2H, m), 2.34 (1H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.12, 22.70, 27.40, 29.30, 29.45, 29.60, 31.90, 32.20, 45.66, 183.50; CIMS m/z (%) 285 (M⁺+H); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₁₈H₃₇O₂(M⁺+H) 285.2794, Found 285.2772.

製造例Ｃ－３
［２－ノニルウンデカン酸の合成］

　１－ヨードデカンに代えて、１－ヨードノナンを用い、製造例Ｃ－１と同様の方法により、２－ノニルウンデカン酸を得た。
　white powder; FT IR (neat) 3019, 2934, 2858, 1712 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.9Hz), 1.26 (28H, m), 1.48 (2H, m), 1.61 (2H, m), 2.33 (1H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.14, 22.72, 27.40, 29.34, 29.50, 29.60, 31.92, 32.20, 45.60, 183.11; CIMS m/z (%) 313 (M⁺+H); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₀H₄₁O₂(M⁺+H) 313.3106, Found 313.3111.

製造例Ｃ－４
［２－ウンデシルトリデカン酸の合成］

　１－ヨードデカンに代えて、１－ヨードウンデカンを用い、製造例Ｃ－１と同様の方法により、２－ウンデシルトリデカン酸を得た。
　white powder; FT IR (neat) 3028, 2941, 2858, 1712 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.9Hz), 1.25 (36H, m), 1.48 (2H, m), 1.61 (2H, m), 2.35 (1H, m); ¹³C NMR (75 MHzin CDCl₃) δ14.17, 22.74, 27.41, 29.40, 29.51, 29.61, 29.65, 29.69, 29.72, 31.97, 32.20, 45.55, 182.81; CIMS m/z (%) 369 (M⁺+H); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₄H₄₉O₂(M⁺+H) 369.3732, Found369.3731.

製造例Ｃ－５
［２－ドデシルテトラデカン酸の合成］

　１－ヨードデカンに代えて、１－ヨードドデカンを用い、製造例Ｃ－１と同様の方法により、２－ドデシルテトラデカン酸を得た。
　white powder; FT IR (neat) 3028, 2943, 2860, 2691, 1714 cm^-1; ¹H NMR (300 MHzin CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 7.1Hz), 1.25 (40H, m), 1.48 (2H, m), 1.61 (2H, m),2.34 (1H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.16, 22.76, 27.43, 29.43, 29.54, 29.64, 29.68, 29.71, 29.72, 31.99, 32.22, 45.68, 183.46; CIMS m/z (%) 397 (M⁺+H); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₆H₅₃O₂(M⁺+H) 397.4045, Found 397.4043.

製造例Ｃ－６
［２－トリデシルペンタデカン酸の合成］

　１－ヨードデカンに代えて、１－ヨードトリデカンを用い、製造例Ｃ－１と同様の方法により、２－トリデシルペンタデカン酸を得た。
　white powder; FT IR (neat) 3032, 2922, 2851, 2691, 1712 cm^-1; ¹H NMR (300 MHzin CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.9Hz), 1.25 (44H, m), 1.48 (2H, m), 1.61 (2H, m),2.35 (1H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.14, 22.72, 27.40, 29.39, 29.50, 29.60, 29.64, 29.69, 31.96, 32.19, 45.54, 182.79; CIMS m/z (%) 425 (M⁺+H); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₈H₅₇O₂(M⁺+H) 425.4358, Found 425.4341.

製造例Ｃ－７
［２－テトラデシルへキサデカン酸の合成］

　１－ヨードデカンに代えて、１－ヨードテトラデカンを用い、製造例Ｃ－１と同様の方法により、２－テトラデシルへキサデカン酸を得た。
　white powder; FT IR (neat) 3028, 2928, 2854, 2684, 1706 cm^-1; ¹H NMR (300 MHzin CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 7.2Hz), 1.25 (48H, m), 1.48 (2H, m), 1.60 (2H, m),2.34 (1H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.13, 22.72, 27.40, 29.40, 29.50, 29.60, 29.64, 29.73, 31.96, 32.19, 45.57, 182.87; CIMS m/z (%) 453 (100 M⁺+H); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₃₀H₆₁O₂(M⁺+H) 453.4671, Found 453.4677.

製造例Ｃ－８
［２－ペンタデシルヘプタデカン酸の合成］

　１－ヨードデカンに代えて、１－ヨードペンタデカンを用い、製造例Ｃ－１と同様の方法により、２－ペンタデシルヘプタデカン酸を得た。
　white powder; FT IR (neat) 3028, 2911, 2848, 2650, 1703 cm^-1; ¹H NMR (300 MHzin CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.9Hz), 1.25 (52H, m), 1.48 (2H, m), 1.61 (2H, m),2.35 (1H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.05, 22.65, 27.33, 29.33, 29.43, 29.53, 29.57, 29.66, 31.90, 32.14, 45.43, 182.41; CIMS m/z (%) 481 (M⁺+H); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₃₂H₆₅O₂(M⁺+H) 481.4984, Found 481.4977.

製造例Ｃ－９
［２－ヘキサデシルオクタデカン酸の合成］

　１－ヨードデカンに代えて、１－ヨードヘキサデカンを用い、製造例Ｃ－１と同様の方法により、２－ヘキサデシルオクタデカン酸を得た。
　white powder; FT IR (neat) 3028, 2914, 2848, 2691, 1705 cm^-1; ¹H NMR (300 MHzin CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.9Hz), 1.25 (56H, m), 1.48 (2H, m), 1.61 (2H, m),2.35 (1H, m); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.14, 22.72, 27.40, 29.40, 29.50, 29.60, 29.64, 29.73, 31.96, 32.20, 45.51, 182.51; CIMS m/z (%) 509 (M⁺+H); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₃₄H₆₉O₂(M⁺+H) 509.5297, Found 509.5298.

製造例Ｄ－１
［３－ノニルドデカン酸の合成］
　以下の製造例Ｄ－１－１からＤ－１－５に記載の方法により、３－ノニルドデカン酸を合成した。
製造例Ｄ－１－１
［Ｎ－メトキシ－Ｎ－メチルデカンアミドの合成］

　デカン酸（４ｇ，２３．２ｍｍｏｌ）を無水ジクロロメタン溶液（８０ｍＬ）に溶かし、１，１－カルボニルジイミダゾール（４．５ｇ，２７．９ｍｍｏｌ）を加えて１．５時間撹拌した。次いでＮ，Ｏ－ジメチルヒドロキシアミン塩酸塩（２．７ｇ，２７．９ｍｍｏｌ）を加えて、さらに３時間撹拌した。蒸留水を加えた後、ジクロロメタンを用いて２回抽出した。有機層に無水硫酸マグネシウムを加えて乾燥し、濾過後濃縮した。得られた残渣をカラムクロマトグラフィー（ヘキサン：酢酸エチル＝８：１）を用いて精製し、アミド体であるＮ－メトキシ－Ｎ－メチルデカンアミド（４．８ｇ，９７％）を無色透明の液体として得た。
　colorless oil; FT IR (neat) 2927, 2854, 1731 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (3H, t, J = 6.9 Hz), 1.27 (12H, m), 1.63 (2H, m), 2.41 (2H, t, J = 7.8 Hz), 3.18 (3H, s), 3.68 (3H, s); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.09, 22.65, 24.65, 29.28, 29.45, 31.86, 61.17, 174.77; CIMS m/z (%) 215 (M⁺); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₁₂H₂₅NO₂(M⁺) 215.1921, Found 215.1903.

製造例Ｄ－１－２
［１０－ノナデカノンの合成］

　研磨した削状マグネシウム（３．２ｇ，１３４ｍｍｏｌ）を加熱し、１－ブロモノナン（１２．９ｍｌ，６７．５ｍｍｏｌ）の無水ＴＨＦ溶液（６８ｍｌ）をゆっくり滴下した。１．５時間加熱環流した後、反応液を室温まで冷却し、これを製造例Ｄ－１－１に記載の方法により得られたＮ－メトキシ－Ｎ－メチルデカンアミド（４．８ｇ，２２．５ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（８０ｍＬ）溶液中に滴下した。３０分撹拌した後、１Ｎ塩酸を加えてジエチルエーテルで２回抽出した。有機層に無水硫酸マグネシウムを加えて乾燥し、濾過後濃縮した。得られた残渣をカラムクロマトグラフィー（ヘキサン：ジクロロメタン＝８：１）で精製し、ケトン体である１０－ノナデカノン（６．０ｇ，９５％）を白色無定形固体として得た。
　colorless solid; FT IR (neat) 2953, 2916, 2847, 1698 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz inCDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.9 Hz), 1.26 (24H, m), 1.55 (4H, m), 2.38 (4H, t, J = 7.5 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.03, 22.63, 23.84, 29.24, 29.41, 31.84,42.74, 211.49; CIMS m/z (%) 282 (M⁺); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₁₉H₃₈O (M⁺) 282.2882, Found 282.2902.

製造例Ｄ－１－３
［エチル３－ノニル－２－ドデケノエートの合成］

　水素化ナトリウム（６０ｗ／ｗ％，６ｇ，１４２ｍｍｏｌ）を無水ＴＨＦ（２００ｍｌ）に溶かし、０℃まで冷却した後、エチルジエチルフォスフォノアセテート（３４ｍｌ，１７１ｍｍｏｌ）を滴下し、３０分撹拌した。室温まで昇温後、製造例Ｄ－１－２に記載の方法により得られた１０－ノナデカノン（６．０ｇ，２１．３ｍｍｏｌ）を加えて、さらに１８時間加熱環流した。蒸留水を加えジエチルエーテルを用いて２回抽出し、有機層に無水硫酸マグネシウムを加えて乾燥し、濾過後濃縮した。得られた残渣をカラムクロマトグラフィー（ヘキサン：ジクロロメタン＝６：１）で精製して、エステル体であるエチル３－ノニル－２－ドデケノエート（７．６ｇ，９９％）を無色透明の液体として得た。
　colorless oil; FT IR (neat) 2928, 2855, 1718 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.9 Hz), 1.27 (27H, m), 1.44 (4H, m), 2.12 (2H, t, J = 7.8 Hz), 2.58 (2H, t, J = 8.1 Hz), 4.14 (2H, q, J = 7.2 Hz), 5.61 (1H, br s); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.14, 14.35, 22.70, 27.68, 28.75, 29.34, 29.49, 29.52, 29.60, 30.01, 31.92, 32.19, 38.44, 59.42, 114.98, 165.07, 166.66; CIMS m/z (%) 352 (M⁺); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₃H₄₄O₂ (M⁺) 352.3349, Found 352.3345.

製造例Ｄ－１－４
［エチル３－ノニルドデカノエートの合成］

　製造例Ｄ－１－３に記載の方法により得られたエチル３－ノニル－２－ドデケノエート（７．６ｇ，２１．７ｍｍｏｌ）をクロロホルム：メタノール（５：１）の混合溶媒（１００ｍｌ）に溶かし、ＰｔＯ_２触媒（３ｗ／ｗ％，２２３ｍｇ，９８３μｍｏｌ）を加えて１気圧水素下、２３時間撹拌した。ＰｔＯ_２触媒を濾紙を用いて取り除き、濃縮した。得られた残渣をカラムクロマトグラフィー（ヘキサン：ジエチルエーテル＝５０：１）で精製し、エチル３－ノニルドデカノエート（７．１ｇ，９２％）を無色透明の液体として得た。
　colorless oil; FT IR (neat) 2929, 2855, 1739 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.6 Hz), 1.26 (35H, m), 1.84 (1H, m), 2.21 (2H, d, J = 6.6 Hz), 4.12 (2H, q, J = 7.2 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.16, 14.32, 22.73, 26.55, 29.38, 29.64, 29.66, 29.93, 31.95, 33.91, 35.10, 39.40, 60.07, 173.73; CIMSm/z (%) 354 (M⁺); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₃H₄₆O₂ (M⁺) 354.3508, Found 354.3503.

製造例Ｄ－１－５
［３－ノニルドデカン酸の合成］

　製造例Ｄ－１－４に記載の方法により得られたエチル３－ノニルドデカノエート（６．３ｇ，１７．７ｍｍｏｌ）を水飽和ブタノール溶液（８０ｍｌ）に溶かし、ＫＯＨ（１０ｇ，１７７ｍｍｏｌ）を加えて４．５時間加熱環流した。１Ｎ塩酸を加えてジエチルエーテルで２回抽出した。有機層に無水硫酸マグネシウムを加えて乾燥し、濾過後濃縮した。得たれた残渣をカラムクロマトグラフィー（ヘキサン：酢酸エチル＝１０：１）で精製し、３－ノニルドデカン酸（６．３ｇ，９９％）を無色透明の液体として得た。
　colorless oil; FT IR (neat) 2925, 2854, 1709 cm^-1; ¹H NMR (200 MHz in CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.6 Hz), 1.26 (32H, m), 1.85 (1H, m), 2.27 (2H, d, J = 6.9 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.16, 22.73, 26.52, 29.38, 29.65, 29.89, 31.95, 33.79, 34.87, 39.00, 179.94; CIMS m/z (%) 326 (M⁺); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₁H₄₂O₂(M⁺) 326.3129, Found 326.3157.

製造例Ｄ－２
［３－オクチルウンデカン酸の合成］

　出発化合物として、製造例Ｄ－１－１に記載のデカン酸に代えてオクタン酸を用い、製造例Ｄ－１－２に記載の１－ブロモノナンに代えて１－ブロモオクタンを用い、各工程において製造した化合物を次の工程に用いて、製造例Ｄ－１－１からＤ－１－５に記載の方法と同様にして合成し、３－オクチルウンデカン酸を得た。
　colorless oil; FT IR (neat) 2926, 2855, 1712 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) d 0.88 (6H, t, J = 6.6 Hz), 1.26 (28H, m), 1.85 (1H, m), 2.27 (2H, d, J = 6.9 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) d 14.16, 22.71, 26.52, 29.34, 29.61, 29.89, 31.93, 33.80, 34.88, 38.94, 179.58; CIMS m/z (%) 298 (M⁺); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₁₉H₃₈O₂(M⁺) 298.2876, Found 298.2874.

製造例Ｄ－３
［３－デシルトリデカン酸の合成］

　出発化合物として、製造例Ｄ－１－１に記載のデカン酸に代えてウンデカン酸を用い、製造例Ｄ－１－２に記載の１－ブロモノナンに代えて１－ブロモデカンを用い、各工程において製造した化合物を次の工程に用いて、製造例Ｄ－１－１からＤ－１－５に記載の方法と同様にして合成し、３－デシルトリデカン酸を得た。
　colorless oil; FT IR (neat) 2935, 2857, 1711 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.6 Hz), 1.26 (36H, m), 1.85 (1H, m), 2.27 (2H, d, J = 6.9 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.15, 22.72, 26.51, 29.38, 29.66, 29.88, 31.94, 33.78, 34.86, 38.95, 179.79; CIMS m/z (%) 354 (M⁺); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₃H₄₆O₂(M⁺) 354.3498, Found 354.3503.

製造例Ｄ－４
［３－ウンデシルテトラデカン酸の合成］

　出発化合物として、製造例Ｄ－１－１に記載のデカン酸に代えてドデカン酸を用い、製造例Ｄ－１－２に記載の１－ブロモノナンに代えて１－ブロモウンデカンを用い、各工程において製造した化合物を次の工程に用いて、製造例Ｄ－１－１からＤ－１－５に記載の方法と同様にして合成し、３－ウンデシルテトラデカン酸を得た。
　colorless solid; FT IR (neat) 2923, 2853, 1707 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.9 Hz), 1.26 (40H, m), 1.85 (1H, m), 2.27 (2H, d, J = 6.9 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.17, 22.74, 26.53, 29.40, 29.69, 29.72, 29.89, 31.96, 33.79, 34.88, 38.98, 179.82; CIMS m/z (%) 382 (M⁺); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₅H₅₀O₂(M⁺) 382.3811, Found 382.3816.

製造例Ｄ－５
［３－ドデシルペンタデカン酸の合成］

　製造例Ｄ－１－５に記載のエチル３－ノニルドデカノエートに代えて、製造例Ｄ－５－４に記載の方法により得られたエチル３－ドデシルペンタデカノエートを用い、製造例Ｄ－１－５と同様の方法により、３－ドデシルペンタデカン酸を得た。

　出発化合物として、製造例Ｄ－１－１に記載のデカン酸に代えてトリデカン酸を用い、製造例Ｄ－１－２に記載の１－ブロモノナンに代えて１－ブロモドデカンを用い、各工程において製造した化合物を次の工程に用いて、製造例Ｄ－１－１からＤ－１－５に記載の方法と同様にして合成し、３－ドデシルペンタデカン酸を得た。
　colorless solid; FT IR (neat) 2928, 2854, 1709 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.6 Hz), 1.26 (44H, m), 1.85 (1H, m), 2.27 (2H, d, J = 6.9 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.15, 22.72, 26.51, 29.39, 29.68, 29.71, 29.88, 31.96, 33.78, 34.86, 39.00, 180.00; CIMS m/z (%) 410 (M⁺); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₂₇H₅₄O₂(M⁺) 410.4066, Found 410.4095.

製造例Ｄ－６
［３－テトラデシルヘプタデカン酸の合成］

　出発化合物として、製造例Ｄ－１－１に記載のデカン酸に代えてペンタデカン酸を用い、製造例Ｄ－１－２に記載の１－ブロモノナンに代えて１－ブロモテトラデカンを用い、各工程において製造した化合物を次の工程に用いて、製造例Ｄ－１－１からＤ－１－５に記載の方法と同様にして合成し、３－テトラデシルヘプタデカン酸を得た。
　colorless solid; FT IR (neat) 2915, 2849, 1704 cm^-1; ¹H NMR (300 MHz in CDCl₃) δ0.88 (6H, t, J = 6.9 Hz), 1.26 (52H, m), 1.85 (1H, m), 2.27 (2H, d, J = 6.9 Hz); ¹³C NMR (75 MHz in CDCl₃) δ14.15, 22.73, 26.52, 29.41, 29.73, 29.90, 31.96, 33.78, 34.88, 38.99, 179.72; CIMS m/z (%) 466 (M⁺); HRMS (CI⁺) m/z calcd for C₃₁H₆₂O₂(M⁺) 466.4685, Found 466.4717.

［その他の化合物の合成］
　上記製造例と同様にして、実施例１６から２２の化合物を得た。当該化合物は、本発明の式（１）で表される化合物について、式中、Ｘ、Ｘ’、ｎ及びｎ’が、以下の表１に表わされるものである。

（式１）

［生理活性の測定］
　本発明の化合物につき、以下の試験を行い、活性を測定した。
　本発明の実施例化合物について、実施例番号、製造例番号、及び、その化学構造式を、以下の表２に示す。実施例化合物は、本発明の式（１）で表される化合物であり、式中、Ｘ、Ｘ’、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’、ｎ及びｎ’は、以下のものを示す。

（式１）

　また、試験には、結核菌由来の公知の天然化合物であるＴＤＣＭをポジティブコントロールとして使用した。なお、ＴＤＣＭは以下の化学構造式により表される。

試験例１（マクロファージ活性化能の測定）
試験例１（１）<蛍光強度測定装置を用いたマウス腹腔マクロファージからの活性酸素遊離測定>
<リン酸バッファー（ＰＢＳ）の調製>
　塩化ナトリウム８．０ｇ、塩化カリウム０．２ｇ、リン酸水素二ナトリウム１．１５ｇ、リン酸二水素カリウム０．２ｇを１０００ｍｌの蒸留水（Ｄ．Ｗ．）で溶解した。

<マウス腹腔マクロファージの調製>
　５％チオグリコール酸培地（Ｄｉｆｃｏ、ＢＤ、ｃｏｄｅ．２２５６４０、Ｌｏｔ．６１９２３７２）３ｍｌをマウス（ＩＣＲマウス（ＳＰＦ）、５週齢、オス）腹腔に投与した。投与４日後、ジエチルエーテルを用いてマウスを死亡させた。腹部中央の表皮に少しハサミで切れ込みをいれ、腹部をつまみ腹部表皮を剥ぎ取った。２６Ｇの針を取り付けた１０ｍｌのシリンジで０．０５％ＥＤＴＡ含有ＰＢＳ（－）（ＥＤＴＡ　２Ｎａ、ヌクレアーゼ及びプロテアーゼｔｅｓｔｅｄ、ナカライテスク）５ｍｌを腹腔内に全量注入した。その後、腹部の横をつまむようにして４０～５０回程度マッサージした。腹腔内部の液を２３Ｇ注射針でゆっくりと小の遠沈管に採取する。この操作を２回繰り返した。採取したマクロファージを１０００ｒｐｍで８分間遠心した。上清を捨て、ＲＰＭＩ１６４０培地（ＲＰＭＩ－１６４０、Ｌ－グルタミン及びフェノールレッド含有、和光、１８９－０２０２５、Ｌｏｔ．ＷＲＭ８０４３に１０．６１％非動化血清（Ｂｉｏ　Ｗｅｓｔ）、１％ペニシリンストレプトマイシン（ＧＩＢＣＯ）を含む）で沈殿を懸濁した。遠沈管をＲＰＭＩ１６４０培地で満たし、再度１０００ｒｐｍで８分間遠心した。上清を捨て、ＲＰＭＩ１６４０培地で懸濁後、Ｏｎｅ　Ｃｅｌｌ　Ｃｏｕｎｔｅｒ（和研薬）でマクロファージの数を計測した。ＲＰＭＩ－１６４０培地を用いて、任意の濃度に希釈した。このようにして得られたマウス腹腔マクロファージを以下の試験に用いた。

<４０ｍＭ試験化合物溶液の調製>
　４０ｍＭ試験化合物溶液を以下のようにして調製した。
　ＢＳＡ０．７ｇを大試験管に秤量した。滅菌ＰＢＳ（－）１０ｍｌを加え、よく撹拌後、ＬＰＳ除去カラム（Ｅｎｄｏ　Ｔｒａｐ（商標）ｒｅｄ　１／１（ｐｒｏｏｆｓ））を用い、ＢＳＡ溶液に含有されている不純物を除いた。その後、処理ＢＳＡ溶液を滅菌フィルター（０．２μｍ）で濾過した。次に、Ｎａｎｏ　Ｄｒｏｐ　ＮＤ－１０００を用いて蛋白定量し、最終的な濃度が２％となるように滅菌ＰＢＳ（－）で希釈した。秤量した試験化合物を、２％ＢＳＡ（ＰＢＳ（－）中にＢＳＡ２％を溶解したもの）２５０μｌと共にホモジナイザーに入れ、ホモジナイザーに入れたままバスタイプ超音波装置で１５０秒間処理した。このようにして調製した溶液をエッペンに移し、以下の試験に使用した。ポジティブコントロールとしては、試験化合物として、ＴＤＣＭを用いて同様に調製し、また、ネガティブコントロールとしては、試験化合物を何も加えず、同様に調製した。試験化合物を含まない調製液について、以下、「ｖｅｈｉｃｌｅ」という。

<ハンクス平衡化塩溶液（ＨＢＳ）の調製>
　塩化カリウム０．４ｇ、リン酸二水素カリウム０．０６ｇ、リン酸水素二ナトリウム０．１０７ｇ、塩化ナトリウム８ｇを蒸留水（Ｄ．Ｗ．）で溶解後、１Ｎ水酸化ナトリウムでｐＨ７．４に調整し、蒸留水（Ｄ．Ｗ．）で全量１０００ｍｌとして、ハンクス平衡化塩溶液（ＨＢＳ）を調製した。

<グルコース及びＢＳＡ含有ハンクス平衡化塩溶液（ＨＢＳＧ－ＢＳＡ）の調製>
　グルコース０．１ｇ、及び、ＢＳＡ（ｓｉｇｍａ）０．０３ｇを、上記で調製したＨＢＳ１００ｍｌに溶解し、グルコース及びＢＳＡ含有ハンクス平衡化塩溶液（ＨＢＳＧ－ＢＳＡ）を調製した（用時調製）。

<マクロファージからの活性酸素遊離の測定>
　マウス腹腔マクロファージ、４０ｍＭ試験化合物溶液、及び、ＢＳＡ含有ハンクス平衡化塩溶液（ＨＢＳＧ－ＢＳＡ）は、前記と同様にして調製した。
　ＨＢＳＧ－ＢＳＡでマクロファージを洗浄後、５ｍＬ程度のＨＢＳＧ－ＢＳＡで懸濁し、９６ウェルのコラーゲンウェル（ＴＣ－ＰＬＡＴＥ　９６ＷＥＬＬ，ＳＴＥＲＩＬＥ　ＷＩＴＨ　ＬＩＤ，ＩＮＤ　ＰＡＣＫＥＤ）に１００μｌずつ分注し、３７℃で１時間インキュベートを行い、細胞をウェルに張り付かせた。上清を除去し、ＨＢＳＧ－ＢＳＡを１００μｌ加え、１０ｍＭのＨ_２ＤＣＦＤＡ（２’，７’－ジクロロジヒドロフルオレセインジアセテート、ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を１μｌ添加した。３７℃で１時間インキュベートを行い、上清を除去後、試験化合物を含んだＨＢＳＧ－ＢＳＡまたはネガティブコントロールとしてのｖｅｈｉｃｌｅを、試験化合物の最終濃度が５０μＭになるように添加し、１時間後Ｇｅｎｉｏｓ蛍光強度測定装置で測定した。

　なお、上記Ｈ_２ＤＣＦＤＡは、蛍光プローブであり、過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）の存在下において、蛍光強度が増大するため、蛍光強度を測定することにより、過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）の産生量を測定することができる。過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）は、マクロファージが産生するスーパーオキサイド（Ｏ^２－）から派生したものであり、過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）産生量を指標として、マクロファージの活性化度を表すことができる。

　測定結果を図１に示す。
　図１<マウス腹腔マクロファージからの活性酸素遊離量>
　図１に示されるように、本発明試験化合物は、いずれも、ＴＤＣＭと同等もしくはそれ以上に、マウス腹腔マクロファージからの活性酸素の産生を促進する作用を示した。特に、本発明化合物のうち、実施例１の化合物、及び、実施例９の化合物は、ＴＤＣＭの２倍を超える高活性を示した。

試験例１（２）
<マウス腹腔マクロファージ貪食能の測定>
　マウス腹腔マクロファージ、４０ｍＭ試験化合物溶液、及び、ＲＰＭＩ１６４０培地は、前記と同様にして調製した。

　以下では、蛍光ビーズとして、Ｆｌｕｏｒｅｓｂｒｉｔｅ（商標）Ｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅ　Ｍｉｃｒｏｓｐｈｅｒｅｓ（２．５８％Ｓｏｌｉｄｓ－Ｌａｔｅｘ）ＹＧ（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｉｎｃ.）を用いた。

　ＴＣ－プレート（ＴＣ－ＰＬＡＴＥ　２４ＷＥＬＬ，ＳＴＥＲＩＬＥ　ＷＩＴＨ　ＬＩＤ，ＩＮＤ　ＰＡＣＫＥＤ、ｇｒｅｉｎｅｒ　ｂｉｏ－ｏｎｅ）に８０％　ｃｏｎｆｌｕｅｎｔとなるようにマクロファージを添加した。３７℃で２時間インキュベーション後、上清を捨て、５００μｌのＲＰＭＩ１６４０培地で２度細胞を洗浄した。下記の表３に表わされる組成をＴＣ－プレートに組み、３７℃で２時間インキュベーションし、上清を除去後、３００μｌの滅菌ＰＢＳ（－）で細胞を洗浄した。取り込まれていない蛍光ビーズの除去のため、この洗浄操作を２回繰り返した。２００μｌの滅菌ＰＢＳ（－）でマクロファージを剥ぎ取り、マクロファージをエッペンに移した。１，５００ｒｐｍで８分間遠心後、上清を除き、１００μｌの滅菌ＰＢＳ（－）でよく懸濁した。再度、１，５００ｒｐｍで８分間遠心後、上清を除き、１００μｌの滅菌ＰＢＳ（－）でよく懸濁した。

　ＦＵＪＩＦＩＬＭ　ＦＬＡ－２０００を使用し、細胞内に取り込まれた蛍光ビーズ量を測定した［蛍光強度（Ｆｌｕｏｒ４７３ｎｍ，Ｙ５２０Ｆｉｌｔｅｒ）］。解析は、Ｉｍａｇｅ　Ｒｅａｄｅｒ　Ｖ１．４Ｊを用いた。

　測定結果を図２に示す。
　図２<マウス腹腔マクロファージ貪食能>
　図２に示されるように、本発明試験化合物は、いずれも、ＴＤＣＭと同等もしくはそれ以上に、マウス腹腔マクロファージの貪食作用を活性化する作用を示した。特に、本発明化合物のうち、実施例１の化合物、及び、実施例９の化合物は、ＴＤＣＭの約２倍の高活性を示した。

試験例２（好中球活性化能の測定）
<ウサギ好中球懸濁液の調製>
　ハンクス平衡化塩溶液（ＨＢＳ）、グルコース及びＢＳＡ含有ハンクス平衡化塩溶液（ＨＢＳＧ－ＢＳＡ）は、試験例１（１）と同様にして調製した。

<クエン酸－グルコース溶液（ＡＣＤ液）の調製>
　クエン酸ナトリウム６．２５ｇ、クエン酸３．１２５ｇ及びグルコース５ｇを蒸留水（Ｄ．Ｗ．）２５０ｍｌで溶解し、使用するまで４℃で保存した。

<赤血球溶解溶液（Ｌｙｓｉｓ液）の調製>
　ＥＤＴＡ０．０３７ｇ、炭酸水素カリウム１ｇ及び塩化アンモニウム８．３ｇを蒸留水（Ｄ．Ｗ．）１０００ｍｌで溶解し、使用するまで４℃で保存した。

<リン酸バッファー（ＰＢＳ）の調製>
　試験例１（１）と同様にして調製した。

<１．２％デキストラン－ＰＢＳ溶液の調製>
デキストランＴ５００（ファルマシア）１．２ｇを蒸留水（Ｄ．Ｗ．）１００ｍｌで溶解し、オートクレーブ（１２１℃、２０分間）で滅菌し、使用するまで４℃で保存した。

<ウサギ好中球懸濁液の調製方法>
　５ｍｌのＡＣＤ液を２０ｍｌのシリンジ（注射針［Ｎｉｐｒｏ］）に取り、シリンジ内を一様にリンスした。ウサギの耳介中心動脈から血液をシリンジで２０ｍｌ採取し、静かに転倒混和後、遠沈管（１５ｍｌタイプ：Ｆａｌｃｏｎ）３本に分注し、４℃、１，５００ｒｐｍで５分間遠心後、上清を遠沈管（５０ｍｌタイプ：Ｆａｌｃｏｎ）に回収した。回収した上清と等量の１．２％デキストラン－ＰＢＳ溶液を加えて緩やかに転倒混和した後、室温で３０分間以上放置した。境界面を確認し、上清を新しい遠沈管（５０ｍｌタイプ：Ｆａｌｃｏｎ）に入れた。残りの溶液に等量の１．２％デキストラン－ＰＢＳ溶液を加え緩やかに転倒混和した後、室温で３０分間以上放置した。境界面を確認し、上清を遠沈管（５０ｍｌタイプ：Ｆａｌｃｏｎ）に入れた。回収した上清を４℃、２，０００ｒｐｍで１０分間遠心後、上清を除いた。沈渣にＬｙｓｉｓ液１５ｍｌ加え、静かに懸濁後、さらに、Ｌｙｓｉｓ液５ｍｌ加えて転倒混和し、氷中で５分間放置した。ＨＢＳＧ－ＢＳＡで全量を５０ｍｌとし、４℃、２，０００ｒｐｍで１０分間遠心後、上清を除いた。沈渣をＨＢＳＧ－ＢＳＡ２ｍｌで懸濁し、この細胞懸濁液をＬｙｍｐｈｏｐｒｅｐ［Ｎｙｃｏｍｅｄ，８０８０６８］２ｍｌ（遠沈管、１５ｍｌタイプ）の上層に静かに重層し、１２００ｒｐｍで２０分間遠心後（遠心機の条件：ａｃｃｅｌ　０．５、ｂｒｅａｋ　Ｏｆｆ）、上清をアスピレーターで除いた。残存するＬｙｐｈｏｐｒｅｐを除くため、沈渣（好中球）をＨＢＳＧ－ＢＳＡに懸濁し、再び、１，５００ｒｐｍで５分間遠心後、上清を除いた。好中球をＨＢＳＧ－ＢＳＡで懸濁し、細胞数計測装置「ｃｅｌｌｔａｃ」［日本光電］で細胞数を測定した。

<試験化合物のエマルジョン溶液の調製>
　試験化合物及びＴＤＣＭのエマルジョン溶液を試験例１（１）と同様にして調製した。

<１０ｍＭ　Ｈ_２ＤＣＦＤＡ（２’，７’－ジクロロジヒドロフルオレセインジアセテート（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｐｒｏｂｅｓ）の調製>
　４．８６ｍｇのＨ_２ＤＣＦＤＡを１ｍｌのＤＭＳＯで溶解した。

試験例２（１）
<ウサギ好中球からの活性酸素遊離量の測定>
　ウサギ好中球からの活性酸素遊離に対する影響を以下の手順で測定した。

　９６ｗｅｌｌプレート（Ｆａｌｃｏｎ）に好中球（１．０×１０^５個／１００μｌ）を播種した。これに１０ｍＭ　Ｈ_２ＤＣＦＤＡを１μｌ添加し、３７℃で１時間インキュベーションした。余分なＨ_２ＤＣＦＤＡを除くため、ＨＢＳを３００μｌ加え懸濁後、８０００ｒｐｍで５分間遠心した。上清を除去しＨＢＳで懸濁後、終濃度が５０μＭとなるようにＨＢＳを添加した。これを３７℃で２時間インキュベーション後、蛍光測定装置で活性酸素遊離量を測定した（Ｅｘ：４８５ｎｍ，Ｅｍ：５３５ｎｍ）。

　結果を図３に示す。
　図３<ウサギ好中球からの活性酸素遊離量>
　図３に示されるように、本発明化合物は、おおむねＴＤＣＭと同程度もしくはそれ以上に、ウサギ好中球からの活性酸素遊離を活性化する作用を示した。特に、本発明化合物のうち、実施例１の化合物は、ＴＤＣＭの約２倍の活性を示した。

試験例２（２）
<ウサギ好中球貪食能の測定>
(2)アンピシリン耐性大腸菌及びオプソニン化大腸菌作成法
<Ｌ－ｂｒｏｔｈの調製>
　蒸留水（Ｄ．Ｗ．）１Ｌに対してトリプトファン１０ｇ、ＮａＣｌ５ｇ、Ｙｅａｓｔ　Ｅｘｔｒａｃｔ５ｇ及びＭｇＳＯ_４１ｍｌを溶解した。

<オプソニン化剤の調製>
　１０ｍｇのオプソニン化剤（ＢｉｏＰａｒｔｉｃｌｅｓ　Ｏｐｓｏｎｉｚｉｎｇ　Ｒｅａｇｅｎｔ（Ｍｏｌｕｃｕｌａｒ　Ｐｒｏｂｅｓ））を５００μｌの超純水で溶解した。

<アンピシリン耐性大腸菌の作成>
　エレクトロポーレーション用セル（ＪＭ１０９）を氷中で溶解し、アンピシリン耐性の遺伝子を大腸菌に導入するため、ＪＭ１０９に２μｌのアンピシリン耐性プラスミド（ｐＴ７Ｂｌｕｅ、Ｎｏｖａｇｅｎ、１００ｎｇ／μｌ）を加え懸濁し、その懸濁液をエレクトロポーレーション用キュベットに移しパルス（２．５ｋＶ，２００Ω，２５ｍＦ）をかけた。パルスをかけた菌液を、Ｌ－ｂｒｏｔｈ培地１ｍｌを入れた５ｍｌチューブに移し、３７℃で３時間培養した。該溶液を０．００５％アンピシリンを含むＬ－ｂｒｏｔｈの寒天培地に塗布し、３７℃で一晩培養した（培地に撒く際に、３，５００ｒｐｍで５分間遠心を行った後、上清を８００μｌ除き、沈渣を懸濁後、シャーレに撒いた）。翌日シャーレに生えた菌を少量かきとり、２ｍｌのＬ－ｂｒｏｔｈ培地に溶解し、約４時間攪拌培養を行った。

<オプソニン化大腸菌作成法>
　上記で作成したアンピシリン耐性大腸菌溶液１００μｌと溶解したオプソニン化剤１００μｌをエッペンドルフチューブ内で懸濁した。得られた懸濁液を３７℃で１時間インキュベーションし、該懸濁液を３００μｌのＰＢＳで懸濁後、１２００Ｇ、１５分間遠心し上清を除去した。さらに、得られた液を３００μｌのＰＢＳで懸濁後、１２００Ｇ、１５分間遠心し上清を除去した。２回繰り返した。１００μｌのＬ－ｂｒｏｔｈに１μｌの菌液を加えよく懸濁し１００倍希釈した。１００倍希釈した菌液を１０μｌワンセルカウンターに添加し、顕微鏡により菌数をカウントした。

<ウサギ好中球貪食能の測定>
　上記方法により調製した好中球１．０×１０^５個をエッペンに分取し、ＨＢＳで懸濁後、５０μＭの試験化合物のエマルジョン溶液またはＴＤＣＭのエマルジョン溶液で１時間処理を行った。コントロールは２％ＢＳＡ溶液を用いて同様に行った。３００μｌのＨＢＳを加え懸濁し、１２００Ｇで１０分間遠心後、上清を除去した。さらに、得られた液に３００μｌのＨＢＳを加え懸濁し、１２００Ｇで１０分間遠心後、上清を除去した。処理好中球に１．０×１０^７ｃｅｌｌｓのオプソニン化したアンピシリン耐性大腸菌をよく懸濁後、３７℃で１時間インキュベーションした。余分な大腸菌を除去後、０．５％ＴｒｉｔｏｎＸ－１００（生理食塩水中）を１００μｌ加え、よく懸濁し、３７℃で３０分間インキュベーションを行った。ＴｒｉｔｏｎＸ－１００処理により好中球を破壊することによって、好中球内部に取り込まれていた大腸菌の量を比較定量するため、次に、ＴｒｉｔｏｎＸ－１００処理溶液全量を０．００５％アンピシリン含有普通寒天培地にまき、コンラージ棒で全体に広げた。２４時間、３７℃でインキュベーションを行い、好中球内部に取り込まれていた大腸菌のコロニー数をカウントした。

　結果を図４に示す。
　図４<ウサギ好中球貪食活性>
　図４に示されるように、本発明化合物は、いずれもウサギ好中球の貪食能を活性化する作用を示した。特に、本発明化合物のうち、実施例１の化合物は、ＴＤＣＭの約２倍の活性を示した。

試験例３
<試験化合物処理によるマウス腹腔マクロファージからのサイトカイン遊離測定>
　マウス腹腔マクロファージ、４０ｍＭ試験化合物溶液、及び、ＲＰＭＩ１６４０培地は、前記と同様にして調製した。

　ＴＣ－プレートに８０％　ｃｏｎｆｌｕｅｎｔとなるようにマクロファージを添加した。３７℃で２時間インキュベーション後、上清を捨て、５００μｌのＲＰＭＩ１６４０培地で細胞を洗浄した。この洗浄操作を２回繰り返した。試験化合物（最終濃度１００μＭ）のエマルジョン溶液をマクロファージに作用させ、２時間後、培地を別のエッペンに移した。１０，０００ｒｐｍで１０分間遠心後、上清をさらに別のエッペンに移し、当該上清をサンプルとして、遊離したサイトカインをＥＬＩＳＡ　ｋｉｔ（ＩＬ－６、ＴＮＦ－α　Ｑｕａｎｔｉｋｉｎｅ　Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ（Ｒ&Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ（商標））を用いて解析した。

　マウス腹腔マクロファージからのＩＬ－６遊離について、ネガティブコントロールとしてのｖｅｈｉｃｌｅの値は、ＩＬ－６遊離について約１５ｐｇ／ｍｌであったのに対し、本発明化合物のうち、特に活性が高いと考えられる、実施例１の化合物は、約２００ｐｇ／ｍｌの活性を示した。また、マウス腹腔マクロファージからのＴＮＦ－α遊離について、ネガティブコントロールとしてのｖｅｈｉｃｌｅの値は、約８０ｐｇ／ｍｌであったのに対し、実施例１の化合物は、約１０００ｐｇ／ｍｌの活性を示した。

試験例４
<試験化合物処理によるＴＨＰ－１細胞からのＩＬ－８遊離測定法>
　ＲＰＭＩ培地溶液は前記と同様にして調製し、これを用いて、試験化合物のＲＰＭＩ培地溶液を以下のようにして調製した。

　試験化合物１．０ｍｇを、２５μｌのＤＭＳＯ中に、約１分間超音波処理し、溶解させた。このようにして得られた４０ｍＭの試験化合物原液を１００μｌのＲＰＭＩ培地に５０μＭ（終濃度)となるように添加し、超音波で５秒間処理した。コントロールとなるＶｅｈｉｃｌｅは、４０ｍＭの試験化合物原液に代えて溶媒だけをＲＰＭＩ培地に同様の量を添加し、超音波で５秒間処理した。

　ＴＨＰ－１細胞（理研細胞ＢＡＮＫより購入）をＲＰＭＩ培地で１．０×１０^６ｃｅｌｌｓ/１００μｌとなるように調製し、滅菌エッペンに１００μｌずつ分注した。前記のように調製した試験化合物のＲＰＭＩ培地溶液１００μｌを５秒間超音波処理後、細胞を分注したエッペンに全量添加した。２時間後、反応エッペンを５０００ｒｐｍで５分間遠心し、上清中のＩＬ－８遊離量をＥＬＩＳＡ　ｋｉｔ（ｈｕｍａｎ　ＩＬ－８　ＥＬＩＳＡ　ｋｉｔ（Ｒ&Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ（商標）））を用いて測定した。

　試験結果を図５に示す。
　本発明化合物のうち、特に免疫賦活活性が高いと考えられる化合物について測定したところ、図５に示されるように、実施例１の化合物、及び、実施例９の化合物は、ＴＤＣＭの約０．６倍、約０．８倍の活性を示した。

試験例５
<試験化合物投与マウスにおける抹消血中へのＩＬ－６、ＴＮＦ－α、ＩＦＮ－γの遊離測定>
　試験化合物のエマルジョン溶液を以下のようにして調製した。

　以下において、試験化合物は、製造例α－１から８において合成した化合物、製造例β－１から７において合成した化合物、及び、比較例としてのＴＤＣＭをいう。

　試験化合物を秤量し（１００μｇ／マウス）、ミクロスパーテルを用い、全量をホモジナイザー（ＷＥＡＴＯＮ　ＵＳＡ　１０ｍｌ）の底部に入れた。1滴のミネラルオイル（ナカライテスク）を滴下し、ホモジナイズ後、バスタイプ超音波で１５０秒間処理した。さらに、１．１％Ｔｗｅｅｎ８０（ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ナカライテスク）と５．６％マンニトールを含有した生理食塩水１．０ｍｌをホモジナイザーに添加した。数回ホモジナイズし、試験化合物溶解ミネラルオイルと溶媒をよくなじませた。完成した溶液をエッペンドルフチューブに移し、６２℃で３０分間低温殺菌を行った。

　ホモジナイザーをあらかじめ３分間氷中につけておいた。１．０ｍｇの種々の試験化合物をそれぞれホモジナイザーにとり、ミネラルオイルを加え超音波で１５０秒間処理した。オイルがねっとりしているのを確認し、そこに１．０ｍｌの生理食塩水（１．１％Ｔｗｅｅｎ及び５．６％マンニトール含有）を加え約１分間ホモジナイズした。サンプルをエッペンに移し、６２℃で３０分間低温殺菌した。

　１群２匹のマウスに、上記のように調製した試験化合物エマルジョン溶液（１００μｇ／マウス）を静脈注射により投与し、２時間後心臓採血（ヘパリン採血）を行った。１０，０００ｒｐｍで１０分間遠心後、血漿のみを用い、ＥＬＩＳＡキット（ＩＬ－６、ＴＮＦ－α、ＩＦＮ－γＱｕａｎｔｉｋｉｎｅ　Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ（Ｒ&Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ（商標））で種々のサイトカイン量を測定した。

　測定結果を図６、図７、図８に示す。

　図６<マウス血漿中ＩＬ－６濃度（ｐｇ／ｍｌ）>
　図７<マウス血漿中ＩＦＮ－γ濃度（ｐｇ／ｍｌ）>
　図８<マウス血漿中ＴＮＦ－α濃度（ｐｇ／ｍｌ）>
　図６に見られるように、本発明試験化合物を投与したマウスにおいて、血漿中ＩＬ－６濃度の増加が見られた。特に、本発明化合物のうち、実施例１の化合物、実施例９の化合物は、いずれも、ポジティブコントロールとした天然由来の公知のトレハロースジエステル化合物であるＴＤＣＭに対し、それぞれ、約１．２倍、約１．５倍程度の高いＩＬ－６遊離活性を示した。実施例１３の化合物、及び、実施例１４の化合物も、ＴＤＣＭに対し、それぞれ、約半分、同程度の活性を示した。

　図７に見られるように、本発明試験化合物を投与したマウスにおいて、血漿中ＩＦＮ－γ濃度の増加が見られた。特に、本発明化合物のうち、実施例１の化合物、及び、実施例９の化合物は、いずれも、ポジティブコントロールとしたＴＤＣＭに対し、約１．５倍程度のＩＦＮ－γ遊離活性を示し、実施例１３の化合物、及び、実施例１４の化合物も、ＴＤＣＭに対し、それぞれ、約半分、同程度の活性を示した。

　図８に見られるように、本発明試験化合物を投与したマウスにおいて、血漿中ＴＮＦ－α濃度の増加が見られた。しかし、ポジティブコントロールとしたＴＤＣＭと対比して、実施例１の化合物においても、ＴＤＣＭと同程度であり、その他の本発明の化合物は、総じてＴＤＣＭの１／２程度の活性を示した。

試験例６
<ウェルシュ菌投与によるマウス生存試験（実施例１の化合物）>
　試験化合物として、製造例α―１に記載の方法により合成した化合物、及び、ＴＤＣＭをそれぞれ１ｍｇ秤量し、上記と同様にして、試験化合物のエマルジョン溶液（１ｍｇ／ｍｌ）を調製した。
　ウェルシュ菌（ＴｙｐｅＡ　ＮＴＣＴ８２３７）は、以下のように調製した。

<ウェルシュ菌調製方法>
　ブレインハートインフュージョン（ＢＨＩ）（Ｄｉｆｃｏ）の粉末７．４ｍｇを蒸留水２００ｍｌに溶かした）。得られた溶液（以下、この溶液を「ＢＨＩ培地」という。）４０ｍｌをメスピペットでとり、２００ｍｌのフラスコに加え、高圧蒸気滅菌（１２１℃、２０分間）を行った。また、ねじ口試験管２本に５ｍｌのＢＨＩ培地を入れ、高圧蒸気滅菌を行った。さらにガラス管付きゴム栓（綿栓付き）及びガラス管を高圧蒸気滅菌した。クリーンベンチ内で、クックドミート培地に生えた保存用の菌を滅菌したパスツールピペットで適量採取し、上記滅菌ねじ口試験管内のＢＨＩ培地に菌植えした。次いで、３７℃で一晩インキュベーションした。

　ねじ口試験管内に生えた菌（菌が生えるクリーンベンチ内は濁り、ガスが発生する）をクリーンベンチ内で、４０ｍｌのＢＨＩ培地が入った２００ｍｌの三角フラスコに移し、培地内にガラス管を挿入し、１０分間窒素置換を行った。次に、ガラス管付きゴム栓（綿栓付き）を三角フラスコに装着後（ウェルシュ菌はガスを産生するため、空気穴が必要である。）、３７℃、４－５時間インキュベーションした。培養したウェルシュ菌を遠心用チューブに移し、遠心分離（９０００ｒｐｍ，１５分間）を行い、上清を除去した。沈渣に滅菌生理食塩水２０ｍｌを加えて菌を懸濁後、遠心分離（９０００ｒｐｍ，１５分間）し、上清を除去した。得られた沈渣を滅菌したねじ口試験管内のＢＨＩ培地を加え、ワンセルカウンター（ワンセル社製）で菌数を数えた。

<ウェルシュ菌投与における生存試験方法>
　マウス（ＩＣＲ、６週齢）を３群に分け、以下の試験を行った。
　試験化合物のエマルジョン溶液、ＴＤＣＭのエマルジョン溶液、又は、コントロールとしてのエマルジョン溶液のみ、を１群４匹のマウスに対し１００μｇ／マウスずつ（エマルジョン溶液のみの場合は、１００μｌ／マウスずつ）腹腔内投与した。３時間後、ウェルシュ菌（２．４×１０^７ｃｅｌｌｓ／マウス）をマウスに腹腔内投与した。その後、経過観察を行った。

　結果を表４に示す。

　表４に示されるように、本発明化合物である実施例１の化合物を投与したマウスは、ウェルシュ菌の致死モデルにおいて、投与群４匹中３匹が致死を免れた。

試験例７
<ウェルシュ菌毒素投与によるマウス生存試験（実施例１の化合物）>
　試験化合物のエマルジョン溶液（１ｍｇ／ｍｌ）を上記と同様にして調製した。
　ウェルシュ菌毒素は、以下のようにして調製した。

<ウェルシュ菌毒素の調製方法>
　枯草菌α毒素遺伝子トランスフォーマントをＬ－Ｂｒｏｔｈ中で攪拌しながら３７℃、１４時間培養後、４℃、８，０００ｒｐｍで２０分間遠心し、培養上清を氷冷下で攪拌しながら、硫酸アンモニウム（硫安）（ナカライテスク）を定期的に少量添加後、終濃度７０％飽和硫安（４７２ｇ／Ｌ）とし、一晩放置した。その後、４℃、９，５００ｒｐｍで３０分間遠心し、生じた沈査を０．０２Ｍ　ＴＢ（ｐＨ７．５）に溶解させ、同緩衝液で４℃、一晩透析した。透析後、４℃、１５，０００ｒｐｍで３０分間遠心し、この上清を粗毒素（硫安毒素）標品とした。この粗毒素標品を終濃度０．５Ｍ　ＮａＣｌとなるように、１Ｍ　ＮａＣｌ－ＴＢ（ｐＨ７．５）で希釈後、予め、０．５Ｍ　ＮａＣｌ－ＴＢ（ｐＨ７．５）で平衡化した銅キレートアフィニティーカラム（１．５×９ｃｍ）に粗毒素標品をアプライし、続いて、０．５Ｍ　ＮａＣｌ－ＴＢ（ｐＨ７．５）、０．５Ｍ　ＮａＣｌ－０．１Ｍ　ＰＢ（ｐＨ６．５）、０．５Ｍ　ＮａＣｌ－０．０２Ｍ酢酸緩衝液（ｐＨ４．５）、そして、０．５Ｍ　ＮａＣｌ－０．１Ｍ　ＰＢ（ｐＨ６．５）を順次、１００ｍｌずつ流した。次に、カラム中に結合した毒素を１５ｍＭ　Ｌ－ヒスチジン（ナカライテスク）－０．５Ｍ　ＮａＣｌ－０．１Ｍ　ＰＢ（ｐＨ６．５）１００ｍｌで溶出させた後、この溶出液をシリンジフィルター（ＤＩＳＭＩＣ－ＡＤＶＡＮＴＥＣ）でろ過後、限外ろ過フィルターＡｍｉｃｏｎ（商標）Ｕｌｔｒａ－１５－３ＯＫ（ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ）で遠心濃縮し、この濃縮液を０．０２Ｍ　ＴＢ（ｐＨ８．０）で４℃、一晩透析し、１５，０００ｒｐｍで３０分間遠心後、ＵＮＯ（商標）Ｑ－１　Ｒ　Ｃｏｌｕｍｎ（ＢＩＯ－ＲＡＤ）にアプライした。溶出は、０．０２Ｍ　ＴＢ（ｐＨ８．０）中の塩化ナトリウム濃度を０から０．０５Ｍまで直線的に変化させ、流量１．０ｍｌ／ｍｉｎで行った。各溶出（０．５ｍｌ）画分において、抗α毒素血清に対するオクタロニー反応で沈降線が認められ、かつ、ＳＤＳ－ＰＡＧＥで、α毒素に相当する約４３ｋＤａの単一バンドを含む画分を集め、約１．０ｍｌまで濃縮した。この濃縮液を０．０２Ｍ　ＴＢ（ｐＨ７．５）で４℃、一晩透析した後、４℃、１５，０００ｒｐｍで３０分間遠心し、その上清（組み換えα毒素）を分取した。得られた組み換えα毒素は、ＳＤＳ－ＰＡＧＥで不純物の有無を確認後、使用まで－８０℃で保存した。

<ウェルシュ菌毒素投与における生存試験方法>
　マウス（ＩＣＲ、６週齢）を３群に分け、以下の試験を行った。
　試験化合物のエマルジョン溶液、ＴＤＣＭのエマルジョン溶液、又は、コントロールとしてのエマルジョン溶液のみ、を１群４匹のマウスに対し１００μｇ／マウスずつ（エマルジョン溶液のみの場合は、１００μｌ／マウスずつ）腹腔内投与した。３時間後、ウェルシュ菌毒素（２００ｎｇ／マウス）をマウスに腹腔内投与した。その後、経過観察を行った。

　結果を表５に示す。

　表５に示されるように、本発明化合物である実施例１の化合物を投与したマウスは、ウェルシュ菌毒素の致死モデルにおいて、投与群４匹中３匹が致死を免れた。

試験例８
<緑膿菌投与によるマウス生存試験（実施例１の化合物）>
　試験化合物として、製造例α―１に記載の方法により合成した化合物を１ｍｇ秤量し、上記と同様にして、試験化合物のエマルジョン溶液を調製した。
　緑膿菌（Ｆｈｕ－０７１１１５ｓｔｒａｉｎ）は患者由来のものを用い、以下のようにして調製した。

<緑膿菌調製方法>
　Ｌ－ｂｒｏｔｈを４０ｍｌメスピペットでとり、２００ｍｌのフラスコ１本に入れ、スポンジ栓をした。また、別のねじ口試験管２本に５ｍｌのＬ－ｂｒｏｔｈを入れた。当該フラスコ及びねじ口試験管を１２１℃で２０分間オートクレーブにかけた。Ｌ－ｂｒｏｔｈ培地が室温まで冷えた後、クリーンベンチ内で４０ｍｌのＬ－ｂｒｏｔｈに超低温フリーザーにて保管していた緑膿菌を加えた。培養室において、一晩シェイキングを行った。９０００ｒｐｍで１５分間遠心を行い、上清を除去した。滅菌生理食塩水２０ｍｌを加えてボルテックスを用いて混和した後、９０００ｒｐｍで１５分間遠心を行い、上清を除去する、という工程を３回行った。滅菌生理食塩水４．５ｍｌを加え、ボルテックスを用いて混和し、これを菌原液とした。１０００倍に希釈した菌液を用い、ワンセルカウンターで菌数を数えた後、所望の濃度に菌原液を希釈して、以下の試験に用いた。

<緑膿菌投与における生存試験方法>
　マウスを２群に分け、以下の二通りの実験を行った。
（Ａ）１群３匹のマウス（ＩＣＲ、５週齢）に対し、上記試験化合物のエマルジョン溶液（１００μｇ／マウス）を腹腔内投与し、３時間経過後、緑膿菌（５．０×１０^７ｃｅｌｌｓ／マウス）を腹腔内投与した。その後、経過観察を行った。（Ｂ）１群３匹のマウス（ＩＣＲ、５週齢）に対し、緑膿菌（２．０×１０^７ｃｅｌｌｓ／マウス）を腹腔内投与し、上記試験化合物のエマルジョン溶液（１００μｇ／マウス）を腹腔内投与し、３時間経過後、上記試験化合物のエマルジョン溶液（１００μｇ／マウス）を腹腔内投与した。その後、経過観察を行った。

　結果を表６及び表７に示す。

　表６に示されるように、緑膿菌投与前に試験化合物をあらかじめ投与したＡ群において、３匹のうち２匹が緑膿菌による致死を免れた。感染当初は、コントロール群とあまり変化が認められなかったが、約８時間後より次第に歩ける状態となった。

　表７に示されるように、緑膿菌投与後に試験化合物を投与したＢ群において、３匹のうち１匹が緑膿菌による致死を免れた。

試験例９
<ＴＨＰ－１細胞からのサイトカイン遊離>
　実施例９で得られた試験化合物で処理した、ヒト単球性白血病細胞由来のＴＨＰ－１細胞からの各々のサイトカインおよびケモカイン遊離量をＥＬＩＳＡ法により測定した。また、ヒト肺がん細胞由来Ａ５４９細胞、及び、ヒト大腸癌細胞由来ＤＬＤ－１細胞を用い、同様の解析を行った。

<ＴＨＰ－１細胞の培養方法>
（１）血清のロットチェック
　培養したＴＨＰ－１細胞をクリーンベンチ内で１５ｍｌの遠沈管に移した。細胞を１，０００ｒｐｍで５分間、２０℃で遠心後、上清を除去した。その沈渣を、それぞれＲＰＭＩ　１６４０（１０％ロットチェック用ＦＢＳを含む）培地１ｍｌに懸濁し、ヘモサイトメーター（萱垣医理科工業）とカバーグラス（三商）を用いて細胞数を数えた後、培地で２．５×１０^５ｃｅｌｌｓ／ｍｌに希釈した。浮遊培養用ＭＵＬＴＩ　ＷＥＬＬ　ＰＬＡＴＥ　２４ｗｅｌｌｓ（ＳＵＭＩＬＯＮ）に細胞懸濁液を０．５ｍｌずつ分注し、１日１回細胞の増殖や形態を観察した。２～３日後に培養液を培地で１００倍希釈し、４μｌをとって計数板で細胞数をカウントし、増殖の良し悪しを比較した。増殖および形態が良い細胞をｗｅｌｌから回収し同じ培地で洗浄後、再び２．５×１０^５ｃｅｌｌｓ／ｍｌになるように希釈し、浮遊培養用ＭＵＬＴＩ　ＷＥＬＬ　ＰＬＡＴＥ　６ｗｅｌｌｓ（ＳＵＭＩＬＯＮ）に１ｍｌ入れ、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下でインキュベーションした。２４時間ごとに培地交換を行い、プレートごと、１，８００ｒｐｍで５分間遠心（ＴＯＭＹ）した後、ゆっくりと培地を除去し、新しく培地を１ｍｌ加えた。培地の交換作業を２回行った。３日目以降は、培地を交換後、細胞を１００倍希釈して、計数板で数え、増殖の程度を測定した。その後、数日間この操作を行い、増殖や形態が良い培地を選択した。

（２）血清の非動化と分注
　４℃で解凍したＦｅｔａｌ　ｂｏｖｉｎｅ　ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ）（Ｂｉｏｗｅｓｔ）５００ｍｌを５６℃で時々撹拌しながら３０分間インキュベーションし、非動化を行った。その後、血清は濾過せずに、クリーンベンチ内で５０ｍｌの遠沈管に３０ｍｌずつ分注し、－８０℃で保存した。使用前は予め４℃で解凍した。

（３）ＲＰＭＩ　１６４０培地（１０％非動化ＦＢＳ＋１％Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ　Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ）
　クリーンベンチ内で、ＲＰＭＩ　１６４０液体培地（Ｗａｋｏ）５００ｍｌに、非動化したＦＢＳ６０ｍｌと、Ａｃｒｏｄｉｓｃ　２５ｍｍ　Ｓｙｒｉｎｇｅ　Ｆｉｌｔｅｒ（Ｐａｌｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）で濾過したＰｅｎｉｃｉｌｌｉｎ　Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ（ＧＩＢＣＯ）５．６ｍｌを加え、均一になるように混和した。作製した培地は、濾過せずにそのまま使用した。保存は４℃で行い、使用前は予め室温に戻した。

（４）細胞の植え継ぎ
　ＴＨＰ－１細胞を７５ｃｍ^２の浮遊培養用フラスコ（ＳＵＭＩＬＯＮ）（９０％増殖以上）で培養し、形態および増殖を観察した。細胞の形がよく、増殖が早い場合には、細胞懸濁液を新しいフラスコに移すか、または、使用中のフラスコに、新しい培地を、約２倍量添加して植え継ぎを行った。増殖が遅い場合は、そのまま経過を観察するか、新しい培地を等量加えて植え継ぎを行った。

（５）細胞の保存
　７５ｃｍ^２の浮遊培養用フラスコ（９０％増殖以上）で培養した細胞１０～１５ｍｌを遠沈管に移し、１，０００ｒｐｍ、５分間遠心し、上清を除去した。その沈渣に、細胞凍結保存液Ｃｅｌｌ　ｂａｎｋｅｒ（日本全薬工業）１ｍｌを加え、懸濁し、セラムチューブに分注し、－８０℃で保存した。

（６）保存細胞の再培養
　－８０℃で凍結した細胞を、３７℃の水浴で急速に解凍した。直ちに、細胞保存液を予めＲＰＭＩ　１６４０培地を９～１０ｍｌ加えておいた１５ｍｌ遠沈管に添加し転倒混和した。１，０００ｒｐｍで５分間遠心後、上清を除去して１０ｍｌの新しい培地で再懸濁し、細胞懸濁液を７５ｃｍ^２の浮遊培養用フラスコに移した。その後、新しい培地を加えて全量を２０～３０ｍｌにし、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で培養した。

<ＥＬＩＳＡキットの試薬調製>
洗浄液の調製
　洗浄液を超純水（Ｓ．Ｄ．Ｗ．）で２５倍に希釈し、室温にて使用した。

標準基質液の調製
　２つのマイクロチューブに標準基質液用希釈液を６００μＬ入れておく。スタンダードの基質を標準基質液用希釈液１ｍＬで溶解し（２４５０ｐｇ／ｍＬ）、それを１００μＬ、マイクロチューブに移し、溶解し（３５０ｐｇ／ｍＬ）、これをさらに、１００μＬを別のマイクロチューブに加え溶解して（５０ｐｇ／ｍＬ）希釈を行った。標準基質液用希釈液をコントロールとして用いた（０ｐｇ／ｍＬ）。

呈色液の調製
　ｃｏｌｏｒ　ｒｅａｇｅｎｔ　Ａとｃｏｌｏｒ　ｒｅａｇｅｎｔ　Ｂを等量ずつ混合し、１００μｌ／ｗｅｌｌ×測定するｗｅｌｌの呈色液を加えた。これは使用前１５分以内に調製しておた。

<サンプル測定>
　使用するＥＬＩＳＡキットの試薬を常温に戻し、各ウェルに、種々の濃度の標準基質液、および、ａｓｓａｙ　ｂｕｆｆｅｒを５０μＬ入れ、さらに、サンプルを５０μＬ添加した。プレートを１分間軽くタップさせ、プレートにカバーをかけ、室温で２時間インキュベートした。その後、洗浄液で５回洗浄し（アスピレーターの使用可）、調製したｃｏｎｊｕｇａｔｅ液を１００μＬずつ添加し、プレートにカバーをかけ、室温で２時間インキュベートした。その後、洗浄液で５回洗浄後、遮光しながら、ｃｏｌｏｒ　ｒｅａｇｅｎｔ溶液ＡとＢの混合液を１００μＬずつ添加し、プレートを室温、暗所で３０分間インキュベートした。最後に、反応停止液を１００μＬずつ添加し、３０分間以内にマイクロプレートリーダー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｄｅｖｉｃｅｓ　ｓｐｅｃｔｒａ　ＭＡＸ　３４０ＰＣ）で吸光度を測定した。（４５０ｎｍ－５５０ｎｍ）。標準基質液の直線グラフから、各サンプルのサイトカイン遊離量を算出した。

<実験方法>
　培養したＴＨＰ－１細胞をクリーンベンチ内で５０ｍｌの遠沈管に移し、１，０００ｒｐｍで５分間、２０℃で遠心後、上清を除去した。その沈渣を、新しい無血清ＲＰＭＩ　１６４０培地（Ｗａｋｏ）１ｍｌに懸濁し、細胞懸濁液を、予め無血清ＲＰＭＩ　１６４０培地を９９０μｌ加えておいた滅菌エッペンドルフチューブに１０μｌ加えて１００倍希釈した。１００倍希釈液４μｌを血球計数板で細胞数を数え、細胞懸濁液を無血清ＲＰＭＩ　１６４０培地で１×１０^７ｃｅｌｌｓ／ｍｌに希釈した。１００μＬのＲＰＭＩ培地をエッペンにとり、２００μＭとなるようにの４０ｍＭの試験化合物（実施例９）／ＤＭＳＯ溶液を添加し、超音波に５秒間かけた。１００μｌのＴＨＰ－１細胞を加えた（試験化合物の最終濃度１００μＭ）。３７℃、２時間インキュベーション後、５０００ｒｐｍで１０分間遠心し、上清を別のエッペンにとりＥＬＩＳＡキットによりサンプル測定を行った。
　なお、ポジティブコントロールとしては、試験化合物として、６，６’－ビス－Ｏ－（２－テトラデシルヘキサノイル）－α，α’－トレハロース（以下「対照化合物Ａ」という）、およびＴＤＣＭを用いて同様に測定を行った。また、ネガティブコントロールとしては、試験化合物を何も加えず、同様に調製した（ｖｅｈｉｃｌｅ）。

<実験結果>
ポジティブコントロールと比較し、実施例９の化合物で処理したＴＨＰ－１細胞からのＭＩＰ－１βの遊離が、約８～１０倍高いことが明らかとなった。また、ＴＮＦ－αの遊離は、ネガティブコントロール細胞と比較してほとんど同等であった。結果を図９に示す。また、実施例１で得られた化合物については、ＭＩＰ－１βの遊離についてはポジティブコントロールに比べて好適な結果が得られた一方で、ＴＮＦ－αの遊離はネガティブコントロール細胞と比較してほとんど同等であった（データ示さず）。　

試験例１０
<ＴＨＰ－１細胞に対する細胞毒性検討、及び、変異原性試験>
<ＴＨＰ－１細胞のトリパンブルーを用いた細胞毒性の検討>
試薬の調製
０．３％トリパンブルー／ＰＢＳ（－）の調製
０．３ｇのトリパンブルー（ｎａｃａｒａｉ）をＰＢＳ（－）１００ｍｌで溶解した。

ＴＨＰ－１細胞の調製
　培養したＴＨＰ－１細胞をクリーンベンチ内で５０ｍｌの遠沈管に移し、１，０００ｒｐｍで５分間、２０℃で遠心後、上清を除去した。その沈渣を、新しい無血清ＲＰＭＩ　１６４０培地（Ｗａｋｏ）１ｍｌに懸濁した。この細胞懸濁液を、予め無血清ＲＰＭＩ　１６４０培地を９９０μｌ加えた滅菌エッペンドルフチューブに１０μｌ加え、１００倍希釈した。１００倍希釈液１０μｌを血球計数板で細胞数を数え、細胞懸濁液を無血清ＲＰＭＩ　１６４０培地で１×１０^７ｃｅｌｌｓ／ｍｌになるように希釈した。

<実験方法>
　ＲＰＭＩ培地１００μｌに２００μＭとなるように試験化合物（実施例９）／ＤＭＳＯ溶液、または、ＤＭＳＯを添加し、５秒間超音波を行った。なお、ポジティブコントロールとしては、試験化合物として、６－Ｏ－（２－デシルドカノイル）－α－グルコース（以下「対照化合物Ｂ」という）、およびＴＤＣＭを用いて同様に調製した。また、ネガティブコントロールとしては、試験化合物を何も加えず、同様に調製した（Ｖｅｈｉｃｌｅ）。１．０×１０^７ｃｅｌｌｓ／ｍｌに調製したＴＨＰ－１細胞１００μｌを加え３７℃で２時間、または、２４時間インキュベーションした。その後、０．３％　トリパンブルー／ＰＢＳ（－）を２０μｌ加え懸濁した後、すぐに細胞数測定装置（ＣＹＲＯＲＥＣＯＮ）で細胞の生存率を解析した。

<変異原性試験（Ａｍｅs試験）>
試薬の調製
０．１　Ｍリン酸ナトリウム緩衝液の調製
Ｎａ_２ＨＰＯ_４５．６８ｇを蒸留水２００ｍＬに溶解し、ＮａＨ_２ＨＰＯ_４・２Ｈ_２Ｏを蒸留水１００ｍＬに溶解したものを徐々に加えてｐＨ７．４に調整し、高圧蒸気滅菌した。

最小グルコース寒天培地の作成
（１）ＶＢ培地：ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ　０．４ｇ、クエン酸Ｈ_２Ｏ　４ｇ、Ｋ_２ＨＰＯ_４２０ｇ、ＮａＮＨ_４ＨＰＯ_４・４Ｈ_２Ｏ　７ｇを蒸留水２００ｍＬに溶解し高圧蒸気滅菌した。
（２）グルコース４０ｇを蒸留水２００ｍＬに溶解し高圧蒸気滅菌した。
（３）粉末寒天３０ｇを蒸留水１６００ｍＬに懸濁し高圧蒸気滅菌した。
（３）の試薬が約６０℃に冷えた後、（１）と（２）の試薬を混合し、約３０ｍＬずつシャーレにまいた。

上層寒天培地の作成
　粉末寒天１．２ｇとＮａＣｌ　１ｇを水２００ｍＬに懸濁し高圧蒸気滅菌し、５０ｍｌのチューブに移した。使用前に０．５ｍＭのヒスチジン／ビオチン溶液を２０ｍＬ混合して４７℃に保温した。

チフス菌培養用Ｏｘｏｉｄ　Ｎｕｔｒｉｅｎｔ　Ｂｒｏｔｈ培地の調製
　Ｏｘｏｉｄ　Ｎｕｔｒｉｅｎｔ　Ｂｒｏｔｈ（Ｄｉｆｃｏ）２．５ｇを蒸留水１００ｍｌに溶解し、その内５ｍｌをねじ試験管に入れて滅菌した。その後、ＴＡ９８（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ　ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ　ＴＡ９８）の菌液約１０μＬを接種して３７℃で一晩、振とう培養して菌懸濁液を調製した。

Ｓ９ｍｉｘの調製
Ｓ９　１ｍｌにＣｏ　ｆａｃｔｏｒＡ　ｍｉｘ（ＯＲＩＥＮＴＡＬ　ＹＥＡＳＴ）９ｍｌを加えた。

標準変異原性物質の調製
４－ＮＱＯ／ＤＭＳＯの調製
４－Ｎｉｔｒｏｑｕｉｎｏｌｉｎｅ　Ｎ－ｏｘｉｄｅ（４－ＮＱＯ）（東京化成工業株式会社）０．３ｍｇを１０ｍｌのＤＭＳＯに溶解した。
２－ａｍｉｎｏａｎｔｈｒａｔｈｅｎ／ＤＭＳＯの調製
２－ａｍｉｎｏａｎｔｈｒａｃｅｎ（ＡＬＤＲＩＣＨ）０．５ｍｇを３０ｍｌのＤＭＳＯに溶解した。

<実験方法>
　エッペンに標準変異原性物質、実施例９の試験化合物、対照化合物Ｂ、またはＴＤＣＭ１０μＬを各２本ずつ２組用意した。Ｓ９ｍｉｘまたは１００ｍＭリン酸緩衝液０．５ｍＬを加えた後、菌懸濁液１００μＬを加え、プレインキュベーションした（３７℃、２０分シェイキング）。ヒスチジン－ビオチンを含むソフトアガー（４７℃に保温したもの）２ｍＬを加え軽く懸濁し、最小グルコース寒天培地にまき、インキュベーションした（３７℃、２日間）。その後、Ｈｉｓ^＋のコロニー数を数えた。

<実験結果>
　ＴＨＰ－１細胞に対する細胞毒性を検討するため、実施例９で得られた試験化合物で２時間、及び、２４時間処理したＴＨＰ－１細胞の生存率をトリパンブルー染色により分析した結果、対照化合物Ｂ処理細胞では細胞毒性が認められたが、実施例９で得られた化合物で処理した細胞では、細胞毒性が観察されなかった。結果を図１０に示す。また実施例１で得られた化合物についても同様に有意な結果が得られた（データ示さず）。
　さらに、実施例９で得られた試験化合物に関してＳ９ｍｉｘ存在下、及び、非存在下においてＡｍｅｓ試験を行ったが、いずれの試験化合物も変異原性を示さなかった。また、本解析条件下における標準物質（２－ａｍｉｎｏ　ａｎｔｈｒａｃｅｎｅ，　４ＮＱＯ）の変異原性は、陽性であった（図１１）。また実施例１で得られた化合物についても同様に有意な結果が得られた（データ示さず）。

試験例１１
<マウス腹腔内への細胞浸潤>
<ＰＢＳ（－）溶液の調製>
ＮａＣｌ　４ｇ、Ｎａ_２ＨＰＯ_４・１２Ｈ_２Ｏ　１．４５ｇ、ＫＨ_２ＰＯ_４　０．１ｇ、ＫＣｌ　０．１ｇを蒸留水５００ｍｌに溶解し、１２１℃で２０分間高圧蒸気滅菌を行った。

<０．０５％　ＥＤＴＡ／ＰＢＳ（－）溶液の調製>
ＥＤＴＡ　（ｎａｃａｌａｉ　ｔｅｓｑｕｅ　ｃｏｄｅ．１５１－３０）５０ｍｇをＰＢＳ（－）１００ｍｌに溶解後、０．２μｍのフィルターを用い濾過滅菌した。

<１ｍｇ／ｍＬエマルジョン溶液の調製>
ＮａＣｌ　０．９ｇ、Ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｙｌｅｎｅ　Ｓｏｒｂｉｔａｎ　Ｍｏｎｏｏｌｅａｔｅ（Ｔｗｅｅｎ８０）　１．１ｍｌ、Ｄ（－）－Ｍａｎｎｉｔｏｌ　５．６ｇを蒸留水　１００ｍｌに溶解し、０．２μｍのフィルターで滅菌濾過を行った。実施例９で得られた試験化合物１ｍｇをホモジナイザー（ＷＥＡＴＯＮ　ＵＳＡ　１０ｍＬ、アズワン）の底部に取り、１滴のＭｉｎｅｌａｌ　Ｏｉｌを添加し、２分間超音波に当てながらホモジナイズした。その後、１ｍＬの１．１％　Ｔｗｅｅｎ－５．６％　Ｍａｎｎｉｔｏｌ　Ｓａｌｉｎｅを加え、液が白濁し、均一になるまでホモジナイズした。エッペンに試験化合物の溶液を全量移し、低温殺菌のため６２℃で３０分間処理した。ポジティブコントロールとしては、試験化合物として、対照化合物ＡおよびＴＤＣＭを用いて同様に調製した。また、ネガティブコントロールとしては、試験化合物を何も加えず、同様に調製した（ｖｅｈｉｃｌｅ）。

<腹腔内浸潤細胞の回収>
　１ｍｇ／ｍＬの試験化合物（実施例９）溶液を１００μｇ／マウスとなるように、マウス（ＩＣＲマウス（ＳＰＦ）（４週齢、雄、体重：２０～２２ｇ））に腹腔投与した。
　試験化合物を腹腔投与したマウスを、２時間後、または、２４時間後、ジエチルエーテルを使用して死亡させた。腹部中央の表皮に少しハサミで切れ込みを入れ、腹部をつまみ腹部表皮を剥ぎ取った。ピンセットで腹膜を軽く持ち上げ、内臓に針が刺さらないように２６Ｇの針を取り付けた１０ｍＬのシリンジで０．０５％　ＥＤＴＡ　ｉｎ　ＰＢＳ（－）　５ｍＬを腹腔内に全量注入した。その後、腹部の横をつまむようにして４０～５０回程度マッサージした。腹腔内部の液をゆっくりと小サイズの遠沈管に採取した。この操作を再度繰り返した。採取した細胞を１，０００ｒｐｍで１０分間遠心した。上清を除去し、ＲＰＭＩ１６４０培地で沈殿を懸濁した。遠沈管をＲＰＭＩ１６４０培地で満たし、再度１，０００ｒｐｍで１０分間遠心した。上清を捨て、ＲＰＭＩ１６４０培地で懸濁後、細胞計数盤を用いて細胞数を計測する。ＲＰＭＩ－１６４０培地を用いて、任意の濃度に希釈した。

<細胞のギムザ染色>
<１／１５　Ｍ　リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ６．４）の調製>
　ＮａＨ_２ＰＯ_４　６．０ｇ、Ｎａ_２ＨＰＯ_４　７．０６ｇをそれぞれ２５０ｍｌの蒸留水で溶解し、リン酸水素二ナトリウム溶液にｐＨを測定しながらリン酸二水素ナトリウム溶液を添加してｐＨ６．４に合わせ、オートクレーブ１２１℃　２０分間で滅菌した。
　１ｍｇ／ｍＬの試験化合物溶液を１００μｇ／マウスになるようにマウスに腹腔投与し、２４時間後に０．０５％　ＥＤＴＡ／ＰＢＳ（－）を用いて腹腔内に浸潤した細胞を回収した。その後、１０００ｒｐｍで８分間遠心を行い、上清を除去した。細胞を１００μＬのリン酸緩衝液で懸濁し、染色用スライドガラスの上に載せた。水分が蒸発したのを確認し、染色用バッドの上でメイグリュンワルド液を１０～１５滴、滴化し、２～３分間放置した。メイグリュンワルド液を流さずに、リン酸緩衝液を１０～１５滴、滴化し、２～３分間放置した。適当な量のギムザ染色液を添加し、３０分間放置した。スライドガラスを裏面にして流水後、スライドガラスを乾燥させ、顕微鏡により観察した。

<マウス腹腔内におけるＣＤ８陽性細胞のフローサイトメトリーによる解析>
試薬の調製

ＰＢＳ（－）溶液の調製
試験例１１と同じ方法で調製した。

１ｍｇ／ｍＬ試験化合物（エマルジョン溶液）の調製
試験例１１と同じ方法で調製した。

０．０５％　ＥＤＴＡ／ＰＢＳ（－）溶液の調整
　ＥＤＴＡ２Ｎａ　５０ｍｇを１００ｍｌのＰＢＳ（－）に溶解し、オートクレーブで１２１℃、２０分間滅菌を行った。

０．５％ＢＳＡ－０．０５％　ＥＤＴＡ／ＰＢＳ（－）溶液の調整
　ＥＤＴＡ２Ｎａ　５０ｍｇを１００ｍｌのＰＢＳ（－）に溶解し、オートクレーブで１２１℃、２０分間滅菌を行う。その後、用事調整で０．５％のＢＳＡを溶解した。

<実験方法>
　１ｍｇ／ｍＬの試験化合物エマルション溶液をマウス（１００μｇ／マウス）に腹腔投与し、２４時間後に０．０５％ＥＤＴＡ／ＰＢＳ（－）を用いて腹腔内に浸潤した細胞を回収した。その後、採取した腹腔細胞を３００ｇで１０分間遠心後、上清を除去した。調製した腹腔細胞を１ｍｌの０．０５％ＥＤＴＡ（０．５％ＢＳＡ／ＰＢＳで溶解）で懸濁した。細胞懸濁液をフローサイト用メッシュでろ過を行い、１００倍希釈した細胞懸濁液で細胞数を測定した。各々のサンプルの細胞を１０^７ｃｅｌｌｓ／ｓａｍｐｌｅに調整後、３００ｇで１０分間遠心を行い、上清を除去した。１００μｌの０．０５％ＥＤＴＡ（０．５％ＢＳＡ／ＰＢＳで溶解）で懸濁し、１０μｌのＣＤ１１ｂ、ＣＤ４、ＣＤ８の抗体（それぞれ、ＦＩＴＣ　ａｎｔｉ－ｍｏｕｓｅ　ＣＤ１１ｂ／Ｍａｃ－１（ＢＥＣＫＭＡＮ）、ＦＩＴＣ　ａｎｔｉ－ｍｏｕｓｅ　ＣＤ４（ＢＥＣＫＭＡＮ　ＣＯＵＬＴＥＲ）、ＰＥ　ａｎｔｉ－ｍｏｕｓｅ　ＣＤ８ａ（ＢＤ　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ））を添加した。２－８℃、暗所、１０分間インキュベート後、１－２ｍｌの０．０５％ＥＤＴＡ（０．５％ＢＳＡ／ＰＢＳで溶解）で細胞を懸濁し、３００ｇで１０分間遠心後、上清を除去した。１ｍｌの０．０５％ＥＤＴＡ（０．５％ＢＳＡ／ＰＢＳで溶解）で懸濁後、フローサイトメトリーで解析した。

<実験結果>
　ＰＢＳ（－）　１ｍＬで細胞を懸濁した。ヘモライナック（溶血ヘモグロビン試薬）１００μＬを細胞懸濁液に加え赤血球を破壊した。その後、細胞測定装置（ＣＹＴＯＲＥＣＯＮ、ＧＥ　ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）により細胞数を測定した。
　また、調製した細胞を２４ｗｅｌｌのコラーゲンウェル（ｇｒｅｉｎｅｒ）に播種し、２時間インキュベーションした。その後、上清を吸引し、ＲＰＭＩ培地による細胞の洗浄を２回繰り返した。ＲＰＭＩ培地　３００μｌ加え倒立顕微鏡により細胞を観察した。
　その結果、実施例９で得られた試験化合物を投与したマウス腹腔内では、時間依存的に浸潤細胞の増加が認められ、２４時間処理後には、Ｖｅｈｉｃｌｅ処理と比較して１５～２０倍増加していた（図１２）。

　また、浸潤細胞の解析を行うため、ギムザ染色による細胞の形態観察、及び、単球およびマクロファージの抗原（ＣＤ１１ｂ）、リンパ球の抗原（ＣＤ４）、そして、ＮＫ細胞の抗原（ＣＤ８）に対する種々の抗体で細胞を処理し、フローサイトメトリーにより解析した。その結果、実施例９で得られた試験化合物の投与２４時間後では、ＣＤ１１ｂ陽性細胞、ＣＤ４陽性細胞、ＣＤ８陽性細胞の全体数は、Ｖｅｈｉｃｌｅ処理細胞と比較して１５～２０倍増加していた。しかしながら、ＣＤ１１ｂ陽性細胞、及び、ＣＤ４陽性細胞の存在比率は、Ｖｅｈｉｃｌｅ処理条件下と比較して、ほとんど変化が認められなかった。一方、ＣＤ８陽性細胞の存在比率は、Ｖｅｈｉｃｌｅ処理マウスと比較して、約２～３倍増加していた（図１３～１５）。
　以上より、実施例９の試験化合物により、マウス腹腔内で食細胞系の細胞が集積することが示され、中でもＮＫ細胞の割合が大きいことが示された。

試験例１２
<ウェルシュ菌感染マウスまたは緑膿菌感染マウスへの影響（実施例９の化合物）>
<ウェルシュ菌調製方法>
ＣＯＯＫＥＤ　ＭＥＡＴ培地の調製　（以下ＣＭ培地と省略することもある）
　ＣＭ培地　（１２５ｍｇ／ｍｌ　ｉｎ　Ｄ．Ｗ．）をネジ付試験管に加え、１５分間煮沸してＣＭ培地内の空気を脱気した。オートクレーブ（１２１℃，２０分）による高圧蒸気滅菌を行い、室温まで冷却した。

Ｂｒａｉｎ　Ｈｅａｒｔ　Ｉｎｆｕｓｉｏｎ（以下ＢＨＩと省略する）培地の調製
　３７ｍｇのＢＨＩ培地を１００ｍｌの蒸留水に溶解し、ネジ付試験管に４．５ｍＬ、三角フラスコに４０ｍＬ加えてスポンジ栓をし、オートクレーブ（１２１℃，２０分）で高圧蒸気滅菌を行ったあと、室温まで冷却した。

菌の保存
　作製したＣＭ培地にＣ．　ｐｅｒｆｒｉｎｇｅｎｓ　Ｔｙｐｅ－Ａ　ＮＣＴＣ８２３７（ＰＬＣ＋）を添加し、３７　℃で２日間培養し、保存菌液として室温で保管した。

菌の培養と菌液の作製
　各保存菌液から菌液を０．２ｍＬとり、前培養用４．５ｍＬ　ＢＨＩ培地内に添加し、３７℃で、一晩培養した。この培養液全量を４０ｍＬＢＨＩ培地内に添加し、窒素置換（１０分間）を行ったあと、再び３７℃で、５時間培養した。その後、培養液５０ｍＬチューブに移し、遠心分離（４℃，９０００　ｒｐｍ，１５分）を行った。上清を除去し、生理食塩水を加えてよく洗浄した後、再び遠心分離（４℃，９０００ｒｐｍ，１５分）を行い集菌した。この洗浄を２回繰り返した。その沈殿にＢＨＩ培地を４．５ｍＬ加えて懸濁した。この懸濁液を原液とした。原液を１０００倍に希釈して、オートクレーブ（１２１℃，２０分）により高圧蒸気滅菌を行った後、ワンセルカンターを使用し、菌数を計測した。菌濃度が１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬの菌液を作製し、実験に使用した。

<緑膿菌調製方法>
Ｌｕｒｉａ‐Ｂｅｒｔａｎｉ　Ｂｒｏｔｈ培地　（Ｌ‐Ｂｒｏｔｈ）の調製
　Ｂａｃｔｏ^ＴＭ　Ｔｒｙｐｔｏｎｅ（Ｄｉｆｃｏ）１０．０ｇ、Ｂａｃｔｏ^ＴＭ　Ｙｅａｓｔ　Ｅｘｔｒａｃｔ（Ｄｉｆｃｏ）５．０ｇ、及び、塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）（ｎａｃａｌａｉ　ｔｅｓｑｕｅ）５．０ｇを蒸留水に溶解し、１Ｍ　ＭｇＳＯ_４を１．０ｍＬを加え、１Ｎ　ＮａＯＨでｐＨ７．５に調整し、蒸留水で全量を１，０００ｍＬにした後、オートクレーブで、１２１℃、２０分間、高圧蒸気滅菌し、室温まで冷却した。

菌の保存
　緑膿菌（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）０．２ｍＬをＬ‐Ｂｒｏｔｈ　１０ｍＬに添加し、３７℃で、一晩シェイキング培養した。この培養液に滅菌グリセリン１ｍＬ（グリセリン）を加え、ボルテックスを行った。菌液を３００μＬずつ滅菌エッペンに分注し、－８０℃で保存した。

　各保存菌液０．２ｍＬとり、４０ｍＬ　Ｌ‐Ｂｒｏｔｈ培地内に添加し、３７℃で、一晩シェイキング培養した。その後、５０ｍＬチューブに移し、遠心分離（４℃，９０００ｒｐｍ，１５分）行った。上清を除去し、生理食塩水を加えてよく洗浄した後、再び遠心分離（４℃，９０００ｒｐｍ，１５分）を行い集菌した。この洗浄を２回繰り返す。その沈殿に生理食塩水を４．５ｍＬ加えて懸濁した。この懸濁液を原液とし、原液を１００００倍に希釈した菌液をオートクレーブ（１２１℃，２０分）で高圧蒸気滅菌を行った後、ワンセルカンターを使用し、菌数を計測した。菌濃度が１×１０^８　ｃｅｌｌｓ／ｍＬの菌液を作製し、実験に使用した。

<実験方法：試験化合物の前投与>
　１００μｇ／マウスの試験化合物（実施例９）エマルション溶液を腹腔投与し、２４時間後、３．０×１０^１０ＣＦＵ／ｍＬの緑膿菌または、５．０×１０^７ＣＦＵ／ｍＬのウェルシュ菌を腹腔に投与し、マウスを２時間おきに観察した。

<実験方法：試験化合物の後投与>
　３．０×１０^１０ＣＦＵ／ｍＬの緑膿菌を腹腔に投与し３時間後、１００μｇ／マウスの試験化合物（実施例９）エマルション溶液を腹腔投与した。その後、マウスを２時間おきに観察した。

<実験結果>
　図１６および１７に示すように、実施例９の試験化合物で処理マウスの致死は、著しく抑制された。また、緑膿菌感染３時間後に実施例９の試験化合物を投与した結果、マウスの致死は、有意に抑制された（図１８）。

試験例１３
<敗血症観察>
　１００μｇ／マウスの試験化合物（実施例９）エマルション溶液を腹腔投与し、２４時間後、３．０×１０^１０ＣＦＵ／ｍＬの緑膿菌を感染させた。菌投与１５時間後にへパリンを針先に少し入れた注射器で心臓採血を行い、全血２００μＬを普通寒天培地上に播種し、１６時間、培養器でインキュベーションした。培地上のコロニー数をカウントした。
　菌数が多い場合は、全血を生理食塩水で１０倍、１００倍、１０００倍、１００００倍に希釈し、普通寒天培地に播種した。
　その結果、図１９に示すように、菌のみを投与した場合、または、菌およびＶｅｈｉｃｌｅを投与した場にはマウス血液内に菌が検出されたが、実施例９の試験化合物を投与した場合には、血液内で菌が検出されなかった。

試験例１４
<抗腫瘍効果>
　実施例９で得られた試験化合物（エマルション溶液）１００μｇ／マウスをマウスに腹腔内へ投与し、２４時間後に乳癌細胞（ＦＭ３Ａ細胞）を腹腔内に接種した。１９日後にマウスの体重測定を行った。また、横隔膜、膵臓、そして、精巣の組織切片をＨＥ染色後、顕微鏡により観察した。その結果、乳癌細胞接種マウスは、コントロールマウスと比較して体重が約１０ｇ増加しており、多量の腹水が認められた。また、乳癌細胞接種マウスの横隔膜、膵臓、そして、精巣に著しい癌細胞の浸潤、及び、転移が観察された。一方、実施例の試験化合物で処理した後に乳癌細胞を接種したマウスは、コントロールマウスと同様の体重であり、さらに、各臓器への癌細胞の浸潤、及び、転移は全く認められなかった（図２０）。

　本発明のトレハロース化合物は、ＴＤＣＭより優れたないしＴＤＣＭと同等程度の免疫賦活作用を有するものでありながら、ＴＤＣＭに比して毒性が著しく低減しており、医薬品として好適に用いることができる。本願化合物の毒性は、モデルマウスのみならず、ヒト由来細胞においても低減することが見出された。また、本願化合物は変異原性も低いことが示された。

　また、種々の構造を有するトレハロース化合物の中で、β水酸基を水素原子に代え、脂肪酸をα－分岐型またはβ－分岐型とし、分岐した炭素鎖（式（１）におけるＲ_１、Ｒ_２、Ｒ_１'、またはＲ_２'で表される部分）がそれぞれ炭素数７から２０程度の脂肪酸について逐一合成して試験を行うことにより、α－分岐型については炭素数１０、β－分岐型については炭素数９、１３または１４である化合物において、活性が極大となることを見出したものである。また、従来技術のアミド結合をエステル結合にすることで、アミド結合の有する癌誘発活性をも抑制することができることを見出したものである。

　さらに、本発明のトレハロース化合物は、ウェルシュ菌を腹腔内投与されたマウスにおいて、その致死性を低減するものである点で、当該化合物がｉｎ　ｖｉｖｏ試験においても大変有用であることが示された。また、ウェルシュ菌が産生した毒素を腹腔内投与されたマウスにおいても、その致死性を低減するものである点は画期的である。さらに、本発明のトレハロース化合物は、緑膿菌の腹腔内投与に対しても優れた抗菌活性により当該細菌の致死性を低減させることを見出した。

　また、その作用機序に関して、本発明のトレハロース化合物を投与した場合に、好中球Ｈ_２Ｏ_２活性、好中球貪食能、マクロファージ貪食能が増強されることを示した点で、これらの抗感染症作用は、マクロファージや好中球などの細胞性免疫の活性化によりもたらされるものであることを示唆するものである。

　これらの試験結果から、本発明のトレハロース化合物は、マクロファージや好中球などの細胞性免疫の活性化をもたらすものであり、マクロファージや好中球の食作用の対象となる細菌、ウィルス、真菌などによる感染症に対して広範囲において有用であることを示唆するものである。これは、感染症治療において、抗生物質を用いる際に、対象となる原因菌を見極め、それに対し抗菌スペクトルを有する抗生物質を適切に選択しなければならない上に、耐性菌出現リスクを抱え、そのうえ耐性菌が出現した折には、また当該耐性菌に対して抗菌スペクトルを有する他の抗生物質を適切に選択しなければならない従来の方法に比べて、簡便かつ確実な方法であるという利点を有する。

　さらに、ウィルスに対しては抗生物質が効かず、むしろワクチンを投与して予防するしかないという従来技術の現状において、ウィルスに対する治療薬をも提供しうる点で有用でありうる。

　そして、中でも、本発明のトレハロースジエステル化合物のうち、特に活性の高い化合物は、ＴＤＣＭの約２倍、特に活性の高いものでは約８倍～１０倍もの活性を有し、かつ、毒性が低い点で、特に有用なものであることが示された。

　さらに、本発明のトレハロース化合物投与後のサイトカイン応答を測定したところ、ＩＬ－６、ＩＦＮ－γ、ＴＮＦ－α遊離について、いずれも増加傾向が見られた。また、ｉｎ　ｖｉｔｒｏ試験とｉｎ　ｖｉｖｏ試験を行い、本発明の化合物のうち、特に活性の高い化合物は、ｉｎ　ｖｉｔｒｏ試験においては、これらのサイトカインの顕著な増大をもたらす面もあるものの、ｉｎ　ｖｉｖｏ試験においては、ＴＮＦ－αの遊離をあまり大きく増大させるものではないことを見出した。また、ヒト由来のＴＨＰ－１細胞からのＩＬ－８遊離活性においても、本発明化合物のうちの特に活性の高い化合物について、ＴＤＣＭほど強く活性化するものではないことを見出した。さらに、ヒト由来のＴＨＰ－１細胞、Ａ５４９細胞、ＤＬＤ－１細胞を用いて測定した結果、発明化合物のうちの特に活性の高い化合物は、ＴＨＰ－１細胞においてＭＩＰ－１βに対する顕著な遊離活性を示す一方で、ＴＮＦ-αの遊離活性を特に高めるものではないことを見出した。

　免疫賦活化は従来から重要視されており、サイトカインやケモカインの誘導は、免疫を活性化するために有用である。一方で、免疫を活性化しすぎると、アナフィラキシーショックやアレルギー等に代表されるように、かえって弊害の多いものとなることが知られている。本発明のトレハロース化合物は、これらの行き過ぎた炎症反応を引き起こすファクターとなりうる炎症性のＴＮＦ－αや、ケモカインとして知られるＩＬ－８の遊離に対する活性化が過度に至らず、免疫賦活作用はあるものの、免疫反応が過剰に作用して炎症等の副作用が生じる可能性が低いことを示したものである。その一方で、免疫反応の一過程において、一度にケモカイン等が放出されて免疫細胞を活性化することが重要である局面もあり、感染の状態や、被感染体の身体の状態等の種々の事情に応じて、サイトカインやケモカインが多量に遊離されることが有用となる面も存在する。
　以上のように、サイトカインやケモカインはその性質により、多量に遊離されることが好ましい場合、そうでない場合、特に問題にならない場合とがあり、状況に応じて様々ではありうるが、本発明のトレハロース化合物を、ＩＬ－８やＴＮＦ－αの遊離が所望される場合や、特に問題とならない場合には、ＩＬ－８やＴＮＦ－αなどの遊離を亢進させるように、または、これらの遊離が抑制されることを意図することなく、特定の種類の本発明のトレハロース化合物を所望の量で用いることも、本発明の範囲内である。

　さらに、本発明トレハロース化合物を投与した乳癌細胞接種マウスにおいて、癌細胞の増殖を有意に抑制し、他の臓器への浸潤や転移をも抑制することを見出した。これは、本願化合物が抗腫瘍活性を有することを示したものである。

　よって、本発明のトレハロース化合物の抗感染症治療剤および抗癌剤としての有用性・安全性をより明確に示すものである。

　本発明により提供されるトレハロース化合物は、免疫賦活活性が高く、さらに、毒性も低いことから、病原菌による感染症の治療に有用である。具体的には、本発明のトレハロース化合物を用いることにより、抗生物質投与の際の菌体破壊による毒素放出のような副作用を生じる危険性が少なく、病原菌の毒素自体にも毒性低減作用を有する医薬品を提供することが可能である。また、本発明のトレハロース化合物を用いることにより多剤耐性菌による感染症にも治療効果のある医薬を提供することが可能である。さらに、本発明の化合物は、過剰な免疫応答が生じるような危険性の少ない医薬品の製造にも有用である。
　また、本発明のトレハロース化合物の製造方法により、不斉合成を含まずに、本発明に係るトレハロース化合物を大量に効率よく合成することができる。

Claims

　以下の式（１）：

　　　　　　（式１）
［式中、
　Ｘは、フェニル、ナフチル、または、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり、
　Ｘ’は、フェニル、ナフチル、または、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり、
　ここで、
　　　　　Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、水素原子またはＣ_１－Ｃ_２１アルキル基であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく、各アルキル基の全部または一部は４－８員環を形成していてもよく、また、Ｒ_１及びＲ_２、Ｒ_１’及びＲ_２’は、それぞれ互いに連結して４－８員環を形成していてもよく、
　　　　　ｎ及びｎ’は、それぞれ独立に、０から３の整数である。
但し、
　（１）Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－であり、Ｘ’が、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’が、それぞれ独立に、水素原子または無置換かつ直鎖のＣ_１－Ｃ_６アルキル基であり、ｎ及びｎ’が０である化合物、及び、
　（２）Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－であり、Ｘ’が、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’がＣ_１４直鎖アルキル基であり、ｎ及びｎ’が０である化合物
を除く］
で表される化合物。
　請求項１に記載の化合物であって、
Ｘが、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－であり、Ｘ’が、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－である
化合物。
　請求項２に記載の化合物であって、
　Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、直鎖Ｃ_７－Ｃ_２１アルキル基であり、
　ｎ及びｎ’は、それぞれ独立に０または１である
化合物。
　請求項２に記載の化合物であって、
　Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、直鎖Ｃ_８－Ｃ_１６アルキル基であり、
　ｎ及びｎ’が０である
化合物。
　請求項２に記載の化合物であって、
　Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、直鎖Ｃ_９－Ｃ_１４アルキル基であ
り、
　ｎ及びｎ’は、１である
化合物。
　請求項１に記載の化合物であって、
　Ｒ_１がＲ_１’と同一であり、Ｒ_２がＲ_２’と同一であり、ｎがｎ’と同一である、
化合物。
　請求項１に記載の化合物であって、以下のいずれかの化合物：
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－オクチルデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ノニルウンデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ウンデシルトリデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ドデシルテトラデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－トリデシルペンタデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ペンタデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロース、又は、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－ヘキサデシルオクタデカノイル）－α，α’－トレハロース。
　請求項１に記載の化合物であって、以下のいずれかの化合物：
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－デシルトリデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ウンデシルテトラデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ドデシルペンタデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－α，α’－トレハロース、又は、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロース。
　請求項１に記載の化合物であって、以下のいずれかの化合物：
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－α，α’－トレハロース、又は、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロース。
　請求項１から９のいずれかに記載の化合物及び薬理学的に許容できるキャリアを含有する医薬組成物。
　請求項１０に記載の医薬であって、免疫賦活剤、マクロファージ賦活剤、好中球賦活剤、貪食細胞の食菌作用賦活剤、抗細菌感染症剤、菌産生毒素中和剤、または、抗癌剤として用いられる医薬組成物。
　免疫賦活剤、マクロファージ賦活剤、好中球賦活剤、貪食細胞の食菌作用賦活剤、抗細菌感染症剤、菌産生毒素中和剤、または、抗癌剤として用いられる医薬組成物の製造のための、請求項１から９のいずれかに記載の化合物の使用。
　ヒトを含む哺乳動物の感染症、または、癌の予防方法又は治療方法であって、
　治療上有効量の請求項１から９のいずれかに記載の化合物を当該哺乳動物に投与することを含む方法。
　以下の式（２）：

　　　　　　（式２）
［式中、
　Ｘは、フェニル、ナフチル、または、Ｒ_１－ＣＨＲ_２－で表される基であり、
　Ｘ’は、フェニル、ナフチル、または、Ｒ_１’－ＣＨＲ_２’－で表される基であり、
　ここで、
　　　　　Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２及びＲ_２’は、それぞれ独立に、水素原子またはＣ_１－Ｃ_２１アルキル基であり、Ｒ_１、Ｒ_１’、Ｒ_２、Ｒ_２’に関し、各アルキル基中の水素原子は、水酸基、アルコキシ基によって置換されていてもよく、各アルキル基の全部または一部は４－８員環を形成していてもよく、また、Ｒ_１及びＲ_２、Ｒ_１’及びＲ_２’は、それぞれ互いに連結して４－８員環を形成していてもよく、
　　　　　ｎ及びｎ’は、それぞれ独立に、０から３の整数である。］
で表される化合物を含有することを特徴とする菌産生毒素中和剤。
以下のいずれかの化合物：
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－デシルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（２－テトラデシルヘキサデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－ノニルドデカノイル）－α，α’－トレハロース、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－トリデシルヘキサデカノイル）－α，α’－トレハロース、又は、
　６，６’－ビス－Ｏ－（３－テトラデシルヘプタデカノイル）－α，α’－トレハロースを含有することを特徴とする菌産生毒素中和剤。