WO2010016526A1 - 癌の治療及び予防用医薬組成物 - Google Patents

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岡野文義
井戸隆喜
齋藤孝則
小林真一
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東レ株式会社
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    • C07K2317/734—Complement-dependent cytotoxicity [CDC]

Definitions

  • the present invention relates to a novel pharmaceutical use of an antibody against CAPRIN-1 or a fragment thereof as a therapeutic and / or prophylactic agent for cancer.
  • Cancer is a disease that occupies the top cause of all deaths, and the current treatment is a combination of radiation therapy and chemotherapy, mainly surgery. Despite the recent development of new surgical methods and the discovery of new anti-cancer drugs, the therapeutic results of cancer have not improved much except for some cancers. In recent years, advances in molecular biology and cancer immunology have identified antibodies that react specifically with cancer, cancer antigens that are recognized by cytotoxic T cells, genes that encode cancer antigens, There is an increasing expectation for a specific cancer therapy targeting cancer antigens (Non-patent Document 1).
  • Non-Patent Documents 4 to 4 9
  • clinical studies of cell therapy using immune cells that specifically react with cancer antigens and cancer-specific immunotherapy such as vaccines containing cancer antigens are being conducted targeting a part of them.
  • Cytoplasma-and promotion-associated protein 1 (CAPRIN-1) is expressed when quiescent normal cells are activated or undergo cell division, and also forms RNA and intracellular stress granules within the cell to transport mRNA It is an intracellular protein known to be involved in the control of translation.
  • CAPRIN-1 Cytoplasma-and promotion-associated protein 1
  • examples include GPI-anchored membrane protein 1 and Membrane component surface marker protein 1 (M11S1), and this protein is a cell membrane protein. There is a name as if it was known. These aliases originally originated from a report (Non-patent Document 10) that the gene sequence of CAPRIN-1 has a GPI-binding region and is expressed in colon cancer cells.
  • the CAPRIN-1 gene sequence is incorrect, and the CAPRIN-1 gene sequence currently registered in GenBank et al. Lacks one base, resulting in a frameshift resulting in a deletion of 80 amino acids from the C-terminus.
  • the resulting artifact (74 amino acids) is the GPI-binding portion in the previous report, and further there is a gene sequence error on the 5 ′ side, and 53 amino acids are deleted from the N-terminus (non-patent literature). 11). Further, it has been reported that the protein encoded by the gene sequence of CAPRIN-1 currently registered in GenBank et al. Is not a cell membrane protein (Non-patent Document 11).
  • Patent Documents 2 and 3 include the name M11S1, and CAPRIN-1 is one of the cell membrane proteins and is used as a target for antibody drugs. It is described that it can be used for treatment (there is no mention of treatment using an antibody against this protein in the Examples).
  • Non-Patent Document 11 from the time of filing of Patent Document 2 to the present, it has become common knowledge that CAPRIN-1 is not expressed on the cell surface, and CAPRIN-1 is a cell membrane protein. It is clear that the contents of Patent Documents 2 and 3 based only on false information that is not to be understood as technical common knowledge for those skilled in the art.
  • An object of the present invention is to identify a cancer antigen protein that is specifically expressed on the surface of a cancer cell, and to provide a use of an antibody targeting it as a therapeutic and / or prophylactic agent for cancer.
  • CAPRIN-1 having an amino acid sequence represented by an even sequence number among SEQ ID NOs: 2 to 30 based on the obtained gene and its human, bovine, horse, mouse, chicken homologous gene Antibodies against CAPRIN-1 were generated.
  • CAPRIN-1 is specifically expressed in breast cancer, brain tumor, leukemia, lymphoma, lung cancer, esophageal cancer, colon cancer, gastric cancer and kidney cancer cells, and part of the CAPRIN-1 protein is a cell of these cancer cells. It was found that it was specifically expressed on the surface. And it discovered that the antibody with respect to the part expressed on the cell surface of each cancer cell of these CAPRIN-1 impaired the cancer cell which expresses CAPRIN-1, and came to complete this invention.
  • the present invention has the following features.
  • the present invention relates to an amino acid sequence represented by an even sequence number among SEQ ID NOs: 2 to 30, or 80% or more, preferably 85% or more, more preferably 90% or more, and still more preferably 95% or more with the amino acid sequence.
  • a CAPRIN-1 protein having an amino acid sequence having the same sequence identity, or a fragment thereof containing 7 or more consecutive amino acids, and an antibody or fragment thereof having immunological reactivity as an active ingredient,
  • a pharmaceutical composition for the treatment and / or prevention of cancer is provided.
  • the cancer is breast cancer, brain tumor, leukemia, lymphoma, lung cancer, esophageal cancer, colon cancer, stomach cancer or kidney cancer.
  • the antibody is a monoclonal antibody or a polyclonal antibody.
  • the antibody is a human antibody, a humanized antibody, a chimeric antibody, a single chain antibody, or a bispecific antibody.
  • the antibody has the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 37 or 136, or 80% or more, preferably 85% or more, more preferably 90% or more, and still more preferably 95% or more with the amino acid sequence.
  • the antibody is any one of the following antibodies (a) to (k), an antibody having immunological reactivity with the CAPRIN-1 protein, or the antibody as an active ingredient: (A) a heavy chain variable region comprising SEQ ID NOs: 40, 41 and 42 and a light chain comprising SEQ ID NOs: 44, 45 and 46, which is a pharmaceutical composition for the treatment and / or prevention of cancer, characterized in that An antibody comprising a chain variable region.
  • An antibody comprising a heavy chain variable region comprising SEQ ID NOs: 40, 41 and 42 and a light chain variable region comprising SEQ ID NOs: 65, 66 and 67.
  • An antibody comprising a heavy chain variable region comprising SEQ ID NOs: 70, 71 and 72 and a light chain variable region comprising SEQ ID NOs: 74, 75 and 76.
  • An antibody comprising a heavy chain variable region comprising SEQ ID NOs: 90, 91 and 92 and a light chain variable region comprising SEQ ID NOs: 94, 95 and 96.
  • An antibody comprising a heavy chain variable region comprising SEQ ID NOs: 100, 101 and 102 and a light chain variable region comprising SEQ ID NOs: 104, 105 and 106.
  • the antibody against CAPRIN-1 used in the present invention damages cancer cells. Therefore, antibodies against CAPRIN-1 are useful for the treatment and prevention of cancer.
  • FIG. 2 is a graph showing cytotoxicity against a breast cancer cell line MDA-MB-157 expressing CAPRIN-1 by monoclonal antibodies (# 1 to # 11) against CAPRIN-1 that react with the cell surface of cancer cells.
  • the antitumor activity of the antibody against the polypeptide having an even sequence number among SEQ ID NOs: 2 to 30 used in the present invention is, as described later, by examining the suppression of tumor growth in a cancer-bearing animal in vivo, or It can be evaluated by examining whether tumor cells expressing the polypeptide in vitro exhibit cytotoxic activity via immune cells or complement.
  • nucleotide sequences of the polynucleotides encoding the proteins consisting of the amino acid sequences of even numbers among SEQ ID NOs: 2 to 30 are respectively SEQ ID NOs: 1 to It is shown by the odd number sequence number (namely, sequence number 1,3,5..27,29) among 29.
  • amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 6, 8, 10, 12, and 14 in the sequence listing disclosed by the present invention are derived from cancer-bearing dogs by the SEREX method using a dog testis tissue-derived cDNA library and the serum of a dog with breast cancer.
  • the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 2 and 4 are human homologues (homologs), the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 16 is As the bovine homologous factor, the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 18 is the equine homologous factor, the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 20-28 is the mouse homologous factor, the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 30 is the It is an amino acid sequence of CAPRIN-1 isolated as a chicken homologous factor (see Example 1 described later). CAPRIN-1 is known to be expressed when quiescent normal cells are activated or undergo cell division.
  • CAPRIN-1 was known not to be expressed on the cell surface, this study revealed that a part of the CAPRIN-1 protein is expressed on the cell surface of various cancer cells.
  • an antibody that binds to a portion of the CAPRIN-1 protein that is expressed on the cell surface of a cancer cell is preferably used.
  • a polypeptide comprising a sequence of 7 or more amino acids in the region of number (aa) 50-98 or amino acid residue number (aa) 233-305, specifically, for example, SEQ ID NO: 37 or SEQ ID NO: 136 (among the amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 136, the region of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 137 or SEQ ID NO: 138 is preferred), or 80% or more of the amino acid sequence, preferably Is an amino acid sequence having a sequence identity of 85% or more, more preferably 90% or more, and still more preferably 95% or more
  • Antibodies of the invention bind to these peptides, and includes all antibodies that exhibit anti-tumor activity.
  • the antibody against CAPRIN-1 used in the present invention may be any kind of antibody as long as it can exhibit antitumor activity, such as a monoclonal antibody, a polyclonal antibody, a synthetic antibody, a multispecific antibody, a human antibody, Humanized antibodies, chimeric antibodies, single chain antibodies (scFV), antibody fragments such as Fab and F (ab ′) 2 are included. These antibodies and fragments thereof can also be prepared by methods known to those skilled in the art.
  • an antibody capable of specifically binding to the CAPRIN-1 protein is desirable, and a monoclonal antibody is preferable, but a polyclonal antibody may be used as long as a homogeneous antibody can be stably produced. .
  • a test subject is a human, it is desirable that it is a human antibody or a humanized antibody in order to avoid or suppress rejection.
  • CAPRIN-1 protein specifically binds to CAPRIN-1 protein and does not substantially bind to other proteins.
  • the antitumor activity of the antibody that can be used in the present invention is determined by examining the suppression of tumor growth in cancer-bearing animals in vivo, or against tumor cells that express the polypeptide in vitro. Thus, it can be evaluated by examining whether or not it exhibits cytotoxic activity via immune cells or complement.
  • the subject to be treated and / or prevented for cancer in the present invention is a mammal such as a human, a pet animal, livestock, a sport animal, etc., and a preferred subject is a human.
  • the protein or fragment thereof used as a sensitizing antigen for obtaining an antibody against CAPRIN-1 used in the present invention is used for the animal species from which it is derived, such as humans, dogs, cows, horses, mice, rats, and chickens. Not limited. However, it is preferable to select in consideration of compatibility with the parent cell used for cell fusion. In general, a protein derived from a mammal is preferable, and a protein derived from a human is particularly preferable. For example, when CAPRIN-1 is human CAPRIN-1, human CAPRIN-1 protein, a partial peptide thereof, cells expressing human CAPRIN-1 and the like can be used.
  • GenBank GenBank
  • FASTA Altschul et al., Nucleic Acids Res. 25: 3389-3402, 1997.
  • the base sequence or amino acid sequence of these ORFs or mature portions is 70% to 100%, preferably 80% to 100%, more preferably 90% to 100%, even more preferably 95% to 100%, such as 97% to 100%, 98% to 100%, 99% to 100% or 99.100%.
  • a target is a nucleic acid or protein consisting of a sequence having 5% to 100% sequence identity.
  • “% sequence identity” refers to the amino acid (or base) of two sequences when they are aligned (aligned) for maximum similarity with or without gaps. The percentage (%) of the same amino acid (or base) relative to the total number.
  • the CAPRIN-1 protein fragment has a length less than the total length of the protein from the amino acid length of the epitope (antigenic determinant), which is the smallest unit recognized by the antibody.
  • An epitope refers to a polypeptide fragment that has antigenicity or immunogenicity in a mammal, preferably a human, and its minimum unit consists of about 7 to 12 amino acids, such as 8 to 11 amino acids.
  • Specific examples include the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 137, or SEQ ID NO: 138, or 80% or more, preferably 85% or more, more preferably 90% or more, and still more preferably 95% with the amino acid sequence. Examples include amino acid sequences having the above sequence identity.
  • polypeptides including human CAPRIN-1 protein and partial peptides thereof are synthesized according to chemical synthesis methods such as Fmoc method (fluorenylmethyloxycarbonyl method) and tBoc method (t-butyloxycarbonyl method), for example.
  • Fmoc method fluorenylmethyloxycarbonyl method
  • tBoc method t-butyloxycarbonyl method
  • the polynucleotide encoding the above-mentioned polypeptide can be easily prepared by a known genetic engineering technique or a conventional method using a commercially available nucleic acid synthesizer.
  • DNA containing the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 is subjected to PCR using a pair of primers designed to amplify the nucleotide sequence described in SEQ ID NO: 1, using human chromosomal DNA or cDNA library as a template.
  • PCR reaction conditions can be appropriately set. For example, using a thermostable DNA polymerase (eg, Taq polymerase) and a Mg 2+ -containing PCR buffer, the reaction temperature is 94 ° C.
  • the reaction process consisting of 1 minute (annealing) and 2 minutes (elongation) at 72 ° C. is defined as one cycle.
  • the reaction may be performed at 72 ° C. for 7 minutes after 30 cycles, but is not limited thereto.
  • the PCR method, conditions, etc. are described in, for example, Ausubel et al., Short Protocols in Molecular Biology, 3rd Edition, A compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology (1995), J ing.
  • probes and primers are prepared based on the nucleotide sequence and amino acid sequence information shown in SEQ ID NOs: 1 to 30 in the sequence listing in this specification, and a human or other cDNA library is screened using the probes and primers. By doing so, the desired DNA can be isolated.
  • the cDNA library is preferably prepared from cells, organs or tissues expressing a protein having an even sequence number among SEQ ID NOs: 2 to 30. Examples of such cells and tissues are cells or tissues derived from cancer or tumors such as testis, leukemia, breast cancer, lymphoma, brain tumor, lung cancer, colon cancer and the like.
  • the host cell may be any cell that can express the polypeptide.
  • prokaryotic cells include Escherichia coli
  • examples of eukaryotic cells include monkey kidney cells COS1, Chinese hamster ovary cells.
  • examples include, but are not limited to, mammalian cells such as CHO, human embryonic kidney cell line HEK293, mouse embryonic skin cell line NIH3T3, yeast cells such as budding yeast and fission yeast, silkworm cells, and Xenopus egg cells.
  • the expression vector When a prokaryotic cell is used as a host cell, the expression vector includes an origin, promoter, ribosome binding site, multicloning site, terminator, drug resistance gene, auxotrophic complementary gene, etc. that can be replicated in the prokaryotic cell. Is used. Examples of the expression vector for E. coli include pUC system, pBluescript II, pET expression system, pGEX expression system and the like.
  • a prokaryotic host cell is transformed with the vector, and the resulting transformant is cultured, the polypeptide encoded by the DNA is prokaryotic. It can be expressed in a host cell. In this case, the polypeptide can also be expressed as a fusion protein with another protein.
  • an expression vector for a eukaryotic cell having a promoter, a splicing region, a poly (A) addition site and the like is used as an expression vector.
  • expression vectors include pKA1, pCDM8, pSVK3, pMSG, pSVL, pBK-CMV, pBK-RSV, EBV vector, pRS, pcDNA3, pYES2, and the like.
  • pIND / V5-His pFLAG-CMV-2, pEGFP-N1, pEGFP-C1, etc.
  • a His tag eg (His) 6 to (His) 10
  • FLAG tag eg (His) 10
  • myc tag eg (His) 6 to (His) 10
  • the polypeptide can be expressed as a fusion protein to which various tags such as HA tag and GFP are added.
  • a well-known method such as electroporation, calcium phosphate method, liposome method, DEAE dextran method, microinjection, virus infection, lipofection, binding to a cell membrane-permeable peptide, etc. can be used. .
  • An antibody is usually a heteromultimeric glycoprotein comprising at least two heavy chains and two light chains. Apart from IgM, it is an approximately 150 kDa heterotetrameric glycoprotein composed of two identical light (L) chains and two identical heavy (H) chains. Typically, each light chain is linked to the heavy chain by one disulfide covalent bond, but the number of disulfide bonds between the heavy chains of different immunoglobulin isotypes varies. Each heavy and light chain also has intrachain disulfide bonds. Each heavy chain has at one end a variable domain (VH region) followed by several constant regions. Each light chain has a variable domain (VL region) and one constant region at the opposite end.
  • VH region variable domain
  • VL region variable domain
  • the constant region of the light chain is aligned with the first constant region of the heavy chain, and the light chain variable domain is aligned with the variable domain of the heavy chain.
  • the variable domain of an antibody confers binding specificity on the antibody by exhibiting specific variability, in which a specific region is called a complementarity determining region (CDR).
  • CDR complementarity determining region
  • the relatively conserved portion of the variable region is called the framework region (FR).
  • the complete heavy and light chain variable domains each contain 4 FRs linked by 3 CDRs.
  • the three CDRs are called CDRH1, CDRH2, CDRH3 from the N-terminal in the heavy chain, and similarly called CDRL1, CDRL2, CDRL3 in the light chain.
  • CDRH3 is most important for the binding specificity of the antibody to the antigen.
  • the CDRs of each chain are held together in a state closer to the FR region, and contribute to the formation of an antigen binding site of the antibody together with the CDR from the other chain.
  • the constant region does not contribute directly to the binding of the antibody to the antigen, but is involved in various effector functions such as antibody-dependent cellular cytotoxicity (ADCC), phagocytosis through binding to Fc ⁇ receptors,
  • Figure 6 shows half-life / clearance rate through neonatal Fc receptor (FcRn), complement dependent cytotoxicity (CDC) through the C1q component of the complement cascade.
  • the anti-CAPRIN-1 antibody in the present invention means an antibody having immunological reactivity with the full length of a CAPRIN-1 protein or a fragment thereof.
  • immunological reactivity means the property of binding between an antibody and a CAPRIN-1 antigen in vivo, and damages the tumor through such binding (eg, death, suppression or regression). Function. That is, the antibody used in the present invention can bind to the CAPRIN-1 protein and can damage tumors such as leukemia, lymphoma, breast cancer, brain tumor, lung cancer, esophageal cancer, stomach cancer, kidney cancer, colon cancer and the like. For example, it doesn't matter.
  • antibodies include monoclonal antibodies, polyclonal antibodies, synthetic antibodies, multispecific antibodies, human antibodies, humanized antibodies, chimeric antibodies, single chain antibodies, antibody fragments (eg, Fab and F (ab ′) 2 ), and the like.
  • the antibody may also be any class of immunoglobulin molecules, such as IgG, IgE, IgM, IgA, IgD and IgY, or any subclass, such as IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgA1, IgA2, and the like.
  • the antibody may be further modified by acetylation, formylation, amidation, phosphorylation, or PEGylation.
  • the antibody is a monoclonal antibody
  • a breast cancer cell line SK-BR-3 expressing CAPRIN-1 is administered to the mouse for immunization, the spleen is extracted from the mouse, the cells are separated, A cell and a mouse myeloma cell are fused, and a clone producing an antibody having a cancer cell growth inhibitory action is selected from the obtained fused cells (hybridoma).
  • It can be prepared by isolating a monoclonal antibody-producing hybridoma having cancer cell growth inhibitory action, culturing the hybridoma, and purifying the antibody from the culture supernatant by a general affinity purification method.
  • a hybridoma producing a monoclonal antibody can also be produced, for example, as follows.
  • an animal is immunized with a sensitizing antigen according to a known method.
  • a sensitizing antigen is injected into a mammal intraperitoneally or subcutaneously.
  • the sensitizing antigen is diluted to an appropriate amount with PBS (Phosphate-Buffered Saline), physiological saline, or the like, and mixed with an appropriate amount of an ordinary adjuvant, for example, Freund's complete adjuvant, if necessary, and emulsified.
  • PBS Phosphate-Buffered Saline
  • physiological saline or the like
  • an ordinary adjuvant for example, Freund's complete adjuvant, if necessary, and emulsified.
  • the mammal is dosed several times every 4-21 days.
  • an appropriate carrier can be used during immunization with the sensitizing antigen.
  • immune cells are collected from the mammal and subjected to cell fusion. Can be mentioned.
  • Mammalian myeloma cells are used as the other parent cell to be fused with the immune cells.
  • This myeloma cell is known in various known cell lines such as P3U1 (P3-X63Ag8U1), P3 (P3x63Ag8.653) (J. Immunol. (1979) 123, 1548-1550), P3x63Ag8U. 1 (Current Topics in Microbiology and Immunology (1978) 81, 1-7), NS-1 (Kohler. G. and Milstein, C. Eur. J. Immunol. (1976) 6, 511-511) (Margulies.
  • the cell fusion between the immune cell and myeloma cell is basically performed by a known method, for example, the method of Kohler and Milstein et al. (Kohler, G. and Milstein, C. Methods Enzymol. (1981) 73, 3-46. ) And the like.
  • the cell fusion is performed, for example, in a normal nutrient culture medium in the presence of a cell fusion promoter.
  • a cell fusion promoter for example, polyethylene glycol (PEG), Sendai virus (HVJ), or the like is used as the fusion promoter, and an auxiliary agent such as dimethyl sulfoxide can be added and used to increase the fusion efficiency as desired.
  • the usage ratio of immune cells and myeloma cells can be arbitrarily set.
  • the number of immune cells is preferably 1 to 10 times that of myeloma cells.
  • the culture solution used for the cell fusion for example, RPMI1640 culture solution suitable for growth of the myeloma cell line, MEM culture solution, and other normal culture solutions used for this kind of cell culture can be used.
  • Serum replacement fluid such as fetal calf serum (FCS) can be used in combination.
  • a predetermined amount of the immune cells and myeloma cells are mixed well in the culture medium, and a PEG solution (for example, an average molecular weight of about 1000 to 6000) preliminarily heated to about 37 ° C. is usually 30 to 60% (
  • the desired hybridoma is formed by adding at a concentration of w / v) and mixing.
  • cell fusion agents and the like that are undesirable for the growth of the hybridoma are removed by sequentially adding an appropriate culture medium and centrifuging to remove the supernatant.
  • the hybridoma thus obtained is selected by culturing in a normal selective culture solution, for example, a HAT culture solution (a culture solution containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine). Culturing with the HAT culture solution is continued for a sufficient time (usually several days to several weeks) for cells other than the target hybridoma (non-fusion cells) to die. Subsequently, the usual limiting dilution method is performed, and the hybridoma producing the target antibody is screened and single-cloned.
  • a normal selective culture solution for example, a HAT culture solution (a culture solution containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine). Culturing with the HAT culture solution is continued for a sufficient time (usually several days to several weeks) for cells other than the target hybridoma (non-fusion cells) to die. Subsequently, the usual limiting dilution method is performed, and the hybridoma producing the target antibody is screened
  • human lymphocytes such as human lymphocytes infected with EB virus are sensitized in vitro with proteins, protein-expressing cells or lysates thereof. Lymphocytes can be fused with human-derived myeloma cells having permanent mitotic activity, for example, U266 (Registration No. TIB196) to obtain a hybridoma that produces a human antibody having a desired activity (for example, cell growth inhibitory activity).
  • a desired activity for example, cell growth inhibitory activity
  • the hybridoma producing the monoclonal antibody thus produced can be subcultured in a normal culture solution and can be stored for a long time in liquid nitrogen.
  • a desired antigen or a cell expressing the desired antigen is used as a sensitizing antigen and immunized according to a normal immunization method, and the resulting immune cell is fused with a known parent cell by a normal cell fusion method. And can be prepared by screening monoclonal antibody-producing cells (hybridomas) by a normal screening method.
  • a polyclonal antibody can be obtained, for example, as follows.
  • This is prepared by, for example, purification using ammonium sulfate precipitation, protein A, protein G column, DEAE ion exchange chromatography, affinity column coupled with CAPRIN-1 protein or synthetic peptide, or the like.
  • a rabbit polyclonal antibody against a partial peptide (expressed by SEQ ID NO: 37) of a region expressed on the cell surface of a cancer cell in the amino acid sequence of the CAPRIN-1 protein was prepared, and the antitumor effect was exhibited. It has been confirmed.
  • human antibody-producing mice for example, KM mice (Kirin Pharma / Medarex) and Xeno mice (Amgen) are known (for example, International Publication Nos. WO02 / 43478, WO02 / 092812, etc.).
  • fully human polyclonal antibodies can be obtained from blood.
  • spleen cells can be removed from the immunized mouse and a human monoclonal antibody can be prepared by a fusion method with myeloma cells.
  • the antigen can be prepared according to, for example, a method using animal cells (Japanese Patent Publication No. 2007-530068), a method using baculovirus (eg, International Publication No. WO 98/46777).
  • immunization may be performed by binding to an immunogenic macromolecule such as albumin.
  • a recombinant antibody produced by cloning an antibody gene from a hybridoma, incorporating it into an appropriate vector, introducing it into a host, and producing it using a gene recombination technique (for example, Carl, AK Borrebaeck, James, W. Larrick, THERAPEUTIC MONOCLONAL, ANTIBODIES, Published in the United KingdomMIMILLAN PUBLISHERS 19).
  • a gene recombination technique for example, Carl, AK Borrebaeck, James, W. Larrick, THERAPEUTIC MONOCLONAL, ANTIBODIES, Published in the United KingdomMIMILLAN PUBLISHERS 19.
  • V region an antibody variable region
  • DNA encoding the V region of the target antibody is obtained, it is ligated with DNA encoding the desired antibody constant region (C region) and incorporated into an expression vector.
  • DNA encoding the V region of the antibody may be incorporated into an expression vector containing DNA of the antibody C region. It is incorporated into an expression vector so as to be expressed under the control of an expression control region such as an enhancer or promoter.
  • host cells can be transformed with this expression vector to express the antibody.
  • the anti-CAPRIN-1 antibody of the present invention is preferably a monoclonal antibody. However, it may be a polyclonal antibody, a genetically modified antibody (such as a chimeric antibody or a humanized antibody) and the like.
  • Monoclonal antibodies include human monoclonal antibodies, non-human animal monoclonal antibodies (eg, mouse monoclonal antibody, rat monoclonal antibody, rabbit monoclonal antibody, chicken monoclonal antibody, etc.). Monoclonal antibodies can be produced by culturing hybridomas obtained by fusion of spleen cells and myeloma cells from non-human mammals (eg, mice, human antibody-producing mice, etc.) immunized with CAPRIN-1 protein. In the examples described later, a mouse monoclonal antibody was produced, and the antitumor effect was confirmed.
  • non-human animal monoclonal antibodies eg, mouse monoclonal antibody, rat monoclonal antibody, rabbit monoclonal antibody, chicken monoclonal antibody, etc.
  • Monoclonal antibodies can be produced by culturing hybridomas obtained by fusion of spleen cells and myeloma cells from non-human mammals (eg, mice, human antibody-producing mice, etc.) imm
  • VH heavy chain variable
  • CDR1 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 44, SEQ ID NO: 50, SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 60, SEQ ID NO: 65, SEQ ID NO: 74, SEQ ID NO: 84, SEQ ID NO: 94, SEQ ID NO: 104, SEQ ID NO: 114, or SEQ ID NO: 124.
  • CDR2 and SEQ ID NO: 46, SEQ ID NO: 52, SEQ ID NO: 57, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 67, SEQ ID NO: 76, SEQ ID NO: 8 , SEQ ID NO: 96, SEQ ID NO: 106 include CDR3 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 116 or SEQ ID NO: 126.
  • a chimeric antibody is an antibody prepared by combining sequences derived from different animals, such as a mouse antibody heavy chain, light chain variable region and human antibody heavy chain, light chain constant region antibody, etc. .
  • a chimeric antibody can be prepared using a known method. For example, a DNA encoding an antibody V region and a DNA encoding a human antibody C region are ligated, incorporated into an expression vector, and introduced into a host. It is obtained by producing.
  • Polyclonal antibodies include antibodies obtained by immunizing human antibody-producing animals (eg, mice) with CAPRIN-1 protein.
  • a humanized antibody is a modified antibody also called a reshaped human antibody.
  • Humanized antibodies are constructed by transplanting CDRs of antibodies from immunized animals into the complementarity determining regions of human antibodies. The general gene recombination technique is also known.
  • oligos were prepared so that the DNA sequence designed to link the CDR of the mouse antibody and the framework region (FR) of the human antibody had an overlapping portion at the end. It is synthesized from nucleotides by PCR. The obtained DNA is obtained by ligating with the DNA encoding the human antibody constant region, then incorporating it into an expression vector, introducing it into a host and producing it (European Patent Application Publication No. EP239400, International Publication No. WO96). No. 02576). As the FR of a human antibody linked through CDR, a complementarity determining region that forms a favorable antigen binding site is selected.
  • the amino acid of the framework region in the variable region of the antibody may be substituted so that the complementarity determining region of the reshaped human antibody forms an appropriate antigen binding site (Sato K. et al., Cancer Research). 1993, 53: 851-856). Moreover, you may substitute by the framework area
  • a region in which the complementarity determining region forms a favorable antigen binding site is selected. If necessary, the amino acid of the framework region in the variable region of the antibody may be substituted so that the complementarity determining region of the reshaped human antibody forms an appropriate antigen binding site (Sato K. et al., Cancer). Research 1993, 53: 851-856).
  • variable region e.g, FR
  • constant region amino acids in the variable region or constant region may be substituted with other amino acids.
  • the amino acid substitution is, for example, less than 15, less than 10, less than 8, less than 7, less than 6, less than 5, less than 4, less than 3, less than 2, or less than 2, preferably 1 to 5, more preferably 1 or 2 amino acids
  • the substituted antibody should be functionally equivalent to the unsubstituted antibody.
  • the substitution is preferably a conservative amino acid substitution, which is a substitution between amino acids with similar properties such as charge, side chain, polarity, aromaticity and the like.
  • Amino acids with similar properties include, for example, basic amino acids (arginine, lysine, histidine), acidic amino acids (aspartic acid, glutamic acid), uncharged polar amino acids (glycine, asparagine, glutamine, serine, threonine, cysteine, tyrosine), nonpolar It can be classified into sex amino acids (leucine, isoleucine, alanine, valine, proline, phenylalanine, tryptophan, methionine), branched chain amino acids (threonine, valine, isoleucine), aromatic amino acids (phenylalanine, tyrosine, tryptophan, histidine).
  • basic amino acids arginine, lysine, histidine
  • acidic amino acids aspartic acid, glutamic acid
  • uncharged polar amino acids glycine, asparagine, glutamine, serine, threonine, cysteine, tyrosine
  • modified antibody examples include antibodies bound to various molecules such as polyethylene glycol (PEG).
  • PEG polyethylene glycol
  • the substance to be bound is not limited. In order to obtain such a modified antibody, it can be obtained by chemically modifying the obtained antibody. These methods are already established in this field.
  • “functionally equivalent” means that the target antibody has the same biological or biochemical activity as the antibody of the present invention, specifically, a function of damaging a tumor, and is applied to humans. Sometimes refers to not essentially causing rejection. Examples of such activity include cell growth inhibitory activity or binding activity.
  • an antibody that recognizes the epitope of the CAPRIN-1 protein recognized by the anti-CAPRIN-1 antibody can be obtained by methods known to those skilled in the art.
  • the epitope of the CAPRIN-1 protein recognized by the anti-CAPRIN-1 antibody is determined by an ordinary method (eg, epitope mapping), and an antibody is produced using a polypeptide having the amino acid sequence contained in the epitope as an immunogen.
  • This method can be obtained by a method, a method of determining an epitope of an antibody prepared by a usual method, and selecting an antibody having the same epitope as the anti-CAPRIN-1 antibody.
  • epitope refers to a polypeptide fragment having antigenicity or immunogenicity in a mammal, preferably a human, and its minimum unit consists of about 7 to 12 amino acids, preferably 8 to 11 amino acids.
  • the affinity constant Ka (k on / k off ) of the antibody of the present invention is preferably at least 10 7 M ⁇ 1 , at least 10 8 M ⁇ 1 , at least 5 ⁇ 10 8 M ⁇ 1 , at least 10 9 M ⁇ 1 , At least 5 ⁇ 10 9 M ⁇ 1 , at least 10 10 M ⁇ 1 , at least 5 ⁇ 10 10 M ⁇ 1 , at least 10 11 M ⁇ 1 , at least 5 ⁇ 10 11 M ⁇ 1 , at least 10 12 M ⁇ 1 , or alternatively At least 10 13 M ⁇ 1 .
  • the antibody of the present invention can be conjugated with an antitumor agent.
  • the bond between the antibody and the antitumor agent is a group reactive with an amino group, carboxyl group, hydroxy group, thiol group, etc. (for example, succinate imidyl group, formyl group, 2-pyridyldithio group, maleimidyl group, alkoxycarbonyl group). , A hydroxy group, etc.).
  • antitumor agents include the following antitumor agents known in the literature, such as paclitaxel, doxorubicin, daunorubicin, cyclophosphamide, methotrexate, 5-fluorouracil, thiotepa, busulfan, improsulfan, piperosulfan, benzodopa (benzodopa) ), Carbocone, methredopa, uredopa, uretopa, altreamine, triethylenemelamine, triethylenephosphoramide, triethylenethiophosphoramide, trimethylolothramine , Camptothecin, bryostatin, calistatin ( allystatin), cryptophycin 1, cryptophycin 8, dolastatin, duocarmycin, eleuterbin, panclastatin, sarcodictin, spongestatin, chlorambucil, chloronaphazine, cholophosphamide, estram Ifosfamide, mechlore
  • the antibodies of the present invention include radioactive substances such as 211 At, 131 I, 125 I, 90 Y, 186 Re, 188 Re, 153 SM, 212 Bi, 32 P, 175 Lu, 176 Lu, which are known in the literature. It is also possible to combine isotopes. It is desirable that the radioisotope is effective for tumor treatment and diagnosis.
  • the antibody of the present invention is an antibody immunologically reactive with CAPRIN-1 or an antibody that specifically recognizes CAPRIN-1.
  • the antibody should be an antibody having a structure such that little or no rejection is avoided in the subject animal to which it is administered.
  • examples of such antibodies include human antibodies, humanized antibodies, chimeric antibodies (eg, human-mouse chimeric antibodies), single chain antibodies, bispecific antibodies and the like when the target animal is human.
  • the heavy and light chain variable regions are derived from human antibodies, or the heavy and light chain variable regions are derived from non-human animal antibody complementarity determining regions (CDR1, CDR2 and CDR3).
  • a framework region derived from a human antibody, or the variable regions of the heavy and light chains are derived from a non-human animal antibody, and the constant regions of the heavy and light chains are human antibodies. It is a recombinant antibody that is derived from. Preferred antibodies are the previous two antibodies.
  • DNA encoding a monoclonal antibody against human CAPRIN-1 eg, human monoclonal antibody, mouse monoclonal antibody, rat monoclonal antibody, rabbit monoclonal antibody, chicken monoclonal antibody, etc.
  • DNAs encoding the light chain variable region and heavy chain variable region of the antibody were prepared by RT-PCR method, etc., and Kabat EU numbering system (Kabat et al., Sequences of Proteins of Immunological Institute, 5th Ed. of Health, Bethesda, Md. (1991)) to determine the sequence or sequences of the CDR1, CDR2, CDR3 of the variable region of the light and heavy chains based on.
  • DNA encoding each of these variable regions or DNA encoding each CDR can be obtained using a gene recombination technique (Sambrook et al., Molecular Cloning A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press (1989)) or a DNA synthesizer. Make it.
  • the human monoclonal antibody-producing hybridoma is prepared by immunizing a human antibody-producing animal (eg, mouse) with human CAPRIN-1, and then fusing spleen cells excised from the immunized animal with myeloma cells. Can do.
  • DNA encoding the variable region and constant region of the light chain or heavy chain derived from a human antibody is prepared as necessary using a gene recombination technique or a DNA synthesizer.
  • the CDR coding sequence in the DNA encoding the variable region of the light chain or heavy chain derived from the human antibody is derived from a non-human animal (for example, mouse, rat, chicken, etc.) corresponding thereto.
  • a humanized antibody is encoded by preparing a DNA in which the CDR coding sequence of the antibody is replaced, and ligating the resulting DNA with a DNA encoding a constant region of a light chain or heavy chain derived from a human antibody, respectively. DNA can be produced.
  • DNA encoding the light chain or heavy chain variable region of an antibody derived from an animal other than a human is used.
  • a DNA encoding a chimeric antibody can be prepared by linking with a DNA encoding a region.
  • this antibody is an antibody in which a heavy chain variable region and a light chain variable region are linearly linked via a linker, DNA encoding the heavy chain variable region, DNA encoding the linker And a DNA encoding a light chain variable region can be combined to produce a DNA encoding a single chain antibody.
  • each of the heavy chain variable region and the light chain variable region is derived from a human antibody, or only the CDR is replaced by the CDR of an antibody derived from a non-human animal (eg, mouse, rat, chicken, etc.). Derived from human antibodies.
  • the linker consists of 12 to 19 amino acids, and examples thereof include 15 amino acids (G 4 S) 3 (G. B. Kim et al., Protein Engineering Design and Selection 2007, 20 (9): 425-432). .
  • this antibody is an antibody that can specifically bind to two different epitopes, such as DNA encoding heavy chain variable region A, light chain variable region B.
  • DNA, DNA encoding heavy chain variable region B, and DNA encoding light chain variable region A are joined in this order (however, DNA encoding light chain variable region B and DNA encoding heavy chain variable region B) Are linked via a DNA encoding a linker as described above), whereby a DNA encoding a bispecific antibody can be prepared.
  • each of the heavy chain variable region and the light chain variable region is derived from a human antibody, or only the CDR is replaced by the CDR of an antibody derived from a non-human animal (eg, mouse, rat, chicken, etc.). Derived from human antibodies.
  • Recombinant DNA produced as described above is incorporated into one or more appropriate vectors, introduced into host cells (eg, mammalian cells, yeast cells, insect cells, etc.), and (co) expressed
  • host cells eg, mammalian cells, yeast cells, insect cells, etc.
  • a recombinant antibody can be prepared (PJ Delves., ANTIBODY PRODUCTION ESSENTIAL TECHNIQUES., 1997 WILEY, P. Shepherd and C. Dean. SNT. W. Gododing., Monoclonal Antibodies: principals and practices., 1993 ACADEMI PRESS).
  • Examples of the antibody of the present invention produced by the above method include the following antibodies (a) to (k).
  • An antibody composed of a light chain variable region
  • an antibody comprising a heavy chain variable region comprising SEQ ID NOs: 70, 71 and 72 and a light chain variable region comprising SEQ ID NOs: 74, 75 and 76 (preferably a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 73 and SEQ ID NO: 77
  • An antibody composed of a light chain variable region An antibody composed of a light chain variable region.
  • An antibody composed of a light chain variable region
  • an antibody comprising a heavy chain variable region comprising SEQ ID NOs: 100, 101 and 102 and a light chain variable region comprising SEQ ID NOs: 104, 105 and 106 (preferably a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 103 and SEQ ID NO: 107
  • Antibody composed of light chain variable region (J) an antibody comprising a heavy chain variable region comprising SEQ ID NOS: 110, 111 and 112 and a light chain variable region comprising SEQ ID NOS: 114, 115 and 116 (preferably a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 113 and SEQ ID NO: 117
  • An antibody composed of a light chain variable region An antibody composed of a light chain variable region).
  • SEQ ID NO: 40, 41 and 42, SEQ ID NO: 70, 71 and 72, SEQ ID NO: 80, 81 and 82, SEQ ID NO: 90, 91 and 92, SEQ ID NO: 100, 101 and 102, SEQ ID NO: 110, 111 and 112 , SEQ ID NOs: 120, 121 and 122 are the CDR1, CDR2 and CDR3 of the mouse antibody heavy chain variable region, respectively, and SEQ ID NOs: 44, 45 and 46, SEQ ID NOs: 50, 51 and 52, SEQ ID NO: 55, 56 and 57, SEQ ID NO: 60, 61 and 62, SEQ ID NO: 65, 66 and 67, SEQ ID NO: 74, 75 and 76, SEQ ID NO: 84, 85 and 86, SEQ ID NO: 94, 95 and 96, SEQ ID NO: 104, 105 and 106, SEQ ID NOs 114, 115 and 116, SEQ ID NOs 124 and 12 And the amino
  • the humanized antibody, chimeric antibody, single chain antibody or bispecific antibody of the present invention is, for example, the following antibody (exemplified by antibody (a)).
  • variable region of the heavy chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NOs: 40, 41 and 42 and the amino acid sequence of the framework region derived from a human antibody
  • variable region of the light chain comprises the amino acids of SEQ ID NOs: 44, 45 and 46
  • An antibody comprising the sequence and the amino acid sequence of the framework region derived from a human antibody preferably an antibody comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 43 in the heavy chain variable region and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 47 in the light chain variable region).
  • variable region of the heavy chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NOs: 40, 41 and 42 and the amino acid sequence of the framework region derived from a human antibody
  • constant region of the heavy chain comprises the amino acid sequence derived from a human antibody
  • variable region of the light chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NOs: 44, 45 and 46 and the amino acid sequence of the framework region derived from a human antibody
  • constant region of the light chain comprises the amino acid sequence derived from a human antibody.
  • variable region of the heavy chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 43
  • constant region of the heavy chain comprises an amino acid sequence derived from a human antibody
  • variable region of the light chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 47
  • constant region of the light chain comprises an amino acid sequence derived from a human antibody
  • human IgG1 heavy chain constant region has registration number J00228, human IgG2 Registration number J00230 for the heavy chain constant region, registration number X03604 for the human IgG3 heavy chain constant region, registration number K01316 for the human IgG4 heavy chain constant region, registration numbers V00557, X64135, X64133, etc. for the human light chain kappa constant region
  • sequences such as registration numbers X64132 and X64134 can be referred to.
  • the antibody preferably has a cytotoxic activity, and can thereby exert an antitumor effect.
  • a hybridoma capable of producing another human antibody or non-human animal antibody (eg, mouse antibody) against human CAPRIN-1 is prepared, and the monoclonal antibody produced by the hybridoma is recovered, and immunological binding to human CAPRIN-1 and It is determined whether or not the antibody is the target antibody using the cytotoxic activity as an index. After identifying the target monoclonal antibody-producing hybridoma, DNAs encoding the variable regions of the heavy and light chains of the target antibody were prepared from the hybridoma and sequenced as described above. Use for production.
  • the antibody of the present invention has the specificity of specifically recognizing CAPRIN-1, in particular the sequence of the framework region and / or the sequence of the constant region of each antibody of (i) to (iv) above There may be 1 or several (preferably 1 or 2) amino acid substitutions, deletions or additions. Here, several means 2 to 5, preferably 2 or 3.
  • the present invention further provides DNA encoding the antibody of the present invention, DNA encoding the heavy chain or light chain of the antibody, or DNA encoding the variable region of the heavy chain or light chain of the antibody.
  • DNA is, for example, in the case of antibody (a), a DNA encoding a heavy chain variable region comprising a base sequence encoding the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 40, 41 and 42, and amino acid sequences of SEQ ID NOs: 44, 45 and 46 DNA encoding a light chain variable region comprising a nucleotide sequence encoding
  • complementarity determining regions (CDRs) encoded by the DNA of these sequences are regions that determine the specificity of the antibody
  • sequences that encode other regions of the antibody May be a sequence derived from another antibody.
  • other antibodies include antibodies derived from organisms other than humans, but those derived from humans are preferable from the viewpoint of reducing side effects. That is, in the above DNA, the regions encoding the heavy chain and light chain framework regions and the constant regions preferably include a base sequence encoding a corresponding amino acid sequence derived from a human antibody.
  • DNA encoding the antibody of the present invention is, for example, in the case of the antibody (a), a DNA encoding a heavy chain variable region comprising a base sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 43, a light chain variable region And the like.
  • the DNA coding region includes DNA containing the base sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 47
  • an example of the base sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 43 is the base sequence of SEQ ID NO: 48.
  • An example of the base sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 47 is the base sequence of SEQ ID NO: 49.
  • the region encoding each heavy chain and light chain constant region includes a base sequence encoding a corresponding amino acid sequence derived from a human antibody.
  • the DNA of the present invention can be obtained, for example, by the above method or the following method.
  • total RNA is prepared from a hybridoma related to the antibody of the present invention using a commercially available RNA extraction kit, and cDNA is synthesized by reverse transcriptase using a random primer or the like.
  • the cDNA encoding the antibody is amplified by a PCR method using oligonucleotides having conserved sequences as primers.
  • the sequence encoding the constant region can be obtained by amplifying a known sequence by the PCR method.
  • the base sequence of DNA can be determined by a conventional method by incorporating it into a sequencing plasmid or phage.
  • the anti-tumor effect of the anti-CAPRIN-1 antibody used in the present invention on CAPRIN-1-expressing cancer cells is considered to occur by the following mechanism.
  • ADCC Effector cell antibody-dependent cytotoxicity
  • CDC complement-dependent cytotoxicity
  • the activity of the anti-CAPRIN-1 antibody used in the present invention is evaluated by the above-mentioned ADCC activity or CDC activity against cancer cells expressing CAPRIN-1 in vitro, as specifically shown in the Examples below. It can be evaluated by measuring.
  • the anti-CAPRIN-1 antibody used in the present invention binds to the CAPRIN-1 protein on cancer cells and exhibits an antitumor action due to the above activity, and thus is considered useful for the treatment or prevention of cancer. That is, the present invention provides a pharmaceutical composition for treating and / or preventing cancer comprising an anti-CAPRIN-1 antibody as an active ingredient.
  • the anti-CAPRIN-1 antibody is used for the purpose of administering it to the human body (antibody treatment), it is preferable to use a human antibody or a humanized antibody in order to reduce immunogenicity.
  • the binding constant (affinity constant) Ka (k on / k off ) is preferably at least 10 7 M ⁇ 1 , at least 10 8 M ⁇ 1 , at least 5 ⁇ 10 8 M as the high binding affinity.
  • ⁇ Binding to antigen-expressing cells The ability of an antibody to bind to CAPRIN-1 can be identified using binding assays such as those described in the Examples using, for example, ELISA, Western blotting, immunofluorescence and flow cytometry analysis.
  • Antibodies that recognize CAPRIN-1 are inoculated with tissue obtained from patients during surgery or cell lines expressing CAPRIN-1 naturally or after transfection by immunohistochemistry in a manner well known to those skilled in the art
  • tissue obtained from animals bearing selected xenografts using paraformaldehyde or acetone-fixed frozen sections or paraformaldehyde-fixed tissue sections Can do.
  • an antibody reactive to CAPRIN-1 can be stained by various methods. For example, it can be visualized by reacting horseradish peroxidase-conjugated goat anti-mouse antibody or goat anti-rabbit antibody.
  • the target of the pharmaceutical composition for the treatment and / or prevention of cancer of the present invention is not particularly limited as long as it is a cancer (cell) expressing the CAPRIN-1 gene.
  • tumor and cancer refer to malignant neoplasms and are used interchangeably.
  • the target cancer in the present invention is a cancer expressing a gene encoding a polypeptide containing an even numbered amino acid sequence of SEQ ID NOs: 2 to 30 or a partial sequence consisting of 7 or more consecutive amino acids.
  • Yes preferably breast cancer, brain tumor, leukemia, lung cancer, lymphoma, mastocytoma, esophageal cancer and colon cancer.
  • These specific cancers include, for example, breast cancer, complex breast cancer, malignant mixed breast tumor, intraductal papillary carcinoma, lung adenocarcinoma, squamous cell carcinoma, small cell carcinoma, large cell carcinoma, neuroepithelial tissue Tumor glioma, ventricular ependymoma, neuronal tumor, fetal neuroectodermal tumor, schwannoma, neurofibroma, meningioma, chronic lymphocytic leukemia, lymphoma, gastrointestinal type Lymphoma, gastrointestinal lymphoma, small to medium cell lymphoma, cecal cancer, ascending colon cancer, descending colon cancer, transverse colon cancer, sigmoid colon cancer, rectal cancer are included, but are not limited thereto.
  • the target animals are mammals, for example, mammals including primates, pet animals, domestic animals, sport animals and the like, and humans, dogs and cats are particularly preferable.
  • the antibody used in the present invention when used as a pharmaceutical composition, it can be formulated by methods known to those skilled in the art. For example, it can be used parenterally in the form of a sterile solution with water or other pharmaceutically acceptable liquid, or an injection of suspension.
  • a pharmacologically acceptable carrier or medium specifically, sterile water or physiological saline, vegetable oil, emulsifier, suspension, surfactant, stabilizer, flavoring agent, excipient, vehicle, preservative
  • a pharmaceutical preparation by combining with a binder or the like as appropriate and mixing in a unit dosage form generally required for pharmaceutical practice. The amount of active ingredient in these preparations is such that an appropriate dose within the indicated range can be obtained.
  • a sterile composition for injection can be formulated in accordance with normal pharmaceutical practice using a vehicle such as distilled water for injection.
  • Aqueous solutions for injection include, for example, isotonic solutions containing physiological saline, glucose and other adjuvants such as D-sorbitol, D-mannose, D-mannitol and sodium chloride.
  • Suitable solubilizers such as Alcohols, specifically ethanol, polyalcohols such as propylene glycol, polyethylene glycol, nonionic surfactants such as polysorbate 80 (TM), HCO-60 may be used in combination.
  • oily liquid examples include sesame oil and soybean oil, which may be used in combination with benzyl benzoate or benzyl alcohol as a solubilizing agent.
  • oily liquid examples include sesame oil and soybean oil, which may be used in combination with benzyl benzoate or benzyl alcohol as a solubilizing agent.
  • buffer for example, phosphate buffer, sodium acetate buffer, a soothing agent, for example, procaine hydrochloride, stabilizer, for example, benzyl alcohol, phenol, antioxidant.
  • the prepared injection solution is usually filled into a suitable ampoule.
  • Administration is oral or parenteral, preferably parenteral administration. Specific examples include injection, nasal administration, pulmonary administration, and transdermal administration. As an example of the injection form, it can be administered systemically or locally by, for example, intravenous injection, intramuscular injection, intraperitoneal injection, subcutaneous injection, or the like.
  • the administration method can be appropriately selected depending on the age, weight, sex, symptoms, etc. of the patient.
  • the dosage of the pharmaceutical composition containing the antibody or the polynucleotide encoding the antibody can be selected, for example, in the range of 0.0001 mg to 1000 mg per kg body weight. Alternatively, for example, the dose can be selected in the range of 0.001 to 100,000 mg / body per patient, but is not necessarily limited to these values.
  • the dose and administration method vary depending on the weight, age, sex, symptoms, etc. of the patient, but can be appropriately selected by those skilled in the art.
  • the present invention further provides the following polypeptides and DNAs related to the antibodies (a) to (k).
  • a polypeptide comprising the amino acid sequences of SEQ ID NO: 43, SEQ ID NO: 73, SEQ ID NO: 83, SEQ ID NO: 93, SEQ ID NO: 103, SEQ ID NO: 113 and SEQ ID NO: 123, and DNA encoding the polypeptide.
  • DNA comprising the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 48, SEQ ID NO: 78, SEQ ID NO: 88, SEQ ID NO: 98, SEQ ID NO: 108, SEQ ID NO: 118, and SEQ ID NO: 128.
  • V SEQ ID NO: 40, 41 and 42, SEQ ID NO: 70, 71 and 72, SEQ ID NO: 80, 81 and 82, SEQ ID NO: 90, 91 and 92, SEQ ID NO: 100, 101 and 102, SEQ ID NO: 110, 111 and 112
  • a heavy chain CDR polypeptide selected from the group consisting of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 120, 121 and 122, and DNA encoding the polypeptide.
  • SEQ ID NO: 44, 45 and 46, SEQ ID NO: 50, 51 and 52, SEQ ID NO: 55, 56 and 57, SEQ ID NO: 60, 61 and 62, SEQ ID NO: 65, 66 and 67, SEQ ID NO: 74, 75 and 76 Selected from the group consisting of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 84, 85 and 86, SEQ ID NOs: 94, 95 and 96, SEQ ID NOs: 104, 105 and 106, SEQ ID NOs: 114, 115 and 116, SEQ ID NOs: 124, 125 and 126 A light chain CDR polypeptide, and a DNA encoding the polypeptide.
  • polypeptides and DNA can be prepared using gene recombination techniques as described above.
  • RNA was extracted from the testis tissue of a healthy dog by the acid guanidinium-phenol-chloroform method (Acid guanidinium-Phenol-Chloroform method) PolyA RNA was purified using Oligotex-dT30 mRNA purification Kit (Takara Shuzo) according to the protocol attached to the kit.
  • a dog testis cDNA phage library was synthesized using the obtained mRNA (5 ⁇ g).
  • the cDNA phage library was prepared using cDNA Synthesis Kit, ZAP-cDNA Synthesis Kit, ZAP-cDNA GigapackIII Gold Clonig Kit (manufactured by STRATAGENE) according to the protocol attached to the kit.
  • the size of the prepared cDNA phage library was 7.73 ⁇ 10 5 pfu / ml.
  • the membrane was recovered, immersed in TBS (10 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl pH 7.5) containing 0.5% nonfat dry milk, and shaken at 4 ° C. overnight to suppress nonspecific reaction.
  • TBS 10 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl pH 7.5
  • This filter was reacted with serum of a patient dog diluted 500 times at room temperature for 2 to 3 hours.
  • the serum pretreatment method is as follows. Specifically, ⁇ ZAP Express phage into which no foreign gene was inserted was infected with host E. coli (XL1-Blue MRF ′), and then cultured overnight at 37 ° C. on NZY plate medium. Next, a buffer of 0.2 M NaHCO 3 pH 8.3 containing 0.5 M NaCl was added to the plate and allowed to stand at 4 ° C. for 15 hours, and then the supernatant was recovered as an E. coli / phage extract. Next, the recovered E.
  • coli / phage extract was passed through an NHS-column (GE Healthcare Bio-Science) to immobilize the protein derived from E. coli / phage.
  • Serum dog serum was passed through and reacted with this protein-immobilized column, and antibodies adsorbed to E. coli and phage were removed from the serum.
  • the serum fraction passed through the column was diluted 500 times with TBS containing 0.5% nonfat dry milk, and this was used as an immunoscreening material.
  • phagemid host Escherichia coli prepared to have an absorbance OD 600 of 1.0 and 10 ⁇ l of the purified phage solution were mixed and reacted at 37 ° C. for 15 minutes, and 50 ⁇ l was treated with ampicillin (final concentration 50 ⁇ g / ml).
  • SOLR phagemid host Escherichia coli
  • the purified plasmid was analyzed for the full-length insert sequence by the primer walking method using the T3 primer shown in SEQ ID NO: 31 and the T7 primer shown in SEQ ID NO: 32.
  • the gene sequences described in SEQ ID NOs: 5, 7, 9, 11, and 13 were obtained by this sequence analysis.
  • the homology search program BLAST search http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/
  • BLAST search http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/
  • sequence identity of this gene with the gene encoding the human homologous factor was 94% for the nucleotide sequence and 98% for the amino acid sequence in the region translated into protein.
  • the base sequences of human homologous factors are shown in SEQ ID NOs: 1 and 3, and amino acid sequences are shown in SEQ ID NOs: 2 and 4.
  • sequence identity of the obtained canine gene with the gene encoding the bovine homologous factor was 94% for the nucleotide sequence and 97% for the amino acid sequence in the region translated into protein.
  • the base sequence of the bovine homologous factor is shown in SEQ ID NO: 15, and the amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 16.
  • sequence identity between the gene encoding the human homologous factor and the gene encoding the bovine homologous factor was 94% in the base sequence and 93-97% in the amino acid sequence in the region translated into the protein. Further, the sequence identity of the obtained canine gene with the gene encoding the equine homologous factor was 93% nucleotide sequence and 97% amino acid sequence in the region translated into protein.
  • the base sequence of the equine homologous factor is shown in SEQ ID NO: 17, and the amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 18.
  • sequence identity between the gene encoding the human homologous factor and the gene encoding the equine homologous factor was 93% nucleotide sequence and 96% amino acid sequence in the region translated into protein.
  • sequence identity of the obtained canine gene with the gene encoding the mouse homologous factor was 87 to 89% of the base sequence and 95 to 97% of the amino acid sequence in the region translated into the protein.
  • the base sequence of the mouse homologous factor is shown in SEQ ID NO: 19, 21, 23, 25, 27, and the amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 20, 22, 24, 26, 28.
  • sequence identity between the gene encoding the human homologous factor and the gene encoding the mouse homologous factor was 89 to 91% of the base sequence and 95 to 96% of the amino acid sequence in the region translated into the protein.
  • sequence identity with the gene which codes the chicken homologous factor of the acquired canine gene was the base sequence 82% and the amino acid sequence 87% in the area
  • the nucleotide sequence of the chicken homologous factor is shown in SEQ ID NO: 29, and the amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 30.
  • the sequence identity between the gene encoding the human homologous factor and the gene encoding the chicken homologous factor was 81 to 82% of the base sequence and 86% of the amino acid sequence in the region translated into the protein.
  • the above gene-specific primers are 206 to 632 in the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 5 (canine CAPRIN-1 gene) and 698 to 1124 in the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 (human CAPRIN-1 gene). It was intended to amplify the base region.
  • GAPDH specific primers (described in SEQ ID NOs: 35 and 36) were also used. As a result, as shown in FIG. 1, strong expression was observed in testis in healthy dog tissues, while expression was observed in canine breast cancer and adenocarcinoma tissues.
  • the expression of the human homologous factor of the obtained gene was also confirmed, it was found only in the testis that the expression was confirmed in normal tissues as in the canine CAPRIN-1 gene, but in cancer cells, breast cancer, brain tumor, leukemia Expression was detected in many types of cancer cell lines such as lung cancer and esophageal cancer cell lines, and in particular, expression was confirmed in many breast cancer cell lines. From this result, it was confirmed that CAPRIN-1 was not expressed in normal tissues other than testis, but was expressed in many cancer cells, particularly in breast cancer cell lines.
  • reference number 1 on the vertical axis indicates the expression pattern of the gene identified above, and reference number 2 indicates the expression pattern of the GAPDH gene as a comparative control.
  • a CAPRIN-1-derived peptide (Arg-Asn-Leu-Glu-Lys-Lys-Lys-Gly-Lys-Leu) -Asp-Asp-Tyr-Gln (SEQ ID NO: 37)) was synthesized. 1 mg of this peptide was mixed with an equal volume of incomplete Freund's adjuvant (IFA) solution as an antigen, and this was administered subcutaneously to rabbits 4 times every 2 weeks. Thereafter, blood was collected to obtain an antiserum containing a polyclonal antibody.
  • IFA incomplete Freund's adjuvant
  • this antiserum was purified using a protein G carrier (manufactured by GE Healthcare Bioscience) to obtain a polyclonal antibody against the CAPRIN-1-derived peptide. Further, a serum obtained by purifying rabbit serum not administered with an antigen in the same manner as described above using a protein G carrier was used as a control antibody.
  • a protein G carrier manufactured by GE Healthcare Bioscience
  • the same operation as described above was performed using the control antibody prepared in the above (5) instead of the polyclonal antibody against the CAPRIN-1-derived peptide as a control.
  • the cells to which the anti-human CAPRIN-1 antibody was added all had a fluorescence intensity of 30% or higher compared to the control.
  • MDA-MB-157 is 184%
  • T47D is 221%
  • MRK-nu-1 is 115%
  • MDA-MB-231V is 82%
  • BT20 is 32%
  • SK-BR-3 is 279%.
  • MDA-MB-231T showed 80% enhancement of fluorescence intensity. This confirmed that the CAPRIN-1 protein was expressed on the cell membrane surface of the human cancer cell line.
  • the enhancement rate of the fluorescence intensity is represented by the increase rate of the average fluorescence intensity (MFI value) in each cell, and was calculated by the following calculation formula.
  • Average fluorescence intensity increase rate ((MFI value of cells reacted with anti-human CAPRIN-1 antibody) ⁇ (control MFI value)) ⁇ (control MFI value) ⁇ 100 (7) Immunohistochemical staining (7) -1 Expression of CAPRIN-1 in mice and normal dog tissues Mice (Balb / c, females) and dogs (beagle dogs, females) under ether anesthesia and ketamine / isoflurane anesthesia After exsanguination and laparotomy, each organ (stomach, liver, eyeball, thymus, muscle, bone marrow, uterus, small intestine, esophagus, heart, kidney, salivary gland, large intestine, mammary gland, brain, lung, skin, adrenal gland, ovary, pancreas, spleen , Bladder) were transferred to 10 cm dishes each containing PBS.
  • Each organ was cut in PBS and fixed at reflux overnight with 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) containing 4% paraformaldehyde (PFA). The reflux solution is discarded, and the tissue surface of each organ is rinsed with PBS.
  • a PBS solution containing 10% sucrose is placed in a 50 ml centrifuge tube, and each tissue is placed therein and shaken at 4 ° C. for 2 hours using a rotor. That ’s it.
  • the solution was replaced with a PBS solution containing 20% sucrose, allowed to stand at 4 ° C. until the tissue subsided, then replaced with a PBS solution containing 30% sucrose, and allowed to stand at 4 ° C. until the tissue subsided.
  • the tissue was removed and the necessary part was cut out with a scalpel.
  • an OCT compound manufactured by Tissue Tek
  • Cryomold is placed on dry ice and rapidly frozen, then sliced into 10-20 ⁇ m using a cryostat (LEICA) and air-dried with a hair dryer for 30 minutes together with the slide glass, and the sliced tissue is placed.
  • a slide glass was prepared.
  • an operation of replacing PBS-T every 5 minutes in a staining bottle filled with PBS-T (physiological saline containing 0.05% Tween 20) was performed three times.
  • the mouse tissue was MOM mouse Ig blocking reagent (VECTASTAIN) as the blocking solution, and the dog tissue was PBS containing 10% FBS.
  • VECTASTAIN MOM mouse Ig blocking reagent
  • Each -T solution was placed and allowed to stand at room temperature for 1 hour on a moist chamber.
  • a monoclonal antibody (monoclonal antibody # 6) against CAPRIN-1 having a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 73 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 77 that reacts with the surface of cancer cells prepared in Example 4 is used.
  • the solution prepared to 10 ⁇ g / ml with a blocking solution was placed and allowed to stand overnight at 4 ° C.
  • a MOM biotin-labeled anti-IgG antibody manufactured by VECTASTAIN
  • a blocking solution was placed and allowed to stand at room temperature for 1 hour in a moist chamber.
  • avidin-biotin ABC reagent manufactured by VECTASTAIN was placed and allowed to stand at room temperature for 5 minutes in a moist chamber.
  • a DAB coloring solution (DAB 10 mg + 30% H 2 O 2 10 ⁇ l / 0.05 M Tris-HCl (pH 7.6) 50 ml) was placed on it and placed in a moist chamber at room temperature for 30 minutes. Let stand for a minute. After rinsing with distilled water, a hematoxylin reagent (manufactured by DAKO) was placed and allowed to stand at room temperature for 1 minute, and then rinsed with distilled water. Each of the 70%, 80%, 90%, 95%, and 100% ethanol solutions was sequentially placed for 1 minute, and then allowed to stand overnight in xylene.
  • DAB coloring solution (DAB 10 mg + 30% H 2 O 2 10 ⁇ l / 0.05 M Tris-HCl (pH 7.6) 50 ml) was placed on it and placed in a moist chamber at room temperature for 30 minutes. Let stand for a minute. After rinsing with distilled water, a hematoxylin reagent (manufacture
  • CAPRIN-1 was slightly expressed in cells in the salivary gland, kidney, colon, and stomach tissues, but was not observed on the cell surface, and in tissues derived from other organs. No expression was observed. This result was the same when using a monoclonal antibody (monoclonal antibody # 9) against CAPRIN-1 having the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 103 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 107.
  • Example 2 Anti-tumor effect of an antibody against CAPRIN-1 on cancer cells (ADCC activity) Next, it was examined whether antibodies against CAPRIN-1 can damage tumor cells expressing CAPRIN-1. Evaluation was carried out using a polyclonal antibody against the human CAPRIN-1-derived peptide prepared in Example 1. Caprin-1 2 kinds expression have been identified in human breast cancer cell lines, were collected T47D and MDA-MB-157 to centrifuge tubes 106 50ml ml respectively, incubated for 2 hours at 37 ° C. was added chromium 51 100 ⁇ Ci did. Thereafter, the plate was washed 3 times with RPMI 1640 medium containing 10% fetal bovine serum, and 10 3 pieces were added per well of a 96-well V-bottom plate.
  • the cytotoxic activity was determined by mixing 10 3 leukemia cell lines incorporating the antibody against CAPRIN-1 used in the present invention, mouse lymphocytes and chromium 51 and culturing for 4 hours, It is the result of measuring the amount of chromium 51 released into the culture medium after culturing and showing the cytotoxic activity against each leukemia cell line calculated by the following calculation formula * .
  • Cytotoxic activity (%) chromium 51 release from T47D and MDA-MB-157 upon addition of antibody against CAPRIN-1 and mouse lymphocytes ⁇ chromium 51 release from target cells with 1N hydrochloric acid added Amount x100.
  • Example 3 Production of Novel Human Cancer Antigen Protein
  • a recombinant protein of human homologous gene was produced by the following method. For PCR, 1 ⁇ l of a cDNA whose expression by RT-PCR method was confirmed from various tissue and cell cDNAs prepared in Example 1 and two kinds of primers containing SacI and XhoI restriction enzyme cleavage sequences (described in SEQ ID NOs: 38 and 39).
  • the purified DNA fragment was ligated to a cloning vector PCR-Blunt (manufactured by Invitrogen). After transforming this into E. coli, the plasmid was recovered, and it was confirmed by sequencing that the amplified gene fragment matched the target sequence.
  • a plasmid corresponding to the target sequence was treated with SacI and XhoI restriction enzymes, purified with QIAquick Gel Extraction Kit, and then inserted into an expression vector pET30a (manufactured by Novagen) for Escherichia coli treated with SacI and XhoI restriction enzymes. . By using this vector, a His-tagged recombinant protein can be produced. This plasmid was transformed into E.
  • the cells were suspended in phosphate buffered physiological saline and sonicated on ice.
  • the E. coli sonication solution was centrifuged at 6000 rpm for 20 minutes, and the resulting supernatant was used as a soluble fraction and the precipitate was used as an insoluble fraction.
  • the soluble fraction was added to a nickel chelate column (carrier: Chelating Sepharose (trademark) Fast Flow (GE HealthCare), column volume 5 ml, equilibration buffer 50 mM hydrochloric acid buffer (pH 8.0)) prepared according to a conventional method.
  • the unadsorbed fraction was washed with 10 mM column volume of 50 mM hydrochloric acid buffer (pH 8.0) and 20 mM imidazole-containing 20 mM phosphate buffer (pH 8.0), and immediately, 100 mM imidazole-containing 20 mM.
  • Six beds were eluted with phosphate buffer (pH 8.0).
  • the unadsorbed fraction was washed with 20 mM phosphate buffer solution (pH 7.0) 10 times the column volume and 20 mM phosphate buffer solution (pH 7.0) containing 200 mM sodium chloride, and immediately, 400 mM chloride was added. Five bed elution was performed with sodium-containing 20 mM phosphate buffer (pH 7.0) to obtain a purified fraction of each protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2.
  • Example 4 Production of Monoclonal Antibody to CAPRIN-1 100 ⁇ g of the antigen protein (human CAPRIN-1) shown in SEQ ID NO: 2 prepared in Example 3 was mixed with an equal amount of MPL + TDM adjuvant (manufactured by Sigma), Antigen solution per mouse was used. After the antigen solution was administered intraperitoneally to 6-week-old Balb / cc mice (Japan SLC), immunization was completed by further 3 and 24 administrations per week. Each spleen removed 3 days after the last immunization was crushed between two sterilized glass slides, washed with PBS (-) (manufactured by Nissui), centrifuged at 1500 rpm for 10 minutes, and the supernatant was obtained.
  • PBS -
  • the removal operation was repeated 3 times to obtain spleen cells.
  • the obtained spleen cells and mouse myeloma cells SP2 / 0 (purchased from ATCC) were mixed at a ratio of 10: 1, and 200 ⁇ l of RPMI 1640 medium containing 10% FBS heated to 37 ° C. and PEG 1500 (Boehringer) PEG solution prepared by mixing 800 ⁇ l was added and allowed to stand for 5 minutes for cell fusion.
  • the cells were suspended in 150 ml of RPMI 1640 medium (HAT selective medium) containing 15% FBS to which 2% equivalent of Gibco's HAT solution was added, and a 96-well plate (Nunk) 100 ⁇ l per well of (made) was seeded on 15 plates.
  • RPMI 1640 medium HAT selective medium
  • Nunk 96-well plate
  • Hybridomas were selected using as an index the binding affinity of the antibody produced by the prepared hybridomas to the CAPRIN-1 protein.
  • 100 ⁇ l of 1 ⁇ g / ml of the CAPRIN-1 protein solution prepared in Example 3 was added per well of a 96-well plate, and allowed to stand at 4 ° C. for 18 hours. Each well was washed 3 times with PBS-T, and then added with 400 ⁇ l of 0.5% Bovine Serum Albumin (BSA) solution (manufactured by Sigma) per well and allowed to stand at room temperature for 3 hours.
  • BSA Bovine Serum Albumin
  • the selected hybridomas were added to the plate at a ratio of 0.5 per well of the 96-well plate and cultured. One week later, hybridomas forming a single colony in the well were observed. The cells in these wells were further cultured, and hybridomas were selected using the binding affinity of the antibody produced by the cloned hybridomas to the CAPRIN-1 protein as an index. 100 ⁇ l of 1 ⁇ g / ml of the CAPRIN-1 protein solution prepared in Example 3 was added per well of a 96-well plate, and allowed to stand at 4 ° C. for 18 hours. After washing each well 3 times with PBS-T, 400 ⁇ l of 0.5% BSA solution was added per well and allowed to stand at room temperature for 3 hours.
  • Example 5 Characterization of selected antibodies (1) Cloning of variable region gene of anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody mRNA was extracted from each hybridoma strain producing each of the 11 monoclonal antibodies selected in Example 4, and mouse The RT-PCR method using primers specific to the FR1-derived sequence and the mouse FR4-derived sequence was used to determine the heavy chain variable (VH) region and light chain variable (VL) region genes of all anti-CAPRIN-1 monoclonal antibodies. I got it. The genes were cloned into pCR2.1 vector (Invitrogen) for sequencing.
  • RT-PCR MRNA was prepared from 10 6 hybridoma strains using mRNA micro purification kit (manufactured by GE Healthcare), and the resulting mRNA was reverse transcribed using SuperScript II 1st strand synthesis kit (manufactured by Invitrogen). cDNA was synthesized. These operations were performed according to the protocol attached to each kit.
  • antibody genes were amplified by PCR.
  • a primer specific to the mouse heavy chain FR1 sequence SEQ ID NO: 130
  • a primer specific to the mouse heavy chain FR4 sequence SEQ ID NO: 131
  • a primer specific for the mouse light chain FR1 sequence SEQ ID NO: 132
  • a primer specific for the mouse light chain FR4 SEQ ID NO: 133
  • a cDNA sample was added to 5 ⁇ l of 10 ⁇ EX Taq Buffer, 4 ⁇ l of dNTP Mixture (2.5 mM), 2 ⁇ l of each primer (1.0 ⁇ M) and 0.25 ⁇ l of Ex Taq (5 U / ⁇ l), and the total amount was made 50 ⁇ l with sterilized water. After treatment at 94 ° C. for 2 minutes, denaturation at 94 ° C. for 1 minute, annealing at 58 ° C. for 30 seconds, and extension reaction at 72 ° C. for 1 minute were performed under 30 cycles.
  • the amino acid sequence of the heavy chain variable region of the obtained monoclonal antibody is shown in SEQ ID NO: 43, SEQ ID NO: 73, SEQ ID NO: 83, SEQ ID NO: 93, SEQ ID NO: 103, SEQ ID NO: 113, and SEQ ID NO: 123 as the amino acid of the light chain variable region.
  • the sequences are shown in SEQ ID NO: 47, SEQ ID NO: 53, SEQ ID NO: 58, SEQ ID NO: 63, SEQ ID NO: 68, SEQ ID NO: 77, SEQ ID NO: 87, SEQ ID NO: 97, SEQ ID NO: 107, SEQ ID NO: 117, and SEQ ID NO: 127.
  • monoclonal antibody # 1 is composed of a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 43 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 47
  • # 2 is a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 43 and light chain variable of SEQ ID NO: 53.
  • # 3 consists of a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 43 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 58
  • # 4 consists of a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 43 and a light chain variable of SEQ ID NO: 63
  • # 5 consists of a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 43 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 68
  • # 6 consists of a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 73 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 77
  • # 7 consists of a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 83 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 87
  • # 8 consists of a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 93 and a light chain variable of SEQ ID NO: 97 # 9 is the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 103 and SEQ ID NO: 103 Consisting of a light chain variable region of SEQ ID NO: 113 and a
  • IN-1 protein was examined whether the expression. 10 6 cells of each cell line were centrifuged in a 1.5 ml microcentrifuge tube. To this was added a hybridoma supernatant (100 ⁇ l) containing monoclonal antibodies against CAPRIN-1 of # 1 to # 11, which reacts with the cancer cell surface prepared in Example 4, and allowed to stand on ice for 1 hour. After washing with PBS, the suspension was suspended in FITC-labeled goat anti-mouse IgG antibody (manufactured by Invitrogen) diluted 500-fold with PBS containing 0.1% FBS, and allowed to stand on ice for 1 hour. After washing with PBS, the fluorescence intensity was measured with a FACS caliber from Becton Dickinson.
  • the same operation as described above was performed using the control antibody prepared in (5) above instead of the hybridoma supernatant containing monoclonal antibodies against CAPRIN-1 of # 1 to # 11, and used as a control.
  • the cells to which the monoclonal antibodies # 1 to # 11 were added all had a fluorescence intensity of 30% or more compared to the control.
  • MDA-MB-157 was 211%
  • T47D was 145%
  • MRK-nu-1 was 123%
  • MDA-MB-231V was 251%
  • BT20 168% and MDA-MB-231T showed 94% enhancement of fluorescence intensity.
  • the enhancement rate of the fluorescence intensity is represented by the increase rate of the average fluorescence intensity (MFI value) in each cell, and was calculated by the following calculation formula.
  • Average fluorescence intensity increase rate ((MFI value of cells reacted with anti-human CAPRIN-1 antibody) ⁇ (control MFI value)) ⁇ (control MFI value) ⁇ 100 (3)
  • Antitumor effect of antibodies against CAPRIN-1 on cancer cells (ADCC activity)
  • the cytotoxic activity (ADCC activity) against cancer cells of the monoclonal antibodies against CAPRIN-1 of # 1 to # 11 selected above was evaluated.
  • Each hybridoma producing the monoclonal antibodies # 1 to # 11 was cultured using a hybridoma SFM (manufactured by Invitrogen) medium, and the resulting supernatant was purified using Hitrap Protein A Sepharose FF (manufactured by GE Healthcare).
  • the amount of chromium 51 in the culture supernatant released from the damaged tumor cells was measured, and the ADCC activity against the cancer cells by the anti-CAPRIN-1 antibody was calculated.
  • all of the monoclonal antibodies # 1 to # 11 showed ADCC activity of 20% or more against MDA-MB-157.
  • the cytotoxic activity of # 1 was 22.1%
  • # 2 was 29.1%
  • # 6 was 30.2%
  • # 9 was 32.4% (see FIG. 4). ).
  • CDC activity Antitumor effect of antibodies against CAPRIN-1 on cancer cells
  • the cytotoxic activity (CDC activity) against the cancer cells of the monoclonal antibodies against # 1 to # 11 CAPRIN-1 selected above was evaluated.
  • Blood collected from a rabbit was placed in an Eppendorf tube, allowed to stand at room temperature for 60 minutes, and then centrifuged at 3000 rpm for 5 minutes to prepare serum for measuring CDC activity.
  • 10 5 human breast cancer cells, MDA-MB-231V were collected in a 50 ml centrifuge tube, added with 100 ⁇ Ci of chromium 51, incubated at 37 ° C. for 2 hours, and then washed 3 times with RPMI medium containing 10% FBS. .
  • the suspension was suspended in RPMI medium containing 50% of the rabbit serum prepared above, and 10 3 pieces were added per well of a 96-well V-bottom plate.
  • 1 ⁇ g of each of the monoclonal antibodies # 1 to # 11 obtained in the above (3) was added thereto and cultured at 37 ° C. under 5% CO 2 for 4 hours.
  • the amount of chromium 51 in the culture supernatant released from the damaged tumor cells was measured, and the CDC activity against MDA-MB-231V by the anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody in the hybridoma supernatant was calculated.
  • all of the monoclonal antibodies # 1 to # 11 showed CDC activity of 30% or more.
  • Example 6 Anti-Tumor Effect of Anti-CAPRIN-1 Monoclonal Antibody in Mice In Vivo Next, the anti-tumor effect of the obtained monoclonal antibodies against # 1 to # 11 CAPRIN-1 in the tumor-bearing mouse in vivo was evaluated.
  • the antibody used was obtained by column purification of the culture supernatant of each hybridoma in the same manner as described above.
  • Antitumor effects of monoclonal antibodies against # 1 to # 11 CAPRIN-1 were examined using tumor-bearing mice transplanted with cancer cell lines derived from mice expressing CAPRIN-1. Subcutaneously into the back of 70 Balb / c mice (manufactured by Nippon SLC Co., Ltd.), were implanted with 10 6 CT26 cells per mouse (purchased from ATCC), tumors were allowed to grow to a size of about 7mm diameter . Among them, 60 cancer-bearing mice react with the monoclonal antibodies against CAPRIN-1 of # 1 to # 11 and the CAPRIN-1 protein itself prepared in Example 4, but on the cell surface of cancer cells.
  • One non-reacting monoclonal antibody was intraperitoneally administered to 300 mice (300 ⁇ l) per mouse, 5 mice per antibody. Thereafter, the same amount of each antibody was administered to the abdominal cavity of each cancer-bearing mouse 3 times in total for 2 days, and the tumor size was measured every day to observe the antitumor effect. On the other hand, the remaining 10 tumor-bearing mice were administered PBS ( ⁇ ) instead of the antibody, and this was used as a control group. As a result of the observation of the antitumor effect, the study group administered with the monoclonal antibody against CAPRIN-1 of # 1 to # 11 had a tumor volume of 50% on the 4th day when the tumor volume at the start of antibody administration was 100%.
  • the tumor regressed to about 10% on the 6th day, about 10% on the 6th day, to several% on the 8th day, and the tumor regressed almost completely by the 11th to 14th days (see FIG. 5).
  • tumors increased to about 260%, 350%, 550%, and 800% on the 4th day, 6th day, 8th day, and 11th day, respectively (see FIG. 5).
  • the antitumor effect was not obtained, and the tumor increased as in the control group.
  • the obtained monoclonal antibodies against CAPRIN-1 of # 1 to # 11 exhibited a strong antitumor effect in vivo against cancer cells expressing CAPRIN-1.
  • the size of the tumor calculated the volume using the calculation formula of major axis x minor axis x minor axis x 0.5.
  • Example 7 Identification of a peptide in CAPRIN-1 protein to which an antibody against CAPRIN-1 that reacts with the cell surface of cancer cells binds CAPRIN-1 of # 1 to # 11 that reacts with the cell surface of cancer cells obtained above Using monoclonal antibodies against, the partial sequences in the CAPRIN-1 proteins that they recognize were identified.
  • DTT (manufactured by Fluka) is added to 100 ⁇ l of a recombinant CAPRIN-1 protein solution dissolved in PBS to a concentration of 1 ⁇ g / ⁇ l so as to have a final concentration of 10 mM. Reduction of the disulfide bond in one protein was performed, and then iodoacetamide (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) having a final concentration of 20 mM was added, and an alkylation reaction of a thiol group was performed for 30 minutes at 37 ° C. under light shielding conditions.
  • trypsin manufactured by Promega
  • 1% BSA manufactured by Sigma
  • Protein A-glass beads blocked with PBS containing, washed with PBS, 1 mM calcium carbonate, NP-40 buffer (20 mM phosphate buffer (pH 7.4), 5 mM EDTA, 150 mM NaCl, 1% NP-40) and reacted for 30 minutes each.
  • the antigen-antibody complex was eluted using 100 ⁇ l of 0.1% formic acid, and Q-TOF Premier (manufactured by Waters-MicroMass) was used as the eluate. LC-MS analysis was performed using this. The analysis followed the protocol attached to the instrument.
  • polypeptide of SEQ ID NO: 136 was identified as a partial sequence of CAPRIN-1 recognized by any of the monoclonal antibodies against CAPRIN-1 of # 1 to # 11. Furthermore, the peptide of SEQ ID NO: 137 was identified as a partial sequence in the polypeptide of SEQ ID NO: 136 recognized by the monoclonal antibodies # 2 to # 5, # 6 to # 8 and # 10, and this partial sequence peptide It was found that monoclonal antibodies # 2 to # 5 recognize the peptide of SEQ ID NO: 138.
  • the antibody of the present invention is useful for the treatment and / or prevention of cancer.

Abstract

　この発明は、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質、又は連続する７以上のアミノ酸を含むその断片、と免疫学的反応性を有する抗体又はそのフラグメントを有効成分として含む、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物に関する。

Description

癌の治療及び予防用医薬組成物
　本発明は、ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体又はそのフラグメントの、癌の治療及び／又は予防剤等としての新規な医薬用途に関する。
　癌は全死亡原因の第一位を占める疾患であり、現在行われている治療は手術療法を主体に放射線療法と化学療法を組み合わせたものである。近年の新しい手術法の開発や新たな抗癌剤の発見にも関わらず、一部の癌を除いて、癌の治療成績はあまり向上していないのが現状である。近年、分子生物学や癌免疫学の進歩によって、癌に特異的に反応する抗体類、細胞障害性Ｔ細胞により認識される癌抗原類、癌抗原をコードする遺伝子類などが同定されており、癌抗原類をターゲットにした特異的癌治療法への期待が高まっている（非特許文献１）。
　癌治療法においては、副作用を軽減するため、その抗原として認識されるペプチド、ポリペプチド又はタンパク質は、正常細胞にはほとんど存在せず、癌細胞に特異的に存在していることが望ましい。１９９１年、ベルギー国Ｌｕｄｗｉｇ研究所のＢｏｏｎらは自己癌細胞株と癌反応性Ｔ細胞を用いたｃＤＮＡ発現クローニング法によりＣＤ８陽性Ｔ細胞が認識するヒトメラノーマ抗原ＭＡＧＥ１を単離した（非特許文献２）。その後、癌患者の生体内で自己の癌に反応して産生される抗体が認識する腫瘍抗原を遺伝子の発現クローニングの手法を取り入れて同定する、ＳＥＲＥＸ（ｓｅｒｏｌｏｇｉｃａｌ　ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｎｔｉｇｅｎｓ　ｂｙ　ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｃｌｏｎｉｎｇ）法が報告され（非特許文献３及び特許文献１）、この方法により、正常細胞にはほとんど発現がなく、癌に特異的に発現するいくつかの癌抗原が単離されている（非特許文献４～９）。さらに、その一部をターゲットにして、癌抗原に特異的に反応する免疫細胞を用いた細胞療法や、癌抗原を含むワクチンなどの癌特異的免疫療法の臨床試験が実施されている。
　一方、近年、癌細胞上の抗原タンパク質を標的にした、癌を治療するための各種抗体医薬が世の中に台頭してきた。癌特異的治療薬として一定の薬効が得られ注目されているが、標的となる抗原タンパク質の大部分は正常細胞にも発現するものであり、抗体投与の結果、癌細胞だけでなく、抗原が発現する正常細胞も障害されてしまい、その結果生じる副作用が問題になっている。従って、癌細胞表面に特異的に発現する癌抗原を同定し、それを標的とした抗体を医薬品として使用することができれば、より副作用の少ない抗体医薬による治療が可能になると期待される。
　Ｃｙｔｏｐｌａｓｍｉｃ－ａｎｄ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ－ａｓｓｏｃｉａｔｅｅｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ　１（ＣＡＰＲＩＮ－１）は、休止期の正常細胞が活性化や細胞分裂を起こす際に発現し、また細胞内でＲＮＡと細胞内ストレス顆粒を形成してｍＲＮＡの輸送、翻訳の制御に関与することなどが知られている細胞内タンパク質である。一方で、ＣＡＰＲＩＮ－１には色々な別名が存在しており、その一例としてＧＰＩ－ａｎｃｈｏｒｅｄ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ｐｒｏｔｅｉｎ　１やＭｅｍｂｒａｎｅ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ　ｓｕｒｆａｃｅ　ｍａｒｋｅｒ　１　ｐｒｏｔｅｉｎ　（Ｍ１１Ｓ１）などがあり、あたかも本タンパク質が細胞膜タンパク質であることが知られていたかのような名称がある。これらの別名は、元々、ＣＡＰＲＩＮ－１の遺伝子配列が、ＧＰＩ結合領域を有し、大腸癌細胞に発現する膜タンパク質であるとする報告（非特許文献１０）に由来するが、後にこの報告でのＣＡＰＲＩＮ－１の遺伝子配列は誤りであり、現在ＧｅｎＢａｎｋ等に登録されているＣＡＰＲＩＮ－１の遺伝子配列が１塩基欠損することによりフレームシフトが起きることでＣ末端から８０アミノ酸が欠損し、その結果生じるａｒｔｉｆａｃｔ（７４アミノ酸）が前報告でのＧＰＩ結合部分であり、さらに５’側にも遺伝子配列のエラーがあり、Ｎ末端から５３アミノ酸が欠損していることが報告されている（非特許文献１１）。また、現在ＧｅｎＢａｎｋ等に登録されているＣＡＰＲＩＮ－１の遺伝子配列がコードするタンパク質は細胞膜タンパク質ではないことが報告されている（非特許文献１１）。
　なお、ＣＡＰＲＩＮ－１が細胞膜タンパク質であるとする非特許文献１０の報告に基づき、特許文献２及び３には、Ｍ１１Ｓ１の名称で、ＣＡＰＲＩＮ－１が細胞膜タンパク質の１つとして抗体医薬の標的として癌治療に使用されうることが記載されている（実施例には本タンパク質に対する抗体を用いた治療に関する記載は一切ない）。しかし、非特許文献１１の報告の通り、特許文献２の出願当時から現在まで、ＣＡＰＲＩＮ－１は細胞表面には発現していないものであることが通説になっており、ＣＡＰＲＩＮ－１が細胞膜タンパク質であるという誤った情報のみに基づく特許文献２及び３の内容は、当業者の技術常識として理解されるべきものでないことは明らかである。
米国特許第５６９８３９６号 ＵＳ２００８／００７５７２２ ＷＯ２００５／１００９９８
秋吉毅，「癌と化学療法」、１９９７年、第２４巻、ｐ５５１－５１９（癌と化学療法社、日本） Ｂｒｕｇｇｅｎ　Ｐ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２５４：１６４３－１６４７（１９９１） Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ，　９２：１１８１０－１１８１３（１９９５） Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，７２：９６５－９７１（１９９７） Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．，　５８：１０３４－１０４１（１９９８） Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，２９：６５２－６５８（１９９８） Ｉｎｔ．Ｊ．Ｏｎｃｏｌ．，１４：７０３－７０８（１９９９） Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．，　５６：４７６６－４７７２（１９９６） Ｈｕｍ．　Ｍｏｌ．　Ｇｅｎｅｔ６：３３－３９，　１９９７ Ｊ．　Ｂｉｏｌ．　Ｃｈｅｍ．，　２７０：２０７１７－２０７２３，　１９９５ Ｊ．　Ｉｍｍｕｎｏｌ．，　１７２：２３８９－２４００，　２００４
　本発明の目的は、癌細胞の表面に特異的に発現する癌抗原タンパク質を同定し、それを標的とした抗体の、癌の治療及び／又は予防剤としての用途を提供することである。
　本発明者らは、鋭意研究の結果、イヌの精巣組織由来ｃＤＮＡライブラリーと乳癌患犬の血清を用いたＳＥＲＥＸ法により、担癌生体由来の血清中に存在する抗体と結合するタンパク質をコードするｃＤＮＡを取得し、取得した遺伝子及びそのヒト、ウシ、ウマ、マウス、ニワトリ相同性遺伝子を基にして、配列番号２～３０のうち偶数の配列番号で示されるアミノ酸配列を有するＣＡＰＲＩＮ－１及びそれらＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体を作製した。そしてＣＡＰＲＩＮ－１が乳癌、脳腫瘍、白血病、リンパ腫、肺癌、食道癌、大腸癌、胃癌及び腎臓癌細胞の特異的に発現していること、そしてＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の一部がそれら癌細胞の細胞表面に特異的に発現していることを見出した。そして、それらＣＡＰＲＩＮ－１の各癌細胞の細胞表面に発現する部分に対する抗体が、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する癌細胞を障害することを見出し、本発明を完成させるに至った。
　したがって、本発明は、以下の特徴を有する。
　本発明は、配列番号２～３０のうち偶数の配列番号で表されるアミノ酸配列、又は該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列、を有する、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質、又は連続する７以上のアミノ酸を含むその断片、と免疫学的反応性を有する抗体又はそのフラグメントを有効成分として含むことを特徴とする、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物を提供する。
　その実施形態において、上記癌は、乳癌、脳腫瘍、白血病、リンパ腫、肺癌、食道癌、大腸癌、胃癌もしくは腎臓癌である。
　別の実施形態において、上記抗体は、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体である。
　別の実施形態において、上記抗体は、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体、又は二重特異抗体である。
　別の実施形態において、上記抗体は、配列番号３７又は１３６で表されるアミノ酸配列、又は該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列、を有するポリペプチド又その断片と免疫学的反応性を有する抗体である。
　別の実施形態において、上記抗体は、以下の（ａ）～（ｋ）のいずれかの抗体であって、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体、又は該抗体を有効成分として含むことを特徴とする、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物である
（ａ）配列番号４０、４１および４２を含む重鎖可変領域と配列番号４４、４５および４６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
（ｂ）配列番号４０、４１および４２を含む重鎖可変領域と配列番号５０、５１および５２を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
（ｃ）配列番号４０、４１および４２を含む重鎖可変領域と配列番号５５、５６および５７を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
（ｄ）配列番号４０、４１および４２を含む重鎖可変領域と配列番号６０、６１および６２を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
（ｅ）配列番号４０、４１および４２を含む重鎖可変領域と配列番号６５、６６および６７を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
（ｆ）配列番号７０，７１および７２を含む重鎖可変領域と配列番号７４，７５および７６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
（ｇ）配列番号８０，８１および８２を含む重鎖可変領域と配列番号８４，８５および８６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
（ｈ）配列番号９０，９１および９２を含む重鎖可変領域と配列番号９４，９５および９６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
（ｉ）配列番号１００，１０１および１０２を含む重鎖可変領域と配列番号１０４，１０５および１０６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
（ｊ）配列番号１１０，１１１および１１２を含む重鎖可変領域と配列番号１１４，１１５および１１６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
（ｋ）配列番号１２０，１２１および１２２を含む重鎖可変領域と配列番号１２４１２５および１２６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
　本発明で用いられるＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体は、癌細胞を障害する。従って、ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体は癌の治療や予防に有用である。
ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質をコードする遺伝子の、正常組織及び腫瘍細胞株での発現パターンを示す図である。参照番号１；ＣＡＰＲＩＮ－１タンパクをコードする遺伝子の発現パターン、参照番号２；ＧＡＰＤＨ遺伝子の発現パターンを示す。 ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体（抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体）による、ＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子を発現する乳癌細胞株（Ｔ４７Ｄ）に対する細胞障害活性を示す図である。参照番号３；抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を添加したときの活性、参照番号４；コントロール抗体を添加したときの活性、参照番号５；抗体なしの場合の活性を示す。 ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体（抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体）による、ＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子を発現する乳癌細胞株（ＭＤＡ－ＭＢ－１５７）に対する細胞障害活性を示す図である。参照番号６；抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を添加したときの活性、参照番号７；コントロール抗体を添加したときの活性、参照番号８；抗体なしの場合の活性を示す。 癌細胞の細胞表面に反応するＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体（＃１～＃１１）による、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－１５７に対する細胞障害性を示す図である。参照番号９；＃１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号１０；＃２のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号１１；＃３のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号１２；＃４のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号１３；＃５のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号１４；＃６のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号１５；＃７のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号１６；＃８のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号１７；＃９のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号１８；＃１０のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号１９；＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体を添加したときの活性、参照番号２０；ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク自体には反応するが、癌細胞の細胞表面に反応しないモノクローナルを添加したときの活性、参照番号２１；抗体の代わりにＰＢＳを添加したときの活性を示す。 癌細胞の細胞表面に反応するＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体（＃１～＃１１）の、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現するマウス癌細胞株ＣＴ２６が移植されたＢａｌｂ／ｃマウスに対する抗腫瘍効果を示す図（５ａ～５ｃ）である。参照番号２２；＃１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号２３；＃２のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号２４；＃３のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号２５；＃４のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号２６；＃５のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号２７；＃６のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号２８；＃７のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号２９；＃８のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号３０；＃９のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号３１；＃１０のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号３２；＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体ＣＡＰＲＩＮ－１を投与されたマウスの腫瘍の大きさを、参照番号３３；ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク自体には反応するが、癌細胞の細胞表面に反応しないモノクローナルを投与されたマウスの腫瘍の大きさを、参照番号３４；抗体の代わりにＰＢＳを投与されたマウスの腫瘍の大きさを示す。 癌細胞の細胞表面に反応するＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体（＃１～＃１１）の、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現するマウス癌細胞株Ｎ１Ｅが移植されたＢａｌｂ／ｃマウスに対する抗腫瘍効果を示す図（６ａ～６ｃ）である。参照番号３５；＃１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号３６；＃２のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号３７；＃３のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号３８；＃４のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号３９；＃５のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号４０；＃６のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号４１；＃７のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号４２；＃８のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号４３；＃９のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号４４；＃１０のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体、参照番号４５；＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体ＣＡＰＲＩＮ－１を投与されたマウスの腫瘍の大きさを、参照番号４６；ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク自体には反応するが、癌細胞の細胞表面に反応しないモノクローナルを投与されたマウスの腫瘍の大きさ、参照番号４７；抗体の代わりにＰＢＳを投与されたマウスの腫瘍の大きさを示す。
　本発明で用いられる配列番号２～３０のうち偶数の配列番号のポリペプチドに対する抗体の抗腫瘍活性は、後述するように、生体内で担癌動物に対する腫瘍増殖の抑制を調べることによって、あるいは、生体外で該ポリペプチドを発現する腫瘍細胞に対して、免疫細胞又は補体を介した細胞障害活性を示すか否かを調べることによって評価することができる。
　なお、配列番号２～３０のうち偶数の配列番号（すなわち、配列番号２，４，６・・２８，３０）のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドの塩基配列はそれぞれ、配列番号１～２９のうち奇数の配列番号（すなわち、配列番号１，３，５・・２７，２９）に示されている。
　本発明が開示する配列表の配列番号６、８、１０、１２及び１４で示されるアミノ酸配列は、イヌ精巣組織由来ｃＤＮＡライブラリーと乳癌患犬の血清を用いたＳＥＲＥＸ法により、担癌犬由来の血清中に特異的に存在する抗体と結合するポリペプチドとして、また配列番号２及び４で示されるアミノ酸配列は、そのヒト相同因子（ホモログ）として、配列番号１６で示されるアミノ酸配列は、そのウシ相同因子として、配列番号１８で示されるアミノ酸配列は、そのウマ相同因子として、配列番号２０～２８で示されるアミノ酸配列は、そのマウス相同因子として、配列番号３０で示されるアミノ酸配列は、そのニワトリ相同因子として単離された、ＣＡＰＲＩＮ－１のアミノ酸配列である（後述の実施例１参照）。ＣＡＰＲＩＮ－１は、休止期の正常細胞が活性化や細胞分裂を起こす際に発現することが知られている。
　ＣＡＰＲＩＮ－１は、細胞表面には発現しないことが知られていたが、本検討により、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の一部が各種癌細胞の細胞表面に発現することが明らかになった。本発明では、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の内、癌細胞の細胞表面に発現する部分に結合する抗体が好ましく用いられる。癌細胞の細胞表面に発現するＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質中の部分ペプチドとして、配列表の配列番号２～３０のうち配列番号６および配列番号１８を除く偶数番号で表されるアミノ酸配列中のアミノ酸残基番号（ａａ）５０－９８又はアミノ酸残基番号（ａａ）２３３－３０５の領域内の連続する７個以上のアミノ酸配列から成るポリペプチドが挙げられ、具体的には例えば、配列番号３７又は配列番号１３６（配列番号１３６で表されるアミノ酸配列の中でも、配列番号１３７又は配列番号１３８で表されるアミノ酸配列の領域が好ましい。）で表されるアミノ酸配列、又は該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列が挙げられ、本発明の抗体は、これらペプチドに結合する、かつ、抗腫瘍活性を示すすべての抗体が含まれる。
　本発明で用いられる上記ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体は、抗腫瘍活性を発揮しうる限りいかなる種類の抗体であってもよく、例えば、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、合成抗体、多重特異性抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体（ｓｃＦＶ）、抗体フラグメント、例えばＦａｂやＦ（ａｂ’）２、などを含む。これらの抗体及びそのフラグメントは、また当業者に公知の方法により調製することが可能である。本発明においては、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と特異的に結合することが可能な抗体が望ましいし、モノクローナル抗体であることが好ましいが、均質な抗体を安定に生産できるかぎり、ポリクローナル抗体であっても良い。また、被験者がヒトである場合には、拒絶反応を回避もしくは抑制するためにヒト抗体又はヒト化抗体であることが望ましい。
　ここで、「ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と特異的に結合する」とは、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質に特異的に結合し、それ以外のタンパク質と実質的に結合しないことを意味する。
　本発明で用いることができる抗体の抗腫瘍活性は、後述するように、生体内で担癌動物に対する腫瘍増殖の抑制を調べることによって、あるいは、生体外で該ポリペプチドを発現する腫瘍細胞に対して、免疫細胞又は補体を介した細胞障害活性を示すか否かを調べることによって評価することができる。
　さらにまた、本発明における癌の治療及び／又は予防の対象である被験者は、ヒト、ペット動物、家畜類、競技用動物などの哺乳動物であり、好ましい被験者は、ヒトである。
　以下に、本発明に関する抗原の作製、抗体の作製、ならびに医薬組成物について説明する。
＜抗体作製用抗原の作製＞
　本発明で用いられるＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体を取得するための感作抗原として使用されるタンパク質又はその断片は、ヒト、イヌ、ウシ、ウマ、マウス、ラット、ニワトリなど、その由来となる動物種に制限されない。しかし細胞融合に使用する親細胞との適合性を考慮して選択することが好ましく、一般的には、哺乳動物由来のタンパク質が好ましく、特にヒト由来のタンパク質が好ましい。例えば、ＣＡＰＲＩＮ－１がヒトＣＡＰＲＩＮ－１の場合、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質やその部分ペプチド、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１を発現する細胞などを用いることができる。
　ヒトＣＡＰＲＩＮ－１及びそのホモログの塩基配列及びアミノ酸配列は、例えばＧｅｎＢａｎｋ（米国ＮＣＢＩ）にアクセスし、ＢＬＡＳＴ、ＦＡＳＴＡなどのアルゴリズム（Ｋａｒｌｉｎ　ａｎｄ　Ａｌｔｓｃｈｕｌ，　Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ，　９０：５８７３－５８７７，１９９３；　Ａｌｔｓｃｈｕｌ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．　２５：３３８９－３４０２，　１９９７）を利用することによって入手することができる。
　本発明では、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１の塩基配列（配列番号１もしくは３）又はアミノ酸配列（配列番号２もしくは４）を基準とした場合、これらのＯＲＦ又は成熟部分の塩基配列又はアミノ酸配列と７０％～１００％、好ましくは８０％～１００％、より好ましくは９０％～１００％、さらに好ましくは９５％～１００％、例えば９７％～１００％、９８％～１００％、９９％～１００％又は９９．５％～１００％の配列同一性を有する配列からなる核酸又はタンパク質がターゲットになる。ここで、「％配列同一性」は、２つの配列を、ギャップを導入してか又はギャップを導入しないで、最大の類似度となるようにアラインメント（整列）したとき、アミノ酸（又は塩基）の総数に対する同一アミノ酸（又は塩基）のパーセンテージ（％）を意味する。
　ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の断片は、抗体が認識する最小単位であるエピトープ（抗原決定基）のアミノ酸長から、該タンパク質の全長未満の長さを有する。エピトープは、哺乳動物、好ましくはヒトにおいて、抗原性又は免疫原性を有するポリペプチド断片を指し、その最小単位は、約７～１２アミノ酸、例えば８～１１アミノ酸、からなる。具体例としては、配列番号３７、配列番号１３７又は配列番号１３８で表されるアミノ酸配列、又は該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列が挙げられる。
　上記した、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質やその部分ペプチドを含むポリペプチドは、例えば、Ｆｍｏｃ法（フルオレニルメチルオキシカルボニル法）、ｔＢｏｃ法（ｔ―ブチルオキシカルボニル法）等の化学合成法に従って合成することができる（日本生化学会編、生化学実験講座１、タンパク質の化学ＩＶ、化学修飾とペプチド合成、東京化学同人（日本）、１９８１年）。また、各種の市販のペプチド合成機を利用して常法により合成することもできる。また、公知の遺伝子工学的手法（Ｓａｍｂｒｏｏｋら，　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，　第２版，　Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　（１９８９），　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ、Ａｕｓｕｂｅｌら，　Ｓｈｏｒｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ，　第３版，　Ａ　ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ　ｏｆ　Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｆｒｏｍ　Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　（１９９５），　Ｊｏｈｎ　Ｗｉｌｅｙ　＆　Ｓｏｎｓなど）を用いて、上記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを調製し、該ポリヌクレオチドを発現ベクターに組み込んで宿主細胞に導入し、該宿主細胞中でポリペプチドを生産させることにより、目的とするポリペプチドを得ることができる。
　上記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、公知の遺伝子工学的手法や市販の核酸合成機を用いた常法により、容易に調製することができる。例えば、配列番号１の塩基配列を含むＤＮＡは、ヒト染色体ＤＮＡ又はｃＤＮＡライブラリーを鋳型として使用し、配列番号１に記載した塩基配列を増幅できるように設計した一対のプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより調製することができる。ＰＣＲの反応条件は適宜設定することができ、例えば、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ（例えばＴａｑポリメラーゼなど）及びＭｇ２＋含有ＰＣＲバッファーを用いて、９４℃で３０秒間（変性）、５５℃で３０秒～１分間（アニーリング）、７２℃で２分間（伸長）からなる反応行程を１サイクルとして、例えば３０サイクル行った後、７２℃で７分間反応させる条件などを挙げることができるが、これに限定されない。ＰＣＲの手法、条件等については、例えばＡｕｓｕｂｅｌら，　Ｓｈｏｒｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ，　第３版，　Ａ　ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ　ｏｆ　Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｆｒｏｍ　Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　（１９９５），　Ｊｏｈｎ　Ｗｉｌｅｙ　＆　Ｓｏｎｓ（特に第１５章）に記載されている。
　また、本明細書中の配列表の配列番号１～３０に示される塩基配列及びアミノ酸配列の情報に基づいて、適当なプローブやプライマーを調製し、それを用いてヒトなどのｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることにより、所望のＤＮＡを単離することができる。ｃＤＮＡライブラリーは、配列番号２～３０のうち偶数の配列番号のタンパク質を発現している細胞、器官又は組織から作製することが好ましい。そのような細胞や組織の例は、精巣、白血病、乳癌、リンパ腫、脳腫瘍、肺癌、大腸癌などの癌又は腫瘍に由来する細胞又は組織である。上記したプローブ又はプライマーの調製、ｃＤＮＡライブラリーの構築、ｃＤＮＡライブラリーのスクリーニング、ならびに目的遺伝子のクローニングなどの操作は当業者に既知であり、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら，　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，　第２版，　Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　（１９８９）、Ａｕｓｂｅｌら（上記）等に記載された方法に準じて行うことができる。このようにして得られたＤＮＡから、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質やその部分ペプチドをコードするＤＮＡを得ることができる。
　上記宿主細胞としては、上記ポリペプチドを発現可能な細胞であればいかなるものであってもよく、原核細胞の例としては大腸菌など、真核細胞の例としてはサル腎臓細胞ＣＯＳ１、チャイニーズハムスター卵巣細胞ＣＨＯ等の哺乳動物細胞、ヒト胎児腎臓細胞株ＨＥＫ２９３、マウス胎仔皮膚細胞株ＮＩＨ３Ｔ３、出芽酵母、分裂酵母等の酵母細胞、カイコ細胞、アフリカツメガエル卵細胞などが挙げられるが、これらに限定されない。
　宿主細胞として原核細胞を用いる場合、発現ベクターとしては、原核細胞中で複製可能なオリジン、プロモーター、リボソーム結合部位、マルチクローニングサイト、ターミネーター、薬剤耐性遺伝子、栄養要求性相補遺伝子、等を有する発現ベクターを用いる。大腸菌用発現ベクターとしては、ｐＵＣ系、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ、ｐＥＴ発現システム、ｐＧＥＸ発現システムなどが例示できる。上記ポリペプチドをコードするＤＮＡをこのような発現ベクターに組み込み、該ベクターで原核宿主細胞を形質転換したのち、得られた形質転換体を培養すれば、前記ＤＮＡがコードしているポリペプチドを原核宿主細胞中で発現させることができる。この際、該ポリペプチドを、他のタンパク質との融合タンパク質として発現させることもできる。
　宿主細胞として真核細胞を用いる場合、発現ベクターとしては、プロモーター、スプライシング領域、ポリ（Ａ）付加部位等を有する真核細胞用発現ベクターを用いる。そのような発現ベクターとしては、ｐＫＡ１、ｐＣＤＭ８、ｐＳＶＫ３、ｐＭＳＧ、ｐＳＶＬ、ｐＢＫ－ＣＭＶ、ｐＢＫ－ＲＳＶ、ＥＢＶベクター、ｐＲＳ、ｐｃＤＮＡ３、ｐＹＥＳ２等が例示できる。上記と同様に、上記ポリペプチドをコードするＤＮＡをこのような発現ベクターに組み込み、該ベクターで真核宿主細胞を形質転換したのち、得られた形質転換体を培養すれば、前記ＤＮＡがコードしているポリペプチドを真核宿主細胞中で発現させることができる。発現ベクターとしてｐＩＮＤ／Ｖ５－Ｈｉｓ、ｐＦＬＡＧ－ＣＭＶ－２、ｐＥＧＦＰ－Ｎ１、ｐＥＧＦＰ－Ｃ１等を用いた場合には、Ｈｉｓタグ（例えば（Ｈｉｓ）６～（Ｈｉｓ）１０）、ＦＬＡＧタグ、ｍｙｃタグ、ＨＡタグ、ＧＦＰなど各種タグを付加した融合タンパク質として、上記ポリペプチドを発現させることができる。
　発現ベクターの宿主細胞への導入は、電気穿孔法、リン酸カルシウム法、リポソーム法、ＤＥＡＥデキストラン法、マイクロインジェクション、ウイルス感染、リポフェクション、細胞膜透過性ペプチドとの結合、等の周知の方法を用いることができる。
　宿主細胞から目的のポリペプチドを単離精製するためには、公知の分離操作を組み合わせて行うことができる。例えば尿素などの変性剤や界面活性剤による処理、超音波処理、酵素消化、塩析や溶媒分別沈殿法、透析、遠心分離、限外ろ過、ゲルろ過、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ、等電点電気泳動、イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、アフニティークロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー等が挙げられるが、これらに限定されない。
＜抗体の構造＞
　抗体は通常少なくとも２本の重鎖および２本の軽鎖を含むヘテロ多量体糖タンパク質である。ＩｇＭは別として、２本の同一の軽（Ｌ）鎖および２本の同一の重（Ｈ）鎖で構成される約１５０ｋＤａのヘテロ四量体糖タンパク質である。典型的には、それぞれの軽鎖は１つのジスルフィド共有結合により重鎖に連結されているが、種々の免疫グロブリンアイソタイプの重鎖間のジスルフィド結合の数は変動する。それぞれの重鎖および軽鎖はまた鎖内ジスルフィド結合も有する。それぞれの重鎖は一方の端に可変ドメイン（ＶＨ領域）を有し、それにいくつかの定常領域が続く。それぞれ軽鎖は可変ドメイン（ＶＬ領域）を有し、その反対の端に１つの定常領域を有する。軽鎖の定常領域は重鎖の最初の定常領域と整列しており、かつ軽鎖可変ドメインは重鎖の可変ドメインと整列している。抗体の可変ドメインは特定の領域が相補性決定領域（ＣＤＲ）と呼ばれる特定の可変性を示して抗体に結合特異性を付与する。可変領域の相対的に保存されている部分はフレームワーク領域（ＦＲ）と呼ばれている。完全な重鎖および軽鎖の可変ドメインはそれぞれ３つのＣＤＲにより連結された４つのＦＲを含む。３つのＣＤＲは重鎖ではそのＮ末から順にＣＤＲＨ１，ＣＤＲＨ２，ＣＤＲＨ３、同様に軽鎖ではＣＤＲＬ１，ＣＤＲＬ２，ＣＤＲＬ３と呼ばれている。抗体の抗原への結合特異性には、ＣＤＲＨ３が最も重要である。また、各鎖のＣＤＲはＦＲ領域によって近接した状態で一緒に保持され、他方の鎖からのＣＤＲと共に抗体の抗原結合部位の形成に寄与する。定常領域は抗体が抗原に結合することに直接寄与しないが、種々のエフェクター機能、例えば、抗体依存性細胞性細胞障害活性（ＡＤＣＣ）への関与、Ｆｃγ受容体への結合を介した食作用、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を介した半減期／クリアランス速度、補体カスケードのＣ１ｑ構成要素を介した補体依存性細胞障害（ＣＤＣ）を示す。
＜抗体の作製＞
　本発明における抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体とは、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の全長又はその断片と免疫学的反応性を有する抗体を意味する。
　ここで、「免疫学的反応性」とは、生体内で抗体とＣＡＰＲＩＮ－１抗原とが結合する特性を意味し、このような結合を介して腫瘍を障害（例えば、死滅、抑制又は退縮）する機能、が発揮される。すなわち、本発明で使用される抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と結合して腫瘍、例えば白血病、リンパ腫、乳癌、脳腫瘍、肺癌、食道癌、胃癌、腎臓癌、大腸癌などを障害することができるならば、その種類を問わない。
　抗体の例は、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、合成抗体、多重特異性抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体、抗体フラグメント（例えばＦａｂやＦ（ａｂ’）２）などを含む。また、抗体は、免疫グロブリン分子の任意のクラス、例えばＩｇＧ，ＩｇＥ，ＩｇＭ，ＩｇＡ，ＩｇＤ及びＩｇＹ、又は任意のサブクラス、例えばＩｇＧ１，ＩｇＧ２，ＩｇＧ３，ＩｇＧ４，ＩｇＡ１，ＩｇＡ２などである。
　抗体はさらに、グリコシル化の他に、アセチル化、ホルミル化、アミド化、リン酸化、またはペグ（ＰＥＧ）化などによって修飾されていてもよい。
　以下に、種々の抗体の作製例を示す。
　抗体が、モノクローナル抗体であるときには、例えば、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する乳癌細胞株ＳＫ－ＢＲ－３などをマウスに投与して免疫し、同マウスより脾臓を抽出し、細胞を分離の上、該細胞とマウスミエローマ細胞とを融合させ、得られた融合細胞（ハイブリドーマ）の中から、癌細胞増殖抑制作用を持つ抗体を産生するクローンを選択する。癌細胞増殖抑制作用を持つモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを単離し、当該ハイブリドーマを培養し、培養上清から一般的なアフィニティ精製法により抗体を精製することで、調製することが可能である。
　モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、例えば以下のようにしても作製することができる。まず、公知の方法にしたがって、感作抗原を動物に免疫する。一般的方法として、感作抗原を哺乳動物の腹腔内又は皮下に注射することにより行われる。具体的には、感作抗原をＰＢＳ（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ－Ｂｕｆｆｅｒｅｄ　Ｓａｌｉｎｅ）や生理食塩水等で適当量に希釈、懸濁したものに所望により通常のアジュバント、例えばフロイント完全アジュバントを適量混合し、乳化後、哺乳動物に４～２１日毎に数回投与する。また、感作抗原免疫時に適当な担体を使用することもできる。
　このように哺乳動物を免疫し、血清中に所望の抗体レベルが上昇するのを確認した後に、哺乳動物から免疫細胞を採取し、細胞融合に付すが、好ましい免疫細胞としては、特に脾細胞が挙げられる。
　前記免疫細胞と融合される他方の親細胞として、哺乳動物のミエローマ細胞を用いる。このミエローマ細胞は、公知の種々の細胞株、例えば、Ｐ３Ｕ１（Ｐ３－Ｘ６３Ａｇ８Ｕ１）、Ｐ３（Ｐ３ｘ６３Ａｇ８．６５３）（Ｊ．　Ｉｍｍｕｎｏｌ．　（１９７９）１２３，　１５４８－１５５０）、Ｐ３ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１（Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｔｏｐｉｃｓ　ｉｎ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　（１９７８）８１，　１－７）、ＮＳ－１（Ｋｏｈｌｅｒ．　Ｇ．　ａｎｄ　Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，　Ｃ．　Ｅｕｒ．　Ｊ．　Ｉｍｍｕｎｏｌ．　（１９７６）６，　５１１－５１９）、ＭＰＣ－１１（Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ．　Ｄ．Ｈ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃｅｌｌ　（１９７６）８，　４０５－４１５）、ＳＰ２／０（Ｓｈｕｌｍａｎ，　Ｍ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｎａｔｕｒｅ　（１９７８）２７６，　２６９－２７０）、ＦＯ（ｄｅＳｔ．　Ｇｒｏｔｈ，　Ｓ．Ｆ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ．　Ｉｍｍｕｎｏｌ．　Ｍｅｔｈｏｄｓ　（１９８０）３５，　１－２１）、Ｓ１９４（Ｔｒｏｗｂｒｉｄｇｅ，　Ｉ．Ｓ．　Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．　（１９７８）１４８，　３１３－３２３）、Ｒ２１０（Ｇａｌｆｒｅ，　Ｇ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｎａｔｕｒｅ　（１９７９）２７７，　１３１－１３３）等が好適に使用される。
　前記免疫細胞とミエローマ細胞との細胞融合は、基本的には公知の方法、たとえば、ケーラーとミルステインらの方法（Ｋｏｈｌｅｒ，　Ｇ．　ａｎｄ　Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，　Ｃ．　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｅｎｚｙｍｏｌ．　（１９８１）７３，　３－４６）等に準じて行うことができる。
　より具体的には、前記細胞融合は、例えば細胞融合促進剤の存在下に通常の栄養培養液中で実施される。融合促進剤としては、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、センダイウイルス（ＨＶＪ）等が使用され、更に所望により融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を添加使用することもできる。
　免疫細胞とミエローマ細胞との使用割合は任意に設定することができる。例えば、ミエローマ細胞に対して免疫細胞を１～１０倍とするのが好ましい。前記細胞融合に用いる培養液としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好適なＲＰＭＩ１６４０培養液、ＭＥＭ培養液、その他、この種の細胞培養に用いられる通常の培養液が使用可能であり、さらに、牛胎児血清（ＦＣＳ）等の血清補液を併用することもできる。
　細胞融合は、前記免疫細胞とミエローマ細胞との所定量を前記培養液中でよく混合し、予め３７℃程度に加温したＰＥＧ溶液（例えば平均分子量１０００～６０００程度）を通常３０～６０％（ｗ／ｖ）の濃度で添加し、混合することによって目的とするハイブリドーマを形成する。続いて、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去する操作を繰り返すことによりハイブリドーマの生育に好ましくない細胞融合剤等を除去する。
　このようにして得られたハイブリドーマは、通常の選択培養液、例えばＨＡＴ培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含む培養液）で培養することにより選択される。上記ＨＡＴ培養液での培養は、目的とするハイブリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間（通常、数日～数週間）継続する。ついで、通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニング及び単一クローニングを行う。
　また、ヒト以外の動物に抗原を免疫して上記ハイブリドーマを得る他に、ヒトリンパ球、例えばＥＢウイルスに感染したヒトリンパ球をｉｎ　ｖｉｔｒｏでタンパク質、タンパク質発現細胞又はその溶解物で感作し、感作リンパ球をヒト由来の永久分裂能を有するミエローマ細胞、例えばＵ２６６（登録番号ＴＩＢ１９６）と融合させ、所望の活性（例えば、細胞増殖抑制活性）を有するヒト抗体を産生するハイブリドーマを得ることもできる。
　このようにして作製されるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、通常の培養液中で継代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期保存することが可能である。
　すなわち、所望の抗原や所望の抗原を発現する細胞を感作抗原として使用して、これを通常の免疫方法にしたがって免疫し、得られる免疫細胞を通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合させ、通常のスクリーニング法により、モノクローナルな抗体産生細胞（ハイブリドーマ）をスクリーニングすることによって作製できる。
　本発明で使用可能な抗体の別の例がポリクローナル抗体である。ポリクローナル抗体は、例えば、次のようにして得ることができる。
　天然のＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質、あるいはＧＳＴなどとの融合タンパク質として大腸菌等の微生物において発現させた組換えＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質、又はその部分ペプチドをマウス、ヒト抗体産生マウス、ウサギ等の小動物に免疫し血清を得る。これを、例えば、硫安沈殿、プロテインＡ、プロテインＧカラム、ＤＥＡＥイオン交換クロマトグラフィー、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質や合成ペプチドをカップリングしたアフィニティーカラム等により精製することにより調製する。後述の実施例では、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質のアミノ酸配列中、癌細胞の細胞表面に発現する領域の一部のペプチド（配列番号３７で表される）に対するウサギポリクローナル抗体が作製され、抗腫瘍効果が確認されている。
　ここで、ヒト抗体産生マウスとしては、例えばＫＭマウス（キリンファーマ／Ｍｅｄａｒｅｘ）及びＸｅｎｏマウス（Ａｍｇｅｎ）が知られている（例えば、国際公開第ＷＯ０２／４３４７８号、同第ＷＯ０２／０９２８１２号など）。このようなマウスをＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質又はその断片で免疫するときには、完全ヒトポリクローナル抗体を血液から得ることができる。また、免疫後のマウスから脾臓細胞を取出し、ミエローマ細胞との融合法によりヒト型モノクローナル抗体を作製することができる。
　抗原の調製は、例えば、動物細胞を用いた方法（特表２００７－５３００６８）やバキュロウイルスを用いた方法（例えば、国際公開第ＷＯ９８／４６７７７号など）などに準じて行うことができる。抗原の免疫原性が低い場合には、アルブミン等の免疫原性を有する巨大分子と結合させ、免疫を行えばよい。
　さらにまた、抗体遺伝子をハイブリドーマからクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを宿主に導入し、遺伝子組換え技術を用いて産生させた遺伝子組換え型抗体を用いることができる（例えば、Ｃａｒｌ，　Ａ．Ｋ．　Ｂｏｒｒｅｂａｅｃｋ，　Ｊａｍｅｓ，　Ｗ．　Ｌａｒｒｉｃｋ，　ＴＨＥＲＡＰＥＵＴＩＣ　ＭＯＮＯＣＬＯＮＡＬ　ＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ，　Ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　Ｕｎｉｔｅｄ　Ｋｉｎｇｄｏｍ　ｂｙ　ＭＡＣＭＩＬＬＡＮ　ＰＵＢＬＩＳＨＥＲＳ　ＬＴＤ，　１９９０参照）。具体的には、ハイブリドーマのｍＲＮＡから逆転写酵素を用いて抗体の可変領域（Ｖ領域）のｃＤＮＡを合成する。目的とする抗体のＶ領域をコードするＤＮＡが得られれば、これを所望の抗体定常領域（Ｃ領域）をコードするＤＮＡと連結し、これを発現ベクターへ組み込む。又は、抗体のＶ領域をコードするＤＮＡを、抗体Ｃ領域のＤＮＡを含む発現ベクターへ組み込んでもよい。発現制御領域、例えば、エンハンサー、プロモーターの制御のもとで発現するよう発現ベクターに組み込む。次に、この発現ベクターにより宿主細胞を形質転換し、抗体を発現させることができる。
　本発明の抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体は、モノクローナル抗体であることが好ましい。しかし、ポリクローナル抗体、遺伝子改変抗体（キメラ抗体、ヒト化抗体など）などであってもよい。
　モノクローナル抗体には、ヒトモノクローナル抗体、非ヒト動物モノクローナル抗体（例えばマウスモノクローナル抗体、ラットモノクローナル抗体、ウサギモノクローナル抗体、ニワトリモノクローナル抗体など）などが含まれる。モノクローナル抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質を免疫した非ヒト哺乳動物（例えば、マウス、ヒト抗体産生マウスなど）からの脾細胞とミエローマ細胞との融合によって得られたハイブリドーマを培養することによって作製されうる。後述の実施例では、マウスモノクローナル抗体が作製され、抗腫瘍効果が確認された。これらのモノクローナル抗体は、配列番号４３、配列番号７３、配列番号８３、配列番号９３、配列番号１０３、配列番号１１３又は配列番号１２３のアミノ酸配列を有する重鎖可変（ＶＨ）領域と、配列番号４７、配列番号５３、配列番号５８、配列番号６３、配列番号６８、配列番号７７、配列番号８７、配列番号９７、配列番号１０７，配列番号１１７又は配列番号１２７のアミノ酸配列を有する軽鎖可変（ＶＬ）領域とを含み、ここで、該ＶＨ領域に配列番号４０、配列番号７０、配列番号８０、配列番号９０、配列番号１００、配列番号１１０又は配列番号１２０のアミノ酸配列で表されるＣＤＲ１、配列番号４１、配列番号７１、配列番号８１、配列番号９１、配列番号１０１、配列番号１１１又は配列番号１２１のアミノ酸配列で表されるＣＤＲ２及び配列番号４２、配列番号７２、配列番号８２、配列番号９２、配列番号１０２、配列番号１１２又は配列番号１２２のアミノ酸配列で表されるＣＤＲ３が含まれ、該ＶＬ領域に配列番号４４、配列番号５０、配列番号５５、配列番号６０、配列番号６５、配列番号７４、配列番号８４、配列番号９４、配列番号１０４，配列番号１１４又は配列番号１２４のアミノ酸配列で表されるＣＤＲ１、配列番号４５、配列番号５１、配列番号５６、配列番号６１、配列番号６６、配列番号７５、配列番号８５、配列番号９５、配列番号１０５，配列番号１１５又は配列番号１２５のアミノ酸配列で表されるＣＤＲ２及び配列番号４６、配列番号５２、配列番号５７、配列番号６２、配列番号６７、配列番号７６、配列番号８６、配列番号９６、配列番号１０６、配列番号１１６又は配列番号１２６のアミノ酸配列で表されるＣＤＲ３が含まれる。
　キメラ抗体は、異なる動物由来の配列を組み合わせて作製される抗体であり、例えば、マウス抗体の重鎖、軽鎖の可変領域とヒト抗体の重鎖、軽鎖の定常領域からなる抗体などである。キメラ抗体の作製は公知の方法を用いて行うことができ、例えば、抗体Ｖ領域をコードするＤＮＡとヒト抗体Ｃ領域をコードするＤＮＡとを連結し、これを発現ベクターに組み込んで宿主に導入し産生させることにより得られる。
　ポリクローナル抗体には、ヒト抗体産生動物（例えば、マウス）にＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質を免疫して得られる抗体が含まれる。
　ヒト化抗体は、再構成（ｒｅｓｈａｐｅｄ）ヒト抗体とも称される改変抗体である。ヒト化抗体は、免疫動物由来の抗体のＣＤＲを、ヒト抗体の相補性決定領域へ移植することによって構築される。その一般的な遺伝子組換え手法も知られている。
　具体的には、マウス抗体のＣＤＲとヒト抗体のフレームワーク領域（ｆｒａｍｅｗｏｒｋ　ｒｅｇｉｏｎ；　ＦＲ）を連結するように設計したＤＮＡ配列を、末端部にオーバーラップする部分を有するように作製した数個のオリゴヌクレオチドからＰＣＲ法により合成する。得られたＤＮＡを、ヒト抗体定常領域をコードするＤＮＡと連結し、次いで発現ベクターに組み込んで、これを宿主に導入し産生させることにより得られる（欧州特許出願公開第ＥＰ２３９４００号、国際公開第ＷＯ９６／０２５７６号参照）。ＣＤＲを介して連結されるヒト抗体のＦＲは、相補性決定領域が良好な抗原結合部位を形成するものが選択される。必要に応じ、再構成ヒト抗体の相補性決定領域が適切な抗原結合部位を形成するように抗体の可変領域におけるフレームワーク領域のアミノ酸を置換してもよい（Ｓａｔｏ　Ｋ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　１９９３，　５３：　８５１－８５６）。また、様々なヒト抗体由来のフレームワーク領域に置換してもよい（国際公開第ＷＯ９９／５１７４３号参照）。
　ＣＤＲを介して連結されるヒト抗体のフレームワーク領域は、相補性決定領域が良好な抗原結合部位を形成するものが選択される。必要に応じ、再構成ヒト抗体の相補性決定領域が適切な抗原結合部位を形成するように、抗体の可変領域におけるフレームワーク領域のアミノ酸を置換してもよい（Ｓａｔｏ　Ｋ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　１９９３，　５３：　８５１－８５６）。
　キメラ抗体やヒト化抗体を作製した後に、可変領域（例えば、ＦＲ）や定常領域中のアミノ酸を他のアミノ酸で置換等してもよい。
　アミノ酸の置換は、例えば１５未満、１０未満、８以下、７以下、６以下、５以下、４以下、３以下、又は２以下のアミノ酸、好ましくは１～５アミノ酸、より好ましくは１又は２アミノ酸、の置換であり、置換抗体は、未置換抗体と機能的に同等であるべきである。置換は、保存的アミノ酸置換が望ましく、これは、電荷、側鎖、極性、芳香族性などの性質の類似するアミノ酸間の置換である。性質の類似したアミノ酸は、例えば、塩基性アミノ酸（アルギニン、リジン、ヒスチジン）、酸性アミノ酸（アスパラギン酸、グルタミン酸）、無電荷極性アミノ酸（グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、トレオニン、システイン、チロシン）、無極性アミノ酸（ロイシン、イソロイシン、アラニン、バリン、プロリン、フェニルアラニン、トリプトファン、メチオニン）、分枝鎖アミノ酸（トレオニン、バリン、イソロイシン）、芳香族アミノ酸（フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、ヒスチジン）などに分類しうる。
　抗体修飾物としては、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の各種分子と結合した抗体を挙げることができる。本発明の抗体修飾物においては、結合される物質は限定されない。このような抗体修飾物を得るには、得られた抗体に化学的な修飾を施すことによって得ることができる。これらの方法はこの分野において既に確立されている。
　ここで「機能的に同等」とは、対象となる抗体が本発明の抗体と同様の生物学的あるいは生化学的活性、具体的には腫瘍を障害する機能、を有すること、ヒトへの適用時に拒絶反応を本質的に起こさないことなどを指す。このような活性としては、例えば、細胞増殖抑制活性、あるいは結合活性を例示することができる。
　あるポリペプチドと機能的に同等なポリペプチドを調製するための、当業者によく知られた方法としては、ポリペプチドに変異を導入する方法が知られている。例えば、当業者であれば、部位特異的変異誘発法（Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ－Ｇｏｔｏｈ，　Ｔ．　ｅｔ　ａｌ．，　（１９９５）　Ｇｅｎｅ　１５２，　２７１－２７５、Ｚｏｌｌｅｒ，　ＭＪ．，　ａｎｄ　Ｓｍｉｔｈ，　Ｍ．　（１９８３）　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｅｎｚｙｍｏｌ．　１００，　４６８－５００、Ｋｒａｍｅｒ，　Ｗ．　ｅｔ　ａｌ．，　（１９８４）　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．　１２，　９４４１－９４５６、Ｋｒａｍｅｒ，　Ｗ．　ａｎｄ　Ｆｒｉｔｚ，　ＨＪ．，　（１９８７）　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｅｎｚｙｍｏｌ．　１５４，　３５０－３６７、Ｋｕｎｋｅｌ，　ＴＡ．，　（１９８５）　Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ．　８２，　４８８－４９２、Ｋｕｎｋｅｌ　（１９８８）　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｅｎｚｙｍｏｌ．　８５，　２７６３－２７６６）などを用いて、本発明の抗体に適宜変異を導入することにより、該抗体と機能的に同等な抗体を調製することができる。
　上記抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体が認識するＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質のエピトープを認識する抗体は、当業者に公知の方法により得ることが可能である。例えば、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体が認識するＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質のエピトープを通常の方法（例えば、エピトープマッピングなど）により決定し、該エピトープに含まれるアミノ酸配列を有するポリペプチドを免疫原として抗体を作製する方法や、通常の方法で作製された抗体のエピトープを決定し、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体とエピトープが同じ抗体を選択する方法などにより得ることができる。ここで、「エピトープ」は、哺乳動物、好ましくはヒトにおいて、抗原性又は免疫原性を有するポリペプチド断片を指し、その最小単位は、約７～１２アミノ酸、好ましくは８～１１アミノ酸からなる。
　本発明の抗体の親和定数Ｋａ（ｋｏｎ／ｋｏｆｆ）は、好ましくは、少なくとも１０７Ｍ－１、少なくとも１０８Ｍ－１、少なくとも５×１０８Ｍ－１、少なくとも１０９Ｍ－１、少なくとも５×１０９Ｍ－１、少なくとも１０１０Ｍ－１、少なくとも５×１０１０Ｍ－１、少なくとも１０１１Ｍ－１、少なくとも５×１０１１Ｍ－１、少なくとも１０１２Ｍ－１、あるいは、少なくとも１０１３Ｍ－１である。
　本発明の抗体は、抗腫瘍剤とコンジュゲートすることができる。抗体と抗腫瘍剤との結合は、アミノ基、カルボキシル基、ヒドロキシ基、チオール基などと反応性の基（例えば、コハク酸イミジル基、ホルミル基、２－ピリジルジチオ基、マレイイミジル基、アルコキシカルボニル基、ヒドロキシ基など）をもつスペーサーを介して行うことができる。
　抗腫瘍剤の例は、文献等で公知の下記の抗腫瘍剤、すなわち、パクリタキセル、ドキソルビシン、ダウノルビシン、シクロホスファミド、メトトレキサート、５－フルオロウラシル、チオテパ、ブスルファン、インプロスルファン、ピポスルファン、ベンゾドーパ（ｂｅｎｚｏｄｏｐａ）、カルボコン、メツレドーパ（ｍｅｔｕｒｅｄｏｐａ）、ウレドーパ（ｕｒｅｄｏｐａ）、アルトレートアミン（ａｌｔｒｅｔａｍｉｎｅ）、トリエチレンメラミン、トリエチレンホスホラミド、トリエチレンチオホスホラミド（ｔｒｉｅｔｈｉｌｅｎｅｔｈｉｏｐｈｏｓｐｈｏｒａｍｉｄｅ）、トリメチローロメラミン（ｔｒｉｍｅｔｈｙｌｏｌｏｍｅｌａｍｉｎｅ）、ブラタシン、ブラタシノン、カンプトセシン、ブリオスタチン、カリスタチン（ｃａｌｌｙｓｔａｔｉｎ）、クリプトフィシン１、クリプトフィシン８、ドラスタチン、ズオカルマイシン、エレウテロビン、パンクラチスタチン、サルコジクチン（ｓａｒｃｏｄｉｃｔｙｉｎ）、スポンジスタチン、クロランブシル、クロロナファジン（ｃｈｌｏＲＮＡｐｈａｚｉｎｅ）、コロホスファミド（ｃｈｏｌｏｐｈｏｓｐｈａｍｉｄｅ）、エストラムスチン、イホスファミド、メクロレタミン、メクロレタミンオキシドヒドロクロリド、メルファラン、ノベンビチン（ｎｏｖｅｍｂｉｃｈｉｎ）、フェネステリン（ｐｈｅｎｅｓｔｅｒｉｎｅ）、プレドニムスチン（ｐｒｅｄｎｉｍｕｓｔｉｎｅ）、トロフォスファミド（ｔｒｏｆｏｓｆａｍｉｄｅ）、ウラシルマスタード、カルムスチン、クロロゾトシン（ｃｈｌｏｒｏｚｏｔｏｃｉｎ）、フォテムスチン（ｆｏｔｅｍｕｓｔｉｎｅ）、ロムスチン、ニムスチン、ラニムスチン、カリケアマイシン（ｃａｌｉｃｈｅａｍｉｃｉｎ）、ダイネマイシン、クロドロネート、エスペラマイシン、アクラシノマイシン、アクチノマイシン、オースラマイシン（ａｕｔｈｒａｍｙｃｉｎ）、アザセリン、ブレオマイシン、カクチノマイシン（ｃａｃｔｉｎｏｍｙｃｉｎ）、カラビシン（ｃａｒａｂｉｃｉｎ）、カルミノマイシン、カルジノフィリン（ｃａｒｚｉｎｏｐｈｉｌｉｎ）、クロモマイシン、ダクチノマイシン、デトルビシン（ｄｅｔｏｒｂｉｃｉｎ）、６－ジアゾ－５－オキソ－Ｌ－ノルロイシン、アドリアマイシン（ＡＤＲＩＡＭＹＣＩＮ）、エピルビシン、エソルビシン、イダルビシン、マーセロマイシン（ｍａｒｃｅｌｌｏｍｙｃｉｎ）、マイトマイシンＣ、マイコフェノール酸（ｍｙｃｏｐｈｅｎｏｌｉｃ　ａｃｉｄ）、ノガラマイシン（ｎｏｇａｌａｍｙｃｉｎ）、オリボマイシン（ｏｌｉｖｏｍｙｃｉｎｓ）、ペプロマイシン、ポトフィロマイシン（ｐｏｔｆｉｒｏｍｙｃｉｎ）、ピューロマイシン、ケラマイシン（ｑｕｅｌａｍｙｃｉｎ）、ロドルビシン（ｒｏｄｏｒｕｂｉｃｉｎ）、ストレプトニグリン、ストレプトゾシン、ツベルシジン（ｔｕｂｅｒｃｉｄｉｎ）、ウベニメクス、ジノスタチン（ｚｉｎｏｓｔａｔｉｎ）、ゾルビシン（ｚｏｒｕｂｉｃｉｎ）、デノプテリン（ｄｅｎｏｐｔｅｒｉｎ）、プテロプテリン（ｐｔｅｒｏｐｔｅｒｉｎ）、トリメトレキセート（ｔｒｉｍｅｔｒｅｘａｔｅ）、フルダラビン（ｆｌｕｄａｒａｂｉｎｅ）、６－メルカプトプリン、チアミプリン、チオグアニン、アンシタビン、アザシチジン（ａｚａｃｉｔｉｄｉｎｅ）、６－アザウリジン（ａｚａｕｒｉｄｉｎｅ）、カルモフール、シタラビン、ジデオキシウリジン、ドキシフルリジン、エノシタビン（ｅｎｏｃｉｔａｂｉｎｅ）、フロキシウリジン（ｆｌｏｘｕｒｉｄｉｎｅ）；アンドロゲン類、例えばカルステロン（ｃａｌｕｓｔｅｒｏｎｅ）、プロピオン酸ドロモスタノロン、エピチオスタノール、メピチオスタン、テストラクトン（ｔｅｓｔｏｌａｃｔｏｎｅ）、アミノグルテチミド、ミトタン、トリロスタン、フロリン酸（ｆｒｏｌｉｎｉｃ　ａｃｉｄ）、アセグラトン、アルドホスファミドグリコシド、アミノレブリン酸、エニルウラシル、アムサクリン（ａｍｓａｃｒｉｎｅ）、ベストラブシル（ｂｅｓｔｒａｂｕｃｉｌ）、ビサントレン（ｂｉｓａｎｔｒｅｎｅ）、エダトラキセート（ｅｄａｔｒａｘａｔｅ）、デフォファミン（ｄｅｆｏｆａｍｉｎｅ）、デメコルシン（ｄｅｍｅｃｏｌｃｉｎｅ）、ジアジコン（ｄｉａｚｉｑｕｏｎｅ）、エルフォルニチン　（ｅｌｆｏｒｎｉｔｈｉｎｅ）、酢酸エリプチニウム（ｅｌｌｉｐｔｉｎｉｕｍ）、エポチロン（ｅｐｏｔｈｉｌｏｎｅ）、エトグルシド（ｅｔｏｇｌｕｃｉｄ）、レンチナン、ロニダミン（ｌｏｎｉｄａｍｉｎｅ）、メイタンシン（ｍａｙｔａｎｓｉｎｅ）、アンサミトシン（ａｎｓａｍｉｔｏｃｉｎｅ）、ミトグアゾン（ｍｉｔｏｇｕａｚｏｎｅ）、ミトキサントロン、モピダンモール（ｍｏｐｉｄａｎｍｏｌ）、ニトラエリン（ｎｉｔｒａｅｒｉｎｅ）、ペントスタチン、フェナメット（ｐｈｅｎａｍｅｔ）、ピラルビシン、ロソキサントロン（ｌｏｓｏｘａｎｔｒｏｎｅ）、ポドフィリン酸（ｐｏｄｏｐｈｙｌｌｉｎｉｃ　ａｃｉｄ）、２－エチルヒドラジド、プロカルバジン、ラゾキサン（ｒａｚｏｘａｎｅ）、リゾキシン、シゾフィラン、スピロゲルマニウム（ｓｐｉｒｏｇｅｒｍａｎｉｕｍ）、テニュアゾン酸（ｔｅｎｕａｚｏｎｉｃ　ａｃｉｄ）、トリアジコン（ｔｒｉａｚｉｑｕｏｎｅ）、ロリジン（ｒｏｒｉｄｉｎｅ）Ａ、アングイジン（ａｎｇｕｉｄｉｎｅ）、ウレタン、ビンデシン、ダカーバジン、マンノムスチン（ｍａｎｎｏｍｕｓｔｉｎｅ）、ミトブロニトール、ミトラクトール（ｍｉｔｏｌａｃｔｏｌ）、ピポブロマン（ｐｉｐｏｂｒｏｍａｎ）、ガシトシン（ｇａｃｙｔｏｓｉｎｅ）、ドキセタキセル、クロランブシル、ゲムシタビン（ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）、６－チオグアニン、メルカプトプリン、シスプラチン、オキサリプラチン、カルボプラチン、ビンブラスチン、エトポシド、イホスファミド、マイトキサントロン、ビンクリスチン、ビノレルビン、ノバントロン（ｎｏｖａｎｔｒｏｎｅ）、テニポシド、エダトレキセート（ｅｄａｔｒｅｘａｔｅ）、ダウノマイシン、アミノプテリン、キセローダ（ｘｅｌｏｄａ）、イバンドロナート（ｉｂａｎｄｒｏｎａｔｅ）、イリノテカン、トポイソメラーゼインヒビター、ジフルオロメチロールニチン（ＤＭＦＯ）、レチノイン酸、カペシタビン（ｃａｐｅｃｉｔａｂｉｎｅ）、並びにそれらの薬学的に許容可能な塩又は誘導体を包含する。
　あるいは、本発明の抗体には、文献等で公知の、２１１Ａｔ、１３１Ｉ、１２５Ｉ、９０Ｙ、１８６Ｒｅ、１８８Ｒｅ、１５３ＳＭ、２１２Ｂｉ、３２Ｐ、１７５Ｌｕ、１７６Ｌｕなどの放射性同位体を結合することも可能である。放射性同位体は、腫瘍の治療や診断のために有効なものが望ましい。
　本発明の抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１と免疫学的反応性を有する抗体、あるいは、ＣＡＰＲＩＮ－１を特異的に認識する抗体である。該抗体は、それを投与する対象動物において拒絶反応がほとんど又はまったく回避されるような構造をもつ抗体であるべきである。そのよう抗体としては、例えば対象動物がヒトである場合、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体（例えばヒト－マウスキメラ抗体）、単鎖抗体、二重特異性抗体などが挙げられる。これらの抗体は、重鎖及び軽鎖の可変領域がヒト抗体由来のものであるか、あるいは、重鎖及び軽鎖の可変領域が非ヒト動物抗体由来の相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３）とヒト抗体由来のフレームワーク領域からなるものであるか、あるいは、重鎖及び軽鎖の可変領域が非ヒト動物抗体由来のものであり、かつ、重鎖及び軽鎖の定常領域がヒト抗体由来のものである組換え型抗体である。好ましい抗体は、前２つの抗体である。
　これらの組換え型抗体は、次のようにして作製することができる。ハイブリドーマなどの抗体産生細胞からヒトＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体（例えば、ヒトモノクローナル抗体、マウスモノクローナル抗体、ラットモノクローナル抗体、ウサギモノクローナル抗体、ニワトリモノクローナル抗体など）をコードするＤＮＡをクローニングし、これを鋳型にして該抗体の軽鎖可変領域及び重鎖可変領域をコードするＤＮＡをＲＴ－ＰＣＲ法等により作製し、Ｋａｂａｔ　ＥＵ　ｎｕｍｂｅｒｉｎｇ　ｓｙｓｔｅｍ（Ｋａｂａｔら、Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ　ｏｆ　Ｐｒｏｔｅｉｎｓ　ｏｆ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，　５ｔｈＥｄ．　Ｐｕｂｌｉｃ　Ｈｅａｌｔｈ　Ｓｅｒｖｉｃｅ，　Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｈｅａｌｔｈ，　Ｂｅｔｈｅｓｄａ，　Ｍｄ．　（１９９１））に基づいて軽鎖及び重鎖の各可変領域の配列又は各ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３の配列を決定する。
　さらに、これらの各可変領域をコードするＤＮＡ又は各ＣＤＲをコードするＤＮＡを、遺伝子組換え技術（Ｓａｍｂｒｏｏｋら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ　Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ，　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ　（１９８９））又はＤＮＡ合成機を用いて作製する。ここで、上記ヒトモノクローナル抗体産生ハイブリドーマは、ヒト抗体産生動物（例えば、マウス）にヒトＣＡＰＲＩＮ－１を免疫したのち、該免疫動物から切除した脾細胞とミエローマ細胞とを融合させることによって作製することができる。これとは別に、必要に応じて、遺伝子組換え技術又はＤＮＡ合成機を用いてヒト抗体由来の軽鎖又は重鎖の可変領域及び定常領域をコードするＤＮＡを作製する。
　ヒト化抗体の場合には、ヒト抗体由来の軽鎖又は重鎖の可変領域をコードするＤＮＡ中のＣＤＲコーディング配列を、それらに対応する、ヒト以外の動物（例えばマウス、ラット、ニワトリなど）由来の抗体のＣＤＲコーディング配列と置換したＤＮＡを作製し、それによって得られたＤＮＡをそれぞれ、ヒト抗体由来の軽鎖又は重鎖の定常領域をコードするＤＮＡと連結することによって、ヒト化抗体をコードするＤＮＡを作製することができる。
　キメラ抗体の場合には、ヒト以外の動物（例えばマウス、ラット、ニワトリなど）由来の抗体の軽鎖又は重鎖の可変領域をコードするＤＮＡをそれぞれ、ヒト抗体由来の軽鎖又は重鎖の定常領域をコードするＤＮＡと連結することによって、キメラ抗体をコードするＤＮＡを作製することができる。
　単鎖抗体の場合には、この抗体は重鎖可変領域と軽鎖可変領域とをリンカーを介して直線状に連結された抗体であり、重鎖可変領域をコードするＤＮＡ、リンカーをコードするＤＮＡ、及び軽鎖可変領域をコードするＤＮＡを結合することによって単鎖抗体をコードするＤＮＡを作製することができる。ここで、重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はいずれも、ヒト抗体由来のものであるか、あるいは、ＣＤＲのみヒト以外の動物（例えばマウス、ラット、ニワトリなど）由来の抗体のＣＤＲによって置換されたヒト抗体由来のものである。また、リンカーは、１２～１９アミノ酸からなり、例えば１５アミノ酸の（Ｇ４Ｓ）３（Ｇ．　■Ｂ．　Ｋｉｍら，Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ　Ｄｅｓｉｇｎ　ａｎｄ　Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ　２００７，　２０（９）：　４２５－４３２）が挙げられる。
　二重特異性抗体（ｄｉａｂｏｄｙ）の場合には、この抗体は２つの異なるエピトープと特異的に結合可能な抗体であり、例えば重鎖可変領域ＡをコードするＤＮＡ、軽鎖可変領域ＢをコードするＤＮＡ、重鎖可変領域ＢをコードするＤＮＡ、及び軽鎖可変領域ＡをコードするＤＮＡをこの順序で結合する（ただし、軽鎖可変領域ＢをコードするＤＮＡと重鎖可変領域ＢをコードするＤＮＡとは上記のようなリンカーをコードするＤＮＡを介して結合される。）ことによって二重特異性抗体をコードするＤＮＡを作製することができる。ここで、重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はいずれも、ヒト抗体由来のものであるか、あるいは、ＣＤＲのみヒト以外の動物（例えばマウス、ラット、ニワトリなど）由来の抗体のＣＤＲによって置換されたヒト抗体由来のものである。
　上記のようにして作製された組換えＤＮＡを、１つ又は複数の適当なベクターに組み込み、これを宿主細胞（例えば、哺乳動物細胞、酵母細胞、昆虫細胞など）に導入し、（共）発現させることによって組換え型抗体を作製することができる（Ｐ．Ｊ．　Ｄｅｌｖｅｓ．，　ＡＮＴＩＢＯＤＹ　ＰＲＯＤＵＣＴＩＯＮ　ＥＳＳＥＮＴＩＡＬ　ＴＥＣＨＮＩＱＵＥＳ．，　１９９７　ＷＩＬＥＹ、Ｐ．　Ｓｈｅｐｈｅｒｄ　ａｎｄ　Ｃ．　Ｄｅａｎ．，　Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ．，　２０００　ＯＸＦＯＲＤ　ＵＮＩＶＥＲＳＩＴＹ　ＰＲＥＳＳ；　Ｊ．Ｗ．　Ｇｏｄｉｎｇ．，　Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：　ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ　ａｎｄ　ｐｒａｃｔｉｃｅ．，　１９９３　ＡＣＡＤＥＭＩＣ　ＰＲＥＳＳ）。
　上記の方法によって作製される本発明の抗体は、例えば以下の（ａ）～（ｋ）の抗体が挙げられる。
　（ａ）配列番号４０、４１および４２を含む重鎖可変領域と配列番号４４、４５および４６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号４３の重鎖可変領域および配列番号４７の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　（ｂ）配列番号４０，４１および４２を含む重鎖可変領域と配列番号５０，５１および５２を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号４３の重鎖可変領域および配列番号５３の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　（ｃ）配列番号４０，４１および４２を含む重鎖可変領域と配列番号５５，５６および５７を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号４３の重鎖可変領域および配列番号５８の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　（ｄ）配列番号４０，４１および４２を含む重鎖可変領域と配列番号６０，６１および６２を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号４３の重鎖可変領域および配列番号６３の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　（ｅ）配列番号４０，４１および４２を含む重鎖可変領域と配列番号６５，６６および６７を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号４３の重鎖可変領域および配列番号６８の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　（ｆ）配列番号７０、７１および７２を含む重鎖可変領域と配列番号７４，７５および７６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号７３の重鎖可変領域および配列番号７７の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　（ｇ）配列番号８０，８１および８２を含む重鎖可変領域と配列番号８４，８５および８６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号８３の重鎖可変領域および配列番号８７の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　（ｈ）配列番号９０，９１および９２を含む重鎖可変領域と配列番号９４，９５および９６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号９３の重鎖可変領域および配列番号９７の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　（ｉ）配列番号１００，１０１および１０２を含む重鎖可変領域と配列番号１０４，１０５および１０６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号１０３の重鎖可変領域および配列番号１０７の軽鎖可変領域で構成される抗体）
　（ｊ）配列番号１１０，１１１および１１２を含む重鎖可変領域と配列番号１１４，１１５および１１６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号１１３の重鎖可変領域および配列番号１１７の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　（ｋ）配列番号１２０，１２１および１２２を含む重鎖可変領域と配列番号１２４，１２５および１２６を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（好ましくは配列番号１２３の重鎖可変領域および配列番号１２７の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　ここで、配列番号４０、４１および４２、配列番号７０，７１および７２、配列番号８０，８１および８２、配列番号９０，９１および９２、配列番号１００，１０１および１０２、配列番号１１０，１１１および１１２、配列番号１２０，１２１および１２２に示すアミノ酸配列はそれぞれ、マウス抗体重鎖可変領域のＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３であり、また、配列番号４４、４５および４６、配列番号５０，５１および５２、配列番号５５，５６および５７、配列番号６０，６１および６２、配列番号６５、６６および６７、配列番号７４，７５および７６、配列番号８４、８５および８６、配列番号９４，９５および９６、配列番号１０４，１０５および１０６、配列番号１１４，１１５および１１６、配列番号１２４，１２５および１２６に示すアミノ酸配列はそれぞれ、マウス抗体軽鎖可変領域のＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３である。
　また、本発明のヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体又は二重特異性抗体は、例えば以下の抗体である（抗体（ａ）で例示する）。
　（ｉ）重鎖の可変領域が配列番号４０、４１および４２のアミノ酸配列及びヒト抗体由来のフレームワーク領域のアミノ酸配列を含み、かつ、軽鎖の可変領域が配列番号４４、４５および４６のアミノ酸配列及びヒト抗体由来のフレームワーク領域のアミノ酸配列を含む抗体（好ましくは重鎖可変領域に配列番号４３のアミノ酸配列を含み、かつ、軽鎖可変領域に配列番号４７のアミノ酸配列を含む抗体）。
　（ｉｉ）重鎖の可変領域が配列番号４０、４１および４２のアミノ酸配列及びヒト抗体由来のフレームワーク領域のアミノ酸配列を含み、かつ、重鎖の定常領域がヒト抗体由来のアミノ酸配列を含み、並びに、軽鎖の可変領域が配列番号４４、４５および４６のアミノ酸配列及びヒト抗体由来のフレームワーク領域のアミノ酸配列を含み、かつ、軽鎖の定常領域がヒト抗体由来のアミノ酸配列を含んでなる抗体（好ましくは重鎖の可変領域が配列番号４３のアミノ酸配列を含み、かつ、重鎖の定常領域がヒト抗体由来のアミノ酸配列を含む、並びに、軽鎖の可変領域が配列番号４７のアミノ酸配列を含み、かつ、軽鎖の定常領域がヒト抗体由来のアミノ酸配列を含んでなる抗体）。
　なお、ヒト抗体重鎖及び軽鎖の定常領域及び可変領域の配列は、例えばＮＣＢＩ（米国：ＧｅｎＢａｎｋ、ＵｎｉＧｅｎｅなど）から入手可能であり、例えばヒトＩｇＧ１重鎖定常領域については登録番号Ｊ００２２８、ヒトＩｇＧ２重鎖定常領域については登録番号Ｊ００２３０、ヒトＩｇＧ３重鎖定常領域については登録番号Ｘ０３６０４、ヒトＩｇＧ４重鎖定常領域については登録番号Ｋ０１３１６、ヒト軽鎖κ定常領域については登録番号Ｖ００５５７、Ｘ６４１３５、Ｘ６４１３３など、ヒト軽鎖λ定常領域については登録番号Ｘ６４１３２、Ｘ６４１３４などの配列を参照することができる。
　上記抗体は、好ましくは、細胞障害活性を有しており、これによって抗腫瘍効果を発揮することができる。
　また、上記抗体における重鎖及び軽鎖の可変領域やＣＤＲの特定の配列は、単に例示を目的としたものであり、特定の配列に限定されないことは明らかである。ヒトＣＡＰＲＩＮ－１に対する別のヒト抗体又は非ヒト動物抗体（例えばマウス抗体）を産生しうるハイブリドーマを作製し、ハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体を回収し、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１との免疫学的結合性及び細胞障害活性を指標として目的の抗体であるか否かを判定する。それによって目的のモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを識別したのち、上記のとおり、該ハイブリドーマから目的の抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域をコードするＤＮＡを作製し配列決定し、該ＤＮＡを別の抗体の作製のために利用する。
　さらに本発明の上記抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１を特異的に認識するという特異性を有する限り、上記（ｉ）から（ｉｖ）の各抗体の特にフレームワーク領域の配列及び／又は定常領域の配列において、１若しくは数個（好ましくは、１若しくは２個）のアミノ酸の置換、欠失又は付加があってもよい。ここで数個とは、２～５個、好ましくは２個又は３個を意味する。
　本発明はさらに、本発明の上記抗体をコードするＤＮＡ、あるいは、上記抗体の重鎖又は軽鎖をコードするＤＮＡ、あるいは、上記抗体の重鎖又は軽鎖の可変領域をコードするＤＮＡも提供する。そのようなＤＮＡは、例えば抗体（ａ）の場合、配列番号４０、４１および４２のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含む重鎖可変領域をコードするＤＮＡ、配列番号４４、４５及び４６のアミノ酸配列をコードする塩基配列含む軽鎖可変領域をコードするＤＮＡ、などを含む。
　これらの配列のＤＮＡによってコードされる相補性決定領域（ＣＤＲ）は、抗体の特異性を決定する領域であるため、抗体のそれ以外の領域（すなわち、定常領域及びフレームワーク領域）をコードする配列は他の抗体由来の配列であってもよい。ここで他の抗体とはヒト以外の生物由来の抗体も含むが、副作用低減の観点からはヒト由来のものが好ましい。すなわち、上記のＤＮＡでは、重鎖及び軽鎖の各フレームワーク領域及び各定常領域をコードする領域がヒト抗体由来の対応アミノ酸配列をコードする塩基配列を含むことが好ましい。
　さらに、本発明の抗体をコードするＤＮＡの別の例は、例えば抗体（ａ）の場合、配列番号４３のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含む重鎖可変領域をコードするＤＮＡ、軽鎖可変領域をコードする領域が配列番号４７のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むＤＮＡなどである。ここで、配列番号４３のアミノ酸配列をコードする塩基配列の例は、配列番号４８の塩基配列である。また、配列番号４７のアミノ酸配列をコードする塩基配列の例は、配列番号４９の塩基配列である。これらのＤＮＡでも、重鎖及び軽鎖の各定常領域をコードする領域がヒト抗体由来の対応アミノ酸配列をコードする塩基配列を含むことが好ましい。
　本発明のＤＮＡは、例えば上記の方法又は以下の方法で得ることができる。まず、本発明の抗体に関わるハイブリドーマから、市販のＲＮＡ抽出キットを用いて全ＲＮＡを調製し、ランダムプライマー等を用いて逆転写酵素によりｃＤＮＡを合成する。次いで既知のマウス抗体重鎖遺伝子及び軽鎖遺伝子の各可変領域において、それぞれ保存されている配列のオリゴヌクレオチドをプライマーに用いたＰＣＲ法によって、抗体をコードするｃＤＮＡを増幅させる。定常領域をコードする配列については、既知の配列をＰＣＲ法で増幅することによって得ることができる。ＤＮＡの塩基配列は、配列決定用プラスミド又はファージに組み込むなどして、常法により決定することができる。
　本発明で用いられる抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体によるＣＡＰＲＩＮ－１発現癌細胞に対する抗腫瘍効果は、以下の機序により起こると考えられる。
　ＣＡＰＲＩＮ－１発現細胞のエフェクター細胞抗体依存的細胞障害性（ＡＤＣＣ）、及びＣＡＰＲＩＮ－１発現細胞の補体依存的細胞障害性（ＣＤＣ）。
　従って、本発明で用いられる抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体の活性評価は、以下実施例に具体的に示されるように、生体外でＣＡＰＲＩＮ－１を発現する癌細胞に対して上記ＡＤＣＣ活性又はＣＤＣ活性を測定することで評価することができる。
　本発明で用いられる抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体は、癌細胞上のＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と結合し、上記活性によって、抗腫瘍作用を示すことから、癌の治療あるいは予防に有用であると考えられる。すなわち本発明は、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を有効成分とする、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物を提供する。抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を人体に投与する目的（抗体治療）で使用する場合には、免疫原性を低下させるため、ヒト抗体やヒト化抗体にすることが好ましい。
　なお、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体と癌細胞表面上のＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質との結合親和性が高い程、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体による、より強い抗腫瘍活性が得られる。従って、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と高い結合親和性を有する抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を獲得できれば、より強い抗腫瘍効果が期待でき、癌の治療及び／または予防を目的とした医薬組成物として適応することが可能になる。高い結合親和性として、前述したように、結合定数（親和定数）Ｋａ（ｋｏｎ／ｋｏｆｆ）が、好ましくは、少なくとも１０７Ｍ－１、少なくとも１０８Ｍ－１、少なくとも５×１０８Ｍ－１、少なくとも１０９Ｍ－１、少なくとも５×１０９Ｍ－１、少なくとも１０１０Ｍ－１、少なくとも５×１０１０Ｍ－１、少なくとも１０１１Ｍ－１、少なくとも５×１０１１Ｍ－１、少なくとも１０１２Ｍ－１、あるいは、少なくとも１０１３Ｍ－１であることが望ましい。
＜抗原発現細胞への結合＞
　抗体がＣＡＰＲＩＮ－１に結合する能力は、実施例で述べられるようなたとえば　ＥＬＩＳＡ、ウエスタンブロット法、免疫蛍光およびフローサイトメトリー分析などを用いた結合アッセイを利用して特定することができる。
＜免疫組織化学染色＞
　ＣＡＰＲＩＮ－１を認識する抗体は、当業者に周知の方法での免疫組織化学により、外科手術の間に患者から得た組織や、自然にまたはトランスフェクション後にＣＡＰＲＩＮ－１を発現する細胞系を接種した異種移植組織を担持する動物から得た組織から、パラホルムアルデヒドまたはアセトン固定した凍結切片またはパラホルムアルデヒドで固定したパラフィン包埋した組織切片を使用して、ＣＡＰＲＩＮ－１との反応性に関して試験することができる。
　免疫組織化学染色のため、ＣＡＰＲＩＮ－１に対して反応性のある抗体を、様々な方法で染色させることができる。例えば、ホースラディッシュペルオキシダーゼ複合ヤギ抗マウス抗体やヤギ抗ウサギ抗体を反応させることにより、可視化することができる。
＜医薬組成物＞
　本発明の癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物の標的は、ＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子を発現する癌（細胞）であれば特に限定されない。
　本明細書で使用される「腫瘍」及び「癌」という用語は、悪性新生物を意味し、互換的に使用される。
　本発明において対象となる癌としては、配列番号２～３０のうち偶数の配列番号のアミノ酸配列又は７以上の連続アミノ酸からなるその部分配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子を発現している癌であり、好ましくは、乳癌、脳腫瘍、白血病、肺癌、リンパ腫、肥満細胞腫、食道癌及び大腸癌である。
　これらの特定の癌には、例えば、乳腺癌、複合型乳腺癌、乳腺悪性混合腫瘍、乳管内乳頭状腺癌、肺腺癌、扁平上皮癌、小細胞癌、大細胞癌、神経上皮組織性腫瘍である神経膠腫、脳室上衣腫、神経細胞性腫瘍、胎児型の神経外胚葉性腫瘍、神経鞘腫、神経線維腫、髄膜腫、慢性型リンパ球性白血病、リンパ腫、消化管型リンパ腫、消化器型リンパ腫、小～中細胞型リンパ腫、盲腸癌、上行結腸癌、下行結腸癌、横行結腸癌、Ｓ状結腸癌、直腸癌が包含されるが、これらに限定されない。
　また、対象となる動物は、哺乳動物であり、例えば霊長類、ペット動物、家畜類、競技用動物などを含む哺乳動物であり、特にヒト、イヌおよびネコが好ましい。
　本発明で用いられる抗体を医薬組成物として用いる場合には、当業者に公知の方法で製剤化することが可能である。例えば、水もしくはそれ以外の薬学的に許容し得る液との無菌性溶液、又は懸濁液剤の注射剤の形で非経口的に使用できる。例えば、薬理学上許容される担体もしくは媒体、具体的には、滅菌水や生理食塩水、植物油、乳化剤、懸濁剤、界面活性剤、安定剤、香味剤、賦形剤、ベヒクル、防腐剤、結合剤などと適宜組み合わせて、一般に認められた製薬実施に要求される単位用量形態で混和することによって製剤化することが考えられる。これら製剤における有効成分量は指示された範囲の適当な用量が得られるようにするものである。
　注射のための無菌組成物は注射用蒸留水のようなベヒクルを用いて通常の製剤実施に従って処方することができる。
　注射用の水溶液としては、例えば生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液、例えばＤ－ソルビトール、Ｄ－マンノース、Ｄ－マンニトール、塩化ナトリウムが挙げられ、適当な溶解補助剤、例えばアルコール、具体的にはエタノール、ポリアルコール、例えばプロピレングリコール、ポリエチレングリコール、非イオン性界面活性剤、例えばポリソルベート８０（ＴＭ）、ＨＣＯ－６０と併用してもよい。
　油性液としてはゴマ油、大豆油があげられ、溶解補助剤として安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールと併用してもよい。また、緩衝剤、例えばリン酸塩緩衝液、酢酸ナトリウム緩衝液、無痛化剤、例えば、塩酸プロカイン、安定剤、例えばベンジルアルコール、フェノール、酸化防止剤と配合してもよい。調製された注射液は通常、適当なアンプルに充填させる。
　投与は、経口又は非経口であり、好ましくは非経口投与であり、具体的には、注射剤型、経鼻投与剤型、経肺投与剤型、経皮投与型などが挙げられる。注射剤型の例としては、例えば、静脈内注射、筋肉内注射、腹腔内注射、皮下注射などにより全身又は局部的に投与することができる。
　また、患者の年齢、体重、性別、症状などにより適宜投与方法を選択することができる。抗体又は抗体をコードするポリヌクレオチドを含有する医薬組成物の投与量としては、例えば、一回につき体重１ｋｇあたり０．０００１ｍｇから１０００ｍｇの範囲で選ぶことが可能である。あるいは、例えば、患者あたり０．００１～１０００００ｍｇ／ｂｏｄｙの範囲で投与量を選ぶことができるが、これらの数値に必ずしも制限されるものではない。投与量、投与方法は、患者の体重、年齢、性別、症状などにより変動するが、当業者であれば適宜選択することが可能である。
＜ポリペプチド及びＤＮＡ＞
　本発明は更に、上記抗体（ａ）～（ｋ）に関わる以下のポリペプチド及びＤＮＡも提供する。
　（ｉ）配列番号４３、配列番号７３、配列番号８３、配列番号９３、配列番号１０３、配列番号１１３および配列番号１２３のアミノ酸配列を含むポリペプチド、及び該ポリペプチドをコードするＤＮＡ。
　（ｉｉ）配列番号４７、配列番号５３、配列番号５８、配列番号６３、配列番号６８、配列番号７７、配列番号８７、配列番号９７、配列番号１０７，配列番号１１７配列番号１２７のアミノ酸配列を含むポリペプチド、及び該ポリペプチドをコードするＤＮＡ。
　（ｉｉｉ）配列番号４８、配列番号７８、配列番号８８、配列番号９８、配列番号１０８、配列番号１１８および配列番号１２８の塩基配列を含むＤＮＡ。
　（ｉｖ）配列番号４９、配列番号５４、配列番号５９、配列番号６４、配列番号６９、配列番号７９、配列番号８９、配列番号９９、配列番号１０９、配列番号１１９及び配列番号１２９の塩基配列を含むＤＮＡ。
　（ｖ）配列番号４０、４１および４２、配列番号７０，７１および７２、配列番号８０，８１および８２、配列番号９０，９１および９２、配列番号１００，１０１および１０２、配列番号１１０，１１１および１１２、配列番号１２０，１２１および１２２に示すアミノ酸配列からなる群から選択される、重鎖ＣＤＲポリペプチド、及び該ポリペプチドをコードするＤＮＡ。
　（ｖｉ）配列番号４４、４５および４６、配列番号５０，５１および５２、配列番号５５，５６および５７、配列番号６０，６１および６２、配列番号６５，６６および６７、配列番号７４，７５および７６、配列番号８４，８５および８６、配列番号９４，９５および９６、配列番号１０４，１０５および１０６、配列番号１１４，１１５および１１６、配列番号１２４，１２５および１２６に示すアミノ酸配列からなる群から選択される、軽鎖ＣＤＲポリペプチド、及び該ポリペプチドをコードするＤＮＡ。
　これらのポリペプチド及びＤＮＡは、上記のとおり、遺伝子組換え技術を用いて作製することができる。
　以下、本発明を実施例に基づきより具体的に説明するが、本発明の範囲はこれらの具体例によって制限されないものとする。
実施例１　ＳＥＲＥＸ法による新規癌抗原タンパクの同定
（１）ｃＤＮＡライブラリーの作製
　健常な犬の精巣組織から酸グアニジウム－フェノール－クロロホルム法（Ａｃｉｄ　ｇｕａｎｉｄｉｕｍ－Ｐｈｅｎｏｌ－Ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ法）により全ＲＮＡを抽出し、Ｏｌｉｇｏｔｅｘ－ｄＴ３０　ｍＲＮＡ　ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（宝酒造社製）を用いてキット添付のプロトコールに従ってポリＡ　ＲＮＡを精製した。
　この得られたｍＲＮＡ（５μｇ）を用いてイヌ精巣ｃＤＮＡファージライブラリーを合成した。ｃＤＮＡファージライブラリーの作製にはｃＤＮＡ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　Ｋｉｔ，　ＺＡＰ－ｃＤＮＡ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　Ｋｉｔ，　ＺＡＰ－ｃＤＮＡ　ＧｉｇａｐａｃｋＩＩＩ　Ｇｏｌｄ　Ｃｌｏｎｉｇ　Ｋｉｔ　（ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ社製）を用い、キット添付のプロトコールに従ってライブラリーを作製した。作製したｃＤＮＡファージライブラリーのサイズは７．７３×１０５ｐｆｕ／ｍｌであった。
（２）血清によるｃＤＮＡライブラリーのスクリーニング
　上記作製したイヌ精巣ｃＤＮＡファージライブラリーを用いて、イムノスクリーニングを行った。具体的にはΦ９０×１５ｍｍのＮＺＹアガロースプレートに２２１０クローンとなるように宿主大腸菌（ＸＬ１－Ｂｌｕｅ　ＭＲＦ’）に感染させ、４２℃、３～４時間培養し、溶菌斑（プラーク）を作らせ、ＩＰＴＧ（イソプロピル－β－Ｄ－チオガラクトシド）を浸透させたニトロセルロースメンブレン（Ｈｙｂｏｎｄ　Ｃ　Ｅｘｔｒａ：　ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ　Ｂｉｏ－Ｓｃｉｎｅｃｅ社製）でプレートを３７℃で４時間覆うことによりタンパク質を誘導・発現させ、メンブレンにタンパク質を転写した。その後メンブレンを回収し０．５％脱脂粉乳を含むＴＢＳ（１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ，　１５０ｍＭ　ＮａＣｌ　ｐＨ７．５）に浸し４℃で一晩振盪することによって非特異反応を抑制した。このフィルターを５００倍希釈した患犬血清と室温で２～３時間反応させた。
　上記患犬血清としては、乳癌の患犬より採取した血清を用いた。これらの血清は－８０℃で保存し、使用直前に前処理を行った。血清の前処理方法は、以下の方法による。すなわち、外来遺伝子を挿入していないλ　ＺＡＰ　Ｅｘｐｒｅｓｓファージを宿主大腸菌（ＸＬ１－Ｂｌｕｒｅ　ＭＲＦ’）に感染させた後、ＮＺＹプレート培地上で３７℃、一晩培養した。次いで０．５Ｍ　ＮａＣｌを含む０．２Ｍ　ＮａＨＣＯ３　ｐＨ８．３のバッファーをプレートに加え、４℃で１５時間静置後、上清を大腸菌／ファージ抽出液として回収した。次に、回収した大腸菌／ファージ抽出液をＮＨＳ－カラム（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ　Ｂｉｏ－Ｓｃｉｅｎｃｅ社製）に通液して、大腸菌・ファージ由来のタンパク質を固定化した。このタンパク固定化カラムに患犬血清を通液・反応させ、大腸菌及びファージに吸着する抗体を血清から取り除いた。カラムを素通りした血清画分は、０．５％脱脂粉乳を含むＴＢＳにて５００倍希釈し、これをイムノスクリーニング材料とした。
　かかる処理血清と上記融合タンパク質をブロットしたメンブレンをＴＢＳ－Ｔ（０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０／ＴＢＳ）にて４回洗浄を行った後、二次抗体として０．５％脱脂粉乳を含むＴＢＳにて５０００倍希釈を行ったヤギ抗イヌＩｇＧ（Ｇｏａｔ　ａｎｔｉ　Ｄｏｇ　ＩｇＧ－ｈ＋Ｉ　ＨＲＰ　ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ：　ＢＥＴＨＹＬ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）を、室温１時間反応させ、ＮＢＴ／ＢＣＩＰ反応液（Ｒｏｃｈｅ社製）を用いた酵素発色反応により検出し、発色反応陽性部位に一致するコロニーをΦ９０×１５ｍｍのＮＺＹアガロースプレート上から採取し、ＳＭ緩衝液（１００ｍＭ　ＮａＣｌ、１０ｍＭ　ＭｇＣｌＳＯ４、５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、０．０１％ゼラチン　ｐＨ７．５）５００μｌに溶解させた。発色反応陽性コロニーが単一化するまで上記と同様の方法で、二次、三次スクリーニングを繰り返し、血清中のＩｇＧと反応する３０９４０個のファージクローンをスクリーニングして、５個の陽性クローンを単離した。
（３）単離抗原遺伝子の相同性検索
　上記方法により単離した５個の陽性クローンを塩基配列解析に供するため、ファージベクターからプラスミドベクターに転換する操作を行った。具体的には宿主大腸菌（ＸＬ１－Ｂｌｕｅ　ＭＲＦ’）を吸光度ＯＤ６００が１．０となるよう調製した溶液２００μｌと、精製したファージ溶液２５０μｌさらにＥｘＡｓｓｉｓｔ　ｈｅｌｐｅｒ　ｐｈａｇｅ（ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ社製）１μｌを混合した後３７℃で１５分間反応後、ＬＢ培地を３ｍｌ添加し３７℃で２．５～３時間培養を行い、直ちに７０℃の水浴にて２０分間保温した後、４℃、１０００×ｇ、１５分間遠心分離を行い上清をファージミド溶液として回収した。次いでファージミド宿主大腸菌（ＳＯＬＲ）を吸光度ＯＤ６００が１．０となるよう調製した溶液２００μｌと、精製したファージ溶液１０μｌを混合した後３７℃で１５分間反応させ、５０μｌをアンピシリン（終濃度５０μｇ／ｍｌ）含有ＬＢ寒天培地に播き３７℃一晩培養した。トランスフォームしたＳＯＬＲのシングルコロニーを採取し、アンピシリン（終濃度５０μｇ／ｍｌ）含有ＬＢ培地３７℃にて培養後、ＱＩＡＧＥＮ　ｐｌａｓｍｉｄ　Ｍｉｎｉｐｒｅｐ　Ｋｉｔ（キアゲン社製）を使って目的のインサートを持つプラスミドＤＮＡを精製した。
　精製したプラスミドは、配列番号３１に記載のＴ３プライマーと配列番号３２に記載のＴ７プライマーを用いて、プライマーウォーキング法によるインサート全長配列の解析を行った。このシークエンス解析により配列番号５，７，９，１１，１３に記載の遺伝子配列を取得した。この遺伝子の塩基配列及びアミノ酸配列（配列番号６，８，１０，１２，１４）を用いて、相同性検索プログラムＢＬＡＳＴサーチ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／）を行い既知遺伝子との相同性検索を行った結果、得られた５個の遺伝子全てがＣＡＰＲＩＮ－１をコードする遺伝子であることが判明した。５個の遺伝子間の配列同一性は、タンパク質に翻訳される領域において塩基配列１００％、アミノ酸配列９９％であった。この遺伝子のヒト相同因子をコードする遺伝子との配列同一性は、タンパク質に翻訳される領域において、塩基配列９４％、アミノ酸配列９８％であった。ヒト相同因子の塩基配列を配列番号１，３に、アミノ酸配列を配列番号２，４に示す。また、取得したイヌ遺伝子のウシ相同因子をコードする遺伝子との配列同一性は、タンパク質に翻訳される領域において、塩基配列９４％、アミノ酸配列９７％であった。ウシ相同因子の塩基配列を配列番号１５に、アミノ酸配列を配列番号１６に示す。なお、ヒト相同因子をコードする遺伝子とウシ相同因子をコードする遺伝子との配列同一性は、タンパク質に翻訳される領域において、塩基配列９４％、アミノ酸配列９３～９７％であった。また、取得したイヌ遺伝子のウマ相同因子をコードする遺伝子との配列同一性は、タンパク質に翻訳される領域において、塩基配列９３％、アミノ酸配列９７％であった。ウマ相同因子の塩基配列を配列番号１７に、アミノ酸配列を配列番号１８に示す。なお、ヒト相同因子をコードする遺伝子とウマ相同因子をコードする遺伝子との配列同一性は、タンパク質に翻訳される領域において、塩基配列９３％、アミノ酸配列９６％であった。また、取得したイヌ遺伝子のマウス相同因子をコードする遺伝子との配列同一性は、タンパク質に翻訳される領域において、塩基配列８７～８９％、アミノ酸配列９５～９７％であった。マウス相同因子の塩基配列を配列番号１９，２１，２３，２５，２７に、アミノ酸配列を配列番号２０，２２，２４，２６，２８に示す。なお、ヒト相同因子をコードする遺伝子とマウス相同因子をコードする遺伝子との配列同一性は、タンパク質に翻訳される領域において、塩基配列８９～９１％、アミノ酸配列９５～９６％であった。また、取得したイヌ遺伝子のニワトリ相同因子をコードする遺伝子との配列同一性は、タンパク質に翻訳される領域において、塩基配列８２％、アミノ酸配列８７％であった。ニワトリ相同因子の塩基配列を配列番号２９に、アミノ酸配列を配列番号３０に示す。なお、ヒト相同因子をコードする遺伝子とニワトリ相同因子をコードする遺伝子との配列同一性は、タンパク質に翻訳される領域において、塩基配列８１～８２％、アミノ酸配列８６％であった。
（４）各組織での遺伝子発現解析
　上記方法により得られた遺伝子に対しイヌ及びヒトの正常組織及び各種細胞株における発現をＲＴ－ＰＣＲ法により調べた。逆転写反応は以下の通り行なった。すなわち、各組織５０～１００ｍｇ及び各細胞株５～１０×１０６個の細胞からＴＲＩＺＯＬ試薬（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を用いて添付のプロトコールに従い全ＲＮＡを抽出した。この全ＲＮＡを用いてＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔ　Ｆｉｒｓｔ－Ｓｔｒａｎｄ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　Ｓｙｓｔｅｍ　ｆｏｒ　ＲＴ－ＰＣＲ（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）により添付のプロトコールに従いｃＤＮＡを合成した。ＰＣＲ反応は、取得した遺伝子特異的なプライマー（配列番号３３及び３４に記載）を用いて以下の通り行った。すなわち、逆転写反応により調製したサンプル０．２５μｌ、上記プライマーを各２μＭ、０．２ｍＭ各ｄＮＴＰ、０．６５ＵのＥｘＴａｑポリメラーゼ（宝酒造社製）となるように各試薬と添付バッファーを加え全量を２５μｌとし、Ｔｈｅｒｍａｌ　Ｃｙｃｌｅｒ（ＢＩＯ　ＲＡＤ社製）を用いて、９４℃－３０秒、６０℃－３０秒、７２℃－３０秒のサイクルを３０回繰り返して行った。なお、上記遺伝子特異的プライマーは、配列番号５の塩基配列（イヌＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子）中の２０６番～６３２番及び配列番号１の塩基配列（ヒトＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子）中の６９８番～１１２４番塩基の領域を増幅するものであった。比較対照のため、ＧＡＰＤＨ特異的なプライマー（配列番号３５及び３６に記載）も同時に用いた。その結果、図１に示すように、健常なイヌ組織では精巣に強い発現が見られ、一方イヌ乳癌及び腺癌組織で発現が見られた。さらに、取得した遺伝子のヒト相同因子の発現を併せて確認したところ、イヌＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子と同様、正常組織で発現が確認できたのは精巣のみだったが、癌細胞では乳癌、脳腫瘍、白血病、肺癌、食道癌細胞株など、多種類の癌細胞株で発現が検出され、特に多くの乳癌細胞株で発現が確認された。この結果から、ＣＡＰＲＩＮ－１は精巣以外の正常組織では発現が見られず、一方、多くの癌細胞で発現しており、特に乳癌細胞株に発現していることが確認された。
　なお、図１中、縦軸の参照番号１は、上記で同定した遺伝子の発現パターンを、参照番号２は、比較対照であるＧＡＰＤＨ遺伝子の発現パターンを示す。
（５）ＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するポリクローナル抗体の作製
　ＣＡＰＲＩＮ－１に結合する抗体を得るために、ＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチド（Ａｒｇ－Ａｓｎ－Ｌｅｕ－Ｇｌｕ－Ｌｙｓ－Ｌｙｓ－Ｌｙｓ－Ｇｌｙ－Ｌｙｓ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ａｓｐ－Ｔｙｒ－Ｇｌｎ（配列番号３７））を合成した。このペプチド１ｍｇを抗原として、等容量の不完全フロイントアジュバント（ＩＦＡ）溶液と混合し、これを２週間毎に４回、ウサギの皮下に投与を行った。その後血液を採取し、ポリクローナル抗体を含む抗血清を得た。さらにこの抗血清をプロテインＧ担体（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）を用いて精製し、ＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するポリクローナル抗体を得た。また、抗原を投与していないウサギの血清を上記と同様にしてプロテインＧ担体を用いて精製したものをコントロール抗体とした。
（６）癌細胞上での抗原タンパクの発現解析
　次にＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子の発現が多く確認された乳癌細胞株７種（ＭＤＡ－ＭＢ－１５７，　Ｔ４７Ｄ，　ＭＲＫ－ｎｕ－１，　ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖ，　ＢＴ２０，　ＳＫ－ＢＲ－３，　ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｔ）について、その細胞表面上にＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質が発現しているかどうかを調べた。上記で遺伝子発現が認められた各ヒト乳癌細胞株それぞれ１０６細胞を１．５ｍｌのミクロ遠心チューブにて遠心分離した。これに上記（５）で調製したＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するポリクローナル抗体２μｇ（５μｌ）を添加し、さらに９５μｌの０．１％牛胎児血清を含むＰＢＳで懸濁後、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄した後、５μｌのＦＩＴＣ標識ヤギ抗ラビットＩｇＧ抗体（サンタクルズ社製）及び９５μｌの０．１％　牛胎児血清（ＦＢＳ）を含むＰＢＳで懸濁し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄後、ベクトンディッキンソン株式会社のＦＡＣＳキャリバーにて蛍光強度を測定した。一方、上記と同様の操作を、ＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するポリクローナル抗体の代わりに上記（５）で調製したコントロール抗体を用いて行い、コントロールとした。その結果、抗ヒトＣＡＰＲＩＮ－１抗体を添加された細胞は、コントロールに比べて、いずれも蛍光強度が３０％以上強かった。具体的には、ＭＤＡ－ＭＢ－１５７が１８４％、Ｔ４７Ｄが２２１％、ＭＲＫ－ｎｕ－１が１１５％、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖが８２％、ＢＴ２０が３２％、ＳＫ－ＢＲ－３が２７９％、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｔが８０％の蛍光強度の増強を示した。このことから、上記ヒト癌細胞株の細胞膜表面上にＣＡＰＲＩＮ－１タンパクが発現していることが確認された。なお、上記蛍光強度の増強率は、各細胞における平均蛍光強度（ＭＦＩ値）の増加率にて表され、以下の計算式により算出した。
　平均蛍光強度の増加率（蛍光強度の増強率）（％）＝（（抗ヒトＣＡＰＲＩＮ－１抗体を反応させた細胞のＭＦＩ値）－（コントロールＭＦＩ値））÷（コントロールＭＦＩ値）×１００
（７）免疫組織化学染色
（７）－１　マウスおよびイヌ正常組織におけるＣＡＰＲＩＮ－１の発現
　マウス（Ｂａｌｂ／ｃ、雌）およびイヌ（ビーグル犬、雌）をエーテル麻酔下およびケタミン／イソフルラン麻酔下で放血させ、開腹後、各臓器（胃、肝臓、眼球、胸腺、筋肉、骨髄、子宮、小腸、食道、心臓、腎臓、唾液腺、大腸、乳腺、脳、肺、皮膚、副腎、卵巣、膵臓、脾臓、膀胱）をそれぞれＰＢＳの入った１０ｃｍディッシュに移した。ＰＢＳ中で各臓器を切り開き、４％　ｐａｒａｆｏｒｍａｌｄｅｈｙｄｅ（ＰＦＡ）を含む０．１Ｍ　リン酸緩衝液（ｐＨ７．４）で一晩還流固定した。還流液を捨て、ＰＢＳで各臓器の組織表面をすすぎ、１０％ショ糖を含むＰＢＳ溶液を５０ｍｌ容の遠心チューブに入れ、その中に各組織を入れて４℃で２時間ローターを用いて振とうした。２０％ショ糖を含むＰＢＳ溶液に入れ替え、４℃で組織が沈むまで静置後、３０％ショ糖を含むＰＢＳ溶液に入れ替え、４℃で組織が沈むまで静置した。組織を取り出し、必要な部分を手術用メスで切りだした。次に、ＯＣＴコンパウンド（Ｔｉｓｓｕｅ　Ｔｅｋ社製）をかけて組織表面になじませた後、クライオモルドに組織を配置した。ドライアイスの上にクライオモルドをおいて急速凍結させた後、クライオスタット（ＬＥＩＣＡ社製）を用いて１０～２０μｍに薄切し、スライドガラスごとヘアードライアーで３０分間風乾し、薄切組織がのったスライドガラス作製した。次にＰＢＳ－Ｔ（０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０を含む生理食塩水）を満たした染色瓶に入れて５分ごとにＰＢＳ－Ｔを入れ替える操作を３回行った。切片周囲の余分な水分をキムワイプでふき取り、ＤＡＫＯＰＥＮ（ＤＡＫＯ社製）で囲んだ後、ブロッキング液として、マウス組織はＭＯＭマウスＩｇブロッキング試薬（ＶＥＣＴＡＳＴＡＩＮ社製）を、イヌ組織は１０％ＦＢＳを含むＰＢＳ－Ｔ溶液をそれぞれのせ、モイストチャンバー上で室温で１時間静置した。次に、実施例４で作製した癌細胞表面に反応する、配列番号：７３の重鎖可変領域と配列番号：７７の軽鎖可変領域を有するＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体（モノクローナル抗体＃６）をブロッキング液で１０μｇ／ｍｌに調製した溶液をのせ、モイストチャンバー内で４℃下で一晩静置した。ＰＢＳ－Ｔで１０分間３回洗浄を行った後、ブロッキング液で２５０倍に希釈したＭＯＭビオチン標識抗ＩｇＧ抗体（ＶＥＣＴＡＳＴＡＩＮ社製）をのせ、モイストチャンバー内で室温で１時間静置した。ＰＢＳ－Ｔで１０分間３回洗浄を行った後、アビジンービオチンＡＢＣ試薬（ＶＥＣＴＡＳＴＡＩＮ社製）をのせ、モイストチャンバー内で室温で５分間静置した。ＰＢＳ－Ｔで１０分間３回洗浄を行った後、ＤＡＢ発色液（ＤＡＢ　１０ｍｇ＋３０％　Ｈ２Ｏ２　１０μｌ／０．０５Ｍ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ７．６）５０ｍｌ）をのせ、モイストチャンバー内で室温で３０分間静置した。蒸留水でリンスし、ヘマトキシリン試薬（ＤＡＫＯ社製）を載せて室温で１分間静置後、蒸留水でリンスした。７０％、８０％、９０％、９５％、１００％の各エタノール溶液に順番に１分間ずつ入れた後、キシレン中で一晩静置した。スライドガラスを取り出し、Ｇｌｙｃｅｒｇｅｌ　Ｍｏｕｎｔｉｎｇ　Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＡＫＯ社製）で封入後、観察を行った。その結果、ＣＡＰＲＩＮ－１は、唾液腺、腎臓、結腸、胃の各組織において細胞内で僅かに発現が認められたが、細胞表面での発現は認められず、また、その他の臓器由来の組織では全く発現が認められなかった。なお、本結果は、配列番号：１０３の重鎖可変領域と配列番号：１０７の軽鎖可変領域を有するＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体（モノクローナル抗体＃９）を用いた場合も同様であった。
（７）－２　イヌ乳癌組織におけるＣＡＰＲＩＮ－１の発現
　病理診断で悪性乳癌と診断されたイヌの凍結された乳癌組織１０８検体を用いて、上述と同様の方法で凍結切片スライド作製および実施例４で作製したモノクローナル抗体＃６を用いた免疫組織化学染色を行った。その結果、ＣＡＰＲＩＮ－１は１０８検体中１００検体（９２．５％）で発現が確認され、特に異型度の高い癌細胞表面に強く発現していた。なお、本結果は、実施例４で作製したモノクローナル抗体＃９を用いた場合も同様であった。
（７）－３　ヒト乳癌組織におけるＣＡＰＲＩＮ－１の発現
　パラフィン包埋されたヒト乳癌組織アレイ（ＢＩＯＭＡＸ社製）の乳癌組織１８８検体を用いて、免疫組織化学染色を行った。ヒト乳癌組織アレイを６０℃で３時間処理後、キシレンを満たした染色瓶に入れて５分ごとにキシレンを入れ替える操作を３回行った。次にキシレンの代わりにエタノールおよびＰＢＳ－Ｔで同様の操作を行った。０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０を含む１０ｍＭ　クエン酸緩衝液（ｐＨ６．０）を満たした染色瓶にヒト乳癌組織アレイを入れ、１２５℃で５分間処理後、室温で４０分以上静置した。切片周囲の余分な水分をキムワイプでふき取り、ＤＡＫＯＰＥＮで囲み、Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ　Ｂｌｏｃｋ（ＤＡＫＯ社製）を適量滴下した。室温で５分間静置後、ＰＢＳ－Ｔを満たした染色瓶に入れて５分ごとにＰＢＳ－Ｔを入れ替える操作を３回行った。ブロッキング液として、１０％ＦＢＳを含むＰＢＳ－Ｔ溶液をのせ、モイストチャンバー内で室温で１時間静置した。次に実施例４で作製した癌細胞表面に反応するモノクローナル抗体＃６を５％ＦＢＳを含むＰＢＳ－Ｔ溶液で１０μｇ／ｍｌに調製した溶液をのせ、モイストチャンバー内で４℃で一晩静置し、ＰＢＳ－Ｔで１０分間３回洗浄を行った後、Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ　Ｌａｂｅｌｌｅｄ　Ｐｏｌｙｍｅｒ　Ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ（ＤＡＫＯ社製）適量滴下し、モイストチャンバー内で室温で３０分間静置した。ＰＢＳ－Ｔで１０分間３回洗浄を行った後、ＤＡＢ発色液（ＤＡＫＯ社製）をのせ、室温で１０分程度静置した後、発色液を捨て、ＰＢＳ－Ｔで１０分間３回洗浄を行った後、蒸留水でリンスし、７０％、８０％、９０％、９５％、１００％の各エタノール溶液に順番に１分間ずつ入れた後、キシレン中で一晩静置した。スライドガラスを取り出し、Ｇｌｙｃｅｒｇｅｌ　Ｍｏｕｎｔｉｎｇ　Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＡＫＯ社製）で封入後、観察を行った。その結果、ＣＡＰＲＩＮ－１は全乳癌組織１８８検体の内、１３８検体（７３％）で強い発現が認められた。なお、本結果は、実施例４で作製したモノクローナル抗体＃９を用いた場合も同様であった。
（７）－４　ヒト悪性脳腫瘍におけるＣＡＰＲＩＮ－１の発現
　パラフィン包埋されたヒト悪性脳腫瘍組織アレイ（ＢＩＯＭＡＸ社製）の悪性脳腫瘍組織２４７検体を用いて、上述（７）－３と同様の方法で実施例４で作製したモノクローナル抗体＃６を用いた免疫組織化学染色を行った。その結果、ＣＡＰＲＩＮ－１は全悪性脳腫瘍組織２４７検体の内、２２７検体（９２％）で強い発現が認められた。なお、本結果は、実施例４で作製したモノクローナル抗体＃９を用いた場合も同様であった。
（７）－５　ヒト乳癌転移リンパ節におけるＣＡＰＲＩＮ－１の発現
　パラフィン包埋されたヒト乳癌転移リンパ節組織アレイ（ＢＩＯＭＡＸ社製）の乳癌転移リンパ節組織１５０検体を用いて、上述（７）－３と同様の方法で実施例４で作製したモノクローナル抗体＃６を用いた免疫組織化学染色を行った。その結果、ＣＡＰＲＩＮ－１は全乳癌転移リンパ節組織１５０検体の内、１３６検体（９０％）で強い発現が認められた。すなわち、乳癌から転移した癌組織においてもＣＡＰＲＩＮ－１は強く発現することが判った。なお、本結果は、実施例４で作製したモノクローナル抗体＃９を用いた場合も同様であった。
実施例２　ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体の癌細胞に対する抗腫瘍効果（ＡＤＣＣ活性）
　次にＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体が、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する腫瘍細胞を障害することができるかどうかを検討した。実施例１で調製したヒトＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するポリクローナル抗体を用いて評価を行った。ＣＡＰＲＩＮ－１の発現が確認されている２種類のヒト乳癌細胞株、Ｔ４７Ｄ及びＭＤＡ－ＭＢ－１５７をそれぞれ１０６個５０ｍｌ容の遠心チューブに集め、１００μＣｉのクロミウム５１を加え３７℃で２時間インキュベートした。その後１０％牛胎児血清を含むＲＰＭＩ１６４０培地で３回洗浄し、９６穴Ｖ底プレート１穴あたり１０３個ずつ添加した。これに、上記ヒトＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するポリクローナル抗体をそれぞれ１μｇずつ添加し、さらにウサギの末梢血から分離したリンパ球をそれぞれ２×１０５個ずつ添加して、３７℃、５％　ＣＯ２の条件下で４時間培養した。培養後、障害を受けた腫瘍細胞から放出される培養上清中のクロミウム（Ｃｒ）５１の量を測定し、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するポリクローナル抗体による各癌細胞に対するＡＤＣＣ活性を算出した。その結果、Ｔ４７Ｄ及びＭＤＡ－ＭＢ－１５７それぞれに対して、それぞれ１５．４％及び１７．３％のＡＤＣＣ活性が確認された（図２及び図３参照）。一方、抗原が免疫されていないウサギの末梢血から調製したコントロール抗体（実施例１（５））を用いて同様の操作を行った場合、及び抗体を添加しなかった場合には、活性はほとんど認められなかった（図２及び３参照）。従って、ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体を用いたＡＤＣＣ活性により、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する腫瘍細胞を障害することができることが明らかになった。
　なお、細胞障害活性は、上記のように、本発明で用いられるＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体、マウスリンパ球及びクロミウム５１を取り込ませた１０３個の各白血病細胞株を混合して４時間培養し、培養後培地に放出されたクロミウム５１の量を測定して、以下計算式＊により算出した各白血病細胞株に対する細胞障害活性を示した結果である。
　＊式：細胞障害活性（％）＝ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体及びマウスリンパ球を加えた際のＴ４７Ｄ及びＭＤＡ－ＭＢ－１５７からのクロミウム５１遊離量÷１Ｎ塩酸を加えた標的細胞からのクロミウム５１遊離量×１００。
実施例３　ヒト新規癌抗原タンパクの作製
（１）組換えタンパク質の作製
　実施例１で取得した配列番号１の遺伝子を基に、以下の方法にてヒト相同遺伝子の組換えタンパク質を作製した。ＰＣＲは、実施例１で作製した各種組織・細胞ｃＤＮＡよりＲＴ－ＰＣＲ法による発現が確認できたｃＤＮＡを１μｌ、ＳａｃＩおよびＸｈｏＩ制限酵素切断配列を含む２種類のプライマー（配列番号３８および３９に記載）を各０．４μＭ，　０．２ｍＭ　ｄＮＴＰ，　１．２５ＵのＰｒｉｍｅＳＴＡＲ　ＨＳポリメラーゼ（宝酒造社製）となるように各試薬と添付バッファーを加え全量を５０μｌとし、Ｔｈｅｒｍａｌ　Ｃｙｃｌｅｒ（ＢＩＯ　ＲＡＤ社製）を用いて、９８℃－１０秒、６８℃－２．５分のサイクルを３０回繰り返すことにより行った。なお、上記２種類のプライマーは、配列番号２のアミノ酸配列全長をコードする領域を増幅するものであった。ＰＣＲ後、増幅されたＤＮＡを１％アガロースゲルにて電気泳動し、ＱＩＡｑｕｉｃｋ　Ｇｅｌ　Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて約２．１ｋｂｐのＤＮＡ断片を精製した。
　精製したＤＮＡ断片をクローニングベクターＰＣＲ－Ｂｌｕｎｔ（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）にライゲーションした。これを大腸菌に形質転換後プラスミドを回収し、増幅された遺伝子断片が目的配列と一致することをシークエンスで確認した。目的配列と一致したプラスミドをＳａｃＩおよびＸｈｏＩ制限酵素で処理し、ＱＩＡｑｕｉｃｋ　Ｇｅｌ　Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　Ｋｉｔで精製後、目的遺伝子配列を、ＳａｃＩ、ＸｈｏＩ制限酵素で処理した大腸菌用発現ベクターｐＥＴ３０ａ（Ｎｏｖａｇｅｎ社製）に挿入した。このベクターの使用によりＨｉｓタグ融合型の組換えタンパク質が産生できる。このプラスミドを発現用大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）に形質転換し、１ｍＭ　ＩＰＴＧによる発現誘導を行うことで目的タンパク質を大腸菌内で発現させた
（２）組換えタンパク質の精製
　上記で得られた、配列番号１の遺伝子を発現するそれぞれの組換え大腸菌を３０μｇ／ｍｌ　カナマイシン含有ＬＢ培地にて６００ｎｍでの吸光度が０．７付近になるまで３７℃で培養後、イソプロピル－β－Ｄ－１－チオガラクトピラノシド終濃度が１ｍＭとなるよう添加し、３７℃で４時間培養した。その後４８００ｒｐｍで１０分間遠心し集菌した。この菌体ペレットをリン酸緩衝化生理食塩水に懸濁し、さらに４８００ｒｐｍで１０分間遠心し菌体の洗浄を行った。
　この菌体をリン酸緩衝化生理食塩水に懸濁し、氷上にて超音波破砕を行った。大腸菌超音波破砕液を６０００ｒｐｍで２０分間遠心分離し、得られた上清を可溶性画分、沈殿物を不溶性画分とした。
　可溶性画分を、定法に従って調整したニッケルキレートカラム（担体：Ｃｈｅｌａｔｉｎｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（商標）Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ（ＧＥ　ＨｅａｌｔｈＣａｒｅ社）、カラム容量５ｍｌ、平衡化緩衝液５０ｍＭ塩酸緩衝液（ｐＨ８．０））に添加した。未吸着画分をカラム容量の１０倍量の５０ｍＭ塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）と２０ｍＭイミダゾール含有２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ８．０）にて洗浄操作を行った後、直ちに、１００ｍＭイミダゾール含有２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ８．０）にて６ベッド溶出した。クマシー染色によって目的タンパク質の溶出を確認した１００ｍＭイミダゾール含有２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ８．０）溶出画分を強陰イオン交換カラム（担体：Ｑ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（商標）Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ（ＧＥ　ＨｅａｌｔｈＣａｒｅ社）、カラム容量５ｍｌ、平衡化緩衝液としての２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ８．０））に添加した。未吸着画分をカラム容量の１０倍量の２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）と２００ｍＭ塩化ナトリウム含有２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）にて洗浄操作を行った後、直ちに、４００ｍＭ塩化ナトリウム含有２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）にて５ベッド溶出を行い、配列番号２に示されるアミノ酸配列を有する各タンパク質の精製画分を得た。
　上記方法によって得られた各精製標品のうち、２００μｌを１ｍｌの反応用緩衝液（２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－Ｈｃｌ，　５０ｍＭ　ＮａＣｌ，　２ｍＭ　ＣａＣｌ２　ｐＨ７．４）に分注を行った後、エンテロキナーゼ（Ｎｏｖａｇｅｎ社製）２μｌ添加した後、室温にて一晩静置、反応を行い、Ｈｉｓタグを切断し、Ｅｎｔｅｒｏｋｉｎａｓｅ　Ｃｌｅａｖａｇｅ　Ｃａｐｔｕｒｅ　Ｋｉｔ（Ｎｏｖａｇｅｎ社製）を用いて添付プロトコールに従って精製を行った。次に、上記方法によって得られた精製標品１．２ｍｌを、限外ろ過ＮＡＮＯＳＥＰ　１０Ｋ　ＯＭＥＧＡ（ＰＡＬＬ社製）を用いて、生理用リン酸緩衝液（日水製薬社製）置換した後、ＨＴタフリンアクロディスク０．２２μｍ（ＰＡＬＬ社製）にて無菌ろ過を行い、これを以下の実験に用いた。
実施例４　ＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体の作製
　実施例３で調製した配列番号２に示される、抗原タンパク質（ヒトＣＡＰＲＩＮ－１）１００μｇを等量のＭＰＬ＋ＴＤＭアジュバント（シグマ社製）と混合し、これをマウス１匹当たりの抗原溶液とした。抗原溶液を６週齢のＢａｌｂ／ｃｃマウス（日本ＳＬＣ社製）の腹腔内に投与後、１週間毎にさらに３回および２４回投与を行い免疫を完了した。最後の免疫から３日後に摘出したそれぞれの脾臓を滅菌した２枚のスライドガラスに挟んで擦り潰し、ＰＢＳ（－）（日水社製）を用いて洗浄し１５００ｒｐｍで１０分間遠心して上清を除去する操作を３回繰り返して脾臓細胞を得た。得られた脾臓細胞とマウスミエローマ細胞ＳＰ２／０（ＡＴＣＣから購入）とを１０：１の比率にて混和し、そこに３７℃に加温した１０％　ＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地２００μｌとＰＥＧ１５００（ベーリンガー社製）８００μｌを混和して調製したＰＥＧ溶液を加えて５分間静置して細胞融合を行った。１７００ｒｐｍで５分間遠心し、上清を除去後、Ｇｉｂｃｏ社製のＨＡＴ溶液を２％当量加えた１５％　ＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地（ＨＡＴ選択培地）１５０ｍｌで細胞を懸濁し、９６穴プレート（ヌンク社製）の１ウェル当たり１００μｌずつ、プレート１５枚に播種した。７日間、３７℃、５％　ＣＯ２の条件で培養することで、脾臓細胞とミエローマ細胞が融合したハイブリドーマを得た。
　作製したハイブリドーマが産生する抗体のＣＡＰＲＩＮ－１タンパクに対する結合親和性を指標にハイブリドーマを選抜した。実施例３で調製したＣＡＰＲＩＮ－１タンパク溶液１μｇ／ｍｌを９６穴プレート１ウェル当たりに１００μｌ添加し、４℃にて１８時間静置した。各ウェルをＰＢＳ－Ｔで３回洗浄後、０．５％　Ｂｏｖｉｎｅ　Ｓｅｒｕｍ　Ａｌｂｕｍｉｎ（ＢＳＡ）溶液（シグマ社製）を１ウェル当たり４００μｌ添加して室温にて３時間静置した。溶液を除いて、１ウェル当たり４００μｌのＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄後、上記で得られたハイブリドーマの各培養上清を１ウェル当たり１００μｌ添加し、室温にて２時間静置した。ＰＢＳ－Ｔで各ウェルを３回洗浄した後、ＰＢＳで５０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体（インビトロジェン社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して室温にて１時間静置した。ＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄した後、ＴＭＢ基質溶液（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して１５～３０分間静置して発色反応を行った。発色後、１規定硫酸を１ウェル当たり１００μｌ添加して反応を停止させ吸光度計を用いて４５０ｎｍと５９５ｎｍの吸光度値を測定した。その結果、吸光度値が高かった抗体を産生するハイブリドーマを複数個選抜した。
　選抜したハイブリドーマを９６穴プレート１ウェル当たりに０．５個となるようにプレートに添加し培養した。１週間後、ウェル中に単一のコロニーを形成しているハイブリドーマが観察された。それらウェルの細胞をさらに培養して、クローニングされたハイブリドーマが産生する抗体のＣＡＰＲＩＮ－１タンパクに対する結合親和性を指標にハイブリドーマを選抜した。実施例３で調製したＣＡＰＲＩＮ－１タンパク溶液１μｇ／ｍｌを９６穴プレート１ウェル当たりに１００μｌ添加し、４℃にて１８時間静置した。各ウェルをＰＢＳ－Ｔで３回洗浄後、０．５％　ＢＳＡ溶液を１ウェル当たり４００μｌ添加して室温にて３時間静置した。溶液を除いて、１ウェル当たり４００μｌのＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄後、上記で得られたハイブリドーマの各培養上清を１ウェル当たり１００μｌ添加し、室温にて２時間静置した。ＰＢＳ－Ｔで各ウェルを３回洗浄後、ＰＢＳで５０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体（インビトロジェン社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して室温にて１時間静置した。ＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄した後、ＴＭＢ基質溶液（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して１５～３０分間静置して発色反応を行った。発色後、１規定硫酸を１ウェル当たり１００μｌ添加して反応を停止させ吸光度計を用いて４５０ｎｍと５９５ｎｍの吸光度値を測定した。その結果、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパクに反応性を示すモノクローナル抗体を産生する１５０個のハイブリドーマ株を得た。
　次にそれらモノクローナル抗体の内、ＣＡＰＲＩＮ－１が発現する乳癌細胞の細胞表面に反応性を示すものを選抜した。具体的には、１０６個のヒト乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖを１．５ｍｌ容のミクロ遠心チューブにて遠心分離し、これに上記各ハイブリドーマの培養上清１００μｌを添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄した後、０．１％　ＦＢＳを含むＰＢＳで５００倍希釈したＦＩＴＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体（インビトロジェン社製）を添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄後、ベクトンディッキンソン株式会社のＦＡＣＳキャリバーにて蛍光強度を測定した。一方、上記と同様の操作を、抗体の代わりに何も処理していない６週齢のＢａｌｂ／ｃマウスの血清をハイブリドーマ培養用培地で５００倍希釈したものを用いて行い、コントロールとした。その結果、コントロールに比べて蛍光強度が強い、すなわち、乳癌細胞の細胞表面に反応するモノクローナル抗体１１個（＃１～＃１１）を選抜した。
実施例５　選抜した抗体の特徴付け
（１）抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体の可変領域遺伝子のクローニング
　実施例４で選抜した１１個のモノクローナル抗体をそれぞれ産生する各ハイブリドーマ株から、ｍＲＮＡを抽出し、マウスＦＲ１由来配列およびマウスＦＲ４由来の配列に特異的なプライマーを使用したＲＴ－ＰＣＲ法により、全ての抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体の重鎖可変（ＶＨ）領域および軽鎖可変（ＶＬ）領域の遺伝子を取得した。配列決定のために、それら遺伝子をｐＣＲ２．１ベクター（インビトロジェン社製）にクローニングした。
（１）－１　ＲＴ－ＰＣＲ
　１０６個の各ハイブリドーマ株から、ｍＲＮＡ　ｍｉｃｒｏ　ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｋｉｔ（ＧＥヘルスケア社製）を用いてｍＲＮＡを調製し、ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩ　１ｓｔ　ｓｔｒａｎｄ　ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　ｋｉｔ（インビトロジェン社製）を用いて、得られたｍＲＮＡを逆転写してｃＤＮＡを合成した。これら操作は各キットの添付プロトコールに従って行った。
　得られたｃＤＮＡを用いて、ＰＣＲ法により抗体遺伝子の増幅を行った。
　ＶＨ領域の遺伝子取得のために、マウス重鎖ＦＲ１配列に特異的なプライマー（配列番号１３０）およびマウス重鎖ＦＲ４配列に特異的なプライマー（配列番号１３１）を使用した。またＶＬ領域の遺伝子取得のために、マウス軽鎖ＦＲ１配列に特異的なプライマー（配列番号１３２）およびマウス軽鎖ＦＲ４に特異的なプライマー（配列番号１３３）を使用した。これらプライマーはＪｏｎｅｓ，　Ｓ．Ｔ．　ａｎｄ　Ｂｅｎｄｉｎｇ，　Ｍ．Ｍ．　Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　９，　８８－８９　（１９９１）を参考に設計した。ＰＣＲは、Ｅｘ－ｔａｑ（タカラバイオ社製）を用いた。１０×ＥＸ　Ｔａｑ　Ｂｕｆｆｅｒ　５μｌ、ｄＮＴＰ　Ｍｉｘｔｕｒｅ（２．５ｍＭ）４μｌ、プライマー（１．０μＭ）各２μｌ、Ｅｘ　Ｔａｑ（５Ｕ／μｌ）０．２５μｌにｃＤＮＡサンプルを加え、滅菌水により総量５０μｌとした。９４℃で２分処理後、変性９４℃１分、アニーリング５８℃３０秒、伸長反応７２℃１分の組み合わせで３０サイクルの条件で行った。
（１）－２　クローニング
　上記で得られた各ＰＣＲ産物を用いてアガロースゲルにて電気泳動を行い、ＶＨ領域およびＶＬ領域それぞれのＤＮＡバンドを切り出した。ＤＮＡ断片はＱＩＡｑｕｉｃｋ　Ｇｅｌ　ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｋｉｔ（キアゲン社製）を用いてその添付プロトコールに従って行った。精製した各ＤＮＡはＴＡクローニングキット（インビトロジェン社製）を用いてｐＣＲ２．１ベクターにクローニングした。連結したベクターをＤＨ５ａコンピテントセル（ＴＯＹＯＢＯ社製）に定法に従い形質転換を行った。各形質転換体それぞれ１０クローンを培地（１００μｇ／ｍｌアンピシリン）で３７℃一晩培養後、各プラスミドＤＮＡをＱｉａｓｐｉｎ　Ｍｉｎｉｐｒｅｐ　ｋｉｔ（キアゲン社製）を用いて精製した。
（１）－３　配列決定
　上記で得られた各プラスミド中のＶＨ領域およびＶＬ領域の遺伝子配列解析は、Ｍ１３フォワードプライマー（配列番号１３４）およびＭ１３リバースプライマー（配列番号１３５）を用いて、蛍光シーケンサー（ＡＢＩ社製ＤＮＡシーケンサー３１３０ＸＬ）により、ＡＢＩ社製のビッグダイターミネーターＶｅｒ３．１サイクルシーケンシングキットを用いて、その添付プロトコールに従い行った。その結果、各々の遺伝子配列が決定された（各々１０クローンで一致）。
　得られたモノクローナル抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列を配列番号４３、配列番号７３、配列番号８３、配列番号９３、配列番号１０３、配列番号１１３、および配列番号１２３に、軽鎖可変領域のアミノ酸配列を配列番号４７、配列番号５３、配列番号５８、配列番号６３、配列番号６８、配列番号７７、配列番号８７、配列番号９７、配列番号１０７，配列番号１１７および配列番号１２７に示す。
　すなわち、モノクローナル抗体＃１は配列番号：４３の重鎖可変領域と配列番号：４７の軽鎖可変領域から成り、＃２は配列番号：４３の重鎖可変領域と配列番号：５３の軽鎖可変領域から成り、＃３は配列番号：４３の重鎖可変領域と配列番号：５８の軽鎖可変領域から成り、＃４は配列番号：４３の重鎖可変領域と配列番号：６３の軽鎖可変領域から成り、＃５は配列番号：４３の重鎖可変領域と配列番号：６８の軽鎖可変領域から成り、＃６は配列番号：７３の重鎖可変領域と配列番号：７７の軽鎖可変領域から成り、＃７は配列番号：８３の重鎖可変領域と配列番号：８７の軽鎖可変領域から成り、＃８は配列番号：９３の重鎖可変領域と配列番号：９７の軽鎖可変領域から成り、＃９は配列番号：１０３の重鎖可変領域と配列番号：１０７の軽鎖可変領域から成り、＃１０は配列番号：１１３の重鎖可変領域と配列番号：１１７の軽鎖可変領域から成り、＃１１は配列番号：１２３の重鎖可変領域と配列番号：１２７の軽鎖可変領域から成る。
（２）取得したモノクローナル抗体を用いた各種癌細胞表面でのＣＡＰＲＩＮ－１の発現
次にＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子の発現が確認された乳癌細胞株７種（ＭＤＡ－ＭＢ－１５７，Ｔ４７Ｄ，ＭＲＫ－ｎｕ－１，ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖ，ＢＴ２０，ＳＫ－ＢＲ－３，ＤＡ－ＭＢ－２３１Ｔ）およびその他の乳癌細胞株３種（ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｃ，ＭＣＦ－７，ＺＲ７５－１）、グリオーマ細胞株６種（Ｔ９８Ｇ，ＳＮＢ１９，Ｕ２５１，Ｕ８７Ｇ）、腎臓癌細胞株３種（Ｃａｋｉ－１，Ｃａｋｉ２，Ａ４９８）、胃癌細胞株１種（ＭＫＮ４５）、大腸癌細胞株１種（Ｃａｃｏ２）、肺癌細胞株３種（Ａ５４９、ＱＧ５６、ＰＣ８）、白血病細胞株３種（Ｎａｍａｌｗａ、ＢＤＣＭ、ＲＰＩ１７８８）について、その細胞表面上にＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質が発現しているかどうかを調べた。各細胞株それぞれ１０６細胞を１．５ｍｌ容のミクロ遠心チューブにて遠心分離した。これに実施例４で作製した癌細胞表面に反応する、＃１から＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体を含むハイブリドーマ上清（１００μｌ）を添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄した後、０．１％　ＦＢＳを含むＰＢＳで５００倍希釈したＦＩＴＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体（インビトロジェン社製）で懸濁し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄後、ベクトンディッキンソン株式会社のＦＡＣＳキャリバーにて蛍光強度を測定した。一方、上記と同様の操作を、＃１から＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体を含むハイブリドーマ上清の代わりに上記（５）で調製したコントロール抗体を用いて行い、コントロールとした。その結果、＃１～＃１１のモノクローナル抗体を添加された細胞は、コントロールに比べて、いずれも蛍光強度が３０％以上強かった。具体的例を挙げると、＃９のモノクローナル抗体を用いた場合、ＭＤＡ－ＭＢ－１５７が２１１％、Ｔ４７Ｄが１４５％、ＭＲＫ－ｎｕ－１が１２３％、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖが２５１％、ＢＴ２０が１６８％、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｔが９４％の蛍光強度の増強を示した。このことから、上記ヒト癌細胞株の細胞膜表面上にＣＡＰＲＩＮ－１タンパクが発現していることが確認された。なお、上記蛍光強度の増強率は、各細胞における平均蛍光強度（ＭＦＩ値）の増加率にて表され、以下の計算式により算出した。
　平均蛍光強度の増加率（蛍光強度の増強率）（％）＝（（抗ヒトＣＡＰＲＩＮ－１抗体を反応させた細胞のＭＦＩ値）－（コントロールＭＦＩ値））÷（コントロールＭＦＩ値）×１００
（３）ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体の癌細胞に対する抗腫瘍効果（ＡＤＣＣ活性）
　上記で選抜した＃１～＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体の癌細胞に対する細胞障害活性（ＡＤＣＣ活性）を評価した。＃１～＃１１のモノクローナル抗体を産生する各ハイブリドーマをハイブリドーマＳＦＭ（インビトロジェン社製）培地を用いて培養し、得られた上清をＨｉｔｒａｐ　ＰｒｏｔｅｉｎＡ　ＳｅｐｈａｒｏｓｅＦＦ（ＧＥヘルスケア社製）を用いて精製し、ＰＢＳ（－）に置換して０．２２μｍのフィルター（ミリポア社製）で濾過したものを活性測定用の抗体として用いた。１０６個のヒト乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－１５７を５０ｍｌ容の遠心チューブに集め、１００μＣｉのクロミウム５１を加え３７℃で２時間インキュベートした。その後１０％ＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地で３回洗浄し、９６穴Ｖ底プレート１穴あたり１０３個ずつ添加して標的細胞とした。これに、上記精製抗体をそれぞれ１μｇ添加し、さらにマウス脾臓から分離したマウスリンパ球を２×１０５個添加して、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で４時間培養した。培養後、障害を受けた腫瘍細胞から放出される培養上清中のクロミウム５１の量を測定し、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体による癌細胞に対するＡＤＣＣ活性を算出した。その結果、＃１～＃１１の全てのモノクローナル抗体が、ＭＤＡ－ＭＢ－１５７に対して、２０％以上のＡＤＣＣ活性を示した。具体的には、例えば、＃１は２２．１％、＃２は２９．１％、＃６は３０．２％、＃９は３２．４％の細胞障害活性が得られた（図４参照）。一方、実施例４で作製した、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク自体には反応するが、癌細胞の細胞表面に反応しないモノクローナル抗体を用いて同様の操作を行った場合、細胞障害活性は認められなかった（図４参照）。以上の結果より、取得した抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体（＃１～＃１１は、ＡＤＣＣ活性によってＣＡＰＲＩＮ－１を発現する癌細胞を障害することが示された。
　（４）ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体の癌細胞に対する抗腫瘍効果（ＣＤＣ活性）
　上記で選抜した＃１～＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体の癌細胞に対する細胞障害活性（ＣＤＣ活性）を評価した。ウサギから採血した血液をエッペンドルフチューブに入れ、室温で６０分間、静置した後３０００ｒｐｍで５分間、遠心分離することで、ＣＤＣ活性測定用の血清を調製した。ヒト乳癌細胞であるＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖを１０５個を５０ｍｌ容の遠心チューブに集め、１００μＣｉのクロミウム５１を加え３７℃で２時間インキュベートした後、１０％ＦＢＳを含むＲＰＭＩ培地で３回洗浄した。その後上記で調製したウサギ血清を５０％含むＲＰＭＩ培地で懸濁し、９６穴Ｖ底プレート１穴あたり１０３個ずつ添加した。これに上述（３）で得た＃１～＃１１のモノクローナル抗体をそれぞれ１μｇずつ添加して、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で４時間培養した。培養後、障害を受けた腫瘍細胞から放出される培養上清中のクロミウム５１の量を測定し、ハイブリドーマ上清中の抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体によるＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖに対するＣＤＣ活性を算出した。その結果、＃１～＃１１の全てのモノクローナル抗体が、３０％以上のＣＤＣ活性を示した。一方、実施例４で作製した、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク自体には反応するが、癌細胞の細胞表面に反応しないモノクローナル抗体を用いて同様の操作を行った場合、細胞障害活性は認められなかった。従って、ＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体（＃１～＃１１）は、ＣＤＣ活性によっても、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する腫瘍細胞を障害することができることが明らかになった。
実施例６　マウス生体内における抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体の抗腫瘍効果
　次に、取得した＃１～＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体の担癌マウス生体内における抗腫瘍効果を評価した。使用した抗体は上記と同様に各ハイブリドーマの培養上清をカラム精製したものを用いた。
　ＣＡＰＲＩＮ－１を発現するマウス由来の癌細胞株を移植した担癌マウスを用いて、＃１～＃１１ＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体の抗腫瘍効果を検討した。７０匹のＢａｌｂ／ｃマウス（日本ＳＬＣ社製）の背部皮下に、１匹あたり１０６個のＣＴ２６細胞（ＡＴＣＣより購入）を移植し、腫瘍が直径７ｍｍ程度の大きさになるまで成長させた。その内、６０匹の担癌マウスに対して、＃１～＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体および実施例４で作製した、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク自体には反応するが、癌細胞の細胞表面に反応しないモノクローナル抗体１種を１匹あたり３００μｇ（３００μｌ）ずつ、１抗体につき５匹に腹腔内投与した。その後、２日間計３回、同量の各抗体を各担癌マウスの腹腔に投与し、毎日腫瘍の大きさを計測し、抗腫瘍効果を観察した。一方、残り１０匹の担癌マウスに対して、抗体の代わりにＰＢＳ（－）を投与し、これをコントロール群とした。抗腫瘍効果の観察の結果、＃１～＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体を投与した検討群は、腫瘍が抗体投与開始時の腫瘍体積を１００％とした場合に、４日目には５０％程度にまで退縮し、６日目には１０％程度、８日目には数％にまで腫瘍が退縮し、１１～１４日目までには腫瘍はほぼ完全に退縮した（図５参照）。一方、コントロール群では、４日目、６日目、８日目、１１日目にはそれぞれ、約２６０％，３５０％，５５０％，８００％にまで腫瘍が増大した（図５参照）。また、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク自体には反応するが、癌細胞の細胞表面に反応しないモノクローナル抗体を投与した群では、抗腫瘍効果は得られず、コントロール群と同様に腫瘍が増大した。この結果から、取得した＃１～＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する癌細胞に対して、生体内で強い抗腫瘍効果を発揮することが示された。なお、腫瘍の大きさは、長径×短径×短径×０．５の計算式を用いて、体積を算出した。
　さらに、マウス癌細胞株Ｎ１Ｅ細胞（ＡＴＣＣより購入）が移植された担癌マウス（Ｂａｌｂ／ｃ）に対して、＃１～＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体を上記と同様に投与した結果、抗体投与後１５日目には完全に腫瘍が退縮した。一方コントロール群では約９５０％にまで腫瘍は増大した（図６参照）。
実施例７　癌細胞の細胞表面に反応するＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体が結合するＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質中のペプチドの同定
　上記で取得した、癌細胞の細胞表面に反応する＃１～＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体を用いて、それらが認識するＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質中の部分配列の同定を行った。
　まず、ＰＢＳで１μｇ／μｌの濃度に溶解した組換えＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質溶液１００μｌに、終濃度が１０ｍＭになるようにＤＴＴ（Ｆｌｕｋａ社製）を添加し、９５℃、５分間反応させてＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質内のジスルフィド結合の還元を行い、次に終濃度２０ｍＭのヨードアセトアミド（和光純薬社製）を添加し、３７℃、遮光条件下にて３０分間チオール基のアルキル化反応を行った。得られた還元アルキル化ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質４０μｇに、＃１～＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体をそれぞれ５０μｇ添加し、２０ｍＭ　リン酸緩衝液（ｐＨ７．０）１ｍｌにメスアップして撹拌混合しながら４℃で一晩反応させた。
　次に、トリプシン（プロメガ社製）を終濃度０．２μｇとなるように添加し、３７℃１時間、２時間、４時間、１２時間反応させた後、予め１％ＢＳＡ（シグマ社製）を含むＰＢＳでブロッキングし、ＰＢＳで洗浄したプロテインＡ－ガラスビーズ（ＧＥ社製）と１ｍＭ　炭酸カルシウム、ＮＰ－４０緩衝液（２０ｍＭ　リン酸緩衝液（ｐＨ７．４）、５ｍＭ　ＥＤＴＡ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、１％ＮＰ－４０）中で混合し、それぞれ３０分間反応させた。
　反応液を２５ｍＭ　炭酸アンモニウム緩衝液（ｐＨ８．０）で洗浄した後、０．１％　ギ酸１００μｌを用いて抗原抗体複合体を溶出し、溶出液についてＱ－ＴＯＦ　Ｐｒｅｍｉｅｒ（Ｗａｔｅｒｓ－ＭｉｃｒｏＭａｓｓ社製）を用いてＬＣ－ＭＳ解析を行った。解析は機器に付属のプロトコルに従った。
　その結果、＃１～＃１１のＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体がいずれも認識するＣＡＰＲＩＮ－１の部分配列として、配列番号１３６のポリペプチドが同定された。さらに、モノクローナル抗体＃２～＃５、＃６～＃８および＃１０が認識する、上記配列番号１３６のポリペプチド中の部分配列として配列番号１３７のペプチドが同定され、さらにその部分配列ペプチドである配列番号１３８のペプチドをモノクローナル抗体＃２～＃５が認識することが判った。
　本発明の抗体は、癌の治療及び／又は予防のため有用である。
　本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願２００９－０８７２８５号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。また、本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
　配列番号３１～３９、配列番号１３０～１３５：プライマー

Claims (22)

  1. 　配列番号２～３０のうち偶数の配列番号で表されるいずれかのアミノ酸配列、又は該アミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列、を有するＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質、又は連続する７以上のアミノ酸を含むその断片、と免疫学的反応性を有する抗体又はそのフラグメントを有効成分として含むことを特徴とする、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物。
  2. 　前記ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の断片が、配列番号２～３０のうち配列番号６および配列番号１８を除く偶数の配列番号で表されるいずれかのアミノ酸配列中のアミノ酸残基番号５０－９８又はアミノ酸残基番号２３３－３０５の領域内の連続する７個以上のアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は該ポリペプチドを部分配列として含むポリペプチド、と免疫学的反応性を有する抗体又はそのフラグメントを有効成分として含むことを特徴とする、請求項１に記載の医薬組成物。
  3. 　配列番号３７又は配列番号１３６で表されるアミノ酸配列、又は該アミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列、を有するＣＡＰＲＩＮ－１の部分ポリペプチド、又は連続する７以上のアミノ酸を含むその断片、と免疫学的反応性を有する抗体又はそのフラグメントを有効成分として含むことを特徴とする、請求項１に記載の医薬組成物。
  4. 　前記癌が乳癌、脳腫瘍、白血病、リンパ腫、肺癌、食道癌もしくは大腸癌である、請求項１～３のいずれか１項に記載の組成物。
  5. 　前記抗体が、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体である、請求項１～４のいずれか１項に記載の医薬組成物。
  6. 　前記抗体が、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体又は二重特異性抗体である、請求項１～４のいずれか１項に記載の医薬組成物。
  7. 　配列番号３７又は配列番号１３６で表されるアミノ酸配列、又は該アミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列、を有するポリペプチドと免疫学的反応性を有する抗体。
  8. 　配列番号４０、４１及び４２を含む重鎖可変領域と配列番号４４、４５及び４６を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  9. 　配列番号４０，４１及び４２を含む重鎖可変領域と配列番号５０，５１及び５２を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  10. 　配列番号４０，４１及び４２を含む重鎖可変領域と配列番号５５，５６及び５７を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  11. 　配列番号４０，４１及び４２を含む重鎖可変領域と配列番号６０，６１及び６２を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  12. 　配列番号４０，４１及び４２を含む重鎖可変領域と配列番号６５，６６及び６７を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  13. 　配列番号７０，７１及び７２を含む重鎖可変領域と配列番号７４，７５及び７６を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  14. 　配列番号８０，８１及び８２を含む重鎖可変領域と配列番号８４，８５及び８６を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  15. 　配列番号９０，９１及び９２を含む重鎖可変領域と配列番号９４，９５及び９６を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  16. 　配列番号１００，１０１及び１０２を含む重鎖可変領域と配列番号１０４，１０５及び１０６を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  17. 　配列番号１１０，１１１及び１１２を含む重鎖可変領域と配列番号１１４，１１５及び１１６を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  18. 　配列番号１２０，１２１及び１２２を含む重鎖可変領域と配列番号１２４，１２５及び１２６を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する抗体。
  19. 　ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体又は二重特異性抗体である、請求項７～１７のいずれか１項に記載の抗体。
  20. 　請求項７～１８のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメントを有効成分として含むことを特徴とする、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物。
  21. 　配列番号２～３０のうち偶数の配列番号で表されるアミノ酸配列、又は該アミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列、を有するＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質、又は連続する７以上のアミノ酸を含むその断片、と免疫学的反応性を有する抗体又はそのフラグメントを用いた、癌の治療及び／又は予防方法。
  22. 　請求項７～１８のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメントを用いた、癌の治療及び／又は予防方法。
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