WO2013125654A1 - 癌の治療及び／又は予防用医薬組成物 - Google Patents

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文義 岡野
孝則 齋藤
井戸　隆喜
佳孝 南田
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東レ株式会社
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    • C07K2317/732—Antibody-dependent cellular cytotoxicity [ADCC]

Definitions

  • the present invention relates to a novel pharmaceutical use of an antibody against CAPRIN-1 or a fragment thereof as a therapeutic and / or prophylactic agent for cancer.
  • Cancer is a disease that occupies the top cause of all deaths, and the current treatment is a combination of radiation therapy and chemotherapy, mainly surgery. Despite the recent development of new surgical methods and the discovery of new anti-cancer drugs, the therapeutic results of cancer have not improved much except for some cancers. In recent years, advances in molecular biology and cancer immunology have identified antibodies that react specifically with cancer, cancer antigens that are recognized by cytotoxic T cells, genes that encode cancer antigens, etc. There is an increasing expectation for a specific cancer therapy targeting cancer antigens (Non-patent Document 1).
  • Non-Patent Documents 4 to 4 9
  • clinical trials for cell therapy using immune cells that specifically react with cancer antigens and cancer-specific immunotherapy such as vaccines containing cancer antigens have been carried out targeting a part of them.
  • Cytoplasmic- and propagation-associated protein 1 (CAPRIN-1) is expressed when quiescent normal cells are activated or undergo cell division, and forms RNA and intracellular stress granules within the cell to transport mRNA. It was known as an intracellular protein known to be involved in the regulation of translation, but was found to be specifically expressed on the surface of cancer cells, and as a target for antibody drugs for cancer treatment Research is ongoing (Patent Document 2).
  • An object of the present invention is to produce an antibody having antitumor activity superior to conventional antibodies targeting CAPRIN-1 that is specifically expressed on the surface of cancer cells, and as an agent for treating and / or preventing cancer. Is to provide a use.
  • the present invention has the following features.
  • the present invention relates to an antibody having immunological reactivity with a partial polypeptide of CAPRIN-1 having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5, or an amino acid sequence having 80% or more sequence identity with the amino acid sequence, or a
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for treating and / or preventing cancer, comprising a fragment and the active ingredient.
  • the cancer is breast cancer, renal cancer, pancreatic cancer, colon cancer, lung cancer, brain tumor, stomach cancer, cervical cancer, ovarian cancer, prostate cancer, bladder cancer, esophageal cancer, leukemia, lymphoma, fibrosarcoma, obesity A cell tumor or melanoma.
  • the antibody is a monoclonal antibody or a polyclonal antibody.
  • the antibody is a human antibody, a humanized antibody, a chimeric antibody, a single chain antibody, or a multispecific antibody (eg, bispecific antibody).
  • the antibody against CAPRIN-1 according to the present invention damages cancer cells more strongly than the conventional antibody against CAPRIN-1. Therefore, the antibody against CAPRIN-1 according to the present invention is useful for the treatment and prevention of cancer.
  • the antibody according to the present invention is an antibody that recognizes and binds to a predetermined partial polypeptide of CAPRIN-1, and has antitumor activity. More specifically, the antibody according to the present invention is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5, or the amino acid sequence and 80% or more, preferably 85% or more, more preferably 90% or more, and still more preferably 95%.
  • An antibody that recognizes a partial polypeptide (CAPRIN-1 partial polypeptide) of CAPRIN-1 protein that is, has immunological reactivity) consisting of an amino acid sequence having the above sequence identity. In the present invention, it has been clarified that this antibody exhibits stronger antitumor activity than an antibody against a conventional CAPRIN-1 protein.
  • the present invention relates to all antibodies that bind to fragments of the CAPRIN-1 protein as described above and exhibit antitumor activity.
  • the above-mentioned antibody against CAPRIN-1 may be any kind of antibody as long as it can exhibit antitumor activity.
  • a recombinant antibody eg, synthetic antibody, multispecific antibody (eg, bispecific antibody) Bispecific antibodies
  • humanized antibodies e.g., chimeric antibodies, single chain antibodies (scFv), etc.
  • human antibodies e.g. Fab, F (ab ′) 2 , Fv, etc.
  • antibody fragments thereof eg, Fab, F (ab ′) 2 , Fv, etc.
  • These antibodies and fragments thereof can also be prepared by methods known to those skilled in the art.
  • the antibody according to the present invention has immunological reactivity with the CAPRIN-1 protein or a partial polypeptide thereof, that is, binds to the CAPRIN-1 protein through an antigen-antibody reaction, preferably with the CAPRIN-1 protein. It is desirable to bind specifically.
  • “specifically binds to CAPRIN-1 protein” means that it specifically binds to CAPRIN-1 protein and does not substantially bind to other proteins.
  • the antibody according to the present invention is preferably a monoclonal antibody, but may be a polyclonal antibody as long as a homogeneous antibody can be stably produced.
  • a test subject is a human, in order to avoid or suppress rejection, it is desirable that it is a human antibody or a humanized antibody.
  • the antitumor activity of an antibody against the CAPRIN-1 polypeptide according to the present invention can be determined by examining the suppression of tumor growth in a cancer-bearing animal in vivo, as described later, or a tumor that expresses the polypeptide in vitro. It can be evaluated by examining whether cells show cytotoxic activity via immune cells or complement.
  • the subject who is the subject of treatment and / or prevention of cancer in the present invention is a mammal such as a human, a pet animal, livestock, a sports animal, etc., and a preferred subject is a human.
  • the protein or fragment thereof used as a sensitizing antigen for obtaining an antibody against CAPRIN-1 according to the present invention is a human, dog, cat, cow, horse, mouse, rat, chicken, or other animal species derived from it. Is not limited to. However, it is preferable to select in consideration of compatibility with the parent cell used for cell fusion. In general, a protein derived from a mammal is preferable, and a protein derived from a human is particularly preferable. For example, when CAPRIN-1 is human CAPRIN-1, human CAPRIN-1 protein, a partial peptide thereof, cells expressing human CAPRIN-1 and the like can be used.
  • GenBank GenBank
  • FASTA Altschul et al., Nucleic Acids Res. 25: 3389-3402, 1997.
  • a nucleic acid or protein having a sequence identity of 5% to 100% becomes the target CAPRIN-1 (when the amino acid sequences of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 4 are compared, the amino acid residues after position 690 are different.
  • % sequence identity means that when two sequences are aligned (aligned) with the maximum similarity (or coincidence) with or without gaps, amino acids ( Or the percentage of the same amino acid (or base) relative to the total number of bases (including the number of gaps).
  • an epitope As a fragment of the CAPRIN-1 protein, one containing an epitope (antigenic determinant) which is the smallest unit recognized by an antibody and having a length from the epitope amino acid length to the total length of the protein can be used.
  • An epitope refers to a polypeptide fragment having antigenicity or immunogenicity in a mammal, preferably a human, and its minimum unit consists of about 7 to 12 amino acids, for example, 8 to 11 amino acids.
  • the CAPRIN-1 protein fragment used for the production of the antibody according to the present invention comprises an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 (positions 429 to 4 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4) recognized by the antibody of the present invention.
  • amino acid sequence having 80% or more, preferably 85% or more, more preferably 90% or more, and still more preferably 95% or more of the amino acid sequence, or A fragment containing at least an epitope consisting of about 7 to 12 consecutive amino acids, for example, 8 to 11 consecutive amino acids in the amino acid sequence is preferable.
  • polypeptide fragments containing human CAPRIN-1 protein and its partial peptides are synthesized according to chemical synthesis methods such as Fmoc method (fluorenylmethyloxycarbonyl method) and tBoc method (t-butyloxycarbonyl method), for example.
  • Fmoc method fluorenylmethyloxycarbonyl method
  • tBoc method t-butyloxycarbonyl method
  • the polynucleotide encoding the above-mentioned polypeptide can be easily prepared by a known genetic engineering technique or a conventional method using a commercially available nucleic acid synthesizer.
  • DNA containing the base sequence of the human CAPRIN-1 gene is prepared by performing PCR using a pair of primers designed to amplify the base sequence using human chromosomal DNA or cDNA library as a template. can do.
  • PCR reaction conditions can be set as appropriate. For example, using a heat-resistant DNA polymerase (eg, Taq polymerase, Pfu polymerase, etc.) and a Mg 2+ -containing PCR buffer at 94 ° C. for 30 seconds (denaturation), at 55 ° C.
  • a heat-resistant DNA polymerase eg, Taq polymerase, Pfu polymerase, etc.
  • Mg 2+ -containing PCR buffer at 94 ° C. for 30 seconds (denaturation), at 55 ° C.
  • a reaction process consisting of 30 seconds to 1 minute (annealing) and 2 minutes (elongation) at 72 ° C. is defined as one cycle.
  • the conditions include a reaction for 7 minutes at 72 ° C. after 30 cycles. It is not limited to this.
  • the PCR method, conditions, etc. see, for example, Ausubel et al., Short Protocols in Molecular Biology, 3rd edition, A compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology (1995 & 1995). Has been.
  • the cDNA library is preferably prepared from cells, organs or tissues expressing the CAPRIN-1 protein. Examples of such cells and tissues are testis, leukemia, breast cancer, lymphoma, brain tumor, lung cancer, pancreatic cancer, colon cancer, kidney cancer, stomach cancer, cervical cancer, ovarian cancer, prostate cancer, bladder cancer, esophageal cancer, fiber A cell or tissue derived from a cancer or tumor such as sarcoma, mastocytoma or melanoma.
  • the host cell into which the expression vector is introduced may be any cell as long as it can express the polypeptide.
  • prokaryotic cells include Escherichia coli
  • examples of eukaryotic cells include monkey kidney cells COS1.
  • Mammalian cells such as Chinese hamster ovary cell CHO, human embryonic kidney cell line HEK293, mouse embryonic skin cell line NIH3T3, budding yeast, yeast cells such as fission yeast, silkworm cells, Xenopus egg cells, etc. It is not limited.
  • an expression vector having an origin, a promoter, a ribosome binding site, a multicloning site, a terminator, a drug resistance gene, an auxotrophic complementary gene, etc. that can be replicated in the prokaryotic cell is used.
  • Examples of the expression vector for E. coli include pUC, pBluescript II, pET expression system, pGEX expression system and the like.
  • an expression vector for a eukaryotic cell having a promoter, a splicing region, a poly (A) addition site and the like is used as an expression vector.
  • expression vectors include pKA1, pCDM8, pSVK3, pMSG, pSVL, pBK-CMV, pBK-RSV, EBV vector, pRS, pcDNA3, pYES2, and the like.
  • pIND / V5-His pFLAG-CMV-2, pEGFP-N1, pEGFP-C1, etc.
  • a His tag for example, (His) 6 to (His) 10
  • FLAG tag myc
  • the polypeptide can be expressed as a fusion protein to which various tags such as a tag, HA tag, and GFP are added.
  • the introduction of the expression vector into the host cell may be carried out using a well-known method such as electroporation, calcium phosphate method, liposome method, DEAE dextran method, microinjection, virus infection, lipofection, binding to a cell membrane-permeable peptide.
  • the target polypeptide from the host cell can be performed by combining known separation operations. For example, treatment with denaturing agents and surfactants such as urea, ultrasonic treatment, enzyme digestion, salting out and solvent fractional precipitation, dialysis, centrifugation, ultrafiltration, gel filtration, SDS-PAGE, isoelectric focusing , Ion exchange chromatography, hydrophobic chromatography, affinity chromatography, reverse phase chromatography and the like, but are not limited thereto.
  • denaturing agents and surfactants such as urea, ultrasonic treatment, enzyme digestion, salting out and solvent fractional precipitation, dialysis, centrifugation, ultrafiltration, gel filtration, SDS-PAGE, isoelectric focusing , Ion exchange chromatography, hydrophobic chromatography, affinity chromatography, reverse phase chromatography and the like, but are not limited thereto.
  • the antigen prepared as described above can be used as a sensitizing antigen as described later.
  • Antibodies are usually heteromultimeric glycoproteins containing at least two heavy chains and two light chains. Apart from IgM, immunoglobulins are approximately 150 kDa heterotetrameric glycoproteins composed of two identical light (L) chains and two identical heavy (H) chains. Typically, each light chain is linked to a heavy chain by one disulfide covalent bond, but the number of disulfide bonds varies between the heavy chains of different immunoglobulin isotypes. Each heavy and light chain also has an intrachain disulfide bond. Each heavy chain has at one end a variable domain (VH region) followed by several constant regions. Each light chain has a variable domain (VL region) and one constant region at the opposite end.
  • VH region variable domain
  • VL region variable domain
  • the constant region of the light chain is aligned with the first constant region of the heavy chain, and the light chain variable domain is aligned with the variable domain of the heavy chain.
  • the variable domain of an antibody confers binding specificity on the antibody by exhibiting specific variability, in which a specific region is called a complementarity determining region (CDR).
  • CDR complementarity determining region
  • the portion stored relatively in the variable region is called a framework region (FR).
  • FR framework region
  • the complete heavy and light chain variable domains each contain 4 FRs linked by 3 CDRs.
  • the three CDRs are called CDRH1, CDRH2, CDRH3 from the N-terminal in the heavy chain, and similarly called CDRL1, CDRL2, CDRL3 in the light chain.
  • CDRH3 is most important for the binding specificity of the antibody to the antigen.
  • the CDRs of each chain are held together in a state closer to the FR region, and contribute to the formation of an antigen-binding site of the antibody together with the CDR derived from the other chain.
  • the constant region does not contribute directly to the binding of the antibody to the antigen, but is involved in various effector functions such as antibody-dependent cellular cytotoxicity (ADCC), phagocytosis through binding to Fc ⁇ receptors,
  • Figure 6 shows half-life / clearance rate through neonatal Fc receptor (FcRn), complement dependent cytotoxicity (CDC) through the C1q component of the complement cascade.
  • the anti-CAPRIN-1 antibody in the present invention means an antibody having immunological reactivity with the full length of a CAPRIN-1 protein or a fragment thereof.
  • the anti-CAPRIN-1 antibody of the present invention is a partial polypeptide (CAPRIN-1 partial polypeptide) of CAPRIN-1 protein, which comprises an epitope comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5, or the amino acid sequence and
  • the antibody of the present invention is preferably the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 or the amino acid sequence of 80% or more, preferably 85% or more, more preferably 90% or more, and further preferably 95% or more.
  • An epitope consisting of about 7 to 12 consecutive amino acids, for example, 8 to 11 consecutive amino acids, in the amino acid sequence having sex is recognized.
  • This anti-CAPRIN-1 antibody of the present invention can specifically bind to full-length CAPRIN-1 protein.
  • the antibody of the present invention is a polypeptide comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 among antibodies obtained using the CAPRIN-1 protein or a fragment thereof as an antigen, or 80% or more, preferably 85% of the amino acid sequence.
  • % Or more, more preferably 90% or more, and still more preferably 95% or more can be obtained by selecting an antibody that immunologically binds to a polypeptide consisting of an amino acid sequence having a sequence identity of 95% or more by a conventional method.
  • immunological reactivity means the property that an antibody binds to CAPRIN-1 antigen (full length of CAPRIN-1 protein or a partial polypeptide thereof) in vivo. The function of damaging (eg, killing, suppressing, or regressing) tumor cells through such binding of the antibody of the present invention to CAPRIN-1 is exhibited.
  • the antibody of the present invention binds to the CAPRIN-1 protein and is used for tumors such as breast cancer, renal cancer, pancreatic cancer, colon cancer (for example, colon cancer), lung cancer, brain tumor, stomach cancer, cervical cancer, ovarian cancer, prostate cancer. , Bladder cancer, esophageal cancer, leukemia, lymphoma, fibrosarcoma, mastocytoma, melanoma and the like can be impaired.
  • the antibody of the present invention may be any kind (type) of antibody.
  • Examples of the types of antibodies of the present invention include monoclonal antibodies, polyclonal antibodies, synthetic antibodies, multispecific antibodies, human antibodies, humanized antibodies, chimeric antibodies, single chain antibodies, antibody fragments (eg, Fab, F (ab ′ ) 2 , Fv) and the like.
  • the antibody may be any class of immunoglobulin molecule, such as IgG, IgE, IgM, IgA, IgD, and IgY, or any subclass such as IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgA1, IgA2, and the like.
  • the antibody may be further modified by glycosylation, acetylation, formylation, amidation, phosphorylation, PEGylation, or the like.
  • the antibody is a monoclonal antibody
  • a breast cancer cell line SK-BR-3 expressing CAPRIN-1 or the like is administered to the mouse for immunization, the spleen is extracted from the mouse, the cells are separated, A cell and a mouse myeloma cell are fused, and a clone producing an antibody having a cancer cell growth inhibitory action is selected from the obtained fused cells (hybridoma).
  • a clone producing an antibody that binds to a polypeptide consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 or a polypeptide consisting of an amino acid sequence having 80% or more sequence identity with the amino acid sequence may be selected.
  • a monoclonal antibody-producing hybridoma having cancer cell growth inhibitory activity or a hybridoma producing a monoclonal antibody against the polypeptide of SEQ ID NO: 5 is isolated, the hybridoma is cultured, and the antibody is purified from the culture supernatant by a general affinity purification method.
  • the antibody of the present invention can be prepared.
  • a hybridoma producing a monoclonal antibody can also be produced, for example, as follows.
  • a sensitizing antigen is injected into a mammal intraperitoneally or subcutaneously.
  • the sensitizing antigen is diluted to an appropriate amount with PBS (Phosphate-Buffered Saline), physiological saline, or the like, and then mixed with an appropriate amount of an ordinary adjuvant, for example, Freund's complete adjuvant, if necessary, and emulsified.
  • an appropriate carrier can be used during immunization with the sensitizing antigen.
  • immune cells are collected from the mammal and subjected to cell fusion. Can be mentioned.
  • Mammalian myeloma cells are used as the other parent cell to be fused with the immune cells.
  • the myeloma cells include various known cell lines such as P3U1 (P3-X63Ag8U1), P3 (P3x63Ag8.653) (J. Immunol. (1979) 123, 1548-1550), P3x63Ag8U. 1 (Current Topics in Microbiology and Immunology (1978) 81, 1-7), NS-1 (Kohler. G. and Milstein, C. Eur. J. Immunol. (1976) 6, 511-511) (Margulies.
  • the cell fusion between the immune cells and myeloma cells is basically performed by a known method, for example, the method of Kohler and Milstein (Kohler, G. and Milstein, C. Methods Enzymol. (1981) 73, 3-46). It can carry out according to etc.
  • the cell fusion is performed, for example, in a normal nutrient culture medium in the presence of a cell fusion promoter.
  • a cell fusion promoter for example, polyethylene glycol (PEG), Sendai virus (HVJ) or the like is used, and an auxiliary agent such as dimethyl sulfoxide can be added and used to increase the fusion efficiency as desired.
  • the usage ratio of immune cells and myeloma cells can be arbitrarily set.
  • the number of immune cells is preferably 1 to 10 times that of myeloma cells.
  • the culture solution used for the cell fusion for example, RPMI1640 culture solution suitable for growth of the myeloma cell line, MEM culture solution, and other normal culture solutions used for this kind of cell culture can be used.
  • Serum replacement fluid such as fetal calf serum (FCS) can be used in combination.
  • a predetermined amount of the immune cells and myeloma cells are mixed well in the culture medium, and a PEG solution (for example, an average molecular weight of about 1000 to 6000) preliminarily heated to about 37 ° C. is usually 30 to 60%.
  • the target hybridoma is formed by adding and mixing at a concentration of (w / v). Subsequently, it is preferable to remove cell fusion agents and the like which are undesirable for the growth of hybridomas by repeatedly adding an appropriate culture medium and centrifuging to remove the supernatant.
  • the hybridoma thus obtained is selected by culturing in a normal selective culture solution, for example, a HAT culture solution (a culture solution containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine). Culturing with the HAT culture solution is continued for a sufficient time (usually several days to several weeks) for cells other than the target hybridoma (non-fusion cells) to die. Subsequently, the usual limiting dilution method is performed, and the hybridoma producing the target antibody is screened and single-cloned.
  • a normal selective culture solution for example, a HAT culture solution (a culture solution containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine). Culturing with the HAT culture solution is continued for a sufficient time (usually several days to several weeks) for cells other than the target hybridoma (non-fusion cells) to die. Subsequently, the usual limiting dilution method is performed, and the hybridoma producing the target antibody is screened
  • human lymphocytes such as human lymphocytes infected with EB virus are sensitized in vitro with proteins, protein-expressing cells or lysates thereof. It is also possible to obtain a hybridoma that produces a human antibody having a desired activity (for example, cell growth inhibitory activity) by fusing the lymphocytes with a myeloma cell having permanent mitotic activity derived from human, for example, U266 (registration number TIB196). it can.
  • a desired activity for example, cell growth inhibitory activity
  • the hybridoma producing the monoclonal antibody thus produced can be subcultured in a normal culture solution and can be stored for a long time in liquid nitrogen.
  • a desired antigen or a cell expressing the desired antigen is used as a sensitizing antigen and immunized according to a normal immunization method, and the resulting immune cell is fused with a known parent cell by a normal cell fusion method. And can be prepared by screening monoclonal antibody-producing cells (hybridomas) by a normal screening method.
  • a polyclonal antibody can be obtained, for example, as follows.
  • a polypeptide comprising an amino acid sequence having a property preferably a polypeptide comprising the amino acid sequence
  • Serum can also be obtained by immunizing a mammal with the peptide as a sensitizing antigen.
  • anti-CAPRIN-1 polyclonal antibody By purifying these sera using, for example, ammonium sulfate precipitation, protein A, protein G column, DEAE ion exchange chromatography, affinity column coupled with CAPRIN-1 protein or synthetic peptide, anti-CAPRIN-1 polyclonal antibody is obtained.
  • the polyclonal antibody of the present invention includes an antibody obtained by immunizing a human antibody-producing animal (for example, mouse) with CAPRIN-1 protein.
  • human antibody-producing mice for example, KM mice (Kirin Pharma / Medarex) and Xeno mice (Amgen) are known (for example, International Publication Nos. WO02 / 43478 and WO02 / 092812).
  • CAPRIN-1 protein or fragments thereof By immunizing such mice with the CAPRIN-1 protein or fragments thereof, fully human polyclonal antibodies can be obtained from blood.
  • spleen cells can be removed from the immunized mouse and a human monoclonal antibody can be prepared by a fusion method with myeloma cells.
  • the antigen can be prepared, for example, according to a method using animal cells (Special Table 2007-530068), a method using baculovirus (for example, International Publication No. WO 98/46777).
  • immunization may be performed by binding to an immunogenic macromolecule such as albumin.
  • the antigen may be immunized by administration with an adjuvant.
  • the antibody of the present invention can also be obtained as a recombinant antibody produced by cloning the antibody gene from a hybridoma, incorporating it into an appropriate vector, introducing it into a host, and using a gene recombination technique.
  • a gene recombination technique for example, Carl, AK Borrebaeck, James, W. Larrick, THERAPEUTIC MONOCLONAL ANTIBODIES, Published in the United Kingdom by BIS 90BLILLABL
  • V region an antibody variable region
  • cDNA of an antibody variable region is synthesized from hybridoma mRNA using reverse transcriptase. If DNA encoding the V region of the target antibody is obtained, it is ligated with DNA encoding the desired antibody constant region (C region) and incorporated into an expression vector.
  • DNA encoding the V region of the antibody may be incorporated into an expression vector containing DNA of the antibody C region. It is incorporated into an expression vector so as to be expressed under the control of an expression control region such as an enhancer or promoter.
  • host cells can be transformed with this expression vector to express the antibody.
  • the anti-CAPRIN-1 antibody of the present invention is preferably a monoclonal antibody. However, it may be a polyclonal antibody, a genetically modified antibody (such as a chimeric antibody or a humanized antibody).
  • Monoclonal antibodies include human monoclonal antibodies, non-human animal monoclonal antibodies (eg, mouse monoclonal antibody, rat monoclonal antibody, rabbit monoclonal antibody, chicken monoclonal antibody, etc.), chimeric monoclonal antibodies, and the like. Monoclonal antibodies are cultured hybridomas obtained by fusion of spleen cells and myeloma cells from non-human mammals (eg, mice, human antibody-producing mice, chickens, rabbits, etc.) immunized with the CAPRIN-1 protein or fragments thereof. Can be made.
  • non-human animal monoclonal antibodies eg, mouse monoclonal antibody, rat monoclonal antibody, rabbit monoclonal antibody, chicken monoclonal antibody, etc.
  • Monoclonal antibodies are cultured hybridomas obtained by fusion of spleen cells and myeloma cells from non-human mammals (eg, mice, human antibody-producing mice, chickens, rabbits, etc.) immunized with
  • a chimeric antibody is an antibody produced by combining sequences derived from different animals, for example, an antibody comprising a mouse antibody heavy chain, light chain variable region and human antibody heavy chain, light chain constant region, and the like.
  • a chimeric antibody can be prepared using a known method. For example, a DNA encoding an antibody V region and a DNA encoding a human antibody C region are ligated, incorporated into an expression vector, and introduced into a host. It is obtained by producing.
  • a monoclonal antibody having an antitumor effect and immunological reactivity with the CAPRIN-1 partial polypeptide consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 is produced by the method described in the Examples below.
  • a humanized antibody is a modified antibody also called a reshaped human antibody.
  • Humanized antibodies are constructed by transplanting CDRs of antibodies from immunized animals into the complementarity determining regions of human antibodies. The general gene recombination technique is also known.
  • a DNA sequence designed to link the CDR of a mouse antibody, rabbit antibody or chicken antibody and the framework region (FR) of a human antibody has an overlapping portion at the end.
  • the obtained DNA is obtained by ligating with the DNA encoding the human antibody constant region, then incorporating it into an expression vector, introducing it into a host and producing it (European Patent Application Publication No. EP239400, International Publication No. WO96). No. 02576).
  • FR As the FR of a human antibody linked through CDR, a complementarity determining region that forms a favorable antigen binding site is selected. If necessary, the amino acid of the framework region in the variable region of the antibody may be substituted so that the complementarity determining region of the reshaped human antibody forms an appropriate antigen binding site (Sato K. et al., Cancer Research). 1993, 53: 851-856). Moreover, FR may be substituted with a framework region derived from a human antibody of a different class or subclass (see International Publication No. WO99 / 51743).
  • variable region e.g, FR
  • constant region amino acids in the variable region or constant region may be substituted with other amino acids.
  • the amino acid substitution is, for example, less than 15, less than 10, less than 8, less than 7, less than 6, less than 5, less than 4, less than 3, less than 2, or less than 2, preferably 1 to 5, more preferably 1 or 2.
  • An amino acid substitution, the substituted antibody should be functionally equivalent to the unsubstituted antibody.
  • the substitution is preferably a conservative amino acid substitution, which is a substitution between amino acids with similar properties such as charge, side chain, polarity, aromaticity and the like.
  • Amino acids with similar properties include, for example, basic amino acids (arginine, lysine, histidine), acidic amino acids (aspartic acid, glutamic acid), uncharged polar amino acids (glycine, asparagine, glutamine, serine, threonine, cysteine, tyrosine), nonpolar It can be classified into sex amino acids (leucine, isoleucine, alanine, valine, proline, phenylalanine, tryptophan, methionine), branched chain amino acids (leucine, valine, isoleucine), aromatic amino acids (phenylalanine, tyrosine, tryptophan, histidine) and the like.
  • basic amino acids arginine, lysine, histidine
  • acidic amino acids aspartic acid, glutamic acid
  • uncharged polar amino acids glycine, asparagine, glutamine, serine, threonine, cysteine, t
  • modified antibody examples include antibodies bound to various molecules such as polyethylene glycol (PEG).
  • PEG polyethylene glycol
  • the substance to be bound is not limited. In order to obtain such a modified antibody, it can be obtained by chemically modifying the obtained antibody. These methods are already established in this field.
  • “functionally equivalent” means that the antibody of interest has the same biological or biochemical activity as the antibody of the present invention, specifically, a function of damaging a tumor, and when applied to humans. It means not to cause rejection. Examples of such activity include cell growth inhibitory activity or binding activity.
  • an antibody that recognizes the epitope of the CAPRIN-1 protein or a CAPRIN-1 fragment polypeptide containing the same can be obtained by methods known to those skilled in the art.
  • the epitope of the CAPRIN-1 protein recognized by the anti-CAPRIN-1 antibody having the cancer cell growth inhibitory effect obtained above is determined by a usual method (for example, epitope mapping or an epitope identification method described later). Determine the epitope of an antibody produced by using a polypeptide having an amino acid sequence contained in the epitope as an immunogen, or an antibody produced by a normal method, and select an antibody having the same epitope as the anti-CAPRIN-1 antibody It can be obtained by a method or the like.
  • the “epitope” refers to a polypeptide fragment having antigenicity or immunogenicity in a mammal, preferably a human, and its minimum unit consists of about 7 to 12 amino acids, preferably 8 to 11 amino acids.
  • the antibody of the present invention is an antibody having immunological reactivity with CAPRIN-1, an antibody that specifically recognizes CAPRIN-1, or an antibody that specifically binds to CAPRIN-1, and has cytotoxic activity against cancer Or an antibody exhibiting tumor growth inhibitory action.
  • the antibody is preferably an antibody having a structure such that little or no rejection is avoided in the animal to which it is administered. Examples of such antibodies include human antibodies, humanized antibodies, chimeric antibodies (eg, human-mouse chimeric antibodies), single chain antibodies, bispecific antibodies, etc. when the target animal is human.
  • These antibodies have a heavy chain and light chain variable region derived from a human antibody or a heavy chain and light chain variable region derived from a complementarity determining region derived from a non-human animal antibody (CDR1, CDR2 and CDR3). It consists of framework regions derived from human antibodies (FR1, FR2, FR3 and FR4), or the variable regions of heavy and light chains are derived from non-human animal antibodies, and heavy and light chains A recombinant antibody in which the constant region of the chain is derived from a human antibody. Preferred antibodies are the previous two antibodies.
  • DNA encoding a monoclonal antibody against human CAPRIN-1 eg, human monoclonal antibody, mouse monoclonal antibody, rat monoclonal antibody, rabbit monoclonal antibody, chicken monoclonal antibody, etc.
  • DNAs encoding the light chain variable region and heavy chain variable region of the antibody were prepared by RT-PCR method, etc., for example, Kabat EU numbering system (Kabat et al., Sequences of Proteins of Immunological, 5th Ed. Public. National Institute of Health, Bethesd , Md. (1991)), the sequence of each variable region, the sequence of each CDR1, CDR2, CDR3, or the sequence of each FR1, FR2, FR3, FR4 can be determined based on light chain and heavy chain .
  • DNA encoding each of these variable regions or DNA encoding each CDR can be obtained using a gene recombination technique (Sambrook et al., Molecular Cloning A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press (1989)) or a DNA synthesizer. Make it.
  • the human monoclonal antibody-producing hybridoma is prepared by immunizing a human antibody-producing animal (eg, mouse) with human CAPRIN-1, and then fusing spleen cells excised from the immunized animal with myeloma cells. Can do.
  • DNA encoding the variable region and constant region of the light chain or heavy chain derived from a human antibody is prepared as necessary using a gene recombination technique or a DNA synthesizer.
  • the CDR coding sequence in the DNA encoding the light chain or heavy chain variable region derived from the human antibody is assigned to the corresponding non-human animal (eg, mouse, rat, rabbit, chicken). Etc.) by substituting the CDR coding sequence of the derived antibody, a DNA encoding the humanized antibody can be prepared.
  • a chimeric antibody the DNA encoding the variable region of the light chain or heavy chain of an antibody derived from a non-human animal (eg, mouse, rat, rabbit, chicken, etc.) is respectively added to the light chain or heavy chain derived from a human antibody.
  • a DNA encoding a chimeric antibody can be prepared by ligating with a DNA encoding the constant region of the chain.
  • this antibody is an antibody in which a heavy chain variable region and a light chain variable region are linearly linked via a linker, DNA encoding the heavy chain variable region, DNA encoding the linker And a DNA encoding a light chain variable region can be combined to produce a DNA encoding a single chain antibody.
  • the heavy chain variable region and the light chain variable region are both derived from human antibodies, or CDRs of antibodies derived from animals other than humans (for example, mouse, rat, rabbit, chicken, etc.) alone.
  • Is derived from a human antibody substituted by The linker is composed of 12 to 19 amino acids, and examples thereof include 15 amino acids (G 4 S) 3 (G.-B. Kim et al., Protein Engineering Design and Selection 2007, 20 (9): 425-432). It is done.
  • this antibody is an antibody that can specifically bind to two different epitopes, eg, DNA encoding heavy chain variable region A, light chain variable region B , DNA encoding heavy chain variable region B, and DNA encoding light chain variable region A are joined in this order (however, DNA encoding light chain variable region B and heavy chain variable region B are combined).
  • the DNA that encodes the bispecific antibody can be prepared by binding to the DNA encoding through the DNA encoding the linker as described above.
  • the heavy chain variable region and the light chain variable region are both derived from human antibodies, or CDRs of antibodies derived from animals other than humans (for example, mouse, rat, rabbit, chicken, etc.) alone. Is derived from a human antibody substituted by
  • Recombinant DNA prepared as described above is incorporated into one or more appropriate vectors, introduced into host cells (eg, mammalian cells, yeast cells, insect cells, etc.), and (co) expressed Can produce recombinant antibodies (PJ Delves., ANTIBODY PRODUCTION ESSENTIAL TECHNIQUES., 1997 WILEY, P. Shepherd and C. Dean. W. Gododing., Monoclonal Antibodies: principals and practices., 1993 Academic PRESS).
  • host cells eg, mammalian cells, yeast cells, insect cells, etc.
  • Can produce recombinant antibodies PJ Delves., ANTIBODY PRODUCTION ESSENTIAL TECHNIQUES., 1997 WILEY, P. Shepherd and C. Dean. W. Gododing., Monoclonal Antibodies: principals and practices., 1993 Academic PRESS).
  • Examples of the antibody of the present invention produced by the above method include the following antibodies (a) to (i).
  • A an antibody comprising a heavy chain variable region comprising the complementarity determining regions of SEQ ID NOs: 8, 9 and 10 and a light chain variable region comprising the complementarity determining regions of SEQ ID NOs: 11, 12 and 13
  • SEQ ID NO: 8 An antibody comprising a heavy chain variable region comprising the complementarity determining regions of 9 and 14 and a light chain variable region comprising the complementarity determining regions of SEQ ID NOS: 11, 12 and 13; and (c) the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 52;
  • An antibody comprising the light chain variable region of SEQ ID NO: 54 (d) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 16 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 18 (e) the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 21 and SEQ ID NO: An antibody comprising a 23 light chain variable region
  • f An antibody comprising a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 25 and an SEQ ID NO: 23 light chain variable region
  • an antibody comprising a heavy chain variable region comprising the complementarity determining regions of SEQ ID NOs: 46, 47 and 48 and a light chain variable region comprising the complementarity determining regions of SEQ ID NOs: 40, 41 and 42 (eg, SEQ ID NO: 49 The heavy chain variable region and the light chain variable region of SEQ ID NO: 43).
  • amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 8, 9, and 10 are CDR1, CDR2, and CDR3 of the heavy chain variable region of the rabbit-derived antibody, respectively, and the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 11, 12, and 13 are derived from the rabbit, respectively.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 14 is CDR3 of the heavy chain variable region of the rabbit-derived antibody.
  • amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 26, 27 and 28, SEQ ID NOs: 36, 37 and 38, SEQ ID NOs: 46, 47 and 48 are CDR1, CDR2 and CDR3 of the heavy chain variable region of the mouse-derived antibody, respectively.
  • amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 30, 31, and 32 and SEQ ID NOs: 40, 41, and 42 are CDR1, CDR2, and CDR3 of the light chain variable region of the mouse-derived antibody, respectively.
  • the humanized antibody, chimeric antibody, single chain antibody or bispecific antibody of the present invention can be, for example, the following antibodies (I) and (II) (herein, exemplified by the above antibody (b)): .
  • CDR1, CDR2 and CDR3 consisting of the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 8, 9 and 14, respectively, and a heavy chain variable region comprising an amino acid sequence in which a framework region derived from a human antibody or a part thereof is substituted;
  • An antibody comprising CDR1, CDR2 and CDR3 comprising the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 11, 12, and 13, respectively, and a light chain variable region comprising a human antibody-derived framework region or an amino acid sequence thereof partially substituted.
  • a heavy chain comprising a heavy chain variable region comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 16 and a heavy chain constant region derived from a human antibody; a light chain variable region comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18; and a light chain constant region derived from a human antibody
  • a light chain comprising
  • sequences of the constant region and the variable region of the human antibody heavy chain and light chain are available from, for example, NCBI (US: GenBank, UniGene, etc.).
  • NCBI GenBank, UniGene, etc.
  • For human light chain ⁇ constant regions such as X64133 reference can be made to sequences such as registration numbers X64132 and X64134.
  • the above antibody preferably has cytotoxic activity, and can thereby exert an antitumor effect.
  • a hybridoma capable of producing another human antibody or non-human animal antibody (eg, mouse antibody) against human CAPRIN-1 is prepared, and the monoclonal antibody produced by the hybridoma is recovered and immunologically binding to human CAPRIN-1. Whether the antibody is the target antibody is determined using the cytotoxic activity as an index. After identifying the target monoclonal antibody-producing hybridoma, DNAs encoding the variable regions of the heavy and light chains of the target antibody were prepared from the hybridoma and sequenced as described above. Use for production.
  • substitution or deletion of one or several amino acids in each antibody particularly in the framework region sequence and / or constant region sequence Or there may be additions.
  • substitution or deletion of one or several amino acids in each antibody particularly in the framework region sequence and / or constant region sequence Or there may be additions.
  • several means preferably 2 to 5, more preferably 2 or 3.
  • the affinity constant Ka (k on / k off ) of the antibody of the present invention for the CAPRIN-1 protein or a fragment thereof is preferably at least 10 7 M ⁇ 1 , at least 10 8 M ⁇ 1 , at least 5 ⁇ 10 8 M ⁇ . 1 , at least 10 9 M ⁇ 1 , at least 5 ⁇ 10 9 M ⁇ 1 , at least 10 10 M ⁇ 1 , at least 5 ⁇ 10 10 M ⁇ 1 , at least 10 11 M ⁇ 1 , at least 5 ⁇ 10 11 M ⁇ 1 , At least 10 12 M ⁇ 1 , or at least 10 13 M ⁇ 1 .
  • the antibody of the present invention can be conjugated with an antitumor agent.
  • the bond between the antibody and the antitumor agent is a group reactive with an amino group, carboxyl group, hydroxy group, thiol group, etc. (for example, succinate imidyl group, formyl group, 2-pyridyldithio group, maleimidyl group, alkoxycarbonyl group). , A hydroxy group, etc.).
  • antitumor agents include the following antitumor agents known in the literature, such as paclitaxel, doxorubicin, daunorubicin, cyclophosphamide, methotrexate, 5-fluorouracil, thiotepa, busulfan, improsulfan, piperosulfan, benzodopa (benzodopa) ), Carbocone, methredopa, uredopa, uretopa, altreamine, triethylenemelamine, triethylenephosphoramide, triethylenethiophosphoramide, trimethylolothramine , Camptothecin, bryostatin, calistatin ( allystatin), cryptophycin 1, cryptophycin 8, dolastatin, duocarmycin, eleuterbin, panclastatin, sarcodictin, spongestatin, chlorambucil, chloronaphazine, cholophosphamide, estram Ifosfamide, mechlore
  • a method for evaluating whether it exhibits antitumor activity is, for example, a mouse-derived anti-CAPRIN-1 antibody, which binds to a mouse antibody.
  • the anti-tumor effect against human cancer cells can be evaluated in vitro by reacting the next antibody with a drug at the same time. For example, it can be evaluated using an anti-human IgG antibody (Hum-ZAP (Advanced Targeting Systems)) to which Saporin is bound.
  • a higher therapeutic effect can be obtained by co-administering the antibody of the present invention and an antitumor agent.
  • This technique can be applied to cancer patients expressing CAPRIN-1 either before or after surgery. In particular, after surgery, cancer recurrence and longer survival can be obtained for cancers expressing CAPRIN-1, which have been treated with an antitumor agent alone.
  • antitumor agents used in combination administration with the antibody of the present invention include the following antitumor agents known in the literature, such as paclitaxel, doxorubicin, daunorubicin, cyclophosphamide, methotrexate, 5-fluorouracil, thiotepa, Busulfan, Improsulfan, Piposulfan, Benzodopa, Carbocon, Metredopa, Uredopa, Alteramine, Triethylenemelamine, Triethylenephosphoramide, Triethylenethiophosphoramide Trimethylolomeramine, bratacin, bratacinone, camptocete , Bryostatin, callystatin, cryptophysin 1, cryptophycin 8, dolastatin, duocarmycin, eleuterbin, panclatistatin, sarcodictin, spongestatin, chloramphazine, chloronaphazine, cholophosphamide ( chlorophosphamide), estramustine, pac
  • the antibodies of the present invention include 211 At, 131 I, 125 I, 90 Y, 186 Re, 188 Re, 153 SM, 212 Bi, 32 P, 175 Lu, 176 Lu, 89 Sr, which are well known in the literature. It is also possible to combine radioisotopes such as 64 Cu and 111 In (Hideo Sagi, YAKUGAKU ZASSHI 128 (3) 323-332 8 (2008), Jpn). It is desirable that the radioisotope is effective for tumor treatment and diagnosis. Such a radioisotope is also included in the antitumor agent in the present invention.
  • the antibody of the present invention binds to an epitope in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5, as shown in the Examples below.
  • One method for confirming the epitope for the antibody of the present invention is to immobilize the epitope in the polypeptide of SEQ ID NO: 5 on a plate and evaluate the reactivity of the antibody against this epitope.
  • the antibody of the present invention is allowed to react with the immobilized peptide by reacting the epitope in the polypeptide of SEQ ID NO: 5 on a plate with an electrophilic functional group via a spacer such as oligoethylene glycol,
  • a secondary antibody that binds to the antibody of the present invention labeled with HRP (Horseadish Peroxidase) or the like By reacting a secondary antibody that binds to the antibody of the present invention labeled with HRP (Horseadish Peroxidase) or the like, the reactivity of the antibody can be evaluated (the epitope to which the antibody of the present invention binds can be confirmed).
  • HRP Haseadish Peroxidase
  • the epitope in the polypeptide of SEQ ID NO: 5 to be immobilized on the plate is the sequence itself containing at least the epitope in the sequence of SEQ ID NO: 5, or a part thereof modified (for example, N-terminal residue or Some of the C-terminal residues are modified with several arbitrary amino acids and proteins such as KLH, or the MAP protein is modified with a (poly) peptide.
  • the antibody of the present invention may be bound.
  • the antibody of the present invention may not react with the polypeptide of SEQ ID NO: 5 by the above method (epitope cannot be confirmed).
  • the antigen-antibody complex is obtained by immunoprecipitation by reacting the antigen with the antibody under a solution condition in which the antigen and the antibody are likely to bind, and then the partial polypeptide bound to the antibody is separated and the amino acid is separated.
  • the antigen may be, for example, the polypeptide of SEQ ID NO: 5 itself, partially modified, or CAPRIN-1 protein, as long as the epitope to which the antibody of the present invention reacts can be confirmed by the above method.
  • the anti-tumor effect on CAPRIN-1-expressing cancer cells by the anti-CAPRIN-1 antibody used in the present invention is considered to occur by the following mechanism: effector cell antibody-dependent cytotoxicity (ADCC) of CAPRIN-1-expressing cells And complement dependent cytotoxicity (CDC) of CAPRIN-1-expressing cells.
  • ADCC effector cell antibody-dependent cytotoxicity
  • CDC complement dependent cytotoxicity
  • the antitumor effect by the above mechanism correlates with the number of target molecules to which an antibody expressed on the cell surface of cancer cells binds (Niwa R., Clinical Cancer Research 2005 Mar 15; 11 ( 6): 2327-2336).
  • the number of target molecules expressed on the cell surface of cancer cells can be examined using an existing measurement kit that can measure the number of molecules on the cell surface.
  • the number of target molecules to which the antibody binds is caused to react with cancer cells using the antibody against the target molecule as a primary antibody, and with a calibration curve bead having a known number of molecules in advance, with a fluorescently labeled anti-primary antibody, The average fluorescence intensity of the sample can be measured, and a calibration curve can be obtained to know the number of target molecules.
  • the activity of the anti-CAPRIN-1 antibody used in the present invention is evaluated by the above-mentioned ADCC activity or CDC activity against cancer cells expressing CAPRIN-1 in vitro as specifically shown in the Examples below. It can be evaluated by measuring or examining the number of CAPRIN-1 molecules expressed on the cell surface of cancer cells when the anti-CAPRIN-1 antibody of the present invention is used as a primary antibody.
  • the anti-CAPRIN-1 antibody used in the present invention binds to the CAPRIN-1 protein on cancer cells and exhibits an antitumor action due to the above activity, and thus is considered useful for the treatment or prevention of cancer. That is, the present invention provides a pharmaceutical composition for treating and / or preventing cancer comprising an anti-CAPRIN-1 antibody as an active ingredient.
  • the anti-CAPRIN-1 antibody is used for the purpose of administering it to the human body (antibody treatment), it is preferable to use a human antibody or a humanized antibody in order to reduce immunogenicity.
  • the antibody of the present invention has a high binding affinity
  • the binding constant (affinity constant) Ka (k on / k off ) is preferably at least 10 7 M ⁇ 1 , at least 10 8 M ⁇ 1 , At least 5 ⁇ 10 8 M ⁇ 1 , at least 10 9 M ⁇ 1 , at least 5 ⁇ 10 9 M ⁇ 1 , at least 10 10 M ⁇ 1 , at least 5 ⁇ 10 10 M ⁇ 1 , at least 10 11 M ⁇ 1 , at least 5
  • it has ⁇ 10 11 M ⁇ 1 , at least 10 12 M ⁇ 1 , or at least 10 13 M ⁇ 1 .
  • the number of CAPRIN-1 molecules is the same as the number of CAPRIN-1 molecules per cancer cell to which the antibody binds.
  • the number is 10 4 or more, preferably 10 5 or more.
  • a tumor (cancer cell) having a large number of CAPRIN-1 molecules on the cell surface is particularly preferred as a cancer to which the antibody of the present invention is administered.
  • ⁇ Binding to antigen-expressing cells The ability of an antibody to bind to CAPRIN-1 can be identified using binding assays such as those described in the Examples, eg, ELISA, Western blot, immunofluorescence and flow cytometry analysis. .
  • Antibodies that recognize CAPRIN-1 are inoculated with tissue obtained from patients during surgery or cell lines expressing CAPRIN-1 naturally or after transfection by immunohistochemistry in a manner well known to those skilled in the art
  • tissue obtained from patients during surgery or cell lines expressing CAPRIN-1 naturally or after transfection by immunohistochemistry in a manner well known to those skilled in the art
  • To test for reactivity with CAPRIN-1 from tissues obtained from animals bearing xenograft tissue, using paraformaldehyde or acetone-fixed cryosections or paraformaldehyde-embedded tissue sections Can do.
  • an antibody reactive to CAPRIN-1 can be stained by various methods. For example, it can be visualized by reacting horseradish peroxidase-conjugated goat anti-mouse antibody, goat anti-rabbit antibody or goat anti-chicken antibody.
  • the target of the pharmaceutical composition for the treatment and / or prevention of cancer of the present invention is not particularly limited as long as it is a cancer (cell) expressing the CAPRIN-1 gene.
  • tumor and cancer refer to malignant neoplasms and are used interchangeably.
  • the target cancer in the present invention is a cancer expressing a gene encoding CAPRIN-1 protein, preferably breast cancer, kidney cancer, pancreatic cancer, colon cancer, lung cancer, brain tumor, stomach cancer, cervical cancer Ovarian cancer, prostate cancer, bladder cancer, esophageal cancer, leukemia, lymphoma, fibrosarcoma, mastocytoma or melanoma.
  • These specific cancers include, for example, breast cancer, complex breast cancer, malignant mixed breast tumor, intraductal papillary carcinoma, lung adenocarcinoma, squamous cell carcinoma, small cell carcinoma, large cell carcinoma, neuroepithelial tissue Tumor glioma, ventricular ependymoma, neuronal tumor, fetal neuroectodermal tumor, schwannoma, neurofibroma, meningioma, chronic lymphocytic leukemia, lymphoma, gastrointestinal type Lymphoma, digestive lymphoma, small to medium cell lymphoma, cecal cancer, ascending colon cancer, descending colon cancer, transverse colon cancer, sigmoid colon cancer, rectal cancer, ovarian epithelial cancer, germ cell tumor, stromal cell tumor, Pancreatic duct cancer, invasive pancreatic duct cancer, adenocarcinoma of pancreatic cancer, acinar cell carcinoma, adenosquamous carcinoma, giant cell tumor,
  • preferred subjects (patients) to be targeted are mammals, for example, mammals including primates, pet animals, livestock, sport animals, etc., and humans, dogs and cats are particularly preferable.
  • the antibody used in the present invention when used as a pharmaceutical composition, it can be formulated by methods known to those skilled in the art. For example, it can be used parenterally in the form of a sterile solution with water or other pharmaceutically acceptable liquid, or an injection of suspension.
  • a pharmacologically acceptable carrier or medium specifically, sterile water or physiological saline, vegetable oil, emulsifier, suspension agent, surfactant, stabilizer, flavoring agent, excipient, vehicle, preservative
  • a pharmaceutical preparation by combining with a binder or the like as appropriate and mixing in a unit dosage form generally required for pharmaceutical practice. The amount of active ingredient in these preparations is such that an appropriate dose within the indicated range can be obtained.
  • a sterile composition for injection can be formulated in accordance with normal pharmaceutical practice using a vehicle such as distilled water for injection.
  • Aqueous solutions for injection include, for example, isotonic solutions containing physiological saline, glucose and other adjuvants such as D-sorbitol, D-mannose, D-mannitol and sodium chloride.
  • isotonic solutions containing physiological saline, glucose and other adjuvants such as D-sorbitol, D-mannose, D-mannitol and sodium chloride.
  • alcohols specifically ethanol, polyalcohols such as propylene glycol, polyethylene glycol, nonionic surfactants such as polysorbate 80 (TM), HCO-60 may be used in combination.
  • oily liquid examples include sesame oil and soybean oil, which may be used in combination with benzyl benzoate or benzyl alcohol as a solubilizing agent.
  • oily liquid examples include sesame oil and soybean oil, which may be used in combination with benzyl benzoate or benzyl alcohol as a solubilizing agent.
  • blend with buffer for example, phosphate buffer, sodium acetate buffer, soothing agent, for example, procaine hydrochloride, stabilizer, for example, benzyl alcohol, phenol, antioxidant.
  • buffer for example, phosphate buffer, sodium acetate buffer
  • soothing agent for example, procaine hydrochloride
  • stabilizer for example, benzyl alcohol, phenol, antioxidant.
  • the prepared injection solution is usually filled into a suitable ampoule.
  • Administration is oral or parenteral, preferably parenteral administration. Specific examples include injection, nasal administration, pulmonary administration, and transdermal administration. As an example of the injection form, it can be administered systemically or locally by, for example, intravenous injection, intramuscular injection, intraperitoneal injection, subcutaneous injection, or the like.
  • the administration method can be appropriately selected depending on the age, weight, sex, symptoms, etc. of the patient.
  • the dosage of the pharmaceutical composition containing the antibody or the polynucleotide encoding the antibody can be selected, for example, in the range of 0.0001 mg to 1000 mg per kg body weight. Alternatively, for example, the dose can be selected in the range of 0.001 to 100,000 mg / body per patient, but is not necessarily limited to these values.
  • the dose and administration method vary depending on the patient's weight, age, sex, symptom, etc., but can be appropriately selected by those skilled in the art.
  • Cancer preferably breast cancer, kidney cancer, pancreatic cancer, colon cancer, lung cancer, brain tumor, stomach cancer, cervical cancer, ovarian cancer, by administering to a subject the above pharmaceutical composition containing the antibody of the present invention or a fragment thereof, Prostate cancer, bladder cancer, esophageal cancer, leukemia, lymphoma, fibrosarcoma, mastocytoma or melanoma can be treated and / or prevented.
  • a method for treating and / or preventing cancer comprising administering the pharmaceutical composition of the present invention to a subject in combination with an antitumor agent or a pharmaceutical composition containing an antitumor agent as exemplified above.
  • the antibody or fragment thereof of the present invention and the antitumor agent can be administered to a subject simultaneously or separately.
  • any pharmaceutical composition may be earlier or later, and the administration interval, dosage, administration route and frequency of administration can be appropriately selected by a specialist.
  • Another pharmaceutical dosage form to be administered at the same time includes, for example, a pharmaceutical composition obtained by mixing the antibody of the present invention or a fragment thereof and an antitumor agent in a pharmacologically acceptable carrier (or medium) and formulating it. Shall be included. Further, for any of the above pharmaceutical compositions and dosage forms containing an antitumor agent, the formulation, formulation, administration route, dose, cancer, etc. for the pharmaceutical composition and dosage form containing the antibody of the present invention The explanation can be applied.
  • the present invention provides a pharmaceutical combination for the treatment and / or prevention of cancer comprising the pharmaceutical composition of the present invention and a pharmaceutical composition comprising an antitumor agent as exemplified above, and administering the same
  • a method for treating and / or preventing cancer is also provided.
  • the present invention also provides a pharmaceutical composition for treating and / or preventing cancer comprising the antibody of the present invention or a fragment thereof and an antitumor agent together with a pharmacologically acceptable carrier.
  • the present invention further provides a DNA encoding the above-described antibody of the present invention or a fragment thereof (antibody-binding fragment).
  • DNA may be DNA encoding the heavy chain and / or light chain of the antibody, or may be DNA encoding the heavy chain variable region and / or light chain variable region of the antibody. .
  • DNA may also be DNA encoding each complementarity determining region of the antibody, alone or in combination.
  • Such DNA is, for example, in the case of the antibody (b), a DNA encoding a heavy chain variable region comprising a nucleotide sequence encoding the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 8, 9 and 14, SEQ ID NOs: 11, 12, and 13 DNA containing a light chain variable region including a base sequence encoding an amino acid sequence is included.
  • the sequences encoding the other regions of the antibody are It may be a sequence derived from another antibody.
  • other antibodies include antibodies derived from organisms other than humans, but those derived from humans are preferable from the viewpoint of reducing side effects. That is, in the above DNA, the regions encoding the heavy chain and light chain framework regions and the constant regions preferably include a base sequence encoding a corresponding amino acid sequence derived from a human antibody or a partial amino acid substitution product thereof. .
  • DNA encoding the antibody of the present invention includes, for example, the above-described antibody (b), a base sequence encoding a heavy chain variable region including the base sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 16.
  • DNA DNA containing a nucleotide sequence that encodes the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18, and the like.
  • an example of the base sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 16 is the base sequence of SEQ ID NO: 15.
  • An example of the base sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18 is the base sequence of SEQ ID NO: 17.
  • the regions encode the corresponding amino acid sequences derived from human antibodies (the amino acid sequences of the heavy chain and light chain constant regions).
  • it comprises a sequence.
  • the DNA of these antibodies can be obtained, for example, by the above method or the following method.
  • total RNA is prepared from a hybridoma producing the antibody of the present invention using a commercially available RNA extraction kit, and cDNA is synthesized by reverse transcriptase using a random primer or the like.
  • cDNA encoding each variable region is amplified by a PCR method using oligonucleotides having sequences conserved in the variable regions of the heavy and light chain genes of known mouse and rabbit antibodies as primers.
  • the sequence encoding the constant region can be obtained by amplifying a known sequence by the PCR method.
  • the base sequence of DNA can be determined by a conventional method by incorporating it into a sequencing plasmid or phage.
  • the present invention further provides the following polypeptides and DNAs related to the antibodies (a) to (i).
  • SEQ ID NOs 52 and 54 SEQ ID NO 16 and SEQ ID NO 18, SEQ ID NO 21 and SEQ ID NO 23, SEQ ID NO 25 and SEQ ID NO 23, SEQ ID NO 29 and SEQ ID NO 33, SEQ ID NO 39 and SEQ ID NO 43, and A polypeptide selected from the group consisting of the amino acid sequences of SEQ ID NO: 49 and SEQ ID NO: 43, and DNA encoding the polypeptide.
  • (Iii) a light chain CDR polypeptide selected from the group consisting of SEQ ID NOs: 11, 12, and 13, SEQ ID NOs: 30, 31, and 32, and amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 40, 41, and 42, and the polypeptide DNA encoding.
  • polypeptides and DNA can be prepared using genetic recombination techniques as described above.
  • CAPRIN-1 partial polypeptide comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 or an amino acid sequence having 80% or more sequence identity with the amino acid sequence.
  • the antibody or fragment thereof according to any one of (1) to (3) above, which is a human antibody, humanized antibody, chimeric antibody, single chain antibody or multispecific antibody.
  • a heavy chain variable region comprising the complementarity determining regions of SEQ ID NOs: 8, 9, and 10 (CDR1, CDR2, CDR3, respectively) and a light chain variable region comprising the complementarity determining regions of SEQ ID NOs: 11, 12, and 13 (respectively The antibody or fragment thereof according to any one of (1) to (4), which comprises CDR1, CDR2, CDR3) and has immunological reactivity with a CAPRIN-1 protein.
  • the antibody or fragment thereof according to (5) comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 52 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 54, and having immunological reactivity with the CAPRIN-1 protein.
  • the heavy chain variable region including the complementarity determining regions of SEQ ID NOS: 26, 27 and 28 (CDR1, CDR2 and CDR3, respectively) and the complementarity determining regions of SEQ ID NOS: 30, 31 and 32 (CDR1, CDR2 and CDR3, respectively)
  • the antibody or fragment thereof according to any one of (1) to (4), wherein the antibody or fragment thereof has a light chain variable region comprising: and has immunological reactivity with a CAPRIN-1 protein.
  • a heavy chain variable region comprising the complementarity determining regions of SEQ ID NOs: 36, 37 and 38 (CDR1, CDR2, CDR3, respectively) and a light chain variable region comprising the complementarity determining regions of SEQ ID NOs: 40, 41 and 42 (respectively The antibody or fragment thereof according to any one of (1) to (4), which comprises CDR1, CDR2, CDR3) and has immunological reactivity with a CAPRIN-1 protein.
  • the heavy chain variable region including the complementarity determining regions of SEQ ID NOs: 46, 47 and 48 (CDR1, CDR2 and CDR3, respectively) and the complementarity determining regions of SEQ ID NOS: 40, 41 and 42 (respectively CDR1, CDR2 and CDR3)
  • the antibody or fragment thereof according to any one of (1) to (4), wherein the antibody or fragment thereof has a light chain variable region comprising: and has immunological reactivity with a CAPRIN-1 protein.
  • a pharmaceutical composition for treating and / or preventing cancer comprising the antibody or fragment thereof according to any one of (1) to (17) as an active ingredient.
  • the cancer is breast cancer, renal cancer, pancreatic cancer, colon cancer, lung cancer, brain tumor, stomach cancer, cervical cancer, ovarian cancer, prostate cancer, bladder cancer, esophageal cancer, leukemia, lymphoma, fibrosarcoma, mastocytoma or
  • a combined pharmaceutical for treatment and / or prevention of cancer comprising the pharmaceutical composition according to (18) or (19) and a pharmaceutical composition containing an antitumor agent.
  • Example 1 CAPRIN-1 Expression Analysis in Each Tissue Expression of the CAPRIN-1 gene in dogs and human normal tissues and various cell lines was examined by RT-PCR according to Example 1 (4) of WO2010 / 016526. As a result, strong expression was observed in testis in healthy dog tissues, while expression was observed in canine breast cancer and adenocarcinoma tissues.
  • Example 2 Production of mouse monoclonal antibody against CAPRIN-1 (1) Production of mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1 100 ⁇ g of human CAPRIN-1 protein having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 prepared in Example 3 of WO2010 / 016526 This was mixed with an equal amount of MPL + TDM adjuvant (manufactured by Sigma), and this was used as an antigen solution per mouse. The antigen solution was administered intraperitoneally to 6-week-old Balb / c mice (manufactured by Japan SLC), and then administered 7 times per week to complete immunization.
  • MPL + TDM adjuvant manufactured by Sigma
  • the obtained spleen cells and mouse myeloma cells SP2 / 0 purchased from ATCC were mixed at a ratio of 10: 1, and 200 ⁇ l of RPMI 1640 medium containing 10% FBS heated to 37 ° C. and PEG 1500 (Boehringer) PEG solution prepared by mixing 800 ⁇ l was added and allowed to stand for 5 minutes for cell fusion.
  • the cells were suspended in 150 ml of RPMI 1640 medium (HAT selective medium) containing 15% FBS to which 2% equivalent of Gibco's HAT solution was added. 100 ⁇ l per well of (made) was seeded on 15 plates. By culturing under conditions of 37 ° C. and 5% CO 2 for 7 days, a hybridoma in which spleen cells and myeloma cells were fused was obtained.
  • RPMI 1640 medium HAT selective medium
  • FBS Gibco's HAT solution
  • Hybridomas were selected using as an index the binding affinity of the antibody produced by the prepared hybridomas to the CAPRIN-1 protein.
  • 100 ⁇ l of CAPRIN-1 protein solution 1 ⁇ g / ml prepared by the method described in Example 3 of WO2010 / 016526 was added per well of a 96-well plate and allowed to stand at 4 ° C. for 18 hours. Each well was washed 3 times with PBS-T, and then added with 400 ⁇ l of 0.5% Bovine Serum Albumin (BSA) solution (manufactured by Sigma) per well and allowed to stand at room temperature for 3 hours.
  • BSA Bovine Serum Albumin
  • hybridomas were added to the plate so that the number was 0.5 per well of the 96-well plate and cultured. One week later, hybridomas forming a single colony in the well were observed. The cells in these wells were further cultured, and hybridomas were selected using the binding affinity of the antibody produced by the cloned hybridomas to the CAPRIN-1 protein as an index. 100 ⁇ l of CAPRIN-1 protein solution 1 ⁇ g / ml prepared by the method described in Example 3 of WO2010 / 016526 was added per well of a 96-well plate and allowed to stand at 4 ° C. for 18 hours.
  • TMB substrate solution manufactured by Thermo
  • 100 ⁇ l of TMB substrate solution 100 ⁇ l was added and allowed to stand for 15 to 30 minutes for color reaction.
  • 100 ⁇ l of 1N sulfuric acid was added per well to stop the reaction, and absorbance values at 450 nm and 595 nm were measured using an absorptiometer.
  • absorbance values at 450 nm and 595 nm were measured using an absorptiometer.
  • those showing reactivity on the cell surface of breast cancer cells expressing CAPRIN-1 were selected.
  • 10 6 human breast cancer cell lines MDA-MB-231V were centrifuged in a 1.5 ml microcentrifuge tube, and 100 ⁇ l of the culture supernatant of each hybridoma was added thereto, and 1 1 on ice. Let stand for hours. After washing with PBS, FITC-labeled goat anti-mouse IgG antibody (manufactured by Invitrogen) diluted 500-fold with PBS containing 0.1% FBS was added and allowed to stand on ice for 1 hour.
  • the fluorescence intensity was measured with a FACS caliber from Becton Dickinson.
  • the same operation as described above was performed using a serum of 6-week-old Balb / c mice that had not been treated in place of the antibody diluted 500-fold with a medium for hybridoma culture, and used as a control.
  • one mouse monoclonal antibody (mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1) having a higher fluorescence intensity than the control, ie, reacting with the cell surface of breast cancer cells, was selected.
  • Each peptide was dissolved in 0.1 M sodium carbonate buffer (pH 9.6) to a concentration of 30 ⁇ g / ml, and 100 ⁇ l was added per well of a 96-well plate (Nunc, product number: 436006). And left at 4 ° C. overnight. Discard the solution, add 200 ⁇ l of 10 mM ethanolamine / 0.1 M sodium carbonate buffer (PH 9.6) per well, let stand at room temperature for 1 hour, discard the solution, and PBS containing 0.5% Tween 20 By washing twice with (PBST), a plate on which each peptide was immobilized was prepared.
  • PBST PBS containing 0.5% Tween 20
  • TMB substrate solution manufactured by Thermo
  • 100 ⁇ l per well was added at 100 ⁇ l per well and allowed to stand for 15 to 30 minutes for color development reaction. After color development, 100 ⁇ l of 1N sulfuric acid was added per well to stop the reaction, and absorbance values at 450 nm and 595 nm were measured using an absorptiometer.
  • polypeptide of SEQ ID NO: 5 was identified as a partial sequence of CAPRIN-1 recognized by mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1 obtained in Example 2 (1).
  • mice Preparation of mouse anti-CAPRIN-1 antibodies # 2 and # 3
  • a fusion protein with limpet haemocyanin was mixed with an equal amount of adjuvant TiterMax Gold (registered trademark) (CytRx) and administered to the abdominal cavity of mice at a dose of 100 ⁇ g per time at an interval of 7 days.
  • spleen cells were obtained from mice 3 days after the final immunization and fused with mouse myeloma cells in the same manner as in (1) above to prepare hybridomas.
  • each antibody contained in the prepared culture supernatant of the hybridoma, 1 ⁇ g / ml of the CAPRIN-1 protein solution prepared in Example 3 of WO2010 / 016526, and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 used as the immunogen and the carrier protein Antibodies were selected using the reactivity of the fusion protein with BSA as an index.
  • 100 ⁇ l of a CAPRIN-1 protein solution 1 ⁇ g / ml prepared in Example 3 of WO2010 / 016526, 30 ⁇ g / ml of a fusion protein of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 and carrier protein BSA was added to each well of a 96-well plate. It left still at 4 degreeC for 18 hours.
  • Block Ace DS Pharma Biomedical solution was added per well and allowed to stand at room temperature for 3 hours. After removing the solution and washing the wells with PBS-T, 100 ⁇ l of each hybridoma culture supernatant obtained above was added per well and allowed to stand at room temperature for 2 hours. After washing each well with PBS-T, 100 ⁇ l of HRP-labeled anti-mouse IgG (H + L) antibody (manufactured by Invitrogen) diluted 5000 times with PBS was added per well and allowed to stand at room temperature for 1 hour.
  • HRP-labeled anti-mouse IgG (H + L) antibody manufactured by Invitrogen
  • TMB substrate solution manufactured by Thermo
  • 100 ⁇ l of TMB substrate solution manufactured by Thermo
  • 100 ⁇ l of 1N sulfuric acid was added per well to stop the reaction, and absorbance values at 450 nm and 595 nm were measured using an absorptiometer. As a result, a hybridoma producing an antibody having a high absorbance value was selected.
  • hybridomas were added to the plate so that the number was 0.3 per well of the 96-well plate and cultured. One week later, hybridomas forming a single colony in the well were observed. The cells of these wells are further cultured, and using the same method as described above using the binding affinity for the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 of the partial sequence of CAPRIN-1 of the antibody produced by the cloned hybridoma as an index, SEQ ID NO: A hybridoma producing an antibody against 5 amino acids was obtained.
  • the monoclonal antibodies produced by the obtained hybridomas those showing reactivity on the surface of breast cancer cells expressing CAPRIN-1 were selected.
  • 10 6 human breast cancer cell lines MDA-MB-231V were centrifuged in a 1.5 ml microcentrifuge tube, and 100 ⁇ l of the culture supernatant of each hybridoma was added thereto, and 1 1 on ice. Let stand for hours. After washing with PBS, FITC-labeled goat anti-mouse IgG antibody (manufactured by Invitrogen) diluted 500-fold with PBS containing 0.1% FBS was added and allowed to stand on ice for 1 hour.
  • mouse anti-CAPRIN-1 antibodies # 2 and # 3 specifically react with the polypeptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5, which is a partial sequence of CAPRIN-1 as an immunogen.
  • a solution containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 and a partial sequence of CAPRIN-1 not containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 prepared in a 0.1 M aqueous sodium carbonate solution at 30 ⁇ g / ml were respectively added to the 96-well plate immobilizer amino for ELISA (Nunk 100 ⁇ g / ml each, and allowed to react overnight at 4 ° C. to bind the peptides to the wells.
  • a 0.1 M sodium carbonate aqueous solution containing 10 mM ethanolamine was added to the well bound with the peptide and allowed to stand at room temperature for 1 hour. After removing the solution in the well, the plate was washed with PBS-T, and then 400 ⁇ l of Block Ace solution was added per well, and left at room temperature for 3 hours. After removing the solution in the well and washing with PBS-T, 50 ⁇ L of the culture supernatant containing mouse anti-CAPRIN-1 # 2 and # 3 was added to each well and allowed to react at room temperature for 1 hour.
  • the plate was washed with PBS-T, and 50 ⁇ l of HRP-labeled anti-mouse IgG (H + L) antibody (manufactured by Invitrogen) diluted 5000-fold with a block ace solution was added per well and allowed to stand at room temperature for 1 hour. After wells were washed thoroughly with PBS-T, 100 ⁇ l of TMB substrate solution (Thermo) was added per well and allowed to stand for 5 to 30 minutes for color reaction. After color development, 100 ⁇ l of 1N sulfuric acid was added per well to stop the reaction, and absorbance values at 450 nm and 595 nm were measured using an absorptiometer.
  • HRP-labeled anti-mouse IgG (H + L) antibody manufactured by Invitrogen
  • mice anti-CAPRIN-1 antibodies # 1, # 2, and # 3 Mouse anti-CAPRIN-1 antibodies # 1, # 2, and # 3 obtained in Examples 2 (1) and (3) was obtained in accordance with the method described in Example 5 of WO2010 / 016526, and an amplified fragment of the gene encoding the variable region was obtained, and the gene sequence and its amino acid sequence were analyzed.
  • the resulting gene sequence encoding the heavy chain variable region of mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1 is SEQ ID NO: 34
  • the amino acid sequence is SEQ ID NO: 29
  • the gene sequence encoding the light chain variable region is SEQ ID NO: 35 and the amino acid sequence are shown in SEQ ID NO: 33.
  • the gene sequence encoding the heavy chain variable region of the obtained mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 2 is SEQ ID NO: 44, the amino acid sequence is SEQ ID NO: 39, and the gene sequence encoding the light chain variable region is SEQ ID NO: The amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 43. Furthermore, the gene sequence encoding the heavy chain variable region of the obtained mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 3 is SEQ ID NO: 50, the amino acid sequence is SEQ ID NO: 49, and the gene sequence encoding the light chain variable region is SEQ ID NO: 45 and the amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 43.
  • mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1 includes the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 29 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 33, and CDRs 1 to 3 in the heavy chain variable region are SEQ ID NO: 26 and SEQ ID NO: 27 and SEQ ID NO: 28, and it was confirmed that CDRs 1 to 3 in the light chain variable region consisted of the amino acid sequences of SEQ ID NO: 30, SEQ ID NO: 31, and SEQ ID NO: 32, respectively.
  • the mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 2 includes a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 39 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 43, and CDRs 1 to 3 in the heavy chain variable region are SEQ ID NO: 36 and SEQ ID NO: 37 and SEQ ID NO: 38, and it was confirmed that CDRs 1 to 3 in the light chain variable region consisted of the amino acid sequences of SEQ ID NO: 40, SEQ ID NO: 41, and SEQ ID NO: 42, respectively.
  • mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 3 comprises a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 49 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 43, of which CDRs 1 to 3 in the heavy chain variable region are SEQ ID NO: 46 and SEQ ID NO: It was confirmed that CDRs 1 to 3 in the light chain variable region consisted of amino acid sequences of SEQ ID NO: 40, SEQ ID NO: 41, and SEQ ID NO: 42, respectively.
  • Example 3 Production of Polyclonal Antibody against CAPRIN-1 Partial Polypeptide Present on Cancer Cell Surface
  • Example 1 A polypeptide containing the epitope region of the anti-CAPRIN-1 antibody # 1 obtained in (5), the amino acid residue number 50 to 50 in the amino acid sequence of human CAPRIN-1 represented by SEQ ID NO: 2
  • a polypeptide of 98 regions and a polypeptide of amino acid residue numbers 233 to 305 in SEQ ID NO: 2 were synthesized. Each 1 mg of these peptides was mixed with an equal volume of incomplete Freund's adjuvant (IFA) solution as an antigen, and this was administered subcutaneously to rabbits 4 times every 2 weeks.
  • IFA incomplete Freund's adjuvant
  • Example 4 Expression Analysis of CAPRIN-1 Protein on Cancer Cell Membrane Surface Using Polyclonal Antibody to CAPRIN-1 Partial Polypeptide
  • ZR75 eight human breast cancer cell lines (ZR75) in which the expression of CAPRIN-1 gene was confirmed to be high -1, MCF7, T47D, SK-BR-3, MDA-MB-157, BT-20, MDA-MB-231V, MRK-nu-1)
  • the CAPRIN-1 protein is expressed on the cell surface.
  • 5 ⁇ 10 5 cells of each human breast cancer cell line in which gene expression was observed were centrifuged in a 1.5 ml microcentrifuge tube.
  • the same operation as described above was performed using the control antibody prepared as described above in Example 3 instead of the polyclonal antibody against the CAPRIN-1-derived peptide, and used as a control.
  • the fluorescence intensity of the cells to which the anti-CAPRIN-1 antibody was added was 35% or more stronger than that of the control. This confirmed that the CAPRIN-1 protein was expressed on the cell membrane surface of the human cancer cell line.
  • the enhancement rate of the fluorescence intensity is represented by the increase rate of the average fluorescence intensity (MFI value) in each cell, and was calculated by the following calculation formula.
  • kidney cancer cell lines Caki-1, Caki-2
  • bladder cancer cell line T24
  • ovarian cancer cell line SKOV3
  • lung cancer cell lines QG56, A549
  • prostate cancer cell line PC3
  • cervical cancer cell line SW756
  • fibrosarcoma cell line HT1080
  • T98G U87MG
  • gastric cancer cell line MKN28
  • colon cancer cell line The fluorescence intensity was measured for 3 types (Lovo, DLD-1, HCT-116) and 4 types of pancreatic cancer cell lines (Capan-2, MIAPaCa-2, Panc-1, BxPC-3).
  • the cancer cells also had a fluorescence intensity of 35% or more.
  • Example 5 Production of Human-Mouse Chimeric Anti-CAPRIN-1 Antibody Purified after treating both ends of the gene amplified fragment containing the heavy chain variable region of mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1 obtained in Example 2 with restriction enzyme treatment
  • a human IgG1 heavy chain constant region containing a mouse antibody-derived leader sequence and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 was inserted into a previously inserted pcDNA4 / myc-His (Invitrogen) vector according to a conventional method.
  • both ends of the amplified gene fragment containing the light chain variable region of mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1 were purified after restriction enzyme treatment, and the human IgG1 leader sequence derived from the mouse antibody and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 were purified.
  • the L chain constant region was inserted into the already inserted pcDNA3.1 / myc-His (Invitrogen) vector according to a conventional method.
  • the above recombinant vector in which the heavy chain variable region of the mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1 is inserted and the above recombinant vector in which the light chain variable region is inserted are selected from CHO-K1 cells (from RIKEN Cell Bank). Introduced). Specifically, 2 ⁇ 10 5 CHO-K1 cells cultured in Ham's F12 medium (manufactured by Invitrogen) containing 1 ml of 10% FBS per well of a 12-well culture plate were mixed with PBS ( ⁇ ).
  • variable region of mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1 obtained in Example 2 is obtained by seeding CHO-K1 cells into which the above recombinant vector has been introduced so that there are 0.5 per well of the well plate.
  • a cell line stably producing human-mouse chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 was prepared.
  • Mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 2 and mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 3 were treated in the same manner as mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1, and anti-CAPRIN-1 antibody # 2 and anti-CAPRIN obtained in Example 2 were used.
  • -1 cell lines that stably produce human-mouse chimeric monoclonal antibody # 2 and human-mouse chimeric monoclonal antibody # 3 having the variable region of antibody # 3 were prepared.
  • the prepared cell line was cultured for 5 days in 30 ml of OptiCHO medium (manufactured by Invitrogen) at 5 ⁇ 10 5 cells / ml using 150 cm 2 flask and containing no serum, and human-mouse chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 A culture supernatant containing was obtained. Culture supernatants containing human-mouse chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 2 and human-mouse chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 3 were also obtained in the same manner.
  • a mouse-derived anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody described in WO2010 / 016526 which has the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 26 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 27 in the same document
  • Comparative antibody 2 having a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 28 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 29,
  • Comparative antibody 3 having a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 30 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 31, SEQ ID NO: 32
  • Comparative antibody 6 having the region and the light chain variable region of SEQ ID NO: 37
  • Comparative antibody 7 having the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 38 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 39
  • an anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody described in WO2011 / 096534 comprising a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 43 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 47 in the same document
  • a comparative antibody 24 having a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 43 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 51, a comparative antibody 26 having a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 63 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 67 In the same manner as described above, cell lines that stably produce human-mouse chimeric comparative antibodies 1 to 26, which are comparative samples, were prepared.
  • eight human breast cancer cell lines (ZR75-1, MCF7, T47D) in which the expression of the CAPRIN-1 gene was confirmed SK-BR-3, MDA-MB-157, BT-20, MDA-MB-231V, MRK-nu-1), two renal cancer cell lines (Caki-1, Caki-2), bladder cancer cell line (T24), ovarian cancer cell line (SKOV3), two lung cancer cell lines (QG56, A549), prostate cancer cell line (PC3), cervical cancer cell line (SW756), fibrosarcoma cell line (HT1080), brain tumor cells 2 strains (T98G, U87MG), gastric cancer cell line (MKN28), 3 colon cancer cell lines (Lovo, DLD-1, HCT-116), 4 pancreatic cancer cell lines (Capa) -2, MIAPaCa-2, Panc-1, and BxPC-3), using the
  • mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1 showed a reactivity with a fluorescence intensity 30% or more stronger than that of the negative control.
  • mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 2 and # 3 obtained the same results as mouse anti-CAPRIN-1 antibody # 1.
  • human-mouse chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 human-mouse chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 2 and human-mouse chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 3 prepared in Example 5 were subjected to Hitrap Protein A Sepharose FF ( The results of evaluating the reactivity to the above cancer cell lines were the same for those purified with GE Healthcare), substituted with PBS (-) and filtered with a 0.22 ⁇ m filter (Millipore). It was the result.
  • FITC-labeled goat anti-human IgG (H + L) antibody was used as a secondary antibody.
  • the enhancement rate of the fluorescence intensity is represented by the increase rate of the average fluorescence intensity (MFI value) in each cell, and was calculated by the following calculation formula.
  • Example 7 Anti-tumor activity of anti-CAPRIN-1 antibody against cancer cells To evaluate the cytotoxicity of an antibody against the CAPRIN-1-derived peptide shown in SEQ ID NO: 5 against cancer cells expressing CAPRIN-1, ADCC Activity was measured. Evaluation was performed using a rabbit polyclonal antibody against the peptide shown in SEQ ID NO: 5 prepared in Example 3. As an antibody to be compared, a rabbit polyclonal antibody against other human CAPRIN-1-derived peptides (a polyclonal antibody against amino acid residues 50-98 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 prepared in Example 3 and amino acids) Rabbit polyclonal antibody against residues Nos. 233 to 305) was used, and the control antibody derived from the untreated normal rabbit serum prepared in Example 3 was similarly evaluated as a negative control.
  • a rabbit polyclonal antibody against other human CAPRIN-1-derived peptides a polyclonal antibody against amino acid residues 50-98 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 prepared
  • Caprin-1 expression is human breast cancer cell lines have been identified MDA-MB-231V, human colon cancer cell line DLD-1, human pancreatic cancer cell line Capan-2, human lung cancer cell lines QG56 10 six 50ml ml Collected in a centrifuge tube, 100 ⁇ Ci of chromium 51 was added and incubated at 37 ° C. for 2 hours. Thereafter, the plate was washed 3 times with RPMI 1640 medium containing 10% fetal bovine serum, and 2 ⁇ 10 3 pieces were added per well of a 96-well V-bottom plate.
  • rabbit polyclonal antibodies against the human CAPRIN-1-derived peptide shown in SEQ ID NO: 5 include two rabbit polyclonal antibodies against the human CAPRIN-1-derived peptide shown in SEQ ID NO: 5 and two other rabbit polyclonal antibodies against the other human CAPRIN-1-derived peptides (amino acid residues of SEQ ID NO: 2 of human CAPRIN-1). 1 ⁇ g each of a rabbit polyclonal antibody against numbers 50 to 98 and a rabbit polyclonal antibody against amino acid residues 233-305), and 4 ⁇ 10 5 lymphocytes separated from human and rabbit peripheral blood according to a standard method. After the addition, the cells were cultured at 37 ° C. under 5% CO 2 for 4 hours.
  • the amount of chromium (Cr) 51 in the culture supernatant released from the damaged cancer cells was measured, and the ADCC activity against the cancer cells by the rabbit polyclonal antibody against each human CAPRIN-1-derived peptide was calculated.
  • a rabbit polyclonal antibody obtained by immunizing a human CAPRIN-1 partial peptide having the amino acid sequences of amino acid residues 50 to 98 and amino acid residues 233 to 305 of SEQ ID NO: 2 of human CAPRIN-1 The activity in human breast cancer cell line MDA-MB-231V, human colon cancer cell line DLD-1, human pancreatic cancer cell line Capan-2, and human lung cancer cell line QG56 was less than 8% for each antibody.
  • the group to which a rabbit polyclonal antibody against the human CAPRIN-1-derived peptide shown in SEQ ID NO: 5 was added was confirmed to have a cytotoxic activity of 28% or more against any cancer cell line.
  • the negative control antibody was less than 5% active against any cancer cell. Therefore, it was revealed that the antibody against CAPRIN-1 shown in SEQ ID NO: 5 exerts strong cytotoxic activity against cancer cells that express CAPRIN-1.
  • the cytotoxic activity was obtained by mixing 2 ⁇ 10 3 cancer cell lines incorporating the antibody against CAPRIN-1 used in the present invention, lymphocytes and chromium 51 and culturing for 4 hours. This is the result of measuring the amount of chromium 51 released into the culture medium after culturing and showing the cytotoxic activity against the cancer cell line calculated by the following calculation formula * .
  • Cytotoxic activity (%) chromium 51 release from target cells upon addition of antibody against CAPRIN-1 and lymphocytes ⁇ chromium 51 release from target cells added with 1N hydrochloric acid ⁇ 100.
  • Each cell culture supernatant producing the antibody was purified using Hitrap Protein A Sepharose FF (manufactured by GE Healthcare) according to a standard method, replaced with PBS ( ⁇ ), and filtered through a 0.22 ⁇ m filter (manufactured by Millipore). This was used as an antibody for activity measurement.
  • human breast cancer cell lines MDA-MB-231V, human colon cancer cell line DLD-1, human pancreatic cancer cell line Capan-2 and human lung cancer cell line QG56 were collected in a 50 ml centrifuge tube and 100 ⁇ Ci of chromium 51 And incubated at 37 ° C. for 2 hours. Thereafter, the cells were washed 3 times with RPMI 1640 medium containing 10% FBS, and 2 ⁇ 10 3 cells were added per well of a 96-well V-bottom plate to obtain target cells.
  • a cell population containing human NK cells was separated from human peripheral blood lymphocyte cells prepared according to a conventional method using a conventional method.
  • Cell populations containing human NK cells are prepared by using antibodies (anti-antibodies) labeled with FITC fluorescent dyes from human peripheral blood mononuclear cells separated using a specific gravity separation solution Histopaque (Sigma Aldrich) for the separation of peripheral blood mononuclear cells.
  • the amount of chromium 51 in the culture supernatant released from the damaged tumor cells was measured, and the cytotoxic activity against cancer cells by the anti-CAPRIN-1 antibody was calculated.
  • a negative control was added with an isotype control antibody.
  • the cytotoxic activity when using an isotype control antibody is less than 5% for any cancer cell, and the cytotoxic activity when using human-mouse chimeric comparative monoclonal antibodies 1 to 26 is MDA.
  • the human-mouse chimeric anti-CAPRIN-1 antibodies # 1, # 2, and # 3 were found to have cytotoxic activity of 12% or more, whereas the amount was less than 4%.
  • the cytotoxic activity is 2 ⁇ 10 3 cancer cell lines into which the antibody against CAPRIN-1 used in the present invention, lymphocyte (population containing NK cells) cells and chromium 51 are incorporated.
  • the mixture was cultured for 4 hours, and the amount of chromium 51 released into the culture medium after the culture was measured.
  • the results show the cytotoxic activity against cancer cell lines calculated by the following calculation formula * .
  • Cytotoxic activity (%) antibody against CAPRIN-1 and lymphocyte (population including NK cells) cells added with chromium 51 released from target cells ⁇ chromium from target cells with 1N hydrochloric acid added 51 free x 100.
  • Example 8 Number of molecules of CAPRIN-1 on the surface of various cancer cells recognized by anti-CAPRIN-1 antibody # 1 Human breast cancer cell line (MDA-MB-231V), renal cancer cell line (Caki-1), bladder cancer cell Strain (T24), ovarian cancer cell line (SKOV3), lung cancer cell line (QG56, A549), pancreatic cancer cell line (Capan-2), prostate cancer cell line (PC3), cervical cancer cell line (SW756), fiber About sarcoma cell line (HT1080), brain tumor cell line (T98G), gastric cancer cell line (MKN28), colon cancer cell line (Lovo, DLD-1), leukemia cell line (AML5), lymphoma cell line (Ramos)
  • the number of CAPRIN-1 molecules recognized on the surface of various cancer cells recognized by the CAPRIN-1 antibodies # 1, # 2, and # 3 is determined by the molecular number measurement kit “QIFIKIT” (DAKO) ) Was investigated using.
  • DAKO molecular number measurement kit
  • anti-CAPRIN-1 antibody # 1 and comparative antibody 1 to comparative antibody 26 were diluted with PBS to a final concentration of 5 ⁇ g / ml and added to each cell line and allowed to react for 30 minutes. It was. After washing with PBS, together with the calibration beads attached to the kit, the fluorescently labeled secondary antibody anti-mouse IgG antibody attached to the kit was added to each cell line and allowed to stand on ice for 45 minutes. After washing each cell line and calibration beads with PBS, the fluorescence intensity was measured with a FACS caliber manufactured by Becton Dickinson Co., Ltd., and the average fluorescence intensity value (mean) was obtained. Further, the same measurement was performed for the comparative antibody to obtain mean.
  • a reaction with an isotype control antibody was used to obtain mean.
  • the number of molecules was calculated using each average fluorescence intensity value (mean) according to the method attached to the kit.
  • the number of molecules of CAPRIN-1 on the surface of various cancer cells recognized by the mouse anti-CAPRIN-1 antibodies # 1, # 2, and # 3 and the comparative antibodies 12 to 26 was found in all human cancer cells examined.
  • the number of cells was 10 5 or more per cell.
  • the comparative antibody 1-11 was less than 10 5 per cell.
  • Example 9 Production of Anti-CAPRIN-1 Monoclonal Antibody Using Rabbit
  • Rabbit Anti-CAPRIN-1 Monoclonal Antibody # 1 300 ⁇ g of antigen protein (human CAPRIN-1) was mixed with an equal volume of Freund's complete adjuvant, This was used as an antigen solution per rabbit. In the second and subsequent immunizations, those mixed with incomplete adjuvant with Frein were used. Immunization was completed by administering the antigen solution into the abdominal cavity of a 7-week-old rabbit 7 times every 4 weeks.
  • the obtained spleen cells and rabbit myeloma cells were mixed at a ratio of 5: 1, and 200 ⁇ l of IMDM medium containing 10% FBS heated to 37 ° C. and 800 ⁇ l of PEG 1500 (Boehringer) were mixed. The prepared PEG solution was added and allowed to stand for 5 minutes for cell fusion.
  • the cells were suspended in 300 ml of IMDM medium (HAT selective medium) containing 10% FBS to which 2% equivalent of Gibco's HAT solution was added. 100 ⁇ l per well of (made) was seeded on 30 plates. By culturing under conditions of 37 ° C. and 5% CO 2 for 7 days, a hybridoma in which spleen cells and rabbit myeloma cells were fused was obtained.
  • IMDM medium HAT selective medium
  • FBS Gibco's HAT solution
  • Hybridomas were selected using as an index the reactivity of the antibody produced by the prepared hybridomas with the CAPRIN-1 protein.
  • 100 ⁇ l of CAPRIN-1 protein solution (1 ⁇ g / ml) was added per well of a 96-well plate and allowed to stand at 4 ° C. for 18 hours.
  • Each well was washed 3 times with PBS-T, and then added with 400 ⁇ l of 0.5% Bovine Serum Albumin (BSA) solution (manufactured by Sigma) per well and allowed to stand at room temperature for 3 hours.
  • BSA Bovine Serum Albumin
  • hybridomas were added to the plate so that the number was 0.5 per well of the 96-well plate and cultured. One week later, hybridomas forming a single colony in the well were observed. Cells in these wells were further cultured, and hybridomas were selected using the reactivity of antibodies produced by the cloned hybridomas to the CAPRIN-1 protein as an index. 100 ⁇ l of CAPRIN-1 protein solution (1 ⁇ g / ml) was added per well of a 96-well plate and allowed to stand at 4 ° C. for 18 hours. After washing each well 3 times with PBS-T, 400 ⁇ l of 0.5% BSA solution was added per well and allowed to stand at room temperature for 3 hours.
  • the fluorescence intensity was measured with a FACS caliber from Becton Dickinson.
  • the same operation as described above was performed using a culture medium for hybridoma culture, and used as a negative control sample.
  • the fluorescence intensity was stronger than that of the negative control, that is, one rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody (rabbit anti-PRA-1) that reacts on the cell surface of cancer cells MDA-MB-231 and QG56 expressing CAPRIN-1.
  • the CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 was selected.
  • CAPRIN-1 epitope recognized by the selected rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 was identified.
  • 93 candidate peptides consisting of 12 to 16 amino acids in the amino acid sequence of human CAPRIN-1 protein were synthesized and dissolved in DMSO to a concentration of 1 mg / ml each.
  • a secondary antibody solution obtained by diluting the anti-rabbit IgG antibody labeled with HRP 3000-4000 times with PBST was added to each well, and then the solution was removed, followed by washing 6 times with PBST.
  • a TMB substrate solution (Thermo) was added at 100 ⁇ L per well and allowed to stand for 15 to 30 minutes for color development reaction. After color development, 100 ⁇ L of 1N sulfuric acid was added per well to stop the reaction, and absorbance values at 450 nm and 595 nm were measured using an absorptiometer.
  • the rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 is only a polypeptide having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 5 among the 93 synthesized peptides that are partial sequences of CAPRIN-1. And no reactivity with other polypeptides. Also. Rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 showed specific reactivity with CAPRIN-1 protein. From this result, it was found that the epitope of rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 was contained in the polypeptide of SEQ ID NO: 5.
  • the resulting rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 has the heavy chain variable region shown in SEQ ID NO: 52 and the CDR1-3 in the heavy chain variable region represented by SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 9, and SEQ ID NO: 10, respectively. It was confirmed that the light chain variable region shown in SEQ ID NO: 54 and CDRs 1 to 3 in the light chain variable region consist of amino acid sequences of SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12, and SEQ ID NO: 13, respectively.
  • Example 9 (1) a human-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 against a polypeptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5, which is an epitope of the CAPRIN-1 protein and the rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1
  • human-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 has the CAPRIN-1 protein and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the same manner as rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1. It was confirmed to have reaction specificity for the polypeptide.
  • the human-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 showed a reactivity with a fluorescence intensity 30% or more stronger than the negative control. From this, it was confirmed that a part of the CAPRIN-1 protein represented by SEQ ID NO: 5 was expressed on the cell membrane surface of the human cancer cell line.
  • the enhancement rate of the fluorescence intensity is represented by the increase rate of the average fluorescence intensity (MFI value) in each cell, and was calculated by the following calculation formula.
  • Average fluorescence intensity increase rate (fluorescence intensity enhancement rate) (%) ((MFI value of cells reacted with anti-CAPRIN-1 antibody) ⁇ (control MFI value)) ⁇ (control MFI value) ⁇ 100.
  • the gene shown in SEQ ID NO: 51 for expressing the heavy chain variable region of the rabbit anti-CAPRIN-1 antibody # 1 and the gene shown in SEQ ID NO: 53 for expressing the light chain variable region are respectively mixed with the heavy chain of mouse IgG1. Insert into a mammalian cell expression vector into which a chain constant region has been inserted and a mammalian cell expression vector into which a light chain constant region of human IgG1 has been inserted, and introduce two recombinant expression vectors into mammalian cells according to a conventional method.
  • a culture supernatant containing rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 was obtained and purified in the same manner as above to obtain mouse-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1.
  • mouse-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 the number of molecules of SEQ ID NO: 5 recognized by the human-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 in the above human cancer cells was measured commercially.
  • kit "QIFIKIT" (DAKO Corp.) was measured by using the leukemia cell line AML5 and lymphoma cell lines Ramos were 10 5 per cell. Other human cancer cells was 10 5 or more.
  • Example 5 Purified human-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 and human-mouse chimeric comparative monoclonal antibodies 1-26 obtained in Example 5 were each placed in a 96-well V-bottom plate to a final concentration of 5 ⁇ g / ml. Added. Next, human NK cells were separated from human peripheral blood lymphocyte cells prepared according to a conventional method, and 2 ⁇ 10 5 cells were added per well.
  • Human NK cells were separated from human peripheral blood mononuclear cells separated using a specific gravity separation solution Histopaque (Sigma Aldrich) for separation of peripheral blood mononuclear cells using an NK cell separation kit (Milteny). Things were used. 2 ⁇ 10 3 cells were mixed per well in a 96-well V-bottom plate to which the target and antibody had been added, and cultured under conditions of 37 ° C., 5%, CO 2 for 4 hours. After the culture, the amount of chromium 51 in the culture supernatant released from the damaged tumor cells was measured, and the cytotoxic activity against cancer cells by the anti-CAPRIN-1 antibody was calculated. A negative control was added with an isotype control antibody.
  • the cytotoxic activity using the isotype control antibody is less than 6% for any cancer cell
  • the cytotoxic activity using the human-mouse chimeric comparative monoclonal antibodies 1 to 26 is MDA. -5% for MB-231V, less than 8% for MCF7 and SK-Br-3, less than 10% for human colon cancer cell line DLD-1, less than 8% for human pancreatic cancer cell line Capan-2, human lung cancer cell line ⁇ 5% for QG56, ⁇ 11% for renal cancer cell line Caki-2, ⁇ 12% for ovarian cancer cell line SKOV3, ⁇ 10% for prostate cancer cell lines PC3 and DU-145, ⁇ 7% for brain tumor cell line T98G Human gastric cancer cell line MKN28 was less than 12%, leukemia cell line AML5 and lymphoma cell line Ramos was less than 3%, whereas Chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 is 23% for MDA-MB-231V, 38% for MCF7, 23% for
  • the antibody human-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 against the CAPRIN-1-derived peptide shown in SEQ ID NO: 5 exhibits antitumor activity against cancer cells expressing CAPRIN-1 by ADCC activity. Became clear. It was also revealed that the human-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 exhibits stronger cytotoxic activity against human cancer cells than the comparative antibodies 1-26.
  • the cytotoxic activity was obtained by mixing 2 ⁇ 10 3 cancer cell lines incorporating the antibody against CAPRIN-1 used in the present invention, NK cells, and chromium 51 and culturing for 4 hours. This is the result of measuring the amount of chromium 51 released into the culture medium after culturing and showing the cytotoxic activity against the cancer cell line calculated by the following calculation formula * .
  • Human breast cancer cell line SK-BR-3, human pancreatic cancer cell line Capan-2, and human prostate cancer cell PC-3 are seeded in a 96-well plate at 5 ⁇ 10 2 cells / well in RPMI medium containing 10% FBS. did.
  • human-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 antibody # 1 as a primary antibody or human IgG1 antibody as an isotype control was added to a final concentration of 300 ng / ml, respectively, followed by Hum-ZAP as a secondary antibody at a final concentration of 300 ng. / Ml and cultured at 37 ° C. for 5 days. After culturing for 5 days, cell proliferation was evaluated by measuring absorbance with a microplate reader using Cell counting Kit-8 (Dojindo Laboratories).
  • a humanized antibody of rabbit anti-CAPRIN-1 antibody # 1 was prepared. Based on the amino sequence information of the heavy chain variable region of the rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 confirmed in Example 9 (2), CDRs 1 to 3 in the heavy chain variable region are SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 9, and The base sequence of SEQ ID NO: 15 is designed so that the heavy chain variable region (SEQ ID NO: 16) comprising the amino acid of SEQ ID NO: 14 and the framework region containing the sequence of the human antibody can be expressed. It was inserted into a mammalian cell expression vector into which the chain constant region had been inserted.
  • CDRs 1 to 3 in the light chain variable region are composed of amino acids of SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12 and SEQ ID NO: 13, and the framework region includes a human antibody sequence (SEQ ID NO: 18).
  • SEQ ID NO: 18 was designed, and inserted into a mammalian cell expression vector into which a light chain constant region of human IgG1 was inserted.
  • the above two recombinant expression vectors were introduced into mammalian cells according to a conventional method to obtain a culture supernatant containing humanized rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 (humanized anti-CAPRIN-1 antibody # 1).
  • CDR1 to 3 consist of amino acids of SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10, and the framework region is human.
  • the base sequence of SEQ ID NO: 20 is designed so that the heavy chain variable region (SEQ ID NO: 21) containing the antibody sequence can be expressed, and this is used as a mammalian cell expression vector into which the heavy chain constant region of human IgG1 is inserted. Inserted.
  • CDRs 1 to 3 in the light chain variable region are composed of amino acids of SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12 and SEQ ID NO: 13, and the framework region includes a human antibody sequence (SEQ ID NO: 23).
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 22 was designed so that can be expressed, and this was inserted into a mammalian cell expression vector into which the light chain constant region of human IgG1 was inserted.
  • the above two recombinant expression vectors were introduced into mammalian cells according to a conventional method to obtain a culture supernatant containing humanized rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 (humanized anti-CAPRIN-1 antibody # 2).
  • CDR1 to 3 consist of amino acids of SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10, and the framework region is human.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 24 is designed so that the heavy chain variable region (SEQ ID NO: 25) containing the antibody sequence can be expressed, and this is used as a mammalian cell expression vector into which the heavy chain constant region of human IgG1 is inserted. Inserted.
  • CDRs 1 to 3 in the light chain variable region are composed of amino acids of SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12 and SEQ ID NO: 13, and the framework region includes a human antibody sequence (SEQ ID NO: 23).
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 22 was designed so that can be expressed, and this was inserted into a mammalian cell expression vector into which the light chain constant region of human IgG1 was inserted.
  • the above two recombinant expression vectors were introduced into mammalian cells according to a conventional method to obtain a culture supernatant containing humanized rabbit anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1 (humanized anti-CAPRIN-1 antibody # 3).
  • various cancer cells of these three humanized anti-CAPRIN-1 monoclonal antibodies (human breast cancer cell lines MDA-MB-231, MCF7, SK-Br-3, human colon cancer cell line DLD-1, human pancreatic cancer cells)
  • Strain Capan-2, human lung cancer cell line QG56, renal cancer cell line Caki-2, ovarian cancer cell line SKOV3, prostate cancer cell line PC3, DU-145, brain tumor cell line T98G, stomach cancer cell line MKN28, pancreatic cancer cell line Capan -2, antitumor activity against leukemia cell line AML5 and lymphoma cell line Ramos) was evaluated in the same manner as in Example 9 (3). All antibodies were the same as human-rabbit chimeric anti-CAPRIN-1 monoclonal antibody # 1. Showed a level of anti-tumor activity.
  • the antibody of the present invention is useful for the treatment and / or prevention of cancer.

Abstract

　本発明は、癌細胞の表面に特異的に発現する癌抗原タンパク質を標的とした抗体及びその癌の治療及び／又は予防剤としての用途、具体的には、配列番号５で表されるアミノ酸配列又は該アミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるＣＡＰＲＩＮ－１部分ポリペプチドと免疫学的反応性を有する抗体又はそのフラグメント、並びにそれを有効成分として含むことを特徴とする、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物を提供する。

Description

癌の治療及び／又は予防用医薬組成物
　本発明は、ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体又はそのフラグメントの、癌の治療及び／又は予防剤等としての新規な医薬用途に関する。
　癌は全死亡原因の第一位を占める疾患であり、現在行われている治療は手術療法を主体に放射線療法と化学療法を組み合わせたものである。近年の新しい手術法の開発や新たな抗癌剤の発見にも関わらず、一部の癌を除いて、癌の治療成績はあまり向上していないのが現状である。近年、分子生物学や癌免疫学の進歩によって、癌に特異的に反応する抗体類、細胞障害性Ｔ細胞により認識される癌抗原類、癌抗原をコードする遺伝子類等が同定されており、癌抗原類をターゲットにした特異的癌治療法への期待が高まっている（非特許文献１）。
　癌治療法においては、副作用を軽減するため、その抗原として認識されるペプチド、ポリペプチド又はタンパク質は、正常細胞にはほとんど存在せず、癌細胞に特異的に存在していることが望ましい。１９９１年、ベルギー国Ｌｕｄｗｉｇ研究所のＢｏｏｎらは自己癌細胞株と癌反応性Ｔ細胞を用いたｃＤＮＡ発現クローニング法によりＣＤ８陽性Ｔ細胞が認識するヒトメラノーマ抗原ＭＡＧＥ１を単離した（非特許文献２）。その後、癌患者の生体内で自己の癌に反応して産生される抗体が認識する腫瘍抗原を遺伝子の発現クローニングの手法を取り入れて同定する、ＳＥＲＥＸ（ｓｅｒｏｌｏｇｉｃａｌ　ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｎｔｉｇｅｎｓ　ｂｙ　ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｃｌｏｎｉｎｇ）法が報告され（非特許文献３及び特許文献１）、この方法により、正常細胞にはほとんど発現がなく、癌に特異的に発現するいくつかの癌抗原が単離されている（非特許文献４～９）。さらに、その一部をターゲットにして、癌抗原に特異的に反応する免疫細胞を用いた細胞療法や、癌抗原を含むワクチン等の癌特異的免疫療法の臨床試験が実施されている。
　一方、近年、癌細胞上の抗原タンパク質を標的にした、癌を治療するための各種抗体医薬が世の中に台頭してきた。癌特異的治療薬として一定の薬効が得られ注目されているが、標的となる抗原タンパク質の大部分は正常細胞にも発現するものであり、抗体投与の結果、癌細胞だけでなく、抗原が発現する正常細胞も障害されてしまい、その結果生じる副作用が問題になっている。したがって、癌細胞表面に特異的に発現する癌抗原を同定し、それを標的とした抗体を医薬品として使用することができれば、より副作用の少ない抗体医薬による治療が可能になると期待される。
　Ｃｙｔｏｐｌａｓｍｉｃ－　ａｎｄ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ－ａｓｓｏｃｉａｔｅｅｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ　１（ＣＡＰＲＩＮ－１）は、休止期の正常細胞が活性化や細胞分裂を起こす際に発現し、また細胞内でＲＮＡと細胞内ストレス顆粒を形成してｍＲＮＡの輸送、翻訳の制御に関与することなどが知られている細胞内タンパク質として知られていたが、癌細胞の表面に特異的に発現することが見出され、癌治療のための抗体医薬のターゲットとして研究が進められている（特許文献２）。
米国特許第５６９８３９６号 ＷＯ２０１０／０１６５２６
秋吉毅，「癌と化学療法」、１９９７年、第２４巻、ｐ５５－５１９（癌と化学療法社、日本） Ｂｒｕｇｇｅｎ　Ｐ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２５４：１６４３－１６４７（１９９１） Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ，　９２：１１８１０－１１８１３（１９９５） Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，７２：９６５－９７１（１９９７） Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．，　５８：１０３４－１０４１（１９９８） Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，２９：６５２－６５８（１９９８） Ｉｎｔ．Ｊ．Ｏｎｃｏｌ．，１４：７０３－７０８（１９９９） Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．，　５６：４７６６－４７７２（１９９６） Ｈｕｍ．　Ｍｏｌ．　Ｇｅｎｅｔ６：３３－３９，　１９９７
　本発明の目的は、癌細胞の表面に特異的に発現するＣＡＰＲＩＮ－１を標的とした、従来の抗体よりも抗腫瘍活性の優れた抗体を作出し、癌の治療及び／又は予防剤としての用途を提供することである。
　本発明は、以下の特徴を有する。
　本発明は、配列番号５で表されるアミノ酸配列、又は該アミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有するＣＡＰＲＩＮ－１の部分ポリペプチドと免疫学的反応性を有する抗体又はそのフラグメント、並びにそれを有効成分として含むことを特徴とする、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物を提供する。
　その実施形態において、上記癌は、乳癌、腎癌、膵臓癌、大腸癌、肺癌、脳腫瘍、胃癌、子宮頸癌、卵巣癌、前立腺癌、膀胱癌、食道癌、白血病、リンパ腫、線維肉腫、肥満細胞腫又はメラノーマである。
　別の実施形態において、上記抗体は、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体である。
　別の実施形態において、上記抗体は、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体、又は多重特異性抗体（例えば、二重特異性抗体）である。
　本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願2012-035238号の明細書及び／又は図面に記載される内容を包含する。
　本発明に係るＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体は、従来のＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体よりも強く癌細胞を障害する。したがって、本発明に係るＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体は癌の治療や予防に有用である。
　本発明に係る抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１の所定の部分ポリペプチドを認識し結合する抗体であり、抗腫瘍活性を有する。本発明に係る抗体は、より具体的には、配列番号５で表されるアミノ酸配列、又は該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなる、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の部分ポリペプチド（ＣＡＰＲＩＮ－１部分ポリペプチド）を認識する（すなわち、免疫学的反応性を有する）抗体である。本発明では、この抗体が、従来のＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質に対する抗体よりも強い抗腫瘍活性を示すことを明らかにした。本発明は、上記のようなＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の断片に結合し、かつ、抗腫瘍活性を示すすべての抗体に関する。
　本発明に係る上記のＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体は、抗腫瘍活性を発揮しうる限りいかなる種類の抗体であってもよく、例えば、組換え抗体（例えば、合成抗体、多重特異性抗体（例えば、二重特異性抗体）、ヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体（ｓｃＦｖ）等）、ヒト抗体、それらの抗体フラグメント（例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ等）を含む。これらの抗体及びそのフラグメントはまた、当業者に公知の方法により調製することが可能である。本発明に係る抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質又はその部分ポリペプチドと免疫学的反応性を有する、すなわち、抗原－抗体反応を介してＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と結合すること、好ましくはＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と特異的に結合することが望ましい。ここで、「ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と特異的に結合する」とは、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質に特異的に結合し、それ以外のタンパク質と実質的に結合しないことを意味する。本発明に係る抗体は、モノクローナル抗体であることが好ましいが、均質な抗体を安定に生産できるかぎり、ポリクローナル抗体であってもよい。また、被験者がヒトである場合には、拒絶反応を回避又は抑制するためにヒト抗体又はヒト化抗体であることが望ましい。
　本発明に係るＣＡＰＲＩＮ－１ポリペプチドに対する抗体の抗腫瘍活性は、後述するように、生体内で担癌動物に対する腫瘍増殖の抑制を調べることによって、あるいは、生体外で該ポリペプチドを発現する腫瘍細胞に対して、免疫細胞又は補体を介した細胞障害活性を示すか否かを調べることによって評価することができる。
　さらにまた、本発明における癌の治療及び／又は予防の対象である被験者は、ヒト、ペット動物、家畜類、競技用動物等の哺乳動物であり、好ましい被験者は、ヒトである。
　以下に、本発明についてより詳細に説明する。
＜抗体作製用抗原の作製＞
　本発明に係るＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体を取得するための感作抗原として使用されるタンパク質又はその断片は、ヒト、イヌ、ネコ、ウシ、ウマ、マウス、ラット、ニワトリ等、その由来となる動物種に制限されない。しかし細胞融合に使用する親細胞との適合性を考慮して選択することが好ましく、一般的には、哺乳動物由来のタンパク質が好ましく、特にヒト由来のタンパク質が好ましい。例えば、ＣＡＰＲＩＮ－１がヒトＣＡＰＲＩＮ－１の場合、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質やその部分ペプチド、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１を発現する細胞等を用いることができる。
　ヒトＣＡＰＲＩＮ－１及びそのホモログの塩基配列及びアミノ酸配列は、例えば、ＧｅｎＢａｎｋ（米国ＮＣＢＩ）にアクセスし、ＢＬＡＳＴ、ＦＡＳＴＡ等のアルゴリズム（Ｋａｒｌｉｎ　ａｎｄ　Ａｌｔｓｃｈｕｌ，　Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ，　９０：５８７３－５８７７，１９９３；　Ａｌｔｓｃｈｕｌ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．　２５：３３８９－３４０２，　１９９７）を利用することによって入手することができる。
　本発明では、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１の塩基配列（配列番号１又は３）又はアミノ酸配列（配列番号２又は４）を基準とした場合、これらのＯＲＦ又は成熟部分の塩基配列又はアミノ酸配列と７０％～１００％、好ましくは８０％～１００％、より好ましくは９０％～１００％、さらに好ましくは９５％～１００％、例えば、９７％～１００％、９８％～１００％、９９％～１００％又は９９．５％～１００％の配列同一性を有する配列からなる核酸又はタンパク質がターゲットのＣＡＰＲＩＮ－１になる（配列番号２と配列番号４のアミノ酸配列を比較すると、６９０位以降のアミノ酸残基が相違する。）。ここで、「％配列同一性」は、２つの配列を、ギャップを導入して又はギャップを導入しないで、最大の類似度（又は一致度）となるようにアラインメント（整列）したとき、アミノ酸（又は塩基）の総数（ギャップの数を含む）に対する同一アミノ酸（又は塩基）のパーセンテージ（％）を意味する。
　ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の断片としては、抗体が認識する最小単位であるエピトープ（抗原決定基）を含み、かつそのエピトープアミノ酸長～該タンパク質の全長未満の長さを有するものを使用できる。エピトープは、哺乳動物、好ましくはヒトにおいて、抗原性又は免疫原性を有するポリペプチド断片を指し、その最小単位は、約７～１２アミノ酸、例えば、８～１１アミノ酸からなる。本発明に係る抗体の作製に用いるＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の断片は、本発明の抗体が認識する、配列番号５で表されるアミノ酸配列（配列番号２又は配列番号４のアミノ酸配列中の４２９位～４４４位の配列に相当する。）又は該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むか、又はそれらのアミノ酸配列中の、連続する約７～１２アミノ酸、例えば、連続する８～１１アミノ酸からなるエピトープを少なくとも含む断片であることが好ましい。
　上記した、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質やその部分ペプチドを含むポリペプチド断片は、例えば、Ｆｍｏｃ法（フルオレニルメチルオキシカルボニル法）、ｔＢｏｃ法（ｔ―ブチルオキシカルボニル法）等の化学合成法に従って合成することができる（日本生化学会編、生化学実験講座１、タンパク質の化学ＩＶ、化学修飾とペプチド合成、東京化学同人（日本）、１９８１年）。また、各種の市販のペプチド合成機を利用して常法により合成することもできる。
　また、公知の遺伝子工学的手法（Ｓａｍｂｒｏｏｋら，　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，　第２版，　Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　（１９８９），　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ、Ａｕｓｕｂｅｌら，　Ｓｈｏｒｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ，　第３版，　Ａ　ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ　ｏｆ　Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｆｒｏｍ　Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　（１９９５），　Ｊｏｈｎ　Ｗｉｌｅｙ　＆　Ｓｏｎｓ等）を用いて、上記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを調製し、該ポリヌクレオチドを発現ベクターに組み込んで宿主細胞に導入し、該宿主細胞中でポリペプチドを生産させることにより、目的とするヒトＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質やそのポリペプチド断片を得ることもできる。
　上記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、公知の遺伝子工学的手法や市販の核酸合成機を用いた常法により、容易に調製することができる。例えば、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子の塩基配列を含むＤＮＡは、ヒト染色体ＤＮＡ又はｃＤＮＡライブラリーを鋳型として使用し、該塩基配列を増幅できるように設計した一対のプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより調製することができる。ＰＣＲの反応条件は適宜設定することができ、例えば、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ（例えば、Ｔａｑポリメラーゼ、Ｐｆｕポリメラーゼ等）及びＭｇ２＋含有ＰＣＲバッファーを用いて、９４℃で３０秒間（変性）、５５℃で３０秒～１分間（アニーリング）、７２℃で２分間（伸長）からなる反応行程を１サイクルとして、例えば、３０サイクル行った後、７２℃で７分間反応させる条件等を挙げることができるが、これに限定されない。ＰＣＲの手法、条件等については、例えば、Ａｕｓｕｂｅｌら，　Ｓｈｏｒｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ，　第３版，　Ａ　ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ　ｏｆ　Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｆｒｏｍ　Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　（１９９５），　Ｊｏｈｎ　Ｗｉｌｅｙ　＆　Ｓｏｎｓ（特に第１５章）に記載されている。
　また、ＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子の塩基配列及びＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質のアミノ酸配列情報に基づいて、適当なプローブやプライマーを調製し、それを用いてヒト等のｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることにより、所望のＤＮＡを単離することができる。ｃＤＮＡライブラリーは、ＣＡＰＲＩＮ－１のタンパク質を発現している細胞、器官又は組織から作製することが好ましい。そのような細胞や組織の例は、精巣、白血病、乳癌、リンパ腫、脳腫瘍、肺癌、膵臓癌、大腸癌、腎癌、胃癌、子宮頸癌、卵巣癌、前立腺癌、膀胱癌、食道癌、線維肉腫、肥満細胞腫又はメラノーマ等の癌又は腫瘍に由来する細胞又は組織である。上記したプローブ又はプライマーの調製、ｃＤＮＡライブラリーの構築、ｃＤＮＡライブラリーのスクリーニング、並びに目的遺伝子のクローニング等の操作は当業者に既知であり、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら，　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，　第２版，　Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　（１９８９）、Ａｕｓｂｅｌら（上記）等に記載された方法に準じて行うことができる。このようにして得られたＤＮＡから、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質やその部分ペプチドをコードするＤＮＡを得ることができる。
　発現ベクターを導入する上記宿主細胞としては、上記ポリペプチドを発現可能な細胞であればいかなるものであってもよく、原核細胞の例としては大腸菌等、真核細胞の例としてはサル腎臓細胞ＣＯＳ１、チャイニーズハムスター卵巣細胞ＣＨＯ等の哺乳動物細胞、ヒト胎児腎臓細胞株ＨＥＫ２９３、マウス胎仔皮膚細胞株ＮＩＨ３Ｔ３、出芽酵母、分裂酵母等の酵母細胞、カイコ細胞、アフリカツメガエル卵細胞等が挙げられるが、これらに限定されない。
　宿主細胞として原核細胞を用いる場合、発現ベクターとしては、原核細胞中で複製可能なオリジン、プロモーター、リボソーム結合部位、マルチクローニングサイト、ターミネーター、薬剤耐性遺伝子、栄養要求性相補遺伝子等を有する発現ベクターを用いる。大腸菌用発現ベクターとしては、ｐＵＣ系、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ、ｐＥＴ発現システム、ｐＧＥＸ発現システム等が例示できる。上記ポリペプチドをコードするＤＮＡをこのような発現ベクターに組み込み、該ベクターで原核宿主細胞を形質転換したのち、得られた形質転換体を培養すれば、前記ＤＮＡがコードしているポリペプチドを原核宿主細胞中で発現させることができる。この際、該ポリペプチドを、他のタンパク質との融合タンパク質として発現させることもできる。
　宿主細胞として真核細胞を用いる場合、発現ベクターとしては、プロモーター、スプライシング領域、ポリ（Ａ）付加部位等を有する真核細胞用発現ベクターを用いる。そのような発現ベクターとしては、ｐＫＡ１、ｐＣＤＭ８、ｐＳＶＫ３、ｐＭＳＧ、ｐＳＶＬ、ｐＢＫ－ＣＭＶ、ｐＢＫ－ＲＳＶ、ＥＢＶベクター、ｐＲＳ、ｐｃＤＮＡ３、ｐＹＥＳ２等が例示できる。上記と同様に、上記ポリペプチドをコードするＤＮＡをこのような発現ベクターに組み込み、該ベクターで真核宿主細胞を形質転換したのち、得られた形質転換体を培養すれば、前記ＤＮＡがコードしているポリペプチドを真核宿主細胞中で発現させることができる。発現ベクターとしてｐＩＮＤ／Ｖ５－Ｈｉｓ、ｐＦＬＡＧ－ＣＭＶ－２、ｐＥＧＦＰ－Ｎ１、ｐＥＧＦＰ－Ｃ１等を用いた場合には、Ｈｉｓタグ（例えば、（Ｈｉｓ）６～（Ｈｉｓ）１０）、ＦＬＡＧタグ、ｍｙｃタグ、ＨＡタグ、ＧＦＰ等各種タグを付加した融合タンパク質として、上記ポリペプチドを発現させることができる。
　発現ベクターの宿主細胞への導入は、電気穿孔法、リン酸カルシウム法、リポソーム法、ＤＥＡＥデキストラン法、マイクロインジェクション、ウイルス感染、リポフェクション、細胞膜透過性ペプチドとの結合等の周知の方法を用いることができる。
　宿主細胞から目的のポリペプチドを単離精製するためには、公知の分離操作を組み合わせて行うことができる。例えば、尿素等の変性剤や界面活性剤による処理、超音波処理、酵素消化、塩析や溶媒分別沈殿法、透析、遠心分離、限外ろ過、ゲルろ過、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ、等電点電気泳動、イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー等が挙げられるが、これらに限定されない。
　本発明に係る抗体を作製するため、以上のようにして作製した抗原を後述の通り感作抗原として用いることができる。
＜抗体の構造＞
　抗体（免疫グロブリン）は通常少なくとも２本の重鎖及び２本の軽鎖を含むヘテロ多量体糖タンパク質である。ＩｇＭは別として、免疫グロブリンは、２本の同一の軽（Ｌ）鎖及び２本の同一の重（Ｈ）鎖で構成される約１５０ｋＤａのヘテロ四量体糖タンパク質である。典型的には、それぞれの軽鎖は１つのジスルフィド共有結合により重鎖に連結されているが、種々の免疫グロブリンアイソタイプの重鎖間でジスルフィド結合の数は変動する。それぞれの重鎖及び軽鎖は鎖内ジスルフィド結合も有する。それぞれの重鎖は一方の端に可変ドメイン（ＶＨ領域）を有し、それにいくつかの定常領域が続く。それぞれ軽鎖は可変ドメイン（ＶＬ領域）を有し、その反対の端に１つの定常領域を有する。軽鎖の定常領域は重鎖の最初の定常領域と整列しており、かつ軽鎖可変ドメインは重鎖の可変ドメインと整列している。抗体の可変ドメインは特定の領域が相補性決定領域（ＣＤＲ）と呼ばれる特定の可変性を示して抗体に結合特異性を付与する。可変領域において相対的に保存されている部分はフレームワーク領域（ＦＲ）と呼ばれている。完全な重鎖及び軽鎖の可変ドメインはそれぞれ３つのＣＤＲにより連結された４つのＦＲを含む。３つのＣＤＲは重鎖ではそのＮ末から順にＣＤＲＨ１，ＣＤＲＨ２，ＣＤＲＨ３、同様に軽鎖ではＣＤＲＬ１，ＣＤＲＬ２，ＣＤＲＬ３と呼ばれている。抗体の抗原への結合特異性には、ＣＤＲＨ３が最も重要である。また、各鎖のＣＤＲはＦＲ領域によって近接した状態で一緒に保持され、他方の鎖由来のＣＤＲと共に抗体の抗原結合部位の形成に寄与する。定常領域は抗体が抗原に結合することに直接寄与しないが、種々のエフェクター機能、例えば、抗体依存性細胞性細胞障害活性（ＡＤＣＣ）への関与、Ｆｃγ受容体への結合を介した食作用、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を介した半減期／クリアランス速度、補体カスケードのＣ１ｑ構成要素を介した補体依存性細胞障害（ＣＤＣ）を示す。
＜抗体の作製＞
　本発明における抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体とは、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の全長又はその断片と免疫学的反応性を有する抗体を意味する。特に本発明の抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の部分ポリペプチド（ＣＡＰＲＩＮ－１部分ポリペプチド）でありエピトープを含む配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるペプチド、又は該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドと免疫学的に結合する抗体である。本発明の抗体は、好適には、配列番号５で表されるアミノ酸配列又は該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列中の、連続する約７～１２アミノ酸、例えば、連続する８～１１アミノ酸、からなるエピトープを認識する。本発明のこの抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体は、全長ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と特異的に結合することができる。本発明の抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質又はその断片を抗原として得られた抗体の中から、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドと免疫学的に結合する抗体を常法により選択することによって取得することができる。
　ここで、「免疫学的反応性」とは、生体内で抗体とＣＡＰＲＩＮ－１抗原（ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の全長又はその部分ポリペプチド）とが結合する特性を意味する。本発明の抗体のＣＡＰＲＩＮ－１へのこのような結合を介して腫瘍細胞を障害（例えば、死滅、抑制又は退縮）する機能が発揮される。本発明の抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と結合して腫瘍、例えば、乳癌、腎癌、膵臓癌、大腸癌（例えば、結腸癌）、肺癌、脳腫瘍、胃癌、子宮頸癌、卵巣癌、前立腺癌、膀胱癌、食道癌、白血病、リンパ腫、線維肉腫、肥満細胞腫又はメラノーマ等を障害することができる。
　本発明の抗体は、任意の種類（タイプ）の抗体であってよい。本発明の抗体の種類の例としては、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、合成抗体、多重特異性抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体、抗体フラグメント（例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ）等を含む。また、抗体は、免疫グロブリン分子の任意のクラス、例えば、ＩｇＧ，ＩｇＥ，ＩｇＭ，ＩｇＡ，ＩｇＤ及びＩｇＹ、又は任意のサブクラス、例えば、ＩｇＧ１，ＩｇＧ２，ＩｇＧ３，ＩｇＧ４，ＩｇＡ１，ＩｇＡ２等である。
　抗体はさらに、グリコシル化の他に、アセチル化、ホルミル化、アミド化、リン酸化、又はペグ（ＰＥＧ）化等によって修飾されていてもよい。
　以下に、種々の抗体の作製例を示す。
　抗体が、モノクローナル抗体であるときには、例えば、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する乳癌細胞株ＳＫ－ＢＲ－３等をマウスに投与して免疫し、同マウスより脾臓を抽出し、細胞を分離の上、該細胞とマウスミエローマ細胞とを融合させ、得られた融合細胞（ハイブリドーマ）の中から、癌細胞増殖抑制作用を持つ抗体を産生するクローンを選択する。あるいは配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は該アミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドと結合する抗体を産生するクローンを選択してもよい。癌細胞増殖抑制作用を持つモノクローナル抗体産生ハイブリドーマ又は配列番号５等のポリペプチドに対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを単離し、当該ハイブリドーマを培養し、培養上清から一般的なアフィニティ精製法により抗体を精製することで、本発明の抗体を調製することが可能である。
　モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、例えば、以下のようにしても作製することができる。まず、公知の方法にしたがって、感作抗原を動物に免疫する。一般的方法として、感作抗原を哺乳動物の腹腔内又は皮下に注射することにより行われる。具体的には、感作抗原をＰＢＳ（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ－Ｂｕｆｆｅｒｅｄ　Ｓａｌｉｎｅ）や生理食塩水等で適当量に希釈、懸濁したものに所望により通常のアジュバント、例えば、フロイント完全アジュバントを適量混合し、乳化後、哺乳動物に４～２１日毎に数回投与する。また、感作抗原免疫時に適当な担体を使用することもできる。
　このように哺乳動物を免疫し、血清中に所望の抗体レベルが上昇するのを確認した後に、哺乳動物から免疫細胞を採取し、細胞融合に付すが、好ましい免疫細胞としては、特に脾細胞が挙げられる。
　前記免疫細胞と融合される他方の親細胞として、哺乳動物のミエローマ細胞を用いる。このミエローマ細胞としては、公知の種々の細胞株、例えば、Ｐ３Ｕ１（Ｐ３－Ｘ６３Ａｇ８Ｕ１）、Ｐ３（Ｐ３ｘ６３Ａｇ８．６５３）（Ｊ．　Ｉｍｍｕｎｏｌ．　（１９７９）１２３，　１５４８－１５５０）、Ｐ３ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１（Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｔｏｐｉｃｓ　ｉｎ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　（１９７８）８１，　１－７）、ＮＳ－１（Ｋｏｈｌｅｒ．　Ｇ．　ａｎｄ　Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，　Ｃ．　Ｅｕｒ．　Ｊ．　Ｉｍｍｕｎｏｌ．　（１９７６）６，　５１１－５１９）、ＭＰＣ－１１（Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ．　Ｄ．Ｈ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃｅｌｌ　（１９７６）８，　４０５－４１５）、ＳＰ２／０（Ｓｈｕｌｍａｎ，　Ｍ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｎａｔｕｒｅ　（１９７８）２７６，　２６９－２７０）、ＦＯ（ｄｅＳｔ．　Ｇｒｏｔｈ，　Ｓ．Ｆ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ．　Ｉｍｍｕｎｏｌ．　Ｍｅｔｈｏｄｓ　（１９８０）３５，　１－２１）、Ｓ１９４（Ｔｒｏｗｂｒｉｄｇｅ，　Ｉ．Ｓ．　Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．　（１９７８）１４８，　３１３－３２３）、Ｒ２１０（Ｇａｌｆｒｅ，　Ｇ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｎａｔｕｒｅ　（１９７９）２７７，　１３１－１３３）、２４０Ｅ－１並びに２４０Ｅ－Ｗ等が好適に使用される。
　前記免疫細胞とミエローマ細胞との細胞融合は、基本的には公知の方法、たとえば、ケーラーとミルステインの方法（Ｋｏｈｌｅｒ，　Ｇ．　ａｎｄ　Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，　Ｃ．　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｅｎｚｙｍｏｌ．　（１９８１）７３，　３－４６）等に準じて行うことができる。
　より具体的には、前記細胞融合は、例えば、細胞融合促進剤の存在下に通常の栄養培養液中で実施される。融合促進剤としては、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、センダイウイルス（ＨＶＪ）等が使用され、更に所望により融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を添加使用することもできる。
　免疫細胞とミエローマ細胞との使用割合は任意に設定することができる。例えば、ミエローマ細胞に対して免疫細胞を１～１０倍とするのが好ましい。前記細胞融合に用いる培養液としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好適なＲＰＭＩ１６４０培養液、ＭＥＭ培養液、その他、この種の細胞培養に用いられる通常の培養液が使用可能であり、さらに、牛胎児血清（ＦＣＳ）等の血清補液を併用することもできる。
　細胞融合では、前記免疫細胞とミエローマ細胞との所定量を前記培養液中でよく混合し、予め３７℃程度に加温したＰＥＧ溶液（例えば、平均分子量１０００～６０００程度）を通常３０～６０％（ｗ／ｖ）の濃度で添加し、混合することによって目的とするハイブリドーマを形成する。続いて、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去する操作を繰り返すことによりハイブリドーマの生育に好ましくない細胞融合剤等を除去することが好ましい。
　このようにして得られたハイブリドーマは、通常の選択培養液、例えば、ＨＡＴ培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含む培養液）で培養することにより選択される。上記ＨＡＴ培養液での培養は、目的とするハイブリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間（通常、数日～数週間）継続する。ついで、通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニング及び単一クローニングを行う。
　また、ヒト以外の動物に抗原を免疫して上記ハイブリドーマを得る他に、ヒトリンパ球、例えば、ＥＢウイルスに感染したヒトリンパ球をｉｎ　ｖｉｔｒｏでタンパク質、タンパク質発現細胞又はその溶解物で感作し、感作リンパ球をヒト由来の永久分裂能を有するミエローマ細胞、例えば、Ｕ２６６（登録番号ＴＩＢ１９６）と融合させ、所望の活性（例えば、細胞増殖抑制活性）を有するヒト抗体を産生するハイブリドーマを得ることもできる。
　このようにして作製されるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、通常の培養液中で継代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期保存することが可能である。
　すなわち、所望の抗原や所望の抗原を発現する細胞を感作抗原として使用して、これを通常の免疫方法にしたがって免疫し、得られる免疫細胞を通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合させ、通常のスクリーニング法により、モノクローナルな抗体産生細胞（ハイブリドーマ）をスクリーニングすることによって作製できる。
　本発明で使用可能な抗体の別の例がポリクローナル抗体である。ポリクローナル抗体は、例えば、次のようにして得ることができる。
　天然のＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質、あるいはＧＳＴ等との融合タンパク質として大腸菌等の微生物において発現させた組換えＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質、又はその部分ペプチドをマウス、ヒト抗体産生マウス、ウサギ等の小動物に免疫し血清を得る。あるいは、ＣＡＰＲＩＮ－１の断片である、配列番号５で表されるアミノ酸配列若しくは該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチド（好ましくは当該アミノ酸配列からなるポリペプチド）、又は、配列番号５で表されるアミノ酸配列若しくは該アミノ酸配列と８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列中の連続する約７～１２アミノ酸、例えば、連続する８～１１アミノ酸からなるエピトープを含む（好ましくは当該エピトープからなる）ポリペプチドを、感作抗原として、哺乳動物に免疫し、血清を得ることもできる。これらの血清を、例えば、硫安沈殿、プロテインＡ、プロテインＧカラム、ＤＥＡＥイオン交換クロマトグラフィー、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質や合成ペプチドをカップリングしたアフィニティーカラム等により精製することにより、抗ＣＡＰＲＩＮ－１ポリクローナル抗体を調製することができる。本発明のポリクローナル抗体には、ヒト抗体産生動物（例えば、マウス）にＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質を免疫して得られる抗体が含まれる。
　ここで、ヒト抗体産生マウスとしては、例えば、ＫＭマウス（キリンファーマ／Ｍｅｄａｒｅｘ）及びＸｅｎｏマウス（Ａｍｇｅｎ）が知られている（例えば、国際公開第ＷＯ０２／４３４７８号、同第ＷＯ０２／０９２８１２号等）。このようなマウスをＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質又はその断片で免疫することによって、完全ヒトポリクローナル抗体を血液から得ることができる。また、免疫後のマウスから脾臓細胞を取出し、ミエローマ細胞との融合法によりヒト型モノクローナル抗体を作製することができる。
　抗原の調製は、例えば、動物細胞を用いた方法（特表２００７－５３００６８）やバキュロウイルスを用いた方法（例えば、国際公開第ＷＯ９８／４６７７７号等）等に準じて行うことができる。抗原の免疫原性が低い場合には、アルブミン等の免疫原性を有する巨大分子と結合させ、免疫を行えばよい。抗原はアジュバントとともに投与して免疫してもよい。
　本発明の抗体は、さらにまた、その抗体遺伝子をハイブリドーマからクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを宿主に導入し、遺伝子組換え技術を用いて産生させた遺伝子組換え型抗体としても得ることができる（例えば、Ｃａｒｌ，　Ａ．Ｋ．　Ｂｏｒｒｅｂａｅｃｋ，　Ｊａｍｅｓ，　Ｗ．　Ｌａｒｒｉｃｋ，　ＴＨＥＲＡＰＥＵＴＩＣ　ＭＯＮＯＣＬＯＮＡＬ　ＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ，　Ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　Ｕｎｉｔｅｄ　Ｋｉｎｇｄｏｍ　ｂｙ　ＭＡＣＭＩＬＬＡＮ　ＰＵＢＬＩＳＨＥＲＳ　ＬＴＤ，　１９９０参照）。具体的には、ハイブリドーマのｍＲＮＡから逆転写酵素を用いて抗体の可変領域（Ｖ領域）のｃＤＮＡを合成する。目的とする抗体のＶ領域をコードするＤＮＡが得られれば、これを所望の抗体定常領域（Ｃ領域）をコードするＤＮＡと連結し、これを発現ベクターへ組み込む。又は、抗体のＶ領域をコードするＤＮＡを、抗体Ｃ領域のＤＮＡを含む発現ベクターへ組み込んでもよい。発現制御領域、例えば、エンハンサー、プロモーターの制御のもとで発現するよう発現ベクターに組み込む。次に、この発現ベクターにより宿主細胞を形質転換し、抗体を発現させることができる。
　本発明の抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体は、モノクローナル抗体であることが好ましい。しかし、ポリクローナル抗体、遺伝子改変抗体（キメラ抗体、ヒト化抗体等）等であってもよい。
　モノクローナル抗体には、ヒトモノクローナル抗体、非ヒト動物モノクローナル抗体（例えば、マウスモノクローナル抗体、ラットモノクローナル抗体、ウサギモノクローナル抗体、ニワトリモノクローナル抗体等）、キメラモノクローナル抗体等が含まれる。モノクローナル抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質又はその断片で免疫した非ヒト哺乳動物（例えば、マウス、ヒト抗体産生マウス、ニワトリ、ウサギ等）からの脾細胞とミエローマ細胞との融合によって得られたハイブリドーマを培養することによって作製されうる。キメラ抗体は、異なる動物由来の配列を組み合わせて作製される抗体であり、例えば、マウス抗体の重鎖、軽鎖の可変領域とヒト抗体の重鎖、軽鎖の定常領域からなる抗体等である。キメラ抗体の作製は公知の方法を用いて行うことができ、例えば、抗体Ｖ領域をコードするＤＮＡとヒト抗体Ｃ領域をコードするＤＮＡとを連結し、これを発現ベクターに組み込んで宿主に導入し産生させることにより得られる。
　なお、後述の実施例に記載の方法により、抗腫瘍効果を有する、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるＣＡＰＲＩＮ－１部分ポリペプチドと免疫学的反応性を有するモノクローナル抗体が作製される。
　ヒト化抗体は、再構成（ｒｅｓｈａｐｅｄ）ヒト抗体とも称される改変抗体である。ヒト化抗体は、免疫動物由来の抗体のＣＤＲを、ヒト抗体の相補性決定領域へ移植することによって構築される。その一般的な遺伝子組換え手法も知られている。
　具体的には、例えば、マウス抗体、ウサギ抗体やニワトリ抗体のＣＤＲとヒト抗体のフレームワーク領域（ｆｒａｍｅｗｏｒｋ　ｒｅｇｉｏｎ；　ＦＲ）を連結するように設計したＤＮＡ配列を、末端部にオーバーラップする部分を有するように作製した数個のオリゴヌクレオチドからＰＣＲ法により合成する。得られたＤＮＡを、ヒト抗体定常領域をコードするＤＮＡと連結し、次いで発現ベクターに組み込んで、これを宿主に導入し産生させることにより得られる（欧州特許出願公開第ＥＰ２３９４００号、国際公開第ＷＯ９６／０２５７６号参照）。
ＣＤＲを介して連結されるヒト抗体のＦＲは、相補性決定領域が良好な抗原結合部位を形成するものが選択される。必要に応じ、再構成ヒト抗体の相補性決定領域が適切な抗原結合部位を形成するように抗体の可変領域におけるフレームワーク領域のアミノ酸を置換してもよい（Ｓａｔｏ　Ｋ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　１９９３，　５３：　８５１－８５６）。また、ＦＲは、異なるクラス又はサブクラスのヒト抗体由来のフレームワーク領域と置換されてもよい（国際公開第ＷＯ９９／５１７４３号参照）。
　キメラ抗体やヒト化抗体を作製する際に、可変領域（例えば、ＦＲ）や定常領域中のアミノ酸を他のアミノ酸で置換等してもよい。
　アミノ酸の置換は、例えば、１５未満、１０未満、８以下、７以下、６以下、５以下、４以下、３以下、又は２以下のアミノ酸、好ましくは１～５アミノ酸、より好ましくは１又は２アミノ酸の置換であり、置換抗体は、未置換抗体と機能的に同等であるべきである。置換は、保存的アミノ酸置換が望ましく、これは、電荷、側鎖、極性、芳香族性等の性質の類似するアミノ酸間の置換である。性質の類似したアミノ酸は、例えば、塩基性アミノ酸（アルギニン、リジン、ヒスチジン）、酸性アミノ酸（アスパラギン酸、グルタミン酸）、無電荷極性アミノ酸（グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、トレオニン、システイン、チロシン）、無極性アミノ酸（ロイシン、イソロイシン、アラニン、バリン、プロリン、フェニルアラニン、トリプトファン、メチオニン）、分枝鎖アミノ酸（ロイシン、バリン、イソロイシン）、芳香族アミノ酸（フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、ヒスチジン）等に分類しうる。
　抗体修飾物としては、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の各種分子と結合した抗体を挙げることができる。本発明の抗体修飾物においては、結合される物質は限定されない。このような抗体修飾物を得るには、得られた抗体に化学的な修飾を施すことによって得ることができる。これらの方法はこの分野において既に確立されている。
　ここで「機能的に同等」とは、対象となる抗体が本発明の抗体と同様の生物学的あるいは生化学的活性、具体的には腫瘍を障害する機能を有すること、ヒトへの適用時に拒絶反応を本質的に起こさないことなどを指す。このような活性としては、例えば、細胞増殖抑制活性、あるいは結合活性を例示することができる。
　あるポリペプチドと機能的に同等なポリペプチドを調製するための、当業者によく知られた方法としては、ポリペプチドに変異を導入する方法が知られている。例えば、当業者であれば、部位特異的変異誘発法（Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ－Ｇｏｔｏｈ，　Ｔ．　ｅｔ　ａｌ．，　（１９９５）　Ｇｅｎｅ　１５２，　２７１－２７５、Ｚｏｌｌｅｒ，　ＭＪ．，　ａｎｄ　Ｓｍｉｔｈ，　Ｍ．　（１９８３）　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｅｎｚｙｍｏｌ．　１００，　４６８－５００、Ｋｒａｍｅｒ，　Ｗ．　ｅｔ　ａｌ．，　（１９８４）　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．　１２，　９４４１－９４５６、Ｋｒａｍｅｒ，　Ｗ．　ａｎｄ　Ｆｒｉｔｚ，　ＨＪ．，　（１９８７）　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｅｎｚｙｍｏｌ．　１５４，　３５０－３６７、Ｋｕｎｋｅｌ，　ＴＡ．，　（１９８５）　Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ．　８２，　４８８－４９２、Ｋｕｎｋｅｌ　（１９８８）　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｅｎｚｙｍｏｌ．　８５，　２７６３－２７６６）等を用いて、本発明の抗体に適宜変異を導入することにより、該抗体と機能的に同等な抗体を調製することができる。
　上記ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質のエピトープ又はそれを含むＣＡＰＲＩＮ－１断片ポリペプチドを認識する抗体は、当業者に公知の方法により得ることが可能である。例えば、上記で得られる癌細胞増殖抑制作用を有する抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体が認識するＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質のエピトープを通常の方法（例えば、エピトープマッピングや後述にあるエピトープの同定の方法等）により決定し、該エピトープに含まれるアミノ酸配列を有するポリペプチドを免疫原として抗体を作製する方法や、通常の方法で作製された抗体のエピトープを決定し、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体とエピトープが同じ抗体を選択する方法等により得ることができる。ここで、「エピトープ」は、哺乳動物、好ましくはヒトにおいて、抗原性又は免疫原性を有するポリペプチド断片を指し、その最小単位は、約７～１２アミノ酸、好ましくは８～１１アミノ酸からなる。
　本発明の抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１と免疫学的反応性を有する抗体、ＣＡＰＲＩＮ－１を特異的に認識する抗体、又はＣＡＰＲＩＮ－１と特異的に結合する抗体であって、癌に対する細胞障害活性、又は腫瘍増殖抑制作用を示す抗体である。該抗体は、それを投与する対象動物において拒絶反応がほとんど又はまったく回避されるような構造をもつ抗体であることが好ましい。そのような抗体としては、例えば、対象動物がヒトである場合、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体（例えば、ヒト－マウスキメラ抗体）、単鎖抗体、二重特異性抗体等が挙げられる。これらの抗体は、重鎖及び軽鎖の可変領域がヒト抗体由来のものであるか、重鎖及び軽鎖の可変領域が非ヒト動物抗体由来の相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３）とヒト抗体由来のフレームワーク領域（ＦＲ１、ＦＲ２、ＦＲ３及びＦＲ４）からなるものであるか、又は、重鎖及び軽鎖の可変領域が非ヒト動物抗体由来のものであり、かつ、重鎖及び軽鎖の定常領域がヒト抗体由来のものである組換え型抗体である。好ましい抗体は、前２つの抗体である。
　これらの組換え型抗体は、次のようにして作製することができる。ハイブリドーマ等の抗体産生細胞からヒトＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体（例えば、ヒトモノクローナル抗体、マウスモノクローナル抗体、ラットモノクローナル抗体、ウサギモノクローナル抗体、ニワトリモノクローナル抗体等）をコードするＤＮＡをクローニングし、これを鋳型にして該抗体の軽鎖可変領域及び重鎖可変領域をコードするＤＮＡをＲＴ－ＰＣＲ法等により作製し、例えば、Ｋａｂａｔ　ＥＵ　ｎｕｍｂｅｒｉｎｇ　ｓｙｓｔｅｍ（Ｋａｂａｔら、Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ　ｏｆ　Ｐｒｏｔｅｉｎｓ　ｏｆ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，　５ｔｈＥｄ．　Ｐｕｂｌｉｃ　Ｈｅａｌｔｈ　Ｓｅｒｖｉｃｅ，　Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｈｅａｌｔｈ，　Ｂｅｔｈｅｓｄａ，　Ｍｄ．　（１９９１））に基づいて軽鎖及び重鎖の、各可変領域の配列、又は各ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３の配列、又は各ＦＲ１、ＦＲ２、ＦＲ３、ＦＲ４の配列を決定することができる。
　さらに、これらの各可変領域をコードするＤＮＡ又は各ＣＤＲをコードするＤＮＡを、遺伝子組換え技術（Ｓａｍｂｒｏｏｋら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ　Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ，　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ　（１９８９））又はＤＮＡ合成機を用いて作製する。ここで、上記ヒトモノクローナル抗体産生ハイブリドーマは、ヒト抗体産生動物（例えば、マウス）にヒトＣＡＰＲＩＮ－１を免疫したのち、該免疫動物から切除した脾細胞とミエローマ細胞とを融合させることによって作製することができる。これとは別に、必要に応じて、遺伝子組換え技術又はＤＮＡ合成機を用いてヒト抗体由来の軽鎖又は重鎖の可変領域及び定常領域をコードするＤＮＡを作製する。
　ヒト化抗体の場合には、ヒト抗体由来の軽鎖又は重鎖の可変領域をコードするＤＮＡ中のＣＤＲコーディング配列を、それらに対応する、ヒト以外の動物（例えば、マウス、ラット、ウサギ、ニワトリ等）由来の抗体のＣＤＲコーディング配列と置換することによって、ヒト化抗体をコードするＤＮＡを作製することができる。
　キメラ抗体の場合には、ヒト以外の動物（例えば、マウス、ラット、ウサギ、ニワトリ等）由来の抗体の軽鎖又は重鎖の可変領域をコードするＤＮＡをそれぞれ、ヒト抗体由来の軽鎖又は重鎖の定常領域をコードするＤＮＡと連結することによって、キメラ抗体をコードするＤＮＡを作製することができる。
　単鎖抗体の場合には、この抗体は重鎖可変領域と軽鎖可変領域とをリンカーを介して直線状に連結された抗体であり、重鎖可変領域をコードするＤＮＡ、リンカーをコードするＤＮＡ、及び軽鎖可変領域をコードするＤＮＡを結合することによって単鎖抗体をコードするＤＮＡを作製することができる。ここで、重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はいずれも、ヒト抗体由来のものであるか、あるいは、ＣＤＲのみヒト以外の動物（例えば、マウス、ラット、ウサギ、ニワトリ等）由来の抗体のＣＤＲによって置換されたヒト抗体由来のものである。また、リンカーは、１２～１９アミノ酸からなり、例えば、１５アミノ酸の（Ｇ４Ｓ）３（Ｇ．　-Ｂ．　Ｋｉｍら，Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ　Ｄｅｓｉｇｎ　ａｎｄ　Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ　２００７，　２０（９）：　４２５－４３２）が挙げられる。
　二重特異性抗体（例えば、ｄｉａｂｏｄｙ）の場合には、この抗体は２つの異なるエピトープと特異的に結合可能な抗体であり、例えば、重鎖可変領域ＡをコードするＤＮＡ、軽鎖可変領域ＢをコードするＤＮＡ、重鎖可変領域ＢをコードするＤＮＡ、及び軽鎖可変領域ＡをコードするＤＮＡをこの順序で結合する（ただし、軽鎖可変領域ＢをコードするＤＮＡと重鎖可変領域ＢをコードするＤＮＡとは上記のようなリンカーをコードするＤＮＡを介して結合される。）ことによって二重特異性抗体をコードするＤＮＡを作製することができる。ここで、重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はいずれも、ヒト抗体由来のものであるか、あるいは、ＣＤＲのみヒト以外の動物（例えば、マウス、ラット、ウサギ、ニワトリ等）由来の抗体のＣＤＲによって置換されたヒト抗体由来のものである。
　上記のようにして作製された組換えＤＮＡを、１つ又は複数の適当なベクターに組み込み、これを宿主細胞（例えば、哺乳動物細胞、酵母細胞、昆虫細胞等）に導入し、（共）発現させることによって組換え型抗体を作製することができる（Ｐ．Ｊ．　Ｄｅｌｖｅｓ．，　ＡＮＴＩＢＯＤＹ　ＰＲＯＤＵＣＴＩＯＮ　ＥＳＳＥＮＴＩＡＬ　ＴＥＣＨＮＩＱＵＥＳ．，　１９９７　ＷＩＬＥＹ、Ｐ．　Ｓｈｅｐｈｅｒｄ　ａｎｄ　Ｃ．　Ｄｅａｎ．，　Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ．，　２０００　ＯＸＦＯＲＤ　ＵＮＩＶＥＲＳＩＴＹ　ＰＲＥＳＳ；　Ｊ．Ｗ．　Ｇｏｄｉｎｇ．，　Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：　ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ　ａｎｄ　ｐｒａｃｔｉｃｅ．，　１９９３　ＡＣＡＤＥＭＩＣ　ＰＲＥＳＳ）。
　上記方法によって作製される本発明の抗体としては、例えば、以下の抗体（ａ）～（ｉ）が挙げられる。
（ａ）配列番号８、９及び１０の相補性決定領域を含む重鎖可変領域と配列番号１１、１２及び１３の相補性決定領域を含む軽鎖可変領域とを含む抗体
（ｂ）配列番号８、９及び１４の相補性決定領域を含む重鎖可変領域と配列番号１１、１２及び１３の相補性決定領域を含む軽鎖可変領域とを含む抗体
（ｃ）配列番号５２の重鎖可変領域と配列番号５４の軽鎖可変領域とを含む抗体
（ｄ）配列番号１６の重鎖可変領域と配列番号１８の軽鎖可変領域とを含む抗体
（ｅ）配列番号２１の重鎖可変領域と配列番号２３軽鎖可変領域とを含む抗体
（ｆ）配列番号２５の重鎖可変領域と配列番号２３軽鎖可変領域とを含む抗体
（ｇ）配列番号２６、２７及び２８の相補性決定領域を含む重鎖可変領域と配列番号３０、３１及び３２の相補性決定領域を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（例えば、配列番号２９の重鎖可変領域及び配列番号３３の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
（ｈ）配列番号３６、３７及び３８の相補性決定領域を含む重鎖可変領域と配列番号４０、４１及び４２の相補性決定領域を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（例えば、配列番号３９の重鎖可変領域及び配列番号４３の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
（ｉ）配列番号４６、４７及び４８の相補性決定領域を含む重鎖可変領域と配列番号４０、４１及び４２の相補性決定領域を含む軽鎖可変領域とを含む抗体（例えば、配列番号４９の重鎖可変領域及び配列番号４３の軽鎖可変領域で構成される抗体）。
　ここで、配列番号８、９及び１０に示すアミノ酸配列はそれぞれ、ウサギ由来抗体の重鎖可変領域のＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３であり、配列番号１１、１２及び１３に示すアミノ酸配列はそれぞれ、ウサギ由来抗体の軽鎖可変領域のＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３である。また、配列番号１４に示すアミノ酸配列は、ウサギ由来抗体の重鎖可変領域のＣＤＲ３である。
　さらに、配列番号２６、２７及び２８、配列番号３６、３７及び３８、配列番号４６、４７及び４８に示すアミノ酸配列は、それぞれ、マウス由来抗体の重鎖可変領域のＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３であり、配列番号３０、３１及び３２、配列番号４０、４１及び４２に示すアミノ酸配列は、それぞれ、マウス由来抗体の軽鎖可変領域のＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３である。
　本発明のヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体又は二重特異的抗体は、例えば、以下の抗体（Ｉ）、（ＩＩ）であり得る（なお、ここでは上記抗体（ｂ）で例示する）。
　（Ｉ）
　それぞれ配列番号８、９及び１４のアミノ酸配列からなるＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３並びにヒト抗体由来のフレームワーク領域若しくはその一部が置換されたアミノ酸配列を含む重鎖可変領域と、
　それぞれ配列番号１１、１２及び１３のアミノ酸配列からなるＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３並びにヒト抗体由来のフレームワーク領域若しくはその一部が置換されたアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域とを含む抗体。
　（ＩＩ）
　配列番号１６のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域とヒト抗体由来の重鎖定常領域とを含む重鎖と、配列番号１８のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域とヒト抗体由来の軽鎖定常領域とを含む軽鎖、を含んでなる抗体。
　なお、ヒト抗体重鎖及び軽鎖の定常領域及び可変領域の配列は、例えば、ＮＣＢＩ（米国：ＧｅｎＢａｎｋ、ＵｎｉＧｅｎｅ等）から入手可能であり、例えば、ヒトＩｇＧ１重鎖定常領域については登録番号Ｊ００２２８、ヒトＩｇＧ２重鎖定常領域については登録番号Ｊ００２３０、ヒトＩｇＧ３重鎖定常領域については登録番号Ｘ０３６０４、ヒトＩｇＧ４重鎖定常領域については登録番号Ｋ０１３１６、ヒト軽鎖κ定常領域については登録番号Ｖ００５５７、Ｘ６４１３５、Ｘ６４１３３等、ヒト軽鎖λ定常領域については登録番号Ｘ６４１３２、Ｘ６４１３４等の配列を参照することができる。
　上記抗体は、好ましくは、細胞障害活性を有しており、これによって抗腫瘍効果を発揮することができる。
　また、上記抗体における重鎖及び軽鎖の可変領域やＣＤＲの特定の配列は、単に例示を目的としたものであり、特定の配列に限定されないことは明らかである。ヒトＣＡＰＲＩＮ－１に対する別のヒト抗体又は非ヒト動物抗体（例えば、マウス抗体）を産生しうるハイブリドーマを作製し、ハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体を回収し、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１との免疫学的結合性及び細胞障害活性を指標として目的の抗体であるか否かを判定する。それによって目的のモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを識別したのち、上記のとおり、該ハイブリドーマから目的の抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域をコードするＤＮＡを作製し配列決定し、該ＤＮＡを別の抗体の作製のために利用する。
　さらに上記抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１を特異的に認識するという特異性を有する限り、各抗体の特にフレームワーク領域の配列及び／又は定常領域の配列において、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失又は付加があってもよい。ここで数個とは、好ましくは２～５個、より好ましくは２個又は３個を意味する。
　本発明の抗体の、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質又はその断片に対する親和定数Ｋａ（ｋｏｎ／ｋｏｆｆ）は、好ましくは、少なくとも１０７Ｍ－１、少なくとも１０８Ｍ－１、少なくとも５×１０８Ｍ－１、少なくとも１０９Ｍ－１、少なくとも５×１０９Ｍ－１、少なくとも１０１０Ｍ－１、少なくとも５×１０１０Ｍ－１、少なくとも１０１１Ｍ－１、少なくとも５×１０１１Ｍ－１、少なくとも１０１２Ｍ－１、あるいは、少なくとも１０１３Ｍ－１である。
　本発明の抗体は、抗腫瘍剤とコンジュゲートすることができる。抗体と抗腫瘍剤との結合は、アミノ基、カルボキシル基、ヒドロキシ基、チオール基等と反応性の基（例えば、コハク酸イミジル基、ホルミル基、２－ピリジルジチオ基、マレイイミジル基、アルコキシカルボニル基、ヒドロキシ基等）をもつスペーサーを介して行うことができる。
　抗腫瘍剤の例は、文献等で公知の下記の抗腫瘍剤、すなわち、パクリタキセル、ドキソルビシン、ダウノルビシン、シクロホスファミド、メトトレキサート、５－フルオロウラシル、チオテパ、ブスルファン、インプロスルファン、ピポスルファン、ベンゾドーパ（ｂｅｎｚｏｄｏｐａ）、カルボコン、メツレドーパ（ｍｅｔｕｒｅｄｏｐａ）、ウレドーパ（ｕｒｅｄｏｐａ）、アルトレートアミン（ａｌｔｒｅｔａｍｉｎｅ）、トリエチレンメラミン、トリエチレンホスホラミド、トリエチレンチオホスホラミド（ｔｒｉｅｔｈｉｌｅｎｅｔｈｉｏｐｈｏｓｐｈｏｒａｍｉｄｅ）、トリメチローロメラミン（ｔｒｉｍｅｔｈｙｌｏｌｏｍｅｌａｍｉｎｅ）、ブラタシン、ブラタシノン、カンプトセシン、ブリオスタチン、カリスタチン（ｃａｌｌｙｓｔａｔｉｎ）、クリプトフィシン１、クリプトフィシン８、ドラスタチン、ズオカルマイシン、エレウテロビン、パンクラチスタチン、サルコジクチン（ｓａｒｃｏｄｉｃｔｙｉｎ）、スポンジスタチン、クロランブシル、クロロナファジン（ｃｈｌｏＲＮＡｐｈａｚｉｎｅ）、コロホスファミド（ｃｈｏｌｏｐｈｏｓｐｈａｍｉｄｅ）、エストラムスチン、イホスファミド、メクロレタミン、メクロレタミンオキシドヒドロクロリド、メルファラン、ノベンビチン（ｎｏｖｅｍｂｉｃｈｉｎ）、フェネステリン（ｐｈｅｎｅｓｔｅｒｉｎｅ）、プレドニムスチン（ｐｒｅｄｎｉｍｕｓｔｉｎｅ）、トロフォスファミド（ｔｒｏｆｏｓｆａｍｉｄｅ）、ウラシルマスタード、カルムスチン、クロロゾトシン（ｃｈｌｏｒｏｚｏｔｏｃｉｎ）、フォテムスチン（ｆｏｔｅｍｕｓｔｉｎｅ）、ロムスチン、ニムスチン、ラニムスチン、カリケアマイシン（ｃａｌｉｃｈｅａｍｉｃｉｎ）、ダイネマイシン、クロドロネート、エスペラマイシン、アクラシノマイシン、アクチノマイシン、オースラマイシン（ａｕｔｈｒａｍｙｃｉｎ）、アザセリン、ブレオマイシン、カクチノマイシン（ｃａｃｔｉｎｏｍｙｃｉｎ）、カラビシン（ｃａｒａｂｉｃｉｎ）、カルミノマイシン、カルジノフィリン（ｃａｒｚｉｎｏｐｈｉｌｉｎ）、クロモマイシン、ダクチノマイシン、デトルビシン（ｄｅｔｏｒｂｉｃｉｎ）、６－ジアゾ－５－オキソ－Ｌ－ノルロイシン、アドリアマイシン（ａｄｒｉａｍｙｃｉｎ）、エピルビシン、エソルビシン、イダルビシン、マーセロマイシン（ｍａｒｃｅｌｌｏｍｙｃｉｎ）、マイトマイシンＣ、マイコフェノール酸（ｍｙｃｏｐｈｅｎｏｌｉｃ　ａｃｉｄ）、ノガラマイシン（ｎｏｇａｌａｍｙｃｉｎ）、オリボマイシン（ｏｌｉｖｏｍｙｃｉｎｓ）、ペプロマイシン、ポトフィロマイシン（ｐｏｔｆｉｒｏｍｙｃｉｎ）、ピューロマイシン、ケラマイシン（ｑｕｅｌａｍｙｃｉｎ）、ロドルビシン（ｒｏｄｏｒｕｂｉｃｉｎ）、ストレプトニグリン、ストレプトゾシン、ツベルシジン（ｔｕｂｅｒｃｉｄｉｎ）、ウベニメクス、ジノスタチン（ｚｉｎｏｓｔａｔｉｎ）、ゾルビシン（ｚｏｒｕｂｉｃｉｎ）、デノプテリン（ｄｅｎｏｐｔｅｒｉｎ）、プテロプテリン（ｐｔｅｒｏｐｔｅｒｉｎ）、トリメトレキセート（ｔｒｉｍｅｔｒｅｘａｔｅ）、フルダラビン（ｆｌｕｄａｒａｂｉｎｅ）、６－メルカプトプリン、チアミプリン、チオグアニン、アンシタビン、アザシチジン（ａｚａｃｉｔｉｄｉｎｅ）、６－アザウリジン（ａｚａｕｒｉｄｉｎｅ）、カルモフール、シタラビン、ジデオキシウリジン、ドキシフルリジン、エノシタビン（ｅｎｏｃｉｔａｂｉｎｅ）、フロキシウリジン（ｆｌｏｘｕｒｉｄｉｎｅ）；アンドロゲン類、例えば、カルステロン（ｃａｌｕｓｔｅｒｏｎｅ）、プロピオン酸ドロモスタノロン、エピチオスタノール、メピチオスタン、テストラクトン（ｔｅｓｔｏｌａｃｔｏｎｅ）、アミノグルテチミド、ミトタン、トリロスタン、フロリン酸（ｆｒｏｌｉｎｉｃ　ａｃｉｄ）、アセグラトン、アルドホスファミドグリコシド、アミノレブリン酸、エニルウラシル、アムサクリン（ａｍｓａｃｒｉｎｅ）、ベストラブシル（ｂｅｓｔｒａｂｕｃｉｌ）、ビサントレン（ｂｉｓａｎｔｒｅｎｅ）、エダトラキセート（ｅｄａｔｒａｘａｔｅ）、デフォファミン（ｄｅｆｏｆａｍｉｎｅ）、デメコルシン（ｄｅｍｅｃｏｌｃｉｎｅ）、ジアジコン（ｄｉａｚｉｑｕｏｎｅ）、エルフォルニチン　（ｅｌｆｏｒｎｉｔｈｉｎｅ）、酢酸エリプチニウム（ｅｌｌｉｐｔｉｎｉｕｍ）、エポチロン（ｅｐｏｔｈｉｌｏｎｅ）、エトグルシド（ｅｔｏｇｌｕｃｉｄ）、レンチナン、ロニダミン（ｌｏｎｉｄａｍｉｎｅ）、メイタンシン（ｍａｙｔａｎｓｉｎｅ）、アンサミトシン（ａｎｓａｍｉｔｏｃｉｎｅ）、ミトグアゾン（ｍｉｔｏｇｕａｚｏｎｅ）、ミトキサントロン、モピダンモール（ｍｏｐｉｄａｎｍｏｌ）、ニトラエリン（ｎｉｔｒａｅｒｉｎｅ）、ペントスタチン、フェナメット（ｐｈｅｎａｍｅｔ）、ピラルビシン、ロソキサントロン（ｌｏｓｏｘａｎｔｒｏｎｅ）、ポドフィリン酸（ｐｏｄｏｐｈｙｌｌｉｎｉｃ　ａｃｉｄ）、２－エチルヒドラジド、プロカルバジン、ラゾキサン（ｒａｚｏｘａｎｅ）、リゾキシン、シゾフィラン、スピロゲルマニウム（ｓｐｉｒｏｇｅｒｍａｎｉｕｍ）、テニュアゾン酸（ｔｅｎｕａｚｏｎｉｃ　ａｃｉｄ）、トリアジコン（ｔｒｉａｚｉｑｕｏｎｅ）、ロリジン（ｒｏｒｉｄｉｎｅ）Ａ、アングイジン（ａｎｇｕｉｄｉｎｅ）、ウレタン、ビンデシン、ダカーバジン、マンノムスチン（ｍａｎｎｏｍｕｓｔｉｎｅ）、ミトブロニトール、ミトラクトール（ｍｉｔｏｌａｃｔｏｌ）、ピポブロマン（ｐｉｐｏｂｒｏｍａｎ）、ガシトシン（ｇａｃｙｔｏｓｉｎｅ）、ドキセタキセル、クロランブシル、ゲムシタビン（ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）、６－チオグアニン、メルカプトプリン、シスプラチン、オキサリプラチン、カルボプラチン、ビンブラスチン、エトポシド、イホスファミド、マイトキサントロン、ビンクリスチン、ビノレルビン、ノバントロン（ｎｏｖａｎｔｒｏｎｅ）、テニポシド、エダトレキセート（ｅｄａｔｒｅｘａｔｅ）、ダウノマイシン、アミノプテリン、キセローダ（ｘｅｌｏｄａ）、イバンドロナート（ｉｂａｎｄｒｏｎａｔｅ）、イリノテカン、トポイソメラーゼインヒビター、ジフルオロメチロールニチン（ＤＭＦＯ）、レチノイン酸、カペシタビン（ｃａｐｅｃｉｔａｂｉｎｅ）、並びにそれらの薬学的に許容可能な塩又は誘導体を包含する。
　抗体が、抗腫瘍剤とコンジュゲートした抗体である場合に、抗腫瘍活性を発揮するかどうかを評価する方法としては、例えば、マウス由来の抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体ならば、マウス抗体に結合する二次抗体に薬物が付いたものを同時に反応させて、ヒト癌細胞に対する抗腫瘍効果を生体外で評価することができる。例えば、Ｓａｐｏｒｉｎが結合された抗ヒトＩｇＧ抗体（Ｈｕｍ－ＺＡＰ（Ａｄｖａｎｃｅｄ　Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ　Ｓｙｓｔｅｍｓ））を用いて評価ができる。
　また、本発明の抗体と、抗腫瘍剤を併用投与することで、より高い治療効果を得ることができる。本手法は、ＣＡＰＲＩＮ－１が発現している癌患者に対して、外科的手術前後どちらにおいても適応できる。特に手術後に、従来抗腫瘍剤単独で処置されていたＣＡＰＲＩＮ－１が発現している癌に対して、より高い癌再発防止や生存期間の延長が得られる。
　本発明の抗体との併用投与に用いられる抗腫瘍剤の例は、文献等で公知の下記の抗腫瘍剤、すなわち、パクリタキセル、ドキソルビシン、ダウノルビシン、シクロホスファミド、メトトレキサート、５－フルオロウラシル、チオテパ、ブスルファン、インプロスルファン、ピポスルファン、ベンゾドーパ（ｂｅｎｚｏｄｏｐａ）、カルボコン、メツレドーパ（ｍｅｔｕｒｅｄｏｐａ）、ウレドーパ（ｕｒｅｄｏｐａ）、アルトレートアミン（ａｌｔｒｅｔａｍｉｎｅ）、トリエチレンメラミン、トリエチレンホスホラミド、トリエチレンチオホスホラミド（ｔｒｉｅｔｈｉｌｅｎｅｔｈｉｏｐｈｏｓｐｈｏｒａｍｉｄｅ）、トリメチローロメラミン（ｔｒｉｍｅｔｈｙｌｏｌｏｍｅｌａｍｉｎｅ）、ブラタシン、ブラタシノン、カンプトセシン、ブリオスタチン、カリスタチン（ｃａｌｌｙｓｔａｔｉｎ）、クリプトフィシン１、クリプトフィシン８、ドラスタチン、ズオカルマイシン、エレウテロビン、パンクラチスタチン、サルコジクチン（ｓａｒｃｏｄｉｃｔｙｉｎ）、スポンジスタチン、クロランブシル、クロロナファジン（ｃｈｌｏＲＮＡｐｈａｚｉｎｅ）、コロホスファミド（ｃｈｏｌｏｐｈｏｓｐｈａｍｉｄｅ）、エストラムスチン、イホスファミド、メクロレタミン、メクロレタミンオキシドヒドロクロリド、メルファラン、ノベンビチン（ｎｏｖｅｍｂｉｃｈｉｎ）、フェネステリン（ｐｈｅｎｅｓｔｅｒｉｎｅ）、プレドニムスチン（ｐｒｅｄｎｉｍｕｓｔｉｎｅ）、トロフォスファミド（ｔｒｏｆｏｓｆａｍｉｄｅ）、ウラシルマスタード、カルムスチン、クロロゾトシン（ｃｈｌｏｒｏｚｏｔｏｃｉｎ）、フォテムスチン（ｆｏｔｅｍｕｓｔｉｎｅ）、ロムスチン、ニムスチン、ラニムスチン、カリケアマイシン（ｃａｌｉｃｈｅａｍｉｃｉｎ）、ダイネマイシン、クロドロネート、エスペラマイシン、アクラシノマイシン、アクチノマイシン、オースラマイシン（ａｕｔｈｒａｍｙｃｉｎ）、アザセリン、ブレオマイシン、カクチノマイシン（ｃａｃｔｉｎｏｍｙｃｉｎ）、カラビシン（ｃａｒａｂｉｃｉｎ）、カルミノマイシン、カルジノフィリン（ｃａｒｚｉｎｏｐｈｉｌｉｎ）、クロモマイシン、ダクチノマイシン、デトルビシン（ｄｅｔｏｒｂｉｃｉｎ）、６－ジアゾ－５－オキソ－Ｌ－ノルロイシン、アドリアマイシン（ａｄｒｉａｍｙｃｉｎ）、エピルビシン、エソルビシン、イダルビシン、マーセロマイシン（ｍａｒｃｅｌｌｏｍｙｃｉｎ）、マイトマイシンＣ、マイコフェノール酸（ｍｙｃｏｐｈｅｎｏｌｉｃ　ａｃｉｄ）、ノガラマイシン（ｎｏｇａｌａｍｙｃｉｎ）、オリボマイシン（ｏｌｉｖｏｍｙｃｉｎｓ）、ペプロマイシン、ポトフィロマイシン（ｐｏｔｆｉｒｏｍｙｃｉｎ）、ピューロマイシン、ケラマイシン（ｑｕｅｌａｍｙｃｉｎ）、ロドルビシン（ｒｏｄｏｒｕｂｉｃｉｎ）、ストレプトニグリン、ストレプトゾシン、ツベルシジン（ｔｕｂｅｒｃｉｄｉｎ）、ウベニメクス、ジノスタチン（ｚｉｎｏｓｔａｔｉｎ）、ゾルビシン（ｚｏｒｕｂｉｃｉｎ）、デノプテリン（ｄｅｎｏｐｔｅｒｉｎ）、プテロプテリン（ｐｔｅｒｏｐｔｅｒｉｎ）、トリメトレキセート（ｔｒｉｍｅｔｒｅｘａｔｅ）、フルダラビン（ｆｌｕｄａｒａｂｉｎｅ）、６－メルカプトプリン、チアミプリン、チオグアニン、アンシタビン、アザシチジン（ａｚａｃｉｔｉｄｉｎｅ）、６－アザウリジン（ａｚａｕｒｉｄｉｎｅ）、カルモフール、シタラビン、ジデオキシウリジン、ドキシフルリジン、エノシタビン（ｅｎｏｃｉｔａｂｉｎｅ）、フロキシウリジン（ｆｌｏｘｕｒｉｄｉｎｅ）、カルステロン（ｃａｌｕｓｔｅｒｏｎｅ）、プロピオン酸ドロモスタノロン、エピチオスタノール、メピチオスタン、テストラクトン（ｔｅｓｔｏｌａｃｔｏｎｅ）、アミノグルテチミド、ミトタン、トリロスタン、フロリン酸（ｆｒｏｌｉｎｉｃ　ａｃｉｄ）、アセグラトン、アルドホスファミドグリコシド、アミノレブリン酸、エニルウラシル、アムサクリン（ａｍｓａｃｒｉｎｅ）、ベストラブシル（ｂｅｓｔｒａｂｕｃｉｌ）、ビサントレン（ｂｉｓａｎｔｒｅｎｅ）、エダトラキセート（ｅｄａｔｒａｘａｔｅ）、デフォファミン（ｄｅｆｏｆａｍｉｎｅ）、デメコルシン（ｄｅｍｅｃｏｌｃｉｎｅ）、ジアジコン（ｄｉａｚｉｑｕｏｎｅ）、エルフォルニチン　（ｅｌｆｏｒｎｉｔｈｉｎｅ）、酢酸エリプチニウム（ｅｌｌｉｐｔｉｎｉｕｍ）、エポチロン（ｅｐｏｔｈｉｌｏｎｅ）、エトグルシド（ｅｔｏｇｌｕｃｉｄ）、レンチナン、ロニダミン（ｌｏｎｉｄａｍｉｎｅ）、メイタンシン（ｍａｙｔａｎｓｉｎｅ）、アンサミトシン（ａｎｓａｍｉｔｏｃｉｎｅ）、ミトグアゾン（ｍｉｔｏｇｕａｚｏｎｅ）、ミトキサントロン、モピダンモール（ｍｏｐｉｄａｎｍｏｌ）、ニトラエリン（ｎｉｔｒａｅｒｉｎｅ）、ペントスタチン、フェナメット（ｐｈｅｎａｍｅｔ）、ピラルビシン、ロソキサントロン（ｌｏｓｏｘａｎｔｒｏｎｅ）、ポドフィリン酸（ｐｏｄｏｐｈｙｌｌｉｎｉｃ　ａｃｉｄ）、２－エチルヒドラジド、プロカルバジン、ラゾキサン（ｒａｚｏｘａｎｅ）、リゾキシン、シゾフィラン、スピロゲルマニウム（ｓｐｉｒｏｇｅｒｍａｎｉｕｍ）、テニュアゾン酸（ｔｅｎｕａｚｏｎｉｃ　ａｃｉｄ）、トリアジコン（ｔｒｉａｚｉｑｕｏｎｅ）、ロリジン（ｒｏｒｉｄｉｎｅ）Ａ、アングイジン（ａｎｇｕｉｄｉｎｅ）、ウレタン、ビンデシン、ダカーバジン、マンノムスチン（ｍａｎｎｏｍｕｓｔｉｎｅ）、ミトブロニトール、ミトラクトール（ｍｉｔｏｌａｃｔｏｌ）、ピポブロマン（ｐｉｐｏｂｒｏｍａｎ）、ガシトシン（ｇａｃｙｔｏｓｉｎｅ）、ドキセタキセル、クロランブシル、ゲムシタビン（ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）、６－チオグアニン、メルカプトプリン、シスプラチン、オキサリプラチン、カルボプラチン、ビンブラスチン、エトポシド、イホスファミド、マイトキサントロン、ビンクリスチン、ビノレルビン、ノバントロン（ｎｏｖａｎｔｒｏｎｅ）、テニポシド、エダトレキセート（ｅｄａｔｒｅｘａｔｅ）、ダウノマイシン、アミノプテリン、キセローダ（ｘｅｌｏｄａ）、イバンドロナート（ｉｂａｎｄｒｏｎａｔｅ）、イリノテカン、トポイソメラーゼインヒビター、ジフルオロメチロールニチン（ＤＭＦＯ）、レチノイン酸、カペシタビン（ｃａｐｅｃｉｔａｂｉｎｅ）、並びにそれらの薬学的に許容可能な（公知の）塩又は（公知の）誘導体も包含する。上記の内、特にシクロホスファミド、パクリタキセル、ドキセタキセル、ビノレルビンが好ましく用いられる。
　あるいは、本発明の抗体には、文献等で公知の、２１１Ａｔ、１３１Ｉ、１２５Ｉ、９０Ｙ、１８６Ｒｅ、１８８Ｒｅ、１５３ＳＭ、２１２Ｂｉ、３２Ｐ、１７５Ｌｕ、１７６Ｌｕ、８９Ｓｒ、６４Ｃｕ、１１１Ｉｎ等の放射性同位体を結合することも可能である（Ｈｉｄｅｏ　Ｓａｊｉ，　ＹＡＫＵＧＡＫＵ　ＺＡＳＳＨＩ　１２８（３）　３２３－３３２　８（２００８），　Ｊｐｎ）。放射性同位体は、腫瘍の治療や診断のために有効なものが望ましい。このような放射性同位体も、本発明における抗腫瘍剤に含まれる。
＜エピトープの同定＞
　本発明の抗体は、以下の実施例に示されるように、配列番号５で示されるアミノ酸配列中のエピトープと結合する。本発明の抗体に対するエピトープを確認する方法の一つとして、配列番号５のポリペプチド中のエピトープをプレートに固定化して、本エピトープに対する抗体の反応性を評価する方法があげられる。具体的には、オリゴエチレングリコール等のスペーサーを介して吸電子性官能基が付いたプレートに配列番号５のポリペプチド中のエピトープを反応させて固定化したものに本発明の抗体を反応させ、ＨＲＰ（Ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈ　Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ）等で標識された、本発明の抗体に結合する二次抗体を反応させることで、抗体の反応性を評価（本発明の抗体が結合するエピトープを確認）することができる。なお、プレートに固定化する配列番号５のポリペプチド中のエピトープは、配列番号５の配列において少なくとも該エピトープを含む配列そのもの、又は、その一部が修飾されたもの（例えば、Ｎ末端残基やＣ末端残基に数個の任意のアミノ酸やＫＬＨ等のタンパク質が修飾されたもの、あるいはＭＡＰタンパク質に（ポリ）ペプチドを修飾したもの等）が用いられ、これらいずれかの（ポリ）ペプチドに対して本発明の抗体が結合すればよい。
　一方、本発明の抗体であっても上記方法で配列番号５のポリペプチドに反応しない（エピトープを確認できない）場合があるかもしれない。その場合には、抗原と抗体が結合しやすい溶液条件下で抗原と抗体を反応させ免疫沈降法によって抗原－抗体複合体を取得した後、抗体に結合した部分ポリペプチドを分離して、そのアミノ酸配列を調べることで本発明の抗体のエピトープを確認することができる。なお、抗原は、例えば、前記の配列番号５のポリペプチドそのもの、一部修飾されたもの、又はＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質でも、上記方法で本発明の抗体が反応するエピトープが確認されればよい。
＜抗腫瘍効果＞
　本発明で用いられる抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体によるＣＡＰＲＩＮ－１発現癌細胞に対する抗腫瘍効果は、以下の機序により起こると考えられる：ＣＡＰＲＩＮ－１発現細胞のエフェクター細胞抗体依存的細胞障害性（ＡＤＣＣ）、及びＣＡＰＲＩＮ－１発現細胞の補体依存的細胞障害性（ＣＤＣ）。但しこの機序により本発明の範囲を限定することは意図しない。
　また、上記機序による抗腫瘍効果は、癌細胞の細胞表面に発現する抗体が結合する標的分子の数に相関することが知られている（Ｎｉｗａ　Ｒ．，　Ｃｌｉｎｉｃａｌ　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　２００５　Ｍａｒ　１５；１１（６）：２３２７－２３３６）。癌細胞の細胞表面に発現する標的分子の数は、細胞表面の分子数を測定できる既存の測定キットを用いて調べることが可能である。すなわち、抗体が結合する標的分子の数は、標的分子に対する抗体等を一次抗体として癌細胞に反応させ、予め分子数が知られた検量線ビーズと共に、蛍光標識された抗一次抗体を反応させ、サンプルの平均蛍光強度を測定し、検量線を得て標的分子の数を知ることができる。
　したがって、本発明で用いられる抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体の活性評価は、以下実施例に具体的に示されるように、生体外でＣＡＰＲＩＮ－１を発現する癌細胞に対して上記ＡＤＣＣ活性又はＣＤＣ活性を測定すること、あるいは本発明にある抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を一次抗体として用いた場合の癌細胞の細胞表面に発現するＣＡＰＲＩＮ－１分子の数を調べることで評価することができる。
　本発明で用いられる抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体は、癌細胞上のＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と結合し、上記活性によって、抗腫瘍作用を示すことから、癌の治療あるいは予防に有用であると考えられる。すなわち本発明は、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を有効成分とする、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物を提供する。抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を人体に投与する目的（抗体治療）で使用する場合には、免疫原性を低下させるため、ヒト抗体やヒト化抗体にすることが好ましい。
　なお、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体と癌細胞表面上のＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質との結合親和性が高い程、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体による、より強い抗腫瘍活性が得られる。したがって、本発明の抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と高い結合親和性を有するため、より強い抗腫瘍効果が期待でき、癌の治療及び／又は予防を目的とした医薬組成物として適応することが可能になる。本発明の抗体は、高い結合親和性として、前述したように、結合定数（親和定数）Ｋａ（ｋｏｎ／ｋｏｆｆ）が、好ましくは、少なくとも１０７Ｍ－１、少なくとも１０８Ｍ－１、少なくとも５×１０８Ｍ－１、少なくとも１０９Ｍ－１、少なくとも５×１０９Ｍ－１、少なくとも１０１０Ｍ－１、少なくとも５×１０１０Ｍ－１、少なくとも１０１１Ｍ－１、少なくとも５×１０１１Ｍ－１、少なくとも１０１２Ｍ－１、あるいは、少なくとも１０１３Ｍ－１を有することが好ましい。
　また、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体と結合する癌細胞表面上のＣＡＰＲＩＮ－１分子の数が多い程、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体による、より強い抗腫瘍活性が得られる。抗腫瘍効果を期待するためには、ＣＡＰＲＩＮ－１分子の数は、本発明の抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を測定に用いた場合に、該抗体が結合する癌細胞１個当たりのＣＡＰＲＩＮ－１分子の数が１０４個以上、好ましくは１０５個以上が望ましい。細胞表面上のＣＡＰＲＩＮ－１分子の数が多い腫瘍（癌細胞）が、本発明の抗体の投与対象となる癌として特に好ましい。
＜抗原発現細胞への結合＞
　抗体がＣＡＰＲＩＮ－１に結合する能力は、実施例で述べられるような、例えば、ＥＬＩＳＡ法、ウエスタンブロット法、免疫蛍光及びフローサイトメトリー分析等を用いた結合アッセイを利用して特定することができる。
＜免疫組織化学染色＞
　ＣＡＰＲＩＮ－１を認識する抗体は、当業者に周知の方法での免疫組織化学により、外科手術の間に患者から得た組織や、自然に又はトランスフェクション後にＣＡＰＲＩＮ－１を発現する細胞系を接種した異種移植組織を担持する動物から得た組織から、パラホルムアルデヒド又はアセトン固定した凍結切片又はパラホルムアルデヒドで固定したパラフィン包埋した組織切片を使用して、ＣＡＰＲＩＮ－１との反応性に関して試験することができる。
　免疫組織化学染色のため、ＣＡＰＲＩＮ－１に対して反応性のある抗体を、様々な方法で染色させることができる。例えば、ホースラディッシュペルオキシダーゼ複合ヤギ抗マウス抗体、ヤギ抗ウサギ抗体やヤギ抗ニワトリ抗体を反応させることにより、可視化することができる。
＜医薬組成物、及び癌の治療及び／又は予防方法＞
　本発明の癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物の標的は、ＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子を発現する癌（細胞）であれば特に限定されない。
　本明細書で使用される「腫瘍」及び「癌」という用語は、悪性新生物を意味し、互換的に使用される。
　本発明において対象となる癌としては、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質をコードする遺伝子を発現している癌であり、好ましくは、乳癌、腎癌、膵臓癌、大腸癌、肺癌、脳腫瘍、胃癌、子宮頸癌、卵巣癌、前立腺癌、膀胱癌、食道癌、白血病、リンパ腫、線維肉腫、肥満細胞腫又はメラノーマである。
　これらの特定の癌には、例えば、乳腺癌、複合型乳腺癌、乳腺悪性混合腫瘍、乳管内乳頭状腺癌、肺腺癌、扁平上皮癌、小細胞癌、大細胞癌、神経上皮組織性腫瘍である神経膠腫、脳室上衣腫、神経細胞性腫瘍、胎児型の神経外胚葉性腫瘍、神経鞘腫、神経線維腫、髄膜腫、慢性型リンパ球性白血病、リンパ腫、消化管型リンパ腫、消化器型リンパ腫、小～中細胞型リンパ腫、盲腸癌、上行結腸癌、下行結腸癌、横行結腸癌、Ｓ状結腸癌、直腸癌、卵巣上皮癌、胚細胞腫瘍、間質細胞腫瘍、膵管癌、浸潤性膵管癌、膵臓癌の腺癌、腺房細胞癌、腺扁平上皮癌、巨細胞腫、膵管内乳頭粘液性腫瘍、粘液性嚢胞腺癌、膵芽腫、漿液性嚢胞腺癌、固体乳頭状癌、ガストリノーマ、グルカゴノーマ、インスリノーマ、多発性内分泌腺腫症１（Ｗｅｒｍｅｒ症候群）、非機能性島細胞腫、ソマトスタチノーマ、ＶＩＰ産生腫瘍が包含されるが、これらに限定されない。
　また、対象となる好ましい被験者（患者）は、哺乳動物であり、例えば、霊長類、ペット動物、家畜類、競技用動物等を含む哺乳動物であり、特にヒト、イヌ及びネコが好ましい。
　本発明で用いられる抗体を医薬組成物として用いる場合には、当業者に公知の方法で製剤化することが可能である。例えば、水若しくはそれ以外の薬学的に許容し得る液との無菌性溶液、又は懸濁液剤の注射剤の形で非経口的に使用できる。例えば、薬理学上許容される担体又は媒体、具体的には、滅菌水や生理食塩水、植物油、乳化剤、懸濁剤、界面活性剤、安定剤、香味剤、賦形剤、ベヒクル、防腐剤、結合剤等と適宜組み合わせて、一般に認められた製薬実施に要求される単位用量形態で混和することによって製剤化することが考えられる。これら製剤における有効成分量は指示された範囲の適当な用量が得られるようにするものである。
　注射のための無菌組成物は注射用蒸留水のようなベヒクルを用いて通常の製剤実施に従って処方することができる。
　注射用の水溶液としては、例えば、生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液、例えば、Ｄ－ソルビトール、Ｄ－マンノース、Ｄ－マンニトール、塩化ナトリウムが挙げられ、適当な溶解補助剤、例えば、アルコール、具体的にはエタノール、ポリアルコール、例えば、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、非イオン性界面活性剤、例えば、ポリソルベート８０（ＴＭ）、ＨＣＯ－６０と併用してもよい。
　油性液としてはゴマ油、大豆油があげられ、溶解補助剤として安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールと併用してもよい。また、緩衝剤、例えば、リン酸塩緩衝液、酢酸ナトリウム緩衝液、無痛化剤、例えば、塩酸プロカイン、安定剤、例えば、ベンジルアルコール、フェノール、酸化防止剤と配合してもよい。調製された注射液は通常、適当なアンプルに充填させる。
　投与は、経口又は非経口であり、好ましくは非経口投与であり、具体的には、注射剤型、経鼻投与剤型、経肺投与剤型、経皮投与型等が挙げられる。注射剤型の例としては、例えば、静脈内注射、筋肉内注射、腹腔内注射、皮下注射等により全身又は局部的に投与することができる。
　また、患者の年齢、体重、性別、症状等により適宜投与方法を選択することができる。抗体又は抗体をコードするポリヌクレオチドを含有する医薬組成物の投与量としては、例えば、一回につき体重１ｋｇあたり０．０００１ｍｇから１０００ｍｇの範囲で選ぶことが可能である。あるいは、例えば、患者あたり０．００１～１０００００ｍｇ／ｂｏｄｙの範囲で投与量を選ぶことができるが、これらの数値に必ずしも制限されるものではない。投与量、投与方法は、患者の体重、年齢、性別、症状等により変動するが、当業者であれば適宜選択することが可能である。
　本発明の抗体又はそのフラグメントを含む上記の医薬組成物を被験者に投与することによって癌、好ましくは、乳癌、腎癌、膵臓癌、大腸癌、肺癌、脳腫瘍、胃癌、子宮頸癌、卵巣癌、前立腺癌、膀胱癌、食道癌、白血病、リンパ腫、線維肉腫、肥満細胞腫又はメラノーマを治療及び／又は予防することができる。
　さらに、本発明の医薬組成物を、上で例示したような抗腫瘍剤又は抗腫瘍剤を含む医薬組成物と組み合わせて、被験者に併用投与することを含む、癌の治療及び／又は予防方法も本発明に包含される。本発明の抗体又はそのフラグメントと抗腫瘍剤は、同時に、又は、別々に被験者に投与されうる。別々に投与する場合には、いずれの医薬組成物が先であっても又は後であってもよく、それらの投与間隔、投与量、投与経路及び投与回数は、専門医によって適宜選択されうる。同時に投与する別の医薬剤型には、例えば、本発明の抗体又はそのフラグメントと抗腫瘍剤を、薬理学上許容される担体（又は媒体）中で混合し製剤化して得られる医薬組成物も包含されるものとする。また、抗腫瘍剤を含有する上記医薬組成物及び剤型のいずれに対しても、本発明の抗体を含有する医薬組成物及び剤型についての処方、製剤化、投与経路、用量、癌等の説明を適用しうる。
　したがって、本発明は、本発明の医薬組成物と、上で例示したような抗腫瘍剤を含む医薬組成物とを含む、癌の治療及び／又は予防のための組み合わせ医薬品及びそれを投与することを含む、癌の治療及び／又は予防方法も提供する。また、本発明は、本発明の抗体又はそのフラグメントと抗腫瘍剤とを、薬理学上許容される担体とともに含む、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物も提供する。
＜ポリペプチド及びＤＮＡ＞
　本発明はさらに、本発明の上記抗体又はそのフラグメント（抗体結合フラグメント）をコードするＤＮＡも提供する。そのようなＤＮＡは、上記抗体の重鎖及び／又は軽鎖をコードするＤＮＡであってもよいし、上記抗体の重鎖可変領域及び／又は軽鎖可変領域をコードするＤＮＡであってもよい。そのようなＤＮＡはまた、上記抗体の各相補性決定領域を単独で又は組み合わせてコードするＤＮＡであってもよい。そのようなＤＮＡは、例えば、上記抗体（ｂ）の場合、配列番号８、９及び１４のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含む重鎖可変領域をコードするＤＮＡ、配列番号１１、１２及び１３のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含む軽鎖可変領域をコードするＤＮＡ等を含む。
　これらの配列のＤＮＡによってコードされる相補性決定領域（ＣＤＲ）が抗体の特異性を決定する領域であるため、抗体のそれ以外の領域（すなわち、定常領域及びフレームワーク領域）をコードする配列は他の抗体由来の配列であってもよい。ここで他の抗体とはヒト以外の生物由来の抗体も含むが、副作用低減の観点からはヒト由来のものが好ましい。すなわち、上記のＤＮＡでは、重鎖及び軽鎖の各フレームワーク領域及び各定常領域をコードする領域がヒト抗体由来若しくはその一部アミノ酸置換体の対応アミノ酸配列をコードする塩基配列を含むことが好ましい。
　さらに、本発明の抗体をコードするＤＮＡの別の例は、例えば、上記抗体（ｂ）の場合、配列番号１６のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含む重鎖可変領域をコードする塩基配列を含むＤＮＡ、軽鎖可変領域をコードする領域が配列番号１８のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むＤＮＡ等である。ここで、配列番号１６のアミノ酸配列をコードする塩基配列の例は、配列番号１５の塩基配列である。また配列番号１８のアミノ酸配列をコードする塩基配列の例は、配列番号１７の塩基配列である。これらのＤＮＡでも、重鎖及び軽鎖の各定常領域をコードする領域を含む場合、その領域がヒト抗体由来の対応アミノ酸配列（重鎖及び軽鎖の各定常領域のアミノ酸配列）をコードする塩基配列を含むことが好ましい。
　これら抗体のＤＮＡは、例えば、上記の方法又は以下の方法で得ることができる。まず、本発明の抗体を産生するハイブリドーマから、市販のＲＮＡ抽出キットを用いて全ＲＮＡを調製し、ランダムプライマー等を用いて逆転写酵素によりｃＤＮＡを合成する。次いで既知のマウス及びウサギ抗体の重鎖遺伝子及び軽鎖遺伝子の各可変領域においてそれぞれ保存されている配列のオリゴヌクレオチドをプライマーに用いたＰＣＲ法によって、各可変領域をコードするｃＤＮＡを増幅させる。定常領域をコードする配列については、既知の配列をＰＣＲ法で増幅することによって得ることができる。ＤＮＡの塩基配列は、配列決定用プラスミド又はファージに組み込むなどして、常法により決定することができる。
　本発明は更に、上記抗体（ａ）～（ｉ）に関わる以下のポリペプチド及びＤＮＡも提供する。
　（ｉ）配列番号５２及び５４、配列番号１６及び配列番号１８、配列番号２１及び配列番号２３、配列番号２５及び配列番号２３、配列番号２９及び配列番号３３、配列番号３９及び配列番号４３、並びに配列番号４９及び配列番号４３のアミノ酸配列からなる群から選択されるポリペプチド、並びに該ポリペプチドをコードするＤＮＡ。
　（ｉｉ）配列番号８、９及び１０、配列番号８、９及び１４、配列番号２６、２７及び２８、配列番号３６、３７及び３８、並びに配列番号４６、４７及び４８に示すアミノ酸配列からなる群から選択される、重鎖ＣＤＲポリペプチド、及び該ポリペプチドをコードするＤＮＡ。
（ｉｉｉ）配列番号１１、１２及び１３、配列番号３０、３１及び３２、並びに配列番号４０、４１及び４２に示すアミノ酸配列からなる群から選択される、軽鎖ＣＤＲポリペプチド、及び該ポリペプチドをコードするＤＮＡ。
　これらのポリペプチド及びＤＮＡは、上記の通り、遺伝子組み換え技術を用いて作製することができる。
＜本発明の要約＞
　上で説明した本発明を以下に要約する。
　（１）配列番号５で表されるアミノ酸配列又は該アミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるＣＡＰＲＩＮ－１部分ポリペプチドと免疫学的反応性を有する、抗体又はそのフラグメント。
　（２）ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質を発現する癌細胞に対し細胞障害活性を有する、上記（１）に記載の抗体又はそのフラグメント。
　（３）前記抗体が、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体である、上記（１）又は（２）に記載の抗体又はそのフラグメント。
　（４）ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体又は多重特異性抗体である、上記（１）～（３）のいずれかに記載の抗体又はそのフラグメント。
　（５）配列番号８、９及び１０の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む重鎖可変領域と配列番号１１、１２及び１３の相補性決定領域を含む軽鎖可変領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（１）～（４）のいずれかに記載の抗体又はそのフラグメント。
　（６）配列番号８、９及び１４の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む重鎖可変領域と配列番号１１、１２及び１３の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（１）～（４）のいずれかに記載の抗体又はそのフラグメント。
　（７）配列番号５２の重鎖可変領域と配列番号５４の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（５）に記載の抗体又はそのフラグメント。
　（８）配列番号２１の重鎖可変領域と配列番号２３の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（５）に記載の抗体又はそのフラグメント。
　（９）配列番号２５の重鎖可変領域と配列番号２３の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（５）に記載の抗体又はそのフラグメント。
　（１０）配列番号１６の重鎖可変領域と配列番号１８の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（６）に記載の抗体又はそのフラグメント。
　（１１）配列番号２６、２７及び２８の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む重鎖可変領域と配列番号３０、３１及び３２の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（１）～（４）のいずれかに記載の抗体又はそのフラグメント。
　（１２）配列番号３６、３７及び３８の相補性決定領域を含む重鎖可変領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）と配列番号４０、４１及び４２の相補性決定領域を含む軽鎖可変領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（１）～（４）のいずれかに記載の抗体又はそのフラグメント。
　（１３）配列番号４６、４７及び４８の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む重鎖可変領域と配列番号４０、４１及び４２の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（１）～（４）のいずれかに記載の抗体又はそのフラグメント。
　（１４）配列番号２９の重鎖可変領域と配列番号３３の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（１１）に記載の抗体又はそのフラグメント。
　（１５）配列番号３９の重鎖可変領域と配列番号４３の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（１２）に記載の抗体又はそのフラグメント。
　（１６）配列番号４９の重鎖可変領域と配列番号４３の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、（１３）に記載の抗体又はそのフラグメント。
　（１７）抗腫瘍剤がコンジュゲートされた、（１）～（１６）のいずれかに記載の抗体又はそのフラグメント。
　（１８）（１）～（１７）のいずれかに記載の抗体又はそのフラグメントを有効成分として含むことを特徴とする、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物。
　（１９）前記癌が乳癌、腎癌、膵臓癌、大腸癌、肺癌、脳腫瘍、胃癌、子宮頸癌、卵巣癌、前立腺癌、膀胱癌、食道癌、白血病、リンパ腫、線維肉腫、肥満細胞腫又はメラノーマである、（１８）に記載の医薬組成物。
　（２０）（１８）又は（１９）に記載の医薬組成物と、抗腫瘍剤を含む医薬組成物とを含んでなる、癌の治療及び／又は予防のための組み合わせ医薬品。
　（２１）（１）～（１６）のいずれかに記載の抗体又はそのフラグメントをコードするＤＮＡ。
　（２２）（１）～（１７）のいずれかに記載の抗体若しくはそのフラグメント、（１８）若しくは（１９）に記載の医薬組成物、又は（２０）に記載の組み合わせ医薬品を、被験者に投与することを含む、癌の治療及び／又は予防方法。
　以下、本発明を実施例に基づきより具体的に説明するが、本発明の範囲はこれらの具体例によって制限されないものとする。
　実施例１　各組織でのＣＡＰＲＩＮ－１発現解析
　ＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子のイヌ及びヒトの正常組織及び各種細胞株における発現をＷＯ２０１０／０１６５２６の実施例１（４）に従ってＲＴ－ＰＣＲ法により調べた。その結果、健常なイヌ組織では精巣に強い発現が見られ、一方イヌ乳癌及び腺癌組織で発現が見られた。さらに、ヒト組織での発現を併せて確認したところ、イヌＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子と同様、正常組織で発現が確認できたのは精巣のみだったが、癌細胞ではヒト乳癌細胞株８種（ＺＲ７５－１、ＭＣＦ７、Ｔ４７Ｄ、ＳＫ－ＢＲ－３、ＭＤＡ－ＭＢ－１５７、ＢＴ－２０、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖ、ＭＲＫ－ｎｕ－１）及び膵臓癌細胞株４種（Ｃａｐａｎ－２、ＭＩＡＰａＣａ－２、Ｐａｎｃ－１、ＢｘＰｃ－３）等、多種類の癌細胞株で発現が検出された。この結果から、ＣＡＰＲＩＮ－１は精巣以外の正常組織では発現が見られず、一方、乳癌細胞株及び膵臓癌細胞株に発現していることが確認された。
　実施例２　ＣＡＰＲＩＮ－１に対するマウスモノクローナル抗体の作製
　（１）マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の作製
　ＷＯ２０１０／０１６５２６の実施例３で調製した配列番号２のアミノ酸配列を有するヒトＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質１００μｇを等量のＭＰＬ＋ＴＤＭアジュバント（シグマ社製）と混合し、これをマウス１匹当たりの抗原溶液とした。抗原溶液を６週齢のＢａｌｂ／ｃマウス（日本ＳＬＣ社製）の腹腔内に投与後、１週間毎に７回投与を行い、免疫を完了した。最後の免疫から３日後に摘出したそれぞれの脾臓を滅菌した２枚のスライドガラスに挟んで擦り潰し、ＰＢＳ（－）（日水社製）を用いて洗浄し１５００ｒｐｍで１０分間遠心して上清を除去する操作を３回繰り返して脾臓細胞を得た。得られた脾臓細胞とマウスミエローマ細胞ＳＰ２／０（ＡＴＣＣから購入）とを１０：１の比率にて混和し、そこに３７℃に加温した１０％ＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地２００μｌとＰＥＧ１５００（ベーリンガー社製）８００μｌを混和して調製したＰＥＧ溶液を加えて５分間静置して細胞融合を行った。１７００ｒｐｍで５分間遠心し、上清を除去後、Ｇｉｂｃｏ社製のＨＡＴ溶液を２％当量加えた１５％ＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地（ＨＡＴ選択培地）１５０ｍｌで細胞を懸濁し、９６穴プレート（ヌンク社製）の１ウェル当たり１００μｌずつ、プレート１５枚に播種した。７日間、３７℃、５％ＣＯ２の条件で培養することで、脾臓細胞とミエローマ細胞が融合したハイブリドーマを得た。
　作製したハイブリドーマが産生する抗体のＣＡＰＲＩＮ－１タンパクに対する結合親和性を指標にハイブリドーマを選抜した。ＷＯ２０１０／０１６５２６の実施例３に記載の手法で調製したＣＡＰＲＩＮ－１タンパク溶液１μｇ／ｍｌを９６穴プレート１ウェル当たりに１００μｌ添加し、４℃にて１８時間静置した。各ウェルをＰＢＳ－Ｔで３回洗浄後、０．５％　Ｂｏｖｉｎｅ　Ｓｅｒｕｍ　Ａｌｂｕｍｉｎ（ＢＳＡ）溶液（シグマ社製）を１ウェル当たり４００μｌ添加して室温にて３時間静置した。溶液を除いて、１ウェル当たり４００μｌのＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄後、上記で得られたハイブリドーマの各培養上清を１ウェル当たり１００μｌ添加し、室温にて２時間静置した。ＰＢＳ－Ｔで各ウェルを３回洗浄した後、ＰＢＳで５０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して室温にて１時間静置した。ＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄した後、ＴＭＢ基質溶液（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して１５～３０分間静置して発色反応を行った。発色後、１規定硫酸を１ウェル当たり１００μｌ添加して反応を停止させ吸光度計を用いて４５０ｎｍと５９５ｎｍの吸光度値を測定した。その結果、吸光度値が高かった抗体を産生するハイブリドーマを複数個選抜した。
　選抜したハイブリドーマを９６穴プレート１ウェル当たりに０．５個となるようにプレートに添加し培養した。１週間後、ウェル中に単一のコロニーを形成しているハイブリドーマが観察された。それらウェルの細胞をさらに培養して、クローニングされたハイブリドーマが産生する抗体のＣＡＰＲＩＮ－１タンパクに対する結合親和性を指標にハイブリドーマを選抜した。ＷＯ２０１０／０１６５２６の実施例３に記載の手法で調製したＣＡＰＲＩＮ－１タンパク溶液１μｇ／ｍｌを９６穴プレート１ウェル当たりに１００μｌ添加し、４℃にて１８時間静置した。各ウェルをＰＢＳ－Ｔで３回洗浄後、０．５％ＢＳＡ溶液を１ウェル当たり４００μｌ添加して室温にて３時間静置した。溶液を除いて、１ウェル当たり４００μｌのＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄後、上記で得られたハイブリドーマの各培養上清を１ウェル当たり１００μｌ添加し、室温にて２時間静置した。ＰＢＳ－Ｔで各ウェルを３回洗浄後、ＰＢＳで５０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体（インビトロジェン社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して室温にて１時間静置した。ＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄した後、ＴＭＢ基質溶液（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して１５～３０分間静置して発色反応を行った。発色後、１規定硫酸を１ウェル当たり１００μｌ添加して反応を停止させ吸光度計を用いて４５０ｎｍと５９５ｎｍの吸光度値を測定した。その結果、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパクに反応性を示すモノクローナル抗体を産生する６１個のハイブリドーマ株を得た。
　次にそれらモノクローナル抗体の内、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する乳癌細胞の細胞表面に反応性を示すものを選抜した。具体的には、１０６個のヒト乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖを１．５ｍｌ容のミクロ遠心チューブにて遠心分離し、これに上記各ハイブリドーマの培養上清１００μｌを添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄した後、０．１％ＦＢＳを含むＰＢＳで５００倍希釈したＦＩＴＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体（インビトロジェン社製）を添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄後、ベクトンディッキンソン株式会社のＦＡＣＳキャリバーにて蛍光強度を測定した。一方、上記と同様の操作を、抗体の代わりに何も処理していない６週齢のＢａｌｂ／ｃマウスの血清をハイブリドーマ培養用培地で５００倍希釈したものを用いて行い、コントロールとした。その結果、コントロールに比べて蛍光強度が強い、すなわち、乳癌細胞の細胞表面に反応するマウスモノクローナル抗体１個（マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１）を選抜した。
　（２）マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１が認識するＣＡＰＲＩＮ－１エピトープの同定
　上記（１）で取得した癌細胞の細胞表面に反応するＣＡＰＲＩＮ－１に対するモノクローナル抗体（マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１）を用いて、認識するＣＡＰＲＩＮ－１エピトープ領域の同定を行った。ヒトＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質のアミノ酸配列中、１２～１６アミノ酸から成る、９３個の候補ペプチドを合成し、それぞれ１ｍｇ／ｍｌの濃度になるようにＤＭＳＯで溶解した。
　各ペプチドを０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ９．６）中に３０μｇ／ｍｌの濃度になるように溶解し、９６穴プレート（Ｎｕｎｃ社製、製品番号：436006）の１穴あたり１００μｌずつ添加して４℃で一晩静置した。液を捨て、１０ｍＭエタノールアミン／０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝液（ＰＨ９．６）を１穴あたり２００μｌずつ添加し、室温で１時間静置した後、液を捨て、０．５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳ（ＰＢＳＴ）にて２回洗浄することによって、各ペプチドが固相化されたプレートを作製した。
　これに、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１を含む細胞培養上清を１穴あたり５０μｌ添加し、室温で１時間振とうした後、液を除去し、ＰＢＳＴにて３回洗浄した。次に、ＨＲＰが標識された抗マウスＩｇＧ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）抗体をＰＢＳＴにて３０００～４０００倍希釈した２次抗体溶液をウェルに５０μｌずつ添加した後、液を除去し、ＰＢＳＴにて６回洗浄を行った。
　ＴＭＢ基質溶液（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して１５～３０分間静置して発色反応を行った。発色後、１規定硫酸を１ウェル当たり１００μｌ添加して反応を停止させ吸光度計を用いて４５０ｎｍと５９５ｎｍの吸光度値を測定した。
　その結果、実施例２（１）で得られたマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１が認識するＣＡＰＲＩＮ－１の部分配列として、配列番号５のポリペプチドが同定された。
　（３）マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２、及び＃３の作製
　上記（１）と同様の方法で、（２）で同定した配列番号５のアミノ酸配列を有するポリペプチドとキャリアタンパク質のＫＬＨ（Ｋｅｙｈｏｌｅ　ｌｉｍｐｅｔ　ｈａｅｍｏｃｙａｎｉｎ）との融合タンパク質を免疫原として、等量のアジュバント剤ＴｉｔｅｒＭａｘ　Ｇｏｌｄ（登録商標）（ＣｙｔＲｘ社）と混合して７日間隔でマウスの腹腔に１回あたり１００μg投与した。合計４回の投与を行った後、最終免疫から３日後のマウスから脾臓細胞を得て、上記（１）と同様の方法にてマウスミエローマ細胞と融合してハイブリドーマを作製した。その後、作製したハイブリドーマの培養上清中に含まれる各抗体とＷＯ２０１０／０１６５２６の実施例３で調製したＣＡＰＲＩＮ－１タンパク溶液１μｇ／ｍｌ並びに免疫原として用いた配列番号５のアミノ酸配列とキャリアタンパク質のＢＳＡとの融合タンパク質との反応性を指標に抗体を選抜した。ＷＯ２０１０／０１６５２６の実施例３で調製したＣＡＰＲＩＮ－１タンパク溶液１μｇ／ｍｌと配列番号５のアミノ酸配列とキャリアタンパク質のＢＳＡとの融合タンパク質３０μg／ｍｌをそれぞれ９６穴プレート１ウェル当たりに１００μｌ添加して４℃にて１８時間静置した。各ウェルをＰＢＳ－Ｔで洗浄後、ブロックエース（ＤＳファーマバイオメディカル社）溶液を１ウェル当たり４００μｌ添加して室温にて３時間静置した。溶液を除いて、ＰＢＳ－Ｔでウェルを洗浄後、上記で得られたハイブリドーマの各培養上清を１ウェル当たり１００μｌ添加し、室温で２時間静置した。ＰＢＳ－Ｔで各ウェルを洗浄した後、ＰＢＳで５０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して室温にて１時間静置した。ＰＢＳ－Ｔでウェルを洗浄した後、ＴＭＢ基質溶液（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して５～３０分間静置して発色反応を行った。発色後、１規定硫酸を１ウェル当たり１００μｌ添加して反応を停止させ、吸光度計を用いて４５０ｎｍと５９５ｎｍの吸光度値を測定した。その結果、吸光度値が高かった抗体を産生するハイブリドーマを選抜した。
　選抜したハイブリドーマを９６穴プレート１ウェル当たりに０．３個となるようにプレートに添加し培養した。１週間後、ウェル中に単一のコロニーを形成しているハイブリドーマが観察された。それらウェルの細胞をさらに培養して、クローニングされたハイブリドーマが産生する抗体のＣＡＰＲＩＮ－１の部分配列の配列番号５のアミノ酸配列に対する結合親和性を指標に上記と同様の方法を用いて、配列番号５のアミノ酸に対する抗体を産生するハイブリドーマを得た。
　得られたハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体の内、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する乳癌細胞の細胞表面に反応性を示すものを選抜した。具体的には、１０６個のヒト乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖを１．５ｍｌ容のミクロ遠心チューブにて遠心分離し、これに上記各ハイブリドーマの培養上清１００μｌを添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄した後、０．１％ＦＢＳを含むＰＢＳで５００倍希釈したＦＩＴＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体（インビトロジェン社製）を添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄後、ベクトンディッキンソン株式会社のＦＡＣＳキャリバーにて蛍光強度を測定した。一方、上記と同様の操作を、抗体の代わりに何も処理していない６週齢のＢａｌｂ／ｃマウスの血清をハイブリドーマ培養用培地で５００倍希釈したものを用いたサンプル、及び二次抗体のみを反応させたサンプルを陰性コントロールとして行った。その結果、陰性コントロールに比べて蛍光強度が強い、すなわち、乳癌細胞の細胞表面に反応するマウスモノクローナル抗体２個（マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃３）を得た。
　得られたマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２並びに＃３が免疫原であるＣＡＰＲＩＮ－１の部分配列である配列番号５のアミノ酸配列を有するポリペプチドに特異的に反応することを調べた。０．１Ｍの炭酸ナトリウム水溶液で３０μg／ｍｌに調製した配列番号５のアミノ酸配列を含む溶液及び配列番号５のアミノ酸配列を含まないＣＡＰＲＩＮ－１の部分配列をそれぞれＥＬＩＳＡ用９６ウェルプレートイモビライザーアミノ（ヌンク社）に１００μg／ｍｌずつ添加して、４℃にて一昼夜反応させてペプチドをウェルに結合させた。ペプチドが結合したウェルに１０ｍＭエタノールアミンを含む０．１Ｍ炭酸ナトリウム水溶液を添加して室温で１時間静置した。ウェル内の溶液を除去後、ＰＢＳ－Ｔで洗浄したのち、ブロックエース溶液を１ウェル当たり４００μｌ添加して室温にて３時間静置した。ウェル内の溶液を除去し、ＰＢＳ－Ｔで洗浄後、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１＃２並びに＃３を含む培養上清をそれぞれ１ウェルあたりに５０μＬ添加して、室温にて１時間反応させた。その後ＰＢＳ－Ｔで洗浄して、ブロックエース溶液で５０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を１ウェル当たり５０μｌ添加して室温にて１時間静置した。ＰＢＳ－Ｔでウェルを十分に洗浄した後、ＴＭＢ基質溶液（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して５～３０分間静置して発色反応を行った。発色後、１規定硫酸を１ウェル当たり１００μｌ添加して反応を停止させ、吸光度計を用いて４５０ｎｍと５９５ｎｍの吸光度値を測定したところ、配列番号５のアミノ酸配列を含まないＣＡＰＲＩＮ－１の部分配列には全く反応せず、配列番号５のアミノ酸配列を有するポリペプチドのみにマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２並びに＃３は特異的に反応した。したがって、配列番号５のポリペプチドがマウスモノクローナル抗体＃２及び＃３のエピトープ領域を含んでいることが確認された。
　（４）マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、＃２、及び＃３の特徴付け
　実施例２（１）と（３）で得られたマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、＃２、及び＃３について、ＷＯ２０１０／０１６５２６の実施例５に記載の方法に従って可変領域をコードする遺伝子の増幅断片を取得し、遺伝子配列並びにそのアミノ酸配列を解析した。その結果得られたマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の重鎖可変領域をコードする遺伝子配列を配列番号３４に、及びアミノ酸配列を配列番号２９に、軽鎖可変領域をコードする遺伝子配列を配列番号３５、及びアミノ酸配列を配列番号３３に示す。また、得られたマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２の重鎖可変領域をコードする遺伝子配列を配列番号４４に、及びアミノ酸配列を配列番号３９に、軽鎖可変領域をコードする遺伝子配列を配列番号４５に及びアミノ酸配列を配列番号４３に示す。さらにまた、得られたマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃３の重鎖可変領域をコードする遺伝子配列を配列番号５０に、及びアミノ酸配列を配列番号４９、軽鎖可変領域をコードする遺伝子配列を配列番号４５に、及びアミノ酸配列を配列番号４３に示す。
　すなわち、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１は配列番号２９の重鎖可変領域と配列番号３３の軽鎖可変領域を含み、そのうち、重鎖可変領域中のＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号２６、配列番号２７、配列番号２８のアミノ酸配列からなり、軽鎖可変領域中のＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号３０、配列番号３１、配列番号３２のアミノ酸配列からなることが確認された。また、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２は配列番号３９の重鎖可変領域と配列番号４３の軽鎖可変領域を含み、そのうち、重鎖可変領域中のＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号３６、配列番号３７、配列番号３８のアミノ酸配列からなり、軽鎖可変領域中のＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号４０、配列番号４１、配列番号４２のアミノ酸配列からなることが確認された。さらにまた、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃３は配列番号４９の重鎖可変領域と配列番号４３の軽鎖可変領域を含み、そのうち、重鎖可変領域中のＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号４６、配列番号４７、配列番号４８のアミノ酸配列からなり、軽鎖可変領域中のＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号４０、配列番号４１、配列番号４２のアミノ酸配列からなることが確認された。
　実施例３　癌細胞表面上に存在するＣＡＰＲＩＮ－１の部分ポリペプチドに対するポリクローナル抗体の作製
　癌細胞表面上に存在するＣＡＰＲＩＮ－１の部分ポリペプチドに対するポリクローナル抗体を得るために、実施例１（１）で取得した抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１のエピトープ領域を含むポリペプチド（配列番号５で示されるＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチド）、配列番号２のヒトＣＡＰＲＩＮ－１のアミノ酸配列中のアミノ酸残基番号５０～９８領域のポリペプチド及び配列番号２中のアミノ酸残基番号２３３～３０５領域のポリペプチドを合成した。これらのペプチド１ｍｇずつを抗原として、等容量の不完全フロイントアジュバント（ＩＦＡ）溶液と混合し、これを２週間毎に４回、ウサギの皮下に投与を行った。その後血液を採取し、各ポリクローナル抗体を含む抗血清を得た。さらにこれら抗血清をプロテインＧ担体（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）を用いて精製しＰＢＳで置換した、癌細胞表面上に存在するＣＡＰＲＩＮ－１の部分ポリペプチドに対するポリクローナル抗体を得た。また、抗原を投与していないウサギの血清を上記と同様にしてプロテインＧ担体を用いて精製したものをコントロール抗体とした。
　実施例４　ＣＡＰＲＩＮ－１の部分ポリペプチドに対するポリクローナル抗体を用いた癌細胞膜面上でのＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の発現解析
　次にＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子の発現が多く確認されたヒト乳癌細胞株８種（ＺＲ７５－１、ＭＣＦ７、Ｔ４７Ｄ、ＳＫ－ＢＲ－３、ＭＤＡ－ＭＢ－１５７、ＢＴ－２０、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖ、ＭＲＫ－ｎｕ－１）について、その細胞表面上にＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質が発現しているかどうかを調べた。上記で遺伝子発現が認められた各ヒト乳癌細胞株それぞれ５×１０５細胞を１．５ｍｌのミクロ遠心チューブにて遠心分離した。これに本実施例３で上記の通り調製した配列番号５で示されるＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するポリクローナル抗体２μｇ（５μｌ）と９５μｌの０．１％牛胎児血清を含むＰＢＳを添加して混ぜ、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄した後、１μｌのＡｌｅｘａ４８８標識Ｇｏａｔ ａｎｔｉ－ｒａｂｂｉｔ　ＩｇＧ抗体（インビトロジェン社製）及び９８μｌの０．１％　牛胎児血清（ＦＢＳ）を含むＰＢＳを添加して混ぜ、氷上で３０時間静置した。ＰＢＳで洗浄後、ベクトンディッキンソン株式会社のＦＡＣＳキャリバーにて蛍光強度を測定した。一方、上記と同様の操作を、ＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するポリクローナル抗体の代わりに実施例３で上記の通り調製したコントロール抗体を用いて行い、コントロールとした。その結果、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を添加された細胞は、コントロールに比べて、いずれの癌細胞も蛍光強度が３５％以上強かった。このことから、上記ヒト癌細胞株の細胞膜表面上にＣＡＰＲＩＮ－１タンパクが発現していることが確認された。なお、上記蛍光強度の増強率は、各細胞における平均蛍光強度（ＭＦＩ値）の増加率にて表され、以下の計算式により算出した。
　平均蛍光強度の増加率（蛍光強度の増強率）（％）＝（（抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を反応させた細胞のＭＦＩ値）－（コントロールＭＦＩ値））÷（コントロールＭＦＩ値）×１００。
　また、同様の上記手法を用いて、腎癌細胞株２種（Ｃａｋｉ－１，Ｃａｋｉ－２）、膀胱癌細胞株（Ｔ２４）、卵巣癌細胞株（ＳＫＯＶ３）、肺癌細胞株２種（ＱＧ５６、Ａ５４９）、前立腺癌細胞株（ＰＣ３）、子宮頸癌細胞株（ＳＷ７５６）、線維肉腫細胞株（ＨＴ１０８０）、脳腫瘍細胞株２種（Ｔ９８Ｇ，Ｕ８７ＭＧ）、胃癌細胞株（ＭＫＮ２８）、大腸癌細胞株３種（Ｌｏｖｏ、ＤＬＤ－１、ＨＣＴ－１１６）、膵臓癌細胞株４種（Ｃａｐａｎ－２、ＭＩＡＰａＣａ－２、Ｐａｎｃ－１、ＢｘＰＣ－３）について蛍光強度を測定したところ、コントロールに比べていずれの癌細胞も蛍光強度が３５％以上強かった。
　なお、本結果は、実施例２で取得された抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１を用いた場合も同様に癌細胞膜面上でのＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の発現が確認された。
　実施例５　ヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体の作製
　実施例２で得た、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の重鎖可変領域を含んだ遺伝子増幅断片の両端を制限酵素処理した後精製し、マウス抗体由来のリーダー配列と配列番号６のアミノ酸配列を含むヒトＩｇＧ１のＨ鎖定常領域を既に挿入済みのｐｃＤＮＡ４／ｍｙｃ－Ｈｉｓ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）ベクターへ常法に従って挿入した。また、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の軽鎖可変領域を含んだ遺伝子増幅断片の両端を制限酵素処理した後精製し、マウス抗体由来のリーダー配列と配列番号７のアミノ酸配列を含むヒトＩｇＧ１のＬ鎖定常領域を既に挿入済みのｐｃＤＮＡ３．１／ｍｙｃ－Ｈｉｓ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）ベクターへ常法に従って挿入した。
　次に、上記にあるマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の重鎖可変領域が挿入された上記組換えベクターと、軽鎖可変領域が挿入された上記組換えベクターをＣＨＯ－Ｋ１細胞（理研セルバンクより入手）に導入した。具体的には、１２穴培養プレートの１ウェル当たりに１ｍｌの１０％ＦＢＳを含むＨａｍ’ｓ　Ｆ１２培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）で培養された２×１０５個のＣＨＯ－Ｋ１細胞をＰＢＳ（－）で洗浄したのちに、１ウェル当たり１ｍｌの１０％ＦＢＳを含むＨａｍ’ｓ　Ｆ１２培地を新たに加えたウェルに３０μｌのＯｐｔｉＭＥＭ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）に溶解した上記各ベクター２５０ｎｇとＰｏｌｙｆｅｃｔ　ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ　ｒｅａｇｅｎｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製）３０μｌとを混合したものを添加した。上記組換えベクターを導入したＣＨＯ－Ｋ１細胞を、２００μｇ／ｍｌゼオシン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）並びに２００μｇ／ｍｌジェネチシン（ロシュ社製）を添加した１０％ＦＢＳを含むＨａｍ’ｓＦ１２培地で培養したのち、９６ウェルプレートの１ウェル当たりに０．５個となるように上記組換えベクターを導入したＣＨＯ－Ｋ１細胞を播種して、実施例２で得たマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の可変領域を有するヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１を安定的に産生する細胞株を作製した。マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃３についてもマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１と同様の操作を行い、実施例２で得た抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃３の可変領域を有するヒト－マウスキメラモノクローナル抗体＃２及びヒト－マウスキメラモノクローナル抗体＃３を安定的に産生する細胞株を作製した。
　作製した細胞株を１５０ｃｍ２フラスコを用いて５×１０５個／ｍｌで血清を含まないＯｐｔｉＣＨＯ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）３０ｍｌを用いて５日間培養し、ヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１を含む培養上清を得た。ヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２及びヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃３を含む培養上清も同様の手法で得た。
　また、比較抗体として、ＷＯ２０１０／０１６５２６に記載されるマウス由来の抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体であり同文献中の配列番号２６の重鎖可変領域と配列番号２７の軽鎖可変領域を有する比較抗体１、配列番号２８の重鎖可変領域と配列番号２９の軽鎖可変領域を有する比較抗体２、配列番号３０の重鎖可変領域と配列番号３１の軽鎖可変領域を有する比較抗体３、配列番号３２の重鎖可変領域と配列番号３３の軽鎖可変領域を有する比較抗体４、配列番号３４の重鎖可変領域と配列番号３５の軽鎖可変領域を有する比較抗体５、配列番号３６の重鎖可変領域と配列番号３７の軽鎖可変領域を有する比較抗体６、配列番号３８の重鎖可変領域と配列番号３９の軽鎖可変領域を有する比較抗体７、配列番号４０の重鎖可変領域と配列番号４１の軽鎖可変領域を有する比較抗体８、配列番号４２の重鎖可変領域と配列番号４３の軽鎖可変領域を有する比較抗体９、配列番号４４の重鎖可変領域と配列番号４５の軽鎖可変領域を有する比較抗体１０、配列番号４６の重鎖可変領域と配列番号４７の軽鎖可変領域を有する比較抗体１１、ＷＯ２０１１／０９６５１７に記載される抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体であり同文献中の配列番号４３の重鎖可変領域と配列番号４７の軽鎖可変領域を有する比較抗体１２、配列番号４３の重鎖可変領域と配列番号の軽鎖可変領域を有する比較抗体１３、ＷＯ２０１１／０９６５２８に記載される抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体であり同文献中の配列番号４３の重鎖可変領域と配列番号４７の軽鎖可変領域を有する比較抗体１４、配列番号５１の重鎖可変領域と配列番号５５の軽鎖可変領域を有する比較抗体１５、配列番号５９の重鎖可変領域と配列番号６３の軽鎖可変領域を有する比較抗体１６、配列番号７６の重鎖可変領域と配列番号８０の軽鎖可変領域を有する比較抗体１７、配列番号８４の重鎖可変領域と配列番号８８の軽鎖可変領域を有する比較抗体１８、配列番号９２の重鎖可変領域と配列番号９６の軽鎖可変領域を有する比較抗体１９、ＷＯ２０１１／０９６５１９に記載される抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体であり同文献中の配列番号４２の重鎖可変領域と配列番号４６の軽鎖可変領域を有する比較抗体２０、ＷＯ２０１１／０９６５３３に記載される抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体であり同文献中の配列番号４３の重鎖可変領域と配列番号５１の軽鎖可変領域を有する比較抗体２１、配列番号４７の重鎖可変領域と配列番号５１の軽鎖可変領域を有する比較抗体２２、配列番号６３の重鎖可変領域と配列番号６７の軽鎖可変領域を有する比較抗体２３、ＷＯ２０１１／０９６５３４に記載される抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体であり同文献中の配列番号４３の重鎖可変領域と配列番号４７の軽鎖可変領域を有する比較抗体２４、配列番号４３の重鎖可変領域と配列番号５１の軽鎖可変領域を有する比較抗体２５、配列番号６３の重鎖可変領域と配列番号６７の軽鎖可変領域を有する比較抗体２６についても上記と同様にして、比較試料であるヒト－マウスキメラ比較抗体１～２６をそれぞれ安定的に産生する細胞株を作製し、作製した細胞株を１５０ｃｍ２フラスコを用いて５×１０５個／ｍｌで血清を含まないＯｐｔｉＣＨＯ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）３０ｍｌを用いて５日間培養し、ヒト－マウスキメラ比較モノクローナル抗体１～２６を含む培養上清を得た。
　実施例６　抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体を用いた各種癌細胞表面でのＣＡＰＲＩＮ－１の発現評価
　次にＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子の発現が確認されたヒト乳癌細胞株８種（ＺＲ７５－１、ＭＣＦ７、Ｔ４７Ｄ、ＳＫ－ＢＲ－３、ＭＤＡ－ＭＢ－１５７、ＢＴ－２０、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖ、ＭＲＫ－ｎｕ－１）、腎癌細胞株２種（Ｃａｋｉ－１，Ｃａｋｉ－２）、膀胱癌細胞株（Ｔ２４）、卵巣癌細胞株（ＳＫＯＶ３）、肺癌細胞株２種（ＱＧ５６、Ａ５４９）、前立腺癌細胞株（ＰＣ３）、子宮頸癌細胞株（ＳＷ７５６）、線維肉腫細胞株（ＨＴ１０８０）、脳腫瘍細胞株２種（Ｔ９８Ｇ，Ｕ８７ＭＧ）、胃癌細胞株（ＭＫＮ２８）、大腸癌細胞株３種（Ｌｏｖｏ、ＤＬＤ－１、ＨＣＴ－１１６）、膵臓癌細胞株４種（Ｃａｐａｎ－２、ＭＩＡＰａＣａ－２、Ｐａｎｃ－１、ＢｘＰＣ－３）について、実施例２で得られたマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１を含む培養上清を用いて、各細胞の細胞表面上でのＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の発現を調べた。各細胞株それぞれ１０６細胞を１．５ｍｌ容のミクロ遠心チューブにて遠心分離した。上記抗体を含む各細胞培養上清（１００μｌ）を添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄した後、０．１％ＦＢＳを含むＰＢＳで希釈したＦＩＴＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ　ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社製）を添加し、４℃で３０分間静置した。ＰＢＳで洗浄後、ベクトンディッキンソン株式会社のＦＡＣＳキャリバーにて蛍光強度を測定した。陰性コントロールには二次抗体のみを反応したものを用いた。その結果、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１は、陰性コントロールに比べて、蛍光強度が３０％以上強い反応性を示した。同様にマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２並びに＃３についてもマウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１と同様の結果を得た。また、実施例５で作製したヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、ヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２並びにヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃３を定法に従ってＨｉｔｒａｐ　ＰｒｏｔｅｉｎＡ　ＳｅｐｈａｒｏｓｅＦＦ（ＧＥヘルスケア社製）を用いて精製し、ＰＢＳ（－）に置換して０．２２μｍのフィルター（ミリポア社製）で濾過したものについて、上記癌細胞株への反応性を評価した結果も同様の結果であった。ヒト－マウスキメラ型抗体の評価には二次抗体としてＦＩＴＣ標識ヤギ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体を用いた。このことから、上記ヒト癌細胞株の細胞膜表面上にＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質が発現していることが確認された。なお、上記蛍光強度の増強率は、各細胞における平均蛍光強度（ＭＦＩ値）の増加率にて表され、以下の計算式により算出した。
　平均蛍光強度の増加率（蛍光強度の増強率）（％）＝（（抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を反応させた細胞のＭＦＩ値）－（コントロールＭＦＩ値））÷（コントロールＭＦＩ値）×１００。
　実施例７　抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体の癌細胞に対する抗腫瘍活性
　配列番号５に示すＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対する抗体のＣＡＰＲＩＮ－１を発現する癌細胞に対する細胞障害性の強さを評価するために、ＡＤＣＣ活性を測定した。実施例３で調製した配列番号５に示すペプチドに対するウサギポリクローナル抗体を用いて評価を行った。比較する抗体として、その他のヒトＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するウサギポリクローナル抗体（実施例３で調製した、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１の配列番号２のアミノ酸配列中のアミノ酸残基番号５０－９８に対するポリクローナル抗体とアミノ酸残基番号２３３～３０５に対するウサギポリクローナル抗体）を用い、陰性コントロールとして、実施例３で調製した無処置の正常ウサギ血清由来のコントロール抗体を用いて同様に評価した。
　ＣＡＰＲＩＮ－１の発現が確認されているヒト乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖ、ヒト大腸癌細胞株ＤＬＤ－１、ヒト膵臓癌細胞株Ｃａｐａｎ－２、ヒト肺癌細胞株ＱＧ５６を１０６個５０ｍｌ容の遠心チューブに集め、１００μＣｉのクロミウム５１を加え３７℃で２時間インキュベートした。その後１０％牛胎児血清を含むＲＰＭＩ１６４０培地で３回洗浄し、９６穴Ｖ底プレート１穴あたり２×１０３個ずつ添加した。これに、上記配列番号５に示すヒトＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するウサギポリクローナル抗体及び上記にあるその他のヒトＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するウサギポリクローナル抗体２種類（ヒトＣＡＰＲＩＮ－１の配列番号２のアミノ酸残基番号５０～９８に対するウサギポリクローナル抗体とアミノ酸残基番号２３３－３０５に対するウサギポリクローナル抗体）をそれぞれ１μｇずつ添加し、さらにヒト及びウサギの末梢血から定法に従って分離したリンパ球をそれぞれ４×１０５個ずつ添加して、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で４時間培養した。培養後、障害を受けた癌細胞から放出される培養上清中のクロミウム（Ｃｒ）５１の量を測定し、各ヒトＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するウサギポリクローナル抗体による癌細胞に対するＡＤＣＣ活性を算出した。その結果、ヒトＣＡＰＲＩＮ－１の配列番号２のアミノ酸残基番号５０～９８及びアミノ酸残基番号２３３－３０５のアミノ酸配列を有するヒトＣＡＰＲＩＮ－１部分ペプチドを免疫して得たウサギポリクローナル抗体の場合にはヒト乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖ、ヒト大腸癌細胞株ＤＬＤ－１、ヒト膵臓癌細胞株Ｃａｐａｎ－２、ヒト肺癌細胞株ＱＧ５６における活性は、いずれの抗体もそれぞれ８％未満であったのに対して、配列番号５に示すヒトＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対するウサギポリクローナル抗体を添加した群はいずれの癌細胞株に対しても２８％以上の細胞障害活性が確認された。陰性コントロールの抗体は、いずれの癌細胞に対しても５％未満の活性であった。したがって、配列番号５に示すＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体は、ＣＡＰＲＩＮ－１を発現する癌細胞に対して、強い細胞障害活性を発揮することが明らかになった。
　なお、細胞障害活性は、上記のように、本発明で用いられるＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体、リンパ球及びクロミウム５１を取り込ませた２×１０３個の各癌細胞株を混合して４時間培養し、培養後培地に放出されたクロミウム５１の量を測定して、以下計算式＊により算出した癌細胞株に対する細胞障害活性を示した結果である。
　＊式：細胞障害活性（％）＝ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体及びリンパ球を加えた際の標的細胞からのクロミウム５１遊離量÷１Ｎ塩酸を加えた標的細胞からのクロミウム５１遊離量×１００。
　同様に、実施例５で得た、ＣＡＰＲＩＮ－１の一部の配列である配列番号５に対するヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、＃２、及び＃３のヒト癌細胞に対する細胞障害活性を評価した。上記抗体を産生する各細胞培養上清を定法に従ってＨｉｔｒａｐ　ＰｒｏｔｅｉｎＡ　ＳｅｐｈａｒｏｓｅＦＦ（ＧＥヘルスケア社製）を用いて精製し、ＰＢＳ（－）に置換して０．２２μｍのフィルター（ミリポア社製）で濾過したものを活性測定用の抗体として用いた。１０６個のヒト乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖ、ヒト大腸癌細胞株ＤＬＤ－１、ヒト膵臓癌細胞株Ｃａｐａｎ－２、ヒト肺癌細胞株ＱＧ５６を５０ｍｌ容の遠心チューブに集め、１００μＣｉのクロミウム５１を加え３７℃で２時間インキュベートした。その後１０％　ＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地で３回洗浄し、９６穴Ｖ底プレート１穴あたり２×１０３個ずつ添加して標的細胞とした。これに、上記精製抗体ヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、＃２、及び＃３、並びに実施例５で得たヒト－マウスキメラ比較モノクローナル抗体１～２６をそれぞれ０．７５μｇ添加し、さらに定法に従って調製した、ヒト末梢血リンパ球細胞から定法を用いてヒトＮＫ細胞を含む細胞集団を分離した。ヒトＮＫ細胞を含む細胞集団は、末梢血単核球細胞分離用の比重分離液Ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ（シグマアルドリッチ社）を用いて分離したヒト末梢血単核球細胞をＦＩＴＣ蛍光色素で標識された抗体（抗ヒトＣＤ３抗体、抗ヒトＣＤ２０抗体、抗ヒトＣＤ１９抗体、抗ヒトＣＤ１１ｃ抗体、抗ＨＬＡ－ＤＲ抗体（ベクトンアンドディッキンソン社））で反応させ、セルソーター（ＦＡＣＳ　Ｖａｎｔａｇｅ　ＳＥ（ベクトンアンドディッキンソン社））を用いて、上記抗体で染まらないＮＫ細胞を含んだ細胞集団を分離したもの、又はヒトＮＫ細胞分離キット（ミルテニー社製）を用いて分離したものをエフェクター細胞として用いた。分離したＮＫ細胞を含んだ細胞を１ウェル当たり２×１０５個添加して、３７℃、５％、ＣＯ２の条件下で４時間培養した。培養後、障害を受けた腫瘍細胞から放出される培養上清中のクロミウム５１の量を測定し、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体による癌細胞に対する細胞障害活性を算出した。陰性コントロールにはアイソタイプコントロール抗体を添加したものを用いた。その結果、アイソタイプコントロール抗体を用いた場合の細胞障害活性はいずれの癌細胞に対しても５％未満であり、ヒト－マウスキメラ比較モノクローナル抗体１～２６を用いた場合の細胞障害活性は、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖでは５％未満、ＤＬＤ－１では１０％未満、Ｃａｐａｎ－２では１０％未満、ＱＧ５６では１０％未満であったのに対して、ヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、＃２及び＃３は、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖでは２０％以上、ＤＬＤ－１では２５％以上、Ｃａｐａｎ－２では３５％以上、ＱＧ５６では３０％以上であった。同様に、他の癌細胞、乳癌細胞株Ｔ４７Ｄ、Ｈｓ５７８Ｔ、ＢＴ－２０、ＳＫ－ＢＲ－３、ＭＣＦ７、ＭＲＫ－ｎｕ－１、グリオーマ細胞株Ｔ９８Ｇ、肺癌細胞株Ａ５４９、腎臓癌細胞株Ｃａｋｉ－１、子宮頸癌細胞株ＳＷ７５６、膀胱癌細胞株Ｔ２４、胃癌細胞株ＭＫＮ２８大腸癌細胞株ＳＷ４８０、白血病細胞株ＡＭＬ５及びリンパ腫細胞株Ｒａｍｏｓについて、アイソタイプコントロール抗体を用いた場合及び比較抗体１～比較抗体２６を用いた場合はいずれも４％未満であったのに対し、ヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、＃２、及び＃３は細胞障害活性が１２％以上認められた。以上の結果より、配列番号５に示すＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対する抗体はＡＤＣＣ活性によってＣＡＰＲＩＮ－１を発現する癌細胞を障害することが示され、比較抗体１～２６に比べてヒト－マウスキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、＃２、及び＃３は、ヒト癌細胞に対して強い細胞障害活性を示すことが明らかになった。
　なお、細胞障害活性は、上記のように、本発明で用いられるＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体、リンパ球（ＮＫ細胞を含む集団）細胞及びクロミウム５１を取り込ませた２×１０３個の各癌細胞株を混合して４時間培養し、培養後培地に放出されたクロミウム５１の量を測定して、以下計算式＊により算出した癌細胞株に対する細胞障害活性を示した結果である。
　＊式：細胞障害活性（％）＝ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体及びリンパ球（ＮＫ細胞を含む集団）細胞を加えた際の標的細胞からのクロミウム５１遊離量÷１Ｎ塩酸を加えた標的細胞からのクロミウム５１遊離量×１００。
　実施例８　抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１が認識する各種癌細胞表面でのＣＡＰＲＩＮ－１の分子数
　ヒト乳癌細胞株（ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖ）、腎癌細胞株（Ｃａｋｉ－１）、膀胱癌細胞株（Ｔ２４）、卵巣癌細胞株（ＳＫＯＶ３）、肺癌細胞株（ＱＧ５６、Ａ５４９）、膵臓癌細胞株（Ｃａｐａｎ－２）、前立腺癌細胞株（ＰＣ３）、子宮頸癌細胞株（ＳＷ７５６）、線維肉腫細胞株（ＨＴ１０８０）、脳腫瘍細胞株（Ｔ９８Ｇ）、胃癌細胞株（ＭＫＮ２８）、大腸癌細胞株（Ｌｏｖｏ、ＤＬＤ－１）、白血病細胞株（ＡＭＬ５）、リンパ腫細胞株（Ｒａｍｏｓ）について、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、＃２、及び＃３が認識する各種癌細胞表面でのＣＡＰＲＩＮ－１分子の数を分子数測定キット“ＱＩＦＩＫＩＴ”（ＤＡＫＯ社製）を用いて調べた。同様にして、実施例５で作製した抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体の比較モノクローナル抗体１～２６についても各種癌細胞表面でのＣＡＰＲＩＮ－１分子の数を調べた。
　添付プロトコールに従い、各細胞株に抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１及び比較抗体１～比較抗体２６を最終濃度が５μｇ／ｍｌとなるようにＰＢＳで希釈し、各細胞株に添加して３０分反応させた。ＰＢＳで洗浄した後、キットに添付の検量ビーズとともに各細胞株へキットに添付の蛍光標識された二次抗体抗マウスＩｇＧ抗体を添加して氷上で４５分間静置した。各細胞株及び検量ビーズをＰＢＳで洗浄後、ベクトンディッキンソン株式会社のＦＡＣＳキャリバーにて蛍光強度を測定して平均蛍光強度値（ｍｅａｎ）を得た。また、比較抗体についても同様の測定を行い、ｍｅａｎを得た。陰性コントロールにはアイソタイプコントロール抗体を反応させたものを用い、ｍｅａｎを得た。各平均蛍光強度値（ｍｅａｎ）を用いてキットに添付の方法に従い分子数を算出した。その結果、マウス抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、＃２、及び＃３、並びに比較抗体１２～２６が認識する各種癌細胞表面でのＣＡＰＲＩＮ－１の分子数は、調べたすべてのヒト癌細胞において細胞１個当たり１０５個以上であった。一方、比較抗体１～１１については細胞１個当たり１０５個より少なかった。
　実施例９　ウサギを用いた抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体の作製
　（１）ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１の作製
　抗原タンパク質（ヒトＣＡＰＲＩＮ－１）３００μｇを等量のフロイントの完全アジュバントと混合し、これをウサギ１羽当たりの抗原溶液とした。２回目以降の免疫にはフロインとの不完全アジュバントと混合したものを使用した。抗原溶液を７週齢のウサギの腹腔内に投与後、４週間毎に７回投与を行って免疫を完了した。最後の免疫から４日後に摘出したそれぞれの脾臓を滅菌した２枚のスライドガラスに挟んで擦り潰し、ＰＢＳ（－）（日水社製）を用いて洗浄し１５００ｒｐｍで１０分間遠心して上清を除去する操作を３回繰り返して脾臓細胞を得た。得られた脾臓細胞とウサギのミエローマ細胞とを５：１の比率にて混和し、そこに３７℃に加温した１０％　ＦＢＳを含むＩＭＤＭ培地２００μｌとＰＥＧ１５００（ベーリンガー社製）８００μｌを混和して調製したＰＥＧ溶液を加えて、５分間静置して細胞融合を行った。１７００ｒｐｍで５分間遠心し、上清を除去後、Ｇｉｂｃｏ社製のＨＡＴ溶液を２％当量加えた１０％　ＦＢＳを含むＩＭＤＭ培地（ＨＡＴ選択培地）３００ｍｌで細胞を懸濁し、９６穴プレート（ヌンク社製）の１ウェル当たり１００μｌずつ、プレート３０枚に播種した。７日間、３７℃、５％　ＣＯ２の条件で培養することで、脾臓細胞とウサギミエローマ細胞が融合したハイブリドーマを得た。
　　作製したハイブリドーマが産生する抗体のＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質に対する反応性を指標にハイブリドーマを選抜した。ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク溶液１μｇ／ｍｌを９６穴プレート１ウェル当たりに１００μｌ添加し、４℃にて１８時間静置した。各ウェルをＰＢＳ－Ｔで３回洗浄後、０．５％　Ｂｏｖｉｎｅ　Ｓｅｒｕｍ　Ａｌｂｕｍｉｎ（ＢＳＡ）溶液（シグマ社製）を１ウェル当たり４００μｌ添加して室温にて３時間静置した。溶液を除いて、１ウェル当たり４００μｌのＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄後、上記で得られたハイブリドーマの各培養上清を１ウェル当たり１００μｌ添加し、室温にて２時間静置した。ＰＢＳ－Ｔで各ウェルを３回洗浄した後、ＰＢＳで５０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗ウサギ抗体を１ウェル当たり１００μｌ添加して室温にて１時間静置した。ＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄した後、ＴＭＢ基質溶液（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して１５～３０分間静置して発色反応を行った。発色後、１規定硫酸を１ウェル当たり１００μｌ添加して反応を停止させ、吸光度計を用いて４５０ｎｍと５９５ｎｍの吸光度値を測定した。その結果、吸光度値が高かった抗体を産生するハイブリドーマを複数個選抜した。
　　選抜したハイブリドーマを９６穴プレート１ウェル当たりに０．５個となるようにプレートに添加し培養した。１週間後、ウェル中に単一のコロニーを形成しているハイブリドーマが観察された。それらウェルの細胞をさらに培養して、クローニングされたハイブリドーマが産生する抗体のＣＡＰＲＩＮ－１タンパクに対する反応性を指標にハイブリドーマを選抜した。ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク溶液１μｇ／ｍｌを９６穴プレート１ウェル当たりに１００μｌ添加し、４℃にて１８時間静置した。各ウェルをＰＢＳ－Ｔで３回洗浄後、０．５％　ＢＳＡ溶液を１ウェル当たり４００μｌ添加して室温にて３時間静置した。溶液を除いて、１ウェル当たり４００μｌのＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄後、上記で得られたハイブリドーマの各培養上清を１ウェル当たり１００μｌ添加し、室温にて２時間静置した。ＰＢＳ－Ｔで各ウェルを３回洗浄後、ＰＢＳで５０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗ウサギＩｇＧ抗体を１ウェル当たり１００μｌ添加して室温にて１時間静置した。ＰＢＳ－Ｔでウェルを３回洗浄した後、ＴＭＢ基質溶液（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を１ウェル当たり１００μｌ添加して１５～３０分間静置して発色反応を行った。発色後、１規定硫酸を１ウェル当たり１００μｌ添加して反応を停止させ吸光度計を用いて４５０ｎｍと５９５ｎｍの吸光度値を測定した。その結果、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質に反応性を示すウサギモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ株を複数個得た。
　　次にそれらＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質に反応性を示すウサギモノクローナル抗体からＣＡＰＲＩＮ－１が発現する癌細胞表面に反応性を示すものを選抜した。具体的には、２×１０５個のヒト乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖ並びにヒト肺癌細胞株ＱＧ５６をそれぞれ１．５ｍｌ容のミクロ遠心チューブにて遠心分離し、これに上記各ハイブリドーマの培養上清１００μｌを添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄した後、０．０５％　ＦＢＳを含むＰＢＳ（－）で１００倍希釈したＦＩＴＣ標識抗ウサギＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体あるいはＡｌｅｘａ４８８標識抗ウサギＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）を添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄後、ベクトンディッキンソン株式会社のＦＡＣＳキャリバーにて蛍光強度を測定した。一方、上記と同様の操作を、ハイブリドーマ培養用培地を用いて行い、陰性コントロールのサンプルとした。その結果、陰性コントロールに比べて蛍光強度が強い、すなわち、ＣＡＰＲＩＮ－１が発現している癌細胞ＭＤＡ－ＭＢ－２３１並びにＱＧ５６の細胞表面に反応するウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体１個（ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１）を選抜した。
　次に、選抜したウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１が認識するＣＡＰＲＩＮ－１エピトープを同定した。ヒトＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質のアミノ酸配列中、１２～１６アミノ酸から成る、９３個の候補ペプチドを合成し、それぞれ１ｍｇ／ｍｌの濃度になるようにＤＭＳＯで溶解した。各ペプチドを０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ９．６）中に３０μｇ／ｍｌの濃度になるように溶解し、９６穴プレート（Ｎｕｎｃ社製、製品番号：４３６００６）の１穴あたり１００μｌずつ添加して４℃で一晩静置した。液を捨て、１０ｍＭエタノールアミン／０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝液（ＰＨ９．６）を１穴あたり２００μＬずつ添加し、室温で１時間静置した後、液を捨て、０．５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳ（ＰＢＳＴ）にて２回洗浄することによって、各ペプチドが固相化されたプレートを作製した。確認のため本プレートにＣＡＰＲＩＮ－１タンパクを固相化したウェルも前記の方法に従って用意した。これに、定法で精製したウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１を０．１ｕｇ／ｍＬの濃度で１穴あたり５０μＬ添加し、室温で１時間振とうした後、液を除去し、ＰＢＳＴにて３回洗浄した。次に、ＨＲＰが標識された抗ウサギＩｇＧ抗体をＰＢＳＴにて３０００～４０００倍希釈した２次抗体溶液をウェルに５０μＬずつ添加した後、液を除去し、ＰＢＳＴにて６回洗浄を行った。ＴＭＢ基質溶液（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を１ウェル当たり１００μＬ添加して１５～３０分間静置して発色反応を行った。発色後、１規定硫酸を１ウェル当たり１００μＬ添加して反応を停止させ吸光度計を用いて４５０ｎｍと５９５ｎｍの吸光度値を測定した。その結果、ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１は、ＣＡＰＲＩＮ－１の部分配列である合成した９３個のペプチドのうち、配列番号５に示すアミノ酸配列を有するポリペプチドのみに反応性を示し、他のポリペプチドには反応性を示さなかった。また。ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１はＣＡＰＲＩＮ－１タンパクに特異的に反応性を示した。この結果からウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１のエピトープは、配列番号５のポリペプチドに含まれていることが判った。
　次に、上記で得られたウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１について、ＷＯ２０１０／０１６５２６の実施例５に記載の方法に従って可変領域をコードする遺伝子の増幅断片を取得し、遺伝子配列並びにそのアミノ酸配列を解析した。具体的にはウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１を産生するハイブリドーマからｍＲＮＡを抽出し、ウサギ可変領域配列に特異的なプライマーを使用したＲＴ－ＰＣＲ法により、本抗体の重鎖可変（ＶＨ）領域及び軽鎖可変（ＶＬ）領域の遺伝子を取得した。配列決定のために、それら遺伝子をｐＣＲ２．１ベクター（インビトロジェン社製）にクローニングした。クローニングして得られた各プラスミド中のＶＨ領域及びＶＬ領域の遺伝子配列は、Ｍ１３フォワードプライマー及びＭ１３リバースプライマーを用いて、蛍光シーケンサーによりそれぞれ決定した。
　その結果得られたウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１は、配列番号５２に示す重鎖可変領域及び重鎖可変領域中のＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号８、配列番号９、配列番号１０のアミノ酸配列からなり、配列番号５４に示す軽鎖可変領域及び軽鎖可変領域中のＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号１１、配列番号１２、配列番号１３のアミノ酸配列からなることが確認された。
　（２）ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の作製
　上記で取得したウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１の重鎖可変領域を発現させるための配列番号５１に示す遺伝子と、軽鎖可変領域を発現させるための配列番号５３に示す遺伝子をそれぞれヒトＩｇＧ１の重鎖定常領域が挿入された哺乳類細胞発現用ベクター及びヒトＩｇＧ１の軽鎖定常領域が挿入された哺乳類細胞発現用ベクターに挿入した。作製した２つの組み換え発現ベクターを定法に従って哺乳類細胞に導入してヒト化されたヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１を含む培養上清を得た。
　（３）ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の抗原特異性、癌細胞への反応性及び抗腫瘍活性
　実施例９（２）で得たヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の培養上清を定法に従ってＨｉｔｒａｐ　ＰｒｏｔｅｉｎＡ　ＳｅｐｈａｒｏｓｅＦＦ（ＧＥヘルスケア社製）を用いて精製し、ＰＢＳ（－）に置換して０．２２μｍのフィルター（ミリポア社製）で濾過したものを用いて、抗原特異性と癌細胞への反応性及び抗腫瘍効果を調べた。
　まず、実施例９（１）と同様にして、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質及びウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１のエピトープである配列番号５のアミノ酸配列を有するポリペプチドに対するヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の反応特異性を調べたところ、ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１は、ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１と同様にＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質及び配列番号５のアミノ酸配列を有するポリペプチドに対する反応特異性を有していることを確認した。
　次にＣＡＰＲＩＮ－１遺伝子の発現が確認されたヒト乳癌細胞株９種（ＺＲ７５－１、ＭＣＦ７、Ｔ４７Ｄ、ＳＫ－ＢＲ－３、ＭＤＡ－ＭＢ－１５７、ＢＴ－２０、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、ＭＲＫ－ｎｕ－１、ＭＤＡ－ＭＢ－４６８）、腎癌細胞株３種（Ｃａｋｉ－１、Ｃａｋｉ－２、ＡＣＨＮ）、膀胱癌細胞株（Ｔ２４）、卵巣癌細胞株３種（ＳＫＯＶ３、ＩＧＲＯＶ１、ＯＶＣＡＲ３）、肺癌細胞株２種（ＱＧ５６、Ａ５４９）、前立腺癌細胞株（ＰＣ３、ＤＵ－１４５）、子宮頸癌細胞株（ＳＷ７５６）、線維肉腫細胞株（ＨＴ１０８０）、脳腫瘍細胞株２種（Ｔ９８Ｇ，Ｕ８７ＭＧ）、胃癌細胞株（ＭＫＮ２８）、大腸癌細胞株３種（Ｌｏｖｏ、ＤＬＤ－１、ＨＣＴ－１１６）、膵臓癌細胞株４種（Ｃａｐａｎ－２、ＭＩＡＰａＣａ－２、Ｐａｎｃ－１、ＢｘＰＣ－３）、白血病細胞株ＡＭＬ５及びリンパ腫細胞株Ｒａｍｏｓについて、ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の各細胞の細胞表面上でのＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の反応性を調べた。各細胞株それぞれ１０６細胞を１．５ｍｌ容のミクロ遠心チューブにて遠心分離した。上記抗体を含む各細胞培養上清（１００μｌ）を添加し、氷上で１時間静置した。ＰＢＳで洗浄した後、０．１％ＦＢＳを含むＰＢＳで１００倍に希釈したＡｌｅｘａ４８８標識ヤギ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体（インビトロジェン社製）を添加し、４℃で６０分間静置した。ＰＢＳ（－）で洗浄後、ベクトンディッキンソン株式会社のＦＡＣＳキャリバーにて蛍光強度を測定した。陰性コントロールには二次抗体のみを反応したものを用いた。その結果、ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１は、陰性コントロールに比べて、蛍光強度が３０％以上強い反応性を示した。このことから、上記ヒト癌細胞株の細胞膜表面上に配列番号５で示されるＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質の一部が発現していることが確認された。なお、上記蛍光強度の増強率は、各細胞における平均蛍光強度（ＭＦＩ値）の増加率にて表され、以下の計算式により算出した。平均蛍光強度の増加率（蛍光強度の増強率）（％）＝（（抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体を反応させた細胞のＭＦＩ値）－（コントロールＭＦＩ値））÷（コントロールＭＦＩ値）×１００。
　次に、ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１の重鎖可変領域を発現させるための配列番号５１に示す遺伝子と、軽鎖可変領域を発現させるための配列番号５３に示す遺伝子をそれぞれマウスＩｇＧ1の重鎖定常領域が挿入された哺乳類細胞発現用ベクター及びヒトＩｇＧ１の軽鎖定常領域が挿入された哺乳類細胞発現用ベクターに挿入して、２つの組み換え発現ベクターを定法に従って哺乳類細胞に導入してマウス－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１を含む培養上清を得、上記と同様して精製することで精製されたマウス－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１を得た。得られたマウス－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１を用いて、上記にあるヒト癌細胞におけるヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１が認識する配列番号５の分子数を市販の測定キット“ＱＩＦＩＫＩＴ”（ＤＡＫＯ社製）を用いて測定した結果、白血病細胞株ＡＭＬ５及びリンパ腫細胞株Ｒａｍｏｓは１細胞あたり１０５個であった。それ以外のヒト癌細胞は１０５個以上であった。
　さらに次に、ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１のＣＡＰＲＩＮ－１が発現しているヒト癌細胞に対する抗腫瘍活性を評価した。１０６個のヒト乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、ＭＣＦ７、ＳＫ－Ｂｒ－３、ヒト大腸癌細胞株ＤＬＤ－１、ヒト膵臓癌細胞株Ｃａｐａｎ－２、ヒト肺癌細胞株ＱＧ５６、腎癌細胞株Ｃａｋｉ－２、卵巣癌細胞株ＳＫＯＶ３、前立腺癌細胞株ＰＣ３、ＤＵ－１４５、脳腫瘍細胞株Ｔ９８Ｇ、胃癌細胞株ＭＫＮ２８、膵臓癌細胞株Ｃａｐａｎ－２、白血病細胞株ＡＭＬ５及びリンパ腫細胞株Ｒａｍｏｓを５０ｍｌ容の遠心チューブに集め、１００μＣｉのクロミウム５１を加え３７℃で２時間インキュベートした。その後１０％ＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地で３回洗浄しターゲット細胞を準備した。精製されたヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１と実施例５で得たヒト－マウスキメラ比較モノクローナル抗体１～２６をそれぞれ最終濃度が５μｇ／ｍｌとなるように９６穴Ｖ底プレートにそれぞれ添加した。次に、定法に従って調製したヒト末梢血リンパ球細胞からヒトＮＫ細胞を分離し、１ウェル当たり２×１０５個を添加した。ヒトＮＫ細胞は、末梢血単核球細胞分離用の比重分離液Ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ（シグマアルドリッチ社）を用いて分離したヒト末梢血単核球細胞からＮＫ細胞分離キット（ミルテニー社製）を用いて分離したものを用いた。ターゲットと抗体を添加した９６ウェルＶ底プレートに１ウェル当たり２×１０３個を混合し、３７℃、５％、ＣＯ２の条件下で４時間培養した。培養後、障害を受けた腫瘍細胞から放出される培養上清中のクロミウム５１の量を測定し、抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体による癌細胞に対する細胞障害活性を算出した。陰性コントロールにはアイソタイプコントロール抗体を添加したものを用いた。その結果、アイソタイプコントロール抗体を用いた場合の細胞障害活性はいずれの癌細胞に対しても６％未満であり、ヒト－マウスキメラ比較モノクローナル抗体１～２６を用いた場合の細胞障害活性は、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖでは５％、ＭＣＦ７並びにＳＫ－Ｂｒ－３は８％未満、ヒト大腸癌細胞株ＤＬＤ－１では１０％未満、ヒト膵臓癌細胞株Ｃａｐａｎ－２では８％未満、ヒト肺癌細胞株ＱＧ５６では５％未満、腎癌細胞株Ｃａｋｉ－２では１１％未満、卵巣癌細胞株ＳＫＯＶ３では１２％未満、前立腺癌細胞株ＰＣ３並びにＤＵ－１４５では１０％未満、脳腫瘍細胞株Ｔ９８Ｇでは７％未満、胃癌細胞株ＭＫＮ２８では１２％未満、白血病細胞株ＡＭＬ５、リンパ腫細胞株Ｒａｍｏｓでは３％未満であったのに対して、ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１は、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１Ｖでは２３％、ＭＣＦ７では３８％、ＳＫ－Ｂｒ－３は２３％、ヒト大腸癌細胞株ＤＬＤ－１では２８％、ヒト膵臓癌細胞株Ｃａｐａｎ－２では３５％、ヒト肺癌細胞株ＱＧ５６では２５％、腎癌細胞株Ｃａｋｉ－２では２３％、卵巣癌細胞株ＳＫＯＶ３では２４％、前立腺癌細胞株ＰＣ３では１８％、ＤＵ－１４５では２０％、脳腫瘍細胞株Ｔ９８Ｇでは１５％、胃癌細胞株ＭＫＮ２８では２０％、白血病細胞株ＡＭＬ５及びリンパ腫細胞株Ｒａｍｏｓでは９％の抗腫瘍活性を示した。以上の結果より、配列番号５に示すＣＡＰＲＩＮ－１由来ペプチドに対する抗体ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１はＡＤＣＣ活性によってＣＡＰＲＩＮ－１を発現する癌細胞に対して抗腫瘍活性を発揮することが明らかとなった。また、ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１は比較抗体１～２６に比べてヒト癌細胞に対して強い細胞障害活性を示すことが明らかになった。
　なお、細胞障害活性は、上記のように、本発明で用いられるＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体、ＮＫ細胞及びクロミウム５１を取り込ませた２×１０３個の各癌細胞株を混合して４時間培養し、培養後培地に放出されたクロミウム５１の量を測定して、以下計算式＊により算出した癌細胞株に対する細胞障害活性を示した結果である。
　＊式：細胞障害活性（％）＝ＣＡＰＲＩＮ－１に対する抗体及びリンパ球（ＮＫ細胞）を加えた際の標的細胞からのクロミウム５１遊離量÷１Ｎ塩酸を加えた標的細胞からのクロミウム５１遊離量×１００。（何れも自然遊離のクロミウム５１量を差し引いたもの）
　（４）抗腫瘍剤がコンジュゲートされた抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１による抗腫瘍活性
　抗腫瘍剤がコンジュゲートされた抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体の効果を調べるため以下の検討を行った。抗腫瘍剤のモデル薬物としてＳａｐｏｒｉｎが結合された抗ヒトＩｇＧ抗体 （Ｈｕｍ－ＺＡＰ（Ａｄｖａｎｃｅｄ　Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ　Ｓｙｓｔｅｍｓ））を用いてヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１とＨｕｍ－ＺＡＰの複合体が癌細胞株に対して抗腫瘍効果を発揮するかどうかを評価した。Ｓａｐｏｒｉｎは細胞内に取り込まれたときにのみ細胞殺傷作用が発揮される。
　ヒト乳癌細胞株ＳＫ-ＢＲ-３、ヒト膵臓癌細胞株Ｃａｐａｎ－２、ヒト前立腺癌細胞ＰＣ－３を、１０％ＦＢＳを含むＲＰＭＩ培地にて５×１０２ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで９６穴プレートに播種した。同時に一次抗体としてヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１又はアイソタイプコントロールとしてヒトＩｇＧ１抗体をそれぞれ最終濃度が３００ｎｇ／ｍｌになるように加え、続いて二次抗体としてＨｕｍ－ＺＡＰを最終濃度が３００ｎｇ／ｍｌになるように加え、５日間３７℃で培養した。５日間培養後、Ｃｅｌｌ　ｃｏｕｎｔｉｎｇ　Ｋｉｔ－８ (同仁化学)を用いてマイクロプレートリーダーにより吸光度を測定することで細胞増殖を評価した。
　その結果、アイソタイプコントロール抗体を用いた場合の吸光度（Ｏ．Ｄ．値）の平均値はＳＫ－Ｂｒ－３では０．７７、Ｃａｐａｎ－２では１．９３、ＰＣ－３では２．０１であったのに対し、　ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１を用いた場合は、０．３４、Ｃａｐａｎ－２では１．６２、ＰＣ－３では１．６２であった。以上の結果からヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１とＳａｐｏｒｉｎが結合された抗ヒトＩｇＧ抗体の複合体は、ヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１が癌細胞膜表面のＣＡＰＲＩＮ－１に結合した際、癌細胞の内部に取り込まれて、Ｓａｐｏｒｉｎによって抗腫瘍活性を示すことが明らかとなった。
　（５）ヒト化抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１、＃２、＃３の作製
　次に、ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１のヒト化抗体を作製した。実施例９（２）で確認されたウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１の重鎖可変領域のアミノ配列情報を基に、重鎖可変領域中のＣＤＲ１～３が配列番号８、配列番号９及び配列番号１４のアミノ酸からなり、フレームワーク領域がヒト抗体の配列を含む重鎖可変領域（配列番号：１６）を発現できるように、配列番号１５の塩基配列を設計し、これをヒトＩｇＧ１の重鎖定常領域が挿入された哺乳類細胞発現用ベクターに挿入した。同様にして、軽鎖可変領域中のＣＤＲ１～３が配列番号１１、配列番号１２及び配列番号１３のアミノ酸からなり、フレームワーク領域がヒト抗体の配列を含む軽鎖可変領域（配列番号：１８）を発現できるように、配列番号１７の塩基配列を設計し、これをヒトＩｇＧ１の軽鎖定常領域が挿入された哺乳類細胞発現用ベクターに挿入した。上記２つの組換え発現ベクターを定法に従って哺乳類細胞に導入して、ヒト化ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１（ヒト化抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃１）を含む培養上清を得た。
　また、ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１の重鎖可変領域中のアミノ配列情報を基に、ＣＤＲ１～３が配列番号８、配列番号９及び配列番号１０のアミノ酸からなり、フレームワーク領域がヒト抗体の配列を含む重鎖可変領域（配列番号：２１）を発現できるように、配列番号２０の塩基配列を設計し、これをヒトＩｇＧ１の重鎖定常領域が挿入された哺乳類細胞発現用ベクターに挿入した。同様にして、軽鎖可変領域中のＣＤＲ１～３が配列番号１１、配列番号１２及び配列番号１３のアミノ酸からなり、フレームワーク領域がヒト抗体の配列を含む軽鎖可変領域（配列番号：２３）を発現できるように、配列番号２２の塩基配列を設計し、これをヒトＩｇＧ１の軽鎖定常領域が挿入された哺乳類細胞発現用ベクターに挿入した。上記２つの組換え発現ベクターを定法に従って哺乳類細胞に導入して、ヒト化ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１（ヒト化抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃２）を含む培養上清を得た。
　さらに、ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１の重鎖可変領域中のアミノ配列情報を基に、ＣＤＲ１～３が配列番号８、配列番号９及び配列番号１０のアミノ酸からなり、フレームワーク領域がヒト抗体の配列を含む重鎖可変領域（配列番号：２５）を発現できるように、配列番号２４の塩基配列を設計し、これをヒトＩｇＧ１の重鎖定常領域が挿入された哺乳類細胞発現用ベクターに挿入した。同様にして、軽鎖可変領域中のＣＤＲ１～３が配列番号１１、配列番号１２及び配列番号１３のアミノ酸からなり、フレームワーク領域がヒト抗体の配列を含む軽鎖可変領域（配列番号：２３）を発現できるように、配列番号２２の塩基配列を設計し、これをヒトＩｇＧ１の軽鎖定常領域が挿入された哺乳類細胞発現用ベクターに挿入した。上記２つの組換え発現ベクターを定法に従って哺乳類細胞に導入して、ヒト化ウサギ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１（ヒト化抗ＣＡＰＲＩＮ－１抗体＃３）を含む培養上清を得た。
　（６）ヒト化抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体の抗原特異性、癌細胞への反応性及び抗腫瘍活性
上記で得た３種のヒト化抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１～＃３のＣＡＰＲＩＮ－１に対する反応性を実施例９（３）と同様にして評価した結果、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク、配列番号：５に示すエピトープペプチド及び各種癌細胞に対する反応性はヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１と同レベルであった。さらに、これら３種のヒト化抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体の各種癌細胞（ヒト乳癌細胞株ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、ＭＣＦ７、ＳＫ－Ｂｒ－３、ヒト大腸癌細胞株ＤＬＤ－１、ヒト膵臓癌細胞株Ｃａｐａｎ－２、ヒト肺癌細胞株ＱＧ５６、腎癌細胞株Ｃａｋｉ－２、卵巣癌細胞株ＳＫＯＶ３、前立腺癌細胞株ＰＣ３、ＤＵ－１４５、脳腫瘍細胞株Ｔ９８Ｇ、胃癌細胞株ＭＫＮ２８、膵臓癌細胞株Ｃａｐａｎ－２、白血病細胞株ＡＭＬ５及びリンパ腫細胞株Ｒａｍｏｓ）に対する抗腫瘍活性を実施例９（３）と同様にして評価したところ、いずれの抗体もヒト－ウサギキメラ抗ＣＡＰＲＩＮ－１モノクローナル抗体＃１と同レベルの抗腫瘍活性を示した。
　本発明の抗体は、癌の治療及び／又は予防のため有用である。
　なお、本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。

Claims (22)

  1. 　配列番号５で表されるアミノ酸配列又は該アミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるＣＡＰＲＩＮ－１部分ポリペプチドと免疫学的反応性を有する、抗体又はそのフラグメント。
  2. 　ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質を発現する癌細胞に対し細胞障害活性を有する、請求項１に記載の抗体又はそのフラグメント。
  3. 　前記抗体が、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体である、請求項１又は２に記載の抗体又はそのフラグメント。
  4. 　ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、単鎖抗体又は多重特異性抗体である、請求項１～３のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメント。
  5. 　配列番号８、９及び１０で表されるアミノ酸配列の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む重鎖可変領域と配列番号１１、１２及び１３で表されるアミノ酸配列の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項１～４のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメント。
  6. 　配列番号５２で表されるアミノ酸配列の重鎖可変領域と配列番号５４で表されるアミノ酸配列の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項５に記載の抗体又はそのフラグメント。
  7. 　配列番号２１で表されるアミノ酸配列の重鎖可変領域と配列番号２３で表されるアミノ酸配列の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項５に記載の抗体又はそのフラグメント。
  8. 　配列番号２５で表されるアミノ酸配列の重鎖可変領域と配列番号２３で表されるアミノ酸配列の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項５に記載の抗体又はそのフラグメント。
  9. 　配列番号８、９及び１４で表されるアミノ酸配列の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む重鎖可変領域と配列番号１１、１２及び１３で表されるアミノ酸配列の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項１～４のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメント。
  10. 　配列番号１６で表されるアミノ酸配列の重鎖可変領域と配列番号１８で表されるアミノ酸配列の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項９に記載の抗体又はそのフラグメント。
  11. 　配列番号２６、２７及び２８で表されるアミノ酸配列の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む重鎖可変領域と配列番号３０、３１及び３２で表されるアミノ酸配列の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項１～４のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメント。
  12. 　配列番号２９で表されるアミノ酸配列の重鎖可変領域と配列番号３３で表されるアミノ酸配列の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項１１に記載の抗体又はそのフラグメント。
  13. 　配列番号３６、３７及び３８で表されるアミノ酸配列の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む重鎖可変領域と配列番号４０、４１及び４２で表されるアミノ酸配列の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項１～４のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメント。
  14. 　配列番号３９で表されるアミノ酸配列の重鎖可変領域と配列番号４３で表されるアミノ酸配列の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項１３に記載の抗体又はそのフラグメント。
  15. 　配列番号４６、４７及び４８で表されるアミノ酸配列の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む重鎖可変領域と配列番号４０、４１及び４２で表されるアミノ酸配列の相補性決定領域（それぞれＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）を含む軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項１～４のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメント。
  16. 　配列番号４９で表されるアミノ酸配列の重鎖可変領域と配列番号４３で表されるアミノ酸配列の軽鎖可変領域とを含み、かつ、ＣＡＰＲＩＮ－１タンパク質と免疫学的反応性を有する、請求項１５に記載の抗体又はそのフラグメント。
  17. 　抗腫瘍剤がコンジュゲートされた、請求項１～１６のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメント。
  18. 　請求項１～１７のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメントを有効成分として含むことを特徴とする、癌の治療及び／又は予防のための医薬組成物。
  19. 　前記癌が乳癌、腎癌、膵臓癌、大腸癌、肺癌、脳腫瘍、胃癌、子宮頸癌、卵巣癌、前立腺癌、膀胱癌、食道癌、白血病、リンパ腫、線維肉腫、肥満細胞腫又はメラノーマである、請求項１８に記載の医薬組成物。
  20. 　請求項１８又は１９に記載の医薬組成物と、抗腫瘍剤を含む医薬組成物とを含んでなる、癌の治療及び／又は予防のための組み合わせ医薬品。
  21. 　請求項１～１６のいずれか１項に記載の抗体又はそのフラグメントをコードするＤＮＡ。
  22. 　請求項１～１７のいずれか１項に記載の抗体若しくはそのフラグメント、請求項１８若しくは１９に記載の医薬組成物、又は請求項２０に記載の組み合わせ医薬品を、被験者に投与することを含む、癌の治療及び／又は予防方法。
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