WO2009145419A2 - 식물성 펩톤을 포함하는 줄기세포 증식 촉진용 조성물 - Google Patents

식물성 펩톤을 포함하는 줄기세포 증식 촉진용 조성물 Download PDF

Info

Publication number
WO2009145419A2
WO2009145419A2 PCT/KR2009/001415 KR2009001415W WO2009145419A2 WO 2009145419 A2 WO2009145419 A2 WO 2009145419A2 KR 2009001415 W KR2009001415 W KR 2009001415W WO 2009145419 A2 WO2009145419 A2 WO 2009145419A2
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
peptone
composition
stem cells
serum
skin
Prior art date
Application number
PCT/KR2009/001415
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2009145419A9 (ko
WO2009145419A3 (ko
Inventor
박덕훈
이지현
이종성
Original Assignee
바이오스펙트럼 주식회사
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 바이오스펙트럼 주식회사 filed Critical 바이오스펙트럼 주식회사
Priority to EP09754884A priority Critical patent/EP2280064A4/en
Priority to US12/936,055 priority patent/US20110028404A1/en
Publication of WO2009145419A2 publication Critical patent/WO2009145419A2/ko
Publication of WO2009145419A3 publication Critical patent/WO2009145419A3/ko
Publication of WO2009145419A9 publication Critical patent/WO2009145419A9/ko

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0018Culture media for cell or tissue culture
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/30Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing organic compounds
    • A61K8/64Proteins; Peptides; Derivatives or degradation products thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/30Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing organic compounds
    • A61K8/64Proteins; Peptides; Derivatives or degradation products thereof
    • A61K8/645Proteins of vegetable origin; Derivatives or degradation products thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P17/00Drugs for dermatological disorders
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61QSPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
    • A61Q19/00Preparations for care of the skin
    • A61Q19/08Anti-ageing preparations
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/70Undefined extracts
    • C12N2500/76Undefined extracts from plants

Abstract

본 발명은 식물성 펩톤을 포함하는 줄기세포 증식 촉진용 조성물에 관한 것이다. 보다 상세하게는 본 발명은 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 줄기세포배양용 조성물, 식물성 펩톤을 유효성분으로 포함하는 피부상태 개선용 조성물 및 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 줄기세포배지에서 줄기세포를 배양한 후 배양된 줄기세포를 제거한 배양액을 유효성분으로 포함하는 피부 상태 개선용 조성물에 관한 것이다. 본 발명의 무혈청 줄기세포 배양용 조성물은 고가의 동물성 혈청을 사용하지 않으므로 제조비용을 현저히 낮출 수 있고, 동물성 혈청을 배지에 사용함으로써 발생되는 동물성 물질의 오염을 원천적으로 차단할 수 있다. 또한, 본 발명의 식물성 펩톤을 유효성분으로 포함하는 조성물 및 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 배지에서 줄기세포를 배양한 배양액은 줄기세포증식 촉진능 및 활성화능을 가지므로 다양한 피부 상태의 개선 효과를 나타낸다.

Description

【명세서】
【발명의 명칭】 식물성 펩톤을 포함하는 즐기세포 증식 촉진용 조성물
【기술 분야】
본 발명은 식물성 펩톤을 포함하는 줄기세포 증식 촉진용 조성물에 관한 것이다. 보다 상세하게는 본 발명은 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 줄기세포배양용 배지, 식물성 펩톤을 유효성분으로 포함하는 피부상태 개선용 조성물 및 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 줄기세포배지에서 즐기세포를 배양한 후 배양된 줄기세포를 제거한 배양액올 유효성분으로 포함하는 피부 상태 개선용 조성물에 관한 것이다.
【배경 기술】
생물의약품의 여러 생산기술 가운데 하나인 동물세포 산업화 기술은 유전자가 조작된 인간 및 동물세포를 대량으로 배양하여 고부가가치의 생물의약품을 생산하는 기술로 각광받고 있으며, 최근 유전자 치료 (gene therapy) 및 세포 치료 (cell therapy) 기법의 개발로 인해 산업화 기술로서의 중요성이 더욱 강조되고 있다. 일반적으로 동물세포 유래 의약품 생산 공정 개발은 생산 제품의 안전성 확보와 세포 생산성에 의한 높은 생산비의 절감 등에 역점을 두고 있다. 현재까지 사용되고 있는 동물세포 배양법은 성장을 위하여 반드시 세포배양배지에 혈청을 공급해 주어야 하며 가장 널리 사용되는 혈청으로 Fetal Bovine Serum (FBS) 나 Fetal Calf Serum (FCS)이 있다. 이들 첨가 성분의 기능은 명확하진 않지만 성장 증진 작용, 영양분의 공급, 산화나 독소로부터 세포를 보호하는 역할을 하는 것으로 알려져 있으며, 이들 성분이 배제된 경우에는 세포배양 자체가 거의 안 되는 필수 성분이다. 그러나 고가의 혈청은 배지가격을 상승시키고 또한 그 복잡한 성분으로 인해 재조합 단백질의 정제를 어렵게 할 뿐 아니라, 생산되는 과정마다 성분 차이가 있어서 실험을 할 때마다 다른 결과를 초래할 우려가 있다. 또한, 혈청은 동물 유래이기 때문에 배양과정 중에 세포들이 바이러스나 감염성 프리온 등에 오염될 가능성이 상존한다. 소혈청에 감염된 프리온은 사람에게 그대로 전이될 수 있으므로 동물세포 배양은 여러 가지 안전장치를 하고 있음에도 여전히 감염가능성은 존재한다고 해야 할 것이다. 통상 혈청 사용시 다음과 같은 문제점을 수반한다: i) 혈청의 조성 변이 때문에 세포에 대한 성장촉진 능력에 있어서 변이가 크다; ii) 인간에게 사용될 세포 생산물의 제조 시, 혈청이 감염물질에 의한 오염 잠재성을 가지고 있다; i) 상업적으로 제조된 FBS 나 FCS 에서 박테리오파아지 (bacteriophage )와 보바인 바이러스 (bovine virus)가 검출된다; iv) 박테리아 오염 때문에 생긴 각종 독소 (toxin)로 인해 세포배양 억제 물질도 함유된다; V) 여과 (fi Iteration) 전에는 오염으로 인한 세균성 독소 (bacterial toxin)가 존재한다; vi) 세포배양에 있어 생물학적 오염원 (mycoplasmas, bacteriophages, viruses)이 되기도 한다; vii) 감마-글로불린 분획에 배양액과 교차반응 (cross react ion)하는 항체 및 세균이 분비한 독소를 함유한다; viii) 열 불활성화 (heat inactivation)은 면역글로불린의 세포독성 (cytotoxin) 작용을 감소시키지만 불안정한 구성물질까지 파괴되어 열처리하지 않은 혈청보다 만족한 결과가 항상 나타나는 것은 아니다; ix) 혈청 단백질의 흡착 /결합에 의한 세포표면의 변형이 유도된다; X) 세포생산물의 분리 시 방해의 원인이 된다; xi) 1 차 배양시에 섬유아세포의 과도한 성장이 조장된다. 1950 년대에 합성배지로 자연배지를 부분적으로 대치할 수 있다고 보고된 이후로 혈청 없이 세포배양을 하려는 시도를 하게 되었고, 현재는 특정목적을 위하여 일부의 경우에 혈청없이 세포배양을 하고 있다. 그러나, 이들 무혈청배지는 특정세포만 잘 자라게 하고 혈청 대신에 사용하는 단백질성 세포성장인자 등이 너무 고가인데다 혈청을 포함한 배지에서보다 성장 및 산물생산이 안정적이지 못하다고 보고되고 있다. 또한 무혈청배지는 줄기세포의 배양에는 적용이 불가능한 것으로 알려져 있다. 줄기세포를 상업적으로 이용한 분야에서 가장 중요한 분야가 세포치료제로써 인체에서 얻어진 줄기세포를 시험관에서 배양한 후 다시 환자에게 투입하는 방식의 치료기술이다. 이러한 분야에서는 반드시 줄기세포 배양과정을 거치게 되는데 가능한한 동물성배지나 혈청을 피하는 것이 중요하다. 질병 치료 목적으로 줄기세포 이식하는 경우 얻는 치료 이득을 고려할 때 이에 따르는 감염 위험은 감수될 수 있으나, 미용목적의 시술인 경우에는 줄기세포 등의 이식으로 얻어지는 이득보다 감염위험에 노출되는 위험이 더 크게 부각될 수 있다. 따라서 줄기세포 배양분야에서 동물성 혈청대체제를 찾는 일은 상업적으로 매우 의미있다. 한편, 피부에 존재하는 줄기세포는 피부의 건강과 직결된 전체적인 역할을 담당하고 있어 피부건강과 관련하여 가장 중요한 세포군이라 할 수 있다. 줄기세포들은 살아있는 동안 끊임없는 세포분열을 통해 증식과 여러 가지 세포 활성화물질을 분비하여 주위 세포들을 활성화시킴으로써 유해한 환경에 따른 세포들의 노화를 억제하고 문제가 있는 부위를 재생하거나 복구한다고 알려져 있다. 그러나 줄기세포 역시 세포군이기 때문에 나이에 따라 점차 그 기능을 서서히 소실하게 된다. 즉 피부의 줄기세포도 노화에 따라 그 활성이 점차 감소하기 때문에 세포분열능력이 떨어지고 점차 비활성화됨으로써 노화에 따른 주름, 검버섯, 더딘 상처치유, 더딘 복구 등의 여러 문제들이 발생하게 된다. 본 명세서 전체에 걸쳐 다수의 논문 및 특허문헌이 참조되고 그 인용이 표시되어 있다. 인용된 논문 및 특허문헌의 개시 내용은 그 전체로서 본 명세서에 참조로 삽입되어 본 발명이 속하는 기술 분야의 수준 및 본 발명의 내용이 보다 명확하게 설명된다.
【발명의 상세한 설명】
【기술적 과제】
본 발명자들은 동물성 혈청을 대신하여 무혈청 배지에서도 줄기세포의 증식을 촉진할 수 있는 물질을 식물성 소재로부터 찾기 위해 예의 연구 노력하였다. 그 결과 식물성 펩톤이 동물성 혈청을 대체 가능한 정도로 줄기세포의 증식을 촉진할 수 있다는 것을 실험적으로 확인함으로써 본 발명올 완성하였다.
따라서, 본 발명의 목적은 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 즐기세포배양용 조성물을 제공하는 것에 있다. 본 발명의 다른 목적은 식물성 펩톤을 유효성분으로 포함하는 피부상태 개선용 조성물을 제공하는 것에 있다.
본 발명의 또 다른 목적은 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 줄기세포배지에서 줄기세포를 배양한 후 배양된 줄기세포를 제거한 배양액을 유효성분으로 포함하는 피부 상태 개선용 조성물을 제공하는 것에 있다.
본 발명의 목적 및 장점은 하기의 발명의 상세한 설명, 청구의 범위 및 도면에 의해 보다 명확하게 된다. 【기술적 해결방법】
본 발명의 일 양태에 따르면, 본 발명은 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 (serum free) 줄기세포배양용 조성물을 제공한다.
본 발명의 다른 일 양태에 따르면, 본 발명은 식물성 펩톤을 유효성분으로 포함하는 피부상태 개선용 조성물을 제공한다.
본 발명의 또 다른 일 양태에 따르면, 본 발명은 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 배지에 줄기세포를 배양한 후 배양된 줄기세포를 제거한 배양액을 유효성분으로 포함하는 피부 상태 개선용 조성물을 제공한다. 본 발명자들은 동물성 혈청을 대신하여 무혈청 배지에서도 줄기세포의 증식을 촉진할 수 있는 물질을 식물성 소재로부터 찾기 위해 예의 연구 노력하였다. 그 결과 식물성 펩톤이 동물성 혈청을 대체 가능한 정도로 줄기세포의 증식을 촉진할 수 있다는 것을 실험적으로 확인함으로써 본 발명을 완성하였다.
본 발명은 식물성 펩톤을 포함하며 동물성 혈청을 포함하지 않는 무혈청 줄기세포 배양용 배지 조성물을 제공한다.
상기 식물성 펩톤은 줄기세포의 증식 촉진능이 매우 우수하므로 동물성 혈청이 포함되지 않은 무혈청 줄기세포 배지에서 동물성 혈청 대체제로 사용될 수 있다.
상기 무혈청 줄기세포 배양용 배지 조성물에 포함되는 식물성 펩톤의 함유량은 줄기세포의 증식을 촉진하는 적합한 양으로 선택하여 사용할 수 있고 특별히 한정되지 않으나, 바람직하게는 0.1-10%(g/ml)의 범위이며 가장 바람직하게는 0.5-2% (g/ml)이다. 본 발명의 바람직한 구현예에 의하면, 상기 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 줄기세포 배양용 조성물에 감소된 양의 동물성 혈청이 추가로 포함된다.
본 발명의 조성물에는 혈청대체제로서 식물성 펩톤이 포함되어 있기 때문에 줄기세포 배지에 첨가되는 동물성 혈청의 통상적인 양 보다 감소된 양이 포함되어도 줄기세포 배양에 적합하게 사용할 수 있다. 바람직하게는 상기 감소된 양은 줄기세포 배양용 배지에 포함되는 통상적인 동물성 혈청의 양의 1/2 이하의 양이다.
본 명세서에서 용어 "식물성 펩톤" 은 식물로부터 얻은 단백질의 분해 산물을 의미한다. 예를 들어 대두 펩톤 (soy peptone)은 대두 (soy)로부터 얻은 총단백질을 분해하여 얻은 산물을 의미한다. 상기 식물성 단백질의 분해는 바람직하게는 부분적 분해 (partial digest)에 의해 행해진다. 상기 단백질의 분해는 바람직하게는 산처리, 염기처리, 효소처리, 고압처리, 열처리 또는 물리적 처리에 의한 분해를 통해 행해진다. 상기 물리적 처리는 예컨대 그라인딩 (grinding)이다.
본 발명에서의 식물성 펩톤은 식물성 단백질의 부분적 분해 산물로서, 단분자인 아미노산 뿐만 아니라, 수개 내지 수십개의 아미노산으로 이루어진 펩타이드와 온전한 단백질 분자가 모두 포함되어 있는 흔합물 형태이다.
본 발명의 식물성 펩톤이 얻어지는 식물의 원천은 특별히 한정되지 않으며, 줄기세포 증식을 촉진하는 능력을 갖는다면 어떠한 식물로부터 유래된 펩톤이라도 모두 포함된다.
바람직하게는 본 발명의 식물성 펩톤은 대두 펩톤 (soy peptone), 밀 펩톤 (wheat peptone) , 잠두 펩론 (broadbean peptone) , 감자 펩톤 (potato peptone) , 완두콩 펩톤 (pea peptone), 파파익 대두 펩론 (papaic soy peptone) 또는 루핀 펩론 (lupin peptone) 이며, 가장 바람직하게는 완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤이다.
본 발명은 식물성 펩톤을 유효성분으로 포함하는 피부상태 개선용 조성물올 제공한다.
식물성 펩톤은 매우 우수한 줄기세포 증식 촉진능을 갖기 때문에 이를 인체에 적용하는 경우 피부에 존재하는 성체 줄기세포의 증식을 촉진하거나 활성화시킴으로써 피부 상태를 개선시킬 수 있다. 피부에 존재하는 성체 줄기세포는 예를 들어, 모낭과 모낭사이의 표피 (interfollicular epidermis)의 기저층에 존재하는 줄기세포, 모낭 (hair follicle)에 존재하는 줄기세포, 또는 피하 지방충에 존재하는 지방유래 줄기세포이다.
본 발명의 바람직한 구현예에 의하면, 상기 식물성 펩톤은 상기 조성물 전체에 대해 0.01-30 증량 %로 함유된다. 식물성 펩톤의 함유량이 전체 조성물에 대해 0.01 중량 <¾ 미만이면 피부 상태 개선 효과를 볼 수 없고, 30 중량 %를 초과하여 포함되면 증가되는 함유량에 비해 증가된 개선 효과를 얻기 어려우며 제조 비용이 증가하는 단점이 있다.
본 발명의 피부상태 개선용 조성물에 유효성분으로 포함되는 식물성 펩톤은 본 발명의 다른 발명인 무혈청 줄기세포 배양용 조성물에서 설명된 것과 동일하므로 명세서의 과도한 복잡성을 피하기 위해 중복하여 기재하지 않는다.
본 발명의 바람직한 구현 ᅵ에 의하면, 본 발명에서 상기 피부상태의 개선은 염증성 피부질환의 완화, 피부주름의 개선, 피부노화의 억계, 피부탄력의 개선, 백반증의 개선, 상처 재생 효능, 피부 재생 효능을 포함한다.
본 발명의 다른 바람직한 구현예에 의하면, 상기 염증성 피부질환은 아토피성 피부염, 피부습진 (eczema), 여드름, 또는 건선이다.
본 발명의 피부상태 개선용 조성물은 기능성 식품 조성물로 제공될 수 있다. 본 발명이 기능성 식품 조성물의 형태로 제공되는 경우 식품 제조 시에 통상적으로 첨가되는 성분을 포함하며, 예를 들어, 단백질, 탄수화물, 지방, 영양소 및 조미제를 포함한다. 예컨대, 드링크제로 제조되는 경우에는 유효성분인 식물성 펩톤 이외에 향미제 또는 천연 탄수화물을 추가 성분으로서 포함시킬 수 있다. 예를 들어, 천연 탄수화물은 모노사카라이드 (예컨대, 글루코오스, 프럭토오스 등); 디사카라이드 (예컨대, 말토스, 수크로오스 등); 올리고당; 폴리사카라이드 (예컨대, 덱스트린, 시클로텍스트린 등); 및 당알코올 (예컨대, 자일리틀, 소르비를, 에리쓰리를 등)을 포함한다. 향미제로서 천연 향미제 (예컨대, 타우마틴, 스테비아 추출물 등)및 합성 향미제 (예컨대, 사카린, 아스파르탐 등)을 이용할 수 있다. 식품에 대한 용이한 접근성을 고려한다면, 본 발명의 기능성 식품 조성물은 피부상태 개선 용도로 매우 유용하다.
본 발명의 바람직한 구현예에 의하면, 상기 기능성 식품 조성물은 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 파우더 , 바, 캔디, 아이스크림, 오일, 및 분말 유탁액 스프레이로 이루어진 군으로부터 선택되는 제형을 갖는다.
본 발명의 피부상태 개선용 조성물은 피부에 직접 적용되는 화장료 조성물로 제공될 수 있다.
본 발명의 화장품 조성물은 당업계에서 통상적으로 제조되는 어떠한 제형으로도 제조될 수 있으며, 예를 들어, 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 로션, 파우더, 비누, 계면활성제 -함유 클린싱, 오일, 분말 파운데이션, 유탁액 파운데이션, 왁스 파운데이션 및 스프레이 등으로 제형화될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 보다 상세하게는, 유연 화장수, 영양 화장수, 영양 크림, 마사지 크림, 에센스 , 아이 크림, 클렌징 크림, 클렌징 포음, 클렌징 워터, 팩, 스프레이 또는 파우더의 제형으로 제조될 수 있다.
본 발명의 제형이 페이스트, 크림 또는 겔인 경우에는 담체 성분으로서 동물성유, 식물성유, 왁스, 파라핀, 전분, 트라칸트, 셀를로오스 유도체, 폴리에틸렌 글리콜, 실리콘, 벤토나이트, 실리카, 탈크 또는 산화아연 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 제형이 파우더 또는 스프레이인 경우에는 담체 성분으로서 락토스, 탈크, 실리카, 알루미늄 히드록시드, 칼슘 실리케이트 또는 폴리아미드 파우더가 이용될 수 있고, 특히 스프레이인 경우에는 추가적으로 클로로플루오로히드로카본, 프로판 /부탄 또는 디메틸 에테르와 같은 추진체를 포함할 수 있다.
본 발명의 제형이 용액 또는 유탁액인 경우에는 담체 성분으로서 용매, 용해화제 또는 유탁화제가 이용되고, 예컨대 물, 에탄올, 이소프로판올, 에틸 카보네이트, 에틸 아세쩨이트, 벤질 알코올, 벤질 벤조에이트, 프로필렌 글리콜, 1,3-부틸글리콜 오일, 글리세를 지방족 에스테르, 폴리에틸렌 글리콜 또는 소르비탄의 지방산 에스테르가 있다. 본 발명의 제형이 현탁액인 경우에는 담체 성분으로서 물, 에탄올 또는 프로필렌 글리콜과 같은 액상의 희석제, 에특실화 이소스테아릴 알코올 폴리옥시에틸렌 소르비를 에스테르 및 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르와 같은 현탁제, 미소결정성 셀를로오스, 알루미늄 메타히드록시드, 벤토나이트, 아가 또는 트라칸트 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 제형이 계면-활성제 함유 클린징인 경우에는 담체 성분으로서 지방족 알코올 설페이트, 지방족 알코올 에테르 설페이트 , 설포숙신산 모노에스테르, 이세티오네이트, 이미다졸리늄 유도체, 메틸타우레이트, 사르코시네이트 , 지방산 아미드 에테르 설페이트 , 알킬아미도베타인, 지방족 알코올, 지방산 글리세리드, 지방산 디에탄올아미드, 식물성 유, 라놀린 유도체 또는 에톡실화 글리세를 지방산 에스테르 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 화장품 조성물에 포함되는 성분은 유효 성분과 담체 성분 이외에, 화장품 조성물에 통상적으로 이용되는 성분들을 포함하며, 예컨대 항산화제, 안정화제, 용해화제, 비타민, 안료 및 향료와 같은 통상적인 보조제를 포함할 수 있다.
본 발명의 바람직한 구현예에 의하면, 상기 화장품 조성물은 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 로션, 샴푸, 파우더, 비누, 계면활성제 함유 클린징, 오일, 분말 파운데이션, 유탁액 파운데이션, 왁스 파운데이션 및 스프레이로 이루어진 군으로부터 선택되는 형태이다.
본 발명은 식물성 펩톤을 포함하며 동물성 혈청을 포함하지 않는 무혈청 배지에서 줄기세포를 배양한 후에, 배양된 줄기세포를 배양액으로부터 제거한 배양액을 유효성분으로 포함하는 피부상태 개선용 조성물을 제공한다.
상기 배양하는 줄기세포는 특정의 줄기세포로 한정되지 않으며 배아줄기세포 (embryonic stem cell)와 성체줄기세포 (adult stem cell)를 모두 포함하나, 바람직하게는 포유동물유래의 성체줄기세포이고, 보다 바람직하게는 인간 유래 성체줄기세포이며, 가장 바람직하게는 인간 탯줄혈액 유래 중간엽 줄기세포 (human cord blood-derived stem cells, CB- MSCs), 피부 유래 줄기세포, 또는 인간 지방유래 줄기세포 (human a i pose- derived stem cells, ADSCs) 이다. 본 명세서에서 용어 "줄기세포 (stem cell)" 는 스스로 세포분열할 수 있고 매우 다양한 형태의 특이 세포 타입 (specific cell type)으로 분화할 수 있는 능력을 갖는 세포를 의미한다.
본 명세서에서 용어 "성체줄기세포" 는 배아발달단계 이후에도 성체 전반에서 발견되는 분화되지 않은 즐기세포로서, 세포분열에 의해 증식하여 사멸된 세포를 대체하고 손상된 조직을 재생하는 역할올 하는 줄기세포를 의미한다ᅳ 성체줄기세포는 주변조직의 특성에 세포자신을 맞추어 분화하는 조직특이적 분화능력 (site-specific different iat ion)을 가지고 있다. 본 발명에서 줄기세포 배양 시에 성체줄기세포를 사용하면 줄기세포배양액을 인체에 적용하는 경우 안전성을 확보하고 부작용을 최소화할 수 있는 유리한 점이 있다.
본 발명의 식물성 펩톤 함유 무혈청 배지에 줄기세포를 배양한 후 줄기세포를 제거하는 방법은 공지된 방법을 이용하여 행할 수 있다. 예컨대, 줄기세포를 배양한 후 세포배양액을 회수하고, 회수된 배양액을 마이크로 시린지 필터를 이용하여 여과함으로써 줄기세포가 제거된 배양액을 얻을 수 있다. 마이크로 시린지 필터의 세공 크기 (pore size)는 즐기세포를 제거할 수 있는 크기 내에서 적절하게 선택할 수 있고, 바람직하게는 0.1-10 ym 이다.
상기 무혈청 줄기세포 배양용 배지 조성물에 포함되는 식물성 펩톤의 함유량은 줄기세포의 증식을 촉진하는데 적합한 양으로 선택하여 사용할 수 있고 특별히 한정되지 않으나, 바람직하게는 전체 배지 조성물에 대해 으 1- 10%(g/ )의 범위이며, 보다 바람직하게는 0.5-2%(g/ )이다.
상기 줄기세포를 배양한 후 이를 제거한 배양액에는 동물성 혈청으로부터 유래될 수 있는 다양한 생물학적 오염물, 예를 들어 동물성 세균, 동물성 바이러스 뿐만 아니라 프리온 (prion)이나 독소 (toxin)와 같은 단백질 등이 포함되어 있지 않으므로 배양액을 인체에 적용하는 경우 상기 오염물에 의한 감염 또는 독성 문제를 원천적으로 해결할 수 있다.
본 발명의 줄기세포를 배양한 배양액에는 줄기세포로부터 분비된 다양한 생리활성물질 (예를 들어 줄기세포 증식 또는 활성화 촉진능을 갖는 사이토카인)이 함유되어 있으므로, 배양된 줄기세포를 제거한 배양액을 인체에 적용하는 경우 인체에 존재하는 성체 줄기세포의 증식 촉진 또는 활성화를 통해 피부 상태를 개선하는 효과를 얻을 수 있다.
본 발명의 조성물이 활성화 또는 증식 촉진시키는 피부 존재 성체 줄기세포는 모낭과 모낭 사이의 표피 (interfollicular epidermis)의 기저층에 존재하는 줄기세포, 모낭 (hair follicle)에 존재하는 줄기세포, 또는 피하 지방층에 존재하는 지방유래 줄기세포를 포함한다.
본 발명의 바람직한 구현예에 의하면, 상기 줄기세포배양액은 피부상태 개선용 조성물 전체에 대해 0.01-30 중량 %의 범위로 함유된다. 줄기세포배양액의 함유량이 전체 조성물에 대해 0.01 중량 % 미만이면 피부 상태 개선 효과를 볼 수 없고, 30 중량 %를 초과하여 포함되면 증가되는 함유량에 비해 증가된 개선 효과를 얻기 어려우며 제조 비용이 증가하는 단점이 있다.
본 발명의 피부상태 개선용 조성물에 유효성분으로 포함되는 식물성 펩톤은 본 발명의 상기 설명한 다른 발명인 무혈청 줄기세포 배양용 조성물에서 설명된 것과 동일하므로 명세서의 과도한 복잡성을 피하기 위해 중복하여 기재하지 않는다 .
본 발명의 바람직한 구현예에 의하면, 본 발명에서 상기 피부상태의 개선은 염증성 피부질환의 완화, 피부주름의 개선, 피부노화의 억제, 피부탄력의 개선, 백반증의 개선, 상처 재생 및 피부 재생 효능 등을 포함한다.
본 발명의 다른 바람직한 구현예에 의하면, 상기 염증성 피부질환은 아토피성 피부염, 피부습진 (eczema), 여드름, 또는 건선이다.
본 발명의 피부상태 개선용 조성물은 기능성 식품 조성물로 제공될 수 있다. 본 발명이 기능성 식품 조성물의 형태로 제공되는 경우 식품 제조 시에 통상적으로 첨가되는 성분을 포함하며, 예를 들어 , 단백질, 탄수화물, 지방, 영양소 및 조미제를 포함한다. 예컨대, 드링크제로 제조되는 경우에는 유효성분 이외에 향미제 또는 천연 탄수화물을 추가 성분으로서 포함시킬 수 있다. 예를 들어, 천연 탄수화물은 모노사카라이드 (예컨대, 글루코오스, 프럭토오스 등) ; 디사카라이드 (예컨대, 말토스, 수크로오스 등); 올리고당; 폴리사카라이드 (예컨대, 텍스트린 시클로덱스트린 등); 및 당알코을 (예컨대, 자일리를, 소르비를, 에리쓰리를 등)을 포함한다. 향미제로서 천연 향미제 (예컨대, 타우마틴, 스테비아 추출물 등)및 합성 향미제 (예컨대, 사카린, 아스파르탐 등)을 이용할 수 있다. 식품에 대한 용이한 접근성을 고려한다면, 본 발명의 기능성 식품 조성물은 피부상태 개선 용도로 매우 유용하다.
본 발명의 바람직한 구현예에 의하면, 상기 기능성 식품 조성물은 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 파우더, 바, 캔디, 아이스크림, 오일, 및 분말 유탁액 스프레이로 이루어진 군으로부터 선택되는 제형올 갖는다.
본 발명의 피부상태 개선용 조성물은 피부에 직접 적용되는 화장료 조성물로 제공될 수 있다.
본 발명의 화장품 조성물은 당업계에서 통상적으로 제조되는 어떠한 제형으로도 제조될 수 있으며, 예를 들어, 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 로션, 파우더, 비누, 계면활성제—함유 클린싱, 오일, 분말 파운데이션, 유탁액 파운데이션, 왁스 파운데이션 및 스프레이 등으로 제형화될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 보다 상세하게는, 유연 화장수, 영양 화장수, 영양 크림 , 마사지 크림, 에센스, 아이 크림, 클렌징 크림, 클렌징 포음, 클렌징 워터, 팩, 스프레이 또는 파우더의 제형으로 제조될 수 있다.
본 발명의 제형이 페이스트, 크림 또는 겔인 경우에는 담체 성분으로서 동물성유, 식물성유, 왁스, 파라핀, 전분, 트라칸트, 셀를로오스 유도체, 폴리에틸렌 글리콜, 실리콘, 벤토나이트, 실리카, 탈크 또는 산화아연 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 제형이 파우더 또는 스프레이인 경우에는 담체 성분으로서 락토스, 탈크, 실리카, 알루미늄 히드록시드, 칼슘 실리케이트 또는 폴리아미드 파우더가 이용될 수 있고, 특히 스프레이인 경우에는 추가적으로 클로로폴루오로히드로카본, 프로판 /부탄 또는 디메틸 에테르와 같은 추진체를 포함할 수 있다.
본 발명의 제형이 용액 또는 유탁액인 경우에는 담체 성분으로서 용매, 용해화제 또는 유탁화제가 이용되고, 예컨대 물, 에탄올, 이소프로판을, 에틸 카보네이트, 에틸 아세테이트, 벤질 알코올, 벤질 밴조에이트, 프로필렌 글리콜, 1,3-부틸글리콜 오일, 글리세를 지방족 에스테르, 폴리에틸렌 글리콜 또는 소르비탄의 지방산 에스테르가 있다. 본 발명의 제형이 현탁액인 경우에는 담체 성분으로서 물, 에탄올 또는 프로필렌 글리콜과 같은 액상의 희석제, 에특실화 이소스테아릴 알코올, 폴리옥시에틸렌 소르비를 에스테르 및 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르와 같은 현탁제, 미소결정성 셀를로오스, 알루미늄 메타히드록시드 벤토나이트, 아가 또는 트라칸트 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 제형이 계면-활성제 함유 클린징인 경우에는 담체 성분으로서 지방족 알코올 설페이트, 지방족 알코올 에테르 설페이트, 설포숙신산 모노에스테르, 이세티오네이트, 이미다졸리늄 유도체, 메틸타우레이트, 사르코시네이트, 지방산 아미드 에테르 설페이트, 알킬아미도베타인, 지방족 알코을, 지방산 글리세리드, 지방산 디에탄을아미드, 식물성 유, 라놀린 유도체 또는 에록실화 글리세를 지방산 에스테르 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 화장료 조성물에 포함되는 성분은 유효 성분과 담체 성분 이외에, 화장품 조성물에 통상적으로 이용되는 성분들을 포함하며, 예컨대 항산화제, 안정화제, 용해화제, 비타민, 안료 및 향료와 같은 통상적인 보조제를 포함할 수 있다.
본 발명의 바람직한 구현예에 의하면, 상기 화장료 조성물은 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 로션, 샴푸, 파우더, 비누, 계면활성제 함유 클린징, 오일, 분말 파운데이션, 유탁액 파운데이션, 왁스 파운데이션 및 스프레이로 이루어진 군으로부터 선택되는 형태이다.
【유리한 효과】
본 발명의 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 줄기세포 배양용 조성물은 고가의 동물성 혈청올 사용하지 않으므로 제조비용을 현저히 낮출 수 있고, 동물성 혈청을 배지에 사용함으로써 발생되는 동물성 물질의 오염을 원천적으로 차단함으로써 보다 안전한 줄기세포를 제공할 수 있다. 또한, 본 발명의 식물성 펩톤을 유효성분으로 포함하는 조성물 및 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청 배지에서 줄기세포를 배양한 배양액은 줄기세포의 증식촉진능 및 활성화능을 가지므로, 염증성 피부질환의 완화, 피부 주름의 개선, 피부노화 억제, 피부탄력의 개선, 백반증의 개선, 상처 재생 및 피부 재생 효능 등의 피부 상태의 개선 효과를 나타낸다.
【도면의 간단한 설명】
도 la는 7가지 종류의 식물성 펩톤을 포함하는 무혈청배지에서 인간 탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포 (CB-MSC)의 생존능 측정 결과이다. CM: 15% FBS 및 1% 항생제를 포함하는 DMEM; SF: 무혈청 DMEM; MSC: 인간 탯줄혈액유래 중간엽줄기세포이고 MSC(A)와 MSC(B)는 계대 횟수 (Cell passage number)가 다른 세포이다; #1: 완두콩 펩톤 (pea peptone), #2: 루핀 펩톤 (Lupin peptone) , #3: 감자 펩톤 (potato peptone) , #4: 대두 펩톤 (soy peptone) , #5: 파파익 대두 펩톤 (卿 aic soy peptone) , #6: 잠두 펩톤 (broadbean peptone), #7: 밀 펩톤 (wheat peptone) . 펩톤의 농도는 5mg/m^(0.5%).
도 lb 는 인간 탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포 (CB-MSCs) 또는 인간 지방유래 줄기세포 (ADSCs)의 생존능에 대한 펩톤의 영향을 측정한 결과이다. 성체줄기세포를 완두콩 펩톤 또는 밀 템톤을 포함하는 조합 배양배지에서 3 일간 성장시켰다. 무혈청조건은 세포 배지를 혈청이 포함되지 않은 DMEM 으로 교체하였다. 양성대조군으로서는 대조군 배지 (15% FBS 를 포함하는 DMEM)에서 배양하였다. 세포생존능은 M T 분석법에 의해 결정하였다. 측정값들은 대조군을 100%로 하여 이에 대한 백분율로 표시하였다. 각 그룹에서의 측정값은 4 개의 샘플 (n=4)에 대해 얻은 평균값으로 나타내었다. 패널 A 는 CB-MSC 세포의 측정결과이고, 패널 B 는 ADSC 세포의 측정결과이다. 도 2 는 CB-MSC 세포증식에 대한 펩톤의 영향을 측정한 결과이다.
CB-MSC 를 완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤을 포함하는 조합 배양배지에서 3 일간 성장시켰다. 세포증식은 Click-ΠΤΜ EdU 유세포분석을 통해 결정하였다. 샘플에 대한 분석은 FACS Vantage flow cytometer 상에서 수행하였다. 패널 A 는 무혈청 조건, 패널 B 는 완두콩 펩톤이 첨가된 무혈청조건, 패널 C는 밀 펩톤이 첨가된 무혈청 조건이다. 도 3a 및 도 3b 는 식물성 펩톤으로 처리된 인간탯줄혈액유래 중간엽 줄기세포 (CB-MSC)의 조절된 배지에서 사이토카인 프로파일을 측정한 결과이다. 완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤을 포함하는 배지에서 인간탯줄혈액 유래 중간엽 줄기세포 (CB-MSC)를 3 일간 배양하였다. 사이토카인의 정량분석은 무혈청 조건에서 펩톤 존재 또는 부존재하에서 인간탯줄혈액 유래 중간엽즐기세포 (CB-MSC)를 배양한 후 그 상등액을 분석하여 수행하였다. 각 그룹은 4 개의 샘플에 대한 결과를 평균한 값으로 나타내었다. * NM 은 펩톤처리에 의한 < 30 pg/ 의 사이토카인 생성량을 의미한다.
도 3c 및 도 3d 는 식물성 펩톤으로 처리된 인간 지방 유래 줄기세포 (ADSC)의 조절된 배지에서의 사이토카인 프로파일을 측정한 결과이다. 완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤을 포함하는 배지에서 성체줄기세포를 3 일간 배양하였다. 사이토카인의 정량분석은 무혈청 조건에서 펩톤 존재 또는 부존재하에서 인간 지방 유래 줄기세포 (ADSC)를 배양한 후 그 상등액을 분석하여 수행하였다. 각 그룹은 4 개의 샘플에 대한 결과를 평균한 값으로 나타내었다. *NM 은 펩톤처리에 의한 < 30 pg/i 의 사이토카인 생성량을 의미한다. 도 4 는 식물성 펩톤의 섬유아세포 증식 촉진 효과를 보여주는 결과이다. 완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤을 포함하는 배지에서 섬유아세포를 3 일간 배양하였다. 72 시간이 경과한 후에, 혈청을 제거한 배양액으로 1 회 세척한 다음, 10% MTT 가 들어있는 무혈청배지로 교체하여 3 시간 인큐베이션한 후 0.D 값을 측정하여 백분율로 환산하였다. Con : 무혈청 조건, FGF-1: Fetal Growth Factor-1, Pea: 완두콩 펩톤, Wheat: 밀 펩톤 도 5 는 식물성 펩톤의 섬유아세포 콜라겐 합성 촉진 효과를 보여주는 결과이다. 사람의 정상 섬유 아세포 (Human normal fibroblast, 태평양)를 DMEM 배지가 들어 있는 6-웰 마이크로 플레이트에 접종시키고 (2 X 105 세포 /웰) 5% 농도의 ∞2 배양기에 37°C로 24 시간 배양하였다. 24 시간 후, 각 웰에서 배지를 제거한 후, 양성대조군으로서 레티노산 (RA, Retinoic acid) 포함 배지, 실험군으로서 1% , 3%, 10% 완두콩 펩톤, 또는 1%, 3%, 5% 밀 펩톤 포함 배지, 음성대조군으로서 무혈청 배지로 처리하고, 24 시간 동안 다시 배양하였다. 24 시간 후, 세포 배지를 수집하여 샘플을 제조하였고, 콜라겐 합성량은 콜라겐 측정 키트 (Procollagen Type I C-peptide EIA kit (MK101), Takara, Kyoto, Japan)를 이용하여 프로콜라겐 타입 I C-펩타이드 (Procollagen Type I C- peptide: PICP)의 양을 측정하였다. 실험은 Takara 의 키트 설명서에 기재된 방법에 따라 수행하였다. 측정된 표준치는 평균土 표준편차의 형태로 표시하였고, SPSS/PC+ 프로그램을 이용하여 t-test 로 유의성을 검정하였다. Con: 무혈청 조건, RA: Retinoic Acid, Pea: 완두콩 펩톤, Wheat: 밀 펩톤. 도 6 는 식물성 템톤의 콜라겐 분해효소의 억제 효과를 보여주는 결과이다. 사람의 정상 섬유아세포 (Human normal fibroblast, 태평양)를 DMEM 배지가 들어 있는 6-웰 마이크로 플레이트에 접종시키고 (2 X 105 세포 /웰) 5% 농도의 C02 배양기에 37°C로 24 시간 배양하였다. 24 시간 후, 각 웰에서 배지를 제거한 후, 농도별로 시료를 처리하고, 24 시간 동안 다시 배양한 후, 세포배지를 수집하여 샘플을 제조하였다. 콜라겐을 분해하는 효소인 콜라게나제 (collagenase)의 활성정도를 측정하는 방법으로 콜라게나제에 대한 항체를 이용하였다. 콜라게나제 활성을 유도하는 물질로 PMA(phorbol myri state acetate)를 처리하였다. 실험은 상업적으로 판매되는 키트에 제조자의 지시서에 기재된 방법에 따라 수행하였다. 타입 I 콜라게나제 어세이 키트 (Amersham Biosciences, RPN2629)를 이용하였으며, ELISA 판독기로 흡광도를 측정하였다. 측정된 표준치는 평균士 표준편차의 형태로 표시하였고 SPSS/PC+ 프로그램을 이용하여 t- test 로 유의성을 검정하였다. Con : 무혈청 조건, TNF-α : Tumor Necrosis Factor- α , Pea: 완두콩 펩톤, Wheat: 밀 펩톤. 도 7 은 식물성 펩톤이 인체의 경피에 존재하는 피부줄기세포를 활성화시키는 실험결과를 보여준다. CM: 15% FBS 및 1% 항생제를 포함하는 DMEM; SF: 무혈청 DMEM; P/SF: 식물성 펩톤 (완두콩 펩론)이 첨가된 무혈청 DMEM; P/SF/MSC: 식물성 펩톤 (완두콩 펩톤)이 첨가된 무혈청 DMEM에 인간 탯줄혈액유래 중간엽줄기세포를 배양한 배양액 .
【발명의 실시를 위한 형태】
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다. 실시예 1: 식물성 펩톤 함유 무혈청배지에서 줄기세포의 세포생존능 측정
세포, 배지 및 배양방법
본 발명자들은 줄기세포배양용 혈청대체제를 찾기 위해 혈청이 첨가되지 않은 무혈청 배지에서 줄기세포를 배양하면서 배지에 식물성 물질을 첨가하여 양호한 줄기세포 성장이 이루어지는 물질들을 스크리닝하였다.
본 발명자들은 펩톤의 기원, 아미노산 함량 및 올리고펩티드 분자량 분포에 기초하여 대두 펩톤 (soy peptone), 밀 펩톤 (wheat peptone), 잠두 펩톤 (broadbean peptone) , 감자 펩톤 (potato peptone) , 완두콩 펩톤 (pea peptone), 파파익 대두 펩톤 (papaic soy peptone) 및 루핀 펩톤 (lupin peptone)의 7가지의 펩톤을 선정하여 실험에 사용하였다.
즐기세포로는 인간 랫줄혈액 유래 중간엽줄기세포와 인간 지방유래 줄기세포를 사용하였다.
인간 탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포 (Human cord blood-derived mesenchymal stem cells, CB-MSCs)는 포천중문 의과대학교 (한국, 경기도 성남)로부터 얻었다. 세포들은 저농도의 글루코오스를 포함하고, 15% FBS, 페니실린 및 스트랩토마이신이 첨가된 DMEM(Dulbecco's modified eagle medium)에서 37t: 온도조건에서 배양하였다. 배지는 세포들이 컨플루언시 (confluency)에 도달할 때 까지 3 일 마다 교체하였다. 인간 지방유래 줄기세포 (Human adi ose-derived stem cells, ADSCs)는 Invitrogen (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA)으로부터 구입하였다. 동결보존된 세포들을 37°C에서 녹인 후 곧 바로 MesenPRO RS™ 배지 (Gibco, Carlsbad, CA, USA)에서 배양하였다. 이어서, 세포들을 MesenPRO RS™ 배지를 이용하여 증식시켰다.
대두 펩톤, 밀 펩톤, 잠두 펩톤, 감자 펩톤 및 완두콩 펩톤은 Fluka (Sigma-Aldrich, St. Quentin Fallavier, France)로부터 구입하였고, 파파익 대두 펩톤과 루핀 펩톤은 Solabia (Pant in 93698 Cedex, France)으로부터 구입하였다. 펩톤은 0.2μπι 직경을 가진 멤브레인 필터를 통해 여과한 후, \% 펩톤의 무혈청 DMEM 배지를 제조하는데 사용하였다. 음성 대조군인 무혈청 조건 시험군에서는 세포 배양 배지를 무혈청 DMEM (Cat. 11885, Invitrogen)으로 교체하였다. 양성 대조군으로는 세포를 15% FBS를 포함하는 DMEM 배지에서 배양하였다. 세포생존능 (cell viability) 측정
세포생존능은 MTT (3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5- diphenyltetrazolium bromide)분석을 통해 측정하였다. MTT 분석은 테트라졸륨환 (tetrazolium ring)을 포함하는 기질 (substrate)이 미토콘드리아 탈수소효소에 의해 청색의 포르마잔 (formazan)으로 변환되는 것에 기초한 분석방법이다. 청색 포르마잔의 수준을 분광학적으로 측정한 후 이를 세포밀도의 간접적인 지표로 사용하였다. 간략하게 설명하면, 세포들을 37°C에서 MTT (1 mg/ )에 3 시간 동안 노출시킨 후, 배지를 제거하고 세포들을 DMSO (dimethyl sulfoxide)로 용해시켰다. 완전 용해된 후 청색 포르마잔의 존재는 파장 570 nm 에서의 흡광도를 측정함으로서 분광학적으로 측정하였다.
MTT 분석법을 사용하여 성체 즐기세포의 증식에 미치는 펩톤의 영향을 평가한 결과, 여러 가지 식물성 펩톤 중에서도 2 가지 펩톤인 완두콩 펩톤 (pea peptone) 및 밀 펩톤 (wheat peptone)이 성체줄기세포의 증식을 현저히 유도함을 확인하였다 (도 la). 완두콩 펩톤 및 밀 펩톤이 탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포 (CB-MSCs)의 성장를을 각각 25% 및 20%로 현저히 증가시켰고 (도 lb 의 패널 A), 이와 유사하게, 완두콩 펩톤 및 밀 펩톤은 지방 유래 줄기세포 (ADSCs)의 세포 성장률도 각각 20% 및 25% 증가시켰다 (도 lb의 패널 B). 세포증식 (cell proliferation) 평가
완두콩 펩톤 및 밀 펩톤이 줄기세포 생존능에 대해 미치는 효과는 탯즐혈액유래 중간엽줄기세포에 (CB-MSCs)에 대한 세포증식 평가 실험으로 추가적으로 확인하였다.
세포 증식을 평가하는 방법은 DNA 합성동안에 ¾ 티미딘 (thymidine) 또는 브로모데옥시우리딘 (bromodeoxyuridine, BrdU)과 같은 티미딘 유사체의 흔입을 측정하는 것에 기초하여 행하였다. Click-iT™ EdU 유세포 분석 키트는 BrdU 분석법 (Molecular Probes, Eugene, OR)을 대체하는 새로운 방법이다. 이 방법에서는 항체 기반 검출 대상이 활동적인 DNA 합성 동안에 DNA 로 흔입되는 종전 뉴클레오시드 유사체인 BrdU 대신에 티미딘 (thymidine)에 대한 뉴클레오시드 유사체인 Edu(5-ethynyl-2'- deoxyur idine)으로 교체된 방법이다.
간략히 설명하면, 세포들을 EdU 와 함께 1 시간 동안 인큐베이션하였다. 음성 대조군으로서 동일한 세포군으로부터 얻은 세포들은 EdU 로 처리하지 않았다. 인큐베이션 후에, 샘플들올 FACS Vantage flow cytometer (BD Biosciences, San Jose, CA, USA)를 사용하여 분석하였다. 모든 분석들은 제조자의 지시 프로토콜에 따랐다.
중간엽줄기세포에 (CB-MSCs)에 대한 세포증식 평가 실험 결과, 도 2 에서 나타낸 바와 같이, 완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤으로 처리된 그룹의 중간값 (median value)은 무혈청 그룹과 비교하여 오른쪽으로 이동되어 있다 (중간값이 3.08의 값에서 7.23 및 7.30의 값으로 각각 이동하였다). 실험 결과의 시사
상기 결과들을 종합하면, 식물성 펩톤이 동물성 기원의 성분이 포함되지 않은 무혈청 배지에서 배양되는 줄기세포의 증식에 효과적으로 기여할 수 있다는 것을 제시하였다. 실시예 2: 식물성 펩톤의 조성과 특성
본 발명에서 선발된 완두콩 펩톤과 밀 펩톤의 물리화학적인 특성을 조사하였다. 물리적 특성은 통상의 실험실에서 사용하는 방법에 준하여 실시하였으며 미생물실험 역시 통상의 방법에 따라 수행하였다. 아미노산 조성은 일반적으로 사용되는 아미노산 분석기를 사용하였다.
완두콩 펩톤 (Pea peptone)
a. 물리적 특성 (Physical properties)은 다음과 같았다: 외양 (appearance)은 밝은 갈색 파우더이고, 안정성 (stabi 1 ity)은 2% 용액에서 안정적이었으며, 용해성 (solubility)으로서 전체 용액의 5% 이내에서 용해되었다.
b. 미생물학적 특징 (Microbiological controls)은 호가성 /중온성 f loraCtotal aerobic mesophi lie flora) ≤≤ 5000 cfu/g 이었다.
c. 아미노산 함량 (Amino acid distribution, mg/g)은 다음 표 1 과 같았다.
[표 1]
Figure imgf000021_0001
밀 펩톤 (Wheat peptone)
a. 물리적 특성은 다음과 같았다: 외양은 베이지 파우더이었고, 안정성은 2% 용액에서 안정적이었으며, 용해성 (solubility)으로서 전체 용액의 5% 이내에서 용해되었다.
b. 미생물학적 특징 (Microbiological controls)은 호기성 /중온성 f lora(total aerobic mesophi lie flora) ≤≤ 5000 cfu/g 이었다.
c. 아미노산 함량 (Amino acid distribution, mg/g)은 다음 표 2 와 같았다. [표 2]
Figure imgf000022_0001
실시예 3: 식물성 펩톤 함유 무혈청배지에서 동물세포의 세포생존능 측정
본 실시예에서는 식물성 펩톤이 다른 동물세포들의 증식도 촉진할 수 있는 지를 알아 보기 위해, 인간각질세포인 HaCaT 과 마우스 섬유아세포 (mouse fibroblast)인 NIH3T3 세포를 식물성 펩톤이 함유된 무혈청 배지에 배양하여 이들 세포생존능에 미치는 효과를 관찰하였다. 본 실시예의 실험은 다음과 같이 실시하였다. 5% C02및 37°C 하에서
10%의 FBS, 1% 항생제가 포함된 DMEM 배지에서 배양한 HaCaT 와 NIH3T3 세포 3 X 105을 6 웰 플레이트 (well plate)에 접종하여 안착시킨 후, 다음 날 혈청을 제거한 배양액으로 1희 세척한 다음, 각각 무혈청조건과, 식물성 펩톤이 첨가된 무혈청조건으로 실험군을 나누어 배양하였다. 72 시간이 경과한 후, 혈청을 제거한 배양액으로 1 회 세척한 다음, 10% Μπ 가 들어있는 무혈청배지로 교체하여 3 시간 후 0.D 값을 측정하여 백분율로 환산하였다.
하기 표 3 에 나타낸 바와 같이, 정상군 (혈청 포함)올 100%로 환산하였을 시, 무혈청조건 (54%)에 비해 완두콩 펩톤 및 밀 펩톤이 각각 첨가된 조건에서 70% 이상의 세포생존율 증가를 보여 밀펩톤 및 완두콩펩톤이 즐기세포뿐만 아니라 일반 세포의 세포증식을 촉진하는 효과가 있음을 알 수 있었다.
[표 3]
Figure imgf000023_0001
실시예 4: 식물성 펩톤 함유 무혈청배지에서 줄기세포 배양시 성장촉진인자의 발현 프로파일 변화조사
상기 실시예 1 에서 완두콩 펩톤과 밀 펩톤이 성체 줄기세포의 증식을 촉진한다는 것을 실험을 통해 확인하였다. 추가적으로 식물성 펩톤이 줄기세포의 증식에 어떠한 메카니즘을 통해 영향을 미치는지 확인하였다.
성체줄기세포의 배양시 완두콩 펩톤 및 밀 펩톤 존재의 경우 식물성 펩톤에 반응하여 EGF, FGF-2, Flt-3 ligand, G-CSF, GM-CSF, TGF-βΙ, IL-3, IL-6, IL-8, TNF-α 및 VEGF 등의 사이토카인들의 발현 프로파일에 어떠한 변화가유도되는지를 확인하였다.
5% C02 및 37 °C 하에서 15%의 FBS 와 1% 항생제가 포함된 DMEM 배지를 이용하여 배양한 성체줄기세포 (인간 탯줄혈액유래 중간엽 즐기세포 또는 인간 지방유래 줄기세포) 3 X 105 개를 6 웰 플레이트 (well plate)에 접종하여 안착시킨 후, 혈청을 제거한 배양액으로 1 회 세척한 후, 무혈청조건 및 식물성 펩톤 (완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤)이 첨가된 무혈청 조건으로 각각 실험군을 나누어 배양하였다. 72 시간 경과한 후, 사이토카인을 정량하기 위해, 펩톤을 첨가하여 줄기세포를 배양한 배양 상등액을 MILLIPLEXTM Human Cytokine Kit (Millipore, St. Charles, MO, USA)를 사용하여 제조자 지시 프로토콜에 따라 사이토카인 분석을 행하였다.
도 3a - 도 3d 에 나타난 바와 같이, 식물성 펩톤 존재하에 성체줄기세포를 배양한 경우 사이토카인 VEGF, TGF- Ι 및 IL-6의 생성량이 현저히 증가한 것을 확인할 수 있었다. 도 3a 및 도 3b 에 나타난 구체적 결과에서, 인간탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포 (CB-MSC)를 완두콩 펩톤으로 처리한 경우 VEGF 는 생성량은 678 pg/m£으로서 비처리대조군에 비해 8.83 土 1.689 배 증가하였고, TGF- βΐ 의 생성량은 485 pg/i 으로서 비처리대조군에 비해 3.79 ± 0.195 배 증가하였으며, IL-6의 생성량은 332 pg/ 으로서 비처리대조군에 비해 2.55 土 0.217 배 증가하였다. 한편, 밀 펩톤으로 처리한 경우는 VEGF 는 생성량은 1019 pg/ 으로서 비처리대조군에 비해 13.27 士 1.447 배 증가하였고, TGF-βΙ 의 생성량은 387 pg/ 으로서 비처리대조군에 비해 3.02 士 0.234 배 증가하였다. 그러나, 인간랫줄혈액 유래 중간엽줄기세포를 밀 펩톤으로 처리한 경우 IL-6 의 생성량에는 변화가 없었다.
도 3c 및 도 3d 에 나타난 결과에서, 인간 지방유래 줄기세포를 완두콩 펩톤으로 처리한 경우 VEGF 는 생성량은 122 pg/i 으로서 비처리대조군에 비해 6.70 士 0.280 배 증가하였고, TGF-βΙ 의 생성량은 194 pg/m으로서 비처리대조군에 비해 5.78 土 0.445 배 증가하였으며, IL- 6 의 생성량은 166 pg/i 으로서 1.11 士 0.080 배 증가하였다. 또한, 인간 지방유래 줄기세포를 밀 펩톤으로 처리한 경우는 VEGF 는 생성량은 172 pg/n^으로서 비처리대조군에 비해 9.49 士 0.896배 증가하였고, TGF-βΙ 의 생성량은 170 pg/ 으로서 비처리 대조군에 비해 5.07 士 0.356 배 증가하였고, IL-6 의 생성량은 192 pg/ii^으로서 1.28 士 0.324 배 증가하였다.
인간탯줄혈액 유래 중간엽 줄기세포 또는 인간 지방유래 줄기세포를 완두콩 펩톤 및 밀 펩톤으로 처리한 경우 VEGF, TGF-β 및 IL-6 이외의 다른 사이토카인들의 분비량 변화는 관찰되지 않았다. 따라서, 식물성 펩톤에 의한 줄기세포 증식 촉진 효과는 VEGF, TGF-β 및 IL-6 에 의해 매개되는 효과로 보여진다. 실시예 5: 식물성 펩톤 함유 무혈청 배지에서 섬유아세포의 세포생존능 측정
인간 정상 섬유아세포 (human normal fibroblasts)를 이용하여 무혈청배지에 식물성 펩톤을 처리한 후 세포생존율에 미치는 효과를 관찰하였다. 본 실험은 5 % C02 및 37°C 하에서 10%의 FBS, 1% 항생제가 포함된 DMEM 배지에서 배양한 인간 정상 섬유아세포 3 X 105 를 6 웰 플레이트에 접종하여 안착시킨 후, 다음 날 혈청을 제거한 배양액으로 1 회 세척한 다음, 무혈청조건 및 펩톤이 첨가된 무혈청 조건 (1-10%)으로 각각 실험군을 나누어 배양하였다. 72 시간이 경과한 후에, 혈청을 제거한 배양액으로 1 회 세척한 다음, 10% MTT 가 들어있는 무혈청 배지로 교체하여 3 시간 후 0.D 값을 측정하여 백분율로 환산하였다. 도 4 의 실험 결과에서 보여지는 바와 같이, 밀 펩톤과 완두콩 펩톤을 처리한 경우에 모든 처리 농도에서 FGF-1 (Fetal Growth Factor-1)으로 처리한 양성대조군에 비해 높은 세포증식촉진 효과를 나타내었다. 따라서, 식물성 펩톤이 섬유아세포에서도 세포 증식을 촉진함을 확인할 수 있었다. 실시예 6: 식물성 펩톤의 섬유아세포의 콜라겐 합성 촉진효과 섬유아세포의 콜라겐 생합성 촉진은 피부에 있어 주름을 방지하고 완화하는 주요 지표이다. 주름은 통상적으로 콜라겐의 생합성이 감소하고 만들어진 콜라겐이 분해되면서 발생하는 것으로 알려져 있다. 따라서 진피층에 존재하는 섬유아세포의 콜라겐 합성이 촉진되면 주름억제는 물론 생성된 주름도 개선될 수 있다.
사람의 정상 섬유 아세포 (Human normal fibroblast, 태평양)를 DMEM 배지가 들어 있는 6-웰 마이크로 플레이트에 접종시키고 (2 X 105 세포 /웰) 5% 농도의 C02 배양기에서 37°C로 24 시간 배양하였다. 24 시간 후, 각 웰에서 배지를 제거한 후, 양성대조군으로서 레티노산 (RA, Retinoic acid) 포함 배지, 실험군으로서 1, 3, 10% 완두콩 펩톤, 또는 1, 3, 5% 밀 펩톤 포함 배지, 음성대조군으로서 무혈청 배지로 처리하고, 24 시간 동안 다시 배양하였다. 24 시간 후, 세포 배지를 수집하여 샘플을 제조하였다. 콜라겐 합성량은 콜라겐 측정 키트 (Procollagen Type I C-peptide EIA kit; MK101; Takara, Kyoto, Japan)를 이용하여 프로콜라겐 타입 I C-펩타이드 (Procollagen Type I C-peptide: PICP)의 양을 측정하였다. 실험은 키트 설명서에 기재된 방법에 따라 수행하였다. 측정된 표준치는 평균 士 표준편차의 형태로 표시하였고, SPSS/PC+ 프로그램을 이용하여 t-test 로 유의성을 검정하였다. 실험 결과는 도 5에 나타내었다. 도 5 의 결과로부터 알 수 있는 바와 같이, 식물성 펩톤 (밀 펩톤 또는 완두콩 펩톤)은 양성대조군인 레티노산 (RA, Retinoic Acid)을 사용한 경우와 대등한 정도로 섬유아세포의 콜라겐 합성을 증가시켰다. 실시예 7: 식물성 펩톤의 콜라겐 분해효소에 대한 억제효과
콜라겐은 진피층을 구성하는 구조단백질로 그 양이 줄어들게 되면 주름이 생성된다. 반면에 만들어진 콜라겐이 잘 유지되면 주름발생이 억제될 수 있다. 따라서 콜라겐 분해호소의 활성을 억제하는 것은 항노화의 주요 생리학적인 지표이다.
사람의 정상 섬유아세포 (Human normal fibroblast, 태평양)를 DMEM 배지가 들어 있는 6-웰 마이크로 플레이트에 접종시키고 (2 X 105 세포 /웰), 5% 농도의 C02 배양기에 37°C로 24 시간 배양하였다. 24 시간 후, 각 웰에서 배지를 제거한 후, 농도별로 시료를 처리하고, 24 시간 동안 다시 배양하였다. 24 시간 후, 세포배지를 수집하여 샘플을 제조하였다. 콜라겐을 분해하는 효소인 콜라게나제 (collagenase)의 활성정도를 측정하는 방법으로 콜라게나제에 대한 항체를 이용하였다. 콜라게나제 활성을 유도하는 물질로 PMA(phorbol myristate acetate)를 처리하였다. 실험은 상업적으로 판매되는 키트에 제조자의 지시서에 기재된 방법에 따라 수행하였다. 타입 I 콜라게나제 분석 키트 (Type I collagenase assay kit, Amersham Biosciences, RPN2629)를 이용하였으며, ELISA 판독기로 흡광도를 측정하였다. 측정된 표준치는 평균 士 표준편차의 형태로 표시하였고, SPSS/PC+ 프로그램을 이용하여 t-test 로 유의성을 검정하였다. 실험 결과는 도 6 에 나타내었다. 도 6 의 결과에서 양성대조군으로 TNF (Tumor Necrosis Factor)- α을 사용하였다. 밀 펩톤과 완두콩 펩톤은 1% 이상의 처리농도에서 콜라겐 분해효소에 대한 활성억제 효과를 나타내었다. 실시예 8: 식물성 펩톤 함유 줄기세포배양액을 이용한 피부줄기세포의 활성화 측정
식물성 펩톤이 첨가된 무혈청배지에서 배양한 줄기세포 배양액을 피부줄기세포에 처리하여 피부줄기세포의 활성화 정도를 측정하였다. 본 실시예에서 식물성 펩톤이 첨가된 무혈청 배지에서 배양한 줄기세포 배양액은 다음의 과정을 통해 얻었다. 5 % C02 및 37 °C 하에서 15%의 FBS 와 \°k 항생제가 포함된 DMEM 배지를 이용하여 배양한 인간 탯즐혈액유래 중간엽 줄기세포 3 X 105 개를 6 웰 플레이트에 접종하여 안착시킨 후, 혈청을 제거한 배양액으로 1 회 세척한 후, 1% 식물성 펩톤 (완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤)이 첨가된 무혈청 DMEM 배지에서 20 일 간 배양하였다. 이 배양액을 회수하여 0.2 ym 마이크로 시린지 필터를 이용하여 여과하여 세포를 제거하여 얻은 배양액을 사용하였다.
본 실시예에서 사용한 피부줄기세포는 대한피부연구학회지 (2006; 13(1): 1-4)에 개재된 표피성체줄기세포 분리방법에 따라 분리하였다. 즉, 피부줄기세포 (ESC)는 피부조직 또는 피부에서 수득한 세포들로부터 제 4 형 콜라겐에 부착성을 갖는 세포를 분리하여 얻었다. 이렇게 얻은 피부줄기세포를 3 X 105 개로 6 웰 플레이트에 접종하여 안착시킨 후, 혈청을 제거한 배양액으로 1 회 세척한 다음, 통상적인 양의 혈청이 포함된 배지인 정상군 조건 (CM), 무혈청조건 (SF), 1% 식물성 펩톤 (완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤)이 첨가된 무혈청조건 (P/SF), 1% 식물성 펩톤 (완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤)이 첨가된 무혈청 배지에서 인간 랫줄혈액유래 중간엽줄기세포를 배양한 후 줄기세포를 제거한 배양액 (P/SF/MSC)의 실험군으로 나누어 배양하였다. 72 시간 배양한 후에, MTT 분석을 행하고, 세포배양액을 수집하여 CCK 분석법 (Cell viability 측정방법)도 시행하였다. 도 7 의 결과에서 보여지는 바와 같이, 정상군 (CM)을 100 %로 환산하였을 시, 무혈청조건이 처리된 실험군 (SF)에 비해, 식물성 펩톤이 첨가된 무혈청조건이 처리된 실험군 (P/SF) 및 식물성 펩톤이 첨가된 무혈청조건으로 배양한 즐기세포의 배양액을 처리한 실험군 (P/SF/MSC)에서 유의성 있게 피부줄기세포의 생존율이 증가하는 것을 확인할 수 있었다. 실시예 9: 식물성 펩톤을 함유한 피부상태 개선용 외용조성물 제조 식물성 펩톤을 일반적으로 화장품이나 연고 같은 피부외용제제로 만들 경우에 이용하는 Oil in Water 타입의 에멀젼제형으로 시험제품을 만들었다. 각 시험제품의 조성은 표 4 와 같았다. 수상인 정제수, 트리에탄올 아민 및 프로필렌글리콜을 70°C로 가열하여 용해시킨 다음 유상인 지방산, 유성성분, 유화제 및 방부제를 70°C로 가열하여 용해한 액을 첨가하여 유화시켰다. 유화가 완료된 후 상기 용액을 45°C로 넁각시키고 식물성 펩톤을 0.1% 첨가하였다.
[표 4]
Figure imgf000028_0001
실시예 10: 식물성 펩톤 함유 배지에서 줄기세포를 배양하여 얻은 배양액을 함유하는 피부상태 개선용 외용조성물 제조
1% 식물성 펩톤 (완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤)이 첨가된 무혈청배지에서 즐기세포 (인간탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포, CB-MSCs)를 배양한 후 줄기세포를 제거하여 얻은 배양액을 포함하는 크림의 조성은 표 4 와 같다. 실시예 9 에서와 같은 방법으로 크림 조성물을 쪠조하였다. 마지막 단계에서 식물성 펩톤이 첨가된 무혈청 배지에서 배양한 줄기세포의 배양액 및 향을 첨가하여 분산시킨 다음 30°C로 넁각하였다. 실시예 11: 식물성 펩톤 또는 식물성 펩톤 함유 배지에서 배양된 줄기세포의 배양액을 포함하는 조성물의 여드름 개선 효과
1% 식물성 펩톤을 함유한 배지에서 줄기세포 (인간랫줄혈액 유래 중간엽줄기세포, CB-MSCs)를 배양한 후 줄기세포를 제거한 배양액과 식물성 펩톤 (밀 펩톤 또는 완두콩 펩톤) 자체의 염증성 피부개선 효과를 임상 시험을 통하여 측정하였다. 줄기세포배양액 또는 밀 펩톤 또는 완두콩 펩톤을 각각 0.1% 함유한 크림을 여드름 피부 피검자의 얼굴 왼쪽에 도포하였다. 다른 쪽에는 세포배양액이 결여되어 있는 크림 또는 밀 펩톤 /완두콩 펩톤이 포함되지 않은 크림을 대조군으로 각각 도포하였다. 1 개월 동안 여드름의 개선정도를 면포의 개수로 확인하였다. 그 결과 줄기세포배양액이 포함된 크림과 밀 펩톤 및 완두콩 펩톤이 포함된 크림을 도포한 왼쪽 얼굴에서만 증세가 호전되는 것을 확인할 수 있었다.
여드름 개선의 측정은 온도 24-26°C, 습도 38-40%로 일정하게 유지되는 조건에서 여드름을 가진 환자 (40 명)를 대상으로 표 4 의 크림 4 종류 (시험군 1, 2, 3, 4)와 비교제조예 (대조군 1 및 2)의 크림을 각각 여드름 환자의 한쪽 얼굴에 1 일 /2 회 1 개월 동안 사용하게 한 후, 여드름 개선 효과를 측정하였다. 측정은 눈 밑 2 센티미터 아랫 쪽에 가상의 3 제곱 센티미터의 사각형을 그리고 그 안에 들어가는 여드름의 개수를 세서 측정하였다. 시험결과는 하기 표 5에 나타내었다. [표 5]
Figure imgf000030_0001
상기 표 5 에서 확인할 수 있듯이, 본 발명에 따른 크림이 대조군 1과 2의 크림에 비해 여드름 개선 효과가 있음을 확인하였다. 실시예 12: 식물성 펩톤 또는 식물성 펩톤 함유 배지에서 배양된 줄기세포 배양액을 포함하는 조성물의 피부 염증 개선효과
1% 식물성 펩톤을 함유한 배지에서 줄기세포 (인간탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포, CB-MSCs)를 배양한 후 줄기세포를 제거한 배양액과 펩톤 (밀 펩톤 또는 완두콩 펩톤)자체의 아토피나 건선 등과 같은 만성 염증성 피부 개선 효과를 임상 시험을 통하여 측정하였다. 세포배양액 또는 밀 펩톤 또는 완두콩 템톤을 각각 0.1% 함유한 크림을 여드름 피부 피검자의 얼굴 왼쪽에 도포하였다. 다른 쪽에는 세포배양액 또는 밀 펩톤 /완두콩 펩톤이 전혀 포함되지 않은 크림을 대조군으로 각각 도포하였다. 1 개월 동안 염증성 피부질환의 대표적인 아토피의 개선정도를 홍반의 진정 정도로 수치화 하여 확인하였다. 그 결과 줄기세포배양액이 포함된 크림과 밀 펩톤 또는 완두콩 펩톤이 포함된 크림을 사용한 그룹에서만 증세가 호전되는 것을 확인할 수 있 다.
아토피 개선의 측정은 온도 24-26 °C, 습도 38-40%로 일정하게 유지되는 조건에서 아토피를 가진 환자 (각 시험당 60 명)를 대상으로 표 4 의 크림 4 종류 (시험군 1, 2, 3, 4)와 비교제조예 (대조군 1 및 2)의 크림을 각각 1 개월 동안 전신에 사용하게 한 후, 아토피 개선 효과를 측정하였다. 측정은 팔의 접히는 부위를 중심으로 6 곳을 임의로 정해 미놀타의 CR-300 색차계를 사용하여 홍반이 진정된 정도를 측정하고 설문을 통하여 가려움 정도를 측정한 후 두 값을 보정하여 최종 피부개선 정도를 수치화 하였다.
판정기준은 전혀 변화가 없는 경우를 0, 개선정도를 1 내지 5 로 정하여 상대적인 값을 비교하였다. 높은 값 일수록 흥반과 가려움이 개선된 경우이다. 악화된 경우는 -1 에서 -5까지 표기하였다. 시험결과는 하기 표 6에 나타내었다.
[표 6]
Figure imgf000031_0001
시 ¾¾¾ s '
(대조군 2) (시 ¾군 4》 피부개선 ¾도 '2.1 t 0. 2.Z i 0,4 0.2
실시예 13: 식물성 펩톤 또는 식물성 펩톤 함유 배지에서 배양된 줄기세포 배양액 함유 피부개선용 외용조성물의 항노화 효과
인체에 있어 항노화 효과는 여러 가지 기준으로 판정할 수 있으나 피부에 나타나는 주름은 손쉽게 측정할 수 있는 지표이다. 식물성 펩톤 또는 식물성 펩톤이 첨가된 무혈청배지에서 배양한 줄기세포 (인간탯줄혈액 유래 중간엽즐기세포, CB-MSCs) 배양액의 피부주름 개선효과를 측정하였다. 표 4 에서 제조한 크림을 사용하였다. 피부 주름개선 효과는 피부 탄력 변화의 측정을 통해 평가하였다. 피부 탄력의 측정은 온도 24-26°C, 습도 38-40%로 일정하게 유지되는 조건에서 건강한 여성 20 명 (25 내지 35 세 )을 대상으로 표 4 의 크림 4 종류와 비교 제조예의 크림을 각각 피검자의 얼굴에 1 일 /2 회 3 개월 동안 사용하게 한 후, Cutometer SEM 474(Courage+Khazaka, Cologne, 독일)를 이용하여 주름개선 효과를 측정하였으며, 판정기준은 피부 탄력이 없는 경우를 0, 많은 경우를 5 로 하여 상대적인 값을 비교하였다. 시험결과는 하기 표 7에 나타내었다.
[표 7]
Figure imgf000032_0001
Figure imgf000032_0002
상기 표 7 에서 확인할 수 있듯이, 본 발명에 따른 펩톤 함유 크림 (시험군 1, 2, 3, 4)이 비교제조예 (대조군 1 및 2)의 크림에 비해 주름개선 효과가 훨씬 우수함을 알 수 있었다. 즉, 펩톤 (밀 펩톤 또는 완두콩 펩톤) 함유 배지에서 배양한 줄기세포의 배양액과 펩톤 (밀 펩톤 또는 완두콩 템톤) 자체만을 포함한 크림 모두 주름개선 효과가 있었다. 실시예 14: 경구투여에 의한 항노화 효과
노화는 모든 생물체에 시간과 함께 나타나는 현상으로 전조직과 기관에 나타난다. 피부는 동물의 경우 개체의 최외곽을 구성하는 가장 면적이 넓은 기관으로 피부에 나타나는 주름은 노화 정도를 가장 쉽게 판별할 수 있는 지표이다. 특히 자외선을 조사할 경우 인위적으로 노화과정을 촉진할 수 있기 때문에 동물시험에서 자외선을 ¾ 후 시험물질을 경구나 경피로 투여하여 그 효과를 측정함으로써 그 물질이 실제 항노화 효과가 있는 지를 확인할 수 있다. 본 발명의 조성물이 광노화 증상에 미치는 영향을 조사하고자 무모생쥐 (hairless mouse)를 동물모델로 선정하여 실험하였다. 6-7 주령의 암컷 무모생쥐 (hairless mouse) (Skh: HR-1)를 그룹 당 8 마리씩 정상군, UV 대조군, UV/펩톤 투여군, UV/줄기세포 배양액 투여군으로 나누어 실험기간 동안 사육하였다. 정상군과 UV 대조군은 0.5 의 생리식염수를 경구투여하였고, UV/펩톤 투여군, UV/줄기세포 배양액 투여군은 고형분 기준으로 체중 Kg 당 500mg 의 식물성 펩톤 (완두콩 펩톤 또는 밀 펩톤) 또는 줄기세포 (인간탯줄혈액 유래 중간엽 줄기세포) 배양액을 0.5 식염수에 섞어 액체 투여용 주사기를 이용하여 경구 투여하였다.
투여기간은 총 5 주로 주 5 일 동일한 시간에 투여하였다. 경구투여 후 2 주부터 5 주까지 UV 대조군, UV/펩톤 투여군 및 UV/줄기세포 배양액 투여군에 주 3 회 태양광과 유사하게 UV 를 조사하였다. 이때 실험기간 중 총 UV 조사량이 600 mJ/cm2 이 되도록 하였다. 항노화 효과의 주 현상으로 주름개선 효과의 객관적 판정을 위하여 부검 전 무모생쥐 (hairless mouse)의 등쪽에서 실리콘 폴리머를 이용하여 피부주형 (replica)을 채취하였고 마찬가지로 5 주 후에 각 샘플 처리군으로부터 피부주형을 채취하여 항노화 효과 즉 주름개선 효과를 비교하였다. 하기 표 8 에서 보여지는 바와 같이, 주름개선정도를 나타내는 Rl, R2, R3, R4, R5 모두, 펩톤 및 펩톤 포함 무혈청 배지를 이용한 즐기세포 배양액을 투여한 무모생쥐 (hairless mouse)에서 투여하지 않은 UV/대조군에 비해 크게 감소한 것을 관찰하였다. 이 결과를 통해 본 발명의 조성물이 피부주름을 개선하는 효과를 가짐을 알 수 있었다. 즉, 경구투여시, 펩톤 자체뿐만 아니라, 펩톤 포함 무혈청배지를 이용해 배양한 줄기세포 배양액도 모두 주름개선 효과가 나타나 항노화 효과가 있음을 확인할 수 있었다 (표 8). [표 8]
Figure imgf000034_0001
Rl value: Skin roughness, R2 value: Maximum roughness , R3 value: Average roughness , R4 value: Smoothness depth, R5 value: Arithmetic average roughness (International Journal of Cosmetic Science, 2005 Jun;27(3): 155-60). 실시예 15: 식물성 펩톤 및 식물성 펩톤 함유 무혈청 배지에서 줄기세포로부터 분화된 멜라닌세포의 배양액의 백반증 개선효과
인간 탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포 (CB-MSCs)를 식물성 펩톤이 포함된 배지에서 멜라닌세포로 분화시켜서 얻은 세포의 배양액과 식물성 펩톤 (밀 펩톤 또는 완두콩 펩톤) 자체의 백반증 개선효과를 임상 시험을 통하여 측정하였다.
인간 탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포 (CB-MSCs)를 멜라닌세포로 분화시켜서 얻은 세포 배양액은 다음의 방법으로 제조하였다. 정상적인 조건에서 배양한 줄기세포를 3 X 105 개로 6 웰 플레이트에 접종하여 안착시켰다. 다음 날, 멜라닌세포 배양배지 M254 배지에 줄기세포인자 (Stem Cell Factor; SCF), 엔도샐린 -3 (Endothel in-3; ET-3), 포스콜린 (Forskolin; FK)의 분화유도인자를 첨가한 후 30 일 간 배양하였다. 30 일 경과 후, 중간엽줄기세포의 세포의 모양이 멜라닌세포 -유사 (melanin cell¬ like) 모양으로 분화하였음을 확인하였고, Real-time PCR 방법을 통해 멜라닌세포 특이적 유전자인 MITF-M (Melanocyte-specific MITF isoform) 유전자 발현이 증가하였음을 확인하였다. 이 배양액을 회수하여 0.2 ym 마이크로 시린지 필터를 이용하여 여과하여 세포를 제거한 배양액올 사용하였다.
중간엽줄기세포로부터 분화된 멜라닌세포의 세포배양액 또는 밀펩톤 또는 완두콩펩톤을 각각 0.1% 함유한 크림을 백반증 피검자의 한 손에 도포하였다. 다른 한 손에는 중간엽줄기세포로부터 분화된 멜라닌세포의 세포배양액을 포함하지 않는 크림 또는 밀펩톤 /완두콩 펩톤이 포함되지 않은 크림을 도포하였다. 3 개월 동안 전체적으로 색소가 재형성되는 정도를 2 주 간격으로 관찰하였다. 그 결과 중간엽줄기세포로부터 분화된 멜라닌세포의 세포배양액이 포함된 크림과 밀펩톤 또는 완두콩펩톤이 포함된 크림을 도포한 손에서 3 개월 경과 후 백반증의 증세가 호전되는 것올 확인할 수 있었다.
백반증 개선의 측정은 온도 24-26°C, 습도 38-40%로 일정하게 유지되는 조건에서 백반증을 가진 환자 (40 명)를 대상으로 표 4 의 크림
4 종류 (시험군 1, 2, 3, 4)와 비교 제조예의 크림을 각각 백반증 환자의 한쪽 손에 1 일 /2 회 6 개월 동안 사용하게 한 후, 백반증 개선 효과를 측정하였다. 판정기준은 전혀 변화가 없는 경우를 0, 변화가 있는 경우를
5로 하여 상대적인 값을 비교하였다. 시험결과는 하기 표 9에 나타내었다.
[표 9]
¾튼이 ¾유도 |자 ¾은 ¾두콩 론이 ¾유된 ¾ ¾튼0|함유 S 무¾¾배지에서 배양된 우¾¾배지 KH¾S ^¾¾B|j지에서 배¾§ 시 ¾¾옥
¾기세포 배? f엑 ¾유 크¾ 중기세포 배¾< 항유 크¾ ¾기세포 배 ! 함유
(대 2군 1) (MS군 1> 3¾ (시 ¾군^
^반중 개선정도 0.0 i 0.0 1 3.5 ± 03 3.S ± 0.2
¾톤이 항유도 1지 완두콩 ¾론 a «亡 시¾항옥 3¾ 항¾ 크 ¾ 크 ¾
(대조군 ¾ (시 ¾군3) {시험군 4.) 백반증 개선정도 0.0 ± 0.0 2.3士 0.4 3.2 + 0.2 상기 표 9 에서 확인할 수 있듯이, 본 발명에 따른 크림이 대조군 1과 2의 크림에 비해 백반증 개선 효과가 있음을 알 수 있었다. 실시예 16: 무모 생쥐의 경피에 존재하는 피부줄기세포에 대한 효능 평가
실시예 14 에서와 같이, 총 5 주간 주 5 일 동일한 시간에 밀 펩톤, 완두콩 펩톤, 밀 펩톤 함유 무혈청 배지를 이용한 줄기세포 (인간탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포, CB-MSCs) 배양액, 완두콩 펩톤 함유 무혈청배지를 이용한 줄기세포 (인간탯줄혈액 유래 중간엽즐기세포, CB-MSCs) 배양액을 무모생쥐에 경구 투여한 후, 경피로부터 피부줄기세포를 분리하였다. 피부줄기세포의 분리방법은 앞서 설명된 공지된 방법에 따라 행하였다. 분리된 피부줄기세포를 3 X 105개로 6 웰 플레이트에 접종하여 안착시킨 후, 혈청이 포함된 배지에서 48 시간 배양한 후, CCK 분석법 (cell viability 측정방법)를 이용하여 세포활성을 측정하였다.
[표 10]
Figure imgf000036_0001
상기 표 10 에 나타낸 바와 같이, UV/대조군에 비해 모두 줄기세포 증식 속도가 증가된 것을 관찰하였다. 이러한 결과는, 펩톤 또는 펩톤이 함유된 무혈청배지로 배양된 줄기세포배양액을 경구투여하였을 경우에도 성체줄기세포의 활성화에 효과가 있음을 의미한다 . 실시예 17: 급성경구독성시험
밀 펩톤, 완두콩 펩톤, 밀 펩톤함유 무혈청배지로 배양한 줄기세포 (인간탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포, CB-MSCs) 배양액 및 완두콩 펩톤함유 무혈청배지로 배양한 줄기세포 (인간랫줄혈액 유래 중간엽줄기세포, CB-MSCs) 배양액을 함유한 모든 실험군에서 경피나 경구로 투여하였을 경우에 줄기세포활성화 효과는 물론 항노화 효과가 나타났다. 따라서 이러한 소재들을 사용하여 건강식품으로 상업화가 가능하다. 식품으로 사용되기 위해 본 소재들은 즐기세포배양액만 제외하고 이미 허가 되어 있으나 혹시 있을 수 있는 부작용을 방지하기 위하여 동물을 이용하여 급성 경구독성 시험을 실시하였다. 밀 펩톤, 완두콩 펩톤, 밀 펩톤 함유 무혈청배지로 배양한 줄기세포 배양액, 완두콩 펩톤 함유 무혈청 배지로 배양한 줄기세포 배양액 등이 식품에도 안전하게 적용될 수 있는가를 확인하기 위해 급성 경구독성시험을 실시하였다. 실험동물로서 5 내지 6 주령된 SPF SD 계 랫트 20 마리를 사용하여 하기와 같은 조건에서 급성독성시험을 실시하였다.
온도 및 습도조건: 온도 22 ± 2 °C. 상대습도 50 士 10 %
-명암 사이클: 형광등조명 (08시 점등, 20시 소등)
.조도 : 200 내지 300 Lux
·자외선 처리된 음용수는 자유섭취 시킴
-시험물질을 멸균증류수에 희석하여 투여시료를 제조하여 대조구로서 멸균 증류수를 사용하여 동량 투입
투여 당일은 4 시간까지 매 시간마다 일반상태를 관찰하고, 투여 다음날부터 14 일 까지는 매일 1 회씩 일반상태의 변화, 중독증상, 운동성, 외관, 자율신경 및 사망동물의 유무를 주의 깊게 관찰하고 여러 가지 병리 해부학적인 검증을 거쳐 독성 유무를 판단하였다. 밀펩톤, 완두콩펩톤, 밀펩톤 함유 무혈청배지로 배양한 즐기세포 배양액, 완두콩 펩톤 무혈청배지로 배양한 줄기세포 배양액의 LD50 이 각각 24500, 24300, 24400, 24600mg/kg B.W.이었으며, 독성은 없는 것으로 판단되었다. 실시예 18: 건강식품조성물 제조
실시예 17 에서 아무런 독성이 나타나지 않았고 이전 실시예에서 항노화 효과가 나타났기 때문에 이들 소재를 이용하여 건강식품으로 개발하였다. 하기 표 11 에 나타낸 바와 같이 건강식품의 조성물은 다음 각각의 제제예와 같은 조성으로 통상의 액제 제조방법으로 제조하였다. 최종 부피는 각 액제는 양이 100 ml 이다. 본 제제 예는 액체뿐만 아니라 정제, 산제 과립제 등으로 통상의 식품형태로 사용되는 여러 가지 제재의 제조방법으로 제조가 가능하다.
Figure imgf000038_0001
실시예 19: 에너지 상승효과
실시예 16 에 사용된 밀 펩톤 (시험군 1), 완두콩 펩톤 (시험군 2), 밀 펩톤 함유 무혈청배지로 배양한 즐기세포 (인간탯줄혈액 유래 중간엽즐기세포, CB-MSCs) 배양액 (시험군 3), 완두콩 함유 무혈청배지로 배양한 줄기세포 (인간랫줄혈액 유래 중간엽줄기세포, CB-MSCs) 배양액 (시험군 4)를 이용하여 무모 생쥐에서 에너지 상승효과를 관찰하였다. 총 4 주간, 주 5 일 동일한 시간에 상기 시험군의 조성물들을 무모 생쥐에 구강으로 삽입하고 5 주 후 희생시켜 장기로부터 SP(splenocytes), PBMC( peripheral blood mononuclear cell), LN( lymph node)와 같은 면역세포들을 분리한 후 시험군이 ATP 합성에 미치는 영향을 대조군과 비교하여 관찰하였다. 각각의 세포들을 PBS 로 2 번 세척한 후 용해물 (lysate)를 얻은 다음, 0.6 M 의 과염소산 (perchloric acid)를 이용하여 단백질 제거시켜 원심분리한다. 단백질 침전물 (Protein pellet)이 흔입되지 않게 상등액만올 얻어서 K0H 로 중화한 다음, 칼륨 -과염소산염 (K- perchlorate)를 제거하기 위해서 가볍게 원심분리하였다. 그 결과 얻어진 상등액을 ATP 합성에 사용하였다. ATP 는 글루코오스 (glucose), 핵소키나아제 (hexokinase), glucose— 6_phosphate dehydrogenase 가 있는 상태에서 NADP+의 환원에 의해 측정하였다. Oligomysin 은 ATPase 활성에 대한 억제자로 사용하였다. 결과는 하기 표 12에서 나타낸 바와 같다.
[표 12]
Figure imgf000039_0001
상기 표 12 의 결과에 의해 시험군 1, 2, 3, 4 에서 면역세포들의 에너지 상승 효과가 있음을 확인할 수 있었다. 이상의 실험결과를 요약하면, 줄기세포 배양시 식물성 펩톤의 사용하여 동물성 혈청의 사용올 줄이거나 대체할 수 있음을 확인하였다. 또한, 식물성 펩톤이 즐기세포 촉진제로서의 역할도 할 수 있음을 확인하였다. 또한, 식물성 펩톤이 함유된 배지에서 줄기세포를 배양한 후 얻어지는 배양액을 경피 또는 경구투여하는 경우 피부 상태를 개선할 수 있음을 확인하였다. 이상으로 본 발명의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 이러한 구체적인 기술은 단지 바람직한 구현 예일 뿐이며, 이에 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백하다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항과 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.

Claims

【청구의 범위】
【청구항 1】
식물성 펩톤을 유효성분으로 포함하는 무혈정 (serum-free) 줄기세포 배양용 조성물.
【청구항 2]
제 1 항에 있어서, 상기 식물성 펩톤은 식물로부터 유래된 단백질을 산처리, 염기처리, 효소처리, 고압처리, 열처리 또는 물리적 처리에 의해 분해시켜 얻은 산물인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 3]
제 1 항에 있어서, 상기 식물성 펩톤은 대두 펩톤 (soy peptone), 밀 펩톤 (wheat peptone) , 잠두 펩톤 (broadbean peptone) , 감자 펩론 (potato peptone), 완두콩 펩톤 (pea peptone), 파파익 대두 펩톤 (Papaic soy peptone) 또는 루핀 펩톤 (lupin peptone)인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 4】
식물성 펩톤을 유효성분으로 포함하는 피부 상태 개선용 조성물.
【청구항 5】
제 4 항에 있어서, 상기 식물성 펩톤은 식물로부터 유래된 단백질을 산처리, 염기처리, 효소처리, 열처리 또는 고압처리에 의해 분해시킨 산물인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 6】
제 4 항에 있어서, 상기 식물성 펩톤은 대두 펩톤, 밀 펩톤, 잠두 펩톤, 감자 펩톤, 완두콩 펩톤, 파파익 대두 펩톤 또는 루핀 펩톤인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 7】 제 4 항에 있어서, 상기 피부 상태의 개선은 염증성 피부질환의 완화, 피부 주름의 개선, 피부노화 억제, 피부탄력의 개선, 백반증의 개선, 상처 재생 또는 피부 재생인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 8】
제 7 항에 있어서, 상기 염증성 피부질환은 아토피성 피부염, 피부습진 (eczema), 여드름, 또는 건선인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 9】
제 4 항에 있어서, 상기 조성물은 기능성 식품 조성물인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 10]
제 9 항에 있어서, 상기 기능성 식품 조성물은 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 파우더, 바, 캔디, 아이스크림, 오일, 및 분말 유탁액 스프레이로 이루어진 군으로부터 선택되는 제형을 갖는 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 11]
제 4 항에 있어서, 상기 조성물은 화장료 조성물인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 12】
제 11 항에 있어서, 상기 화장료 조성물은 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 로션, 샴푸, 파우더, 비누, 계면활성제 함유 클린징, 오일, 분말 파운데이션, 유탁액 파운데이션, 왁스 파운데이션 및 스프레이로 이루어진 군으로부터 선택되는 형태인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 13】 제 4 항에 있어서, 상기 식물성 펩톤은 줄기세포의 증식 촉진 또는 활성화 작용을 하는 을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 14】
제 13 항에 있어서, 상기 줄기세포는 피부에 존재하는 성체줄기세포인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 15】
제 4 항에 있어서, 상기 식물성 펩톤은 전체 조성물에 대해 0.01-30 중량 %로 함유되어 있는 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 16]
식물성 펩톤을 포함하는 무혈정 (serum free) 배지에 줄기세포를 배양한 후 배양된 줄기세포를 제거한 배양액을 유효성분으로 포함하는 피부상태 개선용 조성물.
【청구항 17]
제 16 항에 있어서, 상기 식물성 펩톤은 식물로부터 유래된 단백질을 산처리, 염기처리, 효소처리, 열처리, 고압처리 또는 물리적 처리에 의해 분해시킨 산물인 것을 특징으로 하는 피부 상태 개선용 조성물.
【청구항 18]
제 16 항에 있어서, 상기 식물성 펩톤은 대두 펩톤, 밀 펩톤, 잠두 펩톤, 감자 펩톤, 완두콩 펩톤, 파파익 대두 펩톤 또는 루핀 펩톤인 것을 특징으로 하는 피부 상태 개선용 조성물.
【청구항 19]
제 16 항에 있어서, 상기 무혈청 배지에 포함되는 식물성 펩톤의 함유량은 0.1-10%(g/m«인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 20】 제 16 항에 있어서, 상기 즐기세포는 인간 탯줄혈액 유래 중간엽줄기세포, 피부유래 줄기세포 또는 지방유래 즐기세포인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 21】
제 16 항에 있어서, 상기 피부상태 개선은 염증성 피부질환의 완화, 피부 주름의 개선, 피부노화 억제, 피부탄력의 개선, 백반증의 개선, 상처 재생 또는 피부 재생인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 22】
제 21 항에 있어서, 상기 염증성 피부질환은 아토피성 피부염, 피부습진 (eczema), 여드름, 또는 건선인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 23]
제 16 항에 있어서, 상기 조성물은 기능성 식품 조성물인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 24]
제 23 항에 있어서, 상기 기능성 식품 조성물은 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 파우더, 바, 캔디, 아이스크림, 오일, 및 분말 유탁액 스프레이로 구성된 군으로부터 선택되는 형태를 갖는 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 25]
제 16 항에 있어서, 상기 조성물은 화장료 조성물인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 26]
제 25 항에 있어서, 상기 화장료 조성물은 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 로션, 샴푸, 파우더, 비누, 계면활성제 함유 클린징, 오일, 분말 파운데이션, 유탁액 파운데이션, 왁스 파운데이션 및 스프레이로 이루어진 군으로부터 선택되는 형태를 갖는 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 27]
제 16 항에 있어서, 상기 조성물은 줄기세포의 증식 촉진 또는 활성화 작용을 하는 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 28】
제 16 항에 있어서, 상기 즐기세포는 피부에 존재하는 성체 줄기세포인 것을 특징으로 하는 조성물.
【청구항 29]
제 16 항에 있어서, 상기 줄기세포배양액은 피부상태 개선용 조성물 전체에 대해 으 01-30중량 %로 함유되어 있는 것을 특징으로 하는 조성물.
PCT/KR2009/001415 2008-04-01 2009-03-19 식물성 펩톤을 포함하는 줄기세포 증식 촉진용 조성물 WO2009145419A2 (ko)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP09754884A EP2280064A4 (en) 2008-04-01 2009-03-19 COMPOSITION WITH PLANT PEPTONES TO PROMOTE STEM CELL PROLIFERATION
US12/936,055 US20110028404A1 (en) 2008-04-01 2009-03-19 Composition Comprising Vegetable Peptone for Promoting Stem Cell Proliferation

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR10-2008-0030237 2008-04-01
KR20080030237 2008-04-01

Publications (3)

Publication Number Publication Date
WO2009145419A2 true WO2009145419A2 (ko) 2009-12-03
WO2009145419A3 WO2009145419A3 (ko) 2010-01-21
WO2009145419A9 WO2009145419A9 (ko) 2010-03-11

Family

ID=41377697

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/KR2009/001415 WO2009145419A2 (ko) 2008-04-01 2009-03-19 식물성 펩톤을 포함하는 줄기세포 증식 촉진용 조성물

Country Status (4)

Country Link
US (1) US20110028404A1 (ko)
EP (1) EP2280064A4 (ko)
KR (2) KR101220239B1 (ko)
WO (1) WO2009145419A2 (ko)

Families Citing this family (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20170007668A1 (en) * 2010-08-23 2017-01-12 Kang Stem Biotech Co., Ltd Pharmaceutical Composition Comprising Stem Cells Treated with NOD2 Agonist or Culture Thereof for Prevention and Treatment of Immune Disorders and Inflammatory Diseases
US20120195969A1 (en) * 2010-09-29 2012-08-02 Aidan Research And Consulting, Llc Treatment of acne by conditioned media
KR101286152B1 (ko) * 2010-12-17 2013-07-15 계명대학교 산학협력단 대두 추출물을 유효성분으로 포함하는 백반증 또는 백모의 개선용 조성물
JP6038821B2 (ja) * 2011-03-15 2016-12-07 セル・アイディアズ・ピーティーワイ・リミテッド 医薬組成物およびその局所使用
KR101426402B1 (ko) * 2011-12-30 2014-08-08 박영준 줄기세포 증식능 및 분화능 개선용 조성물
ES2765880T3 (es) 2012-01-09 2020-06-11 Sanofi Pasteur Biologics Llc Purificación del virus del herpes
US11260123B2 (en) 2012-05-21 2022-03-01 Sanofi Pasteur Limited Herpesvirus compositions and related methods
KR101407355B1 (ko) * 2012-09-27 2014-06-17 (주)세포바이오 식물 유래의 재조합 인간 혈청 알부민, 지질 및 식물 단백질 가수분해물을 유효성분으로 포함하는 줄기세포 또는 일차배양세포의 동결보존용 조성물
KR20160062764A (ko) * 2013-10-16 2016-06-02 더 리전트 오브 더 유니버시티 오브 캘리포니아 세포 기능, 유전적 안정성 및 재생적 적용을 촉진하기 위한 뉴클레오시드 보충
EP2862852B1 (en) 2013-10-18 2018-07-04 Symrise AG Urea derivatives for the protection of stem cells
KR101672883B1 (ko) * 2013-12-18 2016-11-07 (주)제니트리 탈모방지 또는 발모촉진용 마이크로니들
KR101992922B1 (ko) * 2014-02-25 2019-06-25 주식회사 미래셀바이오 무항생제 무혈청 중간엽줄기세포배양액, 이의 제조방법 및 이를 이용한 화장료 조성물
KR101668743B1 (ko) * 2014-08-08 2016-10-25 (주)세포바이오 식물 유래 재조합 인간 혈청 알부민 및 식물성 펩타이드를 유효성분으로 함유하는 세포 보존용 조성물
KR101707622B1 (ko) * 2016-11-18 2017-02-20 주식회사 디지레이 중간엽 줄기세포 증식용 무혈청 배지 조성물
WO2018226051A2 (ko) 2017-06-07 2018-12-13 주식회사 엑소스템텍 인간줄기세포 유래 엑소좀을 포함하는 세포 배양용 무혈청 배지 조성물
KR102303467B1 (ko) * 2021-06-25 2021-09-23 인핸스비 주식회사 컬러 트리트먼트 및 샴푸용 조성물

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ATE175131T1 (de) * 1990-04-05 1999-01-15 Nurture Inc Verfahren zur beseitigung von ausgelaufendem öl
US5888522A (en) * 1996-08-23 1999-03-30 Skin Biology, Inc. Tissue protective and regenerative compositions
FR2761607A1 (fr) * 1997-04-04 1998-10-09 Boots Co Plc Composition dermatologique pour le traitement des symptomes de vieillissement de la peau
AUPQ877300A0 (en) * 2000-07-13 2000-08-03 Johnson & Johnson Pacific Pty Limited Topical treatment of skin
DK2287288T3 (da) * 2002-07-09 2013-01-07 Baxter Int Medium frit for animalsk protein til dyrkning af celler
US20040012449A1 (en) * 2002-07-16 2004-01-22 Illegems Paul F. Ring oscillator with frequency stabilization
JP4505707B2 (ja) * 2003-02-13 2010-07-21 株式会社白子 血管拡張による肩凝り又は冷え症治療用の医薬組成物
US20050032122A1 (en) * 2003-08-06 2005-02-10 Shiaw-Min Hwang Optimizing culture medium for CD34<+> hematopoietic cell expansion
US20050276766A1 (en) * 2003-10-01 2005-12-15 Skin Biology, Inc. Methods and compositions for increasing skin remodeling
WO2006042542A2 (en) * 2004-10-19 2006-04-27 Statens Serum Institut Production of tetanus, diphtheria, and pertussis toxins and toxoids using fermentation media containing no components of animal or soy origin

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
INTERNATIONAL JOURNAL OF COSMETIC SCIENCE, vol. 27, no. 3, June 2005 (2005-06-01), pages 155 - 60
KOREAN JOURNAL OF INVESTIGATIVE DERMATOLOGY, vol. 13, no. 1, 2006, pages 1 - 4
See also references of EP2280064A4

Also Published As

Publication number Publication date
WO2009145419A9 (ko) 2010-03-11
KR101220239B1 (ko) 2013-01-09
US20110028404A1 (en) 2011-02-03
WO2009145419A3 (ko) 2010-01-21
EP2280064A2 (en) 2011-02-02
KR101181911B1 (ko) 2012-09-11
EP2280064A4 (en) 2012-10-10
KR20110059832A (ko) 2011-06-07
KR20090105817A (ko) 2009-10-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101181911B1 (ko) 식물성 펩톤을 포함하는 줄기세포 증식 촉진용 조성물
JP5588474B2 (ja) コラーゲンおよび/またはヒアルロン酸産生促進用組成物
JP6846422B2 (ja) Palmaria palmataとジャスミンとの相乗作用的抽出物、それを含む組成物およびそれらの使用
JP6969067B2 (ja) 抗炎症剤、抗老化剤および美白剤
KR102121944B1 (ko) 해죽순 추출물을 포함하는 화장료 조성물
JP2017202990A (ja) 化粧料および飲食品組成物
JP2017114814A (ja) 化粧料
TW201201864A (en) Preparation derived from an in vitro culture of dedifferentiated non-elicited argan cells, their use for the treatment of skin aging, inflammation and healing, and method for obtaining them
KR20190091164A (ko) 인삼 발효 추출물을 포함하는 피부 상태 개선용 화장료 조성물
KR101825803B1 (ko) 마가목추출물의 발효물을 유효성분으로 함유하는 피부노화방지 및 피부주름개선용 화장료 조성물
JP5889546B2 (ja) ヘキソサミニダーゼ遊離抑制剤、幹細胞増殖因子mRNA発現上昇抑制剤、過酸化水素細胞障害の予防・改善剤及びグルタチオン産生促進剤
KR102350857B1 (ko) 국화 및 목련 유성온천수 추출물의 유산균 발효물을 함유하는 화장료 조성물 및 그 제조방법
JP2023171950A (ja) 抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤、並びに、化粧料
KR102154927B1 (ko) 클로로겐산, 페룰산, 레스베라트롤 및 스트렙토코쿠스 테르모필루스 발효물을 유효성분으로 함유하는 피부 개선용 기능성 화장료 조성물
KR102129430B1 (ko) 기능성 펩타이드와 콜라겐 발효물을 포함하는 피부 노화 완화용 화장료 조성물
KR101299658B1 (ko) 말태반을 포함하는 줄기세포 증식 촉진용 조성물
JP2012162487A (ja) 美白剤、抗老化剤及び皮膚化粧料
JP2011063527A (ja) カルニチン産生促進剤及び皮膚外用剤
KR101526303B1 (ko) 항노화용 화장료 조성물
KR20120027440A (ko) 천연추출물 또는 이로부터 단리된 화합물을 포함하는 동물세포 배양용 무혈청 배지 및 피부개선조성물
KR101245562B1 (ko) 천연추출물 또는 이로부터 단리된 화합물을 포함하는 동물세포 배양용 무혈청 배지 및 피부개선조성물
JP5155543B2 (ja) エンドセリン−1産生抑制剤、ヘキソサミニダーゼ遊離抑制剤、抗炎症用/美白用皮膚外用剤、エンドセリン−1の産生抑制方法及びヘキソサミニダーゼの遊離抑制方法
JP2015093848A (ja) 皮膚化粧料及び頭髪化粧料
KR101705811B1 (ko) 스클라레올(sclareol)을 포함하는 세포 배양 및 증식 촉진용 조성물
KR20190046246A (ko) 피부노화방지 및 피부주름개선용 메셈브리안테뭄속 아이스플랜트와 콜라겐의 혼합 발효물, 발효 용해물의 제조방법 및 이를 포함하는 화장료 조성물

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 09754884

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A2

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 12936055

Country of ref document: US

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2009754884

Country of ref document: EP