WO2000077234A2 - Procedimiento de produccion de licopeno - Google Patents

Procedimiento de produccion de licopeno Download PDF

Info

Publication number
WO2000077234A2
WO2000077234A2 PCT/ES2000/000202 ES0000202W WO0077234A2 WO 2000077234 A2 WO2000077234 A2 WO 2000077234A2 ES 0000202 W ES0000202 W ES 0000202W WO 0077234 A2 WO0077234 A2 WO 0077234A2
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
fermentation
trispora
lycopene
carotene
trisporic
Prior art date
Application number
PCT/ES2000/000202
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2000077234A3 (es
Inventor
Ana Teresa Marcos
Antonio Estrella De Castro
Bina Mehta
Bruno Diez Garcia
Javier Costa Perez
Carmelita Rodriguez Otero
Enrique Peiro Cezon
Enrique Cerda Olmedo
Alfonso J. Collados De La Vieja
Francisco Salto Maldonado
Manuel Esteban Morales
Ermanno Bernasconi
Original Assignee
Vitatene, S.A.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vitatene, S.A. filed Critical Vitatene, S.A.
Priority to JP2001503676A priority Critical patent/JP3904924B2/ja
Priority to DE60023693T priority patent/DE60023693T2/de
Priority to EP00935226A priority patent/EP1184464B1/en
Priority to AT00935226T priority patent/ATE308622T1/de
Priority to AU50792/00A priority patent/AU5079200A/en
Publication of WO2000077234A2 publication Critical patent/WO2000077234A2/es
Publication of WO2000077234A3 publication Critical patent/WO2000077234A3/es

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P23/00—Preparation of compounds containing a cyclohexene ring having an unsaturated side chain containing at least ten carbon atoms bound by conjugated double bonds, e.g. carotenes

Definitions

  • the present invention relates to a new method for obtaining carotenoids, especially lycopene, from submerged cultures of mucoral Blakeslea fungi.
  • a fermentation method is described that allows an increase in lycopene production, based on the addition of extracts enriched in trisporic acids.
  • the process is carried out from wild lines, or mutants thereof, in simple or mixed culture.
  • the addition of trisporic acids can be done at the beginning or during fermentation.
  • Carotenoids are abundant compounds in fruits and vegetables, and have been the subject of numerous studies due to their properties as antioxidants and as precursors of vitamin A. Lycopene, in addition to its antioxidant property, prevents cardiovascular diseases and some types of cancer such as prostate and gastrointestinal and acts in growth control (Stahl W. and Sies, H. 1996. Arch.
  • Carotenoids due to their yellow to red coloration are also used as a supplement and food coloring of margarine, butter, salad oils, soups, sauces (Ninet L. and Renaut J. 1979. In:
  • Lycopene is a carotenoid that is produced as an intermediary in the biosynthetic pathway of ⁇ -carotene and xanthophylls.
  • Lycopene preparations are obtained from tomato (PCT Patents WO 97/48287, EP 608027), or by fermentation of mucoral fungi such as Phycomyces, Blakeslea and Choanephora (Patents GB 1008469, US 3097146, US 3369974, JP 73016189, JP 73016190 and RU 2102416). Patents GB 1008469 and US 3097146 describe a method of fermentation of the Blakeslea t ⁇ spora gnome consisting of a culture medium whose pH is maintained above 7.0 and up to 9.5. After seven days of incubation, 9.97 mg of lycopene is obtained per 100 ml of medium.
  • JP 73016189 and JP 73016190 describe a method of fermentation with mucoral fungi such as Phycomyces, Blakeslea and Choanephora, in which tertiary amines are added to prevent the formation of ⁇ -carotene and promote the accumulation of lycopene.
  • tertiary amines are cited: hordenine, 2-dmetmetlamine ethanol; 3-d ⁇ met ⁇ lam ⁇ no-l-propanol; l-d ⁇ met ⁇ lam ⁇ no-2-propanol; 2- diet lammo-ethanol; 3-d ⁇ et ⁇ lam ⁇ no-l-propanol; 1-d ⁇ et ⁇ lammo-2-propanol; triethylamma; 2-d ⁇ soprop ⁇ lam ⁇ no-ethanol; 3- d ⁇ soprop ⁇ lammo-1-propanol; l-d ⁇ soprop ⁇ lam ⁇ no-2-propanol; 2-d ⁇ -n-prop ⁇ lam ⁇ no ethanol; 3-d ⁇ -n-prop ⁇ lammo 1-propanol; 1- d ⁇ -n-prop ⁇ lam ⁇ no-2-propanol; 2-d ⁇ met ⁇ lam ⁇ noet ⁇ lbenzene; 2 diet lammoethylbenzene;
  • RU 2102416 describes the addition of aminomethylpindins and tobacco residues to induce the accumulation of lycopene.
  • other heterocyclic nitrogen bases capable of blocking the synthesis of carotenoids at the level of lycopene, such as nicotine
  • Japanese patent JP 09313167 the use of other heterocyclic nitrogen bases capable of blocking the synthesis of carotenoids at the level of lycopene, such as nicotine
  • Japanese patent JP 09313167 imidazole, pyridma, morpholma, quinoline and some substituted derivatives has been described.
  • US Patent 3369974 Ninet L., Renaut J. 1979. In: Peppler HJ, Perl an D (eds.) Microbial Technology, 2 nd . Edn, vol. 1 Academic Press, NY, pp. 529-544).
  • Trispora Phycomyces blakesleanus and Mucor mucedo, since in addition to stimulating the production of ⁇ -carotene, they stimulate the formation of zygophores (van den Ende, H. 1968. J. Bacteriology 96: 1298-1303; Austin DJ., Bu'Lock JD., Gooday GW 1969. Nature 223: 1178-1179; Reschke, T. 1969. Tetrahedron Letters 29: 3435-3439; van den Ende H., Wiechmann AHCA., Reyngoud DJ., Hendricks T. 1970. J. Bacteriology 101: 423-428).
  • trisporic acids are oxidized and unsaturated derivatives of 1,1,3-trimethyl-2- (3-methyloctyl) cyclohexane. Such compounds can be classified as processed sesquiterpenes or degradation products of diterpenes or carotenoids.
  • the trisporic acids have been characterized as a mixture of three substances: acid trisporic A, B and C, also called ⁇ factor, ⁇ : and ⁇ 3 (owing to stimulate the synthesis of ⁇ -carotene)
  • the most abundant is the acid trisphoric C, which is present in 80% in mixed cultures of B. Trispora (Caglioti, L., Cainelli, G., Camerino, B. Mondelli, R., Prieto, A., Quilico, A., Salvatori, T, Selva, A. 1966, Tetrahedron Supplement 7: 175-187).
  • Trisporic acids are synthesized from ⁇ -carotene produced by both the (+) and the (-) lines. ⁇ -carotene is metabolized via retinal in 4- hydrotrisporol. This compound is metabolized by lineage
  • These two intermediaries are converted into trisphoric acid only after diffusing in the medium until the lineage of the opposite sex (Compiled by Gooday GW. And Carlile MJ. 1997. Mycologist 11: 26-30). That is, the lineage (-) produces the intermediates that are converted into trisphoric acid by the lineage (+) and vice versa, according to the previous scheme.
  • Trisporic acids obtained from mixed cultures of B. Trispora can be used to increase the production of ⁇ -carotene in cultures with independent strains. For example, the addition of 21.8 units of factor ⁇ increases by 422% the production of ⁇ -carotene from the lineage (-) and 71% production from the lineage (+). However, the stimulation of carotenogenesis per unit of ⁇ factor in lineage cultures (-) it was only 20-30% of the carotenogenesis produced in mixed cultures and with similar amounts of factor ⁇ . (Sutter RP. And Rafelson ME. 1968. J. Bacteriology 95: 426-432). The purification of trisporic acids can be carried out by various methods, such as those described by Sutter, R. 1970.
  • Lycopene production is based on suppressing the lycopene cyclase activity that converts lycopene into ⁇ -carotene, which results in low levels of ⁇ -carotene in fermentation.
  • Trisporic acids are synthesized from ⁇ -carotene, which are the sex hormones that induce carotenogenesis.
  • the object of the present invention aims to increase the production of carotenoids, especially lycopene, in a fermentation process with mucoral fungi ⁇ Blakeslea, Choanephora or Phycomyces), more specifically in B. Trispora
  • the invention consists in cultivating the fungus B. trispora in a fermentation medium and add partially purified trisporic acids (or ⁇ factor) (PTA) or either unpurified (NPTA) from any other source, such as from a production broth of ⁇ -carotene.
  • PTA partially purified trisporic acids
  • NPTA unpurified
  • the effect of trisporic acids on the fermentation of lycopene is based on the fact that these hormones are synthesized from ⁇ -carotene, a compound that does not form in the fermentation of lycopene. Under these conditions the fungus lacks a precursor for the synthesis of these hormones and carotenogenesis is not induced to its maximum extent.
  • the organisms used for fermentation can be isolated strains or a mixture of the (+) and (-) strains of mucoral fungi, more specifically B. trispora, or mutants of B. Trispora capable of accumulating lycopene.
  • Several mixtures of (+) and (-) line of the fungus can be used in the fermentation process of this invention. In the case of using strains of B.
  • trispora producing ⁇ -carotene compounds capable of blocking carotenogenesis at the lycopene level (for example tertiary amines and others mentioned above) are added. In the case of using mutants blocked in the biosynthesis of carotenoids from lycopene, the addition of tertiary amines and related compounds will not be necessary.
  • trisporic acids are added partially purified (PTA) or unpurified (NPTA) from any source thereof, such as from culture medium from a ⁇ -carotene fermentation , and in both cases at an approximate concentration of 0.35 mg / ml.
  • PTA partially purified
  • NPTA unpurified
  • the term NPTA corresponds to a broth of ⁇ -carotene.
  • the concentration in said broths of trisporic acids can be calculated according to the day of incubation (on the 4th day it will be between 350-400 ⁇ g / ml).
  • the process for the production of carotenoids from mucoral fungi, more specifically lycopene with selected strains or B mutants. trispora can be carried out in any culture medium that contains one or more carbon sources, one or more sources of nitrogen, mineral salts and thiamine.
  • Carbon sources can be added as simple or complex nutrients and include carbohydrates or fats, such as dextrins, starches, glucose, sucrose, fructose, animal or vegetable oils.
  • the culture medium must also carry an assimilable source of nitrogen, organic or inorganic, such as soybean meal, cornmeal, soluble distillates, yeast extract, cotton flour, peptone, casein, ammonium sulfate and others.
  • an assimilable source of nitrogen, organic or inorganic such as soybean meal, cornmeal, soluble distillates, yeast extract, cotton flour, peptone, casein, ammonium sulfate and others.
  • mineral salts that can be added to the culture medium are phosphates, sulfates, chlorides, sodium, potassium, ammonium, calcium, magnesium. Nutrient ratios are determined based on the growth needs of the microorganism and production levels. Fermentation is preferably carried out under aerobic conditions and in submerged culture.
  • the fermentation temperature may range between 20 and 32 ° C, although between 25 and 28 ° C is preferred.
  • trisporic acids can be carried out from a partially purified preparation or from any source thereof, such as culture medium from a fermentation of ⁇ -carotene of any mucoral fungus.
  • Lycopene is extracted using any described method of cell breakage that allows the intracellular content to be released, which is solubilized in any solvent in which it is soluble. Its concentration can be determined by spectrophotometric measurement, but it can be he prefers the use of liquid chromatography (HPLC), by any of the methods described in the literature.
  • mutants producing ⁇ -carotene ASA2 (+) and ASA25 (-). Lycopene mutant SB34 (-). The latter mutant also produces 25% of ⁇ -carotene (see table 1).
  • the choice of mutants is irrelevant from the point of view of the effect of increased carotene production due to trisporic acids per se. That is, the effect due to said compounds would be reproducible in any other analogous mutant strain, even if it had a lower basal lycopene production, which occurs with parental strains, for example.
  • the parental strains are deposited in a collection and are viable and accessible to the public.
  • An inoculum medium is prepared containing per liter: soybean meal, 23 g; cornmeal, 47 g; 0.5 g monopotassium phosphate; Thiamine hydrochloride, 0.002 g. Its initial pH is 6.3. The medium is distributed in 500 ml Erlenmeyer flasks at a rate of 67 or 100 ml. After sterilization, strains B are seeded from spore suspensions. trispora ASA2 (+) and B. Trispora ASA25 (-) in separate flasks and incubated at 25 ° C for 48 hours. The mutant strains B. trispora ASA2 (+) and B. trispora ASA25 (-) are obtained by mutation with NTG from wild B strains. trispora F208 (-) and F117 (+) deposit All of the Industrial Microorganisms Collection (VKM), located in Moscow, Russia, both strains being accessible to the public.
  • VKM Industrial Microorganisms Collection
  • a base fermentation medium is prepared containing per liter: soy flour, 44 g; cornmeal, 19 g; dibasic phosphate 0.55 g; thiamine hydrochloride, 0.002 g; 10% vegetable oil Its initial pH is adjusted to 7.5 with potassium hydroxide. The medium is distributed in 250 ml Erlenmeyer flasks at a rate of 20 ml. For the fermentation of ⁇ -carotene, flasks containing base medium with 10% of a mixed culture of the B strains are inoculated. trispora ASA2 (+) and B. trispora ASA25 (-).
  • a chemical agent is added to the base medium in order to block the biosynthetic pathway at the lycopene level, such as 2 ml / 1 pyridine.
  • This medium is inoculated with 10% of a mixed culture of the B lines. trispora ASA2 (+) and B. trispora ASA25 (-). All flasks are incubated at 25 ° C on an orbital shaker at 250 rpm. From the second day of fermentation, a sample is taken every 24 hours and the concentration of trisporic acids in ⁇ -carotene producing flasks and in lycopene producing flasks is determined.
  • the determination of the concentration of trisporic acids is carried out by extraction with a volume of chloroform after acidifying the sample to pH 2.
  • the organic fraction is extracted with a volume of a 4% sodium bicarbonate solution, the aqueous phase, which is acidified to extract it again with chloroform.
  • the chloroform is evaporated to dryness and the residue constituted by trisporic acids is dissolved in ethanol or Tris-sulfate buffer.
  • Trisporic acids are quantified by spectrophotometric absorbance measurement at 325 nm, assuming a coefficient of absorptivity of 70 ml x mg "1 x era " 1 (Sutter RP., Capage DA., Harrison TL., Keen WA. 1973. J. Bacteriology 114: 1074-1082).
  • the inoculum medium is carried out in the manner described in Example 1. After sterilization, strain B is sown from a spore suspension. trispora SB34 (-) and incubate at 25 ° C for 48 hours. The mutant strain B. trispora SB34 (-) was obtained by mutation with NTG from the wild JB line. Trispora F921 (-) deposited in the VKM crop collection, Moscow, Russia and accessible to the public.
  • a fermentation medium is prepared in the same manner as described in example 1. After sterilization, a series of flasks are inoculated with 10% of the B line. trispora SB34 (-), which is characterized as a mutant partially blocked in the biosynthesis of ⁇ -carotene so that it accumulates lycopene. All flasks are incubated at 25 ° C on an orbital shaker at 250 rp.
  • Control flasks are those that do not carry the addition of trisporic acids.
  • the flask group that receives Addition of trisporic acids is maintained under the same conditions as the control until the 4th day when a preparation enriched in trisporic acids, purified as described in Example 1, is added at a final concentration of 350 ⁇ g / ml.
  • the inoculum medium is carried out in the manner described in Example 1. After sterilization, strain B is seeded from spore suspension. trispora ASA25 (-) and incubate at 25 ° C for 48 hours.
  • a fermentation medium is prepared in the same manner as described in example 1. After sterilization a chemical agent is added that blocks the biosynthesis of carotenoids at the level of lycopene, such as imidazole at a final concentration of 0.75 mg / ml. This medium is also supplemented with phosphate buffer pH 7.5 at a final concentration of 25 mM and inoculated with 10% of the B line. trispora ASA25 (-). The flasks are incubated at 25 ° C on an orbital shaker at 250 rpm.
  • Control flasks are those that do not carry the addition of trisporic acids.
  • the flask group that receives addition of trisporic acids is maintained in the same con- Dicions that control until the 4th day when a preparation enriched in trisporic acids is added to a final concentration of 350 ⁇ g / ml.
  • the purification of trisporic acids is carried out in the same manner described in example 1.
  • the inoculum medium is carried out in the manner described in Example 1. After sterilization, the B strains are seeded from spore suspensions. trispora ASA25 (-) and B. Trispora ASA2 (+) in separate flasks and incubate at 25 ° C for 48 hours.
  • a fermentation medium is prepared in the same manner as described in example 1. After sterilization imidazole is added at a final concentration of 0.75 mg / ml and phosphate buffer pH 7.5 at a final concentration of 25 mM. This medium is inoculated with 10% of a mixture of the B strains. trispora ASA25 (-) and B. trispora ASA2 (+). The flasks are incubated at 25 ° C on an orbital shaker at 250 rpm. To obtain a source of unpurified trisporic acids (NPTA), a fermentation medium is prepared in the same way as described in Example 1. After sterilization a mixed culture is planted with 10% of the strains of B. trispora ASA2 (+) and B. trispora ASA25 (-), producers of ⁇ -carotene. The flasks are incubated at 25 ° C on an orbital shaker at 250 rpm.
  • NPTA unpurified trisporic acids
  • Control flasks are those that do not carry the addition of trisporic acids.
  • the flask group that receives the addition of partially purified trisporic acids (PTA), is maintained in the same conditions as the control until the 4th day when trisporic acids are added at a final concentration of 350 ⁇ g / ml.
  • the purification of trisporic acids is carried out in the same manner as described in example 1.
  • the flask group that receives the addition of unpurified trisporic acids (NPTA) is maintained under the same conditions as the control until the 4th day, for then be subjected to a filtration process through a 20 ⁇ m nylon filter that allows to separate the mycelium from the B strains.
  • trispora ASA2 (+) of the culture medium where they have grown in the presence of imidazole In parallel, the separation of mycelium and culture medium is carried out through a 20 ⁇ m nylon filter, but in this case of flasks containing the two strains B. trispora ASA2 (+) and B. trispora ASA25 (-), under conditions of ⁇ -carotene production, whose culture medium is considered an unpurified source of trisporic acids (NPTA). After the separation of mycelium and culture medium, the mycelium of the B strains is mixed. trispora ASA25 (-) and ASA2 (+) grown with imidazole, with the culture medium of the same strains grown in the absence of imidazole.
  • Imidazole is added to the culture medium considered as an unpurified source of trisphoric acids (NPTA) to obtain a final concentration of 0.75 mg / ml. These flasks are incubated at 25 ° C and 250 rpm. With the addition of partially purified trisphoric acids (PTA), an increase of 29.14 to 43.58 mg of lycopene per gram of dry weight is achieved (a 50% increase over the control on the 6th day of fermentation, Fig. 3) and by adding ⁇ -carotene culture medium an increase of 29.14 to 41.07 mg of lycopene per gram of dry weight is achieved (an increase of 41% over the control on the 6th day of fermentation , Fig. 4). This example demonstrates that the effect of trisporic acids is independent of their degree of purification.
  • the inoculum medium is carried out in the manner described in Example 1. After sterilization, the B strains are seeded from spore suspensions. trispora SB3 (-) and B. Trispora ASA2 (+) in separate flasks and incubate at 25 ° C for 48 hours.
  • a fermentation medium is prepared in the same manner as described in Example 1. After sterilization, it is inoculated with 10% of a mixture of the B. trispora SB34 (-) and B strains. trispora ASA2 (+). The flasks are incubated at 25 ° C on an orbital shaker at 250 rpm.
  • Control flasks are those that do not carry the addition of trisporic acids.
  • the flask group that receives the addition of trisporic acids is maintained under the same conditions as the control until the 4th day in which a preparation enriched in trisporic acids is added at a final concentration of 350 ⁇ g / ml.
  • Acid purification Trisporic is performed in the same manner described in Example 1.
  • the inoculum medium is carried out in the manner described in Example 1. After sterilization, the B strains are seeded from spore suspensions. trispora SB34 (-), B. trispora ASA25 (-) and B. Trispora ASA2 (+) in separate flasks and incubate at 25 ° C for 48 hours.
  • a fermentation medium is prepared in the same manner as described in Example 1. After sterilizing this medium is separated into two groups. A group of flasks is inoculated with 10% of a mixture of the B strains. trispora SB34 (-) and B. trispora ASA2 (+). To the other group of flasks, after sterilization, imidazole is added at a final concentration of 0.75 mg / ml and phosphate buffer pH 7.5 at a final concentration of 25 mM. This medium is inoculated with 10% of a mixture of the B strains. trispora ASA25 (-) and B. trispora ASA2 (+). All flasks are incubated at 25 ° C on an orbital shaker at 250 rpm.
  • Control flasks are those that do not carry the addition of trisporic acids.
  • the flask group that receives addition of trisporic acids is maintained under the same conditions as the control until the 4th day when a preparation enriched in trisporic acids is added at a concentration final traction of 350 ⁇ g / ml.
  • the purification of trisporic acids is carried out in the same manner described in example 1.
  • Table 1 Percentage of carotenoids at the 5th and 6th day of fermentation in mixed culture of the B strains. trispora SB34 (-) or ASA25 (-) with B. trispora ASA 2 (+)
  • ASA25 (-), whose carotenoid mixture contains only 2% of ⁇ -carotene (Examples 4 and 6).
  • trispora SB34 (-), whose carotenoid mixture contains more than 20% of ⁇ -carotene (Examples 5 and 6).
  • FIG. 1 Concentration of trisporic acids along a fermentation of ⁇ -carotene and a fermentation of lycopene. In both fermentations a mixed culture of the B strains is used. trispora ASA25 (-) and B. trispora ASA2 (+). In the fermentation of lycopene (squares) a chemical agent is added to the culture medium that favors the accumulation of lycopene, in this case pyridine. The fermentation of ⁇ -carotene (rhombuses) is carried out under the same conditions but without pyridine. Abcisas: time in days; Ordered: concentration of trisporic acids ( ⁇ g / ml).
  • FIG. 3 Lycopene production by mutant line B. trispora ASA25 (-), superproducer of ⁇ -carotene, with and without the addition of trisporic acids.
  • the fermentation medium is supplemented with imidazole to favor the accumulation of lycopene.
  • the lycopene production values obtained in a control fermentation without the addition of trisporic acids are represented by rhombuses.
  • the effect of the addition of partially purified trisphoric acids (PTA) on the 4th day of fermentation on lycopene production is indicated by squares. The values represent the average of two independent samples. Error bars represent the deviation average standard. Abcisas: time in days; Sorted: mg lycopene / g dry weight.
  • FIG. 4 Production of lycopene in mixed culture of the superproductive mutant strains of ⁇ -carotene B. trispora ASA25 (-) and B. trispora ASA2 (+), with and without the addition of trisporic acids.
  • the fermentation medium is supplemented with imidazole to favor the accumulation of lycopene.
  • Lycopene production values obtained in a control fermentation without the addition of trisporic acids are represented by diamonds.
  • the effect of the addition of partially purified trisporic acids (PTA) on the 4th day of fermentation on lycopene production is indicated by squares.
  • the production of lycopene obtained by the addition of unpurified trisporic acids (NPTA) on the 4th day of fermentation is represented by circles.
  • the values represent the average of two independent samples. Error bars represent the standard deviation of the average.
  • Abcisas time in days; Sorted: mg lycopene / g dry weight.

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • External Artificial Organs (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Glass Compositions (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Procedimiento para la producción de licopeno. La presente invención se refiere a un nuevo procedimiento para la obtención de carotenoides, especialmente como Blakeslea. Se describe un método de fermentación que permite obtener un incremento en la producción de licopeno, basado en la adición de ácidos trispóricos. El proceso se lleva a cabo a partir de estirpes silvestres o mutantes de las mismas, en cultivo simple o mixto. La adición de ácidos trispóricos puede hacerse al inicio de la fermentación o durante la misma y su origen puede ser una preparación parcialmente purificada o una fuente no purificada de los mismos.

Description

PROCEDIMIENTO DE PRODUCCIÓN DE ICOPENO
Campo de la invención
La presente invención se refiere a un nuevo procedimiento para la obtención de carotenoides, especialmente licopeno, a partir de cultivos sumergidos de hongos mucorales tipo Blakeslea . Se describe un método de fermentación que permite obtener un incremento en la producción de licopeno, basado en la adición de extractos enriquecidos en ácidos trispóricos . El proceso se lleva a cabo a partir de estirpes silvestres, o mutantes de las mismas, en cultivo simple o mixto. La adición de ácidos trispóricos puede hacerse al inicio de la fermentación o durante la misma.
Estado de la -técnica
Los carotenoides son compuestos abundantes en frutas y vegetales, y han sido sujeto de numerosos estudios debido a sus propiedades como antioxidantes y como precursores de vitamina A. El licopeno, además de su propiedad antioxidante, previene las enfermedades cardiovasculares y algunos tipos de cáncer como el de próstata y el gastrointestinal y actúa en el control del crecimiento (Stahl W. y Sies, H. 1996. Arch.
Biochem. Biophys . 336 :l-9 ; Clinton, SK. 1998. Nutr. Rev.
56 : 35-51). Los carotenoides debido a su coloración amarilla a roja son utilizados también como suplemento y colorante alimenticio de margarina, mantequilla, aceites para ensaladas, sopas, salsas (Ninet L. y Renaut J. 1979. En:
Peppler HJ. , Perlman D. (eds) . Microbial Technology, 2nd.
Edn, vol. 1 Academic Press, NY, pp . 529-544). El licopeno es un carotenoide que se produce como intermediario en la ruta biosintética de β-caroteno y xantofilas .
Mevaionato
Figure imgf000003_0001
Fitoeno
Figure imgf000003_0002
Figure imgf000003_0003
Neurosporeno
Figure imgf000003_0004
Licopeno
Figure imgf000003_0005
Figure imgf000003_0006
β-Caroteno
Las preparaciones de licopeno se obtienen a partir de tomate (Patentes PCT WO 97/48287, EP 608027), o mediante la fermentación de hongos mucorales como Phycomyces, Blakeslea y Choanephora (Patentes GB 1008469, US 3097146, US 3369974, JP 73016189, JP 73016190 y RU 2102416) . Las patentes GB 1008469 y US 3097146 describen un método de fermentación del ñongo Blakeslea tπspora que consiste en un medio de cultivo cuyo pH se mantiene por encima de 7,0 y hasta 9,5. Después de siete dias de incubación se obtienen 9,97 mg de licopeno por cada 100 mi de medio.
Las patentes japonesas JP 73016189 Y JP 73016190 describen un método de fermentación con hongos mucorales como Phycomyces, Blakeslea y Choanephora , en el cual se adicionan aminas terciarias para impedir la formación de β-caroteno y favorecer la acumulación de licopeno. Como e emplo de aminas terciarias se citan: la hordenina, el 2-dιmetιlamιno-etanol; 3-dιmetιlamιno-l-propanol; l-dιmetιlamιno-2-propanol; 2- diet lammo-etanol; 3-dιetιlamιno-l-propanol; 1-dιetιlammo- 2-propanol; trietilamma; 2-dιιsopropιlamιno-etanol; 3- dιιsopropιlammo-1-propanol; l-dιιsopropιlamιno-2-propanol; 2-dι-n-propιlamιno etanol; 3-dι-n-propιlammo 1-propanol; 1- dι-n-propιlamιno-2-propanol; 2-dιmetιlamιnoetιlbenceno; 2 diet lammoetilbenceno; p- (2-dιetιlammoetιl) fenol . La patente RU 2102416 describe la adición de aminometilpindinas y restos de tabaco para inducir la acumulación de licopeno. Ademas de las sustancias descritas en dichas patentes se ha descrito el uso de otras bases nitrogenadas heterociclicas capaces de bloquear la síntesis de carotenoides a nivel de licopeno, como nicotina (Patente japonesa JP 09313167), ímidazol, piridma, morfolma, quinolina y algunos derivados sustituidos (Patente US 3369974 ; Ninet L., Renaut J. 1979. En: Peppler HJ, Perl an D (eds) . Microbial Technology, 2nd. Edn, vol. 1 Academic Press, NY, pp . 529-544) .
Se han descrito también mutantes de B . trispora que acumulan licopeno sin la necesidad de adicionar aminas terciarias (Mehta B. y Cerda-Olmedo E. 1995. Appl . Microbiol. Biotechnol. 42 :836-838). En cualquiera de los métodos de producción de β-caroteno con el hongo B . tríspora se utilizan cultivos mixtos del hongo, debido a que se obtienen rendimientos de β-caroteno muy superiores a los encontrados en las estirpes ( + ) y (-) por separado (Ciegler, A. 1965. Advances in Applied Microbiology 7:1-34; Plempel, M. 1965. Planta 65:225-231; Sutter, RP. y Rafelson, ME. 1968. J. Bacteriology 95:426- 432). El incremento de producción de β-caroteno en cultivos mixtos está correlacionado con la producción de una familia de compuestos ácidos denominados factor β o ácidos tzrispó- ricos. (Caglioti L., Cainelli G., Camerino B., Mondelli R. , Prieto A., Quilico A., Salvatori T, Selva A. 1966. Tetrahedron Supplement 7:175-187). Se ha propuesto que los ácidos trispóricos son hormonas sexuales en hongos mucorales como B . trispora , Phycomyces blakesleanus y Mucor mucedo, ya que además de estimular la producción de β-caroteno, estimulan la formación de zigóforos (van den Ende, H. 1968. J. Bacteriology 96:1298-1303; Austin DJ. , Bu'Lock JD., Gooday G.W. 1969. Nature 223:1178-1179; Reschke, T. 1969. Tetrahedron Letters 29:3435-3439; van den Ende H., Wiechmann AHCA., Reyngoud DJ. , Hendricks T. 1970. J. Bacteriology 101:423-428) .
Químicamente, los ácidos trispóricos son derivados oxidados e insaturados de 1, 1, 3-trimetil-2- (3-metiloctil) ciclohexano. Dichos compuestos pueden ser clasificados como sesquiterpenos elaborados o productos de la degradación de diterpenos o carotenoides. Los ácidos trispóricos han sido caracterizados como una mezcla de tres sustancias: ácido trispórico A, B y C, también denominados factor β:, β: y β3 (debido a que estimulan la síntesis de β-caroteno) El más abundante es el ácido trispórico C, que se encuentra presente en un 80% en cultivos mixtos de B . trispora (Caglioti, L., Cainelli, G., Camerino, B. Mondelli, R. , Prieto, A. , Quilico, A. , Salvatori, T, Selva, A. 1966, Tetrahedron Supplement 7:175-187).
Beta caroteno
(+) ! (-)
Retinal
Figure imgf000006_0001
ácido -k-^^ 4-dihidrotrisporol 4- dihidrotrisporico Trisporol y su metil ést
Figure imgf000006_0002
Acido trispórico
Los ácidos trispóricos se sintetizan a partir de β- caroteno producido tanto por la estirpe (+ ) como por la estirpe (-) . El β-caroteno es metabolizado via retinal en 4- hidrotrisporol . Este compuesto es metabolizado por la estirpe
(+ ) en ácido 4-dihidrotrispórico y en su metil éster, y la estirpe (-) convierte el 4-hidrotrisporol en trisporol. Estos dos intermediarios son convertidos en ácido trispórico sólo después de difundir en el medio hasta la estirpe del sexo opuesto (Recopilado por Gooday GW. y Carlile MJ. 1997. Mycologist 11 :26-30). Es decir, la estirpe (-) produce los intermediarios que son convertidos en ácido trispórico por la estirpe (+) y viceversa, según el esquema anterior.
Los ácidos trispóricos obtenidos a partir de cultivos mixtos de B . trispora pueden utilizarse para incrementar la producción de β-caroteno en cultivos con estirpes independientes. Por ejemplo, la adición de 21,8 unidades de factor β incrementa un 422% la producción de β-caroteno de la estirpe (-) y 71% producción de la estirpe ( + ) . Sin embargo, la estimulación de la carotenogénesis por unidad de factor β en cultivos de estirpe (-) fue sólo un 20-30% de la carotenogénesis producida en cultivos mixtos y con cantidades similares de factor β. (Sutter RP. y Rafelson ME. 1968. J. Bacteriology 95:426-432). La purificación de ácidos trispóricos puede realizarse por diversos métodos, como por ejemplo los descritos por Sutter, R. 1970. Science 168:1590-1592 ó Sutter RP . , Capage DA., Harrison TL. , Keen WA. 1973. J. Bacteriology 114:1074- 1082. No se conoce que se haya descrito un efecto positivo de incremento de la producción de licopeno por parte de la adición de ácidos trispóricos. La producción de licopeno se basa en suprimir la actividad licopeno ciclasa que convierte licopeno en β-caroteno, lo que trae como consecuencia bajos niveles de β-caroteno en la fermentación. A partir de β- caroteno se sintetizan los ácidos trispóricos, que son las hormonas sexuales que inducen la carotenogénesis. Es por tanto, la ausencia de precursor (β-caroteno) la que impide la formación de dichas hormonas y la que permite incrementar la producción de licopeno mediante el uso de ácidos trispóricos, ya que en cultivos mixtos que producen β-caroteno (es el caso del mutante SB34(-) con ASA2(+ ) de los ejemplos 5 y 6) , la adición de ácidos trispóricos no tiene ningún efecto.
Descripción detallada de la invención
El objeto de la presente invención pretende incrementar la producción de carotenoides, especialmente de licopeno, en un proceso de fermentación con hongos mucorales { Blakeslea , Choanephora o Phycomyces) , más específicamente en B . trispora . La invención consiste en cultivar el hongo B . trispora en un medio de fermentación y adicionar ácidos trispóricos (o factor β) parcialmente purificados (PTA) o bien no purificados (NPTA) a partir de cualquier otra fuente como por ejemplo, de un caldo de producción de β-caroteno.
El efecto de los ácidos trispóricos sobre la fermentación de licopeno se fundamenta en que dichas hormonas son sintetizadas a partir de β-caroteno, compuesto que no llega a formarse en la fermentación de licopeno. En estas condiciones el hongo carece de precursor para la síntesis de dichas hormonas y la carotenogénesis no está inducida en su grado máximo . Los organismos utilizados para la fermentación pueden ser estirpes aisladas o una mezcla de las estirpes ( + ) y (-) de hongos mucorales, más específicamente B . trispora , o bien mutantes de B . trispora capaces de acumular licopeno. Varias mezclas de estirpe (+) y (-) del hongo pueden ser utilizadas en el proceso de fermentación de esta invención. En el caso de utilizar estirpes de B . trispora productoras de β- caroteno, se adicionan compuestos capaces de bloquear la carotenogénesis a nivel de licopeno (por ejemplo aminas terciarias y otros citados anteriormente) . En el caso de utilizar mutantes bloqueados en la biosintesis de carotenoides a partir de licopeno, no será necesaria la adición de aminas terciarias y compuestos relacionados. En cualquiera de los dos casos citados, los ácidos trispóricos se adicionan parcialmente purificados (PTA) o no purificados (NPTA) a partir de cualquier fuente de los mismos, como por ejemplo a partir de medio de cultivo procedente de una fermentación de β-caroteno, y en ambos casos en una concentración aproximada de 0,35 mg/ml. El término NPTA corresponde a un caldo de β-caroteno. En la figura 1 se pueden calcular, en función del dia de incubación, la concentración en dichos caldos de ácidos trispóricos (al 4° dia estarla entre los 350-400 μg/ml) . El proceso para la producción de carotenoides a partir de hongos mucorales, más específicamente de licopeno con estirpes seleccionadas o mutantes de B . trispora , puede realizarse en cualquier medio de cultivo que contenga una o más fuentes de carbono, una o más fuentes de nitrógeno, sales minerales y tiamina. Las fuentes de carbono se pueden añadir como nutrientes sencillos o complejos e incluyen carbohidratos o grasas, como por ejemplo dextrinas, almidones, glucosa, sacarosa, fructosa, aceites animales o vegetales. El medio de cultivo debe llevar también una fuente asimilable de nitrógeno, orgánico o inorgánico, como por ejemplo harina de soja, harina de maiz, destilados solubles, extracto de levadura, harina de algodón, peptona, caseína, sulfato amónico y otros . Entre las sales minerales que pueden adicionarse al medio de cultivo se encuentran fosfatos, sulfatos, cloruros, sodio, potasio, amonio, calcio, magnesio. Las proporciones de los nutrientes se determinan en base a las necesidades de crecimiento del microorganismo y a los niveles de producción. La fermentación se lleva a cabo preferiblemente en condiciones aeróbicas y en cultivo sumergido. La temperatura de fermentación puede oscilar entre 20 y 32°C, aunque se prefiere entre 25 y 28°C.
La adición de ácidos trispóricos puede realizarse a partir de una preparación parcialmente purificada o a partir de cualquier fuente de los mismos, como por ejemplo de medio de cultivo procedente de una fermentación de β-caroteno de cualquier hongo mucoral.
La extracción del licopeno se realiza mediante cualquier método descrito de rotura celular que permita liberar el contenido intracelular , que se solubiliza en cualquier solvente en el que resulte soluble. Su concentración se puede determinar mediante medida espectrofotométrica, pero se prefiere el uso de cromatografía liquida (HPLC) , mediante cualquiera de los métodos descritos en la bibliografía.
Las estirpes utilizadas son las siguientes:
Mutantes productores de β-caroteno: ASA2 (+) y ASA25(-). Mutante productor de licopeno SB34 (-) . Este último mutante produce también un 25% de β-caroteno (ver tabla 1) . La elección de los mutantes es irrelevante desde el punto de vista del efecto de incremento de la producción de caroteno debida a los ácidos trispóricos per se. Es decir, el efecto debido a dichos compuestos seria reproducible en cualquier otra cepa mutante análoga, aunque tuviera una menor producción basal de licopeno, lo que ocurre con las cepas parentales, por ejemplo. Las cepas parentales están depositadas en una colección y son viables y accesibles al público.
Ejemplo 1.
Determinación de la concentración de ácidos trispóricos a lo largo de una fermentación de β-caroteno y de licopeno.
Se prepara un medio de inoculo que contiene por litro: harina de soja, 23 g; harina de maiz, 47 g; fosfato monopotásico 0,5 g; clorhidrato de tiamina, 0,002 g. Su pH inicial es de 6,3. El medio se reparte en matraces Erlenmeyer de 500 mi a razón de 67 ó 100 mi. Después de esterilizar, se siembran a partir de suspensiones de esporas las estirpes B . trispora ASA2(+) y B . trispora ASA25(-) en matraces separados y se incuban a 25°C durante 48 horas. Las estirpes mutantes B . trispora ASA2(+) y B . trispora ASA25(-) se obtienen por mutación con NTG a partir de las estirpes silvestres B . trispora F208 (-) y F117 (+) deposi- tadas en la Colección de Microrganismos Industriales (VKM) , sita en Moscú, Rusia, siendo ambas cepas accesibles al público.
Se prepara un medio base de fermentación que contiene por litro: harina de soja, 44 g; harina de maiz, 19 g; fosfato dibásico 0,55 g; clorhidrato de tiamina, 0,002 g; aceite vegetal 10%. Su pH inicial se ajusta a 7,5 con hidróxido potásico. El medio se reparte en matraces Erlenmeyer de 250 mi a razón de 20 mi. Para la fermentación de β-caroteno se inoculan matraces que contienen medio base con un 10% de un cultivo mixto de las estirpes de B . trispora ASA2(+) y B . trispora ASA25(-) . Para la fermentación de licopeno se añade al medio base un agente químico con el fin de bloquear la ruta biosintética a nivel de licopeno, como por ejemplo 2 ml/1 de piridina. Este medio se inocula con un 10% de un cultivo mixto de las estirpes de B . trispora ASA2 (+) y B . trispora ASA25(-). Todos los matraces se incuban a 25°C en un agitador orbital a 250 rpm. A partir del segundo dia de fermentación se toma muestra cada 24 horas y se determina la concentración de ácidos trispóricos en matraces productores de β-caroteno y en matraces productores de licopeno.
La determinación de la concentración de ácidos trispóricos se lleva a cabo mediante la extracción con un volumen de cloroformo después de acidificar la muestra a pH 2. La fracción orgánica se extrae con un volumen de una solución de bicarbonato sódico al 4%, se recoge la fase acuosa, que se acidifica para extraerla nuevamente con cloroformo. Posteriormente el cloroformo es evaporado hasta sequedad y el residuo constituido por ácidos trispóricos se disuelve en etanol o tampón Tris-sulfato. Los ácidos trispóricos se cuantifican mediante medida espectrofoto- métrica de absorbancia a 325 nm, asumiendo un coeficiente de absortividad de 70 mi x mg"1 x era"1 (Sutter RP . , Capage DA., Harrison TL . , Keen WA. 1973. J. Bacteriology 114:1074-1082).
La concentración de ácidos trispóricos resultó ser diferente a lo largo de la fermentación de β-caroteno y de licopeno, siendo significativamente inferior en esta última. La máxima diferencia se encontró al 4° dia, con una concentración de 378 μg/ml en la fermentación de β-caroteno y de 46 μg/ml en la fermentación de licopeno (siendo la diferencia de 8 veces aproximadamente) (Figura 1) .
Ejemplo 2
Efecto de la adición de ácidos trispóricos sobre la fermentación de un mutante bloqueado parcialmente en la biosintesis de β-caroteno de forma que acumula licopeno.
El medio de inoculo se realiza del modo descrito en el ejemplo 1. Después de esterilizar, se siembra a partir de una suspensión de esporas la estirpe B . trispora SB34 (-) y se incuba a 25°C durante 48 horas. La estirpe mutante B . trispora SB34 (-) se obtuvo por mutación con NTG a partir de la estirpe silvestre JB. trispora F921(-) depositada en la colección de cultivos VKM, Moscú, Rusia y accesible al público.
Se prepara un medio de fermentación de igual forma a la descrita en el ejemplo 1. Después de esterilizar se inocula una serie de matraces con un 10% de la estirpe de B . trispora SB34(-), que se caracteriza por ser un mutante bloqueado parcialmente en la biosintesis de β-caroteno de forma que acumula licopeno. Todos los matraces se incuban a 25 °C en un agitador orbital a 250 rp .
Los matraces control son aquellos que no llevan adición de ácidos trispóricos. El grupo de matraces que recibe adición de ácidos trispóricos se mantiene en las mismas condiciones que el control hasta el 4° dia en que se adiciona una preparación enriquecida en ácidos trispóricos, purificada como se describe en el ejemplo 1, a una concentración final de 350 μg/ml.
Con la adición de ácidos trispóricos parcialmente purificados (PTA) se consigue un incremento de 0,11 a 0,24 mg de licopeno por gramo de peso seco (un incremento de 2,18 veces con respecto al control al 6° dia de fermentación, Fig. 2) .
Ejemplo 3
Efecto de la adición de ácidos trispóricos sobre la fermentación de licopeno con un mutante productor de β- caroteno cuya biosintesis se bloquea a nivel licopeno mediante un agente químico .
El medio de inoculo se realiza del modo descrito en el ejemplo 1. Después de esterilizar, se siembra a partir de suspensión de esporas la estirpe B . trispora ASA25(-) y se incuba a 25°C durante 48 horas.
Se prepara un medio de fermentación de igual forma a la descrita en el ejemplo 1. Después de esterilizar se añade un agente químico que bloquea la biosíntesis de carotenoides a nivel de licopeno, como por ejemplo imidazol a una concentración final de 0,75 mg/ml. Este medio se suplementa también con ta pón fosfato pH 7,5 a una concentración final de 25 mM y se inocula con un 10% de la estirpe de B . trispora ASA25(-). Los matraces se incuban a 25°C en un agitador orbital a 250 rpm.
Los matraces control son aquellos que no llevan adición de ácidos trispóricos. El grupo de matraces que recibe adición de ácidos trispóricos se mantiene en las mismas con- diciones que el control hasta el 4° dia en que se adiciona una preparación enriquecida en ácidos trispóricos a una concentración final de 350 μg/ml. La purificación de ácidos trispóricos se realiza del mismo modo descrito en el ejemplo 1.
Con la adición de ácidos trispóricos parcialmente purificados (PTA) se consigue un incremento de 0,16 a 1,09 mg de licopeno por gramo de peso seco (un incremento de 6,8 veces con respecto al control al 6° día de fermentación, Fig. 3) .
Ejemplo 4
Efecto de la adición de ácidos trispóricos , parcialmente purificados (PTA) o no purificados (NPTA) , sobre la fermentación del mutante B. tr±spora. ASA25(-) en cultivo mixto con B. tr±spora ASA2 (+) .
El medio de inoculo se realiza del modo descrito en el ejemplo 1. Después de esterilizar, se siembran a partir de suspensiones de esporas las estirpes B . trispora ASA25(-) y B . trispora ASA2 (+) en matraces separados y se incuban a 25°C durante 48 horas.
Se prepara un medio de fermentación de igual forma a la descrita en el ejemplo 1. Después de esterilizar se añade imidazol a una concentración final de 0,75 mg/ml y tampón fosfato pH 7,5 a una concentración final de 25 mM. Este medio se inocula con un 10% de una mezcla de las estirpes de B . trispora ASA25(-) y B . trispora ASA2(+). Los matraces se incuban a 25°C en un agitador orbital a 250 rpm. Para la obtención de una fuente de ácidos trispóricos no purificados (NPTA) se prepara un medio de fermentación de igual forma a la descrita en el ejemplo 1. Después de esterilizar se siembra un cultivo mixto con un 10% de las estirpes de B . trispora ASA2(+) y B . trispora ASA25(-), productoras de β-caroteno. Los matraces se incuban a 25°C en un agitador orbital a 250 rpm.
Los matraces control son aquellos que no llevan adición de ácidos trispóricos. El grupo de matraces que recibe adición de ácidos trispóricos parcialmente purificados (PTA) , se mantiene en las mismas condiciones que el control hasta el dia 4° en que se adicionan ácidos trispóricos a una concentración final de 350 μg/ml. La purificación de ácidos tris- póricos se realiza del mismo modo descrito en el ejemplo 1. El grupo de matraces que recibe la adición de ácidos trispóricos no purificados (NPTA) se mantiene en las mismas condiciones que el control hasta el 4° día, para ser luego sometido a un proceso de filtración a través de un filtro de nylon de 20 μm que permite separar el micelio de las estirpes B . trispora ASA25(-) y B . trispora ASA2 ( +) del medio de cultivo donde han crecido en presencia de imidazol. Paralelamente se realiza la separación de micelio y medio de cultivo a través de un filtro de nylon de 20 μm, pero en este caso de matraces que contienen las dos estirpes B . trispora ASA2 (+) y B . trispora ASA25(-), en condiciones de producción de β-caroteno, cuyo medio de cultivo es considerado una fuente no purificada de ácidos trispóricos (NPTA) . Finalizada la separación de micelio y medio de cultivo, se mezcla el micelio de las estirpes B . trispora ASA25(-) y ASA2(+) crecidas con imidazol, con el medio de cultivo de las mismas estirpes crecidas en ausencia de imidazol. Al medio de cultivo considerado como una fuente no purificada de ácidos trispóricos (NPTA) se le añade imidazol para obtener una con- centración final de 0,75 mg/ml. Estos matraces se incuban a 25°C y 250 rpm. Con la adición de ácidos trispóricos parcialmente purificados (PTA) se consigue un incremento de 29,14 a 43,58 mg de licopeno por gramo de peso seco (un incremento del 50% con respecto al control al 6° dia de fermentación, Fig. 3) y mediante la adición de medio de cultivo de β-caroteno se consigue un incremento de 29,14 a 41,07 mg de licopeno por gramo de peso seco (un incremento del 41% con respecto al control al 6° día de fermentación, Fig. 4) . Este ejemplo demuestra que el efecto de los ácidos trispóricos es independiente de su grado de purificación.
Ejemplo 5
Efecto de la adición de ácidos trispóricos sobre la fermentación del mutante B . tr±spora SB34 (-) en cultivo mixto con B. tr±spora ASA2 (+) .
El medio de inoculo se realiza del modo descrito en el ejemplo 1. Después de esterilizar, se siembran a partir de suspensiones de esporas las estirpes B . trispora SB3 (-) y B . trispora ASA2 (+) en matraces separados y se incuban a 25°C durante 48 horas.
Se prepara un medio de fermentación de igual forma a la descrita en el ejemplo 1. Después de esterilizar se inocula con un 10% de una mezcla de las estirpes de B. trispora SB34(-) y B . trispora ASA2 (+) . Los matraces se incuban a 25°C en un agitador orbital a 250 rpm.
Los matraces control son aquellos que no llevan adición de ácidos trispóricos. El grupo de matraces que recibe adición de ácidos trispóricos se mantiene en las mismas condiciones que el control hasta el 4° día en que se adiciona una preparación enriquecida en ácidos trispóricos a una concentración final de 350 μg/ml. La purificación de ácidos trispóricos se realiza del mismo modo descrito en el ejemplo 1.
La adición de una preparación enriquecida en ácidos trispóricos no tiene efecto significativo sobre la producción de licopeno cuando la fermentación del mutante SB34(-)se realiza en cultivo mixto (Fig. 5) .
Ejemplo 6
Análisis de la proporción de carotenoides en las fermentaciones mixtas de las estirpes B. trispora SB34(-) o B. trispora ASA 25(-) con B . -trispora ASA2 (+) .
El medio de inoculo se realiza del modo descrito en el ejemplo 1. Después de esterilizar, se siembran a partir de suspensiones de esporas las estirpes B . trispora SB34(-), B . trispora ASA25(-) y B . trispora ASA2 (+) en matraces separados y se incuban a 25°C durante 48 horas.
Se prepara un medio de fermentación de igual forma a la descrita en el ejemplo 1. Después de esterilizar este medio se separa en dos grupos. Un grupo de matraces se inocula con un 10% de una mezcla de las estirpes de B . trispora SB34(-) y B . trispora ASA2(+). Al otro grupo de matraces, después de esterilizar se añade imidazol a una concentración final de 0,75 mg/ml y tampón fosfato pH 7,5 a una concentración final de 25 mM. Este medio se inocula con un 10% de una mezcla de las estirpes de B . trispora ASA25(-) y B . trispora ASA2(+). Todos los matraces se incuban a 25°C en un agitador orbital a 250 rpm.
Los matraces control son aquellos que no llevan adición de ácidos trispóricos. El grupo de matraces que recibe adición de ácidos trispóricos se mantiene en las mismas condiciones que el control hasta el 4° dia en que se adiciona una preparación enriquecida en ácidos trispóricos a una concen- tración final de 350 μg/ml. La purificación de ácidos trispóricos se realiza del mismo modo descrito en el ejemplo 1.
Se recoge muestra de los cultivos al 5° y 6° día de fermentación con el fin de analizar la proporción de carotenoides mediante cromatografía líquida (HPLC) . Los resultados obtenidos se muestran en la tabla 1.
Tabla 1. Porcentaje de carotenoides al 5° y 6° día de fermentación en cultivo mixto de las estirpes B . trispora SB34(-) o ASA25(-) con B . trispora ASA 2(+)
Estirpes Ácidos Día Neurosporeno Licopeno γ-caroteno β-caroteno trispóricos (%) (%) (%)
SB34(-)xASA2(+) No 5° 3 57 16 25
SB34(-)xASA2(+) No 6° 3 64 12 21
SB34(-)xASA2(+) Si 5° 3 55 15 28
SB34(-)xASA2(+) Si 6° 2 62 12 23
ASA25(-)xASA2(+) No 5° 1 88 9 2
ASA25(-)xASA2(+) No 6° 1 89 8 2
ASA25(-)xASA2(+) Si 5° 1 85 10 3
ASA25(-)xASA2(+) Si 6° 1 88 9 2
El análisis del porcentaje de carotenoides obtenido en la fermentación de licopeno utilizando cultivo mixto de las estirpes B . trispora SB34(-) o B . trispora ASA25(-) con B . trispora ASA2 (+) muestra diferencia significativa en el porcentaje de licopeno y β-caroteno (Tabla 1) . Dichas diferencias son independientes de la adición de ácidos tris- póricos. La mezcla de carotenoides obtenida al 6° dia mediante fermentación con B . trispora SB34(-) tiene un 63% de licopeno, mientras que la obtenida con B . trispora ASA25(-) posee un 88% (rindiendo un producto que es un 25% más puro) . En la misma mezcla, la proporción de β-caroteno es 10 veces superior en la fermentación con B . trispora SB34(-) que con B . trispora ASA25(-). Dado que el β-caroteno es el precursor de los ácidos trispóricos, estos datos podrían explicar:
1. La diferencia de concentración de ácidos trispóricos entre una fermentación de β-caroteno y una fermentación de licopeno (Ejemplo 1) . 2. El hecho de que la adición de ácidos trispóricos
(purificados o no purificados) incremente entre un 40 y 50% la producción de licopeno al 6° dia de fermentación en cultivo mixto cuando se usa como estirpe negativa B . trispora
ASA25(-), cuya mezcla de carotenoides contiene sólo un 2% de β-caroteno (Ejemplos 4 y 6) .
3. El hecho de que la adición de ácidos trispóricos no tenga ningún efecto sobre el cultivo mixto cuando se usa como estirpe negativa B . trispora SB34 (-) , cuya mezcla de carotenoides contiene más de un 20% de β-caroteno (Ejemplos 5 y 6) .
Estos resultados demuestran que el efecto de los ácidos trispóricos sobre la fermentación de licopeno en cultivos mixtos se debe a la ausencia de precursor para su bio- síntesis. De alli que su utilización en la producción indus- trial de licopeno de alta pureza sea altamente ventajosa.
Descripción detallada de las figuras
Figura 1. Concentración de ácidos trispóricos a lo largo de una fermentación de β-caroteno y una fermentación de licopeno. En ambas fermentaciones se utiliza un cultivo mixto de las estirpes B . trispora ASA25(-) y B . trispora ASA2 (+) . En la fermentación de licopeno (cuadrados) se adiciona al medio de cultivo un agente químico que favorece la acumulación de licopeno, en este caso piridina. La fermentación de β-caroteno (rombos) se lleva a cabo en las mismas condiciones pero sin piridina. Abcisas: tiempo en días; Ordenadas: concentración de ácidos trispóricos (μg/ml) .
Figura 2. Producción de licopeno por la estirpe mutante B . trispora SB34 (-) , bloqueada en la síntesis de β-caroteno a nivel de licopeno, con y sin adición de ácidos trispóricos. Los valores de producción de licopeno obtenidos en una fermentación control sin adición de ácidos trispóricos se representan mediante rombos. El efecto de la adición de ácidos trispóricos parcialmente purificados (PTA) al 4° día de fermentación sobre la producción de licopeno se indica con cuadrados. Los valores representan la media de dos muestras independientes. Las barras de error representan la desviación estándar del promedio. Abcisas: tiempo en dias; Ordenadas: mg licopeno/g peso seco.
Figura 3. Producción de licopeno por la estirpe mutante B . trispora ASA25 (-) , superproductora de β-caroteno, con y sin adición de ácidos trispóricos. El medio de fermentación se suplementa con imidazol para favorecer la acumulación de licopeno. Los valores de producción de licopeno obtenidos en una fermentación control sin adición de ácidos trispóricos se representan mediante rombos. El efecto de la adición de ácidos trispóricos parcialmente purificados (PTA) al 4° día de fermentación sobre la producción de licopeno se indica con cuadrados. Los valores representan la media de dos muestras independientes . Las barras de error representan la desviación estándar del promedio. Abcisas: tiempo en días; Ordenadas: mg licopeno/g peso seco.
Figura 4. Producción de licopeno en cultivo mixto de las estirpes mutantes superproductoras de β-caroteno B . trispora ASA25(-) y B . trispora ASA2 (+) , con y sin adición de ácidos trispóricos. El medio de fermentación se suplementa con imidazol para favorecer la acumulación de licopeno. Los valores de producción de licopeno obtenidos en una fermen- tación control sin adición de ácidos trispóricos se representan mediante rombos . El efecto de la adición de ácidos trispóricos parcialmente purificados (PTA) al 4° dia de fermentación sobre la producción de licopeno se indica con cuadrados . La producción de licopeno obtenida mediante adición de ácidos trispóricos no purificados (NPTA) al 4° día de fermentación se representa mediante círculos . Los valores representan la media de dos muestras independientes. Las barras de error representan la desviación estándar del promedio. Abcisas: tiempo en días; Ordenadas: mg licopeno/g peso seco.
Figura 5. Producción de licopeno en cultivo mixto de las estirpes B . trispora SB34 (-) y B . trispora ASA2 (+) , con y sin adición de ácidos trispóricos. Los valores de producción de licopeno obtenidos en una fermentación control sin adición de ácidos trispóricos se representan mediante rombos. El efecto de la adición de ácidos trispóricos parcialmente purificados
(PTA) al 4° día de fermentación sobre la producción de licopeno se indica con cuadrados. Los valores representan la media de dos muestras independientes. Las barras de error representan la desviación estándar del promedio. Abcisas: tiempo en días; Ordenadas: mg licopeno/g peso seco.

Claims

REIVINDICACIONES
1. - Un procedimiento de producción de licopeno en cultivo por fermentación de hongos mucorales, caracterizado porque se adicionan, en cualquier momento de la fermentación, ácidos trispóricos y se recupera el licopeno producido.
2.- Un procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque el hongo mucoral utilizado en la fermentación es Blakeslea trispora .
3. - Un procedimiento según las reivindicación 2, caracterizado por utilizarse un cultivo mixto que contenga las estirpes (+) y (-) de B . trispora .
4.- Un procedimiento según las reivindicación 2, caracterizado por utilizarse un cultivo que contenga la estirpe (-) de E. trispora .
5.- Un procedimiento según las reivindicación 2, caracterizado por utilizarse un cultivo que contenga la estirpe (+) de B. trispora .
6.- Un procedimiento según cualquiera de las reivindi- caciones 2 a 5, caracterizado por utilizarse un cultivo que contenga una estirpe mutante de B . trispora que tenga total o parcialmente bloqueada, debido a la mutación, su capacidad de biosíntesis de β-caroteno y que acumulen licopeno.
7.- Un procedimiento según cualquiera de las reivindi- caciones 2 a 5, caracterizado por adicionarse al cultivo, en cualquier momento de la fermentación un inhibidor de la biosíntesis de β-caroteno para inducir la acumulación de licopeno .
8.- Un procedimiento según cualquiera de las reivindi- caciones anteriores, caracterizado porque la adición de ácido trispóricos se realiza de forma que se alcance una concentración de los mismos que oscile entre 0,001 y 1000 mg/ml.
9.- Un procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque la adición de ácidos trispóricos al cultivo se produce preferentemente entre las 72 y las 144 h de iniciada la fermentación.
10.- Un procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque los ácidos trispóricos se añaden parcialmente purificados.
11.- Un procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9, caracterizado porque los ácidos trispóricos se añaden sin purificar, preferentemente a partir de un medio de cultivo recuperado de una fermentación de β-caroteno.
PCT/ES2000/000202 1999-06-09 2000-06-06 Procedimiento de produccion de licopeno WO2000077234A2 (es)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2001503676A JP3904924B2 (ja) 1999-06-09 2000-06-06 リコペンを製造する方法
DE60023693T DE60023693T2 (de) 1999-06-09 2000-06-06 Herstellungsverfahren für lycopen
EP00935226A EP1184464B1 (en) 1999-06-09 2000-06-06 Lycopen production method
AT00935226T ATE308622T1 (de) 1999-06-09 2000-06-06 Herstellungsverfahren für lycopen
AU50792/00A AU5079200A (en) 1999-06-09 2000-06-06 Lycopen production method

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES009901271A ES2156735B1 (es) 1999-06-09 1999-06-09 Procedimiento de produccion de licopeno.
ESP9901271 1999-06-09

Publications (2)

Publication Number Publication Date
WO2000077234A2 true WO2000077234A2 (es) 2000-12-21
WO2000077234A3 WO2000077234A3 (es) 2001-02-08

Family

ID=8308761

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/ES2000/000202 WO2000077234A2 (es) 1999-06-09 2000-06-06 Procedimiento de produccion de licopeno

Country Status (8)

Country Link
EP (1) EP1184464B1 (es)
JP (1) JP3904924B2 (es)
CN (1) CN1252276C (es)
AT (1) ATE308622T1 (es)
AU (1) AU5079200A (es)
DE (1) DE60023693T2 (es)
ES (2) ES2156735B1 (es)
WO (1) WO2000077234A2 (es)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003056028A1 (es) 2001-12-31 2003-07-10 Vitatene, S.A. Procedimiento mejorado de produccion de licopeno mediante la fermentacion de cepas seleccionadas de blakeslea trispora, formulaciones y usos del licopeno obtenido
US6989257B2 (en) 2001-06-06 2006-01-24 Dsm Ip Assets B.V. Isoprenoid production
CN1330746C (zh) * 2001-10-29 2007-08-08 Dsmip资产有限公司 无外源胡萝卜素生成抑制剂条件下在适宜培养基中生产高产量番茄红素的三孢布拉霉
WO2012159446A1 (zh) 2011-05-20 2012-11-29 浙江医药股份有限公司新昌制药厂 一种发酵法生产天然β-胡萝卜素的方法和应用
WO2024022771A1 (en) 2022-07-29 2024-02-01 Givaudan Sa Composition comprising a polyketide pigment

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1592784A1 (de) * 2003-01-09 2005-11-09 Basf Aktiengesellschaft Verfahren zur gentechnischen veränderung von organismen der gattung blakeslea, entsprechende organismen und deren verwendung
JP2006515516A (ja) * 2003-01-09 2006-06-01 ビーエーエスエフ　アクチェンゲゼルシャフト 遺伝子改変されたＢｌａｋｅｓｌｅａ属の生物を使用する、カロチノイドまたはそれらの前駆体を製造するための方法、上記方法によって製造されたカロチノイドまたはそれらの前駆体、ならびにそれらの使用
CN100335642C (zh) * 2005-03-16 2007-09-05 佛山市英迈瑞生物技术服务有限公司 基因重组毕赤酵母生产番茄红素的方法
CN102140052B (zh) * 2010-12-30 2013-12-18 南京工业大学 一种连续提取番茄红素的方法
CN102251008B (zh) * 2011-06-09 2013-05-29 北京化工大学 一种提高由三孢布拉氏霉菌生产番茄红素产量的方法
CN109280685B (zh) * 2017-07-21 2021-11-23 浙江医药股份有限公司新昌制药厂 通过增加天然类胡萝卜素发酵过程中溶氧生产天然类胡萝卜素的方法
CN108004272B (zh) * 2017-12-28 2021-09-21 嘉必优生物技术（武汉）股份有限公司 一种利用三孢布拉氏霉菌制备番茄红素的方法及番茄红素制品

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB1034944A (en) * 1963-08-02 1966-07-06 Farmaceutici Italia Production of ª‰-carotene
GB1114043A (en) * 1964-09-23 1968-05-15 Upjohn Co Improvements in or relating to acid compounds and the manufacture thereof by a microbiological method

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB1034944A (en) * 1963-08-02 1966-07-06 Farmaceutici Italia Production of ª‰-carotene
GB1114043A (en) * 1964-09-23 1968-05-15 Upjohn Co Improvements in or relating to acid compounds and the manufacture thereof by a microbiological method

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6989257B2 (en) 2001-06-06 2006-01-24 Dsm Ip Assets B.V. Isoprenoid production
US7232679B2 (en) 2001-06-06 2007-06-19 Dsm Ip Assets B.V. Isoprenoid production
CN1330746C (zh) * 2001-10-29 2007-08-08 Dsmip资产有限公司 无外源胡萝卜素生成抑制剂条件下在适宜培养基中生产高产量番茄红素的三孢布拉霉
WO2003056028A1 (es) 2001-12-31 2003-07-10 Vitatene, S.A. Procedimiento mejorado de produccion de licopeno mediante la fermentacion de cepas seleccionadas de blakeslea trispora, formulaciones y usos del licopeno obtenido
JP2005512599A (ja) * 2001-12-31 2005-05-12 ビタテネ、ソシエダッド アノニマ ブラケスレアトリスポラの選択された菌株の発酵による改善されたリコペン産生方法、このようにして得たリコペンの調合物及び使用
JP2009171973A (ja) * 2001-12-31 2009-08-06 Vitatene Sa ブラケスレアトリスポラの選択された菌株の発酵による改善されたリコペン産生方法、このようにして得たリコペンの調合物及び使用
EP2143800A1 (en) 2001-12-31 2010-01-13 Vitatene, S.A. Formulations of lycopene and uses thereof
WO2012159446A1 (zh) 2011-05-20 2012-11-29 浙江医药股份有限公司新昌制药厂 一种发酵法生产天然β-胡萝卜素的方法和应用
WO2024022771A1 (en) 2022-07-29 2024-02-01 Givaudan Sa Composition comprising a polyketide pigment

Also Published As

Publication number Publication date
EP1184464B1 (en) 2005-11-02
AU5079200A (en) 2001-01-02
WO2000077234A3 (es) 2001-02-08
EP1184464A2 (en) 2002-03-06
ES2156735A1 (es) 2001-07-01
CN1353765A (zh) 2002-06-12
ES2252009T3 (es) 2006-05-16
JP3904924B2 (ja) 2007-04-11
ES2156735B1 (es) 2002-02-16
DE60023693T2 (de) 2006-07-20
CN1252276C (zh) 2006-04-19
JP2003502052A (ja) 2003-01-21
ATE308622T1 (de) 2005-11-15
DE60023693D1 (de) 2005-12-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0635576B1 (en) Bacteria belonging to new genus and process for production of carotenoids using same
ES2252009T3 (es) Metodo de produccion de licopeno.
JP4463347B2 (ja) 飼料添加用色素含有物
JPH05508532A (ja) ゼアキサンチン及びゼアキサンチン含有組成物の製造
CN102186984A (zh) 类胡萝卜素的发酵法
US20080293097A1 (en) Biological Production of Zeaxanthin and Carotenoid Biosynthesis Control
AU2004274750B2 (en) Process for producing carotenoid compound
ES2336199T3 (es) Blakeslea trispora productora de un rendimiento elegvado de licopeno en un medio adecuado en ausencia de un inhibidor exogeno de la carotenogenesis.
JP2007244205A (ja) カロテノイド類の製造方法
JP4290559B2 (ja) ブラケスレアトリスポラ（Ｂｌａｋｅｓｌｅａｔｒｉｓｐｏｒａ）の（＋）株及び（−）株を使用する混合培養物の発酵によるβ−カロテンの生産方法
EP1956077A1 (en) Novel microorganism and method for producing carotenoid using the same
MXPA04007367A (es) Procedimiento de produccion de astaxantina mediante la fermentacion de cepas seleccionadas de xanthophyllomyces dendrorhous.
JP5838552B2 (ja) 新規微生物及びそれを用いたカロテノイドの生産方法
Kalingan et al. Application of agro-industrial by-products for riboflavin production by Eremothecium ashbyii NRRL 1363
WO2021172372A1 (ja) シス型キサントフィル組成物および使用方法
JP4847799B2 (ja) 新規微生物、および新規カロテノイドの製造方法
EP0449051B1 (en) Novel, physiologically active substances, benastatins A and B, and production and use thereof
RU2102416C1 (ru) Способ получения ликопина
JP2003304895A (ja) リコペンの醗酵生産法
US3597324A (en) Preparation of the antibiotic rifamycin sv
JP4935259B2 (ja) 新規微生物およびそれを用いたカロテノイド類の製造方法
JP2005046027A (ja) 合成培地を用いたカロテノイドの製造法
JPH05271145A (ja) 新規生理活性物質ベキノスタチンａおよびｂ、その製造法およびその用途
JPH05105693A (ja) Ｗｓ４４１８物質、その製法及び用途
EA002468B1 (ru) Пара штаммов гетероталличного гриба “blakeslea trispora” всб-129(-) и всб-130(+), продуцирующая ликопин, и способ получения ликопина

Legal Events

Date Code Title Description
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 00808484.X

Country of ref document: CN

AK Designated states

Kind code of ref document: A2

Designated state(s): AE AG AL AM AT AU AZ BA BB BG BR BY CA CH CN CR CU CZ DE DK DM DZ EE ES FI GB GD GE GH GM HR HU ID IL IN IS JP KE KG KP KR KZ LC LK LR LS LT LU LV MA MD MG MK MN MW MX MZ NO NZ PL PT RO RU SD SE SG SI SK SL TJ TM TR TT TZ UA UG US UZ VN YU ZA ZW

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A2

Designated state(s): GH GM KE LS MW MZ SD SL SZ TZ UG ZW AM AZ BY KG KZ MD RU TJ TM AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE BF BJ CF CG CI CM GA GN GW ML MR NE SN TD TG

AK Designated states

Kind code of ref document: A3

Designated state(s): AE AG AL AM AT AU AZ BA BB BG BR BY CA CH CN CR CU CZ DE DK DM DZ EE ES FI GB GD GE GH GM HR HU ID IL IN IS JP KE KG KP KR KZ LC LK LR LS LT LU LV MA MD MG MK MN MW MX MZ NO NZ PL PT RO RU SD SE SG SI SK SL TJ TM TR TT TZ UA UG US UZ VN YU ZA ZW

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A3

Designated state(s): GH GM KE LS MW MZ SD SL SZ TZ UG ZW AM AZ BY KG KZ MD RU TJ TM AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE BF BJ CF CG CI CM GA GN GW ML MR NE SN TD TG

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application
DFPE Request for preliminary examination filed prior to expiration of 19th month from priority date (pct application filed before 20040101)
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2000935226

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2001 503676

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 2000935226

Country of ref document: EP

REG Reference to national code

Ref country code: DE

Ref legal event code: 8642

WWG Wipo information: grant in national office

Ref document number: 2000935226

Country of ref document: EP