UA125937C2 - Спосіб видалення домішок з препаратів на основі бактеріальних капсульних полісахаридів - Google Patents

Спосіб видалення домішок з препаратів на основі бактеріальних капсульних полісахаридів Download PDF

Info

Publication number
UA125937C2
UA125937C2 UAA201911657A UAA201911657A UA125937C2 UA 125937 C2 UA125937 C2 UA 125937C2 UA A201911657 A UAA201911657 A UA A201911657A UA A201911657 A UAA201911657 A UA A201911657A UA 125937 C2 UA125937 C2 UA 125937C2
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
polysaccharide
potassium
solution
differs
impurities
Prior art date
Application number
UAA201911657A
Other languages
English (en)
Inventor
Раджів Мхаласакант Дере
Раджив Мхаласакант Дере
Самбхаджі Шанкар Пісал
Самбхаджи Шанкар ПИСАЛ
Даттатрейа Сарма Аннамраджу
Original Assignee
Сірем Інстітьют Оф Індіа Прайвет Лімітед
Сирем Инститьют Оф Индиа Прайвет Лимитед
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Сірем Інстітьют Оф Індіа Прайвет Лімітед, Сирем Инститьют Оф Индиа Прайвет Лимитед filed Critical Сірем Інстітьют Оф Індіа Прайвет Лімітед
Publication of UA125937C2 publication Critical patent/UA125937C2/uk

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/04Polysaccharides, i.e. compounds containing more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic bonds
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08BPOLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
    • C08B37/00Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
    • C08B37/0003General processes for their isolation or fractionation, e.g. purification or extraction from biomass
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/095Neisseria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08BPOLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
    • C08B37/00Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08HDERIVATIVES OF NATURAL MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08H1/00Macromolecular products derived from proteins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08LCOMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L5/00Compositions of polysaccharides or of their derivatives not provided for in groups C08L1/00 or C08L3/00
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/60Medicinal preparations containing antigens or antibodies characteristics by the carrier linked to the antigen
    • A61K2039/6031Proteins
    • A61K2039/6037Bacterial toxins, e.g. diphteria toxoid [DT], tetanus toxoid [TT]

Abstract

Винахід стосується удосконаленого процесу очищення бактеріальних капсульних полісахаридів, зокрема капсульних полісахаридів з грамнегативних бактерій. Спосіб включає концентрацію та діафільтрацію зібраної речовини, обробку за допомогою аніонного мийного засобу та міцного лугу, з наступним центрифугуванням, діафільтрацією та осадження бактеріальних полісахаридів на основі катіонного мийного засобу. Спосіб забезпечує значне зменшення вмісту домішок ендотоксину, білка і нуклеїнової кислоти, що дозволяє підвищити ступінь відновлення капсульного полісахариду та зберегти потрібні рівні O-ацетилу. Цей спосіб є раціональним, безензимним та включає меншу кількість етапів очищення.

Description

Галузь техніки
Винахід загалом належить до галузі біотехнологій, і зокрема до отримання та подальшої переробки продукту з метою очищення бактеріальних капсульних полісахаридів.
Рівень техніки
Меївззегіа тепіпойідіє (менінгококу є основною причиною інфікування оболонок (м'яких мозкових оболонок) та спинномозкової рідини (СЕ), що оточує головний мозок та спинний мозок, призводячи до смерті та інвалідності людей у різних країнах світу.
Меїззегіа тепіпойіаї5, також відома як менінгокок, є грамнегативною бактерією. Відповідно до структури капсули полісахариду, було визначено 13 серогруп М. Мепіподйаів, з яких 6 серогруп (А, В, С, МУ, Х та ХУ) здатні викликати епідемії (див.: І ее Наттізоп еї аї. 2011).
Менінгіт зустрічається на обмежених територіях у всьому світі, з сезонними спалахами епідемічного бактеріального менінгіту у різних пропорціях. Найбільш поширений менінгококовий менінгіт на африканському континенті, особливо в країнах Африки на південь від Сахари, у так званому поясі менінгіту. За оцінкою Центрів з контролю та профілактики захворювань (СОС) та
Всесвітньої організації охорони здоров'я менінгококовий менінгіт у 2000 році спричинив 171000 смертей у світі. Крім того, звітом СОС підтверджується, що Меї5зегіа тепіпоуйідіє є основною причиною менінгіту та септицемії у дітей та молоді на території США. Таким чином, Меї5зегіа
Мепіпойіай продовжує бути проблемою в сфері охорони здоров'я як в розвинених країнах, так і в країнах, що розвиваються.
У 1996-97 рр., епідемія, спричинена Меї5зегіа Мепіпойі5, серогрупа А, призвела до більш ніж 250000 випадків захворювання та більш ніж 25000 смертей; це змусило світову медичну спільноту зайнятись розробкою вакцини для боротьби з менінгітом групи А в Африці.
У 2010 р. менінгококова полісахаридна кон'югатна вакцина А, тобто Мепаїїімас, була успішно розповсюджена на Африканському континенті, призвівши майже до повного придушення епідемії, спричиненої Меїззегіа Мепіпойіді5, серогрупа А. Зі зменшенням впливу Меїіззегіа
Мепіпойаї5, серогрупа А, посилюється вплив іншої менінгококової серогрупи, такої як Чоловік-С,
Чоловік-М/, Чоловік-Х та Чоловік-Х. Для усунення цього небажаного впливу були розроблені та введені в обіг різноманітні одновалентні та багатовалентні вакцини, що становлять наведену вище серогрупу. Попри те, що багатовалентні кон'югатні вакцини А, С, М та М/ були ліцензовані з 2005 року (Мепасіга?Ф, МепмеоФ)) для використання дітьми та дорослими в Канаді, США та
Європі; вони доступні на ринку за дуже високою ціною, що робить їх недоступними для решти країн світу.
Капсула серогрупи А складається з повторюваних сегментів О-ацетильованого (а1-6)- пов'язаного М-ацетил-маннозамін-1-фосфату. Капсульні полісахариди серогруп В, С, УМ та У складаються з похідних сіалової кислоти; належних до серогруп В та С прямих (а2--8)- та (а2--9)-пов'язаних гомополімерів сіалової кислоти, а змінні послідовності а-галактози або декстрози і сіалової кислоти представлені серогрупами УМ та М. Домішки в ферментативному бульйоні по-різному взаємодіють з повторюваними частками, присутніми в капсульних полісахаридах. Таким чином, існує потреба у процесі, в якому використовуються ці різні взаємодії з метою ізоляції різних бактеріальних капсульних полісахаридів з різних серогруп.
Відповідно до Серій технічних звітів ВООЗ, присвячених менінгококовій кон'югатній вакцині, ізольовані полісахариди повинні відповідати наступним технічним характеристикам:
Таблиця 1
Параметр контролю здоров'я
РЗ РЗ РЗ розмірів
Класичні процеси очищення бактеріальних капсульних полісахаридів, що використовуються в вакцинах, включають декілька селективних осаджень з етаноловим та/або катіонним мийним засобом з наступним безперервним центрифугуванням, ультра- центрифугуванням, та видалення білків за допомогою фенолу.
Перша робота, присвячена ізоляції полісахариду Меїззегіа Мепіпойіаїв в Серогрупі А, В та С, була опублікована Сої5спіїсп еї аі. (1969). В Соївбспіїсп еї а. описано катіонний мийний засіб
Сеїамоп (гексадецил триметиламміний бромід) для швидкого осадження негативно заряджених полісахаридів з цільної культури з наступною дисоціацією комплексу мийний засіб-полісахарид, використовуючи екстрагування та центрифугування 0,9 М Сасі»;; технологія осадження етанолу використовувалась для видалення нуклеїнової кислоти, білюи видалялись шляхом обробки полісахаридів ацетатом натрію; з наступною гомогенізацією за допомогою бутанолу із вмістом хлороформу, також описується альтернативний спосіб використання гарячої феноло-водної суміші. Метод остаточного очищення передбачав осадженням полісахаридів етанолом (4-5 разів) та ацетоном. Цей метод пов'язаний з такими незручностями як використання хлороформу та великою кількістю етанолу. (Див.: Т.Р. Раю, Мабхіег5 ІПебві5, Іп5ійшо де Опцітіса, Опімегзідаде
Еедегаї до Кіо де дапеїго, Ріо-де-Жанейро, 2003, стор. 95).
У ТапігакКі еї а. описано процес очищення полісахариду Меїззегпа тепіпуйіаі5 С, в якому вилучення фенолу було замінено на гідроліз протеїнази з використанням суміші протеїнази К, нагарсе та трипсину; тангенціальна ультрафільтрація у порожньому волокні з відокремленням на рівні 100 кДа замість ультрафільтраціїї з наступною ретельною діафільтрацією з використанням 100 кДа відокремлювальної мембрани, що виконується у 20 ммоль Ттгі5-НОЇ буферному розчині 0,5 95 дезоксихолату, з метою видалення білків з низькою молекулярною масою та ліпополісахаридів (І РБ). У Тапі?акі еї ам. описано процес очищення полісахариду
Меївззегіа тепіпойідіє С, в якому вилучення фенолу було замінено на гідроліз протеїнази з використанням суміші протеїнази К, нагарсе та трипсину; тангенціальна ультрафільтрація у порожньому волокні з відокремленням на рівні 100 кДа замість ультрафільтрації; з наступною ретельною діафільтрацією з використанням 100 кДа відокремлювальної мембрани, що виконується у 20 ммоль Ттгі5-НСІ буферному розчині 0,5 95 дезоксихолату, з метою видалення білків з низькою молекулярною масою та ліпополісахаридів (І РБ). |Див.: Тапілакі еї аї.; Уоигпаї ої
МісгобіоІодіса! Меїпод5, том 27, випуск 1, вересень 1996 р., стор. 19-23, та сопсаїмез еї аї. 2007;
Еоптаїех; Соттипісайпуд Сиптепі Вевзєагсп апа Едисайопа! Торісз апа Тгепідз іп Арріїєйд
Коо) Містобіоіоду)|.
У ТР Райо еї аІ. (2006) описано змінений процес очищення полісахариду Меї5зегіа тепіпоуйідіє С, що включає безперервне потокове центрифугування культури з метою видалення клітин; концентрацію надосадової рідини шляхом тангенціальної потокової фільтрації (відокремлення на рівні 100 кДа); додавання 0,5 95 БОС, нагрівання до 55 "С мінімум протягом 30 хв. та тангенціальну фільтрацію (відокремлення на рівні 100 кДа); аніонообмінну хроматографію (Джерело 150)) та ексклюзивну хроматографію (Сефароза СІ -4В). |Див.: Т.Р.
Райо в! а). / У. Спготаїйодг. В 832 (2006) 262-267.
У 05 7491517 В2 описано використання броміду цетримонію, етанолу, протеїнази К, активованого вугілля та гуль-фільтрації для видалення домішок під час очищення полісахариду
Меїззегіа тепіпойідіє С. Проте, цей багатоетапний процес зумовлює втрати під час відновлення полісахариду, а використовуване активоване вугілля може призвести до небажаного вимивання продуктів.
У УМО 2017006349 описано використання ацетату цинку/сульфату амонію/цитрату натрію для видалення домішок білку із зібраної витяжки М. тепіпуйіаіє. Крім того, тут описано використання таких ензимів, як бензоназа, протеїназа К або нагарсе для розщеплення залишкових білків та/або матеріалів нуклеїнової кислоти з наступним хроматографічним очищенням.
У УМО 2015128798А1 описано процес видалення домішок з полісахариду Меї5зегіа тепіпойідіє С. Зазначений процес передбачає інкубацію за температури у 50-607С у середовищі з вмістом аніонних мийних засобів, таких як дезоксихолат натрію або НЕРЕ5, діацетилювання сирих полісахаридів з використанням 0,5 - 1,5 М Маон за температури у 507 протягом періоду часу від ЗО хвилин до 10 годин, та з наступним очищенням за допомогою діафільтрації та гідрофобної хроматографії (НІС).
У Тіап еї аІ. описано процес очищення полісахаридів Меїі5зегіа тепіпудйаї5 серогруп С, УМ та
М, що включає використання броміду цетримонію, етанолу, БОС, Саріо АаНеге (багатомодальної аніонообмінної хроматографії), Саріо ОЕАЕ (слабкого аніону) та Зерпадех 025, де вміст ендотоксину становить менше 25 ЕШ/мг, а вміст білку - менше 10 мг/г, вміст нуклеїнової кислоти - 1-7 мг/г Див.: Тіап єї а). 2013 СЕ Неаїйнсаге; Арріїсайоп поїв, 29216880
АД). бо У процедурі, описаній Сої5спіїсп, багатоетапний процес зумовлює втрати продукту під час відновлення на рівні близько 37 95. Крім того, використання фенолу хімічного типу може призвести до небажаних структурних змін у носії полісахариду або білку, та зумовлює утворення небажаних фенольних токсичних відходів.
У процедурі, описаній у 05 7491517 82, МО 2017006349 та ТР Ра еї аї. (2006), застосовуються ензими, які допомагають розщеплювати домішки білку та нуклеїнової кислоти; проте, видалення ензимів та гідролізованого матеріалу є складним процесом, і може відбутись втрата потрібного продукту. Крім того, регуляторні органи обмежили використання тваринних ензимів в продуктах, призначених для людей, через ризик зараження пріонами. Використання ензимів, окрім високої вартості, буде пов'язаним з проблемами регуляторного характеру в рамках СОМР, наприклад, походженням ензимів (тваринним або рекомбінантним), мінливістю активності ензимів від різних постачальників з різних партій тощо.
У МО 2017006349 та 05 4686102 А описано використання сульфату амонію для осадження домішок білку та нуклеїнової кислоти. Натомість, час від часу також відбувається осадження капсульних полісахаридів, що призводить до втрати всього вмісту полісахариду.
Дезоксихолат натрію (БОС) є м'яким мийним засобом та одним з найбільш поширених мийних засобів, що використовується для очищення полісахариду. Дезоксихолат натрію зі стероїдною структурою ядра зумовлює меншу денатурацію та обмежену розчинну здатність, він розриває ендотоксини, не вражаючи хімічну структуру. Таким чином, після видалення дезоксихолату натрію, ендотоксини відновлюють свою біологічну активність. Крім того, процедури на основі БОС не є ефективними у видаленні домішок з полісахаридів, особливо з полісахаридів із вмістом сіалові кислоти. Це пояснюється слабкою мийною здатністю СОС в асоціації ліпосахарид-білок, що утворюється під час процесу виділення та очищення продукту, що зумовлює утворення високих рівнів ендотоксинів та вмісту білку у кінцевому ізольованому полісахариді. Крім того, оскільки дезоксихолат натрію є продуктом тваринного походження, навіть його залишковий вміст у кінцевому продукту може призвести до відмови регуляторних органів та певних релігійних громад прийняти цей продукт.
Технології хроматографії, такі як ексклюзивна хроматографія, іон-обмінна хроматографія та гідрофобна хроматографія успішно використовувались для ізоляції бактеріальних полісахаридів, з ефективним видаленням домішок білку та нуклеїнової кислоти. Попри успішну
Зо ізоляцію бактеріального полісахариду відповідно до технічних умов ВООЗ, використання технологій хроматографії передбачає трудомістку та тривалу підготовку зразка, має обмежені можливості для збільшення обсягів виробництва, пов'язані зі значно зниженням відновленням капсульних полісахаридів, і тому не є прийнятною дешевою альтернативою промисловому виділенню та очищенню продукту.
На виділення та очищення біологічних препаратів припадає 2095 - 8095 сукупної собівартості продукту (Апзе)о апа Раїгіск, 1990), розвиток стратегій виділення та очищення продукту має вирішальний вплив на зниження собівартості та можливість забезпечення вакциною всього населення через державну систему охорони здоров'я.
На сьогодні метод, що використовується для отримання полісахаридів в їхніх очищених формах, включає декілька етапів обробки мийними засобами та диференційне осадження зібраного розчину за допомогою органічного розчинника, такого як етанол.
Проте, наявність наступних двох обмежувальних факторів змушує шукати альтернативний метод очищення.
Наразі, на першому етапі видалення домішок (білки, нуклеїнові кислоти та ендотоксини) використовується аніонний мийний засіб, таких як дезоксихолат натрію (0О0С). БОС - мийний засіб на основі жовчі тваринного походження зі стероїдною структурою ядра. Через свою масивну структуру він має обмежену розчинну здатність та зумовлює меншу денатурацію біологічних молекул. Крім того, можливість його стабільного постачання з потрібною сертифікацією регуляторними органами обмежується одним постачальником/виробником.
Використання значної кількості етанолу та зайві етапи обробки (фільтрація вугіллям) робить процес занадто трудомістким, тривалим та дорогим.
Існує нагальна потреба в альтернативних, простих, практичних та раціональних методах очищення бактеріальних полісахаридів для забезпечення вищого ступеню відновлення полісахаридів. Даний винахід забезпечує надійний та доступний процес виділення та очищення продукту для ізоляції бактеріальних капсульних полісахаридів; зокрема, цей процес забезпечує значне зменшення вмісту домішок ендотоксину, білку і нуклеїнової кислоти, що дозволяє підвищити ступінь відновлення полісахариду та зберегти потрібні рівні О-ацетилу відповідно до технічних умов ВООЗ.
Опис винаходу бо Цей винахід стосується альтернативного процесу очищення бактеріальних капсульних полісахаридів, зокрема капсульних полісахаридів М. тепіпойаів.
Процес включає концентрацію та діафільтрацію зібраної речовини за допомогою 100 кДа тангенціальної потокової фільтрації з наступним додаванням аніонного мийного засобу та міцного лугу для денатурування білків, нуклеїнових кислот та ліпосахаридів. Згодом, біологічний екстракт проходить центрифугування, діафільтрацію та осадження бактеріальних полісахаридів на основі броміду цетримонію. Цей процес забезпечує покращене відновлення полісахаридів, він є практичним, безензимним та раціональним, включаючи меншу кількість етапів очищення.
Зазначений процес забезпечує значне зменшення вмісту домішок ендотоксину, білку і нуклеїнової кислоти, що дозволяє підвищити ступінь відновлення полісахариду та зберегти потрібні рівні О-ацетилу.
Фігури: і. Фіг. 1: Спектри ЯМР для полісахаридів у Чоловіків-О. іі. Фіг. 2: Спектри ЯМР для полісахаридів у Чоловіків- У. ії. Фіг. 3: Спектри ЯМР для полісахаридів у Чоловіків-МУ. їм. Фіг. 4: Спектри ЯМР для полісахаридів у Чоловіків-А. м. Фіг. 5: Спектри ЯМР для полісахаридів у Чоловіків-хХ.
Детальний опис винаходу
Відповідно до другого аспекту винаходу одна з цільових бактеріальних серогруп вирощувалась у прийнятному середовищі та інактивувалась з використанням формальдегіду або будь-якого загальновідомого методу попереднього рівня техніки; з наступним виділення та очищенням продукту з метою ізоляції очищеного капсульного полісахариду. Цільова бактерія для ізоляції капсульного полісахариду в рамках цього винаходу була отримана з грамнегативної бактерії, відібраної з відповідного роду, включаючи, без обмежень, Е5сПегіспіа, Меїів5з5егіа,
Наеторпійн5, Рб5епдотопах, тощо; переважно з капсульного полісахариду, вираженого серогрупою Меїіззегіа тепіпуйіаі5. В іншому аспекті винаходу полісахарид можна отримати з групи, яка включає Неїїсобасіег руїогі, СпІатуаіа рпештопіає, Спіатуаїйа Ігаспотаїйй5, Огеаріаєта игеаїуїйсит, Мусоріазта рпештопіає, біарпуіососсив зрр., тарпуіососсив5 ашгеийв, Зігеріососсив5 5рр., Зігеріососси5 Групи А, Зігеріососсиз Іа, ІБ, ПІ, ПІ, М, МІ, або МІ! Групи В; Зігеріососси5 Групи
С, знеріососсиз руодепе5, Зігеріососси5 адаїасіає, Зігеріососси5 ауздаїасцає, Зігеріососси5
Зо рпеитопіає, Зігеріососси5 міпдап5, Епіегососси5 Таесаїї5, Меїбззепа тепіпдйаїв5, Меїівззега допоїтпоєає, Васійй5 апінгасі5, ЗаІтопеїа 5рр., Заітопеїа їурнпі, Мірпйо споіегає, Разієцгеїа резіїз, Реейдотопаз аєгидіпоза, Сатруіобасієї 5рр., Сатруіобрасієг |єЇшпі, Сіовійаішт 5рр.,
Сіозіаіт аїйісіе, Мусобасіетлит 5рр., Мусобасіегішт гШбегсціовів, Тееропета зрр., Воїтеїїа в5рр.,
Воїтеїйа ригоддопетгі, ІГеріозріга врр., Неторпйи5 дисгеуїі, Согупебасієгішт аїрпіНегіа, Вогае!еїа репив5ів5, Вогаєїе!Пйа рагарепиввів, ВогаеєїеПНа Бгопспізеріїса, Неторпіїи5 іпПнепгає, ЕвсПегіснпіа соїї, зпідеїПа 5рр., Еппіспіа 5рр., та КісКейбіа 5рр. Полісахариди 5ігеріососси5 рпештопіає типу 1,2, 3, 4, 5, бА, 68, 7Е, 8, 9А, 9Е, 9М, 9МУ, 10А, 11А, 12, 14, 15А, 158, 15С, 17Е, 180, 19Е, 19А, 20, 22, 238, 2ЗЕ, 24, ЗЗЕ, 358, 38 і 45; Полісахариди Меїі5зегіа тепіпойідіє серогрупи А, В, С,
О, М/135, Х, У, 2, 29Е; і Н. іпшшепає типу б.
Під час експериментів використовувався наступний біологічний матеріал:
Полісахариди ізолювались від:
Таблиця 2
Вільний білок-носій, тобто СЕМ197 або ТТ. СКМ197, був отриманий з рекомбінантного штаму С5463-003 (МВ101) Рзейидотопах ПЙпогезсеп5 з Ріепех ОБА. ТТ був отриманий з
Сіозігідішт Теїапі (Нагмага Мо 49205) від СКІ, Державного контрольного органу, Касаулі,
Хімачал-Прадеш, Індія. СКІ отримав цей штам від ММІ, Нідерланди.
Відповідно до першого варіанту втілення винаходу, бактеріальний капсульний полісахарид очищався від інактивованої зібраної речовини центрифугуванням; а до надосадової рідини застосовували діафільтрацію за допомогою пристрою 100 кДа тангенціальної потокової фільтрації. Цілком зрозуміло, що фахівцями у цій галузі може використовуватись будь-який інший прийнятний метод замість центрифугування та діафільтрації для концентрації бактеріального капсульного полісахариду. В одному з переважних аспектів цього варіанту втілення капсульний полісахарид отримувався з Меїззегіа Мепіпоййаі5, Серогрупа А, С, М, М та
Х.
Відповідно до другого варіанту втілення винаходу, ультраконцентрат отриманий в рамках першого варіанту втілення, оброблявся за допомогою аніонної поверхнево-активної речовини/мийного засобу. Аніонний мийний засіб вибирається з групи, до складу якої входять: алкілсульфати, додецилсульфат натрію, дезоксихолат натрію, додецилсульфонат натрію, сульфати натрієвого с-алкілсульфату, поліоксіетиленові ефір сульфати натрій жирного спирту, олеїлсульфат натрію, М-олеоїл полі (амінокислота) натрію, сульфонати алкілбензолу натрію, сульфонати альфа-олефін натрію, алкілсульфонати натрію, ефіри альфа-сульфо монокарбонової кислоти, сульфоалкількні ефіри жирної кислоти, сульфонат сукцинату, сульфонати алкіл нафталіну, сульфонати алкану натрію, лігносульфонат натрію Фі алкілглицериловий ефір сульфонату натрію.
В оптимальному варіанті зазначена аніонна поверхнево-активна речовина є алкілсульфатом, бажаніше додецилсульфат натрію у кінцевій концентрації в діапазоні від 0,1 95 до 495, переважно 1 95, зазначена речовина додавалась до ультраконцентрату; розчин перемішували за кімнатної температури протягом 2 годин. Амфіпатичні властивості 505 роблять його сильною хаотропною речовиною, що не лише руйнує білки, а й розчиняє їх.
В іншому аспекті другого варіанту втілення інактивовану зібрану речовину можна безпосередньо обробляти аніонною поверхнево-активною речовиною 3 наступною концентрацію капсульного полісахариду, призводячи до достатнього зменшення вмісту домішок, таким чином роблячи необов'язковим наступний етап з використання катіонного мийного засобу.
Відповідно до третього варіанту втілення винаходу, міцний луг додавався до суміші, отриманої в описаному вище варіанті втілення, і його було кориговано до рН 9-11; розчин постійно перемішували за кімнатної температури протягом 1 години; зазначені міцні луги відбирали з групи, що включає: гідроксид натрію, гідроксид калію, карбонат натрію, гідроксиламін, тріетиламін та гідроксид літію.
Зо Відповідно до переважного аспекту третього варіанту втілення винаходу, міцний луг, тобто гідроксид натрію, додавався у кінцевій концентрації на рівні 5-20 гМ до суміші, отриманої в описаному вище варіанті втілення, і його було кориговано до рН 10,5; розчин постійно перемішували за кімнатної температури протягом 1 години.
В іншому аспекті третього варіанту втілення винаходу, замість лугу ЕДТК ацетат натрію додавався до суміші, отриманої у другому варіанті втілення; розчин постійно перемішували за кімнатної температури протягом 1 години;
Відповідно до четвертого варіанту втілення винаходу, розчин, отриманий в описаному вище варіанті втілення, був нейтралізований (рН 7,0) шляхом додавання неміцної органічної кислоти.
Зазначена неміцна органічна кислота є сумішшю однієї чи кількох кислот, включаючи мурашину кислоту, оцтову кислоту, пропіонову кислоту, щавлеву кислоту. До цієї нейтралізованої суміші було додано гідрофільний спирт, переважно етанол, до досягнення кінцевої концентрації у 30- 3595; розчин інкубувався протягом кількох годин за кімнатної температури з постійним перемішуванням. Гідрофільний спирт вибирається з-поміж метанолу, етанолу, н-пропілового спирту, ізопропілового спирту, ацетону та т-бутилового спирту; або є сумішшю двох чи кількох зазначених речовин; концентрація становить «65 95 або »95 95.
Відповідно до п'ятого варіанту втілення винаходу, надлишок аніонного мийного засобу видаляється із розчину. Розчин, отриманий в описаному вище варіанті втілення, центрифугувався і збиралась надосадова рідина. 0,1 Гм калієвої солі додавалось до надосадової рідини; і після розчинення суміш інкубувалася протягом »3 годин за температури 2- 8 "С. Калієва сіль вибирається з таких речовин, як хлорид калію, калій ацетат, сульфат калію, карбонат калію, гідрокарбонат калію, фосфат калію, фосфат гідрогенфосфату калію, дигідрофосфат калію, селітра калію, та інших калієвих солей, або є сумішшю двох чи кількох зазначених речовин. На цьому етапі використовується слабка розчинність додецилсульфату калію. Після додавання калієвої солі, переважно КСІ, 5О5 у розчині перетворюється на додецилсульфат калію, який маж меншу розчинну здатність і легко осаджується, обумовлюючи повне видалення 505.
Цілком зрозуміло, що фахівці у цій галузі можуть змінювати концентрацію КСІ для отримання бажаного результату. Протокол, зазначений у цьому варіанті втілення винаходу, може бути за потреби змінений фахівцями у цій галузі. бо В іншому аспекті п'ятого варіанту втілення винаходу, надлишок аніонного мийного засобу може видалятись із розчину за допомогою гель-фільтрації, осадження етанолу та іон-обмінних смол/амберлітових колонок.
Відповідно до шостого варіанту втілення винаходу, розчин, отриманий в описаному вище варіанті втілення, центрифугувався і збиралась надосадова рідина. Надосадова рідина пропускалась через 0,2 мкм фільтр, і ультраконцентрат діафільтрували за допомогою 100 кДа тангенціальної потокової фільтрації.
Відповідно до сьомого варіанту втілення винаходу, ультраконцентрат, отриманий в рамках зазначеного варіанту втілення, діафільтрували з використанням 25 ммоль Ттгіб5-НСІ буферної рідини до досягнення кінцевої концентрації у 0,25 Гм. Після цього додавався катіонний мийний засіб до досягнення кінцевої концентрації у 1-2 95; розчин інкубували протягом 1 години за кімнатної температури, постійно перемішуючи. Катіонний мийний засіб обирається з таких речовин, як цетил-триметиламонієва сіль, тетрабутиламонієва сіль, міристил-триметиламонієва сіль та гексадиметрин бромід; або є сумішшю двох чи кількох зазначених речовин. Цілком зрозуміло, що фахівці у цій галузі можуть змінювати концентрацію з 0,195 до 4 95, для отримання бажаного результату. В оптимальному варіанті, катіонний мийний засіб це - бромід цетримонію.
Відповідно до восьмого варіанту втілення винаходу, розчин, отриманий в описаному вище варіанті втілення, може центрифугуватися, і осаджений бромід цетримонію-полісахарид збирався і розчинявся у 30-64 95 етанолі. Розчинену суміш можна додатково центрифугувати для видалення нерозчинених залишків.
Відповідно до дев'ятого варіанту втілення винаходу, до надосадової рідини, отриманої в описаному вище варіанті втілення, додавався Масі до досягнення кінцевої концентрації у 0,1
Гм, з постійним перемішуванням. Осаджений полісахирид збирався та розчинявся у 1 Гм Масі з наступним осадженням спиртом (30-64 9б).
Відповідно до десятого варіанту втілення винаходу, розчин, отриманий в описаному вище варіанті втілення, ретельно діафільтрувався УМЕЇ (водою для ін'єкцій) з використанням 100 кДа тангенціального потокового фільтру і пропускався через 0,2 мкм фільтр. Після цього його зберігали за температури не вище -20 "С у якості кінцевого продукту.
Відповідно до одинадцятого варіанту втілення винаходу, очищений капсульний полісахарид
Зо М. Мепіпойіаїв, Серогрупа С, М/ та ХУ отримували з дотриманням описаної нижче процедури:
М. тепіпойідіє серогрупи С, М/ та М з М, відповідно, вирощувалась у прийнятному середовищі та інактивувалась з використанням формальдегіду;
Додецилсульфат натрію було додано до цієї неактивованої зібраної речовини до досягнення кінцевої концентрації у 1 95; розчин перемішували за кімнатної температури протягом 2 годин;
Гідроксид натрію було додано до кінцевої концентрації у 05-20 ммоль і скориговано до рн 10,5; розчин постійно перемішували за кімнатної температури протягом 1 години;
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, був нейтралізований шляхом додавання неміцної органічної кислоти, тобто оцтової кислоти.
До цього нейтралізованого розчину було додано етанол до досягнення кінцевої концентрації у 30-35 95; розчин інкубувався протягом кількох годин з постійним перемішуванням.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугували і збирали надосадову рідину. 01 Гм хлориду натрію додавалось до надосадової рідини; розчин інкубувався протягом не менш ніж З годин за температури 2-8 76.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугувався і збиралася надосадова рідина. Надосадова рідина пропускалась через 0, мкм фільтр, і ультраконцентрат діафільтрували з використанням 25 ммоль Ттгіз-НСІ буферної рідини за допомогою 100 кДа
МУУСО (номінальне відокремлення за молекулярною масою) тангенціальної потокової фільтрації.
Тіів-НСІ буферна рідина додавалася до ультрафільтрату, отриманого на описаному вище етапі, до досягнення кінцевої концентрації у 0,2 Гм; з наступним додаванням броміду цетримонію до досягнення кінцевої концентрації у 2 95; розчин інкубувався протягом мінімум 1 години за кімнатної температури.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугували і збирали осад, розчинений у 30-64 96 етанолі. Розчинену суміш додатково центрифугували для видалення нерозчинених залишків.
До надосадової рідини, отриманої на описаному вище етапі, додавався Масі до досягнення кінцевої концентрації у 0,1-0,3 Гм. Осаджений Р5 розчиняється у 1 Гм Масі з наступним осадженням з використанням 30-64 Фо спирту.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, ретельно діафільтрувався УМР!Ї з бо використанням 100 кДа тангенціальної потокової фільтрації і пропускався через 0,2 мкм фільтр. (с;
Після цього його зберігали за температури -20 "С у якості кінцевого продукту.
Відповідно до дванадцятого варіанту втілення винаходу, процес очищення, описаний у одинадцятому варіанті втілення, передбачає:
Полісахарид М. тепіпойіді5, Серогрупа С, з відновленням на рівні 60-80 95, де вміст ендотоксину становить менше 50 ЕШ/мг, вміст білку - менше 0,50 95, ф вміст нуклеїнової кислоти - менше 0,20 95.
Полісахарид М. тепіпуйіді5, Серогрупа М, з відновленням на рівні 60-80 95, де вміст ендотоксину становить менше 50 ЕШ/мг, вміст білку - менше 0,50 95, ф вміст нуклеїнової кислоти - менше 0,30 95.
Полісахарид М. тепіпойіаі5, Серогрупа МУ, з відновленням на рівні 60-80 95, де вміст ендотоксину становить менше 50 ЕШ/мг, вміст білку - менше 0,5 95, ф вміст нуклеїнової кислоти - менше 0,2 95.
Відповідно до тринадцятого варіанту втілення винаходу, очищений капсульний полісахарид
М. Мепіпойай5, Серогрупа А та Х отримували з дотриманням описаної нижче процедури:
М. тепіподйіаї5 серогрупи А та Х, відповідно, вирощувалась у прийнятному середовищі та інактивувалась з використанням формальдегіду;
Додецилсульфат натрію було додано до цієї зібраної неактивованої речовини до досягнення кінцевої концентрації у 1 95; розчин перемішували за кімнатної температури протягом 2 годин;
ЕДТК та ацетат натрію було додано до цієї зібраної неактивованої речовини до досягнення кінцевої концентрації у 1 90; розчин перемішували за кімнатної температури протягом 2 годин;
Було додано етанол для досягнення кінцевої концентрації у 30-35 95; розчин інкубувався протягом кількох годин з постійним перемішуванням.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугували і збирали надосадову рідину. 01 Гм хлориду натрію додавалось до надосадової рідини; розчин інкубувався протягом 23 годин за температури 2-8 76.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугувався і збиралась надосадова рідина. Надосадова рідина пропускалась через 0,2 мкм фільтр, і ультраконцентрат концентрували та діафільтрували з використанням 25 ммоль Ттгі5-НСЇІ рідини за допомогою 100 кДа МУУСО (Номінальне відокремлення за молекулярною масою) тангенціальної потокової
Зо фільтрації.
Бромід цетримонію додавався до досягнення кінцевої концентрації у 1-2 905; розчин інкубувався протягом не менші ніж 1 години за кімнатної температури.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугували і збирали осад, розчинений у 30-64 96 етанолі. Розчинену суміш додатково центрифугували для видалення нерозчинених залишків.
До надосадової рідини, отриманої на описаному вище етапі, додавався Масі до досягнення кінцевої концентрації у 0,1-0,3 Гм. Осаджений Рб5 розчиняється у 1їГм Масі з наступним осадженням з використанням 30-64 Фо спирту.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, ретельно діафільтрувався УМР!Ї з використанням 100 кДа тангенціальної потокової фільтрації і пропускався через 0,2 мкм фільтр.
Після цього його зберігали за температури не вище -20 "С у якості кінцевого продукту.
Відповідно до чотирнадцятого варіанту втілення винаходу, процес очищення, описаний у тринадцятому варіанті втілення, передбачає:
Полісахарид М. тепіпоуйіді5, Серогрупа А, з відновленням на рівні 60-80 95, де вміст ендотоксинів становить менше 50 ЕШ/мг, вміст білку - менше 0,50 95, ф вміст нуклеїнової кислоти - менше 0,20 95.
Полісахарид М. тепіпуйіді5, Серогрупа Х, з відновленням на рівні 60-80 95, де вміст ендотоксинів становить менше 50 ЕМ/мг, вміст білку - менше 0,50 95, а вміст нуклеїнової кислоти - менше 0,30 95.
Відповідно до п'ятнадцятого варіанту втілення винаходу, зазначений очищений полісахарид було кон'юговано з білком-носієм. Цілком зрозуміло, що білком-носієм, який використовується для кон'югації з полісахаридами, може бути будь-який білок-носій, відомий з рівня техніки, відповідно до вимог фахівця у цій галузі. Неконкретні приклади білків-носіїв включають білок- носій, що належить до наступної групи, але не обмежуючись цим: СКМ 197, дифтерійний анатоксин, анатоксин правця, коклюшний анатоксин, кишкова паличка ІТ, кишкова паличка 51, екзотоксин А з Рзхепидотопах аегидіпоза, зовнішня мембрана комплексу с (ОМРС), поріни, перенесення зв'язувальних білків, пневмолізин, пневмококовий поверхневий білок А (Р5рА), пневмокок адгезиновий білок (РзаА), пневмококові поверхневі білюи ВМН-3 та ВМН-11, захисний антиген (РА) Васійи5 апійгасіх, детоксифікований фактор набряку (ЕЕ), летальний фактор (І Є) 60 ВасШив» апійнгасі5, овалбумін, гемоціанін фісурелла (КІ Н) альбумін сироватки людини, альбумін сироватки великої рогатої худоби (В5А) та очищений білковий похідний туберкуліну (РРО).
В іншому аспекті п'ятнадцятого варіанту втілення винаходу, перед кон'югацією полісахарид, очищений миттєвим методом, оброблявся хімічними або механічними засобами, включаючи, без обмежень, ультразвук, мікрохвилі, озоноліз, іонізуюче випромінювання, руйнування клітин високим тиском, гомогенізатор, мікрофлюїдизатор, ацетат натрію, метаперіодат натрію, нагрівання у вакуумі тощо.
У іншому аспекті п'ятнадцятого варіанту втілення винаходу полісахарид, очищений миттєвим методом, може бути кон'юговано з білком-носієм за допомогою відновлювального амінування, ціанілювання, кон'югації карбодіїміду.
Відповідно до шістнадцятого варіанту втілення винаходу, було підготовлено імуногенну композицію. Композиція включає: (а) кон'югат (і) капсульного сахариду Меїіз5зегіа тепіпойіадіб5, серогрупа А, та (ії) анатоксину правця; (р) кон'югат (і) капсульного сахариду Меї55егіа тепіпойіаі5, серогрупа С, та (ії) СКЕМ197; (с) кон'югат (і) капсульного сахариду М. Мепіпойаї5, серогрупа У, та (її) СЕМ 197; (а) кон'югат (ії) капсульного сахариду Меї5зегіа тепіпойіаі5, серогрупа УМ135, та (ії) СЕМ197; і (є) кон'югат (і) капсульного сахариду Меїіз5зегіа тепіпойідіє, серогрупа Х, та (ії) анатоксину правця.
Відповідно до сімнадцятого варіанту втілення винаходу, вміст ендотоксинів можна визначити за допомогою "Тесту на вміст бактеріальних ендотоксинів в рамках кінетичного турбідометричного аналізу (КТА)" або Тесту на пірогенність серед кроликів; вміст білку можна визначити за допомогою методу Лоурі; а вміст нуклеїнової кислоти можна визначити за допомогою спектрофотометрії. Цілком зрозуміло, що для визначення вмісту ендотоксину, білків та нуклеїнової кислоти може використовуватись будь-який прийнятний метод.
В іншому аспекті сімнадцятого варіанту втілення винаходу діапазон молекулярних розмірів очищеного полісахариду Меїі55егіа тепіпойідіє, Серогрупа А, С, МУ, М та Х може було визначено за допомогою ексклюзивної високоефективної рідинної хроматографії.
В іншому аспекті шістнадцятого варіанту втілення винаходу, вміст о-ацетилу можна визначити за допомогою колориметричного аналізу Гестрина.
Приклади:
Приклад 1: Виробництво бактеріальних полісахаридів (Процес отримання первинного продукту М. Мепіпойідіє, Серогрупа С)
За допомогою описаного нижче процесу ферментації були отримані полісахариди.
Шкала ферментації: 300 літрів
Виконувалось миття без розбирання (СІР), випробування на цілісність фільтру методом падіння тиску (ЗІР) ферментера.
Після завершення 5ІР стерильне середовище ферментації було в стерильних умовах переміщено у ферментер.
Середовище формування композиції
Середовище ферментації Серогрупи С
Таблиця З
Харчове середовище Серогрупи С
Таблиця 4
Рівень розчиненого кисню коригувався до потрібних рівнів.
Середовище ферментації інокулювалось культурним організмом. Ферментер експлуатувався в режимі підпитки протягом 11-14 годин.
Після досягнення культурою потрібного ОО при 590 нм, культура була інактивована з використанням формальдегіду.
Після завершення інкубації, температура встановлювалась на рівні 10ж5 "С і здійснювалось відокремлення біомаси за допомогою центрифугування.
Надосадова рідина збиралась та проходила глибоку фільтрацію; освітлена речовина фільтрувалася за допомогою 0,2 мкм фільтру і передавалася на очищення.
Результати:
Таблиця 5
Приклад 2: Виробництво капсульних полісахаридів (Процес отримання первинного продукту
М. Мепіпойіайв5, Серогрупа А, МУ, Х та У)
Відповідно до протоколу, описаного у прикладі 1, вироблявся капсульний полісахарид М.
Мепіпойнаі5, Серогрупа А, МУ, Х та У.
Середовище ферментації Серогрупи У
Таблиця 6
Харчове середовище Серогрупи У
Таблиця 7
Середовище ферментації Серогрупи У
Таблиця 8
Харчове середовище Серогрупи У
Таблиця 9 (Хлоридамонію.у/////777711111111111111Ї111111111081сСсС1С
Результати:
Таблиця 10
За даними аналізу освітлена зібрана речовина Р5 (полісахариду) спостерігалася на рівні 1-6 г/л. Освітлена речовина піддавалася додатковому очищенню.
Приклад 3: Очищення капсульних полісахаридів (Процес виділення та очищення продукту М.
Мепіподйаї5, Серогрупа С) з використанням 505 та наступним осадженням спиртом.
Сирий полісахарид, отриманий відповідно до прикладу 1, змішувався з 505 змінної концентрації. Згодом, етанол додавався до кінцевої концентрації, яка приблизно на 10 95 менше концентрації за якої починається осадження полісахариду. Після цього отриманий розчин фільтрувався.
Концентрація аналізованого 505: 0,1 96,0,5 90,1 90,2 о, З о, 4 90, 5 о, 6 У, 7 о, 8 9, 9 до та 10 95
Усі наведені вище концентрації ХО5 виявились ефективними стосовно зменшення вмісту домішок. При концентрації понад 4 95 505, не спостерігалось суттєвих відмінностей у вмісті домішок.
При концентрації 1 95 505 відбувалось оптимальне усунення домішок, особливу білків.
Очищений полісахарид мав вміст домішок ендотоксинів на рівні 2100 ЕО/мкг полісахариду, У той час як граничне значення, дозволенне ВООЗ, становить «100 ЕМ/мкг полісахариду.
Приклад 4: Очищення капсульних полісахаридів (Процес виділення та очищення продукту М.
Мепіпойнаі5, Серогрупа С)
Протокол:
Було проведено два різних комплекси експериментів, за 5-літровою та 300-літровою шкалою ферментації.
За допомогою описаного нижче процесу очищення були очищені полісахариди.
Сирий полісахарид, отриманий відповідно до прикладу 1, помістили у колбу.
Концентрація сирого полісахариду була збільшена у 3-6 разів за допомогою ТЕЕ з використання касети у 100 кДа.
Зо Додецилсульфат натрію було додано до цієї неактивованої зібраної речовини до досягнення кінцевої концентрації у 1 95; розчин перемішували за кімнатної температури протягом 2 годин;
Гідроксид натрію було додано до кінцевої концентрації у 0,8 - 20 ммоль і скориговано до рн 10,5; розчин постійно перемішували за кімнатної температури протягом 1 години;
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, був нейтралізований шляхом додавання оцтової кислоти.
До цього нейтралізованого розчину було додано етанол до досягнення кінцевої концентрації у 33 90; розчин інкубувався протягом кількох годин з постійним перемішуванням.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугували і збирали надосадову рідину.
Концентрацію етанолу було збільшено до 40 95. 01 Гм хлориду натрію додавалось до надосадової рідини; розчин інкубувався протягом не менш ніж З годин за температури 2 - 8 "С.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугувався і збиралась надосадова рідина. Полісахарид осаджували збільшуючи кінцеву концентрацію етанолу до 65 95.
Гранула полісахариду розчиняли у 1 Гм Масі. Надосадова рідина пропускалась через 0,2 мкм фільтр, і ультраконцентрат діафільтрували з використанням 25 ммоль Тгіз-НСІ буферної рідини за допомогою 100 кДа тангенціальної потокової фільтрації для отримання очищеного полісахариду (Стадія І).
Додавався бромід цетримонію до досягнення кінцевої концентрації у 2 95; розчин інкубувався протягом 1 години за кімнатної температури.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугували і збирали осад, розчинений у 9695 етанолі. Розчинену суміш додатково центрифугували для видалення нерозчинених залишків.
До надосадової рідини, отриманої на описаному вище етапі, додавався Масі до досягнення кінцевої концентрації у 0,2 Гм. Осаджений Р розчиняється у 1 Гм Мас! з наступним осадженням РБ з використанням 65 95 спирту.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, ретельно діафільтрувався на 0,5 Гм масі, з наступним МУ/РІ з використанням 100 кД тангенціальної потокової фільтрації і пропускався через 0,2 мкм фільтр. Після цього його зберігали за температури -20 "С у якості кінцевого продукту.
Результати:
Таблиця 11
Серогрупа С полісахарид Етап | Етап ЇЇ
ОбємР5 | 1 | 50 | 065 | 30 | 06 | 18 (мг/мл) (грамів)
Домішки білку(96) | 93,79 | 109,47 | 06 | 052 | 025 | оз кислоти (96)
Домішки ендотоксин
Ступінчасте
Молекулярний розмір за методом високоефективної нЗ нЗ 434 450 392 376 рідинної хроматографії
Вміст О-ацетилу відновлення (95)
Примітка: Не застосовується
Було проведено два різних комплекси експериментів, за 5-літровою та 300-літровою шкалою ферментації.
Встановлено, що комбіноване використання аніонного мийного засобу та лугу мало значний вплив на зменшення вмісту домішок. Рівень домішок на етапі очищення І та етапі очищення ІІ набагато нижчий за граничні значення, визначені ВООЗ для полісахаридів у Чоловіків-О.
За шкалою у 5 літрів та 300 літрів, Домішки білку (95) - «1 95; Домішки нуклеїнової кислоти (90) - «0,3 95; Домішки ендотоксину (Еб/мкг РБ) - «40 ЕЄП/мкг Р5.
В обох шкалах та на етапі очищення | та етапі очищення ІЇ відновлення очищеного полісахариду становило на 60 95 більше, ніж у сирого зразка.
Приклад 5: Очищення капсульних полісахаридів (Процес виділення та очищення продукту М.
Мепіпойаій5, Серогрупа М та ХУ)
Протокол:
Було проведено два різних комплекси експериментів, за 5-літровою та 300-літровою шкалою ферментації.
За допомогою описаного нижче процесу очищення були очищені полісахариди.
Сирий полісахарид, отриманий відповідно до прикладу 2, помістили у колбу.
Концентрація сирого полісахариду була збільшена у 3-6 разів за допомогою ТЕЕ з використання касети у 100 кДа.
Додецилсульфат натрію було додано до цієї неактивованої зібраної речовини до досягнення кінцевої концентрації у 1 95; розчин перемішували за кімнатної температури протягом 2 годин;
Гідроксид натрію було додано до кінцевої концентрації у 08 - 20 ммоль і скориговано до рн
Зо 10,5; розчин постійно перемішували за кімнатної температури протягом 1 години;
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, був нейтралізований шляхом додавання оцтової кислоти.
До цього нейтралізованого розчину було додано етанол до досягнення кінцевої концентрації у 33 90; розчин інкубувався протягом кількох годин з постійним перемішуванням.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугували і збирали надосадову рідину. 0,1 Гм хлориду натрію додавалось до надосадової рідини; розчин інкубувався протягом близько 8 годин за температури 2-8 76.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугувався і збиралась надосадова рідина.
Надосадова рідина пропускалась через 0,2 мкм фільтр, і ультраконцентрат діафільтрували з використанням 25 ммоль Ттіз-НСІ буферної рідини за допомогою 100 кДа тангенціальної потокової фільтрації для отримання очищеного полісахариду (Стадія І).
Додавався бромід цетримонію до досягнення кінцевої концентрації у 295; розчин інкубувався протягом 1 години за кімнатної температури.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугували і збирали осад, розчинений у 9695 етанолі. Розчинену суміш додатково центрифугували для видалення нерозчинених залишків.
До надосадової рідини, отриманої на описаному вище етапі, додавався Масі до досягнення кінцевої концентрації у 0,25 Гм. Осаджений Р5 розчиняється у 1 Гм Масі з наступним осадженням РБ з використанням 65 95 спирту.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, ретельно діафільтрувався УУБІ з використанням 100 кДа тангенціальної потокової фільтрації і пропускався через 0,2 мкм фільтр.
Після цього його зберігали за температури -20 "С у якості кінцевого продукту (Етап І).
Результат:
Таблиця 12
М. Мепіподйнаїв Сирий зібраний Очищений полісахарид | Очищений полісахарид
Серогрупа У полісахарид Етап | Етап ЇЇ
Шкала ферментації 300 літрів 300 літрів 300 літрів
Об'єм Р 125 | 50 | 075 | 35 | 08 | 295
Концентрація Р вв 723 723 7,88 5.39 вл (мг/мл
Сукупний вміст Р 708 361,5 Бо 275,8 4,81 248 (грамів)
Домішки білку (95) 38,62 38,03
Домішки нуклеїнової кислоти (95) 1,94 3,31 0,25 0,11 0,71
Домішки ендотоксину (ЕО/МКГ РЗ) нЗ нЗ 50 56 44 45 відновлення (95
Молекулярний розмір за методом високоефективної нЗ нЗ 620 68 543 рідинної хроматографії
Вміст О-ацетилу Ліміт: зозмиюли 9 |на 1оовв | ово о
Загальне остаточне з нЗ 76,50 76,29 60,83 68,62 відновлення (95)
Таблиця 13
М. Мепіподйнаїв Сирий зібраний Очищений полісахарид | Очищений полісахарид
Серогрупа М/ полісахарид Етап | Етап ЇЇ
Шкала ферментації 300 літри 300 літри 300 літри
Об'єм Р 71 1 39 | 08 | 285 | 08 | 165
Концентрація Р дов 5,65 3,5 6,01 325 8,75 (мг/мл)
Сукупний вміст РБЗ у 26 220 2,8 171 2,6 144 (грамів)
Домішки білку (95) 60,53
Домішки нуклеїнової кислоти (95) 7,98 12 0,85 1,16 0,1
Домішки ендотоксину
ЕЦ/МКг Ре нЗ нЗ -30 -40 -20 -10
Ступінчасте
Молекулярний розмір за методом високоефективної нЗ нЗ 400 420 395 80 рідинної хроматографії
Вміст О-ацетилу
Загальне остаточне
Було проведено два різні комплекси експериментів, за 5-літровою та 300-літровою шкалою ферментації.
Для порівняння, рівень домішок на етапі очищення | та етапі очищення ІІ був набагато нижчий за граничні значення, визначені ВООЗ для полісахаридів у Чоловіків-У та Чоловіків-МУ.
Встановлено, що комбіноване використання аніонного мийного засобу та луги мало значний вплив на зменшення вмісту домішок. Рівень домішок на етапі очищення І та етапі очищення ІІ набагато нижчий за граничні значення, визначені ВООЗ для полісахаридів у Чоловіків-О.
За шкалою у 5 літрів та 300 літрів, Домішки білку (95) - «3,5 95; Домішки нуклеїнової кислоти (90) - «1,5 95; Домішки ендотоксину (ЕбО/мкг РБ) - «60 ЕЄП/мкг Р5.
В обох шкалах та на етапі очищення І та етапі очищення ІЇ відновлення очищеного полісахариду становило на 60 95 більше, ніж у сирого зразка.
Приклад 6: Очищення капсульних полісахаридів (Процес виділення та очищення продукту М. Мепіпоййаі5, Серогрупа А та Х)
Протокол:
Було проведено два різні комплекси експериментів, за 5-літровою та 300-літровою шкалою ферментації.
За допомогою описаного нижче процесу очищення були очищені полісахариди.
Сирий полісахарид, отриманий відповідно до прикладу 2, помістили у колбу.
Концентрація сирого полісахариду була збільшена у 3-6 разів за допомогою ТЕЕ з використання касети у 100 кДа.
Додецилсульфат натрію було додано до цієї неактивованої зібраної речовини до досягнення кінцевої концентрації у 1 95; розчин перемішували за кімнатної температури протягом 2 годин;
Ацетат натрію, ЕДТК та додецилсульфат натрію було додано до кінцевої концентрації у 6 95, 2 ммоль і 1 95, відповідно; розчин постійно перемішували за кімнатної температури протягом 1 години;
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугували і збирали надосадову рідину. 0,1 Гм хлориду натрію додавалось до надосадової рідини; розчин інкубувався протягом
Зо близько З годин за температури 2-8 76.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугувався і збиралась надосадова рідина.
Надосадова рідина пропускалась через 0,2 мкм фільтр, і ультраконцентрат діафільтрували з використанням 25 ммоль Ттіз-НСІ буферної рідини за допомогою 100 кДа тангенціальної потокової фільтрації для отримання очищеного полісахариду (Стадія І).
Додавався бромід цетримонію до досягнення кінцевої концентрації у 295; розчин інкубувався протягом 1 години за кімнатної температури.
Таблиця 14
М. Мепіпойідів Серогрупа А Сирий зібраний | Очищений полісахарид | Очищений полісахарид полісахарид Етап | Етап ІІ
Шкала ферментації
Об'єм Р
Концентрація Р5 (мг/мл) 11,44
Сукупний вміст Р (грамів) 298,35 292,5
Домішки білку (95) 19,31
Домішки ендотоксину (ЕО/МКГ РЗ) нЗ 29,08 35
Залишковий 505 стро НЗ -5 -5 служби (мкг/дм3
Ступінчастевідновлення(95)|й // НЗ | 77777752 77777777 Ї77777771717987121С
Молекулярний розмір за методом високоефективної нЗ 350 306 рідинної хроматографії
Вміст О-ацетилу Ліміт: » 2 НЗ 2,69 2.65
ММоль/г
Загальне остаточне
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, центрифугували і збирали осад, розчинений у 9695 етанолі. Розчинену суміш додатково центрифугували для видалення нерозчинених залишків.
До надосадової рідини, отриманої на описаному вище етапі, додавався Масі до досягнення кінцевої концентрації у 0,2 Гм. Осаджений Р розчиняється у 1 Гм Мас! з наступним осадженням з використанням 65 95 спирту.
Розчин, отриманий на описаному вище етапі, ретельно діафільтрувався УМР!Ї з використанням 100 кД тангенціальної потокової фільтрації і пропускався через 0,2 мкм фільтр.
Після цього його зберігали за температури -20 "С у якості кінцевого продукту (Етап І).
Результати:
Таблиця 15
М. Мепіподйнаїв Сирий зібраний | Очищений полісахарид | Очищений полісахарид
Серогрупа Х полісахарид Етап | Етап ЇЇ
Шкала ферментації
Об'єм Р
Концентрація Р 5,05 5.23 6,21 (мг/мл)
Сукупний вміст Р 27715 209,2 186,30 (грамів)
Домішки білку (95) 18,21 771171176066 | 054 2 щ
Домішки нуклеїнової кислоти (95) 1,16 0,76 0,14
Домішки ендотоксину
ЕШ/мкг Р) нЗ 30 13,79
Залишковий 505 стро НЗ -5 -5 служби (мкг/дм3
Ступінчасте
Продовження таблиці 15
БМолекулярний розмір за методом високоефективної Нз 485 473 рідинної хроматографії
Загальне остаточне
Для порівняння, рівень домішок на етапі очищення | та етапі очищення ІІ був набагато нижчий за граничні значення, визначені ВООЗ для полісахаридів у Чоловіків-А та Чоловіків-Х.
Встановлено, що використання аніонного мийного засобу мало значний вплив на зменшення вмісту домішок. Рівень домішок на етапі очищення І та етапі очищення ІІ набагато нижчий за граничні значення, визначені ВООЗ для полісахаридів у Чоловіків-А та Чоловіків-Х.
За шкалою у 5 літрів та 300 літрів, Домішки білку (95) - «2,5 95; Домішки нуклеїнової кислоти (90) - «1 У; Домішки ендотоксину (Еб/мкг РБ) - «40 ЕЄП/мкг Р5.
В обох шкалах та на етапі очищення | та етапі очищення Ії відновлення очищеного полісахариду серогрупи Х становило на 60 95, а полісахариду серогрупи А становило на 50 95 більше, ніж у сирого зразка.
Приклад 7:
Структурна міцність ізольованих полісахаридів (РБ5)
Спектри ЯМР представлені на Фіг. 1-5.
Структурна цілісність ізольованих полісахаридів М. Мепіпойіаіє, Серогрупа А, С, МУ, М та хХ була перевірено за допомогою ядерного магнітного резонансу (ЯМР).
Зафіксовані спектри ЯМР були співставними, і підтвердились їх належність до частково О- ацетильованого менінгококового полісахариду серогрупи А, С, УМ, та У; ї М-ацетильованого полісахариду серогрупи Х.
Приклад 8:
Порівняльний аналіз процесу очищення на основі дезоксихолату натрію (БОС) та заявленого процесу очищення полісахаридів.
Процес на основі дезоксихолату натрію (0ОС) "Вдосконалений метод очищення полісахариду менінгококу" Тапігакі еї аІ. (Сопіпдаєє апі Роїузасспагіде Массіпе5, Ровієг 79, пер'//пеівзегіа.ога/рпс/1996/Меі51996-спар4. раю" було оптимізовано наступним чином:
Збирання продукту через 100 кД. Обробка БОСАЕОТА-МаОАс ж- етанолом (40 95);
Центрифугування, збирання надосадової рідини та фільтрація через 0,2 мкм фільтр;
Концентрація та діафільтрація Обробка бромідом цетримонію (3 95) за кімнатної температури;
Зо Центрифугування та збирання гранул бромід цетримонію-полісахариду; Розчинення гранул бромід цетримонію-полісахариду у 96 95 етанолі та осадження з використанням 0,1 Гм Масі;
Розчинення осаду у 4095 етанолі та додавання 1 Гм Масі (2-8 7С); Центрифугування та збирання надосадової рідини; Фільтрація вугіллям; Осадження Р5З5 шляхом підвищення концентрації етанолу; Розчинення гранул полісахариду у УМРІ і концентрація та діафільтрація за допомогою УМРІ, і зберігання за -20 "С після фільтрації через 0,2 мкм фільтр.
Процес на основі БОС широко використовується в галузі для очищення полісахаридів, призначених для застосування у якості вакцинного антигену.
Рівень вмісту домішок у полісахариді, отриманому за методом БОС, було порівняно із отриманим у процесі за заявленим винаходом.
Результати:
Таблиця 16
СТ ее не шо ВЛ . о білку відновлення кислоти (Е/мкг РБ)
Чоловік-А
Чоловік-С
Чоловіку! 895----59----08-- 1-0 --
Чоловіку 895-59-00 --
Чоловік-Х
Метод за винаходом на основі 505 та метод на основі СОС дав аналогічні результати для серогруп А та С, у той час, як метод 505 для серогруп МУ, ХУ та Х 505 дав покращене кінцеве відновлення у порівнянні із методом БОС.
Як видно з наведених вище результатів, змінений процес 505 має однозначні переваги з огляду на простоту використання, а також декілька інших переваг, таких як те, що рос - компонент тваринного походження і не відповідає Халяльним вимогам до виробництва. ПОС виробляється та постачається єдиним виробником у світі, у той час, як 505 це - синтетичний мийний засіб, сертифікований на відповідність Халяльним вимогам до виробництва, який можна замовити у декількох постачальників у світі. ПОС руйнує ендотоксини без впливу на хімічний склад, і після видалення мийного засобу він може поновити свою біологічну активність, у той час, яка 505 завдяки своїм амфіпатичним властивостям та більшому агрегаційному числу добре денатурує та розчиняє протеїни, а також остаточно розщеплює ендотоксини до їхніх монометричних одиниць.
Завдяки використанню 505 зменшене споживання хімікатів та розхідних матеріалів (етанолу, ульрафільтрів, вугільних фільтрів тощо) є безумовною перевагою. Крім того, використання 505 у якості замінника не мало впливу на структурну цілісність полісахаридів.
Приклад 9:
Представлену нижче імуногенну композицію було підготовлено та протестовано на імуногенність.
Композиція включає: (а) кон'югат (і) капсульного сахариду Меїіз5зегіа тепіпойіадіб5, серогрупа А, та (ії) анатоксину правця; (Б) кон'югат (і) капсульного сахариду Меїі5зегіа тепіпойаї5, серогрупа С, та (і) СКМ197; (с) кон'югат (ії) капсульного сахариду М. Мепіпойаїй5, серогрупа У, та (її) СЕМ 197; (а) кон'югат (ії) капсульного сахариду Меї5зегіа тепіпойіаі5, серогрупа УМ135, та (ії) СЕМ197; і (є) кон'югат (і) капсульного сахариду Меїіз5зегіа тепіпойіадіє, серогрупа Х, та (ії) анатоксину правця.
Зо Результати:
Імуногенність імуногенної композиції було встановлено.
Переваги винаходу
Процес забезпечує значне зменшення вмісту домішок ендотоксину, білку і нуклеїнової кислоти, що дозволяє підвищити ступінь відновлення капсульного полісахариду та зберегти потрібні рівні О-ацетилу. Як вбачається із наведених вище результатів, заявлений процес має однозначні переваги з огляду на простоту використання, а також декілька інших переваг, таких як:
Регуляторні питання; ОС - мийний засіб тваринного походження і не відповідає Халяльним вимогам до виробництва. Він виробляється та постачається єдиним виробником у світі, у той час, як 505 - це синтетичний мийний засіб, сертифікований на відповідність Халяльним вимогам до виробництва, який можна замовити у декількох постачальників у світі.
Функціональне питання: БОС руйнує ендотоксини без впливу на хімічний склад, і після видалення мийного засобу він може поновити свою біологічну активність, у той час, яка 505 завдяки своїм амфіпатичним властивостям та більшому агрегаційному числу добре денатурує та розчиняє протеїни, а також остаточно розщеплює ендотоксини до їхніх монометричних одиниць.
Завдяки використанню 505 зменшене споживання хімікатів та розхідних матеріалів (етанолу, ульрафільтрів, вугільних фільтрів тощо) становить однозначну перевагу.
Процес за винаходом в рамках цієї патентної заявки забезпечує значне зменшення вмісту інших клітинних домішок. Крім того, процес забезпечує ефективне видалення реагентів, використаних під час отримання первинного продукту, а також виділення та очищення кінцевих продуктів
Крім того, процес за винаходом в рамках цієї патентної заявки не має впливу на структурну цілісність полісахаридів, тим самим зберігаючи імуногенність.
З огляду на широке коло можливих конструктивних рішень, до яких можуть бути застосовані принципи представленого винаходу, слід визнати що проілюстровані конструктивні втілення є лише переважними прикладами винаходу і не можуть розглядатися, як фактор обмеження галузі застосування винаходу.

Claims (37)

ФОРМУЛА ВИНАХОДУ
1. Спосіб ізоляції полісахариду з Меї55егіа Мепіпойіаі5, вибраної з серотипу С, серотипу М/ та серотипу У, який включає етапи: а) додавання мийного засобу, що містить додецилсульфат натрію (505), до розчину сирого полісахариду; р) додавання гідроксиду натрію (Маон) до розчину; с) рН-нейтралізацію розчину; а) осадження розчину за допомогою спирту з наступним центрифугуванням та збиранням надосадової рідини; е) видалення мийного засобу, що міститься у надосадовій рідині; та І) концентрацію та діафільтрацію полісахариду; при якому одержаний полісахарид має ступінь очищення 60-80 95.
2. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що також включає наступні етапи: 9) змішування розчину полісахариду з катіонним мийним засобом; Р) центрифугування розчину та збирання гранул; та Зо ї) розчинення гранул у спирті з наступним осадженням полісахаридів солями.
3. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що: () очищений полісахарид з Меїззегіа Мепіпойіай»5 серотипу С має профілі О-ацетилювання 21,5 ммоль/г, домішки білка «1 95, домішки нуклеїнової кислоти «0,3 95 та домішки ендотоксину «50 ЕШ/мкг; (ії) очищений полісахарид з Меїззегіа Мепіпойіаї»в5 серотипу У має профілі О-ацетилювання 50,3 ммоль/г, домішки білка «5 95, домішки нуклеїнової кислоти «2 95 та домішки ендотоксину «60 ЕМШ/мкг; та (ії) очищений полісахарид з Меїі5зегіа Мепіпойідіє серотипу УМ має профілі О-ацетилювання 20,3 ммоль/г, домішки білка «5 95, домішки нуклеїнової кислоти «2 956 та домішки ендотоксину «50 ЕОПО/мкг.
4. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що кінцева концентрація мийного засобу (505) у розчині складає 0,1-4,0 95, краще менше 1 95.
5. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що кінцева концентрація гідроксиду натрію (Маон) у розчині складає 5-50 ммоль, краще 5-20 ммоль, найкраще 8-15 ммоль.
6. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що рН розчину після додавання гідроксиду натрію (мМаон) складає 9-11 рН, краще 10,5 рн.
7. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що розчин нейтралізований (рН 7,0) шляхом додавання неміцної органічної кислоти.
8. Спосіб за п. 7, який відрізняється тим, що неміцна органічна кислота є мурашиною кислотою, оцтовою кислотою, пропіоновою кислотою, щавлевою кислотою, краще оцтовою кислотою.
9. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що видалення мийного засобу здійснюють з використанням принаймні одного або кількох з наступних процесів: обробка калієвою сіллю, гель-фільтрація, обробка етанолом та іонобмінними смолами/амберлітовими колонками.
10. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що видалення мийного засобу здійснюють осадженням мийного засобу з використанням калієвої солі.
11. Спосіб за п. 10, який відрізняється тим, що калієва сіль є однією з таких речовин як хлорид калію, калію ацетат, сульфат калію, карбонат калію, гідрокарбонат калію, фосфат калію, фосфат гідрогенфосфату калію, дигідрофосфат калію, селітра калію та інші калієві солі або є бо сумішшю двох чи кількох зазначених речовин.
12. Спосіб за п. 11, який відрізняється тим, що калієва сіль є хлоридом калію.
13. Спосіб за п. 10, який відрізняється тим, що кінцева концентрація калієвої солі у розчині складає не менше концентрації, за якої мийний засіб достатньо осаджується.
14. Спосіб за п. 10, який відрізняється тим, що кінцева концентрація калієвої солі у розчині складає менше 300 ммоль, краще менше 100 ммоль.
15. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що полісахирид є полімером залишків сіалової кислоти.
16. Спосіб за п. 13, який відрізняється тим, що катіонний мийний засіб вибираний з таких речовин як цетилтриметиламонієва сіль, тетрабутиламонієва сіль, міристилтриметиламонієва сіль та гексадиметрину бромід або є сумішшю двох чи кількох зазначених речовин.
17. Спосіб за п. 2, який відрізняється тим, що катіонний мийний засіб є бромідом цетримонію (СТАВ).
18. Спосіб за п. 2, який відрізняється тим, що концентрація катіонного мийного засобу становить менше 3 95, краще 1 905.
19. Спосіб за пп. 1 та 2, який відрізняється тим, що спирт є гідрофільним спиртом.
20. Спосіб за п. 19, який відрізняється тим, що гідрофільний спирт вибрано з метанолу, етанолу, н-пропілового спирту, ізопропілового спирту, ацетону та т-бутилового спирту або є сумішшю двох чи кількох зазначених речовин; концентрація становить «65 95 або »95 95.
21. Спосіб за пп. 1 та 2, який відрізняється тим, що спирт є етанолом.
22. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що концентрацію та діафільтрацію полісахариду здійснюють за допомогою тангенціальної потокової фільтрації з 100 кКДа ММУ/СО мембраною.
23. Спосіб за п. 2, який відрізняється тим, що сіль, використовувана для осадження, є хлоридом натрію, хлоридом амонію, хлоридом калію або є сумішшю двох чи кількох зазначених речовин.
24. Спосіб за п. 2, який відрізняється тим, що калієва сіль, використовувана для осадження, є хлоридом калію.
25. Спосіб за п. 2, який відрізняється тим, що кінцева концентрація солі складає 0,25-2 М.
26. Спосіб ізоляції полісахариду з Меї55егіа Мепіпойаі5, вибраної з серотипу А та серотипу Х, який включає етапи: Зо а) додавання мийного засобу, що містить додецилсульфат натрію (505), до розчину сирого полісахариду; Юр) додавання ЕДТК та ацетату натрію до розчину; с) осадження розчину за допомогою спирту з наступним центрифугуванням та збиранням надосадової рідини; а) видалення мийного засобу, що міститься у надосадовій рідині; та е) концентрацію та діафільтрацію полісахариду; при якому одержаний полісахарид має ступінь очищення 60-80 95.
27. Спосіб за п. 26, який відрізняється тим, що спосіб також включає наступні етапи: а) змішування розчину бактеріального полісахариду з катіонним мийним засобом; р) центрифугування розчину та збирання гранул; та с) розчинення гранул у спирті з наступним осадженням солями.
28. Спосіб за п. 26, який відрізняється тим, що: () очищений полісахарид з Меїззегіа Мепіпойіаі5 серотипу А має профілі О-ацетилювання 22 ммоль/г, домішки білка «3 95, домішки нуклеїнової кислоти «1 95 та домішки ендотоксину «50 ЕО/мкг; та (ії) очищений полісахарид з Меї55егіа Мепіпойідіє серотипу Х має домішки білка «1 95, домішки нуклеїнової кислоти «1 95 та домішки ендотоксину «50 ЕШ/мкг.
29. Спосіб за п. 26, який відрізняється тим, що кінцева концентрація додецилсульфату натрію (505) у розчині складає 0,1-4,0 95, краще менше 1 95.
30. Спосіб за п. 26, який відрізняється тим, що видалення додецилсульфату натрію (505) здійснюють з використанням принаймні одного або кількох з наступних процесів: обробка калієвою сіллю, гель-фільтрація, обробка етанолом та іонобмінними смолами/амберлітовими колонками.
31. Спосіб за п. 26, який відрізняється тим, що видалення додецилсульфату натрію (505) здійснюють осадженням додецилсульфату натрію з використанням калієвої солі.
32. Спосіб за п. 26, який відрізняється тим, що кінцева концентрація калієвої солі у розчині складає не менше концентрації, за якої додецилсульфат натрію (505) достатньо осаджується.
33. Спосіб за п. 31, який відрізняється тим, що калієва сіль є однією з таких речовин як хлорид калію, калію ацетат, сульфат калію, карбонат калію, гідрокарбонат калію, фосфат калію,
фосфат гідрогенфосфату калію, дигідрофосфат калію, селітра калію та інші калієві солі або є сумішшю двох чи кількох зазначених речовин.
34. Спосіб за п. 27, який відрізняється тим, що катіонний мийний засіб вибираний з таких речовин як цетилтриметиламонієва сіль, тетрабутиламонієва сіль, міристилтриметиламонієва сіль та гексадиметрину бромід або є сумішшю двох чи кількох зазначених речовин.
35. Спосіб за п. 27, який відрізняється тим, що катіонний мийний засіб є бромідом цетримонію (СТАВ).
36. Спосіб за п. 35, який відрізняється тим, що кінцева концентрація СТАВ у розчині складає 0,5-3,0 95, краще менше 1 95.
37. Спосіб за п. 1 або 26, який відрізняється тим, що ізольований полісахарид застосовують для отримання імуногенної композиції, яка містить: а) кон'югат (ї) капсульного полісахариду Меїіз5зегіа тепіподійаїй5, серогрупа А, та (ії) анатоксину правця; р) кон'югат (ї) капсульного полісахариду Меїз5зегіа тепіпойіаді5, серогрупа С, та (ії) СЕМ197; с) кон'югат (ії) капсульного полісахариду Меїззегіа тепіподаі5, серогрупа У, та (ії) СКМ197; а) кон'югат (ї) капсульного полісахариду Меїз5зегіа тепіпойіаді5, серогрупа М/135, та (і) СКЕМ197; та е) кон'югат (ї) капсульного полісахариду Меїіз5зегіа тепіподййаїй5, серогрупа Х, та (ії) анатоксину правця. Спектри ЯМА для папісвхаридів у Чоловіківс ! : с 18 : і спек чан чи пенею шин ше ни ше ни ши и НО я є їх | ' ще - с
Фіг. 1
Спектри ЯМР для попювхаридів у Чопловнвеу де ї ЯВЕШЕИоНТТУЕнссиВяЕЗЕ» ВЕ Я є Б : ее І 7 МА кн нов ії І І : ; їх : Ії :
Й. ; : Я ! Е 1 й їх ї БЕ ! і : ЗЕ В ; НЕ : вті 1 | ! і ГК | : ї ї ТЕ г 3 х х Н З і МЕНЯ і ; НУК ї . Р ох НО і х Ж. : КУ ІЧ Е КІ КЯ В т х (З Ек я кдд А. Е вЖя й КО дяк я ек, Дб Ки В Крималил АХА С вен лини кп уже поноваі нн анаанненнннняя и о ен пами поли ос вн кс ненні Еояа ж ще я за за зяй 23 ва но око вв края : меди ШЕ че КА і ек У В ї и ши ши шш щ
Фіг. 2 Спектри ЯМР дла повісвкаридів у Чоловік Уу Аж ЖААКХААТ КТ ОВ де АК АААААКААЛАКЛАААКА КК КН АМКУ ЛКАКА ТТ КК НнКТЖнКмевесе у . щ ВЕ ВХВспівцехух Є г ЩЕ ї й Е шиши : шшшши шин ше Е ї х хуй кох ї Не ва 5 ; В у | Н і і ; З : Н Ї і і: ЕІ ї ; і ! ще
Е. . ї Кк - У КЕ ї ! ; | З ї : ! ї Б їі : С. к : КУ й Мак Я З ЕЕ З : Н ше ж ше ш ЩА й ще ше пед я не шини З р ан ва я зе в я А зво Де ДАЧ Си ШИ о М же оч ший :
Фіг. З спекти ЯМР для полювхаридів у Чоловікв-А і сне НН НН КТК НН Ян КК КН Я Я акт схов песо о есе нннн око ккюкктосюееесооооесюееве се сесесте кЖсововАетт ! ІНН Ве ЕЕ ЕВ КН ТВО Й Н ОК НН НИ ; ши ше о СИ І т КУ 3 і і 3 З
З . і х У М хо й По ок п Я Я А п я НН КН ска Еккі замі рова проник рококо кросу рого россии нрчя уки нн нта носу оте срчетесрня "в 23 5 мс ще вх КК ЗК КОМИ Я щ вх зо в ВО дак сей се Небесне кни й ЕВ В ВЕ ВОеК Ко сх с: ШИ
Фіг. 4 Спектри ЯМР для попісвхаридів у Человіківнх з я порося соснова скскомстисжееик ЗУ тилу вався Б те м ВВ: і ц Її і КІ Мона ШИК сій ШУ: ши с: нн а ПН ; ! | : . Е ! ї З ! ї ї З В Бо й . : Е М: КОН : '
п . . Щі : і що пвх пси мк! оркестру речення чесне вно нннкодрнннкенннктенинння, ва о а а за за за я 38 зе ва й ен ТЕ й Ко АУДИ АКА РО ЕП еЦеЕ ПО ов й; шесеилЕавх ЕЕЗЕОН ЩІ ее вевяв ее с: / ЩщЩШ: її
Фіг. 5
UAA201911657A 2017-05-05 2018-05-03 Спосіб видалення домішок з препаратів на основі бактеріальних капсульних полісахаридів UA125937C2 (uk)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
IN201721015961 2017-05-05
PCT/IB2018/053069 WO2018203268A1 (en) 2017-05-05 2018-05-03 Method for removal of impurities from bacterial capsular polysaccharide based preparations

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA125937C2 true UA125937C2 (uk) 2022-07-13

Family

ID=62705619

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UAA201911657A UA125937C2 (uk) 2017-05-05 2018-05-03 Спосіб видалення домішок з препаратів на основі бактеріальних капсульних полісахаридів

Country Status (15)

Country Link
US (2) US11739356B2 (uk)
EP (1) EP3619241A1 (uk)
JP (2) JP7319929B2 (uk)
KR (1) KR102565771B1 (uk)
CN (1) CN110831980B (uk)
AU (1) AU2018262438B2 (uk)
BR (1) BR112019022868A2 (uk)
CA (1) CA3062399A1 (uk)
CU (1) CU20190090A7 (uk)
EA (1) EA201992636A1 (uk)
GE (1) GEP20227408B (uk)
MD (1) MD20190088A2 (uk)
UA (1) UA125937C2 (uk)
WO (1) WO2018203268A1 (uk)
ZA (1) ZA201908038B (uk)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IL255106B2 (en) * 2015-05-04 2023-04-01 Pfizer Protein-polysaccharide conjugates of group b streptococcus, methods for preparing conjugates, immunogenic preparations containing conjugates and their uses
AU2018328036B2 (en) * 2017-09-07 2024-03-07 Merck Sharp & Dohme Llc Pneumococcal polysaccharides and their use in immunogenic polysaccharide-carrier protein conjugates
JOP20200214A1 (ar) * 2019-09-03 2021-03-03 Serum Institute Of India Pvt Ltd تركيبات مولدة للمناعة ضد الأمراض المعوية وطرق لتحضيرها
KR102370468B1 (ko) * 2020-03-18 2022-03-03 재단법인대구경북과학기술원 생체 시료 내 잔존하는 음이온 계면 활성제와 이와 결합한 지질 또는 단백질 결합체, 및 마이셀을 제거하는 조성물, 방법 및 이의 용도
EP4150104A1 (en) * 2020-05-14 2023-03-22 Serum Institute Of India Private Limited Methods for simultaneous fragmentation and purification of bacterial polysaccharides
WO2022084852A1 (en) * 2020-10-22 2022-04-28 Pfizer Inc. Methods for purifying bacterial polysaccharides
CN112521520A (zh) * 2020-12-04 2021-03-19 苏州微超生物科技有限公司 脑膜炎球菌荚膜多糖的制备方法
CN115561190B (zh) * 2022-12-01 2023-04-07 南京大学 一种分别定量细菌荚膜多糖和脂多糖的方法

Family Cites Families (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4686102A (en) 1984-04-12 1987-08-11 American Cyanamid Company Multivalent pneumococcal vaccine and preparation thereof
JP2001527388A (ja) 1997-01-24 2001-12-25 シュバイツ ゼールム− ウント インフインスティテュト ベルン 多糖類の新規単離方法
ATE468403T2 (de) * 1997-12-23 2010-06-15 Baxter Healthcare Sa Verfahren zur extraktion und isolierung von bakteriellen hüllpolysacchariden zur verwendung als vakzine oder, an proteine gekoppelt, als konjugierte vakzine
GB0115176D0 (en) 2001-06-20 2001-08-15 Chiron Spa Capular polysaccharide solubilisation and combination vaccines
GB0502096D0 (en) 2005-02-01 2005-03-09 Chiron Srl Purification of streptococcal capsular polysaccharide
US7491517B2 (en) 2006-07-19 2009-02-17 Jeeri R Reddy Method of producing meningococcal meningitis vaccine for Neisseria meningitidis serotypes A,C,Y, and W-135
CN102653565A (zh) * 2011-03-03 2012-09-05 天津康希诺生物技术有限公司 一种从荚膜细菌发酵液纯化荚膜多糖的方法
CN104302315B (zh) 2012-01-30 2018-02-06 印度血清研究所私人有限公司 免疫原性组合物及其制备方法
CN102660603B (zh) * 2012-04-17 2015-03-25 江苏康泰生物医学技术有限公司 一种快速纯化细菌荚膜多糖的方法
BR112015007126A2 (pt) 2012-10-02 2017-08-08 Glaxosmithkline Biologicals Sa composição, método para induzir uma resposta imune, e, uso de uma composição
BR112015011722B1 (pt) * 2012-11-21 2022-08-09 Serum Institute Of India Ltd Método para preparar um polissacarídeo capsular de neisseria meningitidis x
MY186874A (en) * 2014-02-25 2021-08-26 Msd Wellcome Trust Hilleman Laboratories Pvt Ltd A novel downstream process for purifying polysaccharides
CN104592408A (zh) * 2015-01-11 2015-05-06 云南沃森生物技术股份有限公司 一种荚膜多糖的纯化方法
EP3316903A4 (en) 2015-07-04 2019-01-09 Bharat Biotech International Limited POLYSACCHARIDE VACCINE FORMULATIONS AND METHOD FOR THE INDUSTRIAL MANUFACTURE OF BACTERIAL POLYSACCHARIDES

Also Published As

Publication number Publication date
BR112019022868A2 (pt) 2020-05-19
EP3619241A1 (en) 2020-03-11
CN110831980A (zh) 2020-02-21
ZA201908038B (en) 2021-06-30
AU2018262438B2 (en) 2022-07-14
US11739356B2 (en) 2023-08-29
CU20190090A7 (es) 2020-10-20
WO2018203268A1 (en) 2018-11-08
US20200190549A1 (en) 2020-06-18
CN110831980B (zh) 2022-09-27
KR20200015524A (ko) 2020-02-12
CA3062399A1 (en) 2018-11-08
EA201992636A1 (ru) 2020-04-17
US20240026405A1 (en) 2024-01-25
JP2020518707A (ja) 2020-06-25
AU2018262438A1 (en) 2020-01-02
GEP20227408B (en) 2022-08-25
MD20190088A2 (ro) 2020-04-30
KR102565771B1 (ko) 2023-08-10
JP7319929B2 (ja) 2023-08-02
JP2023017929A (ja) 2023-02-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
UA125937C2 (uk) Спосіб видалення домішок з препаратів на основі бактеріальних капсульних полісахаридів
RU2567003C2 (ru) МЕНИНГОКОККОВЫЕ ПОЛИПЕПТИДЫ fHBP
CN103917245B (zh) 用于制备糖‑蛋白质糖缀合物的方法
CN103687612B (zh) 无去污剂制备革兰氏阴性细菌外膜泡囊的方法
KR20150021127A (ko) 스트렙토코커스 뉴모니아 협막 다당류를 제조하기 위한 단축 정제 방법
WO2014080423A2 (en) Production of high yields of bacterial polysaccharides
US10011662B2 (en) Downstream process for purifying polysaccharides
WO2011148382A1 (en) An improved process for the purification of capsular polysaccharides of haemophilus influenza - b, neisseria meningitis such as serotypes a, c, y and w-135, and other similar related capsular polysaccharides produced from both gram negative and gram positive microorganisms using aluminium phosphate with alcohol.
EP2155244B1 (en) Antigenic polysaccharides and process for their preparation
CN108135167A (zh) 脂化psa组合物和方法
US20210070890A1 (en) Method for obtaining purified bacterial polysaccharides
WO2019010080A1 (en) PURIFICATION OF POLYSACCHARIDES FOR THE PRODUCTION OF VACCINES USING LYTIC ENZYMES, TANGENTIAL FILTRATION AND MULTIMODAL CHROMATOGRAPHY
Zanardo et al. Development of a new process for purification of capsular polysaccharide from Streptococcus pneumoniae serotype 14
US20200247911A1 (en) Purification of Bacterial Polysaccharides
EA041065B1 (ru) Способ удаления примесей из препаратов на основе бактериальных капсулярных полисахаридов
RU2283135C1 (ru) Способ выделения очищенных полисахаридов менингококков серогрупп а и с
KR20200021933A (ko) 나이세리아 메닌지티디스 혈청군 x 캡슐 다당류의 급속 고수율 정제 방법
WO2024062494A1 (en) Method for the purification of capsular polysaccharides
US20230183765A1 (en) Methods for simultaneous fragmentation and purification of bacterial polysaccharides
KR20010054032A (ko) 세균성 이질균의 오스피시픽항원의 분리 정제