RU2235767C2 - Твердофазный ферментёр и способ твердофазного культивирования - Google Patents

Твердофазный ферментёр и способ твердофазного культивирования Download PDF

Info

Publication number
RU2235767C2
RU2235767C2 RU2000130228/13A RU2000130228A RU2235767C2 RU 2235767 C2 RU2235767 C2 RU 2235767C2 RU 2000130228/13 A RU2000130228/13 A RU 2000130228/13A RU 2000130228 A RU2000130228 A RU 2000130228A RU 2235767 C2 RU2235767 C2 RU 2235767C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
substrate
fermenter
water
microorganisms
air
Prior art date
Application number
RU2000130228/13A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2000130228A (ru
Inventor
Петер ЛЮТ (DE)
Петер ЛЮТ
Уте АЙБЕН (DE)
Уте АЙБЕН
Original Assignee
Профита Биологишер Пфланценшутц Гмбх
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Профита Биологишер Пфланценшутц Гмбх filed Critical Профита Биологишер Пфланценшутц Гмбх
Publication of RU2000130228A publication Critical patent/RU2000130228A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2235767C2 publication Critical patent/RU2235767C2/ru

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
    • C12M41/12Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of temperature
    • C12M41/18Heat exchange systems, e.g. heat jackets or outer envelopes
    • C12M41/24Heat exchange systems, e.g. heat jackets or outer envelopes inside the vessel
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M21/00Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses
    • C12M21/16Solid state fermenters, e.g. for koji production
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/24Gas permeable parts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/34Internal compartments or partitions
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/813Continuous fermentation
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/819Fermentation vessels in series

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии. Способ предусматривает использование твердого субстрата для культивирования микроорганизмов. Его размещают на модульных основаниях, расположенных в емкости твердофазного ферментера, и равномерно засевают посевным материалом, в качестве которого можно использовать микроорганизмы. Через субстрат с посевным материалом пропускают увлажненный воздух при небольшом расходе. Температуру в емкости регулируют при помощи узла охлаждения. Модульные основания выполнены в виде пластин, расположенных одна над другой и выполненных проницаемыми для воздуха и воды. Пластины соединены со стенкой емкости так, что ни воздух, ни вода не могут проходить сбоку. Под каждым модульным основанием установлен узел охлаждения, подключенный быстросоединяемым соединением к трубам для слива и подачи охлаждающей жидкости, которые расположены снаружи емкости. Последняя имеет отверстия для подачи посевного материала и воды и снабжена патрубком для подачи воздуха и патрубками для слива воды и выпуска воздуха. Изобретение обеспечивает стерильные условия в процессе ферментации, равномерное аэрирование субстрата и регулирование его температуры и увеличение производительности ферментера. 2 н. и 13 з.п. ф-лы, 4 ил.

Description

Область техники
Настоящее изобретение относится к твердофазному ферментеру, в частности для больших объемов культивирования, а также к способу твердофазного культивирования.
Предшествующий уровень техники
Твердофазное культивирование используется для массового выращивания микроорганизмов либо с целью выделения микроорганизмов как таковых, либо метаболического продукта, либо микробного измененного питательного субстрата (например, в технологии производства пищевых продуктов). Несмотря на то, что в наше время уже созданы ферментеры для твердофазного культивирования (ферментеры с жидким питательным субстратом) емкостью до 200000 литров, до сих пор еще не удалось создать ферментеры (ферментеры с твердым питательным субстратом) для больших объемов, которые могут поддерживаться в рабочем состоянии (незагрязненном посторонними микроорганизмами) в течение долгого времени. Однако определенные нитевидные грибы (гифомицеты) требуют конструкций, где они могут развиваться и образовывать споры. Самый большой ферментер для производства нитевидных грибов, где исключено загрязнение посторонними микроорганизмами, находится во Франции (INRA, Durand, 1997) и имеет емкость 50 литров. Однако емкость этого ферментера достаточно мала для экономичного получения грибковых спор, которые могут использоваться, например, в качестве биологических сельскохозяйственных пестицидов.
Твердофазное культивирование касается роста микроорганизмов или грибков на твердых субстратах в газовой фазе, но без свободной водной фазы.
Твердофазное культивирование использовалось в древнем мире для производства ферментированной пищи, продуктов Koji (японских овощей), содержащих ферменты (энзимы), и съедобных грибов на некоторых территориях Востока, Азии и Африки. Попытки, предпринимавшиеся в западных странах, сосредотачивались на глубинной ферментации с 1940 года, в то время как твердофазное культивирование использовалось только для повторной обработки органических отходов. Однако многие институты и фирмы в последнее время проявляют интерес к твердофазному культивированию, так как по сравнению с обычной ферментацией существуют определенные преимущества. Такими преимуществами являются:
возможность эффективного производства вторичных метаболитов, как например, ферментов, ароматических веществ, вкусовых добавок и красителей, а также фармацевтически активных веществ;
возможность производства микроорганизмов как биологически активных агентов в сельскохозяйственных пестицидах;
устранение токсинов или других вредных веществ из пищевых и кормовых продуктов или обогащение их протеинами или витаминами.
Существует шесть типов твердофазных ферментеров: биореактор типа лотка, биореактор с уплотненным слоем, биореактор типа вращающегося барабана, качающийся твердофазный биореактор, биореактор в виде емкости, снабженной мешалкой, воздушный твердофазный биореактор с псевдоожиженным слоем.
Первый тип - “биореактор типа лотка”, где ферментируемый субстрат распределяется в емкости, специально предназначенной для этой цели, и выдерживается в помещении со специальным воздушным кондиционированием ("Koji"-Raum, Ramana Murthy, M.V.; Karanth, N.G.; Raghava Rao, K.S.M.S. “Прогресс в прикладной микробиологии” Advance in Applied Microbiology, 38, 1993, стр.99-147), и который может использоваться для производства больших количеств продукта, однако в нем допускается возможность небольшого загрязнения ядрами кристаллизации. Кроме того, реактор и способ требуют большого пространства и больших затрат труда. Ферментируемый субстрат надо перемещать вручную в емкостях. Он не подходит для производства больших количеств грибковых спор конкурирующих видов.
В “биореакторе с уплотненным слоем” влажный гранулированный субстрат, размещенный в замкнутой емкости, засевается микроорганизмом, который там развивается без перемещения субстрата. Для этого субстрат должен постоянно продуваться воздухом. Возникают следующие проблемы, которые не позволяют использовать большие количества субстрата с самого начала.
Микроорганизм выделяют тепло 300 кДж на 1 кг сухого веса в час (Saucedo-Castaneda, G.; Gutierrez-Rojas, M.; Bacquet, G.; Raimbault, M.; Viniegra-Gonzalez, G.: Biotechnologie and Bioengeniering, 35, 1990, стр.802-808 “Биотехнология и биоинженерия”), которое может удаляться через наружную стенку емкости, либо путем увеличения циркуляции воздуха. Это невозможно, если емкости имеют большие объемы. Рост микроорганизмов замедляется с увеличением выделения тепла, и в конце концов они умирают.
Постоянное аэрирование высушивает субстрат. В результате в массе формируются воздушные каналы. Их наличие не может обеспечить дальнейшего равномерного аэрирования субстрата. Постепенное высушивание субстрата также приводит к ухудшению роста микроорганизма.
“Биореактор типа вращающегося барабана” состоит из цилиндрической емкости, которая расположена горизонтально и вращается. Емкость заполняется не более чем на одну треть своего объема гранулированным субстратом для выращивания микроорганизмов. Тепло, выделяемое при росте микроорганизма, может удаляться в значительной степени частично охлаждаемой оболочкой емкости. Это происходит при медленном вращении цилиндра, что приводит к тому, что субстрат снова и снова контактирует с оболочкой и выделяет тепло в нее. Однако способ имеет тот недостаток, что внутри движущегося субстрата действуют усилия сдвига, что приводит к разрушению грибковых структур (мицелиума, спорангиума, фруктовегетативной массы). Таким образом, для многих грибков с самого начала невозможно добиться высокого урожая спор. Существующая проблема обезвоживания решается в этом типе ферментера аэрированием влажным воздухом, так как нет необходимости испарять воду из субстрата (холод испарения не нужен). Кроме того, распылительные насадки могут способствовать увлажнению субстрата, также обеспечивая хорошее распределение свободной воды.
Однако большие количества субстрата для выращивания микроорганизмов приводят к другим проблемам в ферментерах такого типа:
они имеют дорогостоящую конструкцию особенно для больших ферментеров;
непрерывное движение ферментера может вызвать агломерацию влажного субстрата;
необходимы поверхности для сообщения с внешней средой (патрубок для впуска воздуха и патрубок для выпуска воздуха, патрубок подачи воды), которые легко могут стать источниками загрязнения внешними микроорганизмами.
Таким же недостатки имеет “качающийся твердофазный биореактор”, различие заключается в том, что перемешивание субстрата происходит не при вращательном движении, а встряхивающем движением. Кроме того, ограничен объем этого типа ферментера, так как конструкция сложного механизма встряхивания с трудом допускает вес, превышающий 100 кг при заполненной емкости.
“Биореактор в виде емкости, снабженной мешалкой” может быть представлен как закрытый чан с движущейся в нем мешалкой. Для этого типа реактора неизбежны проблемы, возникающие при использовании больших количеств субстрата, так как эти количества не могут перемешиваться равномерно, не вызывая разрушения структуры субстратов.
В твердофазном биореакторе с псевдоожиженным слоем субстрат для выращивания микроорганизмов находится в виде псевдоожиженного слоя, что вызывает необходимость в относительно большого внутреннего объема реактора. Необходимый воздух для псевдоожижения слоя подводится путем циркуляции. Воздух должен иметь точно заданное содержание влаги. Этот процесс требует большого количества энергии для поддержания псевдоожиженного слоя. В уже проводящемся проекте AiF (Bahr, D.; Menner, M.: BIOforum, 18, 1995, стр.16-21) доказано, что выращивание дрожжевых клеток возможно осуществлять в псевдоожиженном слое.
Однако твердофазный биореактор с псевдоожиженным слоем имеет относительно небольшой объем и небольшой выход по сравнению с твердофазным ферментером. Выращивание нитевидных грибов на больших количествах гранулированных субстратов (более 100 кг на партию) в течение нескольких недель с использованием этой технологии возможно только при очень высоких затратах.
Другие известные ферментеры имеют слишком малый объем для получения с их помощью экономически выгодного количества грибковых спор (ЕР-А1-0683815 и FR 8508555) или же, в ферментере с достаточной емкостью невозможно предотвратить загрязнение субстрата ядрами кристаллизации в течение долгого времени (DE 4406632).
Краткое изложение существа изобретения
Задачей настоящего изобретения является создание твердофазного ферментера для твердофазного культивирования, имеющего большие объемы, а также создание способа твердофазного культивирования, который позволяет экономично выращивать небольшие объемы различных конкурирующих микроорганизмов в больших ферментерах.
Поставленная задача решена тем, что в твердофазном ферментере, содержащем емкость с крышкой и днищем, множество модульных оснований в виде пластин, расположенных одно над другим и предназначенных для размещения твердого субстрата для культивирования микроорганизмов, узел охлаждения, установленный под каждым модульным основанием, отверстия для подачи посевного материала и воды в емкость, патрубок для подачи воздуха, расположенный на дне емкости, патрубок для слива воды и патрубок выпуска воздуха на крышке, согласно изобретению, пластины выполнены проницаемыми для воздуха и воды и соединены со стенкой емкости так, что ни воздух, ни вода не могут проходить сбоку, при этом узел охлаждения соединен быстросоединяемым соединением с трубами для слива и подачи охлаждающей жидкости, которые расположены снаружи емкости.
Полезно, чтобы емкость имела в сечении круг, эллипс или прямоугольник, и в стенке емкости было размещено по меньшей мере одно отверстие для подачи посевного материала.
Целесообразно, чтобы ферментер содержал металлические пластины, имеющие высокую теплопроводность, которые связаны с узлом охлаждения, и через соответствующее модульное основание проходят в субстрат для культивирования микроорганизмов.
Предпочтительно, чтобы модульные основания были размещены на кольцах, установленных в емкости и снабженных термостойким уплотнением, при этом модульные основания имели бортик, высота которого определяется толщиной слоя субстрата для культивирования микроорганизмов.
Выгодно, чтобы емкость содержала дополнительные отверстия для подачи посевного материала, расположенные в стенке между отдельными модульными основаниями.
Полезно, чтобы емкость состояла из нескольких модулей, установленных один над другим и герметизированных один относительно другого посредством расположенных на кромках пластин термостойких уплотнений, при этом в каждом из модулей пластины были снабжены наружным кольцом для перекрытия зазора между модулями, причем узел охлаждения соединен посредством муфты с трубами для впуска и выпуска охлаждающей жидкости, расположенными снаружи емкости.
Предпочтительно, чтобы твердый субстрат для культивирования микроорганизмов являлся пористым гранулятом с добавленным к нему питательным раствором или представляет собой натуральные гранулированные материалы.
Выгодно, чтобы в качестве натуральных гранулированных материалов были использованы материалы, выбранные из группы, состоящей из зерен, отрубей в гранулах или отходов от производства сахара.
Целесообразно, чтобы по меньшей мере на самом нижнем модульном основании был размещен слой увлажняющего материала, который является гранулированным материалом с большим объемом пор, способным поглощать воду.
Полезно, чтобы узлы охлаждения были выполнены в виде труб или пластин и установлены на определенном расстоянии от модульных оснований и параллельно им.
Поставленная задача решается также путем создания способа твердофазного культивирования, осуществляемого в указанном устройстве, который заключается в том, что используют твердый субстрат для культивирования микроорганизмов, который размещают на нескольких модульных основаниях в емкости, равномерно засеивают субстрат посевным материалом и через него пропускают увлажненный воздух при его относительно небольшом объемном расходе, при этом температуру в емкости регулируют с помощью узла охлаждения.
Полезно, чтобы в качестве посевного материала использовали микроорганизмы, которые требуется размножить, заполняют емкость водой, в которую добавляют микроорганизмы в достаточном количестве, осуществляют циркуляцию воды, при этом засев всех слоев субстрата на модульных основаниях в процессе заполнения, а также в процессе слива воды осуществляют равномерно при протекании воды через слои субстрата.
Полезно, чтобы теплоту реакции удаляли из твердого субстрата в процессе культивирования микроорганизмов.
Предпочтительно, чтобы дополнительно засеивали твердый субстрат посевным материалом через отверстия между модульными основаниями.
Предложенная конструкция твердофазного ферментера позволяет предотвратить загрязнение посторонними микроорганизмами, сохранить стерильные условия в течение всего процесса ферментации, удалять тепло, выделяемое при росте грибков, без обезвоживания субстрата, предотвратить возникновение усилий сдвига в ферментере, т.е. исключить движение субстрата, гарантировать аэрирование без обезвоживания и регулирование температуры субстрата.
Краткое описание чертежей
В дальнейшем изобретение поясняется описанием предпочтительных вариантов его воплощения со ссылками на сопровождающие чертежи, на которых:
фиг.1 изображает ферментер (продольный разрез), согласно изобретению;
фиг.2 - средство охлаждения ферментера с теплопроводными пластинами, согласно изобретению;
фиг.3 - ферментер в виде открытого цилиндра (разрез), согласно изобретению;
фиг.4 - ферментер (разрез), согласно изобретению.
Описание предпочтительных вариантов воплощения изобретения
Твердофазный ферментер согласно изобретению, содержит емкость (фиг.1) объемом по меньшей мере, 50 литров, предпочтительно от 500 литров до 1000 литров и более.
Емкость закрыта крышкой 1, снабженной, если это необходимо, патрубком 2 для выпуска воздуха, а также отверстием 3 для засева. В емкости размещено множество модульных оснований 4 в виде пластин, расположенных ярусами и проницаемых для воздуха и пара, которые предназначены для размещения субстрата 5 для выращиваемых микроорганизмов.
Субстрат представляет собой материал для питания выращиваемого микроорганизма. Этот материал предпочтительно имеет гранулированную структуру, чтобы обеспечить достаточную проницаемость для воздуха. Он может состоять из зерен, отрубей в гранулах или других продуктов органических отходов, отходов от производства сахара или пропитанных раствором гранулятов.
Количество пластин зависит от требований, предъявляемых к выращиваемому микроорганизму, а также от простоты обслуживания всего ферментера. Слишком большое количество пластин может нарушить необходимую подачу кислорода для роста микроорганизмов в верхние слои субстрата. Очень большое количество пластин также ухудшает простоту эксплуатации ферментера. Однако, согласно изобретению, в ферментере может быть установлено 20 или более пластин.
Модульные основания соединены со стенкой емкости таким образом, что ни воздух ни вода не могут протекать сбоку между модульным основанием и стенкой. Расстояние между модульными основаниями зависит от оптимальной толщины слоя субстрата, которая определяется потребностями выращиваемого микроорганизма.
Узел 6 охлаждения расположен под модульными основаниями, которые могут быть выполнены либо как охлаждающие змеевики, либо как охлаждающие пластины. Узел 6 охлаждения соединен быстро соединяемым соединением с трубами для слива и подачи охлаждающей жидкости, которые расположены снаружи емкости.
Змеевики или пластины позволяют удалять выделяемое тепло из субстрата. В предпочтительном варианте пластины, имеющие высокую теплопроводность, могут погружаться в субстрат от модульного основания от каждого узла охлаждения (фиг.2). Это упрощает удаление теплоты реакции. После завершения процесса ферментации узел охлаждения удаляют в направлении вниз от модульного основания для удаления субстрата. Затем можно выгружать субстрат с выращенными микроорганизмами без помех со стороны охлаждающих пластин.
Возможно также устанавливать узел охлаждения на определенном расстоянии над пластинами. В этом случае он должен быть установлен таким образом, чтобы охлаждающие пластины проходили в середине слоя субстрата. Установка узла охлаждения внутри слоев субстрата (параллельно модульным основаниям) особенно необходима, когда в процессе культивирования вырабатывается большое количество теплоты.
Основание емкости содержит патрубок 7 для впуска воздуха в ферментер, куда вдувается стерильный увлажненный воздух. Воздух циркулирует через все слои субстрата и выходит из ферментера через патрубок 2 для выпуска воздуха, установленный на крышке.
Пространство между пластинами, где расположен узел охлаждения, гарантирует равномерное распределение воздуха во всем ферментере.
Если в ферментере не может использоваться влажный воздух для аэрирования, воздух может увлажняться внутри ферментера. Это достигается тем, что, по меньшей мере, самое нижнее модульное основание не заполняется субстратом, а заполняется гранулированным материалом, который может поглощать воду, циркулирующую с вдуваемым воздухом, прежде чем воздух проникает в ферментер. Если для развития микроорганизма требуется большое количество воды, в ферментере на определенных расстояниях могут быть установлены несколько модулей для увлажнения воздуха. Количество вдуваемого воздуха зависит от потребности выращиваемого организма в кислороде. Оно может изменяться от 1 до 100 литров в час на литр субстрата.
Ферментер заполняется стерильной водой до самого верхнего слоя субстрата для засева (инокуляции) субстрата микроорганизмом, предназначенным для выращивания, после стерилизации его содержимого. Для этого установлен патрубок 8 для подачи воды, в который вставлен стерильный фильтр. Однако патрубок для подачи воды также может быть установлен в другом месте ферментера, например, на крышке. После заполнения водой вводится посевной материал через предназначенное для этого отверстие в крышке. Отверстия для засева могут располагаться между модульными основаниями, особенно если пластин очень много. В первом случае распределение посевного материала в ферментере осуществляется исключительно введением воды через отверстие 9 в днище ферментера.
Посевной материал - суспензия микроорганизмов протекает через все слои субстрата и остается с достаточным количеством связанной воды. Если слоев, по которым протекает суспензия слишком много, может произойти разбавление в зависимости от строения субстрата. Это означает, что микроорганизмы будут фильтроваться через субстрат, поэтому их концентрация в воде уменьшается, чем ниже в ферментере они находятся. Чтобы это предотвратить, отверстия для введения посевного материала в ферментер могут располагаться между модульными основаниями. Посевной материал, который уже введен во время заполнения ферментера водой, распределяется затем с потоком воды, который направлен вверх, а также с потоком воды, который направлен вниз.
Посевной материал, используемый для засева ферментера, состоит из суспензии высокой концентрации маленьких зачаточных микроорганизмов (предпочтительно спор, бактериальных микроорганизмов или конидиоспор) микроорганизмов, предназначенных для выращивания.
В условиях равномерного и достаточного засева длительность выращивания и урожай продукта, а также качество грибковых спор зависит от параметров, т.е. влажности воздуха и температуры. Расход воздуха зависит от пропускной способности воздушного стерильного фильтра. Регулирование температуры в ферментере обеспечивается использованием узла охлаждения, который установлен в ферментере. Отвод тепла должен быть рассчитан таким образом, чтобы можно было удалить все тепло, выделившееся из субстрата, и сохранить оптимальную температуру для выращивания микроорганизма. Это зависит от толщины слоя, и таким образом, от объема субстрата. Чем больше субстрата для роста микроорганизмов, тем больше выделяется теплоты реакции. Вот почему оба параметра должны быть оптимальными. Требуется по возможности быстрое развитие микроорганизмов, а также высокий урожай продукта, при этом продуктами могут быть в зависимости от задачи ферментации грибковые споры, бактериальные клетки, ферменты, антибиотики, красящие вещества и другие вещества.
Ниже описаны два варианта выполнения ферментера.
Вариант 1
Ферментер (фиг.3) выполнен в виде емкости, имеющей в сечении круг или многоугольник. Цилиндр или призма могут иметь диаметр 1 метр и более. Высота определяется простотой обслуживания, а также возможностью сохранения оптимальных условий роста для микроорганизмов. Возможна высота от 2 м и больше.
Модульные основания 4, заполненные субстратом 5, вставляются сверху в емкость. Внутри емкости установлены кольца или в случае использования призматического корпуса средства 11 удерживания модульных оснований. Каждое кольцо или средство 11 снабжено термостойким уплотнением 10, например, из кремния, на которое устанавливаются своими наружными кромками модульные основания, что обеспечивает уплотнение между модульным основанием и стенкой емкости, непронициемое для воздуха и воды. Кольца или средства 11 можно извлекать из корпуса. Узел 6 охлаждения под модульным основанием, например, в виде охлаждающего змеевика, выполненного из меди, соединен быстро соединяемым и быстро разъединяемым соединением 13 с трубами 14 для подачи и вывода охлаждающей жидкости, которые расположены снаружи ферментера. Каждое модульное основание имеет утолщение по краю, высота которой выбирается в соответствии с толщиной слоя субстрата. Это предотвращает загрязнение субстрата.
Ферментер плотно закрыт сверху крышкой 1. Он представляет собой сосуд высокого давления и может стерилизоваться подаваемым горячим паром под давлением. Поэтому нет необходимости в использовании автоклава.
Вариант 2
Ферментер (фиг.4) состоит из нескольких емкостей небольшой высоты, предпочтительно около 7-30 см, которые могут иметь круглое, овальное, прямоугольное сечение и установлены одно над другим. В каждую емкость подается воздух и вода через отверстия в днище. Узел охлаждения расположен под каждым днищем, а на днище расположен субстрат для выращивания микроорганизмов. Днища каждой емкости используются как модульные основания 4 для составного ферментера и герметизированы одно от другого термостойкими уплотнениями 15, которые расположены на кромках. Днище первого модульного основания снизу служит днищем ферментера, а последнее модульное основание сверху закрывается крышкой. Таким образом, ферментер может быть собран предпочтительно из 10 или более модульных оснований. Так как сконструировать такой составной ферментер в виде сосуда высокого давления сложно, стерилизация ферментера и субстрата внутри выполняется в автоклаве. Поэтому высота ферментера в первую очередь зависит от емкости автоклава. В результате она должна быть снижена в большинстве случаев до объема от 500 до 1000 литров. Во время обработки автоклавом модульные основания слегка подняты один над другим приблизительно на 5 мм. Это дает возможность подавать горячий пар для стерилизации внутрь ферментера. Ферментер герметизируется после обработки автоклавом. Каждое модульное основание снабжено кольцом 16, которое предназначено для перекрытия зазора между модульными основаниями, когда ферментер открыт, чтобы предотвратить загрязнение ферментера внешними микроорганизмами после обработки автоклавом.
После того, как ферментер закрывают, узлы 6 охлаждения под модульными основаниями, соединяют с трубами 14, которые используются для подачи и вывода охлаждающей жидкости.
В предпочтительном варианте выполнения гранулированный субстрат, где будут развиваться микроорганизмы, расположен в виде слоя толщиной 5-6 см. До 10 таких слоев расположены один поверх другого на модульных основаниях. Гранулированный субстрат, расположенный слоями, каждый раз устанавливается на перфорированное и поэтому проницаемое для воздуха дно, ниже которого находится охлаждающий змеевик (витая медная трубка), который может использоваться для удаления теплоты, выделяемой в субстрате. Подача стерильного фильтрованного воздуха происходит снизу. Воздух циркулирует, проходя по всем слоям субстрата равномерно, чему способствует герметичное уплотнение сбоку, перед выходом из ферментера на верхнем конце. На самом нижнем модульном основании находится насыщенный водой слой, предпочтительно гранулят SERAMIS, через который проходит, увлажняясь таким образом, воздух.
Стерилизация ферментера вместе с субстратом выполняется предпочтительно паром, который нагревается до 121°С в автоклавах, когда одиночные модули слегка подняты один над другим в автоклаве, что позволяет горячему пару проникать в модули.
Параметры:
объем 500 литров,
количество субстрата 250 литров,
объемный расход воздуха 1500 литров в час,
мощность системы охлаждения 2,5 кВт.
В отличие от ферментеров, используемых до сих пор (качающийся ферментер или ферментер типа вращающегося барабана), где требуется постоянное переворачивание субстрата для удаления тепла, аэрирование и подача воды, больше не нужно перемещать субстрат. Хранение субстрата в ярусах или слоях, которые целиком заключены в закрытую оболочку, обеспечивает следующие преимущества:
собственный вес субстрата не приводит к его уплотнению и, в результате, снижению проницаемости для воздуха;
установка узла охлаждения под каждым модульным основанием упрощает удаление тепла;
вследствие относительно небольшой толщины модульных оснований, а также расстояний между ними гарантируется равномерное аэрирование слоев субстрата;
так как аэрирование субстрата используется для подачи кислорода, а также для удаления вырабатываемых газов, а не для охлаждения субстрата, можно работать с очень небольшим объемом потока воздуха, что уже не приведет к обезвоживанию субстрата, так как воздух увлажнен;
так как больше нет необходимости в перемещении субстрата, механическое разрушение грибковых структур (спорангиума, фруктовегетативной массы и т.д.) исключено.
Пример 1. Выращивание beauveria brongniartii в массе для получения грибковых конидий
Используемый для выращивания beauveria brongniartii ферментер имеет емкость около 50 литров. Он имеет форму цилиндра диаметром 30 см и высотой 70 см. Наружная оболочка ферментера выполнена из термостойкого стекла. В ферментере установлено восемь модульных оснований, дно которых состоит из нержавеющего сита с размером отверстия сита 3 мм. Расстояние между модульными основаниями 8 см. Нижнее дно заполнено слоем гранулята SERAMIS толщиной 6 см. Расположенные выше 7 модульных оснований содержат дробленые зерна ячменя в качестве субстрата. Толщина слоя субстрата приблизительно 6 см. В целом использовано 30 литров субстрата.
Ферментер стерилизовали в автоклаве. Для этого ферментер нагревали горячим паром до 121°С в течение получаса. Крышка ферментера была немного открыта во время обработки в автоклаве, чтобы пар проникал внутрь ферментера. Сразу после обработки крышка была закрыта.
Ферментер был заполнен выше верхнего слоя субстрата стерильной водой. Для этого использовали капсулу размером 500 см2 типа S+S-EXELON PES 20/5 НС (Schleicher und Schuell. Dassel). После этого вводили посевной материал через отверстие в крышке. Используемым посевным материалом было 100 мл суспензии конидиума в концентрации 1 х 109 конидий на мл. После введения посевного материала через клапан в днище ферментера выпустили воду. Все слои субстрата были равномерно обсеменены грибковыми конидиями.
После засева ферментера он выдерживался в помещении с температурой 20°С. Затем подавался воздух, а также подключалась система охлаждения. Объемный расход воздуха в течение всего процесса ферментации составлял 150 литров в час. В качестве охлаждающей жидкости использовали воду с температурой при подаче 17°С. Охлаждение проводилось таким образом, что охлаждающая жидкость прокачивалась через охлаждающий змеевик, если температура в субстрате превышала 22°С, пока она не снижалась до 20°С. Таким образом могла поддерживаться средняя температура субстрата приблизительно около 21°С в течение всего периода выращивания.
Целью выращивания было получение по возможности большего количества грибковых конидий. Стеклянные стенки ферментера позволяли наблюдать за ростом. Примерно через 10 дней весь субстрат был покрыт белым мицелием. Этот мицелий менял свой внешний вид начиная с 13-го дня из-за образования конидий и конидиофор. Он изменился и превратился в порошкообразную структуру. Приблизительно после 19 дней в ферментере заметно уменьшилась активность метаболизма. Выделение тепла уменьшилось, что заметно уменьшило необходимость охлаждения. Через 21 день после засева ферментера субстрат был изъят и согласно специальной технологии из субстрата были извлечены конидии, которые затем были окончательно выращены с beauveria brongniartii.
Из ферментера смогли извлечь общее количество 3,3×1013 конидий.

Claims (15)

1. Твердофазный ферментер, содержащий емкость с крышкой и днищем, множество модульных оснований в виде пластин, расположенных одно над другим и предназначенных для размещения твердого субстрата для культивирования микроорганизмов, узел охлаждения, установленный под каждым модульным основанием, отверстия для подачи посевного материала и воды в емкость, патрубок для подачи воздуха, расположенный на дне емкости, патрубок для слива воды и патрубок выпуска воздуха на крышке, отличающийся тем, что пластины выполнены проницаемыми для воздуха и воды и соединены со стенкой емкости так, что ни воздух, ни вода не могут проходить сбоку, при этом узел охлаждения соединен быстросоединяемым соединением с трубами для слива и подачи охлаждающей жидкости, которые расположены снаружи емкости.
2. Ферментер по п.1, отличающийся тем, что емкость имеет в сечении круг, эллипс или прямоугольник, и в стенке емкости размещено по меньшей мере одно отверстие для подачи посевного материала.
3. Ферментер по любому из п.1 или 2, отличающийся тем, что содержит металлические пластины, имеющие высокую теплопроводность, которые связаны с узлом охлаждения, и через соответствующее модульное основание проходят в субстрат для культивирования микроорганизмов.
4. Ферментер по любому из пп.1-3, отличающийся тем, что модульные основания размещены на кольцах, установленных в емкости и снабженных термостойким уплотнением, при этом модульные основания имеют бортик, высота которого определяется толщиной слоя субстрата для культивирования микроорганизмов.
5. Ферментер по любому из пп.1-4, отличающийся тем, что емкость содержит дополнительные отверстия для подачи посевного материала, расположенные в стенке между отдельными модульными основаниями.
6. Ферментер по любому из пп.1-3, отличающийся тем, что емкость состоит из нескольких модулей, установленных один над другим и герметизированных один относительно другого посредством расположенных на кромках пластин термостойких уплотнений, при этом в каждом из модулей пластины снабжены наружным кольцом для перекрытия зазора между модулями, причем узел охлаждения соединен посредством муфты с трубами для впуска и выпуска охлаждающей жидкости, расположенными снаружи емкости.
7. Ферментер по любому из пп.1-6, отличающийся тем, что твердый субстрат для культивирования микроорганизмов является пористым гранулятом с добавленным к нему питательным раствором или представляет собой натуральные гранулированные материалы.
8. Ферментер по п.7, отличающийся тем, что в качестве натуральных гранулированных материалов использованы материалы, выбранные из группы, состоящей из зерен, отрубей в гранулах или отходов от производства сахара.
9. Ферментер по любому из пп.1-8, отличающийся тем, что по меньшей мере на самом нижнем модульном основании размещен слой увлажняющего материала.
10. Ферментер по п.9, отличающийся тем, что увлажняющий материал является гранулированным материалом с большим объемом пор, способным поглощать воду.
11. Ферментер по любому из пп.1-9, отличающийся тем, что узлы охлаждения выполнены в виде труб или пластин и установлены на определенном расстоянии от модульных оснований и параллельно им.
12. Способ твердофазного культивирования, осуществляемый в устройстве по пп.1-13, заключающийся в том, что используют твердый субстрат для культивирования микроорганизмов, который размещают на нескольких модульных основаниях в емкости, равномерно засеивают субстрат посевным материалом и через него пропускают увлажненный воздух при его относительно небольшом объемном расходе, при этом температуру в емкости регулируют с помощью узла охлаждения.
13. Способ по п.12, отличающийся тем, что в качестве посевного материала используют микроорганизмы, которые требуется размножить, заполняют емкость водой, в которую добавляют микроорганизмы в достаточном количестве, осуществляют циркуляцию воды, при этом засев всех слоев субстрата на модульных основаниях в процессе заполнения, а также в процессе слива воды осуществляют равномерно при протекании воды через слой субстрата.
14. Способ по любому из пп.12 и 13, отличающийся тем, что теплоту реакции удаляют из твердого субстрата в процессе культивирования микроорганизмов.
15. Способ по п.12, отличающийся тем, что дополнительно засеивают твердый субстрат посевным материалом через отверстия между модульными основаниями.
RU2000130228/13A 1998-04-30 1999-04-27 Твердофазный ферментёр и способ твердофазного культивирования RU2235767C2 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19820169.9 1998-04-30
DE19820169 1998-04-30

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2000130228A RU2000130228A (ru) 2002-11-20
RU2235767C2 true RU2235767C2 (ru) 2004-09-10

Family

ID=7866813

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2000130228/13A RU2235767C2 (ru) 1998-04-30 1999-04-27 Твердофазный ферментёр и способ твердофазного культивирования

Country Status (23)

Country Link
US (1) US6620614B1 (ru)
EP (1) EP1073708B1 (ru)
JP (1) JP4180798B2 (ru)
CN (1) CN1212385C (ru)
AT (1) ATE208810T1 (ru)
AU (1) AU749402B2 (ru)
BG (1) BG64130B1 (ru)
BR (1) BR9910580B1 (ru)
CA (1) CA2329815C (ru)
CZ (1) CZ300539B6 (ru)
DE (2) DE59900442D1 (ru)
DK (1) DK1073708T3 (ru)
HU (1) HU225994B1 (ru)
ID (1) ID28122A (ru)
IL (1) IL139292A0 (ru)
NO (1) NO20005438L (ru)
NZ (1) NZ507738A (ru)
PL (1) PL188683B1 (ru)
RO (1) RO120977B1 (ru)
RU (1) RU2235767C2 (ru)
TR (1) TR200003179T2 (ru)
UA (1) UA65616C2 (ru)
WO (1) WO1999057239A2 (ru)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2532828C1 (ru) * 2013-09-26 2014-11-10 Любовь Васильевна Маслиенко Способ поверхностного выращивания микроорганизма на жидкой питательной среде и устройство для его осуществления
RU2603754C2 (ru) * 2012-06-06 2016-11-27 Новозимс Биоаг А/С Промышленный твердофазный биореактор, промышленная твердофазная биореакторная система.
RU2673739C1 (ru) * 2014-12-19 2018-11-29 Квидья Крафт Аб Биореактор и способ ферментации для получения водорода
RU2757491C1 (ru) * 2019-12-18 2021-10-18 Циндао Агрикалчерал Юниверсити Автоматическое устройство для аэробной твердофазной ферментации жмыха с помощью микроорганизмов

Families Citing this family (64)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6197573B1 (en) * 1998-11-17 2001-03-06 Biocon India Limited Solid state fermentation
DE60023187D1 (de) * 2000-02-29 2006-02-23 Biocon Ltd Herstellung und reinigung von mycophenolsäure
WO2002002866A2 (en) * 2000-06-30 2002-01-10 Biopulping International, Inc. Fungal incubation containment system and methods
US7008505B2 (en) 2001-06-01 2006-03-07 Biopulping International, Inc. Eucalyptus biomechanical pulping process
DE10203863B4 (de) * 2002-01-28 2004-08-19 VTI Thüringer Verfahrenstechnisches Institut für Umwelt und Energie e.V. Feststoffbioreaktor und Verfahren zu dessen Betrieb
DE10335522A1 (de) * 2003-07-31 2005-02-17 Prophyta Biologischer Pflanzenschutz Gmbh Solid-State-Fermenter
CA2439645C (en) * 2003-09-04 2014-03-18 Hygiene-Technik Inc. Automated biological growth and dispensing system
NL1025609C2 (nl) * 2004-03-01 2005-09-05 Buehler Gmbh Inrichting voor het weken van gerst.
FI117012B (fi) 2004-09-28 2006-05-15 Verdera Oy Reaktori ja menetelmä kiinteän alustan kasvatuksiin
CN100500825C (zh) * 2006-10-13 2009-06-17 深圳市达科为生物技术有限公司 淋巴细胞分离管及分离血液中淋巴细胞的方法
US9485917B2 (en) 2006-12-15 2016-11-08 Ecovative Design, LLC Method for producing grown materials and products made thereby
WO2010032260A1 (en) * 2008-08-05 2010-03-25 Sameer Sudhir Kulkarni Stacked basket bioreactor for solid state fermentation
EP2186876A1 (en) * 2008-11-13 2010-05-19 Biorecycling Group B.V. System for solid state fermentation and use thereof
US8778669B2 (en) 2009-07-22 2014-07-15 Corning Incorporated Multilayer tissue culture vessel
DE102010010293B4 (de) 2010-03-04 2014-01-09 fzmb GmbH, Forschungszentrum für Medizintechnik und Biotechnologie Festphasenfermenter
CN102234205B (zh) * 2010-04-23 2013-06-05 中国科学院过程工程研究所 一种多功能固态发酵反应器
CN102093950B (zh) * 2010-12-15 2012-11-07 北京科技大学 一种气湿耦合固态发酵罐及其发酵工艺
EP2505634B1 (en) 2011-03-31 2013-12-04 Technelep srl A solid state fermentation plant
CN102250755A (zh) * 2011-06-20 2011-11-23 娄底市裕德科技有限公司 一种多功能间歇膨胀固态发酵罐
CO6780221A1 (es) * 2012-04-17 2013-10-31 Univ De Caldas Biorreactor para la obtención de sustancias bioactivas por fermentación en estado sólido empleando hongos macromicetos
DE102012016951B4 (de) * 2012-08-28 2014-11-06 Yoen Ok Roth Vorrichtung und Verfahren für die Fermentation mikrobieller Kulturen
US9005550B2 (en) 2012-10-29 2015-04-14 Corning Incorporated Multi-layered cell culture vessel with manifold grips
BR102012033485A2 (pt) 2012-12-28 2014-08-19 Petroleo Brasileiro Sa Equipamento e processo híbrido para obtenção de bioprodutos
CN103966084B (zh) * 2013-01-29 2016-03-30 徐少云 薄层自控静态固体发酵集成优化方法及其装置
US11277979B2 (en) * 2013-07-31 2022-03-22 Ecovative Design Llc Mycological biopolymers grown in void space tooling
US20150101509A1 (en) 2013-10-14 2015-04-16 Gavin R. McIntyre Method of Manufacturing a Stiff Engineered Composite
DE102013114855B4 (de) * 2013-12-23 2015-12-17 Ulrich Mohr Vorrichtung zur Kultivierung von Zellen
US9441191B2 (en) * 2014-06-05 2016-09-13 Taiwan Leader Biotech Corp. Omni-functional high-efficient solid-state fermentation method for edible and medicinal microorganisms
DE202014103237U1 (de) 2014-07-14 2014-07-25 Taiwan Leader Biotech Corp. Voll funktionstüchtige Feststofffermentationsvorrichtung
EP3034600A1 (en) 2014-12-16 2016-06-22 Bayer CropScience Biologics GmbH Method for prolonging the viability of fungal spores in liquid formulations
CN105002126B (zh) * 2015-08-20 2017-12-29 福建出入境检验检疫局检验检疫技术中心 一种兼性需氧菌的简易批量培养方法
CN105154318A (zh) * 2015-10-08 2015-12-16 上海理工大学 组合式液态发酵浅槽组件及其发酵装置
EP3195727A1 (en) 2016-01-22 2017-07-26 Forschungsinstitut Fur Biologischen Landbau (FiBL) Duddingtonia flagrans strain and feed additive formulation for biological pest control
MY192441A (en) 2016-03-01 2022-08-21 The Fynder Group Inc Filamentous fungal biomats, methods of their production and methods of their use
US11512272B2 (en) * 2016-06-23 2022-11-29 Q Power Oy Solid state fermentation reactor equipped with active support material
CN106479882A (zh) * 2016-11-28 2017-03-08 西安交通大学 一种菌种固体连续发酵结构和设备及发酵方法
EP3400801A1 (en) 2017-05-10 2018-11-14 Bayer CropScience Aktiengesellschaft Plant health effect of purpureocillium lilacinum
EP3599832A4 (en) 2017-03-31 2021-01-27 Ecovative Design LLC POST-TREATMENT PROCESSES BASED ON SOLUTION (S) FOR MYCOLOGICAL BIOPOLYMERIC MATERIAL AND MYCOLOGICAL PRODUCT THUS OBTAINED
WO2019057654A1 (en) 2017-09-20 2019-03-28 Bayer Cropscience Biologics Gmbh METHOD FOR IMPROVING STORAGE STABILITY AND PHYSICAL CONDITION OF FUNGAL SPORES
US11266085B2 (en) 2017-11-14 2022-03-08 Ecovative Design Llc Increased homogeneity of mycological biopolymer grown into void space
CN109971624B (zh) * 2017-12-28 2023-11-28 西藏天虹科技股份有限责任公司 基于标准化发酵时间的固态发酵控制装置
AU2018395215A1 (en) * 2017-12-28 2020-08-13 Locus Ip Company, Llc Reactors and submerged fermentation methods for producing microbe-based products
WO2019140440A1 (en) * 2018-01-15 2019-07-18 Locus Ip Company, Llc Reactors for modified solid-state fermentation
CN108211696B (zh) * 2018-01-23 2020-12-22 青岛理工大学 一种室内空气净化益菌屋的制备装置与方法
US11920126B2 (en) 2018-03-28 2024-03-05 Ecovative Design Llc Bio-manufacturing process
CN108570463B (zh) * 2018-05-02 2021-12-24 新乡医学院 一种利用微生物生产酸性蛋白酶的方法
US11293005B2 (en) 2018-05-07 2022-04-05 Ecovative Design Llc Process for making mineralized mycelium scaffolding and product made thereby
US20190359931A1 (en) 2018-05-24 2019-11-28 Ecovative Design Llc Process and Apparatus for Producing Mycelium Biomaterial
WO2019238734A1 (en) 2018-06-15 2019-12-19 Bayer Aktiengesellschaft Liquid and storage-stable formulations for fungal spores
WO2020011819A1 (en) 2018-07-10 2020-01-16 Bayer Aktiengesellschaft Novel carrier fluids for liquid fungal spore formulations
JP2021530529A (ja) 2018-07-20 2021-11-11 バイエル・アクチエンゲゼルシヤフト 液体真菌胞子調製物用の新規担体流体
US20220046930A1 (en) 2018-09-19 2022-02-17 Bayer Cropscience Biologics Gmbh Method for increasing storage stability of fungal spores
CA3113935A1 (en) 2018-10-02 2020-04-09 Ecovative Design Llc A bioreactor paradigm for the production of secondary extra-particle hyphal matrices
MX2021012479A (es) 2019-04-12 2021-11-12 Danstar Ferment Ag Metodos para aumentar la tasa de germinacion de esporas de hongos.
WO2020245154A1 (en) 2019-06-07 2020-12-10 Bayer Cropscience Biologics Gmbh Methods of increasing the germination rate of fungal spores
EP3805358A1 (en) 2019-10-08 2021-04-14 Green Spot Technologies SAS Process and production system for large scale solid-state fermentation
KR102122863B1 (ko) * 2019-10-29 2020-06-15 신우산기(주) 다층구조 결로방지 고체 발효기
WO2021239777A2 (en) 2020-05-28 2021-12-02 Bayer Cropscience Biologics Gmbh Novel fermentation substrate for solid-state fermentation
US20230232837A1 (en) 2020-06-08 2023-07-27 Danstar Ferment Ag Novel formulations for increasing the germination rate of fungal spores
WO2022040510A1 (en) 2020-08-21 2022-02-24 Bayer Cropscience Lp Combinations of trichoderma and bradyrhizobium
CN112520436B (zh) * 2020-10-12 2022-06-24 嘉兴学院 一种固态发酵箱及其使用方法
EP4074815A1 (en) 2021-04-13 2022-10-19 Green Spot Technologies Method and system for solid-state fermentation of plant material to produce a fermentation product
CN113801782B (zh) * 2021-09-23 2023-09-01 郑州智拓生物科技有限公司 一种实现微生物菌剂的快速培养系统及方法
EP4276170A1 (en) 2022-05-12 2023-11-15 Evologic Technologies GmbH Pseudo-solid state fermentation of filamentous fungi

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR1474370A (fr) * 1965-04-05 1967-03-24 Falstaff Brewing Corp Appareil et procédé destinés à la mise en oeuvre de réactions continues, pour la préparation de la bière
US3413124A (en) * 1965-04-05 1968-11-26 Falstaff Brewing Corp Continuous flow fermentation apparatus and process
CH469806A (fr) * 1966-12-01 1969-03-15 Afico Sa Procédé de fermentation et fermenteur pour la mise en oeuvre de ce procédé
US3753582A (en) * 1971-11-09 1973-08-21 Anarak Inc Coupling unit
FR2583059B1 (fr) 1985-06-06 1987-10-09 Orstom Procede de production de spores de champignons filamenteux et dispositif utilise
WO1994006539A1 (en) * 1992-09-16 1994-03-31 Rotron Incorporated Biofilter with modular trays
FR2701487B1 (fr) 1993-02-10 1995-03-31 Agronomique Inst Nat Rech Réacteur pour conduire de façon stérile des procédés de fermentation d'un produit à l'état solide.
US6197573B1 (en) * 1998-11-17 2001-03-06 Biocon India Limited Solid state fermentation

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2603754C2 (ru) * 2012-06-06 2016-11-27 Новозимс Биоаг А/С Промышленный твердофазный биореактор, промышленная твердофазная биореакторная система.
RU2532828C1 (ru) * 2013-09-26 2014-11-10 Любовь Васильевна Маслиенко Способ поверхностного выращивания микроорганизма на жидкой питательной среде и устройство для его осуществления
RU2673739C1 (ru) * 2014-12-19 2018-11-29 Квидья Крафт Аб Биореактор и способ ферментации для получения водорода
US10731117B2 (en) 2014-12-19 2020-08-04 Q Power Oy Bioreactor and fermentation process for producing hydrogen
RU2757491C1 (ru) * 2019-12-18 2021-10-18 Циндао Агрикалчерал Юниверсити Автоматическое устройство для аэробной твердофазной ферментации жмыха с помощью микроорганизмов

Also Published As

Publication number Publication date
NZ507738A (en) 2002-06-28
WO1999057239A3 (de) 1999-12-16
AU4601199A (en) 1999-11-23
UA65616C2 (ru) 2004-04-15
BG64130B1 (bg) 2004-01-30
AU749402B2 (en) 2002-06-27
EP1073708B1 (de) 2001-11-14
CA2329815C (en) 2009-10-13
ATE208810T1 (de) 2001-11-15
HU225994B1 (en) 2008-02-28
WO1999057239A2 (de) 1999-11-11
CA2329815A1 (en) 1999-11-11
CN1212385C (zh) 2005-07-27
JP4180798B2 (ja) 2008-11-12
US6620614B1 (en) 2003-09-16
EP1073708A2 (de) 2001-02-07
DE59900442D1 (de) 2001-12-20
HUP0101547A2 (hu) 2001-08-28
CZ20003988A3 (cs) 2001-04-11
PL188683B1 (pl) 2005-03-31
BG104887A (en) 2001-06-29
NO20005438L (no) 2000-12-15
NO20005438D0 (no) 2000-10-27
TR200003179T2 (tr) 2001-03-21
DK1073708T3 (da) 2002-03-11
CZ300539B6 (cs) 2009-06-10
DE19920020A1 (de) 1999-11-04
IL139292A0 (en) 2001-11-25
JP2002513557A (ja) 2002-05-14
ID28122A (id) 2001-05-03
CN1305524A (zh) 2001-07-25
BR9910580B1 (pt) 2010-11-16
BR9910580A (pt) 2001-10-02
HUP0101547A3 (en) 2003-08-28
RO120977B1 (ro) 2006-10-30
PL344455A1 (en) 2001-11-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2235767C2 (ru) Твердофазный ферментёр и способ твердофазного культивирования
JP2002513557A5 (ru)
RU2359026C2 (ru) Твердофазный биореактор
CN106701563B (zh) 全自动控制多功能固态发酵罐
FI77469C (fi) Anlaeggning foer biologisk omsaettning av ett vegetabiliskt raomaterial.
US6664095B1 (en) Solid state fermentation
RU2000130228A (ru) Твердотельный ферментер и способ твердотельной ферментации
CN104531521B (zh) 一种浅盘式固体发酵设备
WO2010032260A1 (en) Stacked basket bioreactor for solid state fermentation
CN104603257A (zh) 适用于自动化的固态生物反应器
CN105132340B (zh) 复合微生物净水菌剂及其制备方法
US20110195462A1 (en) System and method for producing biomaterials
KR100893875B1 (ko) 여과통 회전 탈수식 배양기
MXPA00010661A (en) Solid-state fermenter and method for solid-state fermentation
CN1063224C (zh) 气升式周期浸没光照植物细胞组织器官培养方法及培养反应器
KR20180046941A (ko) 버섯 복합 재배장치
CN2352538Y (zh) 气升式周期浸没光照植物细胞组织器官培养反应器
KR100406301B1 (ko) 버섯배지 제조방법과 그장치
CN217838759U (zh) 一种可叠加式发酵装置
KR200230279Y1 (ko) 버섯 배지 제조장치
RU69518U1 (ru) Аппарат для культивирования клеток и микроорганизмов
WO2023023857A1 (en) Method and system for culturing filamentous organisms
JPH0644861B2 (ja) 培地の高温・湿潤発酵方法
TWM289977U (en) Storehouse-type tissue cultivation or microorganism fermentation device