PL210306B1 - Kompozycja szczepionkowa do indukcji zabezpieczającej odpowiedzi immunologicznej przed wirusem zachodniego Nilu (WNV) - Google Patents
Kompozycja szczepionkowa do indukcji zabezpieczającej odpowiedzi immunologicznej przed wirusem zachodniego Nilu (WNV)Info
- Publication number
- PL210306B1 PL210306B1 PL391444A PL39144402A PL210306B1 PL 210306 B1 PL210306 B1 PL 210306B1 PL 391444 A PL391444 A PL 391444A PL 39144402 A PL39144402 A PL 39144402A PL 210306 B1 PL210306 B1 PL 210306B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- virus
- wnv
- prm
- vaccine composition
- plasmid
- Prior art date
Links
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 title claims abstract description 77
- 241000710886 West Nile virus Species 0.000 title claims description 80
- 230000006698 induction Effects 0.000 title claims description 3
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 title description 2
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 title description 2
- 230000004044 response Effects 0.000 title description 2
- 241000700605 Viruses Species 0.000 claims abstract description 86
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims abstract description 85
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims abstract description 60
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 claims abstract description 28
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 claims abstract description 16
- 244000052769 pathogen Species 0.000 claims abstract description 10
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 claims abstract description 7
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 claims description 112
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 78
- 230000002163 immunogen Effects 0.000 claims description 43
- 239000013598 vector Substances 0.000 claims description 43
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 38
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims description 25
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 claims description 24
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 claims description 24
- 241000283073 Equus caballus Species 0.000 claims description 21
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 claims description 20
- 108010076039 Polyproteins Proteins 0.000 claims description 18
- 229940023860 canarypox virus HIV vaccine Drugs 0.000 claims description 17
- 241000178270 Canarypox virus Species 0.000 claims description 15
- 108010076504 Protein Sorting Signals Proteins 0.000 claims description 15
- 229920002125 Sokalan® Polymers 0.000 claims description 13
- 241001529453 unidentified herpesvirus Species 0.000 claims description 12
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 claims description 11
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 claims description 11
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 claims description 11
- 230000028993 immune response Effects 0.000 claims description 10
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 9
- 230000002238 attenuated effect Effects 0.000 claims description 7
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 claims description 7
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims description 6
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 claims description 6
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 claims description 6
- 208000000666 Fowlpox Diseases 0.000 claims description 5
- NIXOWILDQLNWCW-UHFFFAOYSA-N Acrylic acid Chemical group OC(=O)C=C NIXOWILDQLNWCW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 241000700663 Avipoxvirus Species 0.000 claims description 4
- 241000700662 Fowlpox virus Species 0.000 claims description 4
- 244000037640 animal pathogen Species 0.000 claims description 4
- 229960001631 carbomer Drugs 0.000 claims description 4
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 claims description 4
- 241000701161 unidentified adenovirus Species 0.000 claims description 3
- 239000008194 pharmaceutical composition Substances 0.000 claims 1
- 108091033319 polynucleotide Proteins 0.000 abstract description 48
- 102000040430 polynucleotide Human genes 0.000 abstract description 48
- 239000002157 polynucleotide Substances 0.000 abstract description 48
- 239000013604 expression vector Substances 0.000 abstract description 40
- 241000271566 Aves Species 0.000 abstract description 23
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 abstract description 19
- 241000283086 Equidae Species 0.000 abstract description 15
- 229940031348 multivalent vaccine Drugs 0.000 abstract description 7
- 108010052285 Membrane Proteins Proteins 0.000 abstract description 6
- 102000018697 Membrane Proteins Human genes 0.000 abstract description 6
- 101710172711 Structural protein Proteins 0.000 abstract description 6
- 229940031626 subunit vaccine Drugs 0.000 abstract description 6
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 abstract description 5
- 241000282472 Canis lupus familiaris Species 0.000 abstract description 4
- 206010037660 Pyrexia Diseases 0.000 abstract description 4
- 241000282887 Suidae Species 0.000 abstract description 2
- 239000000470 constituent Substances 0.000 abstract 2
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 102
- 108091034117 Oligonucleotide Proteins 0.000 description 67
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 description 34
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 30
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 30
- 238000010804 cDNA synthesis Methods 0.000 description 29
- JLCPHMBAVCMARE-UHFFFAOYSA-N [3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[5-(2-amino-6-oxo-1H-purin-9-yl)-3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[5-(2-amino-6-oxo-1H-purin-9-yl)-3-[[5-(2-amino-6-oxo-1H-purin-9-yl)-3-hydroxyoxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxyoxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxyoxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methyl [5-(6-aminopurin-9-yl)-2-(hydroxymethyl)oxolan-3-yl] hydrogen phosphate Polymers Cc1cn(C2CC(OP(O)(=O)OCC3OC(CC3OP(O)(=O)OCC3OC(CC3O)n3cnc4c3nc(N)[nH]c4=O)n3cnc4c3nc(N)[nH]c4=O)C(COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3CO)n3cnc4c(N)ncnc34)n3ccc(N)nc3=O)n3cnc4c(N)ncnc34)n3ccc(N)nc3=O)n3ccc(N)nc3=O)n3ccc(N)nc3=O)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cc(C)c(=O)[nH]c3=O)n3cc(C)c(=O)[nH]c3=O)n3ccc(N)nc3=O)n3cc(C)c(=O)[nH]c3=O)n3cnc4c3nc(N)[nH]c4=O)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)O2)c(=O)[nH]c1=O JLCPHMBAVCMARE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 26
- 108091032973 (ribonucleotides)n+m Proteins 0.000 description 24
- 108091008146 restriction endonucleases Proteins 0.000 description 21
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 20
- 238000003780 insertion Methods 0.000 description 20
- 230000037431 insertion Effects 0.000 description 20
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 17
- 108700026244 Open Reading Frames Proteins 0.000 description 17
- 235000013330 chicken meat Nutrition 0.000 description 17
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 17
- 108020004635 Complementary DNA Proteins 0.000 description 15
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 15
- 239000002299 complementary DNA Substances 0.000 description 15
- 241000701024 Human betaherpesvirus 5 Species 0.000 description 14
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 14
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 12
- 201000005569 Gout Diseases 0.000 description 12
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 12
- 239000013603 viral vector Substances 0.000 description 12
- 108020004705 Codon Proteins 0.000 description 11
- 102000004127 Cytokines Human genes 0.000 description 11
- 108090000695 Cytokines Proteins 0.000 description 11
- 238000001502 gel electrophoresis Methods 0.000 description 11
- 230000003053 immunization Effects 0.000 description 11
- 241000282414 Homo sapiens Species 0.000 description 10
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 10
- 239000000546 pharmaceutical excipient Substances 0.000 description 10
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 10
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 10
- 241000700618 Vaccinia virus Species 0.000 description 9
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 9
- 102000004457 Granulocyte-Macrophage Colony-Stimulating Factor Human genes 0.000 description 8
- 108010017213 Granulocyte-Macrophage Colony-Stimulating Factor Proteins 0.000 description 8
- 102000003978 Tissue Plasminogen Activator Human genes 0.000 description 8
- 108090000373 Tissue Plasminogen Activator Proteins 0.000 description 8
- 238000000246 agarose gel electrophoresis Methods 0.000 description 8
- 239000013613 expression plasmid Substances 0.000 description 8
- 238000002649 immunization Methods 0.000 description 8
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 8
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 8
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 8
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 8
- 241000894007 species Species 0.000 description 8
- 229960000187 tissue plasminogen activator Drugs 0.000 description 8
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 8
- 101710204837 Envelope small membrane protein Proteins 0.000 description 7
- 238000009004 PCR Kit Methods 0.000 description 7
- 206010046865 Vaccinia virus infection Diseases 0.000 description 7
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 description 7
- 238000010839 reverse transcription Methods 0.000 description 7
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 7
- 208000007089 vaccinia Diseases 0.000 description 7
- LHEJDBBHZGISGW-UHFFFAOYSA-N 5-fluoro-3-(3-oxo-1h-2-benzofuran-1-yl)-1h-pyrimidine-2,4-dione Chemical compound O=C1C(F)=CNC(=O)N1C1C2=CC=CC=C2C(=O)O1 LHEJDBBHZGISGW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 101710144111 Non-structural protein 3 Proteins 0.000 description 6
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 description 6
- DNIAPMSPPWPWGF-UHFFFAOYSA-N Propylene glycol Chemical compound CC(O)CO DNIAPMSPPWPWGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 238000010367 cloning Methods 0.000 description 6
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 6
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 6
- 210000002308 embryonic cell Anatomy 0.000 description 6
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 6
- 101710121417 Envelope glycoprotein Proteins 0.000 description 5
- 101710154606 Hemagglutinin Proteins 0.000 description 5
- 102100034349 Integrase Human genes 0.000 description 5
- 101800001030 Non-structural protein 2A Proteins 0.000 description 5
- 101710093908 Outer capsid protein VP4 Proteins 0.000 description 5
- 101710135467 Outer capsid protein sigma-1 Proteins 0.000 description 5
- 101710176177 Protein A56 Proteins 0.000 description 5
- 108010008038 Synthetic Vaccines Proteins 0.000 description 5
- 125000003275 alpha amino acid group Chemical group 0.000 description 5
- 239000000839 emulsion Substances 0.000 description 5
- 239000000185 hemagglutinin Substances 0.000 description 5
- 229940124551 recombinant vaccine Drugs 0.000 description 5
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 5
- 239000011550 stock solution Substances 0.000 description 5
- 238000013518 transcription Methods 0.000 description 5
- 230000035897 transcription Effects 0.000 description 5
- SMZOUWXMTYCWNB-UHFFFAOYSA-N 2-(2-methoxy-5-methylphenyl)ethanamine Chemical compound COC1=CC=C(C)C=C1CCN SMZOUWXMTYCWNB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 241000272517 Anseriformes Species 0.000 description 4
- 101710145006 Lysis protein Proteins 0.000 description 4
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 4
- CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-N Methacrylic acid Chemical compound CC(=C)C(O)=O CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 241001183012 Modified Vaccinia Ankara virus Species 0.000 description 4
- 238000012408 PCR amplification Methods 0.000 description 4
- 239000012190 activator Substances 0.000 description 4
- 125000004432 carbon atom Chemical group C* 0.000 description 4
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 4
- 230000000120 cytopathologic effect Effects 0.000 description 4
- 206010014599 encephalitis Diseases 0.000 description 4
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 4
- FPYJFEHAWHCUMM-UHFFFAOYSA-N maleic anhydride Chemical compound O=C1OC(=O)C=C1 FPYJFEHAWHCUMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 4
- 150000003242 quaternary ammonium salts Chemical class 0.000 description 4
- -1 silencers Proteins 0.000 description 4
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 4
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 description 4
- WALUVDCNGPQPOD-UHFFFAOYSA-M 2,3-di(tetradecoxy)propyl-(2-hydroxyethyl)-dimethylazanium;bromide Chemical compound [Br-].CCCCCCCCCCCCCCOCC(C[N+](C)(C)CCO)OCCCCCCCCCCCCCC WALUVDCNGPQPOD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 241000701081 Equid alphaherpesvirus 1 Species 0.000 description 3
- 241000701089 Equid alphaherpesvirus 4 Species 0.000 description 3
- 241000286209 Phasianidae Species 0.000 description 3
- 101710088839 Replication initiation protein Proteins 0.000 description 3
- 241000287231 Serinus Species 0.000 description 3
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 108091081024 Start codon Proteins 0.000 description 3
- 241000282898 Sus scrofa Species 0.000 description 3
- 102000006601 Thymidine Kinase Human genes 0.000 description 3
- 108020004440 Thymidine kinase Proteins 0.000 description 3
- 108010067390 Viral Proteins Proteins 0.000 description 3
- 108020000999 Viral RNA Proteins 0.000 description 3
- 125000001931 aliphatic group Chemical group 0.000 description 3
- 125000003342 alkenyl group Chemical group 0.000 description 3
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 125000002091 cationic group Chemical group 0.000 description 3
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 3
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 description 3
- 238000007918 intramuscular administration Methods 0.000 description 3
- 210000004962 mammalian cell Anatomy 0.000 description 3
- 230000003472 neutralizing effect Effects 0.000 description 3
- 239000007764 o/w emulsion Substances 0.000 description 3
- 239000003921 oil Substances 0.000 description 3
- 235000019198 oils Nutrition 0.000 description 3
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 3
- PRAKJMSDJKAYCZ-UHFFFAOYSA-N squalane Chemical compound CC(C)CCCC(C)CCCC(C)CCCCC(C)CCCC(C)CCCC(C)C PRAKJMSDJKAYCZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000007920 subcutaneous administration Methods 0.000 description 3
- 210000003501 vero cell Anatomy 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- XDOFQFKRPWOURC-UHFFFAOYSA-N 16-methylheptadecanoic acid Chemical compound CC(C)CCCCCCCCCCCCCCC(O)=O XDOFQFKRPWOURC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- GHUXAYLZEGLXDA-UHFFFAOYSA-N 8-azido-5-ethyl-6-phenylphenanthridin-5-ium-3-amine;bromide Chemical compound [Br-].C12=CC(N=[N+]=[N-])=CC=C2C2=CC=C(N)C=C2[N+](CC)=C1C1=CC=CC=C1 GHUXAYLZEGLXDA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000711404 Avian avulavirus 1 Species 0.000 description 2
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 2
- 241000282465 Canis Species 0.000 description 2
- 241000282693 Cercopithecidae Species 0.000 description 2
- 201000006082 Chickenpox Diseases 0.000 description 2
- 241000193449 Clostridium tetani Species 0.000 description 2
- 108091026890 Coding region Proteins 0.000 description 2
- 108010041986 DNA Vaccines Proteins 0.000 description 2
- 229940021995 DNA vaccine Drugs 0.000 description 2
- 241000701087 Felid alphaherpesvirus 1 Species 0.000 description 2
- 241000701063 Gallid alphaherpesvirus 1 Species 0.000 description 2
- 108091005904 Hemoglobin subunit beta Proteins 0.000 description 2
- 241000711450 Infectious bronchitis virus Species 0.000 description 2
- 241000702626 Infectious bursal disease virus Species 0.000 description 2
- 102000013462 Interleukin-12 Human genes 0.000 description 2
- 108010065805 Interleukin-12 Proteins 0.000 description 2
- 102000003812 Interleukin-15 Human genes 0.000 description 2
- 108090000172 Interleukin-15 Proteins 0.000 description 2
- 102000003810 Interleukin-18 Human genes 0.000 description 2
- 108090000171 Interleukin-18 Proteins 0.000 description 2
- VQTUBCCKSQIDNK-UHFFFAOYSA-N Isobutene Chemical compound CC(C)=C VQTUBCCKSQIDNK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108010090054 Membrane Glycoproteins Proteins 0.000 description 2
- 102000012750 Membrane Glycoproteins Human genes 0.000 description 2
- 241001529936 Murinae Species 0.000 description 2
- 101800001020 Non-structural protein 4A Proteins 0.000 description 2
- 101800001019 Non-structural protein 4B Proteins 0.000 description 2
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 2
- 241000700638 Raccoonpox virus Species 0.000 description 2
- 241000711955 Turkey rhinotracheitis virus Species 0.000 description 2
- 101150050057 UL43 gene Proteins 0.000 description 2
- 206010046980 Varicella Diseases 0.000 description 2
- 230000003213 activating effect Effects 0.000 description 2
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 2
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 2
- 239000012298 atmosphere Substances 0.000 description 2
- 108010006025 bovine growth hormone Proteins 0.000 description 2
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 2
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 2
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 2
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 2
- 229920001577 copolymer Polymers 0.000 description 2
- 230000034994 death Effects 0.000 description 2
- GHVNFZFCNZKVNT-UHFFFAOYSA-M decanoate Chemical compound CCCCCCCCCC([O-])=O GHVNFZFCNZKVNT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 238000012217 deletion Methods 0.000 description 2
- 230000037430 deletion Effects 0.000 description 2
- 238000013461 design Methods 0.000 description 2
- 238000002405 diagnostic procedure Methods 0.000 description 2
- 238000003748 differential diagnosis Methods 0.000 description 2
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 2
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 239000003995 emulsifying agent Substances 0.000 description 2
- 150000002148 esters Chemical class 0.000 description 2
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 2
- 238000001415 gene therapy Methods 0.000 description 2
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 2
- 230000003308 immunostimulating effect Effects 0.000 description 2
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 2
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 2
- 229940117681 interleukin-12 Drugs 0.000 description 2
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 2
- 125000002496 methyl group Chemical group [H]C([H])([H])* 0.000 description 2
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 2
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 2
- WWZKQHOCKIZLMA-UHFFFAOYSA-M octanoate Chemical compound CCCCCCCC([O-])=O WWZKQHOCKIZLMA-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- ZQPPMHVWECSIRJ-KTKRTIGZSA-N oleic acid Chemical compound CCCCCCCC\C=C/CCCCCCCC(O)=O ZQPPMHVWECSIRJ-KTKRTIGZSA-N 0.000 description 2
- 229940124276 oligodeoxyribonucleotide Drugs 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 2
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 2
- 230000008488 polyadenylation Effects 0.000 description 2
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 2
- 230000002028 premature Effects 0.000 description 2
- 230000010076 replication Effects 0.000 description 2
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 238000012163 sequencing technique Methods 0.000 description 2
- 230000026683 transduction Effects 0.000 description 2
- 238000010361 transduction Methods 0.000 description 2
- 238000001890 transfection Methods 0.000 description 2
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 2
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 2
- JNYAEWCLZODPBN-KVTDHHQDSA-N (2r,3r,4r)-2-[(1r)-1,2-dihydroxyethyl]oxolane-3,4-diol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@H]1OC[C@@H](O)[C@H]1O JNYAEWCLZODPBN-KVTDHHQDSA-N 0.000 description 1
- JNYAEWCLZODPBN-JGWLITMVSA-N (2r,3r,4s)-2-[(1r)-1,2-dihydroxyethyl]oxolane-3,4-diol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@H]1OC[C@H](O)[C@H]1O JNYAEWCLZODPBN-JGWLITMVSA-N 0.000 description 1
- YYGNTYWPHWGJRM-UHFFFAOYSA-N (6E,10E,14E,18E)-2,6,10,15,19,23-hexamethyltetracosa-2,6,10,14,18,22-hexaene Chemical compound CC(C)=CCCC(C)=CCCC(C)=CCCC=C(C)CCC=C(C)CCC=C(C)C YYGNTYWPHWGJRM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ULQISTXYYBZJSJ-UHFFFAOYSA-N 12-hydroxyoctadecanoic acid Chemical compound CCCCCCC(O)CCCCCCCCCCC(O)=O ULQISTXYYBZJSJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- RFIMISVNSAUMBU-UHFFFAOYSA-N 2-(hydroxymethyl)-2-(prop-2-enoxymethyl)propane-1,3-diol Chemical compound OCC(CO)(CO)COCC=C RFIMISVNSAUMBU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KIHBGTRZFAVZRV-UHFFFAOYSA-N 2-Hydroxyoctadecanoic acid Natural products CCCCCCCCCCCCCCCCC(O)C(O)=O KIHBGTRZFAVZRV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- UMHYVXGZRGOICM-AUYXYSRISA-N 2-[(z)-octadec-9-enoyl]oxypropyl (z)-octadec-9-enoate Chemical compound CCCCCCCC\C=C/CCCCCCCC(=O)OCC(C)OC(=O)CCCCCCC\C=C/CCCCCCCC UMHYVXGZRGOICM-AUYXYSRISA-N 0.000 description 1
- 125000000954 2-hydroxyethyl group Chemical group [H]C([*])([H])C([H])([H])O[H] 0.000 description 1
- 125000003903 2-propenyl group Chemical group [H]C([*])([H])C([H])=C([H])[H] 0.000 description 1
- NKDFYOWSKOHCCO-YPVLXUMRSA-N 20-hydroxyecdysone Chemical compound C1[C@@H](O)[C@@H](O)C[C@]2(C)[C@@H](CC[C@@]3([C@@H]([C@@](C)(O)[C@H](O)CCC(C)(O)C)CC[C@]33O)C)C3=CC(=O)[C@@H]21 NKDFYOWSKOHCCO-YPVLXUMRSA-N 0.000 description 1
- FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 4-amino-1-[(2r)-6-amino-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-amino-3-phenylpropanoyl]amino]-3-phenylpropanoyl]amino]-4-methylpentanoyl]amino]hexanoyl]piperidine-4-carboxylic acid Chemical compound C([C@H](C(=O)N[C@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H](CCCCN)C(=O)N1CCC(N)(CC1)C(O)=O)NC(=O)[C@H](N)CC=1C=CC=CC=1)C1=CC=CC=C1 FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 0.000 description 1
- 241000238876 Acari Species 0.000 description 1
- 102000007469 Actins Human genes 0.000 description 1
- 108010085238 Actins Proteins 0.000 description 1
- 241000256111 Aedes <genus> Species 0.000 description 1
- 241000272525 Anas platyrhynchos Species 0.000 description 1
- 241000256186 Anopheles <genus> Species 0.000 description 1
- 206010003445 Ascites Diseases 0.000 description 1
- 206010003591 Ataxia Diseases 0.000 description 1
- 241000201370 Autographa californica nucleopolyhedrovirus Species 0.000 description 1
- 241000714230 Avian leukemia virus Species 0.000 description 1
- 241001516406 Avian orthoreovirus Species 0.000 description 1
- 241000606560 Avibacterium avium Species 0.000 description 1
- 241000606591 Avibacterium gallinarum Species 0.000 description 1
- 241000282832 Camelidae Species 0.000 description 1
- 241000282836 Camelus dromedarius Species 0.000 description 1
- 241000700199 Cavia porcellus Species 0.000 description 1
- 241001227713 Chiron Species 0.000 description 1
- 241000272201 Columbiformes Species 0.000 description 1
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 description 1
- 241001137251 Corvidae Species 0.000 description 1
- 241000699800 Cricetinae Species 0.000 description 1
- 241000256054 Culex <genus> Species 0.000 description 1
- 241000701022 Cytomegalovirus Species 0.000 description 1
- 102000016928 DNA-directed DNA polymerase Human genes 0.000 description 1
- 108010014303 DNA-directed DNA polymerase Proteins 0.000 description 1
- 241000255925 Diptera Species 0.000 description 1
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 1
- 238000012286 ELISA Assay Methods 0.000 description 1
- 208000006825 Eastern Equine Encephalomyelitis Diseases 0.000 description 1
- 201000005804 Eastern equine encephalitis Diseases 0.000 description 1
- LVGKNOAMLMIIKO-UHFFFAOYSA-N Elaidinsaeure-aethylester Natural products CCCCCCCCC=CCCCCCCCC(=O)OCC LVGKNOAMLMIIKO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010014587 Encephalitis eastern equine Diseases 0.000 description 1
- 101710126499 Envelope glycoprotein E Proteins 0.000 description 1
- 241000230501 Equine herpesvirus sp. Species 0.000 description 1
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 1
- VGGSQFUCUMXWEO-UHFFFAOYSA-N Ethene Chemical compound C=C VGGSQFUCUMXWEO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000005977 Ethylene Substances 0.000 description 1
- 241000701047 Gallid alphaherpesvirus 2 Species 0.000 description 1
- 208000012671 Gastrointestinal haemorrhages Diseases 0.000 description 1
- 108700028146 Genetic Enhancer Elements Proteins 0.000 description 1
- 102000003886 Glycoproteins Human genes 0.000 description 1
- 108090000288 Glycoproteins Proteins 0.000 description 1
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 208000002979 Influenza in Birds Diseases 0.000 description 1
- 102000014150 Interferons Human genes 0.000 description 1
- 108010050904 Interferons Proteins 0.000 description 1
- RRHGJUQNOFWUDK-UHFFFAOYSA-N Isoprene Chemical class CC(=C)C=C RRHGJUQNOFWUDK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000710912 Kunjin virus Species 0.000 description 1
- 108090001030 Lipoproteins Proteins 0.000 description 1
- 102000004895 Lipoproteins Human genes 0.000 description 1
- 102000009571 Macrophage Inflammatory Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010009474 Macrophage Inflammatory Proteins Proteins 0.000 description 1
- 101710085938 Matrix protein Proteins 0.000 description 1
- 241001502481 Meleagrid alphaherpesvirus 1 Species 0.000 description 1
- 101710127721 Membrane protein Proteins 0.000 description 1
- NTIZESTWPVYFNL-UHFFFAOYSA-N Methyl isobutyl ketone Chemical compound CC(C)CC(C)=O NTIZESTWPVYFNL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101710081079 Minor spike protein H Proteins 0.000 description 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 1
- 241001148547 Mycoplasma gallinarum Species 0.000 description 1
- 241000204022 Mycoplasma gallisepticum Species 0.000 description 1
- 206010048849 Myocardial haemorrhage Diseases 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 239000005662 Paraffin oil Substances 0.000 description 1
- 208000007542 Paresis Diseases 0.000 description 1
- 241000543245 Pasteurella multocida subsp. gallicida Species 0.000 description 1
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 1
- 206010035664 Pneumonia Diseases 0.000 description 1
- 229920003171 Poly (ethylene oxide) Polymers 0.000 description 1
- 101800004937 Protein C Proteins 0.000 description 1
- 102000017975 Protein C Human genes 0.000 description 1
- 206010037714 Quadriplegia Diseases 0.000 description 1
- 101150093191 RIR1 gene Proteins 0.000 description 1
- 235000004443 Ricinus communis Nutrition 0.000 description 1
- 241000283984 Rodentia Species 0.000 description 1
- 241000714474 Rous sarcoma virus Species 0.000 description 1
- 101800001700 Saposin-D Proteins 0.000 description 1
- 241000287219 Serinus canaria Species 0.000 description 1
- CDBYLPFSWZWCQE-UHFFFAOYSA-L Sodium Carbonate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C([O-])=O CDBYLPFSWZWCQE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 241000256251 Spodoptera frugiperda Species 0.000 description 1
- 230000024932 T cell mediated immunity Effects 0.000 description 1
- 210000001744 T-lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 206010043376 Tetanus Diseases 0.000 description 1
- 108010055044 Tetanus Toxin Proteins 0.000 description 1
- BHEOSNUKNHRBNM-UHFFFAOYSA-N Tetramethylsqualene Natural products CC(=C)C(C)CCC(=C)C(C)CCC(C)=CCCC=C(C)CCC(C)C(=C)CCC(C)C(C)=C BHEOSNUKNHRBNM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241001223089 Tremovirus A Species 0.000 description 1
- 241000132980 Turkey adenovirus 3 Species 0.000 description 1
- 101150048066 UL45 gene Proteins 0.000 description 1
- 101150081415 UL55 gene Proteins 0.000 description 1
- 101150093578 VP2 gene Proteins 0.000 description 1
- 241000710959 Venezuelan equine encephalitis virus Species 0.000 description 1
- QYKIQEUNHZKYBP-UHFFFAOYSA-N Vinyl ether Chemical compound C=COC=C QYKIQEUNHZKYBP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010058874 Viraemia Diseases 0.000 description 1
- 108010003533 Viral Envelope Proteins Proteins 0.000 description 1
- 108010087302 Viral Structural Proteins Proteins 0.000 description 1
- 201000006449 West Nile encephalitis Diseases 0.000 description 1
- 206010057293 West Nile viral infection Diseases 0.000 description 1
- 241000710951 Western equine encephalitis virus Species 0.000 description 1
- UZQJVUCHXGYFLQ-AYDHOLPZSA-N [(2s,3r,4s,5r,6r)-4-[(2s,3r,4s,5r,6r)-4-[(2r,3r,4s,5r,6r)-4-[(2s,3r,4s,5r,6r)-3,5-dihydroxy-6-(hydroxymethyl)-4-[(2s,3r,4s,5s,6r)-3,4,5-trihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-2-yl]oxyoxan-2-yl]oxy-3,5-dihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-2-yl]oxy-3,5-dihydroxy-6-(hy Chemical compound O([C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]([C@@H]1O)O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]([C@@H]1O)O[C@H]1CC[C@]2(C)[C@H]3CC=C4[C@@]([C@@]3(CC[C@H]2[C@@]1(C=O)C)C)(C)CC(O)[C@]1(CCC(CC14)(C)C)C(=O)O[C@H]1[C@@H]([C@@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O[C@H]3[C@@H]([C@@H](O[C@H]4[C@@H]([C@@H](O[C@H]5[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O5)O)[C@H](O)[C@@H](CO)O4)O)[C@H](O)[C@@H](CO)O3)O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1)O)[C@@H]1O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]1O UZQJVUCHXGYFLQ-AYDHOLPZSA-N 0.000 description 1
- 206010000210 abortion Diseases 0.000 description 1
- 231100000176 abortion Toxicity 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 1
- 150000001336 alkenes Chemical class 0.000 description 1
- 125000000217 alkyl group Chemical group 0.000 description 1
- 229940086737 allyl sucrose Drugs 0.000 description 1
- WNROFYMDJYEPJX-UHFFFAOYSA-K aluminium hydroxide Chemical compound [OH-].[OH-].[OH-].[Al+3] WNROFYMDJYEPJX-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 1
- 208000007502 anemia Diseases 0.000 description 1
- 230000005875 antibody response Effects 0.000 description 1
- 238000011888 autopsy Methods 0.000 description 1
- 206010064097 avian influenza Diseases 0.000 description 1
- 210000003719 b-lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 229920001400 block copolymer Polymers 0.000 description 1
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 description 1
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- 210000004899 c-terminal region Anatomy 0.000 description 1
- 244000309466 calf Species 0.000 description 1
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 230000006037 cell lysis Effects 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 230000036755 cellular response Effects 0.000 description 1
- 210000003169 central nervous system Anatomy 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 230000009920 chelation Effects 0.000 description 1
- 210000004978 chinese hamster ovary cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000000295 complement effect Effects 0.000 description 1
- 229920006037 cross link polymer Polymers 0.000 description 1
- 210000004292 cytoskeleton Anatomy 0.000 description 1
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 1
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 1
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 1
- 239000003623 enhancer Substances 0.000 description 1
- 238000001976 enzyme digestion Methods 0.000 description 1
- 238000012869 ethanol precipitation Methods 0.000 description 1
- 150000002170 ethers Chemical class 0.000 description 1
- 229940052303 ethers for general anesthesia Drugs 0.000 description 1
- LVGKNOAMLMIIKO-QXMHVHEDSA-N ethyl oleate Chemical compound CCCCCCCC\C=C/CCCCCCCC(=O)OCC LVGKNOAMLMIIKO-QXMHVHEDSA-N 0.000 description 1
- 229940093471 ethyl oleate Drugs 0.000 description 1
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 1
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 description 1
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000012091 fetal bovine serum Substances 0.000 description 1
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 1
- 239000006260 foam Substances 0.000 description 1
- 108020001507 fusion proteins Proteins 0.000 description 1
- 102000037865 fusion proteins Human genes 0.000 description 1
- 101150029683 gB gene Proteins 0.000 description 1
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 1
- PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N gold Chemical compound [Au] PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000010931 gold Substances 0.000 description 1
- 229910052737 gold Inorganic materials 0.000 description 1
- 244000144993 groups of animals Species 0.000 description 1
- 125000004435 hydrogen atom Chemical group [H]* 0.000 description 1
- 238000010166 immunofluorescence Methods 0.000 description 1
- 230000001976 improved effect Effects 0.000 description 1
- 210000003000 inclusion body Anatomy 0.000 description 1
- 206010022000 influenza Diseases 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 238000005342 ion exchange Methods 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 210000003292 kidney cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000003902 lesion Effects 0.000 description 1
- 208000027905 limb weakness Diseases 0.000 description 1
- 231100000861 limb weakness Toxicity 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 229940057995 liquid paraffin Drugs 0.000 description 1
- 244000144972 livestock Species 0.000 description 1
- 210000003141 lower extremity Anatomy 0.000 description 1
- 230000035800 maturation Effects 0.000 description 1
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 238000001823 molecular biology technique Methods 0.000 description 1
- 238000010369 molecular cloning Methods 0.000 description 1
- 208000010125 myocardial infarction Diseases 0.000 description 1
- JXTPJDDICSTXJX-UHFFFAOYSA-N n-Triacontane Natural products CCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCC JXTPJDDICSTXJX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- AFFLGGQVNFXPEV-UHFFFAOYSA-N n-decene Natural products CCCCCCCCC=C AFFLGGQVNFXPEV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 201000008383 nephritis Diseases 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 239000002736 nonionic surfactant Substances 0.000 description 1
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 1
- 229940049964 oleate Drugs 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 230000037368 penetrate the skin Effects 0.000 description 1
- 238000010647 peptide synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 239000013600 plasmid vector Substances 0.000 description 1
- 229920001983 poloxamer Polymers 0.000 description 1
- 229920000058 polyacrylate Polymers 0.000 description 1
- 229920000223 polyglycerol Polymers 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 125000002924 primary amino group Chemical group [H]N([H])* 0.000 description 1
- 230000002250 progressing effect Effects 0.000 description 1
- 229940010310 propylene glycol dioleate Drugs 0.000 description 1
- 229960000856 protein c Drugs 0.000 description 1
- 230000005180 public health Effects 0.000 description 1
- 239000001397 quillaja saponaria molina bark Substances 0.000 description 1
- 229930182490 saponin Natural products 0.000 description 1
- 150000007949 saponins Chemical class 0.000 description 1
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 description 1
- 230000001235 sensitizing effect Effects 0.000 description 1
- 230000000405 serological effect Effects 0.000 description 1
- 210000004927 skin cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000012798 spherical particle Substances 0.000 description 1
- 229940032094 squalane Drugs 0.000 description 1
- 229940031439 squalene Drugs 0.000 description 1
- TUHBEKDERLKLEC-UHFFFAOYSA-N squalene Natural products CC(=CCCC(=CCCC(=CCCC=C(/C)CCC=C(/C)CC=C(C)C)C)C)C TUHBEKDERLKLEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 description 1
- 125000001424 substituent group Chemical group 0.000 description 1
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 1
- 150000005846 sugar alcohols Polymers 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 229940118376 tetanus toxin Drugs 0.000 description 1
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 1
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 1
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 1
- 241000701447 unidentified baculovirus Species 0.000 description 1
- 229940124856 vaccine component Drugs 0.000 description 1
- 229940021648 varicella vaccine Drugs 0.000 description 1
- 235000015112 vegetable and seed oil Nutrition 0.000 description 1
- 239000008158 vegetable oil Substances 0.000 description 1
- 229960000834 vinyl ether Drugs 0.000 description 1
- 125000000391 vinyl group Chemical group [H]C([*])=C([H])[H] 0.000 description 1
- 229920002554 vinyl polymer Polymers 0.000 description 1
- 229960004854 viral vaccine Drugs 0.000 description 1
- 210000002845 virion Anatomy 0.000 description 1
- 239000007762 w/o emulsion Substances 0.000 description 1
- 238000001262 western blot Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
- C12N15/86—Viral vectors
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/12—Antivirals
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/12—Antivirals
- A61P31/14—Antivirals for RNA viruses
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
- A61K2039/525—Virus
- A61K2039/5256—Virus expressing foreign proteins
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
- A61K2039/53—DNA (RNA) vaccination
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/55—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
- A61K2039/552—Veterinary vaccine
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/555—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
- A61K2039/55511—Organic adjuvants
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/555—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
- A61K2039/55511—Organic adjuvants
- A61K2039/55522—Cytokines; Lymphokines; Interferons
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/555—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
- A61K2039/55511—Organic adjuvants
- A61K2039/55555—Liposomes; Vesicles, e.g. nanoparticles; Spheres, e.g. nanospheres; Polymers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K2319/00—Fusion polypeptide
- C07K2319/01—Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
- C07K2319/02—Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif containing a signal sequence
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2710/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
- C12N2710/00011—Details
- C12N2710/24011—Poxviridae
- C12N2710/24041—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
- C12N2710/24043—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2770/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
- C12N2770/00011—Details
- C12N2770/24011—Flaviviridae
- C12N2770/24111—Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
- C12N2770/24122—New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2770/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
- C12N2770/00011—Details
- C12N2770/24011—Flaviviridae
- C12N2770/24111—Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
- C12N2770/24134—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2770/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
- C12N2770/00011—Details
- C12N2770/24011—Flaviviridae
- C12N2770/24111—Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
- C12N2770/24171—Demonstrated in vivo effect
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Virology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Oncology (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Description
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest kompozycja szczepionkowa do indukcji zabezpieczającej odpowiedzi immunologicznej przed wirusem zachodniego Nilu (WNV) jak również wektory do ekspresji in vivo i in vitro, obejmujące i wyrażające, co najmniej jeden polinukleotyd wirusa gorączki Nilu, oraz immunogenne kompozycje i szczepionki przeciw gorączce Nilu. Opisane są również sposoby immunizacji oraz szczepionka przeciwko temu wirusowi.
Wirus gorączki zachodniego Nilu (West Nile Virus lub WNV lub WN) został zidentyfikowany u czł owieka po raz pierwszy w 1937 roku w Ugandzie w prowincji West Nile (H.G. Zeller, Med. Trop., 1999, 59, 490-494).
Szeroko rozpowszechniony w Afryce, spotykany również w Indiach, Pakistanie i basenie śródziemnomorskim, został po raz pierwszy zidentyfikowany w U.S.A. w mieście Nowy Jork w 1999 (J.F. Anderson i wsp., Science, 1999, 286, 2331-2333).
Wirus gorączki zachodniego Nilu zakaża zarówno ptaki, jak i ssaki oraz człowieka.
U ptaków choroba charakteryzuje się zaję ciem centralnego ukł adu nerwowego i ś miercią . Uszkodzenia obejmują zapalenia mózgu, krwotoki w mięśniu sercowym oraz krwotoki i martwice w przewodzie pokarmowym.
U kurcząt, zakaż enia doświadczalne, przez podskórne wszczepienia wirusa gorączki zachodniego Nilu izolowanego od wron, powodowały martwice mięśnia sercowego, zapalenia nerek oraz zapalenia płuc 5 do 10 dni po wszczepieniu, umiarkowane do ciężkich zapalenia mózgu 21 dni po wszczepieniu (D.A. Senne i wsp., Avian Disease, 2000, 44, 642-649).
Wirus gorączki zachodniego Nilu zakaża również konie, szczególnie w Afryce Północnej i Europie (C. Cantile i wsp., Equine Vet. J., 2000, 32(1), 31-35). Konie te wykazują objawy ataksji, osłabienia kończyn tylnych, niedowładu postępującego do tetraplegii i śmierci. Konie i wielbłądy są głównymi zwierzętami, które manifestują objawy kliniczne w postaci zapaleń mózgu.
Przeciwciała anty-WNV wykryto u pewnych gryzoni, u inwentarza, szczególnie u bydła i owiec, u zwierzą t domowych, szczególnie psów (H.G. Zeller, Med. Trop., 1999, 59, 490-494; J.O. Lundstrom, Journal of Vector Ecology, 1999, 24(1), 1-39).
Wirus gorączki zachodniego Nilu nie oszczędza nawet gatunku ludzkiego, powodując liczne symptomy (B.A. Sampson, Human Pathology, 2000, 31(5), 527-531; C.M. Marra, Seminars in Neurology, 2000, 20(3), 323-327).
Wirus gorączki zachodniego Nilu jest przenoszony na ptaki i ssaki przez ukąszenia pewnych komarów (na przykład Culex, Aedes, Anopheles) i kleszczy.
Dzikie i udomowione ptaki są, dla wirusa gorączki zachodniego Nilu, rezerwuarem i wektorem propagacji przez ich migracje.
Wiriony wirusa gorączki zachodniego Nilu są sferycznymi cząstkami o średnicy 50 nm, zbudowanymi z lipoproteinowej otoczki otaczającej dwudziestościenny nukleokapsyd, zawierający pojedynczy jednoniciowy RNA o pozytywnej polarności.
Jedyna otwarta ramka odczytu koduje wszystkie wirusowe białka pod postacią poliproteiny. Rozpad i dojrzewanie tej poliproteiny prowadzi do wytworzenia dziesiątek różnych białek wirusowych. Białka strukturalne są kodowane przez część 5' genomu i odpowiadają nukleokapsydowi zwanemu C (14 kDa), glikoproteinie otoczki zwanej E (50 kDa), białku przedbłonowemu zwanemu prM (23 kDa), białku błonowemu zwanemu M (7 kDa). Białka niestrukturalne są kodowane przez część 3' genomu i odpowiadają biał kom NS1 (40 kDa), NS2A (19 kDa), NS2B (14 kDa), NS3 (74 kDa), NS4A (15 kDa), NS4B (29 kDa), NS5 (97 kDa).
C.R. Parrish i wsp. (J. Gen. Virol., 1991, 72, 1645-1653), A.B. Kulkami i wsp. (J. Virol., 1992, 66(6), 3583-3592) oraz A.B. Hill i wsp. (J. Gen. Virol., 1992, 73, 1115-1123) skonstruowali, na podstawie wirusa krowianki, wektory ekspresji in vivo, zawierające zmienne inserty odpowiadające sekwencjom nukleotydowym, kodującym niestrukturalne białka wirusa Kunjin, ewentualnie związane z biał kami strukturalnymi. Wektory te był y podawane myszy w celu wytworzenia komórkowej odpowiedzi immunologicznej. Twórcy podkreślają znaczenie odpowiedzi komórkowej, która jest przede wszystkim stymulowana przez białka niestrukturalne, a w szczególności przez NS3, NS4A i NS4B. W artykuł ach tych podkreś lono trudność w dostarczeniu dobrej strategii szczepienia przeciw gorą czce zachodniego Nilu.
Do dnia dzisiejszego nie ma szczepionki do zapobiegania zakażeniu przez wirus WN.
PL 210 306 B1
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest kompozycja szczepionkowa do indukcji zabezpieczającej odpowiedzi immunologicznej przed wirusem zachodniego Nilu (WNV) u zwierząt podatnych na WNV, która obejmuje wektor zawierający rekombinowany wirus lub plazmid DNA, który koduje i wyraża in vivo u zwierzęcia WNV E; WNV prM i E; WNV M i E; WNV prM, WNV M i E, poliproteinę prM-E z WNV, poliproteinę M-E z WNV, lub poliproteinę prM-M-E WNV, przy czym gdy wirus jest wirusem ospy ptaków wyrażane białko jest inne niż poliproteina prM-M-E z WNV.
Korzystnie rekombinowany wirus jest rekombinowanym adenowirusem, herpeswirusem lub pokswirusem, korzystniej rekombinowany wirus jest rekombinowanym wirusem ospy, jeszcze korzystniej rekombinowany wirus ospy jest rekombinowanym wirusem ospy ptaków, najkorzystniej rekombinowany wirus ospy ptaków jest rekombinowanym wirusem ospy kanarków lub wirusem ospy drobiu, bardziej korzystnie wirusem ospy kanarków jest ALVAC, a wirusem ospy drobiu jest TROVAC.
W korzystnej kompozycji szczepionkowej cząsteczka kwasu nukleinowego obejmuje ramkę odczytu kodująca poliproteinę prM-M-E.
Równie korzystnie cząsteczka kwasu nukleinowego obejmuje nukleotydy 466-741, 742-966 i 967-2469 z GenBank AF196825 (SEKW ID NR: 66) kodują ce odpowiednio WNV prM, M i E.
Ponadto korzystne jest, gdy cząsteczka kwasu nukleinowego obejmuje nukleotydy 466-2469 z GenBank AF196835 (SEKW ID NR: 66) kodują ce biał ko prM-M-E z WNV.
Równie korzystnie cząsteczka kwasu nukleinowego obejmuje nukleotydy 421-2469 z GenBank AF196835 (SEKW ID NR: 66) kodujące białko prM-M-E z WNV oraz peptyd sygnalny z prM.
Kompozycja szczepionkowa ponadto korzystnie obejmuje adiuwant, korzystniej adiuwantem jest karbomer.
Kompozycja szczepionkowa korzystnie ponadto obejmuje antygen lub immunogen lub epitop z patogenu zwierzęcia inny niż WNV lub wektor, który zawiera i wyraż a in vivo czą steczkę kwasu nukleinowego kodującą antygen, immunogen lub epitop patogenu lub inaktywowany lub atenuowany patogen zwierzęcia inny niż WNV.
Zwierzęciem jest korzystnie kot lub koń.
Kompozycja szczepionkowa korzystnie obejmuje wektor obejmujący rekombinowany wirus lub plazmidowy DNA, który koduje i wyraża in vivo w zwierzęciu poliproteinę prM-M-E z WNV.
Wynalazek dotyczy również zastosowania kompozycji szczepionkowej według wynalazku do wytwarzania szczepionki do indukcji zabezpieczającej odpowiedzi immunologicznej przed wirusem zachodniego Nilu (WNV) u zwierząt podatnych na WNV, przy czym korzystnie zwierzęciem jest kot lub koń.
Wynalazek dotyczy również środków do zapobiegania i/lub zwalczania chorób wywoływanych wirusem WN.
Innym przedmiotem wynalazku jest przedstawienie takiego środka, który mógłby być stosowany u różnych gatunków zwierzą t, podatnych na chorobę wywoływaną przez tego wirusa, w szczególności u koni i ptaków.
Jeszcze innym przedmiotem niniejszego wynalazku jest przedstawienie sposobów immunizacji i szczepienia docelowych gatunków.
Innym przedmiotem wynalazku jest przedstawienie takich środków i sposobów, pozwalających na zapewnienie diagnostyki różnicowej.
Również głównym przedmiotem wynalazku są wektory ekspresji in vitro i/lub in vivo, obejmujące polinukleotyd kodujący białko otoczki E wirusa WN. Wektory te obejmują w dodatku elementy niezbędne do ekspresji polinukleotydu w komórce gospodarza.
Oprócz polinukleotydu kodującego białko E, wektory ekspresji według wynalazku mogą obejmować jeden lub więcej innych polinukletydów, kodujących inne białka wirusa WN, korzystnie białka strukturalne wirusa WN, korzystnie sekwencje te są wybrane spośród takich, które kodują białko przedbłonowe prM i białko błonowe M.
Korzystnie wektor obejmuje polinukleotyd tworzący jedną ramkę odczytu, kodującą odpowiednio np. prM-E, M-E, a szczególniej prM-M-E. Wektor obejmujący liczne oddzielne polinukleotydy kodujące różne białka (np. prM i/lub M i E) wchodzi również w zakres niniejszego wynalazku. Wektor, w szczególnoś ci in vivo, moż e również obejmować polinukleotydy odpowiadające wię cej niż jednemu szczepowi wirusa WN, w szczególności dwa lub więcej polinukleotydy kodujące E lub prM-M-E różnych szczepów. Jak będzie przedstawione dalej, wektor, w szczególności in vivo, może również obejmować sekwencję lub sekwencje nukleotydowe, kodujące immunogeny innych czynników patogennych i/lub cytokiny.
PL 210 306 B1
Według korzystnej postaci wykonania wynalazku wektor ekspresji obejmuje polinukleotyd kodujący prM-M-E i to korzystnie w jednej fazie (ramce) odczytu.
Za polinukleotyd kodujący białko wirusa WN uważa się w szczególności fragment DNA, który koduje to białko, lub nić komplementarną do tego fragmentu DNA. RNA nie jest wykluczony.
W znaczeniu wynalazku termin białko obejmuje fragmenty złożone z peptydów i polipeptydów. Jak sama nazwa wskazuje, fragment białka jest immunologicznie aktywny w tym znaczeniu, że podany raz gospodarzowi jest zdolny uruchomić odpowiedź immunologiczną typu humoralnego i/lub komórkowego, skierowaną przeciwko białku. Korzystnie fragment białka jest takim fragmentem, który posiada, w głównych zarysach, taką samą aktywność immunologiczną, jak całe białko. Fragment białka według wynalazku obejmuje więc co najmniej jeden epitop lub determinantę posiadającą właściwości antygenowe. Termin epitop odnosi się do miejsca w cząsteczce białka zdolnego do wzbudzania reakcji immunologicznej typu humoralnego (komórki B) i/lub typu komórkowego (komórki T).
Strukturą minimalną polinukleotydu jest więc ta, która koduje epitop lub determinantę antygenową pożądanego białka. Polinukleotyd kodujący fragment całego białka obejmuje w szczególności minimum 21 nukleotydów, w szczególności, co najmniej 42 nukleotydy i korzystnie co najmniej 57, 87 lub 150 następujących po sobie nukleotydów sekwencji z której pochodzi. Metody określania epitopów są dobrze znane specjalistom w dziedzinie, w szczególności można wykorzystywać banki zachodzących na siebie peptydów (B. Hemmer i wsp., Immunology Today, 1998, 19(4), 163-168), Pepscan (H.M. Geysen i wsp., Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1984, 81(13), 3998-4002; H.M. Geysen i wsp., Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1985, 82(1), 178-182; R. Van der Zee i wsp., Eur. J. Immunol., 1989, 19(1), 43-47; H.M. Geysen, Southeast Asian J. Trop. Med. Public Health, 1990, 21(4), 523-533; Multipin® Peptide Synthesis Kits de Chiron), algorytmy (A. De Groot i wsp., Nature Biotechnology, 1999, 17, 533-561).
W szczególności polinukleotydy według wynalazku obejmują sekwencje nukleotydową kodując ą jedną lub dwie domeny przezbłonowe, korzystnie dwie, usytuowane w części C końcowej białka E. Dla szczepu NY99 WNV domeny te odpowiadają sekwencjom aminokwasowym 742 do 766 i 770 do 791 sekwencji z GenBanku AF196835.
Obecne są elementy konieczne do ekspresji polinukleotydu lub polinukleotydów. Zależy to, co najmniej od kodonu inicjatorowego (ATG), kodonu stop i promotora, jak również sekwencji poliadenylacji dla plazmidów i wektorów wirusowych innych niż pokswirusów. W chwili, gdy polinukleotyd koduje fragment poliproteiny, na przykład prM-E, M-E, prM-M-E ATG jest umieszczony na końcu 5' fazy odczytu, a kodon stop jest umieszczony na końcu 3'. Jak będzie wyjaśnione dalej, inne elementy, pozwalające na kontrolę ekspresji, takie jak sekwencje wzmacniające (po angielsku „enhancer), sekwencje wyciszające, sekwencje sygnałowe, pozwalające na wydzielanie białka mogą być również obecne.
Przedmiotem niniejszego wynalazku są również preparaty, zawierające takie wektory ekspresji. Szczególniej wynalazek dotyczy preparatów obejmujących jeden lub kilka wektorów ekspresji in vivo, obejmujących i wyrażających jeden lub kilka polinukleotydów jak powyżej, w tym ten kodujący białko E, w dopuszczalnej farmaceutycznie zaróbce lub podłożu.
Według pierwszego sposobu wykonania wynalazku inny wektor lub wektory w preparacie obejmują i wyrażają jedno lub kilka innych białek wirusa WN, np. prM, M, prM-M.
Według innego sposobu wykonania inny wektor lub wektory w preparacie obejmują i wyrażają jedno lub kilka białek jednego lub kilku innych szczepów wirusa WN. Szczególnie preparat obejmuje co najmniej dwa wektory wyrażające, w szczególności in vivo, polinukleotydy różnych szczepów WN, kodujące te same białka i/lub różne białka, korzystnie takie same białka. W zależności od preferencji wektory wyrażają in vivo E lub prM-M-E dwóch, trzech lub więcej różnych szczepów WN. Wynalazek dotyczy również mieszanin wektorów wyrażających prM, M, E, prM-M, prM-E lub M-E różnych szczepów.
Według jeszcze innego sposobu wykonania i jak będzie można się z tym zapoznać bardziej szczegółowo dalej, inny wektor lub wektory w preparacie obejmują i wyrażają jedną lub kilka cytokin i/lub jeden lub kilka immunogenów jednego lub kilku innych patogennych czynników.
Wynalazek dotyczy również różnorodnych kombinacji tych różnych sposobów wykonania.
Preparaty obejmujące wektor ekspresji, in vitro lub in vivo, obejmujący i wyrażający polinukleotyd kodujący prM-M-E, stanowią korzystną postać wykonania wynalazku.
PL 210 306 B1
Według szczególnej postaci wykonania wynalazku, wektory ekspresji, in vivo lub in vitro, obejmują, jako sam(e) polinukleotyd(y) wirusa WN, polinukleotyd kodujący białko E, ewentualnie połączone z prM i/lub M, korzystnie kodujący prM-M-E i ewentualnie sekwencję sygnałową wirusa WN.
Według szczególnej postaci wykonania jedno lub kilka niestrukturalnych białek NS2A, NS2B i NS3 jest wyraż onych wspólnie ze strukturalnymi biał kami wedł ug wynalazku, to jest przez ten sam wektor ekspresji, bądź przez własny wektor ekspresji. Korzystnie są one wyrażone wspólnie z pojedynczego polinukleotydu.
Przedmiotem wynalazku jest więc również wektor ekspresji, in vivo lub in vitro, obejmujący polinukleotyd kodujący NS2A, NS2B, NS3, ich kombinacje, a korzystnie NS2A-NS2B-NS3. Zasadniczo wektorem tym może być jeden z opisanych powyżej wektorów, obejmujący polinukleotyd kodujący białko lub białka strukturalne, szczególnie E lub prM-M-E. W jednym wariancie wynalazek dotyczy preparatu, takiego jak opisany powyżej, zawierającego ponadto, co najmniej jeden z tych wektorów wyrażających białko niestrukturalne, oraz ewentualnie dopuszczalną farmaceutycznie zaróbkę lub podłoże.
W celu wykonania wektorów ekspresji według wynalazku, specjaliści w dziedzinie dysponują różnymi szczepami wirusa i opisami nukleotydowej sekwencji ich genomu. Szczególnie patrz H.M. Savage i wsp. (Am. J. Trop. Med. Hyg. 1999, 61(4), 600-611), tabela 2, która wymienia 24 szczepy wirusa WN i podaje liczby nadania dla polinukleotydowych sekwencji w GenBanku.
Można na przykład odnieść się do szczepu NY99 (GenBank AF196835). W GenBanku dla każdego białka jest określona odpowiednia sekwencja DNA (nukleotyd 466-741 dla prM, 742-966 dla M, 967-2469 dla E, to jest 466-2469 dla prM-M-E, 3526-4218 dla NS2A, 4219-4611 dla NS2B i 4612-6468 dla NS3, to jest 3526-6468 dla NS2A-NS2B-NS3). Przez porównanie i dopasowanie sekwencji, określenie polinukleotydu, kodującego takie białko w innym szczepie WNV, jest natychmiastowe.
Wskazano wyżej, że przez polinukleotyd rozumie się sekwencję kodującą białko lub fragment lub epitop, przykładowo swoisty dla wirusa WN. Ponadto, równoważnie, termin polinukleotyd włącza również nukleotydowe sekwencje odpowiadające różnym szczepom wirusa WN oraz nukleotydowe sekwencje, które różnią się ze względu na degenerację kodu.
W ramach rodziny wirusów WN identyczność pomię dzy sekwencjami w aminokwasach prM-ME w porównaniu z sekwencją NY99 jest równa lub wyższa od 90%. Wynalazek obejmuje również polinukleotydy kodujące sekwencję aminokwasów, której identyczność z natywną sekwencją aminokwasową jest wyższa lub równa 90%, szczególnie 92%, korzystnie 95%, i jeszcze szczególniej 98%. Będą również uważane za ekwiwalenty fragmenty tych homologicznych polinukleotydów, które są swoiste dla wirusa WN.
Również, jeżeli mówi się o polinukleotydzie wirusa WN, termin ten obejmuje równoważne sekwencje według wynalazku.
Uważa się również, że termin białko obejmuje polipeptydy i aktywne immunologicznie peptydy. Dla potrzeb wynalazku obejmuje to:
(a) białka odpowiadające różnym szczepom wirusa WN;
(b) białka, które się różnią, ale które zachowują z natywnym białkiem WN identyczność wyższą lub równą 90%, szczególnie 92%, korzystnie 95% i jeszcze szczególniej 98%.
Również, w odniesieniu do białka wirusa WN, termin ten obejmuje równoważne białka według wynalazku.
Różne szczepy wirusa WN są dostępne w zbiorach, szczególnie w American Type Culture Collection (ATCC), na przykład pod numerami dostępu VR-82 lub VR-1267. Wirus zwany Kunjin faktycznie jest uważany za wirusa WN.
Zgodnie z wynalazkiem, korzystnie polinukleotyd obejmuje dodatkowo nukleotydową sekwencję kodującą peptyd sygnałowy, umieszczony powyżej wyrażanego białka, żeby zapewnić jego wydzielanie. Może więc chodzić o endogenną sekwencję, to znaczy naturalną sekwencję sygnałową, skoro ona istnieje (pochodzącą od tego samego wirusa lub z innego szczepu). Na przykład dla wirusa WN NY99, endogenna sekwencja sygnałowa dla białka E odpowiada nukleotydom 922 do 966 sekwencji z GenBanku; dla prM chodzi o nukleotydy 421 do 465. Moż e również chodzić o sekwencję nukleotydową kodującą heterogenny peptyd sygnałowy, w szczególności tą, kodującą sygnałowy peptyd aktywatora tkankowego ludzkiego plazminogenu (tPA) (J. Hartikka i wsp., Human Gene Therapy, 1996, 7, 1205-1217). Nukleotydowa sekwencja kodująca peptyd sygnałowy jest wprowadzona w ramce odczytu i powyżej sekwencji kodującej E lub jego kombinacji, np. prM-M-E.
PL 210 306 B1
Zgodnie z pierwszym sposobem wykonania wynalazku, wektorami ekspresji in vivo są wektory wirusowe.
Tymi wektorami ekspresji korzystnie są pokswirusy (wirusy grupy ospy), na przykład wirus krowianki lub atenuowane mutanty wirusa krowianki, np. MVA (szczep Ankara) (H. Sticki i V. Hochstein-Mintzel, Munch. Med. Wschr., 1971, 113, 1149-1153; G. Sutter i wsp., Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A., 1992, 89, 10847-10851; dostępnym na rynku szczepem ATCC VR-1508; MVA otrzymano po ponad 570 pasażach szczepu krowianki Ankara na fibroblastach zarodków kurzych) lub NYVAC (jego budowę opisano w US-A-5 494 807, w szczególności w przykładach 1 do 6; ten opis patentowy przedstawia również wprowadzenie heterogennych genów do miejsc rekombinacji i zastosowanie odpowiednich promotorów; patrz również WO-A-96/40241), wirusy ospy ptaków (w szczególności ospy kanarków, ospy drobiu (ospy kurcząt), ospy gołębi, ospy przepiórek), ospy świń, ospy szopów, ospy wielbłądów, adenowirusy, takie jak adenowirus ptasi, psi, świński, bydlęcy, ludzki i wirusy Herpes, takie jak Herpeswirusy koni (EHV, serotypy 1 i 4), Herpeswirus psów (CHV), Herpeswirus kotów (FHV), Herpeswirusy bydła (BHV serotypy 1 i 4), Herpeswirus świń (PRV), wirusy choroby Mareka (MDV, serotypy 1 i 2), Herpeswirus indyka (HVT lub MDV, serotyp 3), Herpeswirus kaczki. Kiedy jest stosowany Herpeswirus, do szczepienia gatunków ptaków korzystny jest wektor HVT, a do szczepienia koni korzystny jest wektor EHV.
Zgodnie z jednym z korzystnych sposobów według wynalazku, pokswirusowym wektorem ekspresji jest wirus ospy kanarków lub wirus ospy drobiu, te pokswirusy mogą być ewentualnie atenuowane. Można wymienić wirus ospy kanarków, dostępny na rynku w ATCC pod numerem dostępu VR-111. Atenuowane wirusy ospy kanarków opisano w US-A-5756103 i w WO-A-01/05934. Dostępne są liczne szczepionkowe szczepy wirusa ospy kurcząt, na przykład szczepionka DIFTOSEC CT® sprzedawana przez MERIAL i szczepionka NOBILIS® VARIOLE sprzedawana przez Intervet.
Dla pokswirusów specjaliści w dziedzinie mogą powołać się na WO-A-90/12882, a szczególniej dla wirusa krowianki na US-A-4769330; US-A-4722848; US-A-4603112; US-A-5110587; US-A5494807; US-A-5762938; dla wirusa ospy drobiu na US-A-5174993; US-A-5505941; na US-5766599; dla wirusa ospy kanarków do US-A-5756103; dla wirusa ospy świń na US-A-5382425; dla wirusa ospy szopów na WO-A-00/03030.
Kiedy wektorem ekspresji jest wirus krowianki to miejscami insercji polinukleotydu(ów) do wyrażenia są w szczególności gen kinazy tymidynowej (TK), gen hemaglutyniny (HA), region ciała inkluzyjnego typu 2 (ATI). Jeśli chodzi o wirus ospy kanarków, to miejsca insercji są w szczególności umieszczone w, lub utworzone przez, ORF C3, C5 i C6. Jeśli chodzi o wirus ospy drobiu, to miejsca insercji są w szczególności umieszczone w, lub utworzone przez, ORF F7 i F8.
Insercję genów w wirusie MVA opisano w różnych publikacjach, M.W. Carroll i wsp., Vaccine, 1997, 15(4), 387-394; K.J. Stittelaar i wsp., J. Virol., 2000, 74(9), 4236-4243; G. Sutter i wsp., Vaccine, 1994, 12(11), 1032-1040, do których specjaliści w dziedzinie mogą się odwołać. Kompletny genom MVA opisał G. Antoine w Virology, 1998, 244, 365-396, co pozwoli specjalistom w dziedzinie wykorzystywać inne miejsca insercji lub inne promotory.
Korzystnie, jeśli wektorem ekspresji jest pokswirus, wyrażany polinukleotyd jest wprowadzany pod kontrolą swoistego promotora pokswirusa, w szczególności promotora krowianki 7,5 kDa (Cochran i wsp., J. Virology, 1985, 54, 30-35), promotora krowianki I3L (Riviere i wsp., J. Virology, 1992, 66, 3424-3434), promotora krowianki HA (Shida, Virology, 1986, 150, 451-457), promotora krowianki ATI (Funahashi i wsp., J. Gen. Virol., 1988, 69, 35-47), lub promotora krowianki H6 (J. Taylor i wsp., Vaccine, 1988, 6, 504-508; P. Guo i wsp., J. Virol., 1989, 63, 4189-4198; M. Perkus i wsp., J. Virol., 1989, 63, 3829-3836).
Korzystnie do szczepienia ssaków wektorem ekspresji jest wirus ospy kanarków. Korzystnie do szczepienia ptaków, w szczególności kurcząt, kaczek, indyków i gęsi, wektorem ekspresji jest wirus ospy kanarków lub wirus ospy drobiu.
Jeśli wektorem ekspresji jest herpeswirus HVT, odpowiednie miejsca insercji są w szczególności zlokalizowane we fragmencie BamHI I lub we fragmencie BamHI M HVT. Fragment restrykcji BamHI I HVT obejmuje liczne otwarte ramki odczytu (ORF) i trzy regiony międzygenowe oraz obejmuje liczne korzystne strefy insercji, to jest trzy regiony międzygenowe 1, 2 i 3, które są regionami korzystnymi, oraz ORF UL55 (FR-) A-2728795, US-A-5980906). Fragment restrykcyjny BamHI M HVT obejmuje ORF UL43, która jest również korzystnym miejscem insercji (FR-A-2728794, US-A-5733554).
Jeśli wektorem ekspresji jest herpeswirus EHV-1 lub EHV-4, to odpowiednimi miejscami insercji są w szczególności TK, UL43 i UL45 (EP-A-0668355).
PL 210 306 B1
Korzystnie jeśli wektorem ekspresji jest herpeswirus, to wyrażany polinukleotyd jest wprowadzany pod kontrolą silnego promotora eukariotycznego, korzystnie promotora CMV-IE. Te silne promotory są opisane poniżej, w części opisu dotyczącej plazmidów.
Zgodnie z drugim sposobem wykonania wynalazku, wektory ekspresji in vivo są wektorami plazmidowymi, nazywanymi plazmidami.
Termin plazmid obejmuje dowolną jednostkę transkrypcji DNA pod postacią sekwencji polinukleotydowej, obejmującej polinukleotyd według wynalazku i elementy niezbędne do jego ekspresji in vivo. Korzystniejsza jest postać kolista plazmidu, superzwinięta lub nie. Forma liniowa również wchodzi w zakres tego wynalazku.
Każdy plazmid obejmuje promotor zdolny do zapewnienia, w komórkach gospodarzy, ekspresji wprowadzonego polinukleotydu pod jego kontrolą. Zasadniczo będzie to dotyczyć silnych promotorów eukariotycznych. Korzystny silny promotor eukariotyczny jest wczesnym promotorem cytomegalowirusa (CMV-IE), pochodzenia ludzkiego lub mysiego, lub ewentualnie innego pochodzenia, takiego jak szczurze, od świnki morskiej. Promotor CMV-IE może obejmować część wspomnianego właściwego promotora, połączoną lub nie z częścią aktywującą (wzmacniającą). Można odwołać się do EP-A-260148, EP-A-323597, US-A-5168062, US-A-5385839, US-A-4968615, WO-A-87/03905. Korzystny jest ludzki CMV-IE (M. Boshart i wsp., Cell., 1985, 41, 521-530) lub mysi.
Definiując ogólnie promotor jest albo pochodzenia wirusowego, albo pochodzenia komórkowego. Jako silny promotor wirusowy inny niż CMV-IE można wymienić promotor wczesny/późny wirusa SV40 lub promotor LTR wirusa mięsaka Rousa. Jako silny promotor komórkowy można wymienić promotor genu cytoszkieletu, taki jak promotor dezminy (M. Kwissa i wsp., Vaccine, 2000, 18(22), 2337-2344), lub jeszcze promotor aktyny (J. Miyazaki i wsp., Gene, 1989, 79(2), 269-277).
Równoważnie, subfragmenty tych promotorów zachowujące odpowiednią aktywność promotorową są objęte niniejszym wynalazkiem: np. skrócone promotory CMV-IE według WO-A-98/00166. Pojęcie promotora według wynalazku obejmuje więc pochodne i subfragmenty, zachowujące odpowiednią aktywność promotorową, korzystnie ogólnie podobną do tej, jaką posiada wspomniany właściwy promotor, z którego pochodzą. Dla CMV-IE pojęcie to obejmuje wspomnianą część właściwego promotora i/lub część aktywującą oraz pochodne i subfragmenty.
Korzystnie plazmidy obejmują inne elementy kontroli ekspresji. W szczególności korzystne jest wbudowanie sekwencji stabilizujących typu intron, najchętniej intron II genu β-globiny królika (van
Ooyen i wsp., Science, 1979, 206: 337-344).
Jako sygnał poliadenylacji (polyA) dla plazmidów i wirusowych wektorów innych niż pokswirus, można wykorzystywać w szczególności ten z genu bydlęcego hormonu wzrostu (bGH) (US-A-5122458), ten z genu β-globiny królika lub ten z wirusa SV40.
Inne elementy kontroli ekspresji możliwe do zastosowania w plazmidach, mogą również występować w wektorach ekspresji herpeswirusa.
Według innej postaci wykonania wynalazku, wektorami ekspresji są wektory ekspresji stosowane do wyrażenia in vitro białek w odpowiednim układzie komórkowym. Białka, po wydzieleniu lub nie (jeśli nie następuje wydzielenie, przystępuje się do lizy komórkowej), mogą być następnie zebrane na powierzchni hodowli, ewentualnie zatężane klasycznymi technikami zatężania, w szczególności przez ultrafiltrację i/lub oczyszczanie środkami klasycznego oczyszczania, w szczególności technikami chromatografii typu powinowactwa, jonowymiennej lub żelowej.
Efektywne jest wytwarzanie przez transfekcję plazmidami komórek ssaków, przez replikację wektorów wirusowych w komórkach ssaków lub komórkach ptaków, lub przez replikację bakulowirusa (US-A-4745051; J. Vialard i wsp., J. Virol., 1990, 64(1), 37-50; A. Verne, Virology, 1988, 167, 56-71), np. Autographa californica Nuclear Polyhedrosis Virus - wirus AcNPV w komórkach owadów (na przykład komórkach Sf9 Spodoptera frugiperda, zdeponowanych w ATCC pod numerem dostępu CRL 1711). Jako komórki ssaków można zastosować w szczególności komórki chomika (na przykład CHO lub BHK-21), komórki małpy (na przykład COS lub VERO). Wynalazek obejmuje więc również te wektory ekspresji z wbudowanym polinukleotydem według wynalazku, białka WN lub fragmenty w ten sposób wytwarzane i zawierające je preparaty.
Przedmiotem niniejszego wynalazku są również preparaty oczyszczonych i/lub zatężonych białek wirusa WN. Kiedy polinukleotyd koduje liczne białka, to są one odcinane, a powyższe preparaty zawierają wówczas białka odcięte.
PL 210 306 B1
Przedmiotem wynalazku są również kompozycje immunogenne i szczepionki przeciw wirusowi WN, obejmujące co najmniej jeden wektor ekspresji in vivo według wynalazku i dopuszczalną farmaceutycznie zaróbkę lub podłoże oraz ewentualnie adiuwant.
Pojęcie kompozycji immunogennej obejmuje całą uwrażliwiającą kompozycję, która kiedy podana docelowemu gatunkowi, wywoła odpowiedź immunologiczną skierowaną przeciw wirusowi WN. Przez szczepionkę rozumie się kompozycję zdolną do wywołania skutecznej ochrony. Docelowymi gatunkami są konie, psy, koty, bydło, świnie, ptaki, najchętniej koń, pies kot, świnia, a z ptaków gęsi, indyki, kurczaki, kaczki, które to z definicji obejmują zwierzęta rozpłodowe, nioski, zwierzęta hodowane na mięso.
Dopuszczalne farmaceutycznie zaróbki i podłoża są doskonale znane specjaliście w dziedzinie. Przykładowo można wymienić 0,9% roztwór soli NaCl lub bufor fosforanowy. Dopuszczalne farmaceutycznie zaróbki lub podłoża obejmują również każdą mieszaninę lub kombinację mieszanin, pozwalającą na łatwe podawanie wektora, w szczególności transfekcję i/lub poprawę konserwacji.
Dawki i objętości dawki są określone dalej w ramach ogólnego opisu metod immunizacji i szczepienia.
Kompozycje immunogenne i szczepionki według wynalazku obejmują najchętniej jeden lub liczne adiuwanty, wybrane w szczególności spośród konwencjonalnych adiuwantów. W ramach niniejszego wynalazku szczególnie odpowiednie są: (1) polimery kwasu akrylowego lub metakrylowego, polimery bezwodnika maleinowego i pochodnej alkenylowej, (2) immunostymulujące sekwencje (ISS), w szczególnoś ci sekwencje oligodezoksyrybonukleotydowe, posiadają ce jeden lub wiele nie metylowanych motywów CpG (D. M. Klinman i wsp., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1996, 93, 2879-2883; WO-A1-98/16247), (3) emulsja olej w wodzie, w szczególności emulsja SPT, opisana na stronie 147 „Vacccine Design, The Subunit and Adjuvant Approach, wydane przez M. Powell, M. Newman, Plenum Press 1995 oraz emulsja MF59 opisana na stronie 183 tej samej pracy, (4) lipidy kationowe, zawierające sól czwartorzędowej grupy amonowej, (5) cytokiny lub (6) ich kombinacje lub mieszaniny.
Emulsja olej w wodzie (3), która jest szczególnie dostosowana do wektorów wirusowych, może w szczególnoś ci być oparta na:
- lekkim ciekł ym oleju parafinowym (typu jak w Europejskiej farmakopei);
- oleju substancji izoprenopochodnej, takiej jak skwalan, skwalen;
- oleju powstałym w wyniku oligopolimeryzacji alkenów, w szczególności izobutenu lub dekenu;
- estrach kwasów lub alkoholi z grupy liniowego alkilu;
- szczegółowiej olejach roślinnych, oleinianie etylowym, di(kaprylanie/kaprynianie) glikolu propylenowym, tri(kaprylanie/kaprynianie) glicerolu, dioleinianie glikolu propylenowego;
- estrach rozgałęzionych kwasów tłuszczowych lub alkoholi, w szczególności estrach kwasu izostearynowego.
Zastosowano olej w połączeniu z emulgatorami do wytworzenia emulsji. Emulgatorami są korzystnie nie jonowe czynniki powierzchniowo czynne, w szczególności:
- estry z jednej strony sorbitanu, mannitu (np. oleinian anhydromannitolu), glicerolu, poliglicerolu lub glikolu propylenowego, a z drugiej strony kwasu oleinowego, izostearynowego, rycynowego, hydroksystearynowego, estry te będą ewentualnie etoksylowane, bloki kopolimerów polioksypropylen-polioksyetylen, w szczególności Pluronic®, w szczególności
L121.
Pośród adiuwantów polimerowych rodzaju (1) korzystne są usieciowane polimery kwasu akrylowego lub metakrylowego, w szczególności usieciowane przez etery polialkenylowe cukrów lub polialkoholi. Te mieszaniny znane są pod nazwą karbomer (Pharmeuropa vol. 8, nr 2, czerwiec 1996). Specjalista w dziedzinie może również odwołać się do US-A-2909462, w którym opisano takie polimery akrylowe usieciowane związkiem polihydroksylowanym posiadającym co najmniej 3 grupy hydroksylowe, korzystnie nie więcej niż 8, przy czym atomy wodoru przynajmniej trzech grup hydroksowych są zastąpione przez nienasycone reszty alifatyczne o przynajmniej dwóch atomach węgla. Korzystne reszty zawierają 2 do 4 atomów węgla, np. grup winylowych, allilowych i innych nienasyconych grup etylenowych. Reszty nienasycone mogą same zawierać inne podstawniki, takie jak metyl. Produkty sprzedawane pod nazwą Carbopol® (BF Goodrich, Ohio, USA) są szczególnie odpowiednie. Są one usieciowane przez allilosacharozę lub przez allilopentaerytrytol. Wśród nich można wymienić w szczególności Carbopol® 974P, 934P i 971P.
Pośród kopolimerów bezwodnika maleinowego i pochodnej alkenylowej korzystne są EMA® (Monsanto), które są kopolimerami bezwodnika maleinowego i etylenu, liniowymi lub usieciowanymi,
PL 210 306 B1 na przykład usieciowanymi eterem diwinylowym. W tej kwestii można się odnieść do J. Fields i wsp., Nature, 186: 778-780, 4 czerwiec 1960.
Z punktu widzenia budowy polimery kwasu akrylowego lub metakrylowego oraz EMA® są korzystnie utworzone z podstawowych jednostek o następującym wzorze:
w którym:
R, R,
-c-<q^>x-c—(ch,) yCOOH COOH
- R1 i R2, które są identyczne lub różne, oznaczają H lub CH3
- x = 0 albo 1, korzystnie x = 1
- y = 1 albo 2, przy czym x + y = 2
Dla EMA® x = 0 i y = 2. Dla karbomerów x = y = 1.
Polimery te są rozpuszczane w wodzie lub soli fizjologicznej (NaCl 20 g/l) a pH doprowadza się do 7,3-7,4 stosując sodę, w celu otrzymania roztworu adiuwantowego, do którego będą wprowadzone wektory ekspresji.
Stężenie polimeru w końcowej kompozycji szczepionkowej może w szczególności wynosić od 0,01% do 1,5% wag./obj. (stężenie wagowe) szczególniej od 0,05 do 1% wag./obj., korzystnie od 0,1 do 0,4% wag./obj.
Lipidy kationowe (4), obejmujące czwartorzędową sól amonową, są szczególnie, ale nie wyłącznie, odpowiednie dla plazmidów, korzystnie te, które odpowiadają następującemu wzorowi:
ch3 „ L
R, - O-CH2-CH-CHj-N-R2-X ORi CH3 w którym R1 jest liniową resztą alifatyczną , nasyconą lub nienasyconą, o 12 do 18 atomach węgla, R2 jest inną resztą alifatyczną zawierającą 2 lub 3 atomy węgla, a X oznacza grupę hydroksylową lub aminową.
Pośród tych kationowych lipidów, korzystny jest DMRIE (N-(2-hydroksyetylo)-N,N-dimetylo-2,3-bis(tetradekoiloksy)-1-propanoamon; WO-A-96/34109), korzystnie zasocjowany z obojętnym lipidem, w szczególności DOPE (dioleilofosfatydyloetanoloamina; J. P. Behr, 1994, Bioconjugate Chemistry, 5, 383-389), do wytworzenia DMRIE-DOPE.
Korzystnie, mieszaninę plazmidu z tym adiuwantem sporządza się bezpośrednio przed użyciem. Ponadto korzystne jest, jeśli przed jej podaniem, pozostawienie jej przykładowo na 10 do 60 minut, w szczególności 30 minut, w celu wytworzenia kompleksów mieszaniny.
O ile DOPE jest obecny stosunek molarny DMRIE:DOPE wynosi korzystnie od 95:5 do 5:95, korzystniej 1:1.
Stosunek wagowy plazmid:adiuwant DMRIE lub DMRIE-DOPE może wynosić w szczególności od 50:1 do 1:10, szczególnie od 10:1 do 1:5, a korzystnie od 1:1 do 1:2.
Cytokina lub cytokiny (5) mogą być dostarczone w postaci białka w kompozycji lub szczepionki, lub być równocześnie wyrażane u gospodarza z immunogenem lub immunogenami. Przewagę ma
PL 210 306 B1 równoczesne wyrażanie cytokiny lub cytokin, przez ten sam wektor, który wyraża immunogen, bądź przez własny wektor.
Cytokiny mogą być w szczególności wybrane spośród: interleukiny 18 (IL-18), interleukiny 12 (IL-12), interleukiny 15 (IL-15), MlP-1a (białko zapalne makrofagów 1a, ang. macrophage inflammatory protein 1a; E. Marshall i wsp., Br. J. Cancer, 1997, 75(12), 1715-1720), GM-CSF (czynnik stymulujący kolonie granulocytów i makrofagów lub po angielsku Granulocyte-Macrophage Colony-Stimulating Factor). W szczególności można wymienić cytokiny ptasie, w szczególności kurcząt, takie jak cIL-18 (K. Schneider i wsp., J. Interferon Cytokine Res., 2000, 20(10), 879-883), cIL-15 (K.-Q. Xin i wsp., Vaccine, 1999, 17, 858-866), i cytokiny koni, w szczególności koński GM-CSF (WO-A-00/77210)). Korzystnym sposobem jest stosowanie cytokin szczepionego gatunku.
WO-A-00/77210 opisuje sekwencję nukleotydową i sekwencję aminokwasową odpowiadającą końskiemu GM-CSF, wytwarzanie GM-CSF in vitro i budowę wektorów (plazmidów i wektorów wirusowych) umożliwiających ekspresję końskiego GM-CSF in vivo. Te białka, plazmidy i wektory wirusowe, mogą być stosowane w kompozycjach immunogennych i szczepionkach dla koni według wynalazku. Przykładowo można zastosować plazmid pJP097 opisany w przykładzie 3 tego poprzedniego zgłoszenia lub zastosować zasadę z tego poprzedniego zgłoszenia do wytwarzania innych wektorów lub wytwarzania in vitro końskiego GM-CSF, i wprowadzać te wektory lub koński GM-CSF do kompozycji immunogennych lub szczepionek dla koni według wynalazku.
Przedmiotem niniejszego wynalazku są ponadto kompozycje immunogenne i szczepionki zwane podjednostkowymi, obejmujące białko E i ewentualnie jedno lub liczne inne białka wirusa WN, w szczególnoś ci prM lub M, korzystnie wytwarzane przez ekspresję in vitro jak opisano powyż ej, jak również dopuszczalną farmaceutycznie zaróbkę lub podłoże.
Dopuszczalne farmaceutycznie zaróbki lub podłoża są doskonale znane specjaliście w dziedzinie. Przykładowo może tu chodzić o fizjologiczny roztwór soli 0,9% NaCl lub bufor fosforanowy.
Kompozycje immunogenne i szczepionki podjednostkowe według wynalazku korzystnie obejmują jeden lub wiele adiuwantów, wybranych spośród konwencjonalnych adiuwantów. Zakresowi niniejszego wynalazku odpowiadają szczególnie: (1) polimer kwasu akrylowego lub metakrylowego, polimer bezwodnika maleinowego i pochodnej alkenylowej, (2) immunostymulująca sekwencja (ISS), w szczególnoś ci sekwencja oligodezoksyrybonukleotydowa, posiadają ca jeden lub wiele nie metylowanych motywów CpG (D. M. Klinman i wsp., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1996, 93, 2879-2883; WO-A1-98/16247), (3) emulsja olej w wodzie, w szczególności emulsja SPT, opisana na stronie 147 „Vacccine Design, The Subunit and Adjuvant Approach, wydane przez M. Powell, M. Newman, Plenum Press 1995 oraz emulsja MF59 opisana na stronie 183 tej samej pracy, (4) emulsja woda w oleju (EP-A-639071), (5) saponina, w szczególności Quil-A, lub (6) wodorotlenek glinu lub ekwiwalent. Różne rodzaje adiuwantów określone pod 1), 2) i 3) opisano uprzednio bardziej szczegółowo równocześnie ze szczepionkami na bazie wektorów do ekspresji.
Dawki i objętości dawki określono dalej w ramach ogólnego opisu sposobów immunizacji i szczepienia.
Odpowiednio do wynalazku, szczepienie przeciwko wirusowi WN może być połączone z innymi szczepieniami w ramach programów szczepienia, w postaci zestawów do immunizacji lub szczepienia lub jeszcze w postaci kompozycji immunogennych i wieloważnych szczepionek, to znaczy obejmujących, co najmniej jeden składnik szczepionki przeciw wirusowi WN i co najmniej jeden składnik szczepionki przeciw co najmniej jednemu innemu czynnikowi patogennemu. Obejmuje to również ekspresję, przez ten sam wektor ekspresji, genów co najmniej dwóch czynników patogennych, włączając wirus WN.
Przedmiotem wynalazku jest również wieloważna kompozycja immunogenna lub wieloważna szczepionka przeciw wirusowi WN i przeciw co najmniej jednemu innemu patogenowi docelowego gatunku, wykorzystująca ten sam wektor ekspresji in vivo, zawierający i wyrażający, co najmniej jeden polinukleotyd wirusa WN według wynalazku i co najmniej jeden polinukleotyd wyrażający immunogen innego patogenu.
Przez tak wyrażony „immunogen rozumie się w szczególności białko, glikoproteinę, polipeptyd lub peptyd, epitop lub pochodną, np. białko fuzyjne, wywołujące odpowiedź immunologiczną, korzystnie odpowiedź ochroną.
Jak opisano poprzednio, te kompozycje lub wieloważne szczepionki obejmują również dopuszczalną farmaceutycznie zaróbkę lub podłoże oraz ewentualnie adiuwant.
PL 210 306 B1
Przedmiotem wynalazku jest również wieloważna kompozycja immunogenna lub wieloważna szczepionka, obejmująca co najmniej jeden wektor ekspresji in vivo, do którego wprowadzono co najmniej jeden polinukleotyd wirusa WN według wynalazku i co najmniej drugi wektor ekspresji, do którego wprowadzono polinukleotyd kodujący immunogen innego czynnika patogennego. Jak poprzednio opisano, te wieloważne kompozycje lub szczepionki obejmują również dopuszczalną farmaceutycznie zaróbkę lub podłoże oraz ewentualnie adiuwant.
Dla wieloważnych kompozycji immunogennych i szczepionek inne wymienione wcześniej patogeny koni są w szczególności wybrane z grupy obejmującej wirus poronienia klaczy EHV-1 i/lub EHV-4 (korzystnie połączone są immunogeny EHV-1 i EHV-4), koński wirus grypy EIV, wirus wschodniego końskiego zapalenia mózgu EEV, wirus zachodniego końskiego zapalenia mózgu WEV, wirus wenezuelskiego końskiego zapalenia mózgu VEV (korzystna jest kombinacja trzech EEV, WEV, VEV), Clostridium tetani (tężec) i ich mieszaniny. Korzystnie dla EHV wybiera się geny gB i/lub gD; dla EIV geny HA, NP i/lub N; dla wirusów zapalenia mózgu C i/lub E2; dla Clostridium tetani gen kodujący całość lub część podjednostki C toksyny tężcowej. Włączono tu zastosowanie polinukleotydów kodujących immunologicznie aktywny fragment lub epitop tego immunogenu.
Inne wspomniane wyżej patogeny ptasie są w szczególności wybrane z grupy obejmującej wirusy choroby Mareka MDV (serotypy 1 i 2, korzystnie serotyp 1), wirus choroby Newcastle NDV, wirus choroby Gumboro IBDV, wirus zakaźnego zapalenia oskrzeli u ptaków IBV, wirus zakaźnej niedokrwistości CAV, wirus ptasiego zapalenia krtani i tchawicy ILTV, wirus ptasiego zapalenia mózgu i rdzenia AEV (lub jeszcze wirus białaczki ptasiej ALV), wirus krwotocznego zapalenia jelit indyków (HEV), wirus pneumowirozy (TRTV), wirus pomoru drobiu (influenzy drobiu), wirus puchliny osierdzia kurcząt, reowirusy ptasie, Escherichia coli, Mycoplasma gallinarum, Mycoplasma gallisepticum, Haemophilus avium, Pasteurella gallinarum, Pasteurella multocida gallicida i ich mieszaniny. Korzystnie dla MDV wybiera się geny gB i/lub gD; dla NDV geny HN i/lub F; dla IBDV gen VP2; dla IBV geny S (a szczególniej S1), M i/lub N; dla CAV geny VP1 i/lub VP2, dla ILTV geny gB i/lub gD; dla AEV geny env i/lub gag/pro, dla HEV geny 100K i hekson, dla TRTV geny F i/lub G; dla wirusa pomoru drobiu geny HA, N i/lub NP. Włączono tu zastosowanie polinukleotydów kodujących immunologicznie aktywny fragment lub epitop tego immunogenu.
Przykładowo do wieloważnej kompozycji immunogennej lub wieloważnej szczepionki według wynalazku, ewentualnie wspomaganej jak opisano powyżej, przeznaczonej dla koni, można wprowadzić jeden lub wiele plazmidów opisanych w WO-A-98/03198, w szczególności w przykładach od 8 do 25 tego poprzedzającego zgłoszenia i tych opisanych w WO-A-00/77043, które to dotyczą koni, w szczególności te opisane w przykładach 6 i 7 poprzedzającego zgłoszenia. Dla ptaków można wprowadzić na przykład jeden lub wiele plazmidów opisanych w WO-A1-98/03659, a w szczególności te opisane w przykładach od 7 do 27 tego poprzedzającego zgłoszenia.
Kompozycje immunogenne lub rekombinowane szczepionki takie jak te wcześniej opisane, mogą również być połączone z co najmniej jedną klasyczną szczepionką (inaktywowaną, żywą atenuowaną, podjednostkową) skierowaną przeciw co najmniej jednemu innemu patogenowi.
Tak samo, kompozycje immunogenne i szczepionki podjednostkowe według wynalazku, mogą stanowić przedmiot połączonego szczepienia. Zatem przedmiotem wynalazku są wieloważne kompozycje immunogenne i wieloważne szczepionki, obejmujące białko lub białka według wynalazku, oraz jeden lub wiele immunogenów (termin immunogen został zdefiniowany powyżej) co najmniej jednego innego czynnika patogennego (w szczególności z powyższej listy), i/lub jeszcze innego czynnika patogennego w postaci inaktywowanej lub atenuowanej. Jak to było opisane wcześniej te wieloważne kompozycje lub szczepionki obejmują również dopuszczalną farmaceutycznie zaróbkę lub podłoże i ewentualnie adiuwant.
Przedmiotem niniejszego wynalazku są również sposoby immunizacji i szczepienia wspomnianych powyżej docelowych gatunków.
Sposoby te obejmują podawanie skutecznej ilości kompozycji immunogennej lub szczepionki według wynalazku. Takie podawanie może odbywać się w szczególności drogą pozajelitową, np. przez podawanie podskórne, śródskórne, domięśniowe lub drogą doustną i/lub donosową. Może być realizowany jeden lub wiele sposobów podawania, w szczególności dwa.
Różne szczepionki mogą być wstrzykiwane, za pomocą przyrządu do wstrzykiwań, ciekłym strumieniem bez igły. Dla plazmidów można również zastosować cząstki złota otoczone plazmidem i chronione tak, aby przenikał y do komórek skóry immunizowanego osobnika (Tang i wsp., Nature
1992, 356, 152-154).
PL 210 306 B1
Kompozycje immunogenne i szczepionki według wynalazku obejmują skuteczną ilość wektora ekspresji lub polipeptydu.
W przypadku kompozycji immunogennych lub szczepionek opartych na plazmidzie, dawka wynosi ogólnie od około 10 μg do około 2000 μg, w szczególności od około 50 μg do około 1000 μg. Objętości dawki mogą zawierać się pomiędzy 0,1 a 2 ml, korzystnie pomiędzy 0,2 a 1 ml.
Dawki te i objętości dawki są dobrze dostosowane do szczepienia koni i ssaków.
Do szczepienia gatunków ptaków dawka jest zawarta szczególnie pomiędzy około 10 μg a około 500 μg, a korzystniej pomiędzy około 50 μg a około 200 μg. Objętości dawki mogą być szczególniej zawarte pomiędzy 0,1 a 1 ml, korzystnie pomiędzy 0,2 a 0,5 ml.
Specjalista w dziedzinie posiada kompetencje niezbędne do optymalizowania skutecznej dawki plazmidu do zastosowania w każdym protokole immunizacji lub szczepienia i określenia najlepszej drogi podania.
W przypadku kompozycji immunogennych lub szczepionek opartych na pokswirusie, dawka ogólnie zawierała się pomiędzy około 103 pfu (ang. plaque formit unit, jednostka tworząca łysinki) a około 105 pfu.
Dla gatunków koni i ssaków, jeśli wektorem jest wirus krowianki, dawka jest zawarta korzystnie pomiędzy około 104 pfu a około 109 pfu, korzystnie pomiędzy około 106 pfu a około 108 pfu; jeśli wektorem jest wirus ospy kanarków, dawka jest zawarta szczególniej pomiędzy około 105 pfu a około 109 pfu, korzystnie pomiędzy około 105,5 lub 106 pfu a około 108 pfu.
Dla gatunków ptaków, jeśli wektorem jest wirus ospy kanarków, dawka jest zawarta szczególnie pomiędzy około 103 pfu a około 107 pfu, korzystnie pomiędzy około 104 pfu a około 106 pfu; jeśli wektorem jest wirus ospy drobiu, dawka jest zawarta szczególnie pomiędzy około 102 pfu a około 105 pfu, korzystnie pomiędzy około 103 pfu a około 105 pfu.
W przypadku kompozycji immunogennych lub szczepionek opartych na wektorze wirusowym innym niż pokswirus, w szczególności wirus Herpes, dawka ogólnie zawierała się pomiędzy około 103 pfu a około 108 pfu. W przypadku kompozycji immunogennych lub szczepionek ptasich dawka ogólnie zawiera się pomiędzy około 103 pfu a około 106 pfu. W przypadku kompozycji immunogennych lub szczepionek końskich dawka ogólnie zawiera się pomiędzy około 106 pfu a około 108 pfu.
Objętości dawki kompozycji immunogennych i szczepionek dla koni opartych na wektorach wirusowych ogólnie mieszczą się pomiędzy 0,5 a 2,0 ml, korzystnie 1,0 a 2,0 ml, korzystniej 1,0 ml. Objętości dawki kompozycji immunogennych i szczepionek dla ptaków opartych na wektorach wirusowych ogólnie mieszczą się pomiędzy 0,1 a 1,0 ml, korzystnie 0,1 a 0,5 ml, korzystniej pomiędzy 0,2 a 0,3 ml. Specjalista w dziedzinie posiada również dla tego rodzaju szczepionki kompetencje niezbędne do optymalizowania liczby podań, drogi podania i dawek do stosowania dla każdego protokołu immunizacji. W szczególności przewiduje się dwa podania u konia, na przykład z 35 dniowym odstępem.
W przypadku kompozycji immunogennych lub szczepionek podjednostkowych, dawka wynosi ogólnie od około 10 μg do około 2000 μg, w szczególności od około 50 μg do około 1000 μg. Objętości dawki kompozycji immunogennych i szczepionek dla koni opartych na wektorach wirusowych ogólnie zawierały się pomiędzy 1,0 a 2,0 ml, korzystnie pomiędzy 0,5 a 2,0 ml, korzystniej 1,0 ml. Objętości dawki kompozycji immunogennych i szczepionek dla ptaków opartych na wektorach wirusowych ogólnie mieszczą się pomiędzy 0,1 a 1,0 ml, korzystnie 0,1 a 0,5 ml, korzystniej pomiędzy 0,2 a 0,3 ml. Specjalista w dziedzinie posiada również dla tego rodzaju szczepionki kompetencje niezbędne do optymalizowania liczby podań, drogi podania i dawek do stosowania dla każdego protokołu immunizacji.
Wynalazek dotyczy również zastosowania wektora do ekspresji in vivo lub wytworzenia wektorów lub polipeptydów według wynalazku, do wytwarzania kompozycji immunogennej lub szczepionki przeznaczonej do ochrony docelowych gatunków przed wirusem WN i ewentualnie przed co najmniej jednym innym czynnikiem patogennym. Różne właściwości wymienione w pozostałej części opisu odnoszą się do tego przedmiotu wynalazku.
Szczepionka oparta na plazmidzie lub szczepionka wirusowa wyrażająca jedno lub wiele białek wirusa WN lub szczepionka podjednostkowa WN według niniejszego wynalazku, nie wywoła u szczepionego zwierzęcia wytwarzania przeciwciał przeciw innym białkom tego wirusa, które nie są reprezentowane w kompozycji immunogennej lub szczepionce. Właściwość ta może być wykorzystana do rozwoju metod diagnostyki różnicowej, pozwalających na dokonanie rozróżnienia pomiędzy zwierzętami zarażonymi patogennym wirusem WN, a zwierzętami zaszczepionymi przy pomocy szczepionek
PL 210 306 B1 według wynalazku. U tych ostatnich białka te i/lub przeciwciała przeciwko nim skierowane są obecne i mogą być wykryte poprzez reakcję antygen-przeciwciał o. U zwierząt zaszczepionych stosownie do wynalazku nie ma przypadku, który pozostaje negatywny. W celu zrealizowania tego rozróżnienia, stosuje się białko, które nie jest reprezentowane w szczepionce (nieobecne lub niewyrażone), na przykład białko C lub białko NS1, NS2A, NS2B lub NS3, jeśli nie jest ono reprezentowane w szczepionce.
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest zatem zastosowanie wektorów, preparatów i polipeptydów według wynalazku do przygotowania kompozycji immunogennych i szczepionek, pozwalających na rozróżnienie pomiędzy zwierzętami szczepionymi a zwierzętami zakażonymi.
Przedmiotem wynalazku jest również sposób immunizacji i szczepienia, połączony z metodą diagnostyczną, umożliwiającą to rozróżnienie.
Wybrane do diagnostyki białko lub jeden z jego fragmentów lub epitopów zastosowano jako antygen w teście diagnostycznym, i/lub zastosowano do wytwarzania przeciwciał, poliklonalnych lub monoklonalnych. Specjalista w dziedzinie dysponuje wiadomościami i praktyką w wytwarzaniu tych przeciwciał i wykorzystywaniu antygenów i/lub przeciwciał w klasycznych metodach diagnostyki, np. testach ELISA.
Niniejszy wynalazek będzie dalej opisany bardziej szczegółowo, za pomocą nieograniczających przykładów jego realizacji.
Przykłady:
Wszystkie konstrukty realizowano wykorzystując standartowe techniki biologii molekularnej (klonowanie, trawienie enzymami restrykcyjnymi, synteza komplementarnej pojedynczej nici DNA, reakcja łańcuchowa polimerazy, elongacja oligonukleotydu przez polimerazę DNA...) opisane przez J. Sambrook i wsp. (Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Wyd. II. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, 1989). Wszystkie fragmenty restrykcyjne zastosowane w wynalazku, jak również zmienne fragmenty reakcji łańcuchowej polimerazy (PCR), izolowano i oczyszczano stosując zestaw „Geneclean® (BIO101 Inc. La Jolla, CA).
Przykład 1: Hodowla wirusa gorączki zachodniego Nilu
W celu jego amplifikacji, wirus gorą czki zachodniego Nilu NY99 (R. S. Lanciotti i wsp., Science, 1999, 286, 2333-7) hodowano na komórkach VERO (komórki nerkowe małpy, dostępne w American Type Culture Collection (ATCC) pod numerem CCL-81).
Komórki Vero umieszczono w hodowli, na płytkach Falcon 25 cm2 z podłożem Eagle-MEM uzupełnionym 1% ekstraktami drożdży i 10% surowicą cielęcą, zawierające około 100000 komórek na ml. Komórki hodowano w 37°C, w atmosferze 5% CO2.
Po 3 dniach warstwa komórkowa ulega zlaniu. Podłoże hodowli zastąpiono przez podłoże Eagle-MEM uzupełnione 1% ekstraktami drożdży i 0,1% albuminą surowicy bydlęcej i dodano wirus gorączki zachodniego Nilu w stosunku 5 pfu/komórkę.
Jeśli efekt cytopatogenny (CPE) jest całkowity (generalnie 48-72 godziny od początku założenia hodowli), zawiesiny wirusowe są zbierane, następnie oczyszczane przez wirowanie i zamrażane w -70°C. Zasadniczo 3 do 4 kolejnych pasaży jest niezbędnych do wytworzenia partii cząstek wirusa. Partię wirusową przechowywano w -70°C.
Przykład 2: Ekstrakcja wirusowego RNA z wirusa gorączki zachodniego Nilu
Wirusowy RNA, zawarty w 100 ml wirusowej zawiesiny szczepu wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99, ekstrahowano po rozmrożeniu roztworami zestawu „High Pure™ Viral RNA Kit (nr kat. 1858882, Roche Molecular Biochemicals), zgodnie z instrukcjami dostawcy dotyczącymi etapów ekstrakcji. Osad RNA otrzymany na końcu ekstrakcji ponownie zawieszano w 1 do 2 ml sterylnej wody destylowanej bez RNAzy.
Przykład 3: Konstrukcja plazmidu pFC101
Komplementarny DNA (cDNA) wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 syntetyzowano przy użyciu zestawu „Gene Amp RNA PCR Kit (nr kat. N8080017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) stosując warunki podane przez producenta.
Reakcję odwrotnej transkrypcji z następującą po niej łańcuchową reakcją polimerazy („RTPCR) przeprowadzono z 50 μΐ zawiesiny wirusowego RNA wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 (przykład 2) i z następującymi oligonukleotydami:
FC101 (30 mer) (SEK Nr ID:1)
5'TTTTTTGAATTCGTTACCCTCTCTAACTTC3' i FC102 (33 mer) (SEK Nr ID:2)
PL 210 306 B1
5'TTTTTTTCTAGATTACCTCCGACTGCGTCTTGA3'.
Ta para oligonukleotydów umożliwia wprowadzenie miejsca restrykcyjnego EcoRI i miejsca restrykcyjnego Xbal oraz kodonu stop na końcu 3' insertu.
Synteza pierwszej nici cDNA dokonuje się przez wydłużanie oligonukleotydu FC102, po hybrydyzacji tego ostatniego na matrycy RNA.
Warunki syntezy pierwszej nici cDNA to temperatura 42°C przez 15 minut, następnie 99°C przez 5 minut i w końcu 4°C przez 5 minut. Warunki reakcji PCR w obecności pary oligonukleotydów FC101 i FC102 to temperatura 95°C przez 2 minuty, następnie 35 cykli (95°C przez 1 minutę, następnie 62°C przez 1 minutę i 72°C przez 2 minuty) i w końcu 72°C przez 7 minut do wytworzenia fragmentu 302 pz.
Fragment ten jest trawiony przez EcoRI, następnie przez Xbal, w celu izolacji fragmentu EcoRIXbaI około 290 pz po elektroforezie na żelu agarozowym. Fragment ten nazwano fragmentem A.
Eukariotyczny plazmid ekspresji pVR1020 (C.J. Luke i wsp., J. of Infectious Diseases, 1997, 175, 95-97), pochodna plazmidu pVR1012 (figura 1 i przykład 7 z WO-A-98/03199; J. Hartikka i wsp., 1997, Human Gene Therapy, 7, 1205-1217), zawiera fazę kodującą sekwencję sygnalną aktywatora tkankowego ludzkiego plazminogenu (tPA).
Plazmid pVR1020 modyfikowano przez trawienie BamHI-Bglll i wprowadzenie sekwencji zawierającej wiele miejsc klonowania (BamHI, Notl, EcoRI, Xbal, Pmll, Pstl, Bglll) i powodującej dobieranie do pary następujących oligonukleotydów:
PB326 (40 mer) (SEK Nr ID:3)
5'GATCTGCAGCACGTGTCTAGAGGATATCGAATTCGCGGCC3' i PB329 (40 mer) (SEK Nr ID:4)
5'GATCCGCGGCCGCGAATTCGATATCCTCTAGACACGTGCT3'.
Również otrzymany wektor, wielkości około 5105 par zasad (bp lub pz) nazwano pAB110.
Fragment A połączono z plazmidem ekspresyjnym pAB110 uprzednio trawionym przez Xbal i EcoRI, żeby otrzymać plazmid pFC101 (5376 pz). Plazmid ten zawiera, pod kontrolą wczesnego promotora ludzkiego cytomegalowirusa lub hCMV-IE (human Cytomegalovirus Immediate Early), insert kodujący sekwencję sygnalną aktywatora tPA po czym następuje sekwencja kodującej białko prM.
Przykład 4: Konstruowanie plazmidu pFC102
Komplementarny DNA (cDNA) wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 syntetyzowano przy użyciu zestawu „Gene Amp RNA PCR Kit (nr kat. N8080017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) stosując warunki podane przez producenta.
Reakcję odwrotnej transkrypcji z następującą po niej łańcuchową reakcją polimerazy (reakcja „RT-PCR) przeprowadzono z 50 μl zawiesiny wirusowego RNA wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 (przykład 2) i z następującymi oligonukleotydami:
FC103 (30 mer) (SEK Nr ID:5)
5'TTTTTTGAATTCTCACTGACAGTGCAGACA3' i FC104 (33 mer) (SEK Nr ID:6)
5'TTTTTTTCTAGATTAGCTGTAAGCTGGGGCCAC3'.
Ta para oligonukleotydów umożliwia wprowadzenie miejsca restrykcyjnego EcoRI i miejsca restrykcyjnego Xbal oraz kodonu stop na końcu 3' insertu.
Synteza pierwszej nici cDNA dokonuje się przez elongację oligonukleotydu FC104, po jego hybrydyzacji do matrycy RNA.
Warunki syntezy pierwszej nici cDNA to temperatura 42°C przez 15 minut, następnie 99°C przez 5 minut i w końcu 4°C przez 5 minut. Warunki reakcji PCR w obecności pary oligonukleotydów FC103 i FC104 to temperatura 95°C przez 2 minuty, następnie 35 cykli (95°C przez 1 minutę, następnie 62°C przez 1 minutę i 72°C przez 2 minuty) i w końcu 72°C przez 7 minut do wytworzenia fragmentu 252 pz.
Fragment ten jest trawiony przez EcoRI, następnie przez Xbal, po elektroforezie na żelu agarozowym, w celu izolacji fragmentu EcoRI-Xbal około 240 pz. Fragment ten połączono z plazmidem ekspresyjnym pAB110 (przykład 3) uprzednio trawionym przez Xbal i EcoRI, żeby otrzymać plazmid pFC102 (5326 pz). Plazmid ten zawiera, pod kontrolą wczesnego promotora ludzkiego cytomegalowirusa lub promotora hCMV-IE (human Cytomegalovirus Immediate Early), insert kodujący sekwencję sygnałową aktywatora tPA po czym następuje sekwencja kodująca białko M.
PL 210 306 B1
Przykład 5: Konstruowanie plazmidu pFC103
Komplementarne DNA (cDNA) wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 syntetyzowano przy użyciu zestawu „Gene Amp RNA PCR Kit (nr kat. N8080017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) stosując warunki podane przez producenta.
Reakcję odwrotnej transkrypcji z następującą po niej łańcuchową reakcją polimerazy (reakcja „RT-PCR) przeprowadzono z 50 μΐ zawiesiny wirusowego RNA wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 (przykład 2) i z następującymi oligonukleotydami:
FC105 (30 mer) (SEK Nr ID:7)
5'TTTTTTGAATTCTTCAACTGCCTTGGAATG3' i FC106 (33 mer)(SEK Nr ID:8)
5'TTTTTTTCTAGATTAAGCGTGCACGTTCACGGA3'.
Ta para oligonukleotydów umożliwia wprowadzenie miejsca restrykcji EcoRI i miejsca restrykcji Xbal oraz kodonu stop na końcu 3' insertu.
Synteza pierwszej nici cDNA dokonuje się przez elongację oligonukleotydu FC106, po hybrydyzacji tego ostatniego na matrycy RNA.
Warunki syntezy pierwszej nici cDNA to temperatura 42°C przez 15 minut, następnie 99°C przez 5 minut i w końcu 4°C przez 5 minut. Warunki reakcji PCR w obecności pary oligonukleotydów FC105 i FC106 to temperatura 95°C przez 2 minuty, następnie 35 cykli (95°C przez 1 minutę, następnie 62°C przez 1 minutę i 72°C przez 2 minuty) i w końcu 72°C przez 7 minut do wytworzenia fragmentu 1530 pz.
Fragment ten jest trawiony przez EcoRI, następnie przez Xbal, w celu izolacji fragmentu EcoRIXbal około 1518 pz po elektroforezie na żelu agarozowym Xbal. Fragment ten połączono z plazmidem ekspresyjnym pAB110 (przykład 3) uprzednio trawionym przez Xbal i EcoRI, tak żeby otrzymać plazmid pFC103 (6604 pz). Plazmid ten zawiera, pod kontrolą wczesnego promotora ludzkiego cytomegalowirusa lub promotora hCMV-IE (human Cytomegalovirus Immediate Early), insert kodujący sekwencję sygnałową aktywatora tPA po czym następuje sekwencja kodująca białko E.
Przykład 6: Konstruowanie plazmidu pFC104
Komplementarne DNA (cDNA) wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 syntetyzowano przy użyciu zestawu „Gene Amp RNA PCR Kit (nr kat. N8080017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) stosując warunki podane przez producenta.
Reakcję odwrotnej transkrypcji z następującą po niej łańcuchową reakcją polimerazy (reakcja „RT-PCR) przeprowadzono z 50 μl zawiesiny wirusowego RNA wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 (przykład 2) i z następującymi oligonukleotydami:
FC101 (30 mer) (SEK Nr ID:1) i FC106 (33 mer) (SEK Nr ID:8)
Ta para oligonukleotydów umożliwia wprowadzenie miejsca restrykcji EcoRI i miejsca restrykcji Xbal oraz kodonu stop na końcu 3' insertu.
Synteza pierwszej nici cDNA dokonuje się przez elongację oligonukleotydu FC106, po jego hybrydyzacji do matrycowego RNA.
Warunki syntezy pierwszej nici cDNA to temperatura 42°C przez 15 minut, następnie 99°C przez 5 minut i w końcu 4°C przez 5 minut. Warunki reakcji PCR w obecności pary oligonukleotydów FC101 i FC106 to temperatura 95°C przez 2 minuty, następnie 35 cykli (95°C przez 1 minutę, następnie 62°C przez 1 minutę i 72°C przez 2 minuty) i w końcu 72°C przez 7 minut do wytworzenia fragmentu 2031 pz.
Fragment ten jest trawiony przez EcoRI, następnie przez Xbal, w celu izolacji fragmentu EcoRI-Xbal około 2019 pz po elektroforezie na żelu agarozowym. Fragment ten połączono z plazmidem ekspresyjnym pAB110 (przykład 3) uprzednio trawionym przez Xbal i EcoRI, żeby otrzymać plazmid pFC104 (7105 pz). Plazmid ten zawiera, pod kontrolą wczesnego promotora ludzkiego cytomegalowirusa lub hCMV-IE (human Cytomegalovirus Immediate Early), insert kodujący sekwencję sygnałową aktywatora tPA po której następuje sekwencja kodującej białko prM-M-E.
Przykład 7: Konstruowanie plazmidu pFC105
Komplementarny DNA (cDNA) wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 syntetyzowano przy użyciu zestawu „Gene Amp RNA PCR Kit (nr kat. N8080017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) stosując warunki podane przez producenta.
PL 210 306 B1
Reakcję odwrotnej transkrypcji z następującą po niej reakcją łańcuchową polimerazy (reakcja
RT-PCR) przeprowadzono z 50 μΐ zawiesiny wirusowego RNA wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 (przykład 2) i z następującymi oligonukleotydami:
FC107 (36 mer) (SEK Nr ID:9)
5'TTTTTTGATATCACCGGAATTGCAGTCATGATTGGC3' i FC106 (33 mer) ( SEK Nr ID:8).
Ta para oligonukleotydów umożliwia wprowadzenie miejsca restrykcyjnego EcoRV i miejsca restrykcyjnego Xbal oraz kodonu stop na końcu 3' insertu.
Synteza pierwszej nici cDNA dokonuje się przez elongację oligonukleotydu FC106, po jego hybrydyzacji z matrycą RNA.
Warunki syntezy pierwszej nici cDNA to temperatura 42°C przez 15 minut, następnie 99°C przez 5 minut i w końcu 4°C przez 5 minut. Warunki reakcji PCR w obecności pary oligonukleotydów FC106 i FC107 to temperatura 95°C przez 2 minuty, następnie 35 cykli (95°C przez 1 minutę, następnie 62°C przez 1 minutę i 72°C przez 2 minuty) i w końcu 72°C przez 7 minut do wytworzenia fragmentu 2076 pz.
Fragment ten jest trawiony przez EcoRV, następnie przez Xbal, w celu izolacji fragmentu EcoRV-Xbal około 2058 pz po elektroforezie na żelu agarozowym.
Fragment ten połączono z plazmidem ekspresyjnym pVR1012, uprzednio trawionym przez Xbal i EcoRV, żeby otrzymać plazmid pFC105 (6953 pz). Plazmid ten zawiera, pod kontrolą wczesnego promotora ludzkiego cytomegalowirusa lub hCMV-IE (human Cytomegalovirus Immediate Early), insert kodujący poliproteinę prM-M-E.
Przykład 8: Konstruowanie plazmidu pFC106
Komplementarny DNA (cDNA) wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 syntetyzowano przy użyciu zestawu „Gene Amp RNA PCR Kit (nr kat. N8080017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) stosując warunki podane przez producenta.
Reakcję odwrotnej transkrypcji z następującą po niej łańcuchową reakcją polimerazy (reakcja „RT-PCR) przeprowadzono z 50 μl zawiesiny wirusowego RNA wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 (przykład 2) z następującymi oligonukleotydami:
FC108 (36 mer) (SEK Nr ID:10)
5'TTTTTTGATATCATGTATAATGCTGATATGATTGAC3' i FC109 (36 mer) (SEK Nr ID:11)
5'TTTTTTTCTAGATTAACGTTTTCCCGAGGCGAAGTC3'
Ta para oligonukleotydów umożliwia wprowadzenie miejsca restrykcyjnego EcoRV i miejsca restrykcyjnego Xbal, kodonu inicjującego ATG na końcu 5' oraz kodonu stop na końcu 3' insertu.
Synteza pierwszej nici cDNA dokonuje się przez elongację oligonukleotydu FC109, po jego hybrydyzacji z matrycą RNA.
Warunki syntezy pierwszej nici cDNA to temperatura 42°C przez 15 minut, następnie 99°C przez 5 minut i w końcu 4°C przez 5 minut. Warunki reakcji PCR w obecności pary oligonukleotydów FC108 i FC109 to temperatura 95°C przez 2 minuty, następnie 35 cykli (95°C przez 1 minutę, następnie 62°C przez 1 minutę i 72°C przez 2 minuty) i w końcu 72°C przez 7 minut do wytworzenia fragmentu 2973 pz.
Fragment ten jest trawiony przez EcoRV, następnie przez Xbal, w celu izolacji fragmentu EcoRV-XbaI około 2955 pz po elektroforezie na żelu agarozowym.
Fragment ten połączono z plazmidem ekspresyjnym pVR1012, uprzednio trawionym przez Xbal i EcoRV, tak aby otrzymać plazmid pFC106 (7850 pz). Plazmid ten zawiera, pod kontrolą wczesnego promotora ludzkiego cytomegalowirusa lub hCMV-IE (human Cytomegalovirus Immediate Early), insert kodujący poliproteinę NS2A-NS2B-NS3.
Przykład 9: Konstruowanie plazmidu-dawcy do insercji w miejscu C5 wirusa ospy kanarków ALVAC
Figura 16 opisu patentowego US-A-5756103 przedstawia sekwencję fragmentu 3199 pz genomowego DNA wirusa ospy kanarków. Analiza tej sekwencji ujawniła otwartą ramkę odczytu (ORF), którą nazwano C5L, która zaczyna się w pozycji 1538, a kończy się w pozycji 1859. Konstruowanie plazmidu insercyjnego prowadzącego do delecji ORF C5L i jego zastąpienie przez miejsce wielokrotnego klonowania oflankowanego sygnałami końca transkrypcji i transdukcji wykonano jak opisano poniżej.
PL 210 306 B1
Reakcję PCR przeprowadzono na matrycy utworzonej przez genomowy DNA wirusa ospy kanarków z następującymi oligonukleotydami:
C5A1 (42 mer) (SEK Nr ID:12):
5'ATCATCGAGCTCCAGCTGTAATTCATGGTCGAAAAGAAGTGC 3' i C5B1 (73 mer) (SEK Nr ID:13):
5'GAATTCCTCGAGCTGCAGCCCGGGTTTTTATAGCTAATTAGTCATTTTTTGAGAGTACC ACTTCAGCTACCTC 3' w celu wyizolowania fragmentu PCR o 223 pz (fragment B).
Reakcję PCR przeprowadzono na matrycy utworzonej przez genomowy DNA wirusa ospy kanarków z następującymi oligonukleotydami:
C5C1 (72 mer) (SEK Nr ID:14):
5'CCCGGGCTGCAGCTCGAGGAATTCTTTTTATTGATTAACTAGTCATTATAAAGATCTAA
AATGCATAATTTC 3' i C5D1 (45 mer) (SEK Nr ID:15):
5'GATGATGGTACCGTAAACAAATATAATGAAAAGTATTCTAAACTA 3' w celu wyizolowania fragmentu PCR o 482 pz (fragment C).
Fragmenty B i C wspólnie hybrydyzowano, żeby posłużyły za matrycę w reakcji PCR przeprowadzonej z oligonukleotydami C5A1 (SEK Nr ID: 12) i C5D1 (SEK Nr ID: 15) w celu wytworzenia fragmentu PCR o 681 pz. Fragment ten trawiono enzymami restrykcyjnymi SacI i KpnI, w celu izolacji fragmentu Sacl-Kpnl z 664 pz po elektroforezie na żelu agarowym. Fragment ten połączono z wektorem pBlueScript® II SK+ (Stratagene, La Jolla, CA, USA, nr kat. 212205), najpierw trawionym przez enzymy restrykcyjne SacI i KpnI, żeby otrzymać plazmid pC5L. Sekwencje tego plazmidu zweryfikowano przez sekwencjonowanie. Plazmid ten zawiera 166 pz sekwencji umieszczonych powyżej ORF C5L („lewe ramię flankujące C5), sygnał przedwczesnego zatrzymania transkrypcji z wirusa krowianki, kodony stop w 6 fazach odczytu, miejsce wielokrotnego klonowania zawierające miejsca restrykcji Smal, Pstl, Xhol i EcoRI i w końcu 425 pz sekwencji umieszczonych poniżej ORF C5L („prawe ramię flankujące C5).
Plazmid pMP528HRH (M. Perkus i wsp., J. Virol. 1989, 63, 3829-3836) zastosowano jako matrycę do amplifikacji kompletnej sekwencji promotora wirusa krowianki H6 (Nr dostępu GenBanku M28351) z następującymi oligonukleotydami:
JCA291 (34 mer) (SEK Nr ID:16)
5'AAACCCGGGTTCTTTATTCTATACTTAAAAAGTG 3' i JCA292 (43 mer) (SEK Nr ID:17)
5'AAAAGAATTCGTCGACTACGATACAAACTTAACGGATATCGCG 3' w celu amplifikacji PCR 149 pz fragmentu. Fragment ten trawiono enzymami restrykcyjnymi
Smal i EcoRI w celu wyizolowania, po elektroforezie na żelu agarowym, 138 pz fragmentu restrykcyjnego Smal-EcoRI. Fragment ten połączono wówczas z plazmidem pC5L, najpierw trawionym przez Smal i EcoRI, żeby otrzymać plazmid pFC107.
Przykład 10: Konstruowanie rekombinowanego wirusa vCP1712
Reakcję PCR przeprowadzono stosując plazmid pFC105 (przykład 7) jako matrycę z nastę pują cymi oligonukleotydami:
FC110 (33 mer) (SEK Nr ID:18):
5'TTTTCGCGAACCGGAATTGCAGTCATGATTGGC 3' i FC111 (39 mer) (SEK Nr ID:19): 5'TTTTGTCGACGCGGCCGCTTAAGCGTGCACGTTCACGGA 3' w celu amplifikacji PCR okoł o 2079 pz fragmentu. Fragment ten trawiono enzymami restrykcji
Nrul i Sall w celu wyizolowania, po elektroforezie na żelu agarozowym, około 2068 pz fragmentu restrykcji Nrul-Sall. Fragment ten połączono następnie z plazmidem pFC107 (przykład 9), uprzednio strawiony przez enzymami restrykcyjnymi Nrul i Sall, w celu otrzymania plazmidu pFC108.
Plazmid pFC108 przeprowadzono za pomocą Notl w postać liniową, następnie transfekowano do pierwotnych komórek embrionalnych kurcząt zainfekowanych wirusem ospy kanarków (szczep ALVAC) zgodnie z wcześniej opisaną techniką precypitacji w fosforanie wapnia (Panicali i Paoletti Proc. Nat. Acad. Sci., 1982, 79, 4927-4931; Piccini i wsp., In Methods in Enzymology, 1987, 153, 545563, Red. R. Wu i L. Grossman Academic Press). Pozytywne łysinki selekcjonowano w oparciu o hybrydyzację ze znakowaną radioaktywnie sondą, swoistą dla nukleotydowej sekwencji glikoproteiny otoczki E. Łysinki te poddawano 4 kolejnym cyklom selekcji/oczyszczania łysinek, aż wyizolowano
PL 210 306 B1 czystą populację. Reprezentatywną łysinkę dla rekombinacji in vitro, pomiędzy plazmidem dawcą pFC108 a genomem wirusa ospy kanarków ALVAC, następnie amplifikowano, a szczep otrzymanego rekombinowanego wirusa oznaczono jako vCP1712.
Przykład 11: Konstruowanie rekombinowanego wirusa vCP1713
Plazmid pFC104 (przykład 6) trawiono enzymami restrykcyjnymi Sall i Pmll w celu izolowania, po elektroforezie na żelu agarowym, około 2213 pz fragmentu restrykcyjnego Pmll-Sall. Fragment ten połączono z plazmidem pFC107 (przykład 9), uprzednio trawionym przez enzymy restrykcyjne Nrul i Sall, w celu otrzymania plazmidu pFC109.
Plazmid pFC109 przeprowadzono za pomocą Notl w postać liniową, następnie transfekowano do pierwotnych komórek embrionalnych kurcząt zainfekowanych wirusem ospy kanarków (szczep ALVAC) zgodnie z wcześniej opisaną techniką z przykładu 10. Reprezentatywną łysinkę po rekombinacji in vitro, pomiędzy plazmidem-dawcą pFC109 a genomem wirusa ospy kanarków ALVAC selekcjonowano w oparciu o hybrydyzację ze znakowaną radioaktywnie sondą, swoistą dla nukleotydowej sekwencji glikoproteiny otoczki E, a następnie amplifikowano. Szczep otrzymanego rekombinowanego wirusa oznaczono jako vCP1713.
Przykład 12: Konstruowanie rekombinowanego wirusa vCP1714
Plazmid pFC103 (przykład 5) trawiono enzymami restrykcyjnymi Sall i Pmll w celu wyizolowania, po elektroforezie na żelu agarowym, około 1712 pz fragmentu restrykcyjnego Pmll-Sall. Fragment ten połączono z plazmidem pFC107 (przykład 9), najpierw trawionym przez enzymy restrykcyjne Nrul i Sall, żeby otrzymać plazmid pFC110.
Plazmid pFC110 przeprowadzono za pomocą Notl w postać liniową, następnie transfekowano do pierwotnych komórek embrionalnych kurcząt zainfekowanych wirusem ospy kanarków (szczep ALVAC) zgodnie z wcześniej opisaną techniką z przykładu 10. Reprezentatywną łysinkę po rekombinacji in vitro, pomiędzy plazmidem-dawcą pFC110 a genomem wirusa ospy kanarków ALVAC selekcjonowano w oparciu o hybrydyzację ze znakowaną radioaktywnie sondą, swoistą dla nukleotydowej sekwencji glikoproteiny otoczki E, a następnie amplifikowano. Szczep otrzymanego rekombinowanego wirusa oznaczono vCP1714.
Przykład 13: Konstruowanie rekombinowanego wirusa vCP1715
Plazmid pFC102 (przykład 4) trawiono enzymami restrykcyjnymi Sall i Pmll w celu wyizolowania, po elektroforezie na żelu agarowym, około 434 pz fragmentu restrykcyjnego Pmll-Sall. Fragment ten połączono z plazmidem pFC107 (przykład 9), uprzednio trawionym przez enzymy restrykcyjne Nrul i Sall, żeby otrzymać plazmid pFC111.
Plazmid pFC111 przeprowadzono za pomocą Notl w postać liniową, a następnie transfekowano do pierwotnych komórek embrionalnych kurcząt zainfekowanych wirusem ospy kanarków (szczep ALVAC) zgodnie z wcześniej opisaną techniką z przykładu 10. Reprezentatywną łysinkę po rekombinacji in vitro, pomiędzy plazmidem-dawcą pFC111 a genomem wirusa ospy kanarków ALVAC, selekcjonowano w oparciu o hybrydyzację ze znakowaną radioaktywnie sondą, swoistą dla nukleotydowej sekwencji glikoproteiny błonowej M, a następnie amplifikowano. Szczep otrzymanego rekombinowanego wirusa oznaczono jako vCP1715.
Przykład 14: Konstruowanie rekombinowanego wirusa vCP1716
Plazmid pFC101 (przykład 3) trawiono enzymami restrykcyjnymi Sall i Pmll w celu wyizolowania, po elektroforezie na żelu agarowym, około 484 pz fragmentu restrykcyjnego Pmll-Sall. Fragment ten połączono z plazmidem pFC107 (przykład 9), uprzednio trawionym przez enzymy restrykcyjne Nrul i Sall, tak aby otrzymać plazmid pFC112.
Plazmid pFC112 przeprowadzono za pomocą Notl w postać liniową, następnie transfekowano do pierwotnych komórek embrionalnych kurcząt zainfekowanych wirusem ospy kanarków (szczep ALVAC) zgodnie z wcześniej opisaną techniką z przykładu 10. Reprezentatywną łysinkę po rekombinacji in vitro, pomiędzy plazmidem-dawcą pFC112 a genomem wirusa ospy kanarków ALVAC, selekcjonowano w oparciu o hybrydyzację ze znakowaną radioaktywnie sondą, swoistą dla nukleotydowej sekwencji glikoproteiny przedbłonowej prM, a następnie amplifikowano. Szczep otrzymanego rekombinowanego wirusa oznaczono vCP1716.
Przykład 15: Konstruowanie plazmidu dawcy do insercji w miejscu C6 wirusa ospy kanarków ALVAC
Figura 4 z opisu patentowego WO-A-01/05934 przedstawia sekwencję fragmentu 3700 pz genomowego DNA wirusa ospy kanarków. Analiza tej sekwencji ujawniła otwartą ramkę odczytu (ORF), którą nazwano C6L, która zaczyna się w pozycji 377 a kończy się w pozycji 2254. Konstruowanie
PL 210 306 B1 plazmidu insercji prowadzącego do delecji ORF C6L i jego zastąpienie przez miejsce wielokrotnego klonowania oflankowanego sygnałami końca transkrypcji i transdukcji wykonano jak opisano poniżej.
Reakcję PCR przeprowadzono na podstawie matrycy utworzonej przez genomowy DNA wirusa ospy kanarków z następującymi oligonukleotydami:
C6A1 (42 mer) (SEK Nr ID:20):
5'ATCATCGAGCTCGCGGCCGCCTATCAAAAGTCTTAATGAGTT 3' i C6B1 (73 mer) (SEK Nr ID:21):
5'GAATTCCTCGAGCTGCAGCCCGGGTTTTTATAGCTAATTAGTCATTTTTTCGTAAGTAA GTATTTTTATTTAA 3' w celu wyizolowania fragmentu PCR z 432 pz (fragment D).
Reakcję PCR przeprowadzono na matrycy utworzonej przez genomowy DNA wirusa ospy kanarków z następującymi oligonukleotydami:
C6C1 (72 mer) (SEK Nr ID:22):
5'CCCGGGCTGCAGCTCGAGGAATTCTTTTTATTGATTAACTAGTCAAATGAGTATATATA
ATTGAAAAAGTAA 3' i C6D1 (45 mer) (SEK Nr ID:23):
5'GATGATGGTACCTTCATAAATACAAGTTTGATTAAACTTAAGTTG 3' w celu wyizolowania fragmentu PCR z 1210 pz (fragment E).
Fragmenty D i E wspólnie hybrydyzowano, żeby posłużyły za matrycę w reakcji PCR przeprowadzonej z oligonukleotydami C6A1 (SEK Nr ID:20) i C6D1 (SEK Nr ID:23) w celu wytworzenia fragmentu PCR o 1630 pz. Fragment ten trawiono enzymami restrykcyjnymi SacI i KpnI, w celu izolacji fragmentu Sacl-Kpnl z 1613 pz po elektroforezie na żelu agarowym. Fragment ten połączono z wektorem pBlueScript® II SK+ (Stratagene, La Jolla, CA, USA, nr kat. 212205), uprzednio trawionym przez enzymy restrykcyjne SacI i KpnI, żeby otrzymać plazmid pC6L. Sekwencje tego plazmidu zweryfikowano przez sekwencjonowanie. Plazmid ten zawiera sekwencję 370 pz umieszczoną powyżej ORF C6L („lewe ramię flankujące C6), sygnał przedwczesnego zatrzymania transkrypcji z wirusa krowianki, kodony stop w 6 fazach odczytu, miejsce wielokrotnego klonowania zawierające miejsca restrykcyjne Smal, Pstl, Xhol i EcoRI i w końcu 1156 pz sekwencji umieszczonych poniżej ORF C6L („prawe ramię flankujące C6).
Plazmid pMPIVC (J.F.C. Schmitt i wsp., J. Virol. 1988, 62, 1889-1897; R.K. Saiki i wsp., Science, 1988, 239, 487-491) zastosowano jako matrycę do amplifikacji kompletnej sekwencji promotora wirusa krowianki I3L z następującymi oligonukleotydami:
FC112 (33 mer) (SEK Nr ID:24):
5'AAACCCGGGCGGTGGTTTGCGATTCCGAAATCT 3' i FC113(43 mer) (SEK Nr ID:25):
5'AAAAGAATTCGGATCCGATTAAACCTAAATAATTGTACTTTGT 3' aby zamplifikować PCR 151 pz fragment. Fragment ten trawiono enzymami restrykcyjnymi
Smal i EcoRI w celu wyizolowania, po elektroforezie na żelu agarowym, fragmentu restrykcyjnego Smal-EcoRI o długości około 136 pz. Fragment ten połączono następnie z plazmidem pC6L, trawionym uprzednio przez Smal i EcoRI, żeby otrzymać plazmid pFC113.
Przykład 16: Konstruowanie rekombinowanych wirusów vCP1717 i vCP1718
Reakcję PCR przeprowadzono wykorzystując plazmid pFC106 (przykład 8) jako matrycę oraz następujące oligonukleotydy:
FC114 (33 mer) (SEK Nr ID:26):
5'TTTCACGTGATGTATAATGCTGATATGATTGAC 3' i FC115 (42 mer) (SEK Nr ID: 27):
5'TTTTGGATCCGCGGCCGCTTAACGTTTTCCCGAGGCGAAGTC 3' w celu amplifikacji PCR okoł o 2973 pz fragmentu. Fragment ten trawiono enzymami restrykcyjnymi Pmll i BamHI w celu wyizolowania, po elektroforezie na żelu agarozowym, około 2958 pz fragment restrykcyjny Pmll-BamHI (fragment F). Plazmid pFC113 (przykład 15) trawiono enzymami restrykcyjnymi Pmll i BamHI, żeby wyizolować, po elektroforezie na żelu agarowym, około 4500 pz fragment restrykcyjny Pmll-BamHI (fragment G). Fragmenty F i G następnie ligowano, aby docelowo otrzymać plazmid pFC114.
Plazmid pFC114 przeprowadzono za pomocą Notl w postać liniową, następnie transfekowano do pierwotnych komórek embrionalnych kurcząt zainfekowanych wirusem ospy kanarków vCP1713 (przykład 11) zgodnie z wcześniej opisaną techniką precypitacji w fosforanie wapnia (Panicali
PL 210 306 B1 i Paoletti Proc. Nat. Acad. Sci., 1982, 79, 4927-4931; Piccini i wsp., In Methods in Enzymology, 1987, 153, 545-563, wyd. R. Wu i L. Grossman Academic Press). Pozytywne łysinki selekcjonowano w oparciu o hybrydyzację ze znakowaną radioaktywnie sondą, swoistą dla nukleotydowej sekwencji glikoproteiny otoczki E. Łysinki te poddawano 4 kolejnym cyklom selekcji/oczyszczania łysinek, aż wyizolowano czystą populację. Reprezentatywną łysinkę po rekombinacji in vitro, pomiędzy plazmidem-dawcą pFC114 a genomem wirusa ospy kanarków ALVAC, następnie amplifikowano, a szczep otrzymanego rekombinowanego wirusa oznaczono jako vCP1717.
Plazmid pFC114 przeprowadzono za pomocą Notl w postać liniową, następnie transfekowano do pierwotnych komórek embrionalnych kurcząt zainfekowanych wirusem ospy kanarków vCP1712 (przykład 10) zgodnie z opisaną powyżej techniką. Szczep otrzymanego rekombinowanego wirusa oznaczono vCP1718.
Przykład 17: Konstruowanie plazmidu pFC115
Komplementarne DNA (cDNA) wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 syntetyzowano przy użyciu zestawu „Gene Amp RNA PCR Kit (nr kat. N8080017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) stosując warunki podane przez producenta.
Reakcję odwrotnej transkrypcji następującą po łańcuchowej reakcji polimerazy (RT-PCR) przeprowadzono z 50 μl zawiesiny wirusowego RNA wirusa gorączki zachodniego Nilu NY99 (przykład 2) i z następującymi oligonukleotydami:
FC116 (39 mer) (SEK Nr ID:28)
5' TTTTTTGATATCATGACCGGAATTGCAGTCATGATTGGC 3' i FC106 (33 mer) (SEK Nr ID:8).
Ta para oligonukleotydów umożliwia wprowadzenie miejsca restrykcji EcoRV i miejsca restrykcji Xbal, kodonu inicjatorowego na końcu 5' oraz kodonu stop na końcu 3' insertu.
Synteza pierwszej nici cDNA dokonuje się przez elongację oligonukleotydu FC106, po hybrydyzacji tego ostatniego na matrycy RNA.
Warunki syntezy pierwszej nici cDNA to temperatura 42°C przez 15 minut, następnie 99°C przez 5 minut i w końcu 4°C przez 5 minut. Warunki reakcji PCR w obecności pary oligonukleotydów FC106 i FC116 to temperatura 95°C przez 2 minuty, następnie 35 cykli (95°C przez 1 minutę, następnie 62°C przez 1 minutę i 72°C przez 2 minuty) i w końcu 72°C przez 7 minut do wytworzenia fragmentu 2079 pz.
Fragment ten jest trawiony przez EcoRV, następnie przez Xbal, w celu izolacji fragmentu EcoRV-Xbal z około 2061 pz po elektroforezie na żelu agarowym.
Fragment ten połączono z plazmidem ekspresyjnym pVR1012, uprzednio trawionym przez Xbal i EcoRV, aby otrzymać plazmid pFC115 (6956 pz). Plazmid ten zawiera, pod kontrolą wczesnego promotora ludzkiego cytomegalowirusa lub hCMV-IE (human Cytomegalovirus Immediate Early), insert kodujący poliproteinę prM-M-E.
Przykład 18: Konstruowanie rekombinowanych wirusów vCP2017
Reakcję PCR przeprowadzono stosując plazmid pFC115 (przykład 17) jako matrycę i następujące oligonukleotydy:
FC117 (36 mer) (nr ID Sek:29):
5' TTTTCGCGAATGACCGGAATTGCAGTCATGATTGGC 3' i FC111 (39 mer) (nr ID Sek:19) w celu amplifikacji PCR około 2082 pz fragmentu. Fragment ten trawiono enzymami restrykcyjnymi Nrul i Sall w celu wyizolowania, po elektroforezie na żelu agarowym, około 2071 pz fragmentu restrykcyjnego Nrul-Sall. Fragment ten następnie ligowano z plazmidem pFC107 (przykład 9), najpierw trawionym enzymami restrykcji Nrul i Sall, w celu uzyskania plazmidu pFC116.
Plazmid pFC116 przeprowadzono za pomocą Notl w postać liniową, następnie transfekowano do pierwotnych komórek embrionalnych kurcząt zainfekowanych wirusem ospy kanarków (szczep ALVAC) zgodnie z techniką z przykładu 10. Reprezentatywną łysinkę po rekombinacji in vitro, pomiędzy plazmidem-dawcą pFC116 a genomem wirusa ospy kanarków ALVAC, selekcjonowano w oparciu o hybrydyzację ze znakowaną radioaktywnie sondą, swoistą dla nukleotydowej sekwencji glikoproteiny otoczki E, a następnie amplifikowano. Szczep otrzymanego rekombinowanego wirusa oznaczono jako vCP2017.
PL 210 306 B1
Przykład 19: Wytwarzanie rekombinowanych szczepionek
W celu wytworzenia szczepionki dla koni rekombinowany wirus ospy kanarków vCP1712 (przykład 10) dodano do roztworów karbomeru, to znaczy Carbopol™ 974P, wyprodukowanego przez BF Goodrich, Ohio, USA (masa cząsteczkowa około 3000000).
Roztwór podstawowy 1,5% Carbopolu™ 974P jest początkowo przygotowywany w wodzie destylowanej, zawierającej 1 g/l chlorku sodu. Ten roztwór podstawowy jest wówczas stosowany do przygotowania roztworu 4 mg/ml Carbopolu™ 974P w soli fizjologicznej. Roztwór podstawowy zmieszano z odpowiednią objętością soli fizjologicznej, bądź w pojedynczym etapie, bądź w kolejnych wielu etapach, w każdym etapie regulowano wartość pH roztworem wodorotlenku sodu 1N (lub jeszcze bardziej stężonym), żeby otrzymać końcową wartość pH 7,3-7,4.
Otrzymany w ten sposób gotowy do użycia roztwór Carbopolu™ 974P stosowano do rekonstytucji rekombinowanego liofilizowanego wirusa lub do rozcieńczania stężonych roztworów podstawowych rekombinowanego wirusa. Na przykład, żeby otrzymać wirusową zawiesinę, zawierającą 108 pfu na 1 ml dawki, rozcieńczano podstawowy roztwór wirusowy w taki sposób, żeby otrzymać miano 108,3 pfu/ml, dalej rozcieńczano w równych częściach wspomniany gotowy do użycia roztwór Carbopolu™ 974P do 4 mg/ml.
Rekombinowane szczepionki mogą również być wytwarzane z rekombinowanymi wirusami ospy kanarków vCP1713 (przykład 11), lub vCP1717 (przykład 16), lub vCP1718 (przykład 16) lub vCP2017 (przykład 18), lub mieszaniną trzech wirusów ospy kanarków vCP1714 (przykład 12), vCP1715 (przykład 13) i vCP1716 (przykład 14) zgodnie z techniką opisaną powyżej.
Przykład 20: Wytwarzanie szczepionek DNA dla koni
Roztwór DNA zawierający plazmid pFC104 (przykład 6) zatężano poprzez precypitację etanolem jak opisano w Sambrook i wsp. (1989). Osad DNA jest ponownie umieszczany w 0,9% roztworze NaCl tak, żeby otrzymać stężenie 1 mg/ml. 0,75 mM roztwór DMRIE-DOPE przygotowano przez rekonstytucję liofilizatu DMRIE-DOPE przez odpowiednią objętość sterylnej H2O.
Tworzenie kompleksów plazmidowy DNA-lipid realizowano przez rozcieńczenie w równych częściach 0,75 mM roztworu DMRIE-DOPE (1:1) roztworem 1 mg/ml DNA w 0,9% NaCl. Roztwór DNA stopniowo wprowadzano przy pomocy oprawionej igły 26G wzdłuż ścianki flakonu zawierającego roztwór kationowego lipidu tak, żeby uniknąć tworzenia się piany. Przystąpiono do łagodnego mieszania od chwili, gdy zmieszano te dwa roztwory. Na koniec otrzymano kompozycję obejmującą 0,375 mM DMRIE-DOPE i 500 μg/ml plazmidu.
Pożądane jest, żeby wszystkie ze stosowanych roztworów były w temperaturze otoczenia dla wszystkich z opisanych powyżej zabiegów. Pozwolono na chelatowanie DNA/DMRIE-DOPE w miejscu o temperaturze pokojowej przez 30 minut przed przystąpieniem do immunizacji zwierząt.
Szczepionki DNA mogą być również wytwarzane z roztworami DNA zawierającymi plazmidy pFC104 (przykład 6) i pFC106 (przykład 8), lub zawierającymi plazmidy pFC105 (przykład 7) i pFC106, plazmidy pFC115 (przykład 17) i pFC106, lub zawierającymi plazmidy pFC101, pFC102 i pFC103 (przykłady od 3 do 5), lub zawierającymi plazmid pFC105 lub pFC115 zgodnie z techniką opisaną w niniejszym przykładzie.
Przykład 21: Testy ekspresji in vitro
Ekspresję białek WN testowano dla każdego układu klasycznymi metodami immunofluorescencji pośredniej i Western Blot.
Testy wykonywano na 96 studzienkowych płytkach, zawierających komórki CHO hodowane w monowarstwach i transfekowane plazmidami lub zawierających komórki CEF hodowane w monowarstwach i zakażone rekombinowanymi wirusami.
Białka WN wykrywano stosując surowice zakażonych koni lub kurcząt i znakowane surowice odpornościowe.
Wielkość fragmentów otrzymanych po migracji na żelu agarowym porównywano z wielkościami oczekiwanymi.
Przykład 22: Skuteczność na zwierzętach
Szczepionki rekombinowane i szczepionki plazmidowe wstrzykiwano dwukrotnie, w odstępie około dwóch tygodni, uprzednio nie szczepionym kurczętom SPF (SPF - wolne od specyficznego patogenu), w wieku około 7 dni, drogą domięśniową, w objętości około 0,1 ml. Kontrolną grupę nie szczepioną włączono do badania.
Kurczęta poddawano testowi prowokacji przez podanie podskórne w szyję 103-4TCID50 (50-procentowa dawka infekcyjna dla hodowli komórkowej) patogennego wirusa.
PL 210 306 B1
Z jednej strony zaobserwowano wiremię, odpowiedź w przeciwciałach, jak również śmiertelność. Wykonano autopsje w celu obserwacji wytworzonych uszkodzeń.
Przykład 23: Mianowanie przeciwciał neutralizujących anty-WNV.
Dla każdej surowicy wykonano serie rozcieńczeń ze stosunkiem 3 na podłożu DMEM zmieszanym z 10% płodową surowicą bydlęcą w 96 studzienkowych płytkach do hodowli komórkowej. Do 0,05 ml rozcieńczonej surowicy dodano 0,05 ml podłoża hodowlanego zawierającego w przybliżeniu 100 DICC50/ml WNV. Mieszaninę tą inkubowano przez 2 godziny w 37°C w termostacie w atmosferze zawierającej 5% CO2.
0,15 ml zawiesiny komórek VERO, zawierającej około 100000 komórek na ml dodano następnie do każdej mieszaniny. Efekt cytopatyczny (ECP) obserwowano pod mikroskopem fazowokontrastowym po 4-5 dniach hodowli w 37°C w atmosferze zawierającej 5% CO2. Miana neutralizujące każdej surowicy obliczano metodą Karbera. Miana otrzymano w postaci najwyższego rozcieńczenia hamującego efekt cytopatyczny w 50% studzienek. Miana wyrażono jako log10 VN50. Każdą surowicę mianowano co najmniej dwa razy, korzystnie cztery razy.
Przykład 24: Próba vCP2017 na koniach.
Szczepionki rekombinowane zawierające vCP2017 (przykład 18) przygotowane bezpośrednio przed podaniem z 1 ml adiuwanta Carbopol® 974P (4 mg/ml) wstrzykiwano dwukrotnie, w odstępie 35 dni, uprzednio nie szczepionym koniom w wieku powyżej 3 miesięcy, drogą domięśniową w objętości około 1 ml. Zaszczepiono trzy grupy zwierząt dawkami 105,8 DICC50 (to jest 105,64 pfu) dla grupy 1, 106,8 DICC50 (to jest 106,64 pfu) dla grupy 2 i 107,8 DICC50 (to jest 107,64 pfu) dla grupy 3. Nie szczepioną grupę kontrolną włączono do badania.
Obserwowano parametry serologiczne. Ustalono miana przeciwciał neutralizujących i wyrażono jako log10 VN50 jak wskazano w przykładzie 23.
Grupa | Miana w dniu 0 | Miana w dniu 35 | Miana w dniu 49 |
1 | <0,6 | <0,78 | 2,66 |
2 | <0,6 | 1,14 | 2,58 |
3 | <0,6 | 1,16 | 2,26 |
kontrolna | <0,6 | <0,6 | <0,6 |
PL 210 306 B1 < 11 0 >
< 120 >
<130>
<160>
<170> <210> <21i> 12> 13>
20> 23> C0>
Μ Μ Μ Μ Ο Bl + W Μ U U U (Ό ω rt + Μ Μ MMMM o a + W Μ ΙΌ ΙΌ
Lista sekwencji
Merial
Kompozycja szczepionkowa do indukcji zabezpieczającej odpowiedzi immunologicznej przed wirusem zachodniego Nilu (WNV)
ΧΧΧΧ
Patentln wersja 3.1 1
DNA
S z t u c z n ci oligonukleotyd ttttgaat tcgttaccct ctctaacttc
10> 2 11> 33
12> DNA 13> Sztuczna
20>
23> oligonukleotyd 0G> 2 tttttcta gattacctcc gactgcgtct tga
10> 3 il> 40 12> DNA 13> Sztuczna
20>
23> oligonukleotyd 00> 3 tctgcagc acgtgtctag aggatatcga attcgcggcc
<2 10 > | 4 |
<211> | 40 |
<212 > | DNA |
<213 > | Sztuczna |
PL 210 306 B1
- 21 Ο > 9 <211> 36 <212 > DNA
PL 210 306 B1 <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 9 ttttttgata tcaccggaat tgcagtcatg attggc 36 <210> 10 <211> 36 <212> DNA <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 10 ttttttgata tcatgtataa tgctgatatg attgac 36 <210> 11 <211> 36 <212> DNA <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 11 tttttttcta gattaacgtt ttcccgaggc gaagtc 36 <210> 12 <211> 42 <212> DNA <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 12 atcatcgagc tccagctgta attcatggtc gaaaagaagt qc 42 <210> 13 <211> 73 <212> DNA <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 13 gaattcctcg agctgcagcc cgggttttta tagctaatta gtcatttttt gagtacca
PL 210 306 B1 cttcagctac ctc <210> 14 <211> 72 <212> DNA <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 14 cccgggctgc agctcgagga attcttttta ttgattaact agtcattata aagatctaaa 60 atgcataatt tc <210> 15 <211> 45 <212> DNA <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 15 gatgatggta ccgtaaacaa atataatgaa aagtattcta aacta 45 <210> 16 <211> 34 <212> DNA <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 16 aaacccgggt tctttattct atacttaaaa agtg <210> 17 <211> 43 <212> DNA <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 17 aaaagaattc gtcgactacg atacaaactt aacggatatc gcg 43 <210> 18 <211> 33 <212> DNA
PL 210 306 B1 <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 18 ttttcgcgaa ccggaattgc agtcatgatt ggc 33 <210>
<211>
<212>
<213>
DNA
Sztuczna <220>
<223> Oligonucleotide FC111 used in PCR reaction <400> 19 ttttgtcgac gcggccgctt aagcgtgcac gttcacgga 39 <210>
<211>
<212>
<213>
DNA
Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 20 atcatcgagc tcgcggccgc ctatcaaaag tcttaatgag tt 42 <210>
<211>
<212>
<213>
DNA
Sztuczna <220>
<223>
<400>
oligonukleotyd gaattcctcg agctgcagcc cgggttttta tagctaatta gtcatttttt cgtaagtaag 60 tatttttatt taa <210>
<211>
<212>
<213>
DNA
Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd
PL 210 306 B1 <400> 22 cccgggctgc agctcgagga attcttttta ttgattaact agtcaaatga gtatatataa 60 ttgaaaaagt aa <210>
<211>
<212>
<213>
DNA
Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 23 gatgatggta ccttcataaa tacaagtttg attaaactta agttg 45 <210>
<211>
<212>
<213>
DNA
Sztuczna <220>
<223 > oligonukleotyd <400> 24 aaacccgggc ggtggtttgc gattccgaaa tct 33 <210> 25 <211> 43 <212> <213>
DNA
Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 25 aaaagaattc ggatccgatt aaacctaaat aattgtactt tgt 43 <210>
<211>
<212>
DNA <213> Sztuczna <220>
<223> oligonukleotyd <400> 26 tttcacgtga tgtataatgc tgatatgatt gac 33
PL 210 306 B1
<21O> | 27 |
<211> | 42 |
<212> | DNA |
<213> | Sztuczna |
< 2 2 C > | |
<22 3 > | oligonukłeotyd |
<400> | 27 |
ttttggatcc gcggccgctt aacgttttcc cgaggcgaag cc 42 | |
<2 10> | 28 |
<211> | 39 |
< 212 > | DNA |
< 213 > | Sztuczny oligonukłeotyd |
<4 00> | 28 | |
111111 39 | gata tcatgaccgg aattgcagtc | atgattggc |
< 21C > | 29 | |
<2 11 > | 36 | |
< 212 > | DNA | |
< 212 > | Sztuczny oligonukłeotyd | |
<4C0> | 2 9 | |
1111 cg | cgaa tgaccggaat tgcagtcatg | attggc |
Claims (17)
1. Kompozycja szczepionkowa do indukcji zabezpieczającej odpowiedzi immunologicznej przed wirusem zachodniego Nilu (WNV) u zwierząt podatnych na WNV, znamienna tym, że obejmuje wektor zawierający rekombinowany wirus lub plazmid DNA, który koduje i wyraża in vivo u zwierzęcia WNV E; WNV prM i E; WNV M i E; WNV prM, WNV M i E, poliproteinę prM-E z WNV, poliproteinę M-E z WNV, lub poliproteinę prM-M-E WNV, przy czym gdy wirus jest wirusem ospy ptaków wyrażane białko jest inne niż poliproteina prM-M-E z WNV.
2. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 1, znamienna tym, że rekombinowany wirus jest rekombinowanym adenowirusem, herpeswirusem lub pokswirusem.
3. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 2, znamienna tym, że rekombinowany wirus jest rekombinowanym wirusem ospy.
4. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 3, znamienna tym, że rekombinowany wirus ospy jest rekombinowanym wirusem ospy ptaków.
5. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 4, znamienna tym, że rekombinowany wirus ospy ptaków jest rekombinowanym wirusem ospy kanarków lub wirusem ospy drobiu.
6. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 5, znamienna tym, że wirusem ospy kanarków jest ALVAC a wirusem ospy drobiu jest TROVAC.
7. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 1 albo 5, albo 6, znamienna tym, że cząsteczka kwasu nukleinowego obejmuje ramkę odczytu kodująca poliproteinę prM-M-E.
8. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 1, znamienna tym, że cząsteczka kwasu nukleinowego obejmuje nukleotydy 466-741, 742-966 i 967-2469 z GenBank AF196825 (SEKW ID NR: 66) kodujące odpowiednio WNV prM, M i E.
9. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 1, znamienna tym, że cząsteczka kwasu nukleinowego obejmuje nukleotydy 466-2469 z GenBank AF196835 (SEKW ID NR: 66) kodujące białko prM-M-E z WNV.
10. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 1, znamienna tym, że cząsteczka kwasu nukleinowego obejmuje nukleotydy 421-2469 z GenBank AF196835 (SEKW ID NR: 66) kodujące białko prM-M-E z WNV oraz peptyd sygnalny z prM.
11. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 1, znamienna tym, że ponadto obejmuje adiuwant.
12. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 11, znamienna tym, że adiuwantem jest karbomer.
13. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 1, znamienna tym, że ponadto obejmuje antygen lub immunogen lub epitop z patogenu zwierzęcia inny niż WNV lub wektor, który zawiera i wyraża in vivo cząsteczkę kwasu nukleinowego kodującą antygen, immunogen lub epitop patogenu lub inaktywowany lub atenuowany patogen zwierzęcia inny niż WNV.
14. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 1, znamienna tym, że zwierzęciem jest kot lub koń.
15. Kompozycja szczepionkowa według zastrz. 1, znamienna tym, że obejmuje wektor obejmujący rekombinowany wirus lub plazmidowy DNA, który koduje i wyraża in vivo w zwierzęciu poliproteinę prM-M-E z WNV.
16. Zastosowanie kompozycji szczepionkowej jak określonej w zastrz 1-15 do wytwarzania szczepionki do indukcji zabezpieczającej odpowiedzi immunologicznej przed wirusem zachodniego Nilu (WNV) u zwierząt podatnych na WNV.
17. Zastosowanie według zastrz. 16, znamienne tym, że zwierzęciem jest kot lub koń.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR0104737A FR2823222B1 (fr) | 2001-04-06 | 2001-04-06 | Vaccin contre le virus de la fievre du nil |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL210306B1 true PL210306B1 (pl) | 2011-12-30 |
Family
ID=8862055
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL365210A PL207584B1 (pl) | 2001-04-06 | 2002-04-05 | Szczepionka do ochrony koni, psów, kotów, bydła, świń oraz ptaków przed wirusem zachodniego Nilu (WN) |
PL391444A PL210306B1 (pl) | 2001-04-06 | 2002-04-05 | Kompozycja szczepionkowa do indukcji zabezpieczającej odpowiedzi immunologicznej przed wirusem zachodniego Nilu (WNV) |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL365210A PL207584B1 (pl) | 2001-04-06 | 2002-04-05 | Szczepionka do ochrony koni, psów, kotów, bydła, świń oraz ptaków przed wirusem zachodniego Nilu (WN) |
Country Status (22)
Country | Link |
---|---|
EP (2) | EP1377660B1 (pl) |
JP (1) | JP4426761B2 (pl) |
AU (1) | AU2002307971B2 (pl) |
BE (1) | BE2016C021I2 (pl) |
BR (1) | BRPI0208896B1 (pl) |
CA (1) | CA2448796C (pl) |
CY (2) | CY1117676T1 (pl) |
DK (1) | DK1377660T3 (pl) |
ES (2) | ES2566044T3 (pl) |
FR (2) | FR2823222B1 (pl) |
HK (2) | HK1061868A1 (pl) |
HU (2) | HU230122B1 (pl) |
IL (3) | IL158204A0 (pl) |
LT (1) | LTC1377660I2 (pl) |
LU (1) | LU93048I2 (pl) |
MX (1) | MXPA03008998A (pl) |
NL (1) | NL300806I2 (pl) |
PL (2) | PL207584B1 (pl) |
RU (1) | RU2283138C2 (pl) |
SI (1) | SI1377660T1 (pl) |
WO (1) | WO2002081621A2 (pl) |
ZA (1) | ZA200307620B (pl) |
Families Citing this family (14)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2004521867A (ja) | 2000-10-27 | 2004-07-22 | イミュノ−アールエックス, インコーポレイテッド | 免疫抑制された患者のためのワクチン免疫療法 |
MXPA04000680A (es) | 2001-07-27 | 2004-04-05 | Wyeth Corp | Vacuna para virus west nile. |
AU2003296974A1 (en) * | 2002-12-13 | 2004-07-14 | Aventis Pasteur, Inc. | Production of alvac on avian embryonic stem cells |
WO2004112694A2 (en) | 2003-05-23 | 2004-12-29 | Chiron Corporation | Immunogenic reagents from west nile virus |
CA2582534A1 (en) | 2004-09-09 | 2006-03-16 | Research Development Foundation | Flavivirus variants having phenotypic variation and immunogenic compositions thereof |
PT2251034T (pt) | 2005-12-02 | 2018-05-22 | Icahn School Med Mount Sinai | Vírus da doença de newcastle quiméricos que apresentam proteínas de superfície não nativas e suas utilizações |
MX2011002071A (es) | 2008-08-29 | 2011-04-05 | Boehringer Ingelheim Vetmed | Vacuna para el virus del nilo occidental. |
WO2010091262A1 (en) | 2009-02-05 | 2010-08-12 | Mount Sinai School Of Medicine Of New York University | Chimeric newcastle disease viruses and uses thereof |
EP2411049B1 (en) | 2009-03-27 | 2020-01-15 | Academia Sinica | Methods and compositions for immunization against virus |
AU2010248761B2 (en) * | 2009-05-15 | 2016-02-11 | Irx Therapeutics, Inc. | Vaccine immunotherapy |
TWI537385B (zh) | 2010-11-04 | 2016-06-11 | 中央研究院 | 產生具簡單醣基化之表面蛋白質之病毒顆粒的方法 |
RU2506093C1 (ru) * | 2012-12-06 | 2014-02-10 | Государственное научное учреждение Якутский научно-исследовательский институт сельского хозяйства Российской академии сельскохозяйственных наук | Способ специфической профилактики ринопневмонии, сальмонеллезного аборта и мыта лошадей ассоциированной вакциной в условиях табунного содержания |
BR112015021414B1 (pt) | 2013-03-14 | 2020-11-10 | Icahn School Of Medicine At Mount Sinai | vírus da doença newcastle e seus usos |
WO2015127501A1 (en) | 2014-02-27 | 2015-09-03 | Viralytics Limited | Combination method for treatment of cancer |
Family Cites Families (36)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US2909462A (en) | 1955-12-08 | 1959-10-20 | Bristol Myers Co | Acrylic acid polymer laxative compositions |
US5110587A (en) | 1981-12-24 | 1992-05-05 | Health Research, Incorporated | Immunogenic composition comprising synthetically modified vaccinia virus |
US5505941A (en) | 1981-12-24 | 1996-04-09 | Health Research, Inc. | Recombinant avipox virus and method to induce an immune response |
US5174993A (en) | 1981-12-24 | 1992-12-29 | Health Research Inc. | Recombinant avipox virus and immunological use thereof |
US4769330A (en) | 1981-12-24 | 1988-09-06 | Health Research, Incorporated | Modified vaccinia virus and methods for making and using the same |
US5338683A (en) | 1981-12-24 | 1994-08-16 | Health Research Incorporated | Vaccinia virus containing DNA sequences encoding herpesvirus glycoproteins |
US4722848A (en) | 1982-12-08 | 1988-02-02 | Health Research, Incorporated | Method for immunizing animals with synthetically modified vaccinia virus |
US4603112A (en) | 1981-12-24 | 1986-07-29 | Health Research, Incorporated | Modified vaccinia virus |
US4745051A (en) | 1983-05-27 | 1988-05-17 | The Texas A&M University System | Method for producing a recombinant baculovirus expression vector |
EP0173552B1 (en) | 1984-08-24 | 1991-10-09 | The Upjohn Company | Recombinant dna compounds and the expression of polypeptides such as tpa |
US5168062A (en) | 1985-01-30 | 1992-12-01 | University Of Iowa Research Foundation | Transfer vectors and microorganisms containing human cytomegalovirus immediate-early promoter-regulatory DNA sequence |
US4963481A (en) | 1985-12-18 | 1990-10-16 | Genetics Institute Inc | Promoter system |
US4968615A (en) | 1985-12-18 | 1990-11-06 | Ciba-Geigy Corporation | Deoxyribonucleic acid segment from a virus |
GB2197321B (en) | 1986-09-12 | 1990-10-03 | Genentech Inc | Method and vectors for obtaining continuous production of heterologous protein in a eukaryotic host cell line |
DE3743138A1 (de) | 1987-12-18 | 1989-09-14 | Mayr Christian Gmbh & Co Kg | Schleifringlose, elektromagnetische ueberlastkupplung |
MY109299A (en) * | 1990-08-15 | 1996-12-31 | Virogenetics Corp | Recombinant pox virus encoding flaviviral structural proteins |
US5843456A (en) | 1991-03-07 | 1998-12-01 | Virogenetics Corporation | Alvac poxvirus-rabies compositions and combination compositions and uses |
KR100242671B1 (ko) | 1991-03-07 | 2000-03-02 | 고돈 에릭 | 유전학적으로 처리한 백신 균주 |
US5382425A (en) | 1992-01-13 | 1995-01-17 | Syntro Corporation | Recombinant swinepox virus |
FR2702373B1 (fr) | 1993-03-08 | 1996-06-07 | Rhone Merieux | Emulsions vaccinales fluides eau-dans-l'huile contenant une huile métabolisable. |
EP0668355B1 (en) | 1993-12-20 | 1999-04-07 | Akzo Nobel N.V. | Vaccine for the protection of horses against equine herpesvirus infection |
FR2728795B1 (fr) | 1994-12-30 | 1997-03-21 | Rhone Merieux | Vaccin vivant recombinant aviaire, utilisant comme vecteur un virus herpes aviaire |
FR2728794B1 (fr) | 1994-12-30 | 1997-03-21 | Rhone Merieux | Vaccin recombinant aviaire a base de virus herpes aviaire, notamment contre la maladie de gumboro |
EP0826063A1 (en) | 1995-04-25 | 1998-03-04 | Vical Incorporated | Single-vial formulations of dna/lipid complexes |
DE69740033D1 (de) | 1996-07-03 | 2010-12-09 | Merial Inc | Rekombinanter hunde-adenovirus 2 (cav2), welcher exogene dna enthält |
FR2751227B1 (fr) | 1996-07-19 | 1998-11-27 | Rhone Merieux | Formule de vaccin polynucleotidique contre les pathologies canines, notamment les pathologies respiratoires et digestives |
FR2751225B1 (fr) | 1996-07-19 | 1998-11-27 | Rhone Merieux | Formule de vaccin polynucleotidique aviaire |
FR2751226B1 (fr) | 1996-07-19 | 1998-11-27 | Rhone Merieux | Formule de vaccin polynucleotidique contre les pathologies du cheval |
ATE292980T1 (de) | 1996-10-11 | 2005-04-15 | Univ California | Immunostimulierende oligonucleotidekonjugate |
CZ300172B6 (cs) * | 1997-02-28 | 2009-03-04 | Acambis Inc. | Chimerický živý, infekcní, oslabený virus, lécivopro prevenci nebo lécbu flavivirových infekcí s jeho obsahem a molekula nukleové kyseliny jej kódující |
US7227011B2 (en) * | 1998-06-04 | 2007-06-05 | United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services, Centers For Disease Control And Prevention | Nucleic acid vaccines for prevention of flavivirus infection |
US6294176B1 (en) | 1998-07-10 | 2001-09-25 | Schering-Plough Veterinary Corp. | Recombinant raccoonpox virus and uses thereof as a vaccine in mammalian and avian species |
US6416763B1 (en) * | 1998-08-28 | 2002-07-09 | Hawaii Biotechnology Group, Inc. | Recombinant nonstructural protein subunit vaccine against flaviviral infection |
US6645740B1 (en) | 1999-06-10 | 2003-11-11 | Merial Limited | Nucleic acids encodings equine GM-CSF |
JP2003502345A (ja) | 1999-06-10 | 2003-01-21 | メリアル | ペットまたはスポ−ツ用動物のためのdnaワクチン |
FR2796397B1 (fr) | 1999-07-16 | 2006-09-01 | Merial Sas | Genes de calicivirus felin et vaccins notamment vaccins recombines |
-
2001
- 2001-04-06 FR FR0104737A patent/FR2823222B1/fr not_active Expired - Lifetime
-
2002
- 2002-04-05 EP EP02759818.4A patent/EP1377660B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 2002-04-05 SI SI200231069A patent/SI1377660T1/sl unknown
- 2002-04-05 BR BRPI0208896A patent/BRPI0208896B1/pt active IP Right Grant
- 2002-04-05 ES ES02759818.4T patent/ES2566044T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2002-04-05 PL PL365210A patent/PL207584B1/pl unknown
- 2002-04-05 CA CA2448796A patent/CA2448796C/en not_active Expired - Lifetime
- 2002-04-05 IL IL15820402A patent/IL158204A0/xx unknown
- 2002-04-05 PL PL391444A patent/PL210306B1/pl unknown
- 2002-04-05 WO PCT/FR2002/001200 patent/WO2002081621A2/fr active Search and Examination
- 2002-04-05 JP JP2002579985A patent/JP4426761B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 2002-04-05 DK DK02759818.4T patent/DK1377660T3/en active
- 2002-04-05 ES ES15162832T patent/ES2767413T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2002-04-05 RU RU2003132455/13A patent/RU2283138C2/ru active
- 2002-04-05 AU AU2002307971A patent/AU2002307971B2/en not_active Expired
- 2002-04-05 MX MXPA03008998A patent/MXPA03008998A/es active IP Right Grant
- 2002-04-05 EP EP15162832.8A patent/EP2979705B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 2002-04-05 HU HU0401868A patent/HU230122B1/hu active Protection Beyond IP Right Term
-
2003
- 2003-09-30 ZA ZA2003/07620A patent/ZA200307620B/en unknown
- 2003-10-01 IL IL158204A patent/IL158204A/en active IP Right Grant
-
2004
- 2004-07-02 HK HK04104755.3A patent/HK1061868A1/zh not_active IP Right Cessation
- 2004-07-02 HK HK16106775.0A patent/HK1219412A1/zh not_active IP Right Cessation
-
2007
- 2007-08-14 IL IL185263A patent/IL185263A0/en active IP Right Grant
-
2015
- 2015-09-18 HU HUS1500047C patent/HUS1500047I1/hu unknown
-
2016
- 2016-04-06 CY CY20161100275T patent/CY1117676T1/el unknown
- 2016-04-19 FR FR16C0014C patent/FR16C0014I2/fr active Active
- 2016-04-20 NL NL300806C patent/NL300806I2/nl unknown
- 2016-04-20 LT LTPA2016011C patent/LTC1377660I2/lt unknown
- 2016-04-26 BE BE2016C021C patent/BE2016C021I2/fr unknown
- 2016-04-26 LU LU93048C patent/LU93048I2/xx unknown
- 2016-05-20 CY CY2016018C patent/CY2016018I2/el unknown
Also Published As
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US8535682B2 (en) | Recombinant vaccine against West Nile Virus | |
TWI399213B (zh) | 抗藍舌病病毒之重組疫苗 | |
KR102526219B1 (ko) | Fmdv 재조합 백신 및 이의 용도 | |
US20030104008A1 (en) | Recombinant vaccine against west nile virus | |
JP2009528361A (ja) | マイコプラズマ・ハイオニューモニエワクチン | |
ES2767413T3 (es) | Vacuna contra el virus de la fiebre del Nilo | |
JP2018529718A (ja) | イヌパルボウイルス(cpv)ウイルス様粒子(vlp)ワクチン及びその使用 | |
US20140120133A1 (en) | Vaccine Against African Horse Sickness Virus | |
US20040037848A1 (en) | Recombinant vaccine against West Nile Virus | |
WO2008097267A2 (en) | Vaccines against vesicular stomatitis | |
US20050031641A1 (en) | Recombinant vaccine against West Nile Virus | |
BRPI0210229B1 (pt) | kit de vacinação, usos de plasmídeos e uso de vetores virais |