PL205069B1 - Sposób wytwarzania napoju trwałego w temperaturze otoczenia - Google Patents

Sposób wytwarzania napoju trwałego w temperaturze otoczenia

Info

Publication number
PL205069B1
PL205069B1 PL358642A PL35864201A PL205069B1 PL 205069 B1 PL205069 B1 PL 205069B1 PL 358642 A PL358642 A PL 358642A PL 35864201 A PL35864201 A PL 35864201A PL 205069 B1 PL205069 B1 PL 205069B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
pasteurization
ethyl
adjunct
acetate
tea
Prior art date
Application number
PL358642A
Other languages
English (en)
Other versions
PL358642A1 (pl
Inventor
Roy Michael Kirby
Hazel Steels
Malcolm Stratford
Original Assignee
Unilever Nv
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Unilever Nv filed Critical Unilever Nv
Publication of PL358642A1 publication Critical patent/PL358642A1/pl
Publication of PL205069B1 publication Critical patent/PL205069B1/pl

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23F—COFFEE; TEA; THEIR SUBSTITUTES; MANUFACTURE, PREPARATION, OR INFUSION THEREOF
    • A23F3/00—Tea; Tea substitutes; Preparations thereof
    • A23F3/16—Tea extraction; Tea extracts; Treating tea extract; Making instant tea
    • A23F3/163—Liquid or semi-liquid tea extract preparations, e.g. gels or liquid extracts in solid capsules
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23B—PRESERVATION OF FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES; CHEMICAL RIPENING OF FRUIT OR VEGETABLES
    • A23B70/00—Preservation of non-alcoholic beverages
    • A23B70/10—Preservation of non-alcoholic beverages by addition of preservatives
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23B—PRESERVATION OF FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES; CHEMICAL RIPENING OF FRUIT OR VEGETABLES
    • A23B70/00—Preservation of non-alcoholic beverages
    • A23B70/30—Preservation of non-alcoholic beverages by heating

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Non-Alcoholic Beverages (AREA)
  • Food Preservation Except Freezing, Refrigeration, And Drying (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Tea And Coffee (AREA)

Description

Opis wynalazku
Niniejszy wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania napoju trwałego w temperaturze otoczenia, w szczególnoś ci napoju na bazie herbacie, który to sposób obejmuje dodawanie do napoju jednego lub więcej niż jednego pomocniczego dodatku pasteryzującego, który staje się grzybobójczy po aktywowaniu ciepłem.
Znany stan techniki
W ostatnich latach konsumentom chcącym zaspokoić pragnienie gotowymi napojami oferuje się stale zwiększający się asortyment napojów. Obecnie, wielu z nich zwraca się od dobrze znanych napojów bezalkoholowych, do napojów na bazie herbaty, które mogą być gazowane lub niegazowane, i oferują „naturalne orzeźwienie.
Herbata zawiera złożoną kombinację enzymów, biochemicznych produktów pośrednich i elementów strukturalnych zwykle związanych ze wzrostem roślin i fotosyntezą. Zawiera więc wiele substancji naturalnych nadających herbacie unikalny smak, cierpkość, zapach i barwę. Wiele z nich powstaje wskutek reakcji utleniania zachodzących podczas tak zwanego etapu fermentacji przy wytwarzaniu czarnej herbaty. Wytwarzanie herbaty od dawna prowadzi się tradycyjnymi metodami obróbki tylko z podstawowym zrozumieniem zachodzących chemicznych procesów. W konsekwencji wytwórcy odkryli, że wytwarzanie trwałych w temperaturze otoczenia napojów na bazie herbaty w dużych objętościach, wymaganych dla konkurowania z bardziej tradycyjnymi napojami bezalkoholowymi, nie jest tylko prostą kwestią aromatyzowania herbatą bezalkoholowych napojów.
Smak-zapach napojów na bazie herbaty i ich trwałość polegają na trwałości napoju jako całości. Grzyby, w tym drożdże i pleśnie, które mogą rozwijać się w napojach na bazie herbaty i w innych napojach bezalkoholowych, można niszczyć przez obróbkę cieplną, lub przynajmniej kontrolować ich wzrost przez stosowanie środków konserwujących. Pewne napoje na bazie herbaty pasteryzuje się, a następnie butelkuje do szklanych lub specjalnych odpornych na ciepło pojemników z PET. Taki proces jest znany jako „napełnianie na gorąco („hot filling). Niestety jest to operacja kosztowna, która dostarcza wielkiej ilości odpadów szkodliwych dla środowiska. Dlatego dla wytwórców bardziej atrakcyjne byłoby gdyby mogli pakować produkty na bazie herbaty do standardowych pojemników z PET, które mogą mieć pojemność od pojedynczej jednostki serwowanej konsumentowi do opakowań będących jej wielokrotnościami i utrzymywać trwałość produktu za pomocą dopasowanego układu smakowo-zapachowego i konserwującego. Taki sposób jest znany jako „napełnianie na zimno („cold filling). Jest to także użyteczne dlatego, że można łatwo używać koncentratu lub proszku herbaty.
Niestety stosowanie zwykłych środków konserwujących może wpływać szkodliwie na smak-zapach napoju na bazie herbaty. Ma to szczególnie miejsce w przypadku siarczynów i sorbinianów. Dodając silne środki zapachowe, takie jak cytryna można zrównoważyć smak-zapach środka konserwującego. Jednak konsumenci są wrażliwi na doświadczanie innych smaków-zapachów. Ponadto, niektórzy z tych konsumentów, którzy poszukują produktów na bazie herbaty, uznając je za zdrowsze i za naturalną alternatywę dla napojów bezalkoholowych, czasami postrzegają środki konserwujące jako rodzaj syntetycznych dodatków, których raczej powinno się unikać.
W wielu krajach obowiązują przepisy zabraniające stosowania w żywności i napojach pewnych dodatków do żywności, włącznie z pewnymi środkami grzybobójczymi (fungicydami) i środkami konserwującymi. Takie przepisy mogą się bardzo różnić, lecz istnieje wyraźna tendencja aby żywność zawierała tylko niewielki asortyment i małą ilość chemicznych środków grzybobójczych i konserwujących, szczególnie środków syntetycznych,
Istnieje zapotrzebowanie na sposób wytwarzania napojów trwałych w temperaturze otoczenia, o przyjemnym smaku-zapachu, mających niską zawartość syntetycznych środków konserwujących.
Obecnie, w odpowiedzi na takie zapotrzebowanie twórcy niniejszego wynalazku znaleźli układ grzybobójczy dla napojów na bazie herbaty, nie zawierający żadnych syntetycznych środków grzybobójczych czy konserwujących. Układ grzybobójczy może być także stosowany do stabilizowania napojów nie na bazie herbaty, w tym napojów owocowych i bezalkoholowych.
Przedmiot wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania napoju trwałego w temperaturze otoczenia, nadającego się do napełniania na zimno, charakteryzujący się tym, że obejmuje etapy w których:
dodaje się do napoju przynajmniej jeden pomocniczy dodatek pasteryzujący, który nie wykazuje żadnej oznaczalnej aktywności grzybobójczej w temperaturach pomiędzy 0 a 40°C, lecz wykazuje aktywność grzybobójczą po ogrzaniu do temperatury pomiędzy 40 a 65°C, w szczególności wybrany
PL 205 069 B1 z grupy składają cej się z: cykloheksanopropionianu allilu, heksanianu amylu, oktanianu amylu, benzoiny, benzoesanu benzylu, salicylanu benzylu, octanu bornylu, heptanianu butylu, laurynianu butylu,
10-undecenianu butylu, propionianu karwylu, β-kariofilenu, octanu decylu, maślanu decylu, propionianu decylu, 2-dodecenalu, dekanianu etylu, 2-decenianu etylu, laurynianu etylu, nonanianu etylu, tridekanianu etylu, undekanianu etylu, 10-undecenianu etylu, octanu geranylu, geranyloacetonu, maślanu geranylu, propionianu geranylu, maślanu heptylu, ω-6-heksadekalaktonu, heksadekanolu, heksanianu heksylu, oktanianu heksylu, heksanianu izoamylu, laurynianu izoamylu, salicylanu izoamylu, kwasu laurynowego, alkoholu laurylowego, aldehydu laurynowego, octanu laurylu, octanu linalilu, propionianu linalilu, dekanianu metylu, laurynianu metylu, mirystynianu metylu, nonanianu metylu, undekanianu metylu, 9-undecenianu metylu, aldehydu mirystynowego, kwasu mirystynowego, nerolidolu, maślanu nerylu, izomaślanu nerylu, octanu nonylu, maślanu oktylu, ω-pentadekalaktonu, kwasu pentadekanowego, pentadekanolu, heksanianu fenetylu, oktanianu renetylu, izomaślanu 2-fenoksyetylu, tetradekanolu, tridekanalu, kwasu tridekanowego, tridekanolu, 2-tridecenalu i 2-undekanonu, przy czym stężenie pomocniczego dodatku pasteryzującego jest nie większe niż 1 mmol, korzystnie nie większe niż 0,1 mmola; i podnosi się temperaturę napoju do temperatury pomiędzy 40 a 65°C, z aktywowaniem grzybobójczej aktywności pomocniczego dodatku pasteryzującego.
Korzystnie stosowany pomocniczy dodatek pasteryzujący (adjunkt) nie wykazuje żadnej oznaczalnej aktywności grzybobójczej w temperaturach pomiędzy 20 a 35°C.
Także korzystnie stosowany pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazuje aktywność grzybobójczą podczas ogrzewania do temperatury pomiędzy 45 a 55°C.
Szczególnie korzystnie pomocniczy dodatek pasteryzujący jest wybrany z grupy składającej się z: cykloheksanopropionianu allilu, heksanianu amylu, heptanianu butylu, octanu decylu, propionianu decylu, 2-dodecenalu, dekanianu etylu, 2-decenianu etylu, nonanianu etylu, 10-undecenianu etylu, octanu geranylu, geranyloacetonu, maślanu geranylu, propionianu geranylu, maślanu heptylu, heksanianu heksylu, heksanianu izoamylu, kwasu laurynowego, alkoholu laurylowego, aldehydu laurynowego, dekanianu metylu, laurynianu metylu, nonanianu metylu, undekanianu metylu, 9-undecenianu metylu, kwasu mirystynowego, nerolidolu, izomaślanu nerylu, octanu nonylu, maślanu oktylu, heksanianu fenetylu, izomaślanu 2-fenoksyetylu, tridekanalu, kwasu tridekanowego, tridekanolu, 2-tridecenalu i 2-undekanonu, a zwłaszcza jest wybrany z grupy składającej się z:
octanu decylu, kwasu laurynowego, aldehydu laurynowgo, alkoholu laurylowego, 2-dodecenalu, 2-decenianu etylu, geranyloacetonu i octanu geranylu.
Korzystnie pomocniczy dodatek pasteryzujący jest związkiem o ciężarze cząsteczkowym w zakresie pomiędzy 170 a 230 [daltonów] i wartości logPokt pomiędzy 3,5 a 5,5.
Korzystnie napojem stosowanym w sposobie według wynalazku jest napój na bazie herbaty, a zwłaszcza napój zawierający 0,1 do 3% substancji stałych z herbaty.
W korzystnym wykonaniu pomocniczy dodatek pasteryzujący, po zaktywowaniu ciepłem, staje się także związkiem przeciwbakteryjnym.
Szczególnie korzystne pomocnicze dodatki pasteryzujące obejmują octan decylu, kwas laurynowy, aldehyd laurynowy, alkohol laurylowy, 2-dodecenal, 2-dekanian etylu, geranyloaceton, octangeranylowy, które zawarte są korzystnie w stężeniach nie większych niż 1 mmol, korzystnie nie większych niż 0,1 mmol.
Inaczej niż w przypadku sposobów stosowanych do stabilizacji napojów opartych na procesie pasteryzacji, niniejszy sposób nie jest zależny ani od czasu, ani temperatury.
„Napój w rozumieniu niniejszego wynalazku oznacza dowolny napój, inny niż woda, i obejmuje zimne napoje bezalkoholowe, napoje owocowe, napoje oparte na kawie i napoje oparte na herbacie.
„Herbata dla celów niniejszego wynalazku oznacza materiał liściasty z rośliny Camellia sinensis var. sinensis lub Camellia sinensis var. assamica. Określenie „herbata ma obejmować także produkt zmieszania dwu lub więcej spośród tych herbat.
W celu uniknięcia wątpliwości co do słowa „zawierający, należy przyjąć że ma ono oznaczać, że „zawiera lecz nie koniecznie „składa się z lub „składające się z. Innymi słowy, wymienione etapy lub opcje nie muszą być wyczerpujące.
Z wyjątkiem przykładów wykonania i przykładów porównawczych, lub gdzie tego wyraźnie nie podano, wszystkie liczby w opisie wskazujące na ilości lub stężenia materiałów powinny być rozumiane jako zmodyfikowane słowem „około.
PL 205 069 B1
Szczegółowy opis rysunków
Figura 1 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, octanu decylu, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty.
Figura 2 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, kwasu laurynowego, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty,
Figura 3 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, alkoholu laurylowego, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty.
Figura 4 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, aldehydu laurynowego, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty.
Figura 5 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, octanu geranylu, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty.
Figura 6 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, geranyloacetonu, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty.
Figura 7 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, 2-dekanianu etylu, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty,
Figura 8 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, mieszaniny octanu decylu: kwasu laurynowego w stosunku 9:1, zastosowanej w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty.
Figura 9 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego zastosowanego w ilości 0-100 ppm w syntetycznym zimnym napoju bezalkoholowym, nie zawierającym herbaty.
Figura 10 przedstawia wpływ na bakterie dwóch czynników działania ciepła + pomocniczego dodatku pasteryzującego, octanu decylu lub kwasu laurynowego, zastosowanych w ilości 0-100 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty lub syntetycznym zimnym napoju bezalkoholowym.
Figura 11 przedstawia wykres rozrzutu ciężaru cząsteczkowego i współczynnika podziału związków zdolnych do działania jako pomocnicze dodatków pasteryzujących.
Figury 12 do 47 przedstawiają wpływ działania pomocniczych dodatków pasteryzujących o dużym wpływie pasteryzującym, wymienionych w tabeli 1, badanych w pożywce YEPD (podłoże hodowlane z wyciągiem z drożdży peptonem i dekstrozą) o pH 3,4.
Figury 48 do 63 przedstawiają wpływ działania pomocniczych dodatków pasteryzujących o umiarkowanym wpływie pasteryzującym, wymienionych w tabeli 1, badanych w pożywce YEPD (podłoże hodowlane z wyciągiem z drożdży peptonem i dekstrozą) o pH 3,4.
Figury 64 do 77 przedstawiają wpływ działania pomocniczych dodatków pasteryzujących o małym wpływie pasteryzującym, wymienionych w tabeli 1, badanych w pożywce YEPD (podłoże hodowlane z wyciągiem z drożdży peptonem i dekstrozą) o pH 3,4.
Figury 78 do 82 przedstawiają wpływ działania związków kontrolnych, wykazujących mały wpływ jako pomocnicze dodatki pasteryzujące, badanych w pożywce YEPD (podłoże hodowlane z wyciągiem z drożdży peptonem i dekstrozą) o pH 3,4.
Szczegółowy opis wynalazku
Niniejszy wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania napoju trwałego w temperaturze otoczenia. Sposób obejmuje dodawanie do napoju przynajmniej jednego pomocniczego dodatku pasteryzującego, który nie wykazuje żadnej oznaczalnej aktywności grzybobójczej w temperaturach między 0 a 40 stopni Celsjusza, lecz wykazuje aktywność grzybobójczą po ogrzaniu do temperatury między 40 a 65 stopni Celsjusza, i podnoszenie temperatury napoju do temperatury między 40 a 65 stopni Celsjusza w celu uczynnienia aktywności grzybobójczej pomocniczego dodatku pasteryzującego.
Pasteryzacja określa sposób unieczynniania enzymów i zmniejszania populacji mikroorganizmów, który zachodzi podczas ogrzewania napoju do temperatury minimum między 62,5 a 100°C przez określony czas. Lepsze wyniki pasteryzacji uzyskuje się stosując wyższe temperatury i dłuższe czasy obróbki. W przeciwieństwie do tego niniejszy wynalazek opiera się na stwierdzeniu, że pewne substancje chemiczne, które nie są uważane, za wykazujące oznaczalną aktywność grzybobójczą w temperaturze pokojowej lub do niej zbliżonej, w rzeczywistości wykazują one aktywność grzybobójczą po ogrzaniu do temperatury około 50°C. Oznacza to, że napoje zawierające takie związki mogą zostać ogrzane do temperatury nieco poniżej 65°C a populacja mikroorganizmów może zostać zmniejszona do poziomu, który byłby oczekiwany do uzyskania przez pasteryzację. Dlatego te związki chemiczne mogą być opisane jako pomocnicze dodatki pasteryzujące. Ale inaczej niż w przypadku spoPL 205 069 B1 sobów uzyskiwania trwałości napojów opartych na procesie pasteryzacji, wydajność niniejszego sposobu nie jest zależna od czasu i temperatury.
Twórcy niniejszego wynalazku początkowo stwierdzili, że związki, takie jak octan decylu, kwas laurynowy i dekanian metylu nie wykazują aktywności grzybobójczej w temperaturze 30°C a wykazują znaczną aktywność grzybobójczą po ogrzaniu do temperatury 50°C.
To stwierdzenie dało im podstawę do sprawdzenia innych związków, które nie wykazywały aktywności grzybobójczej w temperaturze 30°C. Stwierdzili, że związki wymienione w tabeli 1 poniżej, faktycznie wykazują znaczną aktywność grzybobójczą po ogrzaniu do temperatury 50°C. W tabeli 1, dla każdego związku, podane zostało minimalne stężenie hamujące (MIC), ciężar cząsteczkowy (M.W.), logPokt i ocena jego działania pasteryzującego. Związek jest uważany, za mający duże działanie, jeśli do uzyskania znacznej aktywności grzybobójczej wymagane jest jego małe stężenie. Wartość logPokt, tj, logarytmu współczynnika podziału omawianego związku w oktanolu a więc i pomiar jego aktywności grzybobójczej, oznaczano z wykorzystaniem oprogramowania CHEMDRAW™ z pakietu oprogramowania CHEMOFFICE ULTRA ENHANCED 2000™ (wersja 5.5), dostępnego w handlu z formy CambridgeSoft.
T a b e l a 1
Związki, które wykazują aktywność grzybobójczą w temperaturze 50°C lecz nie wykazują jej w temperaturze 30°C
Związek MIC50 (mmole) M.W logPokt Działanie pasteryzujące
1 2 3 4 5
cykloheksanopropionian allilu 1 196 3.49 duże
heksanian amylu 2 186 3.88 duże
oktanian amylu 60 214 4.79 umiarkowane
benzoina 10 212 2.53 10
benzoesan benzylu 20 212 3.00 umiarkowane
salicylan benzylu 50 228 2.61 małe
octan bornylu 2 196 2.66 małe
heptanian butylu 5 186 3.88 wysokie
laurynian butylu 100 256 6.16 małe
10-undecenian butylu 40 240 5.46 umiarkowane
propionian karwylu 5 208.3 2.81 umiarkowane
β-kariofilen 70 204 - małe
octan decylu 1 200 4.34 duże
maślan decylu 70 228 5.25 małe
propionian decylu 50 214.35 4.79 wysokie
2-dodecenal <0.05 (9 ppm) 182 4.44 wysokie
dekanian etylu 40 200 4.34 duże
2-decenian etylu 1 198 4.16 duże
laurynian etylu 80 228 5.25 umiarkowane
nonanian etylu 10 186 3.88 duże
PL 205 069 B1 cd. tabeli 1
1 2 3 4 5
tridekanian etylu 100 242 5.71 małe
undekanian etylu 50 214 4.79 umiarkowane
10-undecenian etylu 50 212 4.55 wysokie
octan geranylu 1 196 - duże
geranyloaceton 0.5 194 - duże
maślan geranylu 40 224 - duże
propionian geranylu 12 210 - duże
maślan heptylu 2 186 3.88 duże
ω-6-heksadekalakton 50 252 - małe
heksadekanol 100 242 6.48 małe
heksanian heksylu 30 201 4.34 duże
oktanian heksylu 10 228 5.25 umiarkowane
heksanian izoamylu 5 186 3.63 duże
laurynian izoamylu 120 270 6.37 małe
salicylan izoamylu 15 208 2.71 umiarkowane
kwas laurynowy 0.1 (20 ppm) 200 4.49 duże
alkohol laurylowy 0.1 (18.6 ppm) 186 4.66 duże
aldehyd laurynowy 0.2 (36 ppm) 184 4.61 duże
octan laurylu 40 228 5.25 umiarkowane
octan linalilu 10 196 2.78 umiarkowane
propionian linalilu 20 210 3.43 umiarkowane
dekanian metylu 2 18 4.05 duże
laurynian metylu 40 214 4.96 duże
mirystynian metylu 60 242 5.88 małe
nonanian metylu 2 172 3.6 duże
undekanian metylu 50 200 4.51 duże
9-undecenian metylu 40 198 3.79 duże
aldehyd mirystynowy 40 212 5.53 umiarkowane
kwas mirystynowy 50 228 5.41 duże
nerolidol 1.5 222 4.08 duże
maślan nerylu 50 224 2.88 umiarkowane
izomaślan nerylu 30 224 3.94 duże
PL 205 069 B1 cd. tabeli 1
1 2 3 4 5
octan nonylu 5 186 3.88 duże
maślan oktylu 40 200 4.34 duże
ω-pentadekalakton 60 240 - małe
kwas pentadekanowy 80 242 5.86 małe
pentadekanol 75 228 6.03 małe
neksanian fenetylowy 10 220 3.99 duże
oktanian fenetylowy 40 248 4.90 umiarkowane
izomaślan 2-fenoksyetylowy 0.1 226 5.04 duże
tetradekanol 50 214 5.57 umiarkowane
tridekanal 5 200 5.07 duże
kwas tridekanowy 0.2 214 4.95 duże
tridekanol 0.05 198 5.11 duże
2-tridecenal <0.05 (9.8 ppm) 196 4.90 duże
2-undekanon 1 170 3.68 duże
Wiele tak zwanych pomocniczych dodatków pasteryzujących dostarcza skutecznej aktywności grzybobójczej przy ogrzaniu do temperatury 50°C lub innych temperatur poniżej 65°C, jednak pewne związki mogą okazać się bardziej odpowiednie niż inne, w znaczeniu ich wpływu na smak napoju opartego na herbacie. Zgodnie z tym twórcy wynalazku zidentyfikowali następujące związki, jako korzystne pomocnicze dodatki pasteryzujące do stosowania w sposobie według wynalazku: cykloheksanopropionian allilu, heksanian amylu, heptanian butylu, octan decylu, propionian decylu, 2-dodecenal, dekanian etylu, 2-decenian etylu, nonanian etylu, 10-undecenian etylu, octan geranylu, geranyloaceton, maślan geranylu, propionian geranylu, maślan heptylu, heksanian heksylu, heksanian izoamylu, kwas laurynowy, alkohol laurylowy, aldehyd laurynowy, dekanian metylu, laurynian metylu, nonanian metylu, undekanian metylu, 9-undecenian metylu, kwas mirystynowy, nerolidol, izomaślan nerylu, octan nonylu, maślan oktylu, heksanian fenetylu, izomaślan 2-fenoksyetylu, tridekanal, kwas tridekanowy, tridekanol, 2-tridecenal i 2-undekanon. Pomocnicze dodatki pasteryzujące zawarte są korzystnie w stężeniu nie większym niż 1 mmol, a zwłaszcza nie większym niż 0.1 mmola.
Z wymienionej listy szczególnie korzystne są octan decylu, kwas laurynowy, aldehyd laurynowy, alkohol laurylowy, 2-dodecenal, 2-decenian etylu, geranyloaceton i octan geranylu.
Nie chcąc się wiązać żadną teorią, uważa się, że sposób działania grzybobójczego tych pomocniczych dodatków pasteryzujących, przynajmniej w napojach opartych na herbacie, zachodzi przez rozrywanie błon komórkowych mikroorganizmów. Sądzi się, że w wysokich temperaturach związki te są zdolne do unikania do błon komórkowych i powodowania śmierci mikroorganizmu przez lizę komórki.
Twórcy wynalazku zakładali, że wyżej wspomniane związki mogą działać jako pomocnicze dodatki pasteryzujące nie tylko w ten sposób. Zakładali, że można określić skuteczne pomocnicze dodatki pasteryzujące na podstawie ich parametrów ilościowej zależności aktywności od struktury (QSAR). Ta definicja obejmowałaby związki jeszcze dotychczas nie znane. Wykreślono więc pełny wykaz pomocniczych dodatków pasteryzujących, zbadanych wyżej, w funkcji wielkości ich ciężarów cząsteczkowych i wartości logPokt podany na Fig. 11. Z wyników przedstawionych na tej figurze twórcy wynalazku przewidują, że korzystne pomocnicze dodatki pasteryzujące mogą być określone jako dodatki o ciężarze cząsteczkowym między 170 a 230 daltonów i wartości logPokt między 3,5 a 5,5.
Jakość użytej wody może poważnie naruszyć trwałość napoju. Jest to ważny czynnik przy wytwarzaniu napoju, w szczególności napoju opartego na herbacie przeznaczonych do napełniania na
PL 205 069 B1 zimno. Dla tego celu często będzie ważne zminimalizowanie zawartości drożdży w wodzie stosowanej we wszystkich etapach produkcji. Sposoby znane ze stanu techniki obejmują chlorowanie/odchlorowywanie i naświetlanie promieniami UV.
Napoje trwałe w temperaturze otoczenia wytwarzane sposobem według wynalazku mogą być niegazowane lub gazowane dwutlenkiem węgla. Wprowadzanie dwutlenku węgla wydaje się zapewniać pewien wpływ konserwujący, a więc receptura produktu z dwutlenkiem węgla nie musi być taka sama jak niegazowanego.
Wiadomo, że sama herbata ma pewne własności przeciwbakteryjne i przeciwirusowe. Jednak dla stwierdzenia początku tłumienia wzrostu drożdży i pleśni musi się przekroczyć stężenie około 3%. W stężeniach niższych niż podane, które są typowe dla napojów opartych na herbacie, herbata działa jak środek odżywczy, który zwiększa możliwość psucia się napojów ze względu na zawartość mikroorganizmów.
Większość mikroorganizmów, które typowo mogą rosnąć w napojach opartych na herbacie, żywi się cukrem, źródłem azotu, tlenem, cynkiem, magnezem, potasem, fosforanami i witaminami. Korzystne jest więc ograniczenie zawartości cukru do 8 do 10 stopni brixa, jednak można stosować do 60 stopni brixa, gdy produkt jest mieszanką herbaty. Zawartość tlenu można zminimalizować przez wstępną pasteryzację lub pewną obróbkę cieplną lub przez przedmuchiwanie azotem. Zawartość substancji mineralnych napoju opartego na herbacie można zminimalizować, stosując EDTA, cytrynian lub zmiękczacz wody. Na przykład, mikroorganizmy mogą rozwijać się w herbacie, jeśli stężenie jonów magnezu przekracza 0.2 ppm, i potrzebują one tylko śladowych ilości cynku. Stosując cytrynian do tego celu, należy to robić z ostrożnością, ponieważ wpływa on na smak-zapach.
Wynalazek zostanie teraz opisany w poniższych przykładach, w nawiązaniu do towarzyszących rysunków.
P r z y k ł a d 1
Doświadczenia z herbatą gotową do spożycia
Figura 1 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, octanu decylu, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml herbaty RDT, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 2 minuty przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 14 dni w temperaturze 25°C, w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży, tak jak i ogrzewanie do 60°C bez pomocniczego dodatku pasteryzującego. Ogrzewanie + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny efekt synergiczny.
Figura 2 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, kwasu laurynowego, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml herbaty RDT, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 2 minuty przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 14 dni w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży, tak jak i ogrzewanie do temperatury 60°C bez pomocniczego dodatku pasteryzującego. Ogrzewanie + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny.
Figura 3 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, alkoholu laurylowego, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml herbaty RDT, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 2 minuty przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 14 dni w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży, tak
PL 205 069 B1 jak i ogrzewanie do temperatury 60°C bez pomocniczego dodatku pasteryzującego. Ogrzewanie + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny.
Figura 4 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, aldehydu laurynowego, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml herbaty RDT, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 2 minuty przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 14 dni w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populacje drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży, tak jak i ogrzewanie do temperatury 60°C bez pomocniczego dodatku pasteryzującego. Ogrzewanie + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny.
Figura 5 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, octanu geranylu, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml herbaty RDT, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki otrzymywano w danej temperaturze przez 2 minuty przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 14 dni w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży, tak jak i ogrzewanie do temperatury 60°C bez pomocniczego dodatku pasteryzującego. Ogrzewanie + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny.
Figura 6 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, geranyloacetonu, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml herbaty RDT, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 2 minuty przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 14 dni w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży, tak jak i ogrzewanie do temperatury 60°C bez pomocniczego dodatku pasteryzującego. Ogrzewanie + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny.
Figura 7 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, 2-decenianu etylu, zastosowanego w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml herbaty RDT, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 2 minuty przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 14 dni w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży, tak jak i ogrzewanie do temperatury 60°C bez pomocniczego dodatku pasteryzującego. Ogrzewanie + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny.
Figura 8 przedstawia wyniki dla pomocniczego dodatku pasteryzującego, mieszaniny octanu decylu/kwasu laurynowego 9:1, zastosowanych w ilości 0-200 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml herbaty RDT, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 2 minuty przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 14 dni w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży, tak jak i ogrzewanie do temperatury 60°C bez pomocniczego dodat10
PL 205 069 B1 ku pasteryzującego. Ogrzewanie + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny.
P r z y k ł a d 2
Doświadczenia z syntetycznym napojem bezalkoholowym
Figura 9 przedstawia wpływ pomocniczych dodatków pasteryzujących, stosowanych w ilości
0-100 ppm w syntetycznym zimnym napoju bezalkoholowym, nie zawierającym herbaty. Syntetyczny napój bezalkoholowy zawierał 8% wagowych glukozy, 3 g/l kwasu cytrynowego, 1 g/l ortofosforanu potasu, 0,1 g/l chlorku magnezu i 0,1 g/l ekstraktu z drożdży. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml zimnego napoju bezalkoholowego, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 2 minuty przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 14 dni w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży. Ogrzewanie w temperaturze 50°C + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny.
P r z y k ł a d 3
Doświadczenie dla bakterii
Figura 10 przedstawia wpływ na bakterie działania ciepła + pomocniczych dodatków pasteryzujących, octanu decylu lub kwasu laurynowego, zastosowanych w ilości 0-100 ppm w herbacie gotowej do picia, zawierającej 0,14% herbaty lub syntetycznym zimnym napoju bezalkoholowym. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml napój bezalkoholowy, pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml bakterii Gluconobacter sp. 222. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 2 minuty przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano następnie przez 14 dni w 25°C w celu umożliwienia wzrostu bakteriom, które przeżyły. Po 14 dniach wizualnie mierzono wzrost. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży, tak jak i ogrzewanie do temperatury 60°C bez pomocniczego dodatku pasteryzującego. Ogrzewanie + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny,
P r z y k ł a d 4
Identyfikacja korzystnych pomocniczych dodatków pasteryzujących
Figura 11 przedstawia wykres rozrzutu ciężaru cząsteczkowego/ współczynnika podziału dla związków zdolnych do działania jako pomocnicze dodatki pasteryzujące. Związki zostały wymienione w tabeli 1, wraz z logPokt (współczynnik podziału) i ciężarem cząsteczkowym (M.W.). Związki zostały ocenione jako pomocnicze dodatki pasteryzujące o dużym, umiarkowanym i małym działaniu pasteryzującym. Związki ocenione jako wykazujące duży efekt, najbardziej korzystne, generalnie wykazywały przynajmniej 5 krotne zmniejszenie MIC, minimalnego stężenia hamującego, w temperaturze 50°C w porównaniu ze stężeniem w temperaturze 30°C.
P r z y k ł a d 5
Doświadczenia z dodatkami pasteryzującymi wykazującymi duży wpływ pasteryzujący
Figury 12 do 47 przedstawiają wpływ działania pomocniczych dodatków pasteryzujących o dużym działaniu pasteryzującym, wymienionych w tabeli 1, badanych w pożywce YEPD (podłoże hodowlane z wyciągiem z drożdży peptonem i dekstrozą) o pH 3,4. Pożywka YEPD zawierała 20 g/l glukozy, 20 g/l peptonu 1,0 g/l ekstraktu z drożdży. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml YEPD, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae, X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 10 minut przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano następnie przez 48 godzin w temperaturze 25°C, w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły i utworzenia oddzielnych kolonii. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży. Ogrzewanie w temperaturze 50°C + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny, powodując szybkie zabicie zakażającego materiału drożdży.
PL 205 069 B1
P r z y k ł a d 6
Doświadczenia z dodatkami pasteryzującymi wykazującymi umiarkowany wpływ pasteryzujący
Figury 48 do 63 przedstawiają wpływ działania pomocniczych dodatków pasteryzujących o umiarkowanym działaniu pasteryzującym, wymienionych w tabeli 1, badanych w pożywce YEPD (podłoże hodowlane z wyciągiem z drożdży peptonem i dekstrozą) o pH 3,4. Pożywka YEPD zawierała 20 g/l glukozy, 20 g/l peptonu i 10 g/l ekstraktu z drożdży. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml YEPD, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 10 minut przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 48 godzin w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły i utworzenia oddzielnych kolonii. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży. Ogrzewanie w temperaturze 50°C + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny, powodując szybkie zabicie zakażającego materiału drożdży.
P r z y k ł a d 7
Doświadczenia z dodatkami pasteryzującymi wykazującymi mały wpływ pasteryzujący
Figury 64 do 77 przedstawiają wpływ działania pomocniczych dodatków pasteryzujących o małym działaniu pasteryzującym, wymienionych w tabeli 1, badanych w pożywce YEPD (podłoże hodowlane z wyciągiem z drożdży peptonem i dekstrozą) o pH 5,4. Pożywka YEPD zawierała 20 g/l glukozy, 20 g/l peptonu i 10 g/l ekstraktu z drożdży. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml YEPD, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 10 minut przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut, Probówki inkubowano przez 48 godzin w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, i utworzenia oddzielnych kolonii. Pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazywał mały wpływ w niskiej temperaturze na wzrost drożdży. Ogrzewanie w temperaturze 50°C + pomocniczy dodatek pasteryzujący wspólnie wykazywały znaczny wpływ synergiczny, powodując szybkie zabicie zakażającego materiału drożdży.
P r z y k ł a d 8
Doświadczenia kontrolne
Figury 78 do 82 przedstawiają wpływ działania związków kontrolnych, wykazujących niewielki wpływ jako pomocnicze dodatki pasteryzujące, badanych w pożywce YEPD (podłoże hodowlane z wyciągiem z drożdży peptonem i dekstrozą) o pH 3,4. Pożywka YEPD zawierała 20 g/l glukozy, 20 g/l peptonu i 10 g/l ekstraktu z drożdży. Rzędy probówek o pojemności 30 ml, zawierających 10 ml YEPD, o pH 3,4, były równoważone w wymaganej temperaturze przez 7 minut w kąpieli wodnej przed szczepieniem 104 komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki utrzymywano w danej temperaturze przez 10 minut przed szybkim schłodzeniem w zimnej wodzie przez 5 minut. Probówki inkubowano przez 48 godzin w temperaturze 25°C w celu umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły i utworzenia oddzielnych kolonii. Związki kontrolne wykazywały zwykły wpływ w niskiej temperaturze na przeżycie drożdży a w temperaturze 50°C wykazywały tylko bardzo niewielkie polepszenie aktywności.

Claims (8)

1. Sposób wytwarzania napoju trwałego w temperaturze otoczenia, nadającego się do napełniania na zimno, znamienny tym, że obejmuje etapy w których:
dodaje się do napoju przynajmniej jeden pomocniczy dodatek pasteryzujący, który nie wykazuje żadnej oznaczalnej aktywności grzybobójczej w temperaturach pomiędzy 0 a 40°C, lecz wykazuje aktywność grzybobójczą po ogrzaniu do temperatury pomiędzy 40 a 65°C, w szczególności wybrany z grupy składającej się z: cykloheksanopropionianu allilu, heksanianu amylu, oktanianu amylu, benzoiny, benzoesanu benzylu, salicylanu benzylu, octanu bornylu, heptanianu butylu, laurynianu butylu, 10-undecenianu butylu, propionianu karwylu, β-kariofilenu, octanu decylu, maślanu decylu, propionianu decyla, 2-dodecenalu, dekanianu etylu, 2-decenianu etylu, laurynianu etylu, nonanianu etylu, tridekanianu etylu, undekanianu etylu, 10-undecenianu etylu, octanu geranylu, geranyloacetonu, maślanu geranylu, propionianu geranylu, maślanu heptylu, ω-6-heksadekalaktonu, heksadekanolu, heksanianu
PL 205 069 B1 heksylu, oktanianu heksylu, heksanianu izoamylu, laurynianu izoamylu, salicylanu izoamylu, kwasu laurynowego, alkoholu laurylowego, aldehydu laurynowego, octanu laurylu, octanu linalilu, propionianu linalilu, dekanianu metylu, laurynianu metylu, mirystynianu metylu, nonanianu metylu, undekanianu metylu, 9-undecenianu metylu, aldehydu mirystynowego, kwasu mirystynowego, nerolidolu, maślanu nerylu, izomaślanu nerylu, octanu nonylu, maślanu oktylu, ω-pentadekalaktonu, kwasu pentadekanowego, pentadekanolu, heksanianu fenetylu, oktanianu fenetylu, izomaślanu 2-fenoksyetylu, tetradekanolu, tridekanalu, kwasu tridekanowego, tridekanolu, 2-tridecenalu i 2-undekanonu, przy czym stężenie pomocniczego dodatku pasteryzującego jest nie większe niż 1 mmol, korzystnie nie większe iż 0,1 mmola; i podnosi się temperaturę napoju do temperatury pomiędzy 40 a 65°C, z aktywowaniem grzybobójczej aktywności pomocniczego dodatku pasteryzującego.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się pomocniczy dodatek pasteryzujący nie wykazujący żadnej oznaczalnej aktywności grzybobójczej w temperaturach pomiędzy 20 a 35°C.
3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się pomocniczy dodatek pasteryzujący wykazujący aktywność grzybobójczą podczas ogrzewania do temperatury pomiędzy 45 a 55°C.
4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się pomocniczy dodatek pasteryzujący wybrany z grupy składającej się z: cykloheksanopropionianu allilu, heksanianu amylu, heptanianu butylu, octanu decylu, propionianu decylu, 2-dodecenalu, dekanianu etylu, 2-decenianu etylu, nonanianu etylu, 10-undecenianu etylu, octanu geranylu, geranyloacetonu, maślanu geranylu, propionianu geranylu, maślanu heptylu, heksanianu heksylu, heksanianu izoamylu, kwasu laurynowego, alkoholu laurylowego, aldehydu laurynowego, dekanianu metylu, laurynianu metylu, nonanianu metylu, undekanianu metylu, 9-undecenianu metylu, kwasu mirystynowego, nerolidolu, izomaślanu nerylu, octanu nonylu, maślanu oktylu, heksanianu fenetylu, izomaślanu 2-fenoksyetylu, tridekanalu, kwasu tridekaowego, tridekanolu, 2-tridecenalu i 2-undekanonu.
5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że stosuje się pomocniczy dodatek pasteryzujący wybrany z grupy składającej się z: octanu decylu, kwasu laurynowego, aldehydu laurynowgo, alkoholu laurylowego, 2-dodecenalu, 2-decenianu etylu, geranyloacetonu i octanu geranylu.
6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się pomocniczy dodatek pasteryzujący będący związkiem o ciężarze cząsteczkowym w zakresie między 170 a 230 i wartości logPokt pomiędzy 3,5 a 5,5.
7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się napój na bazie herbaty.
8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że stosuje się napój zawierający 0,1 do 3% substancji stałych z herbaty.
PL358642A 2000-05-15 2001-05-01 Sposób wytwarzania napoju trwałego w temperaturze otoczenia PL205069B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB0011677.2A GB0011677D0 (en) 2000-05-15 2000-05-15 Ambient stable beverage
PCT/EP2001/004855 WO2001087094A1 (en) 2000-05-15 2001-05-01 Ambient stable beverage

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL358642A1 PL358642A1 (pl) 2004-08-09
PL205069B1 true PL205069B1 (pl) 2010-03-31

Family

ID=9891618

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL358642A PL205069B1 (pl) 2000-05-15 2001-05-01 Sposób wytwarzania napoju trwałego w temperaturze otoczenia

Country Status (17)

Country Link
US (1) US6579556B2 (pl)
EP (1) EP1282368B1 (pl)
JP (1) JP4327401B2 (pl)
CN (1) CN1287694C (pl)
AR (1) AR028453A1 (pl)
AT (1) ATE300191T1 (pl)
AU (1) AU2001254823B2 (pl)
BR (1) BR0109568A (pl)
CA (1) CA2405130C (pl)
DE (1) DE60112277D1 (pl)
GB (1) GB0011677D0 (pl)
HU (1) HUP0302017A2 (pl)
MX (1) MXPA02011242A (pl)
MY (1) MY122828A (pl)
PL (1) PL205069B1 (pl)
WO (1) WO2001087094A1 (pl)
ZA (1) ZA200206146B (pl)

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP5091137B2 (ja) 2005-07-25 2012-12-05 イーコラブ インコーポレイティド 抗菌組成物及び包装された食品の処理方法
CA2611784C (en) * 2005-07-25 2014-09-16 Ecolab Inc. Antimicrobial compositions for use on food products
US8445419B2 (en) 2005-07-25 2013-05-21 Ecolab Usa Inc. Antimicrobial compositions for use on food products
US20080274242A1 (en) * 2006-07-21 2008-11-06 Ecolab Inc. Antimicrobial compositions and methods for treating packaged food products
WO2007092632A2 (en) * 2006-02-09 2007-08-16 Elevance Renawable Sciences, Inc. Surface coating compositions and methods
US20080033026A1 (en) * 2006-02-09 2008-02-07 Zullo Jill L Antimicrobial compositions, methods and systems
JP5545729B2 (ja) * 2009-05-19 2014-07-09 クラシエフーズ株式会社 抗菌剤並びにそれを用いた口腔用組成物及び飲食品
RU2673737C2 (ru) * 2013-07-02 2018-11-29 ЭКОПЛЭНЕТ ЭНВАЙРОНМЕНТАЛ, ЭлЭлСи Композиции летучих органических веществ, обладающие антимикробной активностью
BR112021005603A2 (pt) * 2018-09-28 2021-06-29 Ecoplanet Environmental Llc formulação, e, métodos para tratar ou prevenir uma infecção patogênica ou de ferida, tratar ou prevenir uma infecção oral, tratar ou prevenir infecção durante ou após um procedimento médico, tratar ou prevenir uma infecção fúngica, administrar a formulação, manter ou melhorar a saúde de um animal e desinfetar uma superfície
US12097173B2 (en) 2019-09-27 2024-09-24 Ecoplanet Environmental Llc Volatile organic compound formulations having antimicrobial activity
CN118947838B (zh) * 2024-07-25 2026-01-06 华南理工大学 一种植物源杀菌组合物及在果汁杀菌中的应用

Family Cites Families (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2273062A (en) * 1938-09-23 1942-02-17 Musher Foundation Inc Stabilization of oils
US4015024A (en) * 1973-11-23 1977-03-29 Societe D'assistance Technique Pour Produits Nestle S.A. Aromatizing tea with geranyl acetone and δ-decalactone
JPS62224273A (ja) 1979-03-31 1987-10-02 Meiji Milk Prod Co Ltd 嫌気性耐熱性細菌静菌剤
JPS6222423A (ja) 1985-07-23 1987-01-30 Canon Inc 堆積膜形成装置
ATE128329T1 (de) * 1991-02-27 1995-10-15 World Trust Investment Sa Herstellungsverfahren eines flüssigen, einphasigen, sterilisierten konzentrats auf essentieller ölebasis für die zubereitung von warmem oder kaltem instantkräutertee.
JP3395116B2 (ja) * 1993-04-28 2003-04-07 株式会社 伊藤園 茶飲料の製造方法
CH686397A5 (it) 1993-07-30 1996-03-29 Soremartec Sa Bevanda acida.
US5800850A (en) * 1995-07-07 1998-09-01 Nestec S.A. Process for reducing spoilage of sterilized liquid products
CH688787A5 (de) * 1995-09-05 1998-03-31 Dieter Linsig Etherische Oele enthaltende Zusammensetzungen.
TW414696B (en) * 1996-07-01 2000-12-11 Mitsubishi Kagaku Foods Kk Anti-bacteria agent
GB2315398A (en) * 1996-07-23 1998-02-04 Chandima Devapriya Sugathapala Preparing a tea drink
JP3670797B2 (ja) 1997-04-25 2005-07-13 理研ビタミン株式会社 茶飲料の製造方法及び茶飲料
JPH11116418A (ja) * 1997-10-06 1999-04-27 Toyo Seikan Kaisha Ltd カテキン類由来抗菌物質、その製造方法および微生物の増殖を抑制する方法
US6036986A (en) * 1997-10-28 2000-03-14 Lipton, Division Of Conopco, Inc. Cinnamic acid for use in tea containing beverages
TR200001149T2 (tr) * 1997-10-28 2000-08-21 Unilever N.V. Oda sıcaklığında niteliği bozulmayan niteliği bozulmayan ve esası çay olan bir içecek

Also Published As

Publication number Publication date
AR028453A1 (es) 2003-05-07
US20010055644A1 (en) 2001-12-27
GB0011677D0 (en) 2000-07-05
AU2001254823B2 (en) 2004-01-08
CN1441641A (zh) 2003-09-10
PL358642A1 (pl) 2004-08-09
US6579556B2 (en) 2003-06-17
EP1282368A1 (en) 2003-02-12
ZA200206146B (en) 2003-08-01
ATE300191T1 (de) 2005-08-15
JP2003533200A (ja) 2003-11-11
HUP0302017A2 (hu) 2003-09-29
CN1287694C (zh) 2006-12-06
CA2405130A1 (en) 2001-11-22
DE60112277D1 (de) 2005-09-01
AU5482301A (en) 2001-11-26
CA2405130C (en) 2009-11-24
MY122828A (en) 2006-05-31
JP4327401B2 (ja) 2009-09-09
WO2001087094A1 (en) 2001-11-22
BR0109568A (pt) 2003-01-28
MXPA02011242A (es) 2003-03-10
EP1282368B1 (en) 2005-07-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL203180B1 (pl) Napój trwały w temperaturze otoczenia zawierający układ konserwujący i zastosowanie układu konserwującego
EP1026957B1 (en) An ambient stable tea based beverage
PL203188B1 (pl) Napój trwały w temperaturze otoczenia zawierający układ konserwujący i zastosowanie układu konserwującego
PL205069B1 (pl) Sposób wytwarzania napoju trwałego w temperaturze otoczenia
US5914149A (en) Transparent liquid food
EP2790533B1 (en) Antifungal flavoring compositions
US12102089B2 (en) Method for inactivating mold spores
US20100215816A1 (en) Antimicrobial Composition And Its Use In Ready-To-Drink Beverages
AU2001252394A1 (en) Ambient stable beverage
US20060019018A1 (en) Tea-based beverage

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20100501