PL199271B1 - Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym, zawierająca je kompozycja farmaceutyczna oraz ich zastosowanie - Google Patents

Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym, zawierająca je kompozycja farmaceutyczna oraz ich zastosowanie

Info

Publication number
PL199271B1
PL199271B1 PL343360A PL34336099A PL199271B1 PL 199271 B1 PL199271 B1 PL 199271B1 PL 343360 A PL343360 A PL 343360A PL 34336099 A PL34336099 A PL 34336099A PL 199271 B1 PL199271 B1 PL 199271B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
bile
acid
fatty acid
conjugate
bile salt
Prior art date
Application number
PL343360A
Other languages
English (en)
Other versions
PL343360A1 (en
Inventor
Tuvia Gilat
Werner Kramer
Original Assignee
Galmed Int Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Galmed Int Ltd filed Critical Galmed Int Ltd
Publication of PL343360A1 publication Critical patent/PL343360A1/xx
Publication of PL199271B1 publication Critical patent/PL199271B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07JSTEROIDS
    • C07J41/00Normal steroids containing one or more nitrogen atoms not belonging to a hetero ring
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07JSTEROIDS
    • C07J9/00Normal steroids containing carbon, hydrogen, halogen or oxygen substituted in position 17 beta by a chain of more than two carbon atoms, e.g. cholane, cholestane, coprostane
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/16Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for liver or gallbladder disorders, e.g. hepatoprotective agents, cholagogues, litholytics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07JSTEROIDS
    • C07J41/00Normal steroids containing one or more nitrogen atoms not belonging to a hetero ring
    • C07J41/0005Normal steroids containing one or more nitrogen atoms not belonging to a hetero ring the nitrogen atom being directly linked to the cyclopenta(a)hydro phenanthrene skeleton

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Steroid Compounds (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Fats And Perfumes (AREA)

Abstract

Przedmiotem niniejszego wynalazku s a koniugaty kwasu zó lciowego lub soli zó lciowej z kwa- sem t luszczowym (zwane w niniejszym opisie „BAFAC”), zawieraj aca je kompozycja farmaceutyczna, ich zastosowanie do rozpuszczania cholesterolowych kamieni zó lciowych w zó lci, zapobiegania ich powstawaniu lub ponownemu tworzeniu, oraz ich zastosowanie do zmniejszania lub zapobiegania stwardnienia t etnic. Koniugaty s a zwi azkami o wzorze W - X - G, w którym G oznacza rodnik kwasu zó lciowego lub soli zó lciowej, W oznacza jeden lub dwa rodniki nasyconego kwasu t luszczowego, za s X oznacza grup e wiaz ac a pomi edzy wymienionym kwasem zó lciowym lub sol a zó lciow a i kwa- sem(ami) t luszczowym(mi). Koniugacj e korzystnie przeprowadza si e w po lo zeniu 3, 6, 7, 12 i 24 cz a- steczki kwasu zó lciowego lub soli zó lciowej. Kwasy t luszczowe korzystnie s a nasyconymi kwasami t luszczowymi o 14 - 22 atomach w egla. PL PL PL PL PL

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku są koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym (zwane w niniejszym opisie „BAFAC”), zawierające je kompozycje farmaceutyczne, ich zastosowanie do rozpuszczania cholesterolowych kamieni żółciowych w żółci, zapobiegania ich powstawaniu lub ponownemu tworzeniu, oraz do zmniejszania lub zapobiegania stwardnienia tętnic.
Podkreślić należy, że określenie kwasy żółciowe i sole żółciowe oznaczają podobne związki i stosuje się je zamiennie.
Kamienie żółciowe występują u około 15% populacji w większości krajów uprzemysłowionych. Większość kamieni żółciowych jest kamieniami cholesterolowymi, to znaczy cholesterol stanowi ich główny składnik. Tym samym, cholesterolowe kamienie żółciowe stanowią poważny problem zdrowotny. Żółć często jest przesyconym roztworem cholesterolu, co przyczynia się do krystalizacji. Zapobieganie krystalizacji cholesterolu w żółci będzie zapobiegało tworzeniu cholesterolowych kamieni żółciowych lub ich ponownemu powstawaniu po zabiegach kruszenia kamieni, rozpuszczania kamieni lub ich operacyjnego usuwania. Czas przebywania świeżo wydzielonej żółci w pęcherzyku żółciowym jest krótki - wynosi mniej niż 12 - 24 godziny. Zapobieganie krystalizacji cholesterolu w żółci w tym czasie powinno zapobiegać tworzeniu kamieni żółciowych.
Stwierdzono, że cholesterolowe kamienie żółciowe można rozpuszczać środkami medycznymi i zapobiegać ich ponownemu tworzeniu przy uż yciu pewnych soli ż ó łciowych, takich jak kwas chenodezoksycholowy lub kwas ursodezoksycholowy. Jednakże, leczenie z wykorzystaniem soli żółciowych charakteryzuje niska skuteczność, długi czas stosowania i zostało w przeważającym stopniu zaprzestane. Dlatego pożądana jest bardziej skuteczna metoda leczenia.
Ostatnie prace wykazują wielką rolę fosfolipidów w zwiększeniu rozpuszczalności cholesterolu w żółci. (T.Gilat i współpracownicy, Biochimica et Biophysica Acta 1286, (1996), 95-115; Y.Ringel i współ pracownicy, Biochimica et Biophysica Acta 1390, (1998), 293-300); oraz J.Hepatology, 28, (1998), 1008-1014) . Fosfolipidy są głównym lub jedynym składnikiem rozpuszczających cholesterol lipidowych agregatów w żółci. Stwierdzono, że stopniowe dodawanie fosfolipidów do żółci stopniowo wydłuża czas powstawania zarodków kryształów cholesterolu w żółci (Z.Halpern i współpracownicy, Gut 34, (1993) 110-115).
Przedstawiono główne zależności pomiędzy budową pewnych fosfolipidów i ich mocą hamowania krystalizacji cholesterolu w żółci ludzkiej lub modelowej. Fosfolipidy różnią się pomiędzy sobą głównie obecnością kwasów tłuszczowych w stereospecyficznej pozycji sn-1 i/lub sn-2 i budową ich reszt kwasowych. Stwierdzono, że główne wydłużenia czasu powstawania zarodków krystalizacji i główne zmniejszenia w szybkości wzrostu kryształów cholesterolu oraz wielkości łącznej masy krystalicznej uzyskiwano przez zmianę rodzaju cząsteczki fosfolipidu bez zmiany absolutnej lub względnej ilości fosfolipidów. Krystalizację cholesterolu znacznie opóźniano, gdy stosowano kwas tłuszczowy nasycony sn-2, oraz gdy resztę kwasową stanowiła seryna zamiast choliny, i tym podobne (Y.Ringel i jego współpracownicy, praca cytowana powyżej).
Wykazano również, że różne składniki fosfolipidów same z siebie (bez angażowania całej cząsteczki fosfolipidu), na przykład, nasycone kwasy tłuszczowe, takie jak kwas palmitynowy lub kwas stearynowy; lub fosfatydylogliceryna wykazują silną aktywność hamowania krystalizacji cholesterolu.
Tak więc, zwykle wzbogacając żółć ludzką w fosfolipidy lub w specyficzne fosfolipidy lub w ich składniki, takie jak kwasy tłuszczowe można znacznie zatrzymać krystalizację cholesterolu w żółci i uzyskać pożądany rezultat.
Problemem jest sposób w jaki można wzbogacić żółć ludzką w warunkach in vivo w fosfolipidy lub ich składniki. Jeśli sole żółciowe podaje się ludziom to są one bardzo skutecznie absorbowane, wychwytywane przez wątrobę i wydzielane do żółci. Stosuje się to również do syntetycznych analogów soli żółciowych. W organizmie występują specyficzne i bardzo skuteczne mechanizmy transportu służące tym celom. Tak więc, jeśli kwas ursodezoksycholowy (który normalnie występuje w żółci ludzkiej w minimalnych ilościach) podaje się regularnie to jest on absorbowany i wydzielany do żółci i ewentualnie stanowi 30 - 50% zawartości kwasów żółciowych. Jednakże, jak wykazano powyżej, terapia prowadzona za pomocą soli żółciowych nie jest zadowalająca dla rozpuszczania cholesterolu w kamieniach żółciowych.
Fosfolipidy i ich składniki są dobrze absorbowane i przyjmowane przez wątrobę. Jednak wydzielanie fosfolipidów do żółci jest ściśle regulowane przez wątrobę i tylko ograniczone ilości i niektóre rodzaje fosfolipidów są wydzielane do żółci w powiązaniu z wydzielanymi solami żółciowymi i cholePL 199 271 B1 sterolem. Obecnie nie ma skutecznej metody ilościowego lub jakościowego regulowania składu fosfolipidów w żółci ludzkiej w kierunku pożądanych wartości. Gdy zawarte w pokarmie fosfolipidy docierają do wątroby, to mogą być w niej metabolizowane i wydzielane do krwi lub przechowywane w wątrobie. Tylko niewielkie ilości i wybrane rodzaje wydzielane są do żółci, przy jednocześnie minimalnych możliwościach ich modulowania.
Tym samym, pożądanym jest znalezienie zadowalającej metody przenoszenia fosfolipidów lub pewnych ich składników do żółci w celu poprawienia rozpuszczalności cholesterolu w żółci i zapobiegania tworzeniu cholesterolowych kamieni żółciowych lub rozpuszczania istniejących już kamieni żółciowych.
Zgodnie z izraelskim opisem patentowym numer 95668 i odpowiadającym mu opisem patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki znane są pochodne kwasu żółciowego o wzorze ogólnym I:
W - X - G w którym G oznacza rodnik kwasu żółciowego, W oznacza aktywną grupę leku oraz X oznacza wiązanie bezpośrednie lub grupę wiążącą pomiędzy wymienionym rodnikiem kwasu żółciowego i aktywną grupą związku. W wymienionych opisach patentowych zamieszczono długą listę podstawników lecz nie wyszczególniono W jako rodnika kwasu tłuszczowego, ani nasyconego ani nienasyconego, to znaczy wymienione opisy patentowe nie wymieniają żadnych pochodnych BAFAC.
Ponadto, wśród wszystkich przedmiotów wymienionych opisów patentowych nie można znaleźć, aby jakikolwiek z wymienionych związków mógł być zastosowany do zwiększenia rozpuszczalności żółciowego cholesterolu, w celu zapobiegania tworzeniu się cholesterolowych kamieni żółciowych, czy do rozpuszczania już istniejących cholesterolowych kamieni żółciowych, oraz w celu zmniejszenia lub zapobiegania stwardnienia tętnic.
Obecnie stwierdzono, że kwasy lub sole żółciowe skoniugowane z kwasami tłuszczowymi (nasyconymi lub nienasyconymi) przez wiązanie o wzorze -NH- (BAFAC) mogą służyć jako nośniki do transportu kwasów tłuszczowych do żółci, przy użyciu bardzo skutecznej wewnątrzwątrobowej cyrkulacji kwasów i soli żółciowych.
Wiązanie estrowe pomiędzy kwasem(ami) tłuszczowym(ymi) i kwasem żółciowym jest nieodpowiednie, ponieważ może ulegać zerwaniu w wyniku działania soków trawiennych i bakterii jelitowych w czasie absorpcji i wewnętrznowątrobowej cyrkulacji. Tylko nietknięta frakcja BAFAC będzie utrzymywała się w żółci.
Stwierdzono również, że BAFAC są absorbowane z jelita, wychwytywane przez wątrobę i wydzielane do żółci. Wymienione BAFAC poprawiają rozpuszczanie cholesterolu w żółci i znacznie opóźniają jego krystalizację. Tym samym, wymienione BAFAC są czynnikami użytecznymi jako środki zapobiegające tworzeniu lub ponownemu powstawaniu cholesterolowych kamieni żółciowych oraz rozpuszczające cholesterolowe kamienie żółciowe.
Podawanie BAFAC wywołuje również hamujący wpływ na krystalizowanie cholesterolu w drzewie naczyniowym. W warunkach fizjologicznych, strawione kwasy lub sole żółciowe są absorbowane w jelitach, przenoszone przez ż yłę wrotną do wątroby i wydzielane z żółcią do jelita. Tym samym, krążą one zgodnie z wewnętrzną cyrkulacją wątrobową i tylko w niewielkiej ilości docierają do krążenia ogólnoustrojowego (drzewo naczyniowe). BAFAC zachowują się podobnie jak lipidy, które po jelitowej absorpcji przenoszone są z limfą do krążenia ogólnoustrojowego. BAFAC przenoszone są zarówno przez limfę jak i przez żyłę wrotną. Obie te drogi przechodzą przez wątrobę i powodują wydzielanie do żółci. W każdej cyrkulacji wewnętrznowątrobowej są one wydzielane do jelit i ponownie częściowo wchłaniane przez limfę i zawracane do naczyń krwionośnych przed wprowadzeniem do wątroby. Dziennie powtarza się 10 - 12 cykli cyrkulacji wewnętrznowątrobowej i końcowym efektem jest zawrócenie BAFAC do naczyń krwionośnych.
Podawanie BAFAC doustnie w podzielonych dawkach w czasie doby będzie powodowało zwiększenie tego działania. Potwierdzono hamujące działanie BAFAC na krystalizację cholesterolu i jego skuteczność w rozpuszczaniu istniejących kryształów cholesterolu. Tym samym, potwierdzono ich wartość jako czynnika zmniejszającego i/lub zapobiegającego krystalizacji cholesterolu w drzewie naczyniowym, to znaczy wpływającego na stwardnienie tętnic.
Przedmiotem niniejszego wynalazku są koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym, o wzorze ogólnym II
W - X - G w którym G oznacza rodnik kwasu żółciowego lub soli ż ółciowej, W oznacza jeden lub dwa rodniki kwasu tłuszczowego oraz X oznacza grupę wiążącą pomiędzy wymienionym rodnikiem kwasu
PL 199 271 B1 żółciowego lub soli żółciowej i kwasem(ami) tłuszczowym(ymi), przy czym wspomnianą grupą wiążącą jest -NH-.
Korzystnie kwasy żółciowe wybrane są z grupy obejmującej kwas cholowy, kwas chenodezoksycholowy, ursodezoksycholowy, dezoksycholowy oraz ich pochodne i ich analogi.
Korzystnie kwas żółciowy jest sprzężony z glicyną, tauryną lub odpowiednim aminokwasem.
Korzystnie rodnik kwasu tłuszczowego wprowadzono w położeniu 3 cząsteczki kwasu żółciowego.
Korzystnie rodnik kwasu tłuszczowego wprowadzono w położeniu wybranym spośród położeń 6, 7, 12 i 24 w cząsteczce kwasu żółciowego.
Korzystnie rodnik kwasu tłuszczowego wprowadzono do kwasu żółciowego w konfiguracji α lub β.
Korzystnie kwasy tłuszczowe są nasyconymi kwasami tłuszczowymi o 6 do 26 atomach węgla.
Korzystniej nasycone kwasy tłuszczowe posiadają 14 do 22 atomów węgla.
Korzystniej nasycony kwas tłuszczowy jest wybrany spośród kwasu behenylowego, kwasu arachidylowego, kwasu stearynowego, kwasu palmitynowego i kwasu mirystynowego.
Korzystnie koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym stanowi kwas
3e-behenyloamido-7a,12a-dihydroksy-5-cholan-24-owy.
Korzystnie koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym stanowi kwas
3e-arachidyloamido-7a,12a-dihydroksy-5-cholan-24-owy.
Korzystnie koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym stanowi kwas 3e-stearyloamido-7a,12a-dihydroksy-5-cholan-24-owy.
Korzystnie koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym stanowi kwas 3e-palmityloamido-7a,12a-dihydroksy-5-cholan-24-owy.
Korzystnie koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym stanowi kwas 3e-mirystyloamido-7a,12a-dihydroksy-5-cholan-24-owy.
Korzystnie koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym stanowi N-(karboksymetylo)-3e-stearyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-amid.
Korzystnie W oznacza dwa kwasy tłuszczowe sprzężone w położeniu 3 i 7 cząsteczki kwasu żółciowego.
Przedmiot wynalazku stanowi również kompozycja farmaceutyczna zdolna do rozpuszczania cholesterolowych kamieni żółciowych w żółci i zapobiegania ich powstawaniu oraz zdolna do zapobiegania i/lub zmniejszania stwardnienia tętnic, charakteryzująca się tym, że jako składnik aktywny zawiera pochodną kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym o wzorze ogólnym II jak określono powyżej.
Korzystnie kompozycja farmaceutyczna jest w postaci wybranej z grupy obejmującej tabletkę, kapsułkę, roztwór i emulsję.
Korzystnie kompozycja farmaceutyczna zawiera dodatkowo i związek wybrany z grupy obejmującej nośnik, rozpuszczalnik, emulgator, czynnik zwiększający absorpcję i inhibitor syntezy cholesterolu lub wydzielania go do żółci.
Korzystnie kompozycja farmaceutyczna zawiera 0,1 - 1,5 g składnika aktywnego.
Wynalazek dotyczy także zastosowania koniugatu kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym jak określono powyżej lub kompozycji farmaceutycznej jak określono powyżej do rozpuszczania cholesterolowych kamieni żółciowych w żółci i zapobiegania ich powstawaniu.
Przedmiotem wynalazku jest również zastosowanie koniugatu kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym jak określono powyżej lub kompozycji farmaceutycznej jak określono powyżej do zapobiegania i/lub zmniejszania stwardnienia tętnic.
Jako odpowiednie kwasy żółciowe można wymienić, na przykład, kwas cholowy, kwas chenodezoksycholowy, kwas ursodezoksycholowy, kwas dezoksycholowy, ich pochodne, ich analogi i tym podobne. Stosowane kwasy żółciowe mogą być nieskoniugowane lub, podobnie jak w żółci, skoniugowane z glicyną, tauryną lub z odpowiednim aminokwasem. Takie możliwości zawarte są w definicji kwasu żółciowego i są w zakresie niniejszego wynalazku. Koniugacja rodnikiem kwasu tłuszczowego w większości przeprowadzona jest w położeniu 3 cząsteczki w zależności od stosowanego kwasu żółciowego. Możliwe jest również przeprowadzenie koniugacji rodnikiem kwasu tłuszczowego w innych położeniach, na przykład 6, 7, 12 i 24. Jeśli kwas żółciowy jest skoniugowany z glicyną lub tauryną, to koniugacja z rodnikiem kwasu tłuszczowego nie może być przeprowadzona w położeniu 24. Koniugacja pomiędzy rodnikiem kwasu tłuszczowego i kwasu żółciowego może być w konfiguracji α lub β.
Korzystnymi kwasami tłuszczowymi są nasycone kwasy tłuszczowe o 18 - 22 atomach węgla. Korzystnymi nasyconymi kwasami tłuszczowymi są kwas behenylowy, kwas arachidylowy i kwas stearynowy.
PL 199 271 B1
Jeśli W oznacza dwa rodniki kwasu tłuszczowego to są one skoniugowane odpowiednio w położeniu 3 i 7.
Kompozycję według wynalazku należy podawać raz dziennie, korzystnie przed snem. Można również podawać w dawkach podzielonych w czasie doby.
Niniejszy wynalazek będzie zilustrowany poniżej za pomocą towarzyszących przykładów i rysunków.
Objaśnienie rysunków:
Figura 1A przedstawia etapy przeprowadzenia koniugacji kwasu cholowego (w położeniu C-3) z: kwasem behenylowym (C-22), kwasem arachidowym (C-20) i kwasem stearynowym (C-18).
Figura 1B przedstawia etapy syntezy glicynowego koniugatu stearoilo-cholanu.
Figura 1C przedstawia skoniugowanie oleilocholanu.
Figura 1D przedstawia skoniugowanie kwasu ursodezoksycholowego z dwoma cząsteczkami kwasu stearynowego w położeniu C-3 i C-7 cząsteczki kwasu żółciowego.
Figura 2 przedstawia krystaliczną masę cholesterolową. Roztwór modelowej żółci. Wpływ BAFAC zawierającego reszty kwasu stearynowego (C-18) i kwasu arachidowego (C-20) skoniugowanych z kwasem cholowym (przy C-3). Badane związki zastąpiły 20% molowych NaTC w kontrolnym roztworze.
Figura 3 przedstawia czas obserwacji krystalizacji. Roztwór modelowej żółci. Wpływ związków przedstawionych na rysunku fig. 2.
Figura 4 przedstawia krystaliczną masę cholesterolową w wzbogaconej żółci ludzkiej po 22 dniach inkubacji. Wpływ 5 mM stearoilo-(C-18)-cholanu i arachidylo-(C-20)-cholanu dodanych do żółci w porównaniu z kontrolną żółcią i żółcią z dodatkiem 5 mM kwasu cholowego.
Figura 5 przedstawia czas tworzenia zarodków krystalizacji dla żółci modelowych. Wpływ zastąpienia 20% molowych NaTC równomolowymi ilościami szeregu BAFAC obejmującego stearoilo-(C-18)-cholan, arachidylo-(C-20)-cholan i distearoiloursodezoksycholan w porównaniu z modelową żółcią z zastą pieniem i bez zastę powania 20% NaTC kwasem cholowym.
Figury 6A i 6B przedstawiają stężenia stearoilo-(C-18 )-cholanu u chomików po czasie 1, 2 i 3 godziny po podaniu 30 mg. Stężenia oznaczano w krwi serca, krwi z żyły wrotnej i w żółci z pęcherzyka żółciowego.
P r z y k ł a d I
Kwas 3e-behenyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owy (fig. 1A-3) (a) 1,15 g estru metylowego kwasu 3e-amino-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fg. 1A-1) [patent francuski numer 1017756, 18 grudnia 1952, Chemical Abstracts, 52:1293c] rozpuszczono w 30 ml bezwodnego dimetyloformamidu i w czasie mieszania poddano działaniu 15 ml trietyloaminy. Do otrzymanego roztworu wkroplono roztwór 1,13 g chlorku behenoilu w 10 ml dimetyloformamidu, po czym mieszanie kontynuowano przez noc. Mieszaninę reakcyjną wylano do wody, ekstrahowano chlorkiem metylenu, organiczną warstwę suszono nad siarczanem sodu, rozpuszczalnik odparowano do sucha i pozostałość poddano chromatografii na żelu krzemionkowym, eluując mieszaniną octanu etylu i heksanu (6:4 i 8:2) i uzyskując 0,8 g estru metylowego kwasu 3e-behenyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-2).
1H - NMR (CDCl3) δ, ppm : 0,69(s, CH3-18), 0,88(t, J=1Hz, CH3-23), 0,95(s, CH3-19), 0,99(d, J=3Hz, CH3-21), 1,25, 1,14(s, CH2)20), 2,14(t, J=5Hz, CH3-behenylo), 3,67(s-COOCH3), 3,91(d, J=1,5Hz, CH-7), 3,96(s, J=4Hz, CH-12), 3,99(m, CH-3), 5,60(d, J=4, 5Hz, -CH2CO-).
(b) Powyższy ester metylowy w ilości 0,45 g rozpuszczono w 20 ml metanolu, potraktowano 2 ml 1 normalnego roztworu wodorotlenku sodu i utrzymywano w czasie 24 godzin w temperaturze pokojowej. Następnie metanol oddestylowano, dodano 10 ml wody i mieszaninę reakcyjną ekstrahowano octanem etylu. Frakcję wodną zakwaszono rozcieńczonym kwasem solnym, otrzymany osad o barwie białej przemywano wodą i uzyskano 0,41 g czystego kwasu 3e-behenyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-3).
P r z y k ł a d II
Kwas 3e-arachidyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owy (fig. 1A-5) (a) 1,0 g estru metylowego kwasu 3e-amino-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-1) [patrz przykład I] rozpuszczono w 30 ml bezwodnego dimetyloformamidu i w czasie mieszania potraktowano 15 ml trietyloaminy. Następnie do otrzymanego roztworu wkroplono 1,0 g chlorku arachidoilu w 10 ml dimetyloformamidu i mieszanie kontynuowano przez noc. Mieszaninę reakcyjną wylano do wody, ekstrahowano chlorkiem metylenu, frakcje organiczne suszono nad siarczanem sodu, zatężono do sucha i poddano chromatografii na żelu krzemionkowym przy użyciu mieszaniny octanu etylu i hek6
PL 199 271 B1 sanu (6:4 i 8:2), uzyskując 0,6 g estru metylowego kwasu 3e-arachidyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-4).
1H-NMR (CDCl3) δ ppm: 0,70(s, CH3-18), 0,88(t, J=6Hz, CH3-23), 0,95(s, CH3-19), 0,99(d, J=3Hz, CH3-21), 1,25, 1,14[(s, CH2)18], 2,14(t, J=5Hz, CH3-arachidylo), 3,67(s-COOCH3), 3,91(d, J=1,5 Hz, CH-7), 3,96(t, J=4Hz, CH-12), 4,4(m, CH-3), 5,60(d, J=4,5Hz,-CH2CONH).
(b) 0,5 g estru metylowego kwasu 3e-arachidyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-4) rozpuszczono w 20 ml metanolu, potraktowano 2 ml 1 normalnego roztworu wodorotlenku sodu i utrzymywano w czasie 24 godzin w temperaturze pokojowej. Metanol oddestylowano, dodano 10 ml wody i mieszaninę reakcyjną ekstrahowano octanem etylu. Frakcję wodną zakwaszono rozcieńczonym kwasem solnym, otrzymany osad o barwie białej przemywano wodą i uzyskano 0,7 g czystego kwasu 3e-arachidyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-5).
P r z y k ł a d III
Kwas 3e-stearyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owy (fig. 1A-7)
Sposób 1 (a) 1,15 g estru metylowego kwasu 3e-amino-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-1) [patrz przykład I]rozpuszczono w 30 ml bezwodnego dimetyloformamidu i w czasie mieszania potraktowano 15 ml trietyloaminy. Do otrzymanego roztworu wkroplono 1,13 g chlorku stearoilu w 10 ml dimetyloformamidu i mieszanie kontynuowano przez noc. Mieszaninę reakcyjną wylano do wody i ekstrahowano chlorkiem metylenu, frakcję organiczną suszono nad siarczanem sodu, odparowano do sucha i poddano chromatografii na żelu krzemionkowym przy użyciu mieszaniny octanu etylu i heksanu (6:4 i 8:2), uzyskując 0,68 g estru metylowego kwasu 3e-stearyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-6).
1H-NMR (CDCl3) δ ppm: 0,69(s, CH3-18), 0,88(t, J=1Hz, CH3-23), 0,95(s, CH3-19), 0,99(t, J=3Hz, CH3-21), 1,25, 1,44[(s, CH2)16], 2,14(t, J=5Hz, CH3-stearylo), 3,67(s-COOCH3), 3,91(d, J=1, 5Hz, CH-7), 3,99(m, CH-3), 4,4(m, CH-3), 5,60(d, J=4,5Hz, -CH2CONH).
(b) 0,45 g estru metylowego kwasu 3e-stearyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-6) rozpuszczono w 20 ml metanolu, poddano działaniu 2 ml 1 normalnego roztworu wodorotlenku sodu i utrzymywano w czasie 24 godzin w temperaturze pokojowej. Następnie metanol oddestylowano, dodano 10 ml wody i mieszaninę reakcyjną ekstrahowano octanem etylu. Frakcję wodną zakwaszono rozcieńczonym kwasem solnym, otrzymany osad o barwie białej przemyto wodą i uzyskano 0,41 g kwasu 3e-stearyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-7). Temperatura topnienia 63 - 65°C.
Sposób 2
2,5 g kwasu 3e-amino-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (uzyskanego sposobem opisanym przez Kramer'a i jego współpracowników, J. of Lipid Research 24, 910, 1983) rozpuszczono w acetonitrylu i dodano do mieszanego roztworu 1,2 g kwasu stearynowego i 3,6 g N-hydroksysukcynamidu w tym samym rozpuszczalniku. Po czasie 8 godzin osad odsączono, przemyto rozpuszczalnikiem i odparowano do sucha. Pozostałość dodano do roztworu 1,2 g kwasu stearynowego w 10 ml mieszaniny N-metylomorfoliny i N,N'-dimetyloformamidu (1:3). Całość utrzymywano w temperaturze pokojowej przez noc, roztwór rozcieńczono wodą, ekstrahowano octanem etylu i uzyskano 0,6 g kwasu (fig. 1A-7), identycznego z otrzymanym według sposobu 1.
Sposób 3
Roztwór 6 g chlorku stearoilu wkroplono do mieszanego roztworu 1,6 g aminy (fig. 1B-18) w toluenie w temperaturze 0°C i utrzymywano w tej temperaturze w czasie 1 godziny. Otrzymany roztwór ogrzewano w temperaturze 50°C w czasie następnej godziny, zakwaszono 3 normalnym kwasem solnym, następnie sączono, stałą substancję przemyto wodą i suszono w temperaturze 45°C, uzyskując kwas (fig. 1A-7), identyczny z opisanym powyżej.
P r z y k ł a d IV
N-karboksymetyloamid kwasu 3e-stearyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1B-17).
(a) 0,5 g kwasu 3e-stearyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholanowego (fig. 1A-7) rozpuszczono w 25 ml bezwodnego 1,4-dioksanu i oziębiono do temperatury -10°C. Mieszany roztwór potraktowano 0,5 ml trietyloaminy, następnie 0,085 ml mrówczanu chloroetylu i mieszanie kontynuowano w tej temperaturze w czasie 15 minut. Pozostawiono roztwór w celu ogrzania do temperatury pokojowej, potraktowano 0,1 ml trietyloaminy, dodano 14 g chlorowodorku estru etylowego glicyny i pozostawiono w czasie nocy. Mieszaninę reakcyjną wylano do wody, ekstrahowano octanem etylu i przemyto wodą. Ekstrakt odparowano do sucha i poddano chromatografii na żelu krzemionkowym przy użyciu mieszaPL 199 271 B1 niny octanu etylu i heksanu 60:40, czystego octanu etylu i następnie mieszaniny octanu etylu i metanolu w stosunku 9:1, uzyskując 0,27 g produktu (fig. 1B-16).
(b) 0,27 g powyższego związku rozpuszczono w 20 ml metanolu i potraktowano 2 ml 1 normalnego roztworu wodorotlenku sodu. Po czasie 24 godzin metanol oddestylowano prawie do sucha, pozostałość rozpuszczono w wodzie i ekstrahowano octanem etylu. Frakcję wodną zakwaszono 1 normalnym kwasem solnym, otrzymany osad przemyto wodą i suszono, uzyskując 0,24 g czystego produktu (fig. 1B-17).
P r z y k ł a d V
Kwas 3e-oleiloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owy (fig. 1C-20) (a) 1,6 g estru metylowego kwasu 3e-amino-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1A-1) rozpuszczono w 30 ml bezwodnego dimetyloformamidu i w czasie mieszania potraktowano 3 ml trietyloaminy. Do otrzymanego roztworu wkroplono 1,38 g chlorku oleilu w 10 ml bezwodnego dimetyloformamidu i otrzymany roztwór utrzymywano w temperaturze pokojowej przez noc. Mieszaninę reakcyjną wylano do wody i ekstrahowano octanem etylu, frakcję organiczną oczyszczano za pomocą przemycia rozcieńczonym kwasem solnym, roztworem wodorowęglanu sodu, a następnie wodą. Roztwór odparowano do sucha pod zmniejszonym ciśnieniem i poddano chromatografii na żelu krzemionkowym przy użyciu mieszaniny octanu etylu i heksanu (4:6 i 10:8), uzyskując 1,8 g estru metylowego (fig. 1C-19).
(b) Roztwór 1,2 g estru metylowego w 20 ml metanolu, w temperaturze pokojowej potraktowano 5 ml 1 normalnego roztworu wodorotlenku sodu i utrzymywano w czasie 48 godzin w temperaturze pokojowej. Następnie metanol oddestylowano do sucha. Pozostałość rozpuszczono w 20 ml wody i trzykrotnie ekstrahowano po 25 ml octanem etylu. Frakcję wodną zakwaszono kwasem solnym i odsączono otrzymany osad. Pozostałość tę poddano chromatografii na żelu krzemionkowym, przy użyciu mieszaniny octan etylu : heksan : kwas octowy (10:4:0,3) i uzyskano 0,3 g kwasu 3e-oleiloamido-7a, 12a-dihydroksy-5e-cholan-24-owego (fig. 1C-20).
P r z y k ł a d VI
Kwas 3e,7a-distearyloamido-5e-ursodezoksycholan-24-owy (fig. 1D-26) (a) 20 g kwasu ursodezoksycholan-24-owego rozpuszczono w 200 ml absolutnego metanolu, potraktowano 1 ml stężonego kwasu siarkowego i mieszano w czasie 24 godzin. Większość rozpuszczalnika oddestylowano, pozostałość wylano do wody i ekstrahowano chlorkiem metylenu. Ekstrakt organiczny przemyto roztworem wodorowęglanu sodu i chlorku sodu, po czym zatężono do sucha, uzyskując 19,5 g estru metylowego kwasu 3a,7e-dihydroksy-5e-ursodezoksycholan-24-owego (fig. 1D-21) 1H-NMR (CDCl3) δ ppm: 0,66(s, CH3-18), 0,90(t, J=1Hz, CH3-23), 0,93(s, CH3-19), 0,94(d, J=3Hz, CH3-21), 3,58(m, CH-3, CH-7), 3,65(s-COOCH3).
(b) 4,06 g estru metylowego (fig. 1D-21) rozpuszczono w 30 ml bezwodnej pirydyny i ochłodzono do temperatury 0°C. Mieszaninę reakcyjną mieszano i w czasie 15 minut wkraplano do niej roztwór 1,49 g chlorku metanosulfonylu w 5 ml pirydyny. Całość przechowywano w czasie 3 godzin w tej samej temperaturze, mieszaninę reakcyjną wylano do wody z lodem i ekstrahowano octanem etylu. Fazę organiczną przemyto kwasem solnym, roztworem wodorowęglanu sodu i chlorku sodu, sączono i zatężano pod zmniejszonym ciśnieniem. Pozostałość zawierającą cztery związki poddano chromatografii kolumnowej na żelu krzemionkowym przy użyciu mieszaniny octanu etylu i heksanu. Związek mniej polarny w ilości 5,3 g był pożądanym estrem metylowym kwasu 3a,7e-dimesylo-5e-ursodezoksycholan-24-owego. (fig. 1D-22).
1H-NMR (CDCl3) δ ppm: 0,65(s, CH3-18), 0,90(d, J=4Hz, CH3-23), 0,97(s, CH3-19), 1,2(t, J=3Hz, CH3-21), 2,97(s, CH3SO2), 2,98(s, CH3SO2), 3,64(s, CH3SO2), 4,09(q, J=12Hz, H-7), 4,62(m, H-7).
(c) 5, 65 g dimetylowej pochodnej rozpuszczono w 50 ml bezwodnego dimetyloformamidu, potraktowano bezwodnym azydkiem sodu i ogrzewano w temperaturze 130°C w czasie 2 godzin. Mieszaninę reakcyjną ochłodzono, wylano do wody z lodem i ekstrahowano octanem etylu. Ekstrakt przemyto roztworem octanu sodu i chlorku sodu, sączono i zatężono pod zmniejszonym ciśnieniem, uzyskując 4,6 g estru metylowego kwasu 3e,7a-diazydo-5e-ursodezoksycholan-24-owego (fig. 1D-23).
(d) 4,5 g związku diazydkowego (fig. 1D-23) rozpuszczono w 120 ml metanolu, do którego dodano 150 mg 5% palladu osadzonego na węglu i poddano uwodornieniu pod ciśnieniem atmosferycznym w czasie 4 dni. Uwodornienie powtarzano z dodatkowymi 150 mg 5% palladu osadzonego na węglu. Uwodornioną mieszaninę przesączono i zatężono pod zmniejszonym ciśnieniem uzyskując 3 g estru metylowego kwasu 3e,7a-diamino-5e-urso-dezoksycholan-24-owego (fig. 1D-24).
1H-NMR (CDCl3) δ ppm: 0,65(s, CH3-18), 0,92(d, J=4Hz, CH3-23), 0,96(s, CH3-19), 1,2(t, J=3Hz, CH3-21), 3,68(s, COOCH3), 3,72, 3,95(m, 2H-7,3).
PL 199 271 B1 (e) 1,47 g estru metylowego kwasu 3e,7a-diamino-5e-ursodezoksycholan-24-owego (fig. 1D-24) rozpuszczono w 50 ml bezwodnej mieszaniny 1:1 dimetylosulfotlenku i dimetyloformamidu, potraktowano 2 ml trietyloaminy i 30 mg dimetyloaminopirydyny i 5,1 g bezwodnika stearynowego. Mieszaninę reakcyjną ogrzewano do temperatury 50°C, mieszano w czasie 18 godzin, wylano do mieszaniny wody z lodem i trzykrotnie ekstrahowano octanem etylu. Warstwę organiczną przemyto kwasem solnym, roztworem wodorowęglanu sodu i chlorku sodu. Po oddestylowaniu rozpuszczalnika organicznego uzyskano 2,05 g olejowej pozostałości. Rozdział prowadzony na żelu krzemionkowym przy użyciu mieszaniny octanu etylu i heksanu (1:4) pozwala uzyskać szereg frakcji, z których jedna w ilości 80 mg zawiera pożądany ester metylowy kwasu 3e,7a-distearyloamido-5e-ursodezoksycholan-24-owego (fig. 1D-25), co potwierdzono za pomocą jego widma masowego i widma magnetycznego rezonansu jądrowego.
MS FAB: MH+ 937 (MW) 936) 1H-NMR (CDCl3) δ ppm: 0,66(s, CH3-18), 0,86(d, J=4Hz, CH3-23), 0,96(s, CH3-19), 1,2(t, J=3Hz, CH3-21), 1,26[s (CH2)16], 3,64(s, COOCH3), 3,05(d, J=7Hz, H-7), 5,75(m, H-3).
(f) 78 mg estru metylowego (fig. 1D-25) rozpuszczono w 20 ml metanolu, potraktowano 2 ml 1 normalnego wodorotlenku sodu i utrzymywano w czasie 48 godzin w temperaturze pokojowej. Metanol oddestylowywano pod zmniejszonym ciśnieniem, pozostałość rozpuszczono w 25 ml wody, przesączono i następnie zakwaszono rozcieńczonym kwasem solnym uzyskując osad zawierający kwas 3e,7a-distearyloamido-5e-ursodezoksycholan-24-owy (fig. 1D-26).
P r z y k ł a d VII
Materiały i metody
Cholesterol (Sigma, St. Louis, Mo.) dwukrotnie krystalizowano z gorącego etanolu; Na-taurocholan (Na-TC; Sigma, St. Louis, Mo.) dwukrotnie krystalizowano z etanolu i eteru (J.L Pope, J. Lipid Res. 8, (1967) 146-147); lecytyna z żółtka jaja (EYL) (Avanti Polar Lipids, Alabaster, Al.) stosowano bez dalszego oczyszczania. Wszystkie lipidy stosowane w tym badaniu były o czystości standardów TLC.
1. Przygotowanie żółci
A. Żółć modelowa
Mieszaninę EYL, cholesterolu i Na-TC rozpuszczano w mieszaninie chloroformu i metanolu (2:1 objętościowo-objętościowe), suszono pod azotem w temperaturze pokojowej, liofilizowano przez noc i utrzymywano w temperaturze -20°C w atmosferze argonu do zastosowania. Roztwory żółci modelowej przygotowano za pomocą zawieszenia wysuszonych lipidów w 150 mM NaCl, 1,5 mM EDTA dwusodowej, 50 mM Tris-HCl o wartości pH 8,0 i inkubowania tej zawiesiny w temperaturze 55°C w czasie 1 godziny. Rozpuszczoną żółć modelową inkubowano w zatopionych fiolkach pod argonem w temperaturze 37°C w czasie trwania doświadczenia. Codziennie oznaczano próbki modelowej żółci.
Wszystkie preparaty modelowe przygotowano trzykrotnie i przechowywano w tych samych warunkach w czasie przeprowadzania doświadczenia.
Skład żółci modelowej:
cholesterol 15 mM, EYL 30 mM, Na-TC 150 mM.
Inne badane roztwory żółci modelowej przygotowywano za pomocą dodania lub zastąpienia (10 - 20%) EYL lub Na-TC przez syntetyczny koniugat kwasu żółciowego (PalC).
B. Naturalna żółć z ludzkiego pęcherzyka żółciowego
Naturalną żółć z ludzkiego pęcherzyka żółciowego uzyskano w czasie operacji od pacjentów z cholesterolową kamicą pęcherzyka żółciowego. Żółć pobraną od kilku pacjentów wzbogacono w cholesterol za pomocą inkubowania z wysuszonym cholesterolem lub za pomocą zmieszania ze stężoną żółcią modelową przed zastosowaniem w doświadczeniach, w celu ułatwienia krystalizacji.
2. Badanie tworzenia się i wzrostu kryształów cholesterolu
2.1. Próba obserwowania czasu krystalizacji (COT)
COT (zwaną także „czas powstawania zarodków krystalizacji”) określano sposobem opisanym przez Holan'a i jego współpracowników w Gastroenterology 77, (1979) 611-617. Próbki z każdej żółci modelowej badano codziennie za pomocą mikroskopii w świetle spolaryzowanym. COT określano jako początkowy czas wykrycia przynajmniej trzech kryształów monohydratu cholesterolu w polu widzenia mikroskopu przy powiększeniu 100-krotnym.
2.2. Próba szybkości wzrostu kryształów (CGR)
Wzrost kryształów obserwowano spektrofotometrycznie, przy użyciu czytnika mikropłytek (SPECTRA-STL, Austria) (G.J. Somjen i jego współpracownicy, J. Lipid Res. 38, (1977) 1048-1052). Próbki (50 μθ roztworów lipidu mieszano i silnie wytrząsano z równoważnymi objętościami Na-taurodezoksycholanu (200 mM), w mikropłytkowych wgłębieniach. Po czasie 60 minut w temperaturze
PL 199 271 B1 pokojowej, mikropłytki wytrząsano ponownie i mierzono absorbancję każdej z nich przy 405 nm. Każdy model przygotowywano trzykrotnie i pomiar wykonywano dwukrotnie.
Wyniki zbierano i analizowano przy użyciu osobistego komputera kompatybilnego IBM i z jego pomocą obliczano gęstość optyczną (OD), średnio dla trzech doświadczeń. Wykreślano krzywe przedstawiające średnie zmiany OD dla każdego z roztworów. Nachylenie stromego obszaru krzywej oznaczano za pomocą dopasowywania liniowej regresji dla przynajmniej trzech pomiarów i definiowano jako CGR. Dla każdego modelu obliczano różnice CGR i OD pomiędzy dniem 0 i dniem 14.
2.3. Pomiar masy krystalicznej
Przeprowadzano chemiczną analizę cholesterolu w każdej z próbek w ostatnim dniu doświadczenia (dzień 14) sposobem wymienionym powyżej (patrz praca G.J. Somjen). Próbki pobierano z mikropłytek, poddawano wirowaniu w urządzeniu Airfuge (Beckman) przy 70 000 obrotów/minutę w czasie 5 minut. Oddzielne badania przeprowadzano na całej próbce (przed wirowaniem) i oddzielne na roztworze supernatantu. Ilość cholesterolu w wytrąconych pastylkach obliczano za pomocą odejmowania ilości roztworów supernatantu od całej ilości. Krystaliczny charakter pastylek potwierdzono za pomocą mikroskopii w świetle spolaryzowanym. Masę krystaliczną mierzono również spektrofotometrycznie, jako różnicę OD pomiędzy dniem 0 i dniem 14 inkubowania.
3. Dane analityczne
Każdą dyspersję lipidu przygotowywano trzykrotnie i dwukrotnie z każdej próby pobierano próbki do pomiaru. Obliczano średnie wartości OD i standardowe błędy. Szybkość wzrostu kryształów obliczano na podstawie liniowej analizy regresyjnej krzywych wzrostu kryształów, jak omówiono powyżej. Porównania pomiędzy roztworami różnych modeli przeprowadzano za pomocą jednolitej analizy wariancji.
P r z y k ł a d VIII
Roztwór żółci modelowej posiadał następujący skład:
cholesterol 15 mM, EYL 30 ml, NaTC 150 ml. Roztwór przygotowano zgodnie ze sposobem opisanym w przykładzie VII. W roztworach badanych 20% molowych NaTC zastąpiono równoważną ilością moli każdego z badanych charakterystycznych koniugatów kwasów tłuszczowych z kwasami żółciowymi. Wyniki otrzymane dla koniugatów nasyconych kwasów tłuszczowych o długości łańcucha C14, C16, C18 i C20, odpowiednio, skoniugowanych z kwasem cholowym w położeniu C3 przedstawiono na fig. 2 i 3.
Figura 2 przedstawia wpływ tych koniugatów na masę kryształów cholesterolu po 14 dniach inkubacji roztworów kontrolnych i badanych. Wszystkie powyższe koniugaty zmniejszały końcową masę kryształów w porównaniu z roztworem kontrolnym. Koniugat z kwasem C18 zmniejszał masę do 14% w odniesieniu do kontrolnej; koniugat z kwasem C20 zmniejszał ją do 38%.
Koniugat z kwasem C22 badany w innym doświadczeniu wykazał podobny wpływ do wpływu kwasu C20.
Figura 3 przedstawia czas powstawania zarodków krystalizacji (czas zaobserwowania kryształów) w różnych badanych roztworach, w porównaniu do roztworu kontrolnego. Zastą pienie 20% soli ż ółciowej (NaTC) przez specyficzne koniugaty powodowało wydłużenie czasu powstawania zarodków krystalizacji dla koniugatów z kwasami C16, C18 i C20. Kwas C14 nie przedłużał czasu powstawania zarodków krystalizacji. Koniugat z kwasem C20 wydłużył czas powstawania kryształów o ponad 360%.
P r z y k ł a d IX
Zebraną ludzką żółć z pęcherzyków żółciowych, otrzymaną w czasie operacji wzbogacono o stężony roztwór lipidów w celu wzmacniania krystalizacji cholesterolu. Koń cowe stężenie dodanych lipidów w żółci wynosiło NaTC 60 mM, EYL 18,4 mM i cholesterol 9,2 mM. Wzbogaconą żółć odwirowywano przy prędkości 50 000 obrotów/minutę, w czasie 1 godziny, usuwając kryształy cholesterolu i nastę pnie przenoszono do 4 fiolek. Pierwsza fiolka zawiera ł a tylko wzbogaconą ż ó łć (kontrolna). Do pozostałych 3 fiolek dodawano następujące roztwory (w ilości 5 mM): kwas cholowy, C-18 cholan (stearoilo) i C-20 cholan (arachidylo). Po 22 dniach inkubacji w temperaturze 37°C wszystkie próbki żółci odwirowywano przy prędkości 70000 obrotów/minutę w czasie 5 minut. Osady oddzielano i chemicznie oznaczano w nich zawartość cholesterolu. Wyniki przedstawiono na rysunku fig. 4, jako mikromole cholesterolu w oddzielonych kryształach. Oczywistym jest, że oba koniugaty soli żółciowych z kwasami tłuszczowymi bardzo znacznie zmniejszały krystalizację cholesterolu w porównaniu do żółci kontrolnej z lub bez kwasu cholowego.
P r z y k ł a d X
Roztwór żółci modelowej przygotowano sposobem opisanym w przykładzie VII z takim samym składem lipidów i zastosowano jak kontrolę. We wszystkich innych próbkach 20% molowych NaTC zastąpiono równoważnymi ilościami moli: kwasu cholowego, cholanu C18, cholanu C20 (wszystkie te nasy10
PL 199 271 B1 cone kwasy tłuszczowe skoniugowano w położeniu C3 cholanu) i distearoiloursodezoksycholanu (z rodnikami kwasu stearynowego skoniugowanymi w położeniu C3 i C7 kwasu żółciowego).
Wszystkie próbki inkubowano w temperaturze 37°C w ten sam sposób jak opisano w przykładzie VII i oznaczano czas powstawania kryształów przez okresową obserwację w mikroskopie świetlnym. Wyniki przedstawiono na rysunku fig. 5. Wyniki udowodniły, że: 1) Wszystkie badane koniugaty (BAFAC) spowalniały krystalizację cholesterolu w porównaniu z kontrolną żółcią modelową i taką samą ilością moli kwasu cholowego. 2) BAFAC z kwasami tłuszczowymi o dłuższych łańcuchach są bardziej skuteczne niż te z kwasami o krótszych łańcuchach. 3) Koniugaty z 2 rodnikami kwasu tłuszczowego (distearoiloursodezoksycholan) są szczególnie skuteczne.
P r z y k ł a d XI
Absorpcja i transport stearoilocholanu (C-18 cholan)
Samicom chomików o masie 80 - 100 g podawano jednorazową dawkę 30 mg cholanu C-18 przez podanie dożołądkowe. Pojedyncze zwierzęta uśmiercano po 1, 2 i 3 godzinach od podania. Pobierano krew sercową, krew wrotną i żółć z pęcherzyka żółciowego. Badano równolegle dwie grupy zwierząt (A i B). Poziomy stearoilocholanu oznaczano za pomocą HPLC (Kontron Switzerland) z zastosowaniem detektora UV przy 206 nm.
Wyniki przedstawiono na fig. 6A i 6B.
W grupie A: Poziomy krwi sercowej po 1, 2 i 3 godzinach wynosiły 99, 7,2 μΜ, podczas gdy poziomy w krwi wrotnej wynosiły 68, 99 i 133 μM, odpowiednio. Poziomy cholanu C-18 w żółci z pęcherzyka żółciowego wynosiły 540 i 270 μM po 2 i 3 godzinach, odpowiednio. Wyniki w grupie B były podobne.
Wyniki wskazują, że: 1) cholan C-18 (stearoilo) jest absorbowany z jelita. 2) Jest transportowany zarówno krążeniem układowym (przez limfę) jak i przez żyłę wrotną. 3) jest aktywnie wydzielany do żółci i w niej zatężany.
P r z y k ł a d XII
Roztwór żółci modelowej przygotowano tym samym sposobem, jaki opisano w przykładzie VII. Posiadał on taki sam skład lipidowy i uznany był jako kontrola.
W badanych roztworach kwas cholowy, stearoilocholan (C - 18 : 0) i oleoilocholan (C - 18 : 1) do dawano w stężeniu 20 mM.
Wszystkie próbki inkubowano w temperaturze 37°C w czasie 100 godzin. Różnice w optycznej gęstości pomiędzy 100 godziną i 0 godziną (jak opisano w przykładzie VII) zastosowano do oznaczenia całkowitej masy kryształów w 100 godzinie. W porównaniu z kontrolnym roztworem (100%) masa kryształów z kwasem cholowym wynosiła 114%, ze stearoilocholanem 62% i z oleoilocholanem 55%.
Wyniki te dowodzą, że BAFAC zarówno z nasyconym jak i nienasyconym (olejowy) kwasem zmniejszają krystalizację cholesterolu w porównaniu z kontrolną żółcią i z równomolowymi ilościami kwasu cholowego.

Claims (22)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym, o wzorze ogólnym II,
    W - X - G znamienne tym, że G oznacza rodnik kwasu żółciowego lub soli żółciowej, W oznacza jeden lub dwa rodniki kwasu tłuszczowego oraz X oznacza grupę wiążącą pomiędzy wymienionym rodnikiem kwasu żółciowego lub soli żółciowej i kwasem(ami) tłuszczowym(ymi), przy czym wspomnianą grupą wiążącą jest -NH-.
  2. 2. Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1, znamienne tym, że kwasy żółciowe wybrane są z grupy obejmującej kwas cholowy, kwas chenodezoksycholowy, ursodezoksycholowy, dezoksycholowy oraz ich pochodne i ich analogi.
  3. 3. Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1 albo 2, znamienne tym, że kwas żółciowy jest sprzężony z glicyną, tauryną lub odpowiednim aminokwasem.
  4. 4. Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1 albo 2, albo 3, znamienne tym, że rodnik kwasu tłuszczowego wprowadzono w położeniu 3 cząsteczki kwasu żółciowego.
    PL 199 271 B1
  5. 5. Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1 albo 2, albo 3, znamienne tym, że rodnik kwasu tłuszczowego wprowadzono w położeniu wybranym spośród położeń 6, 7, 12 i 24 w cząsteczce kwasu żółciowego.
  6. 6. Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1 albo 2, albo 3, albo 4, albo 5, znamienne tym, że rodnik kwasu tłuszczowego wprowadzono do kwasu żółciowego w konfiguracji α lub β.
  7. 7. Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1 albo 2, albo 3, albo 4, albo 5, albo 6, znamienne tym, że kwasy tłuszczowe są nasyconymi kwasami tłuszczowymi o 6 do 26 atomach węgla.
  8. 8. Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 7, znamienne tym, że nasycone kwasy tłuszczowe posiadają 14 do 22 atomów węgla.
  9. 9. Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 7 albo 8, znamienne tym, że nasycony kwas tłuszczowy jest wybrany spośród kwasu behenylowego, kwasu arachidylowego, kwasu stearynowego, kwasu palmitynowego i kwasu mirystynowego.
  10. 10. Koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1, znamienny tym, że stanowi kwas 3e-behenyloamido-7a,12a-dihydroksy-5-cholan-24-owy.
  11. 11. Koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1, znamienny tym, że stanowi kwas 3e-arachidyloamido-7a,12a-dihydroksy-5-cholan-24-owy.
  12. 12. Koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1, znamienny tym, że stanowi kwas 3e-stearyloamido-7a,12a-dihydroksy-5-cholan-24-owy.
  13. 13. Koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1, znamienny tym, że stanowi kwas 3e-palmityloamido-7a,12a-dihydroksy-5-cholan-24-owy.
  14. 14. Koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1, znamienny tym, że stanowi kwas 3e-mirystyloamido-7a,12a-dihydroksy-5-cholan-24-owy.
  15. 15. Koniugat kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1, znamienny tym, że stanowi N-(karboksymetylo)-3e-stearyloamido-7a,12a-dihydroksy-5e-cholan-24-amid.
  16. 16. Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym według zastrz. 1 albo 2, albo 3, albo 4, albo 6, albo 7, albo 8, albo 9, znamienne tym, że W oznacza dwa kwasy tłuszczowe sprzężone w położeniu 3 i 7 cząsteczki kwasu żółciowego.
  17. 17. Kompozycja farmaceutyczna zdolna do rozpuszczania cholesterolowych kamieni żółciowych w żółci i zapobiegania ich powstawaniu oraz zdolna do zapobiegania i/lub zmniejszania stwardnienia tętnic, znamienna tym, że jako składnik aktywny zawiera pochodną kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym o wzorze ogólnym II jak określono w zastrz. 1 - 16.
  18. 18. Kompozycja farmaceutyczna według zastrz. 17, znamienna tym, że jest w postaci wybranej z grupy obejmującej tabletkę, kapsułkę, roztwór i emulsję.
  19. 19. Kompozycja farmaceutyczna według zastrz. 17 albo 18, znamienna tym, że zawiera dodatkowo związek wybrany z grupy obejmującej nośnik, rozpuszczalnik, emulgator, czynnik zwiększający absorbcję i inhibitor syntezy cholesterolu lub wydzielania go do żółci.
  20. 20. Kompozycja farmaceutyczna według zastrz. 17 albo 18, albo 19, znamienna tym, że zawiera 0,1 - 1,5 g składnika aktywnego.
  21. 21. Zastosowanie koniugatu kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym jak określono w zastrz. 1 - 16 lub kompozycji farmaceutycznej jak określono w zastrz. 17 - 20 do rozpuszczania cholesterolowych kamieni żółciowych w żółci i zapobiegania ich powstawaniu.
  22. 22. Zastosowanie koniugatu kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym jak określono w zastrz. 1 - 16 lub kompozycji farmaceutycznej jak określono w zastrz. 17 - 20 do zapobiegania i/lub zmniejszania stwardnienia tętnic.
PL343360A 1998-04-08 1999-03-25 Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym, zawierająca je kompozycja farmaceutyczna oraz ich zastosowanie PL199271B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
IL12399898A IL123998A (en) 1998-04-08 1998-04-08 Conjugates of bile salts and pharmaceutical preparations containing them
PCT/IL1999/000173 WO1999052932A1 (en) 1998-04-08 1999-03-25 Fatty acid derivatives of bile acids and bile acid derivatives

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL343360A1 PL343360A1 (en) 2001-08-13
PL199271B1 true PL199271B1 (pl) 2008-09-30

Family

ID=11071405

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL343360A PL199271B1 (pl) 1998-04-08 1999-03-25 Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym, zawierająca je kompozycja farmaceutyczna oraz ich zastosowanie

Country Status (25)

Country Link
US (3) US6395722B1 (pl)
EP (1) EP1071702B1 (pl)
JP (1) JP5031942B2 (pl)
KR (1) KR100615560B1 (pl)
CN (1) CN100386339C (pl)
AT (1) ATE222923T1 (pl)
AU (1) AU742944B2 (pl)
BR (1) BRPI9909908B8 (pl)
CA (1) CA2325933C (pl)
CZ (1) CZ300824B6 (pl)
DE (1) DE69902647T2 (pl)
DK (1) DK1071702T3 (pl)
EA (1) EA003392B1 (pl)
ES (1) ES2183526T3 (pl)
HU (1) HU229513B1 (pl)
ID (1) ID26042A (pl)
IL (1) IL123998A (pl)
NO (1) NO316875B1 (pl)
NZ (1) NZ507309A (pl)
PL (1) PL199271B1 (pl)
PT (1) PT1071702E (pl)
SI (1) SI1071702T1 (pl)
TR (1) TR200002876T2 (pl)
UA (1) UA70318C2 (pl)
WO (1) WO1999052932A1 (pl)

Families Citing this family (45)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IL142650A (en) 1998-04-08 2007-06-03 Galmed Int Ltd Use of bile acid conjugates or bile salts and fatty acids or fatty acids in the preparation of pharmaceuticals for lowering cholesterol, for the treatment of fatty liver and for the treatment of hyperglycemia and diabetes
IL123998A (en) * 1998-04-08 2004-09-27 Galmed Int Ltd Conjugates of bile salts and pharmaceutical preparations containing them
US20030083231A1 (en) * 1998-11-24 2003-05-01 Ahlem Clarence N. Blood cell deficiency treatment method
US8975246B2 (en) 2001-04-17 2015-03-10 Galmed Research And Development Ltd. Bile acid or bile salt fatty acid conjugates
US7053076B2 (en) 2001-08-29 2006-05-30 Xenoport, Inc. Bile-acid derived compounds for enhancing oral absorption and systemic bioavailability of drugs
ITMI20021025A1 (it) * 2002-05-14 2003-11-14 Nicox Sa Farmaci per il trattamento acuto di disfunzioni del circolo venoso epatico e portale
US20080026077A1 (en) * 2002-11-12 2008-01-31 John Hilfinger Methods and compositions of gene delivery agents for systemic and local therapy
US7906137B2 (en) * 2004-05-21 2011-03-15 Mediplex Corporation, Korea Delivery agents for enhancing mucosal absorption of therapeutic agents
US8304383B2 (en) * 2005-11-22 2012-11-06 Atheronova Operations, Inc. Dissolution of arterial plaque
US20090035348A1 (en) * 2005-11-22 2009-02-05 Z & Z Medical Holdings, Inc. Dissolution of arterial plaque
WO2007084549A2 (en) * 2006-01-20 2007-07-26 Filiberto Zadini Drug-eluting stent with atherosclerotic plaques dissolving pharmacological preparation
US20080038385A1 (en) * 2006-03-13 2008-02-14 Nutracea Therapeutic uses of an anti-cancer composition derived from rice bran
US20070212470A1 (en) * 2006-03-13 2007-09-13 Nutracea Therapeutic uses of an anti-cancer composition derived from rice bran
US20090305943A1 (en) * 2006-07-18 2009-12-10 Sven Siegel Cyclodextrin blends with crystal growth inhibitors
CA2685127C (en) 2007-04-23 2019-01-08 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Glycoconjugates of rna interference agents
WO2008144458A1 (en) * 2007-05-15 2008-11-27 Z & Z Medical Holdings, Inc. Dissolution of arterial cholesterol plaques by pharmacologically induced elevation of endogenous bile salts
SI2182954T1 (sl) * 2007-07-25 2019-04-30 Medizinische Universitat Graz Uporaba nor-žolčnih kislin pri zdravljenju arterioskleroze
CN101367859B (zh) * 2007-08-17 2011-05-11 中国人民解放军军事医学科学院毒物药物研究所 脂肪酸胆汁酸偶合物及其医药用途
CZ301037B6 (cs) * 2007-09-06 2009-10-21 Vysoká škola chemicko-technologická v Praze Amidové konjugáty steroidních a žlucových kyselin s D-glukosaminem a zpusob jejich prípravy
EP2231194B1 (en) 2007-12-04 2017-02-22 Alnylam Pharmaceuticals Inc. Folate-irna conjugates
CA2708173C (en) 2007-12-04 2016-02-02 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Targeting lipids
US20100021538A1 (en) * 2008-02-29 2010-01-28 Youngro Byun Pharmaceutical compositions containing heparin derivatives
WO2009126933A2 (en) 2008-04-11 2009-10-15 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Site-specific delivery of nucleic acids by combining targeting ligands with endosomolytic components
CA2779413A1 (en) 2008-11-03 2010-06-03 Tufts University Methods and compositions for inhibiting clostridium difficile spore germination and outgrowth
US20120157419A1 (en) * 2009-02-02 2012-06-21 Tuvia Gilat Methods and compositions for treating alzheimer's disease
GB2480632A (en) 2010-05-25 2011-11-30 Kythera Biopharmaceuticals Inc Preparation of 12-keto and 12-alpha-hydroxy steroids
CN102115486B (zh) * 2009-12-30 2015-06-03 上海特化医药科技有限公司 一种3-β-花生酰胺基-7α,12α,5β-胆烷-24-羧酸的制备方法
TWI572616B (zh) * 2011-06-16 2017-03-01 凱瑟拉生物製藥有限公司 去氧膽酸之組成物及用途及其相關方法
US20160175324A1 (en) * 2013-08-08 2016-06-23 Galderm Therapeutics Ltd. Anti-acne compositions comprising bile acid-fatty acid conjugates
DK3077047T3 (da) * 2013-12-04 2019-07-15 Galmed Res & Development Ltd Aramcholsalte
US11571431B2 (en) 2013-12-04 2023-02-07 Galmed Research And Development Ltd Aramchol salts
WO2016199137A1 (en) 2015-06-10 2016-12-15 Galmed Research And Development Ltd. Low dose compositions of aramchol salts
WO2015186126A1 (en) * 2014-06-01 2015-12-10 Galmed Research And Development Ltd. Fatty acid bile acid conjugates for treatment of lipodystrophy
JOP20200092A1 (ar) 2014-11-10 2017-06-16 Alnylam Pharmaceuticals Inc تركيبات iRNA لفيروس الكبد B (HBV) وطرق لاستخدامها
IL243707A0 (en) 2016-01-20 2016-05-01 Galmed Res And Dev Ltd Treatment to regulate the microbiota in the intestine
CN106496300B (zh) * 2016-10-19 2018-05-18 上海博志研新药物技术有限公司 花生胆酸及其中间体的制备方法
US11197870B2 (en) 2016-11-10 2021-12-14 Galmed Research And Development Ltd Treatment for hepatic fibrosis
BR112019009509A2 (pt) * 2016-11-10 2019-07-30 Galmed Res And Development Ltd inibição de fibrose em pacientes com doença hepática gordurosa não alcoólica
US11324820B2 (en) 2017-04-18 2022-05-10 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Methods for the treatment of subjects having a hepatitis b virus (HBV) infection
CN110730785B (zh) 2017-06-07 2022-05-17 苏州科睿思制药有限公司 一种脂肪酸胆汁酸偶合物的晶型及其制备方法和用途
EP3837366A1 (en) 2018-08-13 2021-06-23 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Hepatitis b virus (hbv) dsrna agent compositions and methods of use thereof
IT202000000328A1 (it) 2020-01-10 2021-07-10 Ice S P A Metodo di preparazione dell'aramchol
CN114524857B (zh) * 2022-02-22 2023-06-30 中国科学院微生物研究所 胆酸衍生物及其应用
CN116687850A (zh) 2022-02-24 2023-09-05 甘莱制药有限公司 包含环状膦酸酯化合物的药物组合物及其制备方法与用途
WO2023227723A1 (en) * 2022-05-26 2023-11-30 Pharmazell Gmbh An improved process for the preparation of aramchol and salts thereof

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3856953A (en) * 1973-05-15 1974-12-24 Intellectual Property Dev Corp Method of treating fatty liver
IT1167478B (it) * 1981-07-24 1987-05-13 Carlo Scolastico Derivati dell'acido ursodesossicolico
IT1167479B (it) * 1981-07-24 1987-05-13 Carlo Scolastico Derivati dell'acido chenodesossicolico
DE3930696A1 (de) * 1989-09-14 1991-03-28 Hoechst Ag Gallensaeurederivate, verfahren zu ihrer herstellung, verwendung als arzneimittel
IL123998A (en) * 1998-04-08 2004-09-27 Galmed Int Ltd Conjugates of bile salts and pharmaceutical preparations containing them
DE19824123A1 (de) * 1998-05-29 1999-12-02 Hoechst Marion Roussel De Gmbh Gallensäurederivat, Verfahren zu deren Herstellung, diese Verbindungen enthaltende Arzneimittel und deren Verwendung

Also Published As

Publication number Publication date
BR9909908B1 (pt) 2014-03-18
WO1999052932A1 (en) 1999-10-21
JP2002511482A (ja) 2002-04-16
CA2325933A1 (en) 1999-10-21
NZ507309A (en) 2003-06-30
BRPI9909908B8 (pt) 2021-05-25
US6384024B1 (en) 2002-05-07
PT1071702E (pt) 2003-01-31
HUP0101653A2 (hu) 2001-12-28
HU229513B1 (en) 2014-01-28
US6589946B2 (en) 2003-07-08
EA200000888A1 (ru) 2001-04-23
JP5031942B2 (ja) 2012-09-26
DE69902647D1 (de) 2002-10-02
AU742944B2 (en) 2002-01-17
KR100615560B1 (ko) 2006-08-25
EA003392B1 (ru) 2003-04-24
ES2183526T3 (es) 2003-03-16
IL123998A (en) 2004-09-27
ATE222923T1 (de) 2002-09-15
CN1296492A (zh) 2001-05-23
SI1071702T1 (en) 2003-04-30
CN100386339C (zh) 2008-05-07
EP1071702B1 (en) 2002-08-28
UA70318C2 (uk) 2004-10-15
US20020091111A1 (en) 2002-07-11
DK1071702T3 (da) 2002-12-30
US6395722B1 (en) 2002-05-28
EP1071702A1 (en) 2001-01-31
NO20004998L (no) 2000-12-06
CZ20003625A3 (cs) 2001-01-17
ID26042A (id) 2000-11-16
NO316875B1 (no) 2004-06-07
CZ300824B6 (cs) 2009-08-19
DE69902647T2 (de) 2003-04-24
AU3051599A (en) 1999-11-01
CA2325933C (en) 2008-06-10
KR20010042342A (ko) 2001-05-25
HUP0101653A3 (en) 2002-02-28
PL343360A1 (en) 2001-08-13
TR200002876T2 (tr) 2000-12-21
BR9909908A (pt) 2000-12-26
NO20004998D0 (no) 2000-10-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL199271B1 (pl) Koniugaty kwasu żółciowego lub soli żółciowej z kwasem tłuszczowym, zawierająca je kompozycja farmaceutyczna oraz ich zastosowanie
US5571795A (en) Derivative-compound-conjugates and pharmaceutical compositions comprising same
US6077837A (en) Prodrugs with enhanced penetration into cells
JP2592870B2 (ja) 17β−N−モノ置換カルバモイル−4−アザ−5α−アンドロスタン−3−オンの酸化同族体
EP0088046A2 (de) Lipide in wässriger Phase
US5587505A (en) Triterpene derivatives and endothelin-receptor antagonists containing the same
GB2039217A (en) Anti-inflammatory medicaments comprising glycosides of sterols or spiroketal steroids or esters thereof
BR9814053B1 (pt) diésteres lipofìlicos de agentes de quelação.
EP0393180B1 (en) 26-aminocholesterol and derivatives and analogs thereof in the regulation of cholesterol accumulation in body tissue
AU718796B2 (en) Polyol succinates and their pharmaceutical formulation
CN101367859B (zh) 脂肪酸胆汁酸偶合物及其医药用途
MXPA00009863A (en) Fatty acid derivatives of bile acids and bile acid derivatives
EP0527832A1 (en) Anti-fungal bile acid derivatives
JPS6363698A (ja) 胆汁酸誘導体およびその塩ならびにその製造法
EP0489933A1 (en) Bile alcohol and drug containing the same as active ingredient
JPS62207211A (ja) 脂質組成物
KR20010052673A (ko) 에스트로겐 안타고니스트의 프로드럭