PL164754B1 - Sposób wytwarzania koncentratu kompleksu czynnika krzepniecia krwi VIII z czynnikiemWlllebranda PL PL PL PL PL - Google Patents
Sposób wytwarzania koncentratu kompleksu czynnika krzepniecia krwi VIII z czynnikiemWlllebranda PL PL PL PL PLInfo
- Publication number
- PL164754B1 PL164754B1 PL90286746A PL28674690A PL164754B1 PL 164754 B1 PL164754 B1 PL 164754B1 PL 90286746 A PL90286746 A PL 90286746A PL 28674690 A PL28674690 A PL 28674690A PL 164754 B1 PL164754 B1 PL 164754B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- chromatography
- buffer
- resin
- plasma
- complex
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/745—Blood coagulation or fibrinolysis factors
- C07K14/755—Factors VIII, e.g. factor VIII C (AHF), factor VIII Ag (VWF)
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Hematology (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
- Crystals, And After-Treatments Of Crystals (AREA)
Abstract
1. Sposób wytwarzania koncentratu kompleksu czynnika krzepniecia krwi VIII z czynni- kiem Willebranda o wysokiej aktywnosci swoistej przez stracanie zanieczyszczonych bialek srodkami chemicznymi i chromatografie anionowymienna, znamienny tym, ze pelna plazme oczyszcza sie wstepnie przez podwójne traktowanie chlorkiem baru i wodorotlenkiem glino- wym, nastepnie odsala sie przez ultrafiltracje roztworu wobec buforu podstawowego stosowa- nego w chromatografii opartego na cytrynianie sodowym i chlorku wapniowym z dodatkiem heparyny albo przez chromatografie na kolumnie Sephadex G 50 eluowanej buforem podsta- wowym uzywanym w chromatografii z dodatkiem heparyny, a nastepnie supernatant plazmy z etapu wstepnego oczyszczania nanosi sie na kolumne chromatograficzna wypelniona zelem zywicy anionowymiennej opartym na polimerze winylowym, do którego wprowadzono grupy funkcyjne dietyloaminoetylowe, trimetyloaminoetylowe lub dimetyloaminoetylowe i kompleks czynnika krzepniecia krwi VIII z czynnikiem Willebranda desorbuje sie z kolumny przez zwiekszenie sily jonowej buforu do 0,27 M chlorku sodowego i ewentualnie oczyszcza sie i zateza bialka zawarte w wycieku z kolumny chromatograficznej. PL PL PL PL PL
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania z pełnej plazmy koncentratu kompleksu czynnika krzepnięcia krwi VIII z czynnikiem Willebranda o wysokiej aktywności swoistej.
Leczenie hemofilii A iniekcjami czynnika krzepnięcia krwi VIII jest często stosowane w praktyce lekarskiej. Wymaga to stosowania preparatów o wysokiej czystości zarówno ze względu na zmniejszenie ryzyka zakażeń wirusowych z jednej strony jak i dlatego, że te iniekcje muszą być często powtarzane i każda pozostałość zanieczyszczająca preparat mogłaby wywołać niepożądane reakcje immunologiczne, groźne dla pacjenta.
W przemyśle stosuje się obecnie szereg metod przerobu plazmy ludzkiej dla oczyszczenia czynnika krzepnięcia krwi VIII. Do metod tych należą: strącanie zanieczyszczających białek różnymi środkami chemicznymi, chromatografia przenikania przez żel, chromatografia powinowactwa immunologicznego, chromatografia jonowymienna i różne kombinacje tych metod.
Czynnik krzepnięcia krwi VIII występuje w plaźmie w bardzo małych ilościach, co powoduje, że wydajność procesu oczyszczania jest głównym problemem, z którym borykają się producenci. Ponadto, czynnik VIII jest białkiem nietrwałym i takim, które może być aktywowane przez inne czynniki krwi. W stanie aktywacji traci jednak swą wartość leczniczą, dlatego dawka końcowego preparatu musi być dostosowana do danego procesu oczyszczania.
W opisie zgłoszenia patentowego Francji nr 88 07 530 ujawniony jest sposób oczyszczania z zastosowaniem chromatografii jonowymiennej. Sposób ten umożliwia uzyskanie koncentratu czynnika krzepnięcia krwi VIII o wysokiej czystości. Jednak, tak jak w metodach stosowanych przez innych wytwórców, jako materiał wyjściowy stosuje się w nim frakcję plazmy po krioprecypitacji. Stadium krioprecypitacji powoduje jednakże 30 - 40 procentową stratę czynnika krzepnięcia krwi VIII, pozostającego w supernatancie.
Celem wynalazku było zatem opracowanie takiego sposobu, w którym materiałem wyjściowym byłaby pełna plazma nie poddawana krioprecypitacji, co pozwoliłoby zmniejszyć straty czynnika VIII. Taki uproszczony proces byłby poza tym bardzo korzystny dla ubogo wyposażonych w urządzenia wydziałów produkcyjnych, gdzie prowadzenie procesu krioprecypitacji może stanowić dużą trudność.
Zgodnie z wynalazkiem opracowano prosty sposób oczyszczania czynnika krzepnięcia krwi z pełnej plazmy, który umożliwia uzyskanie koncentratu o wysokiej stabilności i wysokiej czystości, z bardzo dobrą wydajnością.
Przedmiotem wynalazku jest zatem sposób wytwarzania koncentratu czynnika krzepnięcia krwi VIII z pełnej plazmy, polegający na wstępnym oczyszczaniu w celu usunięcia składników kompleksu protrombiny (czynnik II, VII, IX i X) i następnym oczyszczaniu w procesie chromatografii jonowymiennej, w którym przez dobór odpowiedniego żelu i buforu eluującego uzyskuje się kompleks czynnika krzepnięcia krwi VIII z czynnikiem Willebranda o wysokiej czystości.
Sposób wytwarzania stabilnego koncentratu kompleksu czynnika krzepnięcia krwi z czynnikiem Willebranda o wysokiej aktywności swoistej przez strącanie zanieczyszczających białek środkami chemicznymi i chromatografię anionowymienną, polega na tym, że pełną plazmę oczyszcza się wstępnie przez podwójne traktowanie chlorkiem baru i wodorotlenkiem glinowym, następnie odsala się przez ultrafiltrację roztworu wobec buforu podstawowego w chromatografii opartego na cytrynianie sodowym i chlorku wapniowym z dodatkiem heparyny albo przez chromatografię na kolumnie Sephadex G50 eluowanej buforem podstawowym używanym w chromatogra4
164 754 fii z dodatkiem heparyny, a następnie supernatant plazmy z etapu wstępnego oczyszczania nanosi się na kolumnę chromatograficzną wypełnioną żelem żywicy anionowymiennej opartym na polimerze winylowym, do którego wprowadzono grupy funkcyjne dietyloaminoetylowe, trimetyloaminoetylowe lub dimetyloaminoetylowe i kompleks czynnika krzepnięcia krwi VIII z czynnikiem Willebranda desorbuje się z kolumny przez zwiększenie siły jonowej buforu do 0,27 M chlorku sodowego i ewentualnie oczyszcza się i zatęża białka zawarte w wycieku z kolumny chromatograficznej. Sposób ten może być również wykorzystany, po dodatkowym etapie oczyszczania, do wytwarzania oczyszczonych roztworów innych białek plazmy, takich jak fibrynogen, fibronektyna, albumina, immunoglobuliny i antytrombina III.
W sposobie według wynalazku stosuje się plazmę ludzką, ale równie dobrze nadaje się do przerobu plazmy pochodzenia zwierzęcego.
W sposobie według wynalazku jako materiał wyjściowy stosuje się pełną plazmę, świeżą albo zamrożoną w celu jej konserwacji ale nie plazmę po krioprecypitacji. Korzystnie, plazmę tę zbiera się i przechowuje z dodatkiem roztworu anty-koagulującego lub stabilizującego, zazwyczaj mieszaniny cytrynianu, glukozy i fosforanu. Można jednak użyć dowolny środek będący specyficznym stabilizatorem dla czynnika VIII oprócz lub zamiast powyższej mieszaniny.
Jako roztwór stabilizujący materiał wyjściowy plazmy stosuje się korzystnie mieszaninę 0,2 - 2 jednostki/ml heparyny, 1 - 5mM kwasu dietylenotetraoctowego (EDTA) i 1 - 10 mM CaCl2 i ewentualnie glukozy w stężeniu 5-60 g/litr.
W sposobie według wynalazku etap wstępnego oczyszczania polega, jak wspomniano, na strącaniu chlorkiem baru i adsorpcji na żelu wodorotlenku glinu.
W procesie traktowania chlorkiem baru, korzystnie odczyn plazmy doprowadza się do wartości pH = 6,5, następnie dodaje się 1 M roztwór chlorku baru do czasu osiągnięcia końcowego stężenia 0,08 M mieszając, po czym mieszaninę wiruje się w temperaturze 5 - 10°C w celu usunięcia strąconych białek i zbiera się supernatant. Zebrane, strącone białka korzystnie stosuje się do wytwarzania kompleksu protrombiny lub jego składników.
Supernatant kontaktuje się z 3 procentowym żelem wodorotlenku glinu przy pH równym 6,5. Żel adsorbuje pozostałe zanieczyszczające białka. Po schłodzeniu do temperatury 5 - 8°C w kriostacie i wirowaniu w temperaturze 5°C zbiera się supernatant, który przechowuje się w temperaturze 5 - 8°C. Supernatant poddaje się odsoleniu. Odsolenie prowadzi się albo przez ultrafiltrację wobec buforu podstawowego stosowanego w następnym etapie chromatografii, z dodatkiem 0,5 - 2 jednostek heparyny/ml, albo przez chromatografię na Sephadex'sie G25 w tym samym buforze.
Następnym etapem sposobu według wynalazku jest rozdział metodą chromatografii anionowymiennej. W opisie zgłoszenia patentowego Francji 88 07 530 zgłaszający podał korzyści wynikające z zastosowania żywicy o małej sile wymiany jonowej i dużych rozmiarach porów, co pozwala na zatrzymywania cząsteczek o bardzo dużych rozmiarach. Ta przedłużona retencja pozwala na utworzenie lekko hydrofobowych wiązań z żywicą, a dobór odpowiedniej siły jonowej buforu umożliwia desorpcję zatrzymanych w żywicy cząsteczek. Żywice tego typu są dostępne w handlu pod ogólną nazwą „Fractogel“. Żywice tego typu są również znane jak Toyopearl, czyli pod japońską nazwą handlową pochodzącą od nazwisk wynalazców Toyo i Soda, które są kopolimerami glikolu oligoetylenowego, metakrylanu glicydylu i dimetyloakrylanu pentaerytrytu. W sposobie można zastosować żywice DEAE-Fractogel 650 i T- albo D-MAE-Fractogel (Merck), czyli żywice mające grupy funkcyjne dietyloaminoetylowe (DEAE), trimetyloaminoetylowe (T-MAE) lub dimetyloaminoetylowe (D-MAE). Ostatnio, te same żywice są dostępne w formie opisanej przez dostawcę jako „żywice mackowate“ (tentacular type resins). Żywice te mają zmodyfikowaną strukturę matrycy w kierunku zwiększenia powierzchni wiązania ładunków dodatnich, co może korzystnie wpływać na zwiększenie pojemności właściwej żelu.
Jako bufor podstawowy dla kolumny chromatograficznej stosuje się bufor oparty na cytrynianie sodowym i chlorku sodowym, doprowadzony do pH o wartości 7 i korzystnie zawierający chlorek wapniowy w stężeniu 0,5 - 6mM, lizynę w stężeniu 2 - 4 g/litr i glicynę w stężeniu 8 -11 g/litr, albo bufor oparty na cytrynianie sodowym i chlorku wapniowym, zawierający glicynę i lizynę, do którego dodaje się 0,11 M chlorku sodowego i doprowadza się jego pH do wartości 7.
W praktycznym wykonaniu sposobu stosuje się określony wzrost stężenia chlorku sodowego.
164 754
W etapie oczyszczania wtryskuje się wstępnie oczyszczony preparat na kolumnę chromatograficzną. W określonych warunkach (0.11MNaCl) kolumna wiąże cząsteczki o bardzo dużych rozmiarach, takie jak kompleks czynnika Willebranda z czynnikiem krzepnięcia krwi VIII a fibrynogen, albumina, immunoglobuliny, antytrombina III i fibronektyna wyciekają z kolumny z filtratem.
W korzystnym wykonaniu wynalazku, w którym celem jest uzyskanie optymalnej wydajności odzysku czynnika krzepnięcia krwi VIII, zwiększa się siłę jonową buforu do eluowania z kolumny chromatograficznej tylko do wartości 0,27 M chlorku sodowego. W innym wykonaniu wynalazku ten etap eluowania jest poprzedzony wymywaniem wstępnym, ze zwiększeniem siły jonowej do 0,13 M chlorku sodowego, co pozwala na usunięcie fibronektyny. Desorbowany i eluowany z kolumny w tych warunkach kompleks czynnika VIII z czynnikiem Willebranda posiada aktywność swoistą rzędu co najmniej 5 - 10 jednostek/mg. Całkowita wydajność procesu wynosi co najmniej 350 jednostek/litr wyjściowej plazmy, a jeśli do wyjściowej plazmy dodaje się mieszaninę stabilizacyjną opisaną powyżej, wówczas można uzyskać co najmniej 500 jednostek/litr.
Zależnie od przeznaczenia, roztwór kompleksu czynnika VIII z czynnikiem Willebranda można dalej oczyszczać w dodatkowym etapie oczyszczania, a zwłaszcza zatężenia w procesie chromatografii. Tak jak i poprzednio, tak i ten proces można prowadzić na żywicy DEAE- albo T-DMAE-Fractogel lub na innych żywicach. Można również stosować inne nośniki, takie jak siarczan dekstranu, immobilizowaną heparynę i żywice sulfopropylowe oraz żywice do chromatografii powinowactwa i do chromatografii powinowactwa immunologicznego.
Ten dodatkowy etap chromatografii prowadzi się w tym samym buforze podstawowym jaki stosuje się w poprzednim etapie. W korzystnym, praktycznym rozwiązaniu wynalazku, w którym celem jest uzyskanie czynnika VIII w postaci jak najbardziej stężonej tę dodatkową chromatografię prowadzi się w tych samych warunkach co pierwszą, to znaczy z jednym etapem desorpcji, zwiększając siłę jonową buforu do 0,27MNaCl. W innym rozwiązaniu wynalazku, początkowo zwiększa się siłę jonową buforu do 0,13 M, usuwając pozostałe białka zanieczyszczające, po czym zwiększa się siłę jonową buforu do 0,27 M dla odzyskania kompleksu czynnika krzepnięcia krwi VIII z czynnikiem Willebranda o aktywności swoistej równej co najmniej 10 - 20 jednostek/mg. Można również stosować etap dodatkowej chromatografii przy użyciu buforu o stężeniu 0,17 M chlorku sodowego, po czym zwiększa się raz siłę jonową tego buforu do 0,27 M.
Inne białka z pierwszego wycieku z kolumny, takie jak immunoglobuliny, albumina, antytrombina III, fibrynogen i fibronektyna może również oczyszczać i sporządzać stężone roztwory, wykorzystując konwencjonalne techniki chromatograficzne.
W sposobie według wynalazku prowadzi się również inaktywację wirusów znanymi technikami. W przypadku zastosowania środka chemicznego, na przykład działania rozpuszczalnikiemdetergentem, zaleca się przeprowadzenie tej operacji przed którymkolwiek etapem chromatograficznym, ponieważ chromatografia zapewnia usunięcie środków inaktywujących.
Jak wspomniano, sposobem według wynalazku wytwarza się koncentraty kompleksu czynnika krzepnięcia krwi VIII z czynnikiem Willebranda oraz koncentraty innych białek plazmy. Z koncentratów tych sporządza się formy leku zgodnie z wymaganiami farmakopealnymi i stosuje się je w celach leczniczych.
Następujące przykłady ilustrują przedmiot wynalazku.
Przykład I. Użyto 250 ml świeżej plazmy lub plazmy mrożonej, którą rozmrożono i doprowadzono do temperatury 22 - 25°C, zebranej w obecności antykoagulanta (środka stabilizującego, na przykład cytrynianu-dekstrozy-fosforanu), którą doprowadzono kwasem octowym do pH 6,5.
a) Oczyszczanie wstępne.
Do plazmy dodano 20 ml 1M chlorku baru przy pH 6,5 przy pomocy perystaltycznej do czasu uzyskania końcowego stężenia 0,08 M. Chlorek baru dodano z szybkością 4-8 ml/minutę, a następnie całość mieszano 15 minut w temperaturze pokojowej. Mieszaninę wirowano następnie 20 minut w temperaturze 8°C przy 2700 rpm i odzyskano supernatant.
Supernatant adsorbowano na żelu wodorotlenku glinu [Alhydrogel Eurobio z 3% Al(OH)3] w proporcji 2,3 g/l plazmy. Doprowadzono pH do 0,5 i w kriostacie obniżono temperaturę do 5°C. Mieszaninę wirowano 20 minut w temperaturze 5°C przy 2700 rpm i odzyskano supernatant w temperaturze 5°C. Obróbka ta umożliwia usunięcie składników kompleksu protrombiny (czynniki II, VII, IX, X), które zbiera się i oczyszcza stosując znane metody.
164 754
Szczególnie korzystne wyniki można uzyskać przez połączenie tych dwóch typów obróbki, natomiast sama obróbka Alhydrogelem nie umożliwia całkowitej eliminacji protrombiny i innych składników PPSB, czyli kompleksu protrombiny złożonego z protrombiny, prokonwertyny, czynnika Stuarta i czynnika B przeciw hemofilii lub czynnika IX, a obróbka chlorkiem baru jako taka będzie pozostawiała pewną ilość czynnika X, protrombiny i poza wszystkim czynnik VII. Zebrany w ten sposób supernatant odsalano albo przez ultrafiltrację w obecności buforu z następującego etapu chromatografii (patrz niżej), do którego dodano 1 U/ml heparyny, albo przez chromatografię na Sephadex G25 w takim samym buforze.
Następnie stosowano znane traktowanie w celu dezaktywacji wirusów z zastosowaniem rozpuszczalnika - środka powierzchniowo czynnego, w ciągu 6 godzin, w temperaturze 24°C. Proces ten jest opisany w europejskim zgłoszeniu patentowym nr 0 131 740.
b) Oczyszczanie chromatograficzne.
Wstępnie oczyszczony, dializowany supernatant przechodzi etap oczyszczania chromatograficznego. Stosowano kolumnę K26/30 (Pharmacia-Uppsala, Szwecja) o średnicy 2,6 cm i użytecznej wysokości 30 cm, z których 10 cm wypełniono żywicą DEAE-Fractogel-TSK (Merck).
Skład w kolumnie i próbka buforu rozpuszczającego są następujące: cytrynian sodu 10 mM, chlorek wapnia 1 mM, glicyna 9 g/l, lizyna 3 g/l. Do tego buforu dodano chlorek sodu doprowadzony do końcowego stężenia 0,11 i do pH 7.
Próbkę nanoszono na kolumnę z szybkością 100 ml/h. Kolumnę przemywano buforem podstawowym w celu usunięcia niezaadsorbowanych białek, którymi były fibrynogen, albumina, immunoglobuliny, antytrombina III i fibronektyna, jak również czynniki dezaktywujące wirusy.
Następnie desorbowano kompleks czynnika VIII z czynnikiem Willebranda przez podwyższenie siły jonowej buforu do 0,27 M chlorku sodu. Otrzymany w ten sposób roztwór czynnika VIII ma aktywność swoistą 5-10 IU/mg i skuteczność oczyszczania w stosunku do plazmy wprowadzonej na kolumnę pomiędzy 60 i 80%.
Stosunek bliski 1U/1U występuje zawsze dla stężenia tych dwóch czynników, czynnika VIII i czynnika Willebranda, przy czym ten drugi jest wyrażony w jednostkach współczynnika rystocetyny. Czystość tego roztworu czynnika VIII może być dalej nieco poprawiona przez dodatkowy etap rozdziału chromatograficznego, który umożliwia zatężenie produktu. Stosuje się na przykład drugą kolumnę DEAE-Fractogel, w takich samych warunkach obciążenia jak powyższe, a wstępne przemywanie prowadzi się 0,13 M NaCl, które usuwa resztkowe białka zanieczyszczające. Siłę jonową buforu podwyższa się następnie tylko raz do 0,27 M chlorku sodu w celu zdesorbowania i wyeluowania wysoce oczyszczonego i zatężonego kompleksu czynnika VIII z czynnikiem Willebranda.
Drugi etap natężania chromatograficznego może być zastąpiony przez ultrafiltrację.
Zgodnie ze zwykłym procesem wykonywania sposobu według wynalazku pierwszy etap oczyszczania chromatograficznego prowadzi się na żywicy DEAE-Fractogel. Jednak również bardzo dobre wyniki mogą być uzyskane przy zastosowaniu nowych żywic sprzedawanych przez firmę Merck, takich jak T-MAE-Fractogel lub T-MAE-Faractogel, które mają właściwości odpowiadające właściwościom DEAE-Fractogel. Można również zastosować żywice typu „tentacular rozwijane przez tę firmę a prezentowane przez W. Mullera i wsp. na Konferencji o chromatografii cieczowej w czerwcu 1989 r. w Sztokholmie.
Przykład II. Inny proces wykonywania sposobu według wynalazku również pozwala na otrzymanie koncentratów fibrynogenu i fibronektyny, dając jednak koncentrat czynnik VIII, czynnik von Willebranda z niższą wydajnością i o nieco poprawionej aktywności swoistej. Sposób jest taki sam jak w przykładzie I do chwili eluowania kompleksu czynnika VIII z czynnikiem von Willebranda z pierwszej kolumny z DEAE-Fractogelem.
Fibrynogen, antytrombina III, albumina i immunoglobuliny nie są zatrzymywane przez kolumnę i można je odzyskać w przesączu.
Kompleks czynnika VIII z czynnikiem von Willebranda można oczyszczać i zatężać w drugim etapie rozdziału chromatograficznego na kolumnie z DEAE-Fractogelem przez zastosowanie buforu o sile jonowej 0,17 M chlorku sodu, żeby nie osadzać resztkowych białek zanieczyszczających. Wzrost siły jonowej do 0,27 M chlorku sodu pozwala na desorbcję i eluowanie kompleksu czynnika VIII z czynnikiem von Willebranda. Otrzymuje się w ten sposób aktywność swoistą od 10 do 20 IU/mg.
164 754
Fibrynogen i fibronektynę można następnie oczyszczać i zatężać stosując znane procesy chromatograficzne, przy czym otrzymuje się roztwory o jakości wymaganej do zastosowania terapeutycznego, opisanych we francuskim zgłoszeniu patentowym nr 8 807 530.
Inne białka plazmy można oczyszczać i zatężać stosując znane procesy frakcjonowania.
Przykład III. Wydajność oczyszczania można poprawić jeszcze bardziej przez stabilizowanie początkowej plazmy począwszy od ogrzania jej do 25°C przez dodanie następującej mieszaniny: Heparyna: 1 U/ml; EDTA: 2mM albo 0,74 g/l; Chlorek wapnia: 6mM albo 0,67 g/l. Glikoza w stężeniu pomiędzy 5 i 60 g/l może być dodatkowo wprowadzona do tej mieszaniny.
Następnie przez dodanie kwasu octowego obniża się pH do 6,5.
Następnie przeprowadza się etapy oczyszczania takie jak w przykładzie I lub II. W tych warunkach całkowita wydajność procesu oczyszczania jest co najmniej równa 500 U czynnika VIII: C/litr plazmy początkowej. Odpowiada to całkowitemu odzyskowi 55 do 65% aktywności czynnika VIII dla aktywności swoistej pomiędzy 10 i 30 jednostek czynnika VIII: C/mg białka.
164 754
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 10 000 zł
Claims (15)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób wytwarzania koncentratu kompleksu czynnika krzepnięcia krwi VIII z czynnikiem Willebranda o wysokiej aktywności swoistej przez strącanie zanieczyszczonych białek środkami chemicznymi i chromatografię anionowymienną, znamienny tym, że pełną plazmę oczyszcza się wstępnie przez podwójne traktowanie chlorkiem baru i wodorotlenkiem glinowym, następnie odsala się przez ultrafiltrację roztworu wobec buforu podstawowego stosowanego w chromatografii opartego na cytrynianie sodowym i chlorku wapniowym z dodatkiem heparyny albo przez chromatografię na kolumnie Sephadex G50 eluowanej buforem podstawowym używanym w chromatografii z dodatkiem heparyny, a następnie supernatant plazmy z etapu wstępnego oczyszczania nanosi się na kolumnę chromatograficzną wypełnioną żelem żywicy anionowymiennej opartym na polimerze winylowym, do którego wprowadzono grupy funkcyjne dietyloaminoetylowe, trimetyloaminoetylowe lub dimetyloaminoetylowe i kompleks czynnika krzepnięcia krwi VIII z czynnikiem Willebranda desorbuje się z kolumny przez zwiększenie siły jonowej buforu do 0,27 M chlorku sodowego i ewentualnie oczyszcza się i zatęża białka zawarte w wycieku z kolumny chromatograficznej.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pełną plazmę stosuje się plazmę świeżą lub zamrożoną.
- 3. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że do plazmy dodaje się mieszaninę stabilizującą zawierającą 0,2 - 2 jednostek/ml heparyny, 1-5 mM kwasu dietylenotetraoctowego (EDTA) i 1 - 10 mM chlorku wapnia.
- 4. Sposób według zastrz. 3, znamienny tym, że stosuje się mieszaninę stabilizującą zawierającą ponadto glukozę w stężeniu 5-60 g/litr.
- 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że w procesie strącania chlorkiem baru dodaje się 1 M roztwór chlorku baru przy wartości pH równej 6,5, w trakcie mieszania, a powstałą mieszaninę wiruje się w temperaturze 5 - 10°C.
- 6. Sposób według zastrz. 1 albo 5, znamienny tym, że do adsorpcji na żelu wodorotlenku glinu stosuje się 3% żel, operację prowadzi się przy pH o wartości 6,5, po czym szybko schładza się mieszaninę do temperatury 5°C i wiruje się ją w temperaturze 5°C.
- 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako żel anionowymienny stosuje się żywicę będącą kopolimerem glikolu oligoetylenowego, metakrylanu glicydylu i dimetakrylanu pentaerytrytu.
- 8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że jako bufor podstawowy dla kolumny chromatograficznej stosuje się bufor oparty na cytrynianie sodowym i chlorku wapniowym, zawierający glicynę i lizynę, do którego dodaje się 0,11 M chlorku sodowego i doprowadza się jego pH do wartości 7.
- 9. Sposób według zastrz. 8, znamienny tym, że stosuje się bufor zawierający 8 - 10g/litr glicyny i 2 - 4 g/litr lizyny.
- 10. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że zwiększa się siłę jonową buforu do 0,13 M chlorku sodowego wymywając z kolumny chromatograficznej fibronektynę, a następnie do 0,27 M chlorku sodowego.
- 11. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że kompleks czynnika krzepnięcia krwi VIII z czynnikiem Willebranda desorbowany z kolumny chromatograficznej dodatkowo oczyszcza się i zatęża chromatograficznie.
- 12. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że dodatkową chromatografię prowadzi się na żywicy jonowymiennej, takiej jak żywica będąca kopolimerem glikolu oligoetylenowego, metakrylanu glicydylu i dimetakrylanu pentaerytrytu mająca grupy funkcyjne dietyloaminoetylowe albo trimetyloaminoetylowe, bądź taka żywica mająca grupy funkcyjne dimetyloaminoetylowe, immobilizowana żywica amino-heksylowa, immobilizowana heparyna, siarczan dekstranu, żywica sulfopropylowa, żywica do chromatografii powinowactwa albo żywica do chromatografii powinowactwa immunologicznego.164 754
- 13. Sposób według zastrz. 11 albo 12, znamienny tym, że etap dodatkowej chromatografii prowadzi się stosując bufor o stężeniu 0,11 M chlorku sodowego, po czym zwiększa się dwa razy siłę jonową buforu kolejno do 0,13 M i 0,27 M.
- 14. Sposób według zastrz. 11 albo 12, znamienny tym, że etap dodatkowej chromatografii prowadzi się stosując bufor o stężeniu 0,17 M chlorku sodowego, po czym zwiększa się raz siłę jonową tego buforu do 0,27 M.
- 15. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że przed którymkolwiek z etapów chromatograficznych prowadzi się inaktywację wirusów działając rozpuszczalnikiem-detergentem.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR8911567A FR2651437A1 (fr) | 1989-09-05 | 1989-09-05 | Procede de preparation de concentre du complexe facteur viii-facteur von willebrand de la coagulation sanguine a partir de plasma total. |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL286746A1 PL286746A1 (en) | 1991-05-06 |
| PL164754B1 true PL164754B1 (pl) | 1994-10-31 |
Family
ID=9385124
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL90286746A PL164754B1 (pl) | 1989-09-05 | 1990-09-05 | Sposób wytwarzania koncentratu kompleksu czynnika krzepniecia krwi VIII z czynnikiemWlllebranda PL PL PL PL PL |
Country Status (24)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5679776A (pl) |
| EP (1) | EP0416983B1 (pl) |
| AT (1) | ATE91896T1 (pl) |
| AU (1) | AU627618B2 (pl) |
| BR (1) | BR9004626A (pl) |
| CA (1) | CA2024667C (pl) |
| CZ (1) | CZ277939B6 (pl) |
| DD (1) | DD298110A5 (pl) |
| DE (1) | DE69002427T2 (pl) |
| DK (1) | DK0416983T3 (pl) |
| ES (1) | ES2057475T3 (pl) |
| FI (1) | FI95654C (pl) |
| FR (1) | FR2651437A1 (pl) |
| HR (1) | HRP920768B1 (pl) |
| HU (1) | HU206378B (pl) |
| LT (1) | LT3418B (pl) |
| LV (1) | LV10053B (pl) |
| NO (1) | NO178716C (pl) |
| PL (1) | PL164754B1 (pl) |
| RU (1) | RU2025129C1 (pl) |
| SI (1) | SI9012034B (pl) |
| SK (1) | SK431290A3 (pl) |
| UA (1) | UA26847C2 (pl) |
| YU (1) | YU48356B (pl) |
Families Citing this family (24)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE3904354A1 (de) * | 1989-02-14 | 1990-08-16 | Behringwerke Ag | Pasteurisiertes, gereinigtes von willebrand-faktor-konzentrat und verfahren zu seiner herstellung |
| ES2042138T3 (es) * | 1989-05-24 | 1993-12-01 | Miles Inc. | Filtracion en gel del factor viii tratado termicamente. |
| AT403991B (de) * | 1990-04-04 | 1998-07-27 | Atomic Austria Gmbh | Alpinschi |
| AT403992B (de) * | 1991-02-22 | 1998-07-27 | Head Sport Ag | Ski |
| DE4204694C3 (de) * | 1992-02-01 | 1995-10-12 | Octapharma Ag | Verfahren zur Gewinnung von hochreinem, virusinaktiviertem Faktor VIII mittels Anionenaustauscher-Chromatographie |
| IT1256622B (it) * | 1992-12-04 | 1995-12-12 | Sclavo Spa | Processo per l'estrazione del complesso fattore viii-fattore von willebrand (fviii:c-fvw) da plasma umano totale. |
| DE4430205A1 (de) * | 1994-08-26 | 1996-02-29 | Behringwerke Ag | Zusammensetzungen, die als Gegenmittel für Blut-Antikoagulanzien geeignet sind und deren Verwendung |
| DE4435485C1 (de) * | 1994-10-04 | 1996-03-21 | Immuno Ag | Verfahren zur Gewinnung von hochreinem von Willebrand-Faktor |
| AT403764B (de) | 1996-03-15 | 1998-05-25 | Immuno Ag | Stabiler faktor viii/vwf-komplex |
| AT403765B (de) | 1996-04-12 | 1998-05-25 | Immuno Ag | Verfahren zur herstellung einer präparation enthaltend einen hochgereinigten komplex |
| AT406373B (de) | 1997-02-27 | 2000-04-25 | Immuno Ag | Verfahren zur reinigung von faktor viii/vwf-komplex mittels kationenaustauscherchromatographie |
| KR20010031785A (ko) * | 1997-11-05 | 2001-04-16 | 가마꾸라 아끼오 | 헤파린 보조인자 ii 제제 및 그 제조 방법 |
| EP0937735B1 (en) * | 1998-02-11 | 2003-02-26 | ZLB Bioplasma AG | A method for the removal of causative agent(s) of transmissible spongiform encephalopathies from protein solutions |
| DK2130554T3 (da) | 1999-02-22 | 2012-12-03 | Univ Connecticut | Albuminfrie faktor VIII-præparater |
| DE19937218A1 (de) * | 1999-08-06 | 2001-02-08 | Aventis Behring Gmbh | Verfahren zur Reindarstellung der den Blutgerinnungsfaktor VII aktivierenden Protease, ihres Proenzyms oder eines Gemisches beider Proteine mittels Affinitätschromatographie |
| ES2229931B1 (es) * | 2003-10-03 | 2006-01-16 | Grifols, S.A. | Composicion liquida bilogicamente estable de fviii, de fvw o del complejo fviii/fvw humanos. |
| RU2253475C1 (ru) * | 2004-02-02 | 2005-06-10 | Общество с ограниченной ответственностью "Гемоцентр" | Способ получения препарата фактора viii |
| FR2874216B1 (fr) * | 2004-08-16 | 2006-11-03 | Lab Francais Du Fractionnement | Procede de preparation d'un concentre de facteur von willebrand (fvw) par voie chromatographique et concentre de fvw susceptible d'etre ainsi obtenu |
| ES2706296T3 (es) | 2008-11-07 | 2019-03-28 | Univ Connecticut | Formulaciones de Factor VIII |
| JP2015515482A (ja) | 2012-04-24 | 2015-05-28 | ノヴォ ノルディスク アー/エス | 血友病の治療に適する化合物 |
| ES2693380T3 (es) * | 2013-11-08 | 2018-12-11 | Csl Limited | Nuevo método para concentrar el factor de von Willebrand o complejos de este |
| US9663553B2 (en) | 2014-01-29 | 2017-05-30 | Hemarus Therapeutics Limited | Integrated process for the production of therapeutics (human albumin, immunoglobulins, clotting factor VIII and clotting factor IX) from human plasma |
| CN104231073B (zh) * | 2014-09-25 | 2017-01-25 | 广东双林生物制药有限公司 | 一种人凝血因子viii的制备方法 |
| CN105315365A (zh) * | 2015-11-17 | 2016-02-10 | 上海洲跃生物科技有限公司 | 一种人抗凝血酶iii的制备方法 |
Family Cites Families (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3803115A (en) * | 1972-05-17 | 1974-04-09 | Baxter Laboratories Inc | Stabilization of ahf using heparin |
| ES471858A1 (es) * | 1977-07-25 | 1979-02-01 | Monsanto Co | Un metodo para separar el factor especifico de coagulacion de la sangre de una mezcla con otras proteinas de la sangre en un medio fluido |
| US4386068A (en) * | 1980-02-26 | 1983-05-31 | Cutter Laboratories, Inc. | Antihemophilic factor concentrate and method for preparation |
| US4359463A (en) * | 1980-11-26 | 1982-11-16 | Rock Gail A | Stabilization of Factor VIII activity in whole blood or blood plasma |
| US4435318A (en) * | 1981-05-22 | 1984-03-06 | Ionics, Incorporated | Electrodialysis preparation of purified AHF concentrate |
| US4361509A (en) * | 1981-12-14 | 1982-11-30 | Scripps Clinic And Research Foundation | Ultrapurification of factor VIII using monoclonal antibodies |
| US4495175A (en) * | 1982-08-05 | 1985-01-22 | University Of Rochester | Preparation of highly purified human antihemophilic factor |
| US4543210A (en) * | 1984-10-04 | 1985-09-24 | Miles Laboratories, Inc. | Process for producing a high purity antihemophilic factor concentrate |
| US4952675A (en) * | 1985-02-01 | 1990-08-28 | New York University | Method for purifying antihemophilic factor |
| FR2632309B1 (fr) * | 1988-06-07 | 1990-08-24 | Lille Transfusion Sanguine | Procede de purification par voie chromatographique de proteines, notamment de facteur viii, et les produits obtenus |
-
1989
- 1989-09-05 FR FR8911567A patent/FR2651437A1/fr active Granted
-
1990
- 1990-08-30 AT AT90402395T patent/ATE91896T1/de not_active IP Right Cessation
- 1990-08-30 DE DE90402395T patent/DE69002427T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1990-08-30 EP EP90402395A patent/EP0416983B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 1990-08-30 ES ES90402395T patent/ES2057475T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1990-08-30 DK DK90402395.9T patent/DK0416983T3/da active
- 1990-09-04 RU SU904831275A patent/RU2025129C1/ru not_active IP Right Cessation
- 1990-09-04 UA UA4831275A patent/UA26847C2/uk unknown
- 1990-09-05 YU YU203490A patent/YU48356B/sh unknown
- 1990-09-05 FI FI904381A patent/FI95654C/fi active IP Right Grant
- 1990-09-05 CZ CS904312A patent/CZ277939B6/cs not_active IP Right Cessation
- 1990-09-05 SK SK4312-90A patent/SK431290A3/sk not_active IP Right Cessation
- 1990-09-05 SI SI9012034A patent/SI9012034B/sl unknown
- 1990-09-05 NO NO903865A patent/NO178716C/no not_active IP Right Cessation
- 1990-09-05 PL PL90286746A patent/PL164754B1/pl not_active IP Right Cessation
- 1990-09-05 CA CA002024667A patent/CA2024667C/en not_active Expired - Lifetime
- 1990-09-05 DD DD90343869A patent/DD298110A5/de unknown
- 1990-09-05 US US07/577,368 patent/US5679776A/en not_active Expired - Fee Related
- 1990-09-05 HU HU905797A patent/HU206378B/hu not_active IP Right Cessation
- 1990-09-06 AU AU62218/90A patent/AU627618B2/en not_active Ceased
- 1990-09-17 BR BR909004626A patent/BR9004626A/pt not_active Application Discontinuation
-
1992
- 1992-10-01 HR HRP-2034/90A patent/HRP920768B1/xx not_active IP Right Cessation
- 1992-12-24 LV LVP-92-496A patent/LV10053B/lv unknown
- 1992-12-29 LT LTIP263A patent/LT3418B/lt not_active IP Right Cessation
Also Published As
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| PL164754B1 (pl) | Sposób wytwarzania koncentratu kompleksu czynnika krzepniecia krwi VIII z czynnikiemWlllebranda PL PL PL PL PL | |
| EP0144957B1 (en) | Process for purifying factor viii:c | |
| US5457181A (en) | Preparation of a high-purity human factor IX concentrate and other plasmatic proteins and their therapeutic use | |
| JP3094167B2 (ja) | 免疫血清グロブリンの精製方法 | |
| KR970010923B1 (ko) | 혈장단백질의 크로마토그래피 분리법 | |
| EP0411810B1 (en) | Factor VIII complex purification using heparin affinity chromatography | |
| CA2282843C (en) | Purification of von willebrand factor by cation exchange chromatography | |
| PL168353B1 (pl) | Sposób wytwarzania zatezonego, standaryzowanego ludzkiego c z y n n i k a von Willebranda o wysokiej czystosci PL PL PL PL PL PL PL | |
| JPH05345799A (ja) | ビタミンK依存性因子並びに因子VIIIC及びVIIICAgを実質的に含まない高純度で且つ活性化された因子VIIの濃縮物の製造方法 | |
| JP4250771B2 (ja) | カチオン交換クロマトグラフィーによる因子VIII/vWF複合体の精製方法 | |
| KR20130112031A (ko) | 피브리노겐의 생산 방법 | |
| EP0617049B1 (en) | Process for the isolation of highly purified factors IX, X and II from prothrombin complex or human plasma | |
| JPH04234400A (ja) | 抗血友病因子(第VIIIc因子)をほとんど含まない高純度のフォン・ヴィレブラント因子を生成する方法 | |
| JPH053480B2 (pl) | ||
| CN106928344A (zh) | 用于从含有凝血因子的溶液中减少和/或除去FXI和FXIa的方法 | |
| US5445958A (en) | Process for purifying blood clotting factors | |
| US5760183A (en) | Process for the manufacture of very high-purity antithaemophilic factor (FVIIIC), and von Willebrand factor, and pharmaceutical compositions containing same | |
| EP2155784A1 (en) | Chromatography process for obtaining a fviii/vwf complex with different ratios between the two proteins, for use in haemophilia a treatment and in von willebrand disease | |
| EP0229026A2 (en) | Therapeutic blood product, means and methods of preparing same | |
| JP2931655B2 (ja) | 全血漿から血液疑固▲viii▼因子―フオン・ビルブラント因子複合体濃縮物の製造方法 | |
| KR0168415B1 (ko) | 전체혈장으로 혈액응고 viii 인자-반 빌레브란트 인자 복합 농축물을 제조하는 방법 | |
| de Lille | Burnouf-Radosevich et a |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20090905 |