NO302204B1 - Diagnostisk sett for påvisning av nukleinsyresekvenser fra Chlamydia trachomatis - Google Patents

Diagnostisk sett for påvisning av nukleinsyresekvenser fra Chlamydia trachomatis Download PDF

Info

Publication number
NO302204B1
NO302204B1 NO904240A NO904240A NO302204B1 NO 302204 B1 NO302204 B1 NO 302204B1 NO 904240 A NO904240 A NO 904240A NO 904240 A NO904240 A NO 904240A NO 302204 B1 NO302204 B1 NO 302204B1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
primers
diagnostic kit
dna
bind
hybridization
Prior art date
Application number
NO904240A
Other languages
English (en)
Other versions
NO904240L (no
NO904240D0 (no
Inventor
Mathew Longiaru
Sheryl Beth Silver
Michael Anthony Sulzinski
Original Assignee
Hoffmann La Roche
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hoffmann La Roche filed Critical Hoffmann La Roche
Publication of NO904240D0 publication Critical patent/NO904240D0/no
Publication of NO904240L publication Critical patent/NO904240L/no
Publication of NO302204B1 publication Critical patent/NO302204B1/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813Hybridisation assays
    • C12Q1/6816Hybridisation assays characterised by the detection means
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813Hybridisation assays
    • C12Q1/6832Enhancement of hybridisation reaction
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/689Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for bacteria

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Dental Preparations (AREA)
  • Transplanting Machines (AREA)

Description

Foreliggende oppfinnelse angår diagnose av infeksjon med Chlamydia tranchoraatis ved påvisning av tilstedeværelse av spesielle DNA-sekvenser som karakteriserer mikroorganismen som forårsaker sykdommen.
Oppfinnelsen angår fremskaffelsen av et diagnostisk sett for DNA-sekvenspåvisning, som omfatter fast polys tyren støttemateriale og fortrinnsvis et sett av PCR-reagenser, innbefattende spesifikke primere og prober som angitt i krav 1.
US patenter nr. 4.683.195 og 4.683.202 omtaler fremgangsmåter for å amplifisere DNA-sekvenser ved en fremgangsmåte som nå er kjent i faget somn "polymerase chain reaction"
(PCR) . PCR er en fremgangsmåte hvor DNA spesifikt amplifiseres ved mangfoldig primer-forlengelses-synteser av komplementære kjeder (Saiki et al., Science, 230: 1350-1354 og 239; 487-491; 1985, 1988) . PCR-produktet, amplifisert opp til IO<6>- IO<7>ganger, er et DNA-fragment av spesiell størrelse (amplikon) som kan påvises ved gelelektroforese eller på annen måte som beskrevet heri. Kort fortalt innebærer PCR fremstilling av korte oligonukleotidprimere som tilsvarer motsatte ender av en kjent "mål"-sekvens som man ønsker å amplifisere og deretter påvise. Ved denne feremgangsmåte ekstraheres DNA eller RNA fra celler, vev, kroppsvæsker og lignende. Nukleinsyren denatureres, og oligonukleotidprimerene tilsettes i molart overskudd, sammen med dNTPs (deoksyribonukleotid-trifosfater) og et DNA-polymeraseenzym, såsom fortrinnsvis varmestabil Ta<q->polymerase. Etter påfølgende varmedenaturering, kjøling for å oppnå sammenkobling til primere og primerforlengelse ved DNA-polymerase produseres to "lange produkter", som begyn-ner med de respektive primere, komplementært til de to opprinnelige kjeder. Denne fremgangsmnåte gjentas, og etter en andre cyklus produseres to opprinnelige kjeder, to lange produkter fra cyklus 1, to nye "lange produkter" og
to "korte produkter". Lengden på disse korte produkter (amplikoner) er lik antallet nukleotider mellom og inklusive begge primere. Med ytterligere cykluser produseres ytterligere "lange produkter", og de øker lineært med hver cyklus. Dannelsen av ampliconer øker immidlertid med eksponensiell hastighet for hver cyklus, og ved hjelp av denne amplifisering er det mulig å påvise ytterst små mengder av DNA.
Ved hjelp av PCR-teknikk er det mulig å påvise spesifikke DNA-sekvenser som forefinnes i minimale mengder. Flere av disse teknikker innebærer bruk av forskjellige hybridiserte prober som er bundet til visse materialer.
Cook et al., Nucleic Acids Research, 16.: 4077-4095 (1988), immobiliserte bakteriofag M13-mål-DNA i mikrotiterbrønner på Immulonc-2-plater ved å inkubere mål-DNA i 1 M ammoniumacetat i 1,5-2 timer ved 37°C. Det immobiliserte mål-DNA ble påvist etter hybridisering til terminal-biotin-merkede eller internal-biotin-merkede oligonukleotidprober, etterfulgt av tilsetning av streptavidin-HRP-kompleks og hydrogen-peroksyd/o-fenylendiamin (OPD) for kolorimetrisk påvisning av hydbridisering.
Nagata et al., FEBS Lett., 183: 370-382 (1985) immobiliserte lambda-mål-DNA i mikrotiterbrønner i PBS inneholdende 00,1 M MgCl2. Etter inkubering over natten ved værelsestemperatur, etterfulgt av fjerning av løsningen, ble platen bestrålt med ultraviolett lys. Hybridisering med en biotinylert (hakk-translatert) lambda DNA-probe ble etter- fulgt av kompleksdannelse med avidin-beta-galaktosidase. Fluores-censen ble målt etter tilsetning av substratet, 4-metylumb-elliferyl-beta-D-galaktosid.
Hevey et al., U.S. patent No. 4.228.237 beskriver en fremgangsmåte som anvender biotin som reagerer til avidin (kovalent bundet til et enzym) for å påvise en ligand i flytende medium. Foreliggende fremgangsmåte adskiller seg ved det at liganden er direkte merket med biotin, ikke mellomliggende biotinmerket anti-ligande. Videre beskriver forskjellige andre tidligere publikasjoner spesifikke hybridiseringsprober og diagnostisk anvendelse derav; f.eks. U.S. pat. nr. 4.358.535 (Falkow et al.) og europeisk patentsøknad nr. 82301804.9 (publikasjon nr. 63.879; Yale University). Sistnevnte beskriver bruk av biotinmerkede DNA-prober påvist ved enzymer som er bundet til avidin-eller biotinspesifikke antistoffer.
Ranki et al., US patent nr. 4.486.539, beskriver anvendelse av to ikke overlappende nukleinsyrereagenser (en bundet til et fast bærerstoff og den andre merket) for å påvise og identifisere mikrober ved DNA-hybridisering. Foreliggende oppfinnelse adskiller seg ved at målnukleinsyren i seg selv er merket og krever ikke anvendelse av en ytterligere merket nukleinsyreprobe for påvisning.
Stabinsky, US patent nr. 4.751.177, beskriver en DNA-påvisningsmetode hvor mål-DNAet hybridiseres til et mediator-polunukleotid og til et merket probe-polynukleotid. Mediator-polynukleotidet er i sin tur komplementært. til et polynukleotid som er immoibilisert på et fast bærermate-riale. Foreliggende oppfinnnelse adskiller seg ved at (a) mål-DNAet merkes under amplifikasjonen; ingen merket reportergruppe er nødvendig for påvisning, og (b) innfangningsproben er bundet direkte til et fast bærermater-iale uten bruk av et mediator-polynukleotid.
Guanidin tiocyanat (GuSCN) er blitt brukt i celleekstrak-sjon og påfølgende nukleinsyrehybridisering. For eksempel frem- stilte Thomson and Gillespie, Anal. Biochem. 163: 281-191 (1987) isotopmerkede RNA-prober for å påvise mål-DNA eller -RNA. I "dot-blot<n->format ble den<32>P-merkede probe hybridisert i 5 M GuSCN/0,1 M etylendiamintetraeddik-syre (EDTA) , dinatriumsalt, pH 8,0. Pellegrino et al.,
BioTechniques, 5: 452-459 (1987), beskrev en hybridisering
i oppløsning for å påvise HIV-RNA i blodceller. Blodceller ble oppløst i 5 M GuSCN/0,1 M EDTA og hybridisert med en isotopmerket RNA-probe i samme løsning ved værelsestemperatur. TCA-felte hybrider ble oppsamlet på membraner, og radioaktiviteten ble bestemt ved seintillasjontelling. Gillespie, International Patent Application nr. PCT/US87/- 01023 (International Publication nr. WO 87/06621) beskrev anvendelse av guanidin-tiocyanat for molekylærhybridisering ved hjelp av en merket probe for å påvise mål-DNA bundet til et fast bærerstoff. Patentet beskriver anvendelse av GuSCN for molekylær hybridisering over et konsentrasjons-område på 3 M - 6,5 M ved være Ises temperatur. Formatet for slik hybridisering omfatter å binde målnukleinsyrer til nitro-cellulose eller en nylonmembran ("dot-blot" eller "Southern blot"), prehybridisering, hybridisering til en isotopmerket probe i GuSCN, vasking og påvisning ved autoradiografi.
Kort beskrivelse av tegningene
Figur 1 viser fremstiling av en kjemisk forbindelsesarm som ble modifisert for å muliggjøre biotinylering av oligonukleotid-PCR-primere. Figur 2 viser resultatene av et autoradiogram av PCR-produkter bundet til en Nytran^,-membran. Figur 3 viser resultatene av oligonukleotidhybridiserings-(OH)-assay med PCR-produkter fra eksempel 6.
Detaljert beskrivelse av oppfinnelsen
Uttrykkene "oligonukleotid" og "primer" som er brukt heri, har den betydning som er definert i det tidligere nevnte US patent nr. 4.683.202. Uttrykket "innfangningsprobe" som er brukt heri, kan defineres som et oligonukleotid som er ufullstendig eller i alt vesentlig komplementær til sekven-sen av amplikonet innen grensene for primerene. I forelig gende foretrukne utførelsesform har innfangningsproben ikke endeelement, men kan utstyres med endeelement med deoksy-ribonukleotider eller ribonukleotider.
Ved utførelse av foreliggende oppfinnelse velges primerne og proben slik et de er "substansielt" komplementære til de forskjellig kjeder av målsekvensen som skal amplifiseres.
For en av de spesielle utf ørelsesf ormer som er beskrevet her, ble det valgt to sett av PCR-primere og innfangningsprober fra nukleotidsekvensen av den kryptiske plasmid av Chlamydia trachomatis LI serovar (Hatt et al., Nucleic Acids Research, 16: 4053-4067, 1988. Dette muliggjorde den spesifikke amplifisering og påvisning av C. tracomatis.
Det amplifikerbare materiale som i tidligere nevnte US patent nr. 4.683.202, tilsettes deoksyribonukleotid-trifos-fåtene dATP, dCTP, dGTP og TTP til synteseblandingen i passende mengder, og den resulterende løsning oppvarmes til ca. 90-100°C i ca. 0,5 - 10 minutter for å adskille temp-latkjeder. Etter denne oppvarmingsperiode avkjøles løsnin-gen raskt til den tempe- råtur som er foretrukket for sammenkobling av templatprimeren. Til denne løsning tilsettes et egnet middel for å indusere eller katalysere primer-f orlengelsesreaksjonen, og reaksjonen kan foregå under betingelser som er kjent i faget. Induksjonsmidlet kan være enhver forbindelse eller system som kan fungere for å oppnå syntese av primerforlengelsesproduktet, inklusive enzymer. Passende enzymer for dette formål omfatter f.eks. Esche-richia coli (E. coli) DNA-polymerase I, Klenow-fragment av E. coli DNA-polymer-aser, reverstranskriptase, og andre enzymer, inklusive fortrinnsvis varmestabile enzymer (f.eks, Taq DNA-polymerase) som vil underlette innlemmelse av nukleotidene på egnet måte for å danne primer-f or len - gelsesproduktene som er komplementære til enhver nukle-insyrekj ede.
Den nylig syntetiserte kjede og dens komplementære nuklein-syrekjede danner et dobbeltkjedet molekyl, hvis kjeder skilles ved enhver denaturert prosess som gir enkeltkjedede molekyler, fortrinnsvis varme.
Nye nukleinsyrer syntetiseres på de enkeltkjedede templat-molekyler. Ytterligere enzym, nukleotider og primere kan tilsettes hvis nødvendig for å få reaksjonen til å gå under de betingelser som er beskrevet ovenfor. Igjen vil syntesen begynne ved én ende av oligonukleotid-primeme og vil fortsette langs de enkelte kjeder av templatet for å fremkalle ytterligere komplmentære nukleinsyrer ved primerforlengelse.
Trinnene for kjedeseparering og forlengelsesproduktsyntese kan gjentas så ofte som nødvendig for å fremstille den ønskede mengde av den amplifiserte nukleinsyresekvens.
Fast støttemateriale av<p>olystyren
Oppfangningsplaten eller bæreren som anvendes i foreliggende oppfinnelse, kan være et fast støttemateriale av polystyren. Forskjellige behandlinger av slikt støttemate-riale for å oppnå slik forsterkning er kjent i faget (f.eks. bestråling med<60>Co).
Støt trematerialet for polystyren som anvendes i foreliggende oppfinnelse vil være en mikrotiter-plate med et stort antall brønner, og de mest foretrukne av slike mikrotiterplater er de som er kjent som "Dynatech Immulonc2" (Dynatech Laboratories, Inc., Chantilly, VA, produsert av Fisher Scientific).
Generelle hybridiserin<g>steknikker
I en foretrukket utførelsesform ifølge foreliggende oppfinnelse bindes en amplikon-spesifikk oligonukleotid-oppfang-ningsprobe passivt til brønner på en Immulon^, 2 polystyren-mikrotiterplate med en konsentrasjon på 25 ng DNA/brønn, i en løsning av IM ammoniumacetat. Slike mikrotiterplater har
en stort antall brønner og gir således både høy overflate og muliggjør et stort antall av samtidige assays, f.eks. 96) .
Hybridiseringstrinnet ifølge foreliggende oppfinnelse, nærmere bestemt "innfangningshybridiseringen", oppnås fortrinnsvis i nærvær av 1 M guanidin-tiocyanat, 20 mM etylen-diamintetraeddiksyre (EDTA)-dinatriumsalt, pH 8,0. Konsentrasjonsområdet for å oppnå innfangningshybridisering på miktrotiterplate er fortrinnsvis 0,5 til 2,0 molar GuSCN og mest foretrukket 1,0 til 2,0 M.
Andre reagenser kan også anvendes for å oppnå innf angnings-hybridisering. For eksempel kan en løsning av ammonium-tiocyanat (0,5 til 5,0 M, mest foretrukket 5,0 M) anvendes i stedet for guanidin-tiocyanat.
Andre mulige erstatninger for guanidin-tiocyanat er et reagens som består av: 30% (v/v) deionisert formamid;
3 x SSPE [1 x SSPE= 0,18 M NaCl; 10 mM NaP04, pH 7,7; 1 mM
EDTA]; 5% (w/v) dekstransulfat; 0,1% Triton X-100 (oktyl-fenoksypolyetoksyetanol; Sigma Chemical Co., .St. Louis,
MO) .
Formatet for slik hybridisering omfatter følgende trinn:
1.Fremstilling av innfangningsproben
2. Fremstilling av mikrotiterinnfangningsplater
3. Fortynning og denaturering av amplifisert, merket DNA
4. Innfangningshybridisering
5. Vasking
6. Blokkering
7. Tilsetning av avidin:pepperrot-peroksidase
8. Vasking
9. Tilsetning av substrat og kromogen; farvefremkalling
10. Plateavlesning (kvantifisering)
Disse trinn skal nå beskrives i detalj.
1. Fremstilling av innfancmingsprobe
Innfangningsprobene heri velges slik at de er "substansielt" komplementære til sekvenser at amplikonet innenfor grensene for primerne. Derfor må innf angningsprobene være tilstrekkelig kompleentære for spesifikt å hybridisere til amplikonet under innfangningshybridiserings-betingelsene. I den utførelsesform som for tiden er foretrukket, inneholder innfangningsproben vanligvis 20-200 nukleotider.
Videre kan mer enn en innf angningsprobe anvendes, og ytterligere innfangningsprober kan anvendes for å innfange den samme eller motstatte kjede av det merkede amplikon.
Foreliggende innf angningprober og PCR-primere er blitt syntetisert i en-MilliGen 7500 DNA Synthesizer (MilliGen/- Biosearch, Inc. Burlington, MA) ved hjelp av normal beta-cyanoetylfosforamaditt-kjemi, skjønt andre fremgangsmåter som er kjent av fagmannen er mulige. Før anvendelse ble oppfangningsprobene og PCR-primerne delvis renset, enten ved elektroforese gjennom 15% (w/v) polyakrylamidgeler eller ved rotasjonskolonne (se eksempel 3). De sluttelige delvis rensede innf angningsprober og primere ble suspendert i vann, konsentrasjonen ble bestemt spektrofotometrisk, og løsningen ble lagret ved 4°C inntil bruk.
2. Fremtilling av oppsamligsplaten
Oleonukleotidoppsamlingsproben festes fortrinnsvis til brønnen på en Dynatech Immulon£ 2 - mikrotiterplate (Dynatech Laboratories, Inc., Chatilly, VA, produsert av Fusher Scientific) . Immulon<L2 - platen er en anordning med 96 miniatyr-polystyrenprøverør (brønner) i en eneste plastpla-te, fremstilt for generell bruk i fastfase-immunoassay fremgangsmåter for mikrovolum. I den foretrukne utførelse- sform ifølge foreliggende oppfinnelse anvendes plater med flate brønnbunner (400/il volumkapasitet) , men det antas at U-formede brønnbunner også kan anvendes (300 fil volumkapasitet) .
Som en annen foretrukken utførelsesform kan proben også festes til Immulon^2 Removawelld- strimler (/Dynatech), som er fjernbare strimler på tolv Immunolon^polystyren-prøverør (brønner) som er anpasset til Removawellc-strim-melholderne (Dynatech) i et mikrotiterplateformat.
Oligonukleotid-innfangningsproben fortynnes slik at den gir 25 ng pr. mikrotiterbrønn i 50/il M ammoniumacetat (Fisher
Scientific, Fair Lawn, NJ) . "Blinde brønner" fremstilles også ved å tilsette 1 M ammoniumacetat (Uten oligonukleotid- innf angningsprobe) til visse brønner (til hvilke merkede PCR-produkter vil bli tilsatt senere for narre-hybridisering). Disse blinde brønner er indikasjon på ikke-spesifikk binding av biotinylert DNA til brønner i mikrotiterplater og anvendes for å kalibrere avlesningsinstrumen-tet for platene
(spektrofotometer) (se nedenunder, trinn 10) .
Platen forsegles med mylarplatef orsegler (Dynatech) og inkuberes ved 37°C over natten for passiv fiksering av oligonukleotidinnfangningsproben til polystyrenoverflaten. Hvis platene ikke anvendes med en gang, lagres de ved 4°C inntil bruk. Plater som var lagret på denne måte i opptil 6 uker, viste ingen signifikant forskjell når det gjaldt deres evne til å innfange DNA.
Like før hybridiseringen vaskes brønnene i platene to ganger med 200 fil 2 x SSC [1 x SSC= 0,15 M NaCl; 15 mM natriumcitratbuf f er, pH 7,0] og en gang med 200/il 2 x SSC, 0,1%
(v/v) Triton X-100. All platevask som er beskrevet her, gjøres med en pipetteanordning med mange kanaler (f.eks.
Titertekc.) , eller kan gjøres med en egnet automatisk mikrotiterplate-vasker.
3. Fortynning og denaturerintg av amplifisert, merket DNA
De biotinylerte PCR-produkter fortynnes (i området fra 1:10 til 1:100 eller mer) i 1 M GuSCN (Ultra-pure grade; Boehri-nger Mannheim Biochemicals, Indianapolis, IN), 20 mM EDTA (Sigma), pH 8,0 (fremstilt fra en 5 x sterkere stamlø-sning), oppvarmes ved 100°C i 5 min og avkjøles raskt i et isvannbad. (Oppvarmingstrinnet medfører varmedenaturering av PCR-produktene, og den raske avkjøling hemmer sammenkobling på nytt av ampiikonkjedene, og begunstiger hybridiser-eing til oligonukleotid-innfangningsproben).
Alikvoter på 100/il overføres til hver brønn, inklusive brønnene som er bestemt som blindprøver (ingen innfangningsprobe) som beskrevet ovenfor (trinn 2).
4. Innfangningshybridisering
Spesifikk innfangning av amplifisert, merket DNA ved en oligonukkleotidinnfangningsprobe oppnås ved inkubering ved værelsestemperatur i 1-3 timer. I løpet av - denne tid innfanges PCR-amplikoner spesifikt av oligonukleotidinnfangningsproben, basert på sekvenskomplementaritet mellom innfangningsproben og merket ampiikon.
5. Platevasking
Etter hybridiseringen fjernes innholdet i alle mikrotiter-brønner, og brønnene vaskes to ganger med 200/il 2 x SSC. 0,1% (v/v) Triton X-100; og fire ganger med 200/il 0,2 x SSC, 0,1% (v/v) Triton X-100, som tidligere er blitt oppvarmet til 37°C. Disse vaskinger utføres for å fjerne ubundne biotinylerte produkter fra mikrotiterbrønnene.
6. Blokkering
Etter platevaskingen "blokkeres" brønnene i platen i minst
15-30 minutter med 200 pil av en løsning av PBS, (PBS= 0,13 M NaCL, 7 mM Na2HP04, 3 mM NaH2P04, pH 7,0), 2% (w/v)
serumalbumin fra okse (BSA) (Sigma), 0,1% (v/v) Triton X-100. Dette "blokkerings"-trinn er nødvendig for å minimali-sere ikke-spesifikk binding av avidin:HRP til mikrotiter-brønnene.
7. Avidin:pepperrotperoksidase
Avidin:pepperrotperoksidase (HRP)-kompleks (Vector Laboratories, Inc., Burlingame, CA) fortynnes 1:2000 i PBS, 0,1%
(v/v) Triton X-100 til en sluttkonsentrasjon på 2,5 fig avidin: HRP/ml. 50 mikroliter fortynnet avidin:HRP tilsettes til hver brønn og inkuberes i 30 minutter ved værelses temperatur. I løpet av dette trinn bindes avidin :HRP-kompolek-set tett til innf angede biotinylerte porodukter i brønnen. Mens avidin:HRP anvendes i foreliggende oppfinnelse, kan et kompleks av streptavidin:HRP anvendes i stedet. Likeledes kan andre forbindelser i kompleksform med avidin (eller
streptavidin) anvendes, inklusive: alkalisk fosfatase, . beta-galaktosidase, luciferase, fluorscein, Texas Red eller et annet middel som er i stand til å fremkalle et kolorimetrisk, fluoriserende eller luminiserende signal.
8. Vasking
Brønnene i mikrotiterplaten vaskes deretter fire ganger med 200/il PBS, 0,1% Triton X-100, og en gang med 100/il PBS, 1 mM EDTA og inkuberes med den siste vaskeløsning ved værelsestemperatur i 1-10 minutter. Disse vaskinger utføres for å fjerne ubundet avidin:HRP fra mikrotiterbrønnene før tilsetning av kromogen.
9. Farvefremkalling
" Farvefremkalling, i den foretrukne utførelsesform ifølge foreliggende oppfinnelse, utføres med ett av de to kromo-gene systemer: (a) hydrogenperoksyd/OPD og (b) hydrogenperoksyd/TMB.
( a) Hvdrogenperoksvd/ OPD. Etter at vaskebufferen (beskrevet i trinn 8) er blitt fjernet, tilsettes 150 fil OPD-reagens [1,6 mg/ml o-fenylen-diamin-dinatriumsalt (Sigma), 0,0125% (v/v) hydrogenperoksyd (Fisher Scientific) i 0,15 M natriumfosfat/citrat-buffer, pH 6,0], og farvefremkallingen får fortsette i mørke i 1-30 minutter. Farvefremkallingen stoppes ved tilsetning av 50/ti 4 N H2S04.
( b) Hydrogen- peroksvd/ TMB. Etter at siste vaskebuffer (beskrevet i trinn 8) er blitt fjernet, tilsettes 100 fil TMB farvereagens til hver brønn. [TMB-farvereagens består av friskt blandende like volumer TMB-peroksydasesubstrat
(3,3', 5,5'-tetrametylbenzidin i en konsentrasjon på 0,4 g/l i en organisk base; i handelen fra Kirkegaard and Perry, Inc., Gaithersburg, MD) og hydrogenperoksydløsning [0,02% (v/v) hydrogenperoksyd i sitronacetatbuffer, i handelen fra Kirkegaard og Perry, Inc.]. Reaksjonen får pågå ved værelsestemperatur i mørke i 1-30 minutter, hvoretter farvefremkallingen stoppes ved tilsetning av 100 fil IM fosforsyre (H3P04) .
TMB-substratet fremkaller en feining med blå farve. Ved tilsetning av fosforsyre fremkommer en farveforandring til gult, med en optisk tetthet som måles ved 450 nm (see nedenfor, trinn 10). I tillegg til HRP-substrater, OPD og TMB, omfatter andre løselige substrater: 2,2-azino-di (3-etylbenztiazolin-sulfonsyre) (ABTS) og 5-aminosalisylsyre (ASA) . Uløseige substrater omfatter 3-amino-9-etylkarbazol (AEC) og 3,3-diaminobenziden (DAB) .
10. Plateavlesning ( kvantifisering)
Etter at farvefremkallingen er stoppet, bestemmes den "^ optiske tetthet (OD) i prøvene i hver brønn ved avlesingen i en automatisk mikrotiterplate-avleser som er i stand til spektrofotometrisk bestemmelse (f.eks. InterMed Immuno-readeri, NJ-2000) ved bølgelengder som er spesifikke for den anvendte kromogen (se nedenfor).
Den optiske tetthet i de blinde brønner [biotynilerte PCR-produkter tilsatt til brønnen uten innfangningsprobe, som beskrevet i trinn 2] bestemmes også. Dette signal (vanligvis meget lavt) er en indikasjon på falsk "ikke-spesifikk" binding av biotynilerte produkter til prøve-brønnene, og ikke signaler som er resultat av ekte innfangning av biotynilerte amplikoner ved hybridisering med en innfangningsprobe. Derfor subtraheres den optiske tetthet av de blinde brønner fra den optiske tetthet av prøvebrønnene for å gi en nøyaktig kvantifisering av ekte innf angningshybrid-isering.
Den egnede bølgelengdeinnstilling for spektrofotometeret (plateavleser) er avhengig av det spesifikke kromogen som anvendes for den kolorimetriske reaksjon. Hvis man anvender hydrogenperoksyd/OPD, er den korrekte bølgelengdeinnstil-ling således 490 nm; hvis man anvender hydrogenperoksyd/TMB er den korrekte bølgelengdeinnstilling 450 nm.
De følgende eksempler beskrives for å illustrere oppfinnelsen.
Eksempel 1
Syntese av biotin- ll- dUTP
Biotin-ll-dUTP ble kjemisk syntetisert ved fremgangsmåten beskrevet av Langer et al., Proe. Nati. Acad. Sei. (USA), 78:6633-6637 (1981) og ble suspendert i en konsentrasjon av 0,4 mM i 100 mM Tris-HCl, pH 7,5, 0,4 mM EDTA. Forholdet biotin-ll-dUTP:TTP ble optimalisert, og det høyeste signal ble oppnådd med et forhold på 4:1 (biotin-ll-dUTP:TTP).
Eksempel 2
Fremstilling av 5'- biotinylerte primere
Alle oligonukleotider som ble anvendt som PCR-primere ble syntetisert i en MilliGen 7500 automatisert DNA-syntetis-erer ved normal beta-cyanoetyl-fosforamaditt-kjemi, med fremgangsmåter som er kjent i faget.
01 igonukleot idene som ble fremstilt for anvendelse som biotinylerte primere, ble modifisert som vist i fig. 1. De syntetiske oligonukleotider på fast støttemateriale ble derivatisert ved 5'-enden ved omsetning med det beskyttede heksylaminofosforamaditt [struktur 1] , etterfulgt av oksydasjon og deblokkering i henhold til standard fremgangsmåter (McBride and Caruthers, Tetrahedron Letters, 24: 245-248, 1983) for å gi 5'-amino-merkede oligomerer [struktur 2] . Reaksjonen aw [2] med N-hydroksysuccinimidylestere av biotinderivater ga 5'-biotinylerte oligonukleotider [struktur 3] med godt utbytte, som ble renset ved polyakry-lamidgelelektroforese. (Se nedenfor, eksempel 3-) .
Eksempel 3
Rensing av oligonukleotider
01 igonuklotidene som ble anvendt som PCR-primere eller innfangingsprober ble renset på en av to måter: (a) polyakrylamid-gelelektroforese eller (b) rotasjonskolonne.
( a) Polyakrylamid- gelelektroforese. Alikvoter på 100-250 pig av hvert oligonukleotid ble tørket i vakuum, suspendert på nytt i et lite volum gelladningsbuf f er [TBE (89 mM Tris-borat, 89 mM borsyre, 2 mM EDTA) ; 90% (v/v) deionisert formamid; 0,02% (/w/v) bromfenol-blått] , oppvarmet ved 100°C i 5 min og raskt avkjølt i et isvannbad. Prøvene ble
overført til et denaturerende polyakrylamidgel [25% (w/v)
akrylamid (akrylamid: bis-akrylamid, 29:1) (IBI, New Haven, CT) , 7 M urea (IBI) i TBE] og elektroforesert ved 650 Volt i fire timer. DNA'et ble gjort synlig ved UV-belysning over en tynnsjiktskromatografi-plate (Eastman Kodak #13254 cellulose), fotografert og gelbåndet med oligonukleotidet i full lengde ble fjernet. Geldelen ble knust, og DNA'et ble eluert i vann over natten ved 37°C. DNA'et ble ytterligere renset ved å la det passere over en C18Sep-Pak^-patron (Waters Associates, Milford, MA), og eluert i 40%
(v/v) acetonitril (Fisher). Etter inndampning til tørrhet i vakuum ble DNA'et suspendert i vann, og dets konsentrasjon ble bestemt spektrofotometrisk. Stamkonsentrasjoner ble innstilt med vann og lagret ved 4°C inntil bruk.
( b) Rotasionskolonne. Noen oligonukleotid-innfangningsprober og primere ble delvis renset med Bio-Spin™ 6-kolonne (Bio-Rad, Inc., Richmond, CA) i en svingende skovlrotor ved lav sentrifugalkraft, ifølge produsentens instruksjoner for rotasjonskolonnen. Etter delvis rensing ble konsentrasjonen av oligonukleotidene bestemt spektrofotometrisk, og stam- løsninger ble fremstilt med vann og lagret ved 4°C inntil bruk.
Eksempel 4
PCR- betingelser
De fleste primerpar ble undersøkt empirisk for å bestemme deres optimale temperaturbetingelser for PCR-amplifisering, spesielt med hensyn til tilkoblingstemperaturen.
Med aktuelle primerpar for Chlamydia trachomatis besto en hundre/il PCR-reaksjonsblanding av: lx reaksjonsbuf fer (RB) [10 x RB= 500 mM KC1; 100 mM Tris-HCl, pH 8,5; 25 mM MgCl2] ; 200 /iM av hver av dATP, dCTP, dGTP og TTP; 50 pmol hver av SK43 og SK44 og 2 enheter rekombinant Taq-DNA-polymerase (RecombiTaq,;, Cetus Perkin Eimer, Norwalk, CT) .
For eksperimenter hvor biotin-ll-dUTP var innlemmet, var
reaksjonsblandingene som ovenfor unntatt at 200 jzM TTP var erstattet med 160 M biotin-ll-dUTP, 40fiM TTP.
For det aktuelle primersett begynte PCR-temperatursysternet med en innledende utstrakt denaturer ing ved 94 °C i 5 minutter, etterfulgt av et tilkoblingstrinn ved 50°C i 25 sekunder, og et forlengelsestrinn ved 72°C i 1 minutt. For de neste 28 cykler besto temperatursysternet av: Denaturering ved 94°C i 25 sek, tilkobling ved 50°C i 25 sek og forlengelse ved 72°C i 1 min. Den avsluttende (trettiende) cyklus var: Denaturering ved 94°C i 25 sek, tilkobling ved 50°C i 25 sek og en øket forlengelse ved 72°C i 10 min. Etter PCR-amplifisering ble 90/xl av reaksjonsblandingen fjernet fra under mineraloljen og lagret ved 4°C til analysen av PCR-produktene fant sted.
Eksempel 5
Fremstilling av positive og negative kontroll- plasmid-templater
Et plasmid som inneholdt hele den aktuelle gensekvens fra Chlamydia tranchomatis ble brukt som positivt kontrolltemplat. Konsentrasjonen av plasmid-DNA ble bestemt spek-trof otometrisk, og fortynninger ble gjort i vann for å få kjente kopimengder av mål-DNA for PCR-reaksjoner. På denne måte ble det fremstilt et positivt kontrolltemplat.
Eksempel 6
Påvisning av Chlamydia trachomatis- sekvenser
To sett av primere og innfangningsprober ble syntetisert for å spesifikt påvise Chlamydia trachomatis. Oligonukleo-tidsekvensene ble valgt fra det kryptiske plasmid av C. trachomatis Li seroval (Hatt et al., Nucleic Acids Research, 16:4053-4067, 1988).
Primersett A genererte et 208 bp spesifikt amplicon ved hjelp av følgende primere:
CP- 24 (25-mer, + polaritet, base 195-219)
dvs. primeren er ethvert oligonukleotid som vil bindes til eller forårsake forlenging ved følgende sekvens: dvs. primeren er ethvert oligonukleotid som vil bindes til eller forårsake forlengning ved følgende sekvens: Primersett A 208 bp-spesifikt amplikon ble påvist med innfangningsprobe CP-35: dvs. proben er ethvert oligonukleotid som vil bindes til følgende sekvens:
Chlamydiaprimersett B genererte et 173 bp-spesifikt amplikon ved hjelp av følgende primere:
CP- 37 (23-mer, + polaritet, base 678-700)
dvs. primeren er ethvert oligonukleotid som vil bindes til eller forårsake forlengning ved følgende sekvens: dvs. primeren er ethvert oligonukleotid som vil bindes til eller forårsake forlengning ved følgende sekvens:
Primersett B 173 bp-amplikon ble påvist med innf angningsprobe CP-39: dvs. primeren er ethvert oligonukleotid som vil bindes til følgende sekvens:
Primersett B ble anvendt for å amplifisere målplasmid pCHL-1. Ved hjelp av 5'-biotinylerte primere ble målsubstansen
amplifisert med 30 cykluser i PCR, og de biotinylerte produkter ble undersøkt ved innf angsningshybr idi sering
(tabell 2) . Etter ti minutters fremkalling (TMB/H202) var så få som 20 utgangskopier av pCHL-1 påvisbare (1:25 fortynning, OD450= 0.140), med ubetydelig bakgrunns-signal
(O<D>450= 0.009 for 1:25 fortynning).
Eksempel 7
Påvisning av McCov- celler ocr kliniske isolater infisert med Chlamydia trachomatis
McCoy-celler, enten uinokulert eller infisert med C. tracho-matis, ble lysert i 2SP (20 mM natriumfosfatbuffer, pH 7,2, 2M sukrose) som inneholder 100/xg/ml Proteinase K, 1% Tween-20 og ble inkubert ved 55°C i 1 time, etterfukgt av inkubering ved 95°C i 10 min. Primersett A (eksempel 12) ble anvendt i en PCR-amplifisering på 30 cykluser, og produktene ble undersøkt ved plateassay som beskrevet i eksempel 8. Etter ti minutters farvefremkalling ga både 10 og 100 infiserte McCoy-celler, når de var innblandet i IO<5>uinfi- serte McCoy-celler, OD450-verdier >2.000 (for både 1/25- og 1/100-fortynninger av produktet i GuSCN). Ekstra-herte og amplifiserte uinfiserte celler alene (10<5->celler) ga O<D>450-verdier på <0,050.
Kliniske prøver som tidligere var klassifisert etter sin grad av cytopatiske effekter (CPE) [i området fra "negativ"
(ingen CPE) til 4+ (mest fremtredende CPE)], ble likeledes ekstrahert og amplifisert i 30 cykluser i CPC, idet man anvendte primersett A. Resultatene av dette assay er vist i tabell 3.
Sammenfattet er nye måter å merke og påvise amplifiserings-produkter fra Chlamydia trachomatis ved PCR beskrevet heri. Disse merkings- og innfangningsmåter tilveiebringer flere fordeler over konvensjonelle påvisningsmetoder: 1. Biotinyleringen og innfangningen av PCR-produkter på mikrotiterplater er et raskere assay. Plateassayet ifølge foreliggende oppfinnelse kan utføres i løpet av 2 timer, sammenlignet med ca. 6 -24 timer for OH-assay,. og så mye som 48 timer for Southern blotting og hybridisering. 2. Plateassay-f ormatet er mindre arbeidskrevende og kan automatiseres for analyse av store prøveantall. 3. Til forskjell fra de andre to assay-formatene som ble undersøkt, krever plateassay-formatet ikke preparering, rensing eller håndtering av farlige radioaktive prober med høy spesifikk aktivitet. 4. Innfangningen av biotinylerte produkter via plateassay tilveiebringer en objektiv, kvantitativ hybridiserings-bestemmelse; beregning av et statistisk grensepunkt for positivitet i prøvene og kvantitativ beregning av assayets "støysignal"-andel.

Claims (12)

1. Diagnostisk sett for påvisning av en målnukleinsyre-sekvens fra Chlamydia trachomatis,karakterisert vedat settet omfatter PCR-primere, hvor nevnte primere er oligonukleotider som vil binde til eller forårsake forlengelse via sekvens-settene
som utgjør sett A, eller
som utgjør sett B, samt en mikrotiterplate som har et antall brønner og som har bundet til seg en oligonukleotid-innfangningsprobe med en nukleinsyresekvens som i hovedsak er komplementær til nevnte målsekvens.
2. Diagnostisk sett ifølge krav 1,karakterisert vedat det ytterligere omfatter reagenser for å utføre PCR-amplifikasjon og hybridisering av nevnte innfangningsprobe og nevnte målsekvens.
3. Diagnostisk sett ifølge krav 2,karakterisert vedat det ytterligere omfatter Taq-polymerase samt dNTP'er.
4. Diagnostisk sett ifølge krav 3,karakterisert vedat en eller flere av nevnte dNTP'er omfatter en markør.
5. Diagnostosk sett ifølge krav 1,karakterisert vedat minst én av nevnte PCR-primere er biotinylert via en tilknytningsarm-modifisering ved 5' ende.
6. Diagnostisk sett ifølge krav 1,karakterisert vedat nevnte mikrotiterplate omfatter polystyren med øket proteinbindende kapasitet.
7. Diagnostisk sett ifølge krav 1,karakterisert vedat nevnte probe er et oligonukleotid som vil binde til den følgende sekvens
for sett A, eller
for sett B.
8. Primere til bruk i PCR-amplif ikering av Chlamydia trachomatis nukleinsyre-sekvenser,karakterisert vedat nevnte primere er oligonukleotider som vil binde seg til eller forårsake forlengelse via de følgende sekvenser:
9. Prober som er anvendelige ved hybridiseringsassays av DNA-sekvenser amplifikert med primere ifølge krav 8,karakterisert vedat probene er oligonukleotider som vil binde til følgende sekvens:
10. Primere for anvendelse ved PCR-amplifikering av Clamydia trachomatis nukleinsyre målsekvenser,karakterisert vedat nevnte primere er oligonukleotider som vil binde seg til eller forårsake forlengelse via de følgende sekvenser:
11. Prober som er anvendelige i hybridiseringsassays av DNA-sekvenser amplifikert med primere ifølge krav 10,karakterisert vedat proben er et oligonukleotid som vil binde til den følgende sekvens:
12. Anvendelse av diagnostisk sett ifølge ethvert av kravene 1 til 7 ved påvisning av Chlamydia trachomatis.
NO904240A 1989-09-29 1990-09-28 Diagnostisk sett for påvisning av nukleinsyresekvenser fra Chlamydia trachomatis NO302204B1 (no)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US07/414,542 US5232829A (en) 1989-09-29 1989-09-29 Detection of chlamydia trachomatis by polymerase chain reaction using biotin labelled lina primers and capture probes

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO904240D0 NO904240D0 (no) 1990-09-28
NO904240L NO904240L (no) 1991-04-02
NO302204B1 true NO302204B1 (no) 1998-02-02

Family

ID=23641905

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO904240A NO302204B1 (no) 1989-09-29 1990-09-28 Diagnostisk sett for påvisning av nukleinsyresekvenser fra Chlamydia trachomatis

Country Status (14)

Country Link
US (1) US5232829A (no)
EP (2) EP0875583B1 (no)
JP (1) JP2719225B2 (no)
AT (2) ATE345398T1 (no)
AU (2) AU6329090A (no)
BR (1) BR9004881A (no)
CA (1) CA2026280C (no)
DE (2) DE69033387T2 (no)
DK (2) DK0420260T3 (no)
ES (2) ES2140372T3 (no)
IL (1) IL95800A (no)
NO (1) NO302204B1 (no)
NZ (2) NZ235463A (no)
ZA (1) ZA907706B (no)

Families Citing this family (101)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE4038804A1 (de) * 1990-10-09 1992-04-16 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren zur genus- oder/und spezies-spezifischen detektion von bakterien in einer probenfluessigkeit
US5753433A (en) * 1909-12-05 1998-05-19 Boehringer Mannheim Gmbh Method for the sensitive detection of nucleic acids
US5750338A (en) * 1986-10-23 1998-05-12 Amoco Corporation Target and background capture methods with amplification for affinity assays
US5714380A (en) * 1986-10-23 1998-02-03 Amoco Corporation Closed vessel for isolating target molecules and for performing amplification
US5800992A (en) 1989-06-07 1998-09-01 Fodor; Stephen P.A. Method of detecting nucleic acids
US6309822B1 (en) 1989-06-07 2001-10-30 Affymetrix, Inc. Method for comparing copy number of nucleic acid sequences
US6346413B1 (en) 1989-06-07 2002-02-12 Affymetrix, Inc. Polymer arrays
US5424186A (en) 1989-06-07 1995-06-13 Affymax Technologies N.V. Very large scale immobilized polymer synthesis
US6416952B1 (en) 1989-06-07 2002-07-09 Affymetrix, Inc. Photolithographic and other means for manufacturing arrays
US6551784B2 (en) 1989-06-07 2003-04-22 Affymetrix Inc Method of comparing nucleic acid sequences
US6040138A (en) * 1995-09-15 2000-03-21 Affymetrix, Inc. Expression monitoring by hybridization to high density oligonucleotide arrays
US5143854A (en) 1989-06-07 1992-09-01 Affymax Technologies N.V. Large scale photolithographic solid phase synthesis of polypeptides and receptor binding screening thereof
US5744101A (en) * 1989-06-07 1998-04-28 Affymax Technologies N.V. Photolabile nucleoside protecting groups
US6406844B1 (en) 1989-06-07 2002-06-18 Affymetrix, Inc. Very large scale immobilized polymer synthesis
US5547839A (en) 1989-06-07 1996-08-20 Affymax Technologies N.V. Sequencing of surface immobilized polymers utilizing microflourescence detection
US5232829A (en) * 1989-09-29 1993-08-03 Hoffmann-La Roche Inc. Detection of chlamydia trachomatis by polymerase chain reaction using biotin labelled lina primers and capture probes
US6506558B1 (en) 1990-03-07 2003-01-14 Affymetrix Inc. Very large scale immobilized polymer synthesis
IT1248685B (it) * 1990-06-04 1995-01-26 Tecnogen Scpa Procedimento per la identificazione di sequenze polinucleotidiche e dispositivo relativo
FR2663040B1 (fr) * 1990-06-11 1995-09-15 Bio Merieux Procede de detection d'une sequence nucleotidique selon la technique d'hybridation sandwich.
US5695926A (en) * 1990-06-11 1997-12-09 Bio Merieux Sandwich hybridization assays using very short capture probes noncovalently bound to a hydrophobic support
JPH0499500A (ja) * 1990-08-17 1992-03-31 Kikkoman Corp アビジンまたはアビジン標識体の定量法およびビオチンまたはビオチン標識体の定量法
US5635348A (en) * 1990-10-05 1997-06-03 Hoffmann-La Roche Inc. Method and probes for identifying bacteria found in blood
NZ240079A (en) * 1990-10-09 1993-07-27 Boehringer Mannheim Gmbh Method for the detection of a nucleic acid or part thereof
US5474895A (en) * 1990-11-14 1995-12-12 Siska Diagnostics Inc. Non-isotopic detection of nucleic acids using a polystyrene support-based sandwich hybridization assay and compositions useful therefor
DE69132843T2 (de) 1990-12-06 2002-09-12 Affymetrix, Inc. (N.D.Ges.D.Staates Delaware) Identifizierung von Nukleinsäuren in Proben
FR2679255B1 (fr) * 1991-07-17 1993-10-22 Bio Merieux Procede d'immobilisation d'un fragment nucleique par fixation passive sur un support solide, support solide ainsi obtenu et son utilisation.
DE69232753T2 (de) * 1991-11-01 2003-05-15 Diatech Pty. Ltd., Brisbane Feststoff-phase erweiterungsverfahren
US6468740B1 (en) 1992-11-05 2002-10-22 Affymetrix, Inc. Cyclic and substituted immobilized molecular synthesis
US6943034B1 (en) 1991-11-22 2005-09-13 Affymetrix, Inc. Combinatorial strategies for polymer synthesis
US5677195A (en) * 1991-11-22 1997-10-14 Affymax Technologies N.V. Combinatorial strategies for polymer synthesis
AU2844792A (en) * 1991-12-11 1993-06-17 Becton Dickinson & Company Probes to chlamydia trachomatis
JPH07502414A (ja) * 1991-12-23 1995-03-16 バイエル コーポレイション 溶液相サンドイッチハイブリダイゼーションアッセイに用いるためのクラミジアプローブ
KR100289793B1 (ko) * 1992-01-29 2001-12-01 테츠오 토미나가 폴리누클레오티드고정지지체
WO1993020234A1 (en) * 1992-03-31 1993-10-14 E.I. Du Pont De Nemours And Company A rapid, high capacity nucleic acid based assay
DE4212555A1 (de) * 1992-04-15 1993-10-21 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren zum Nachweis von Nukleinsäuren
EP0656068B1 (en) * 1992-07-24 1999-12-15 University Of South Australia Amplification and detection process
JPH08503606A (ja) * 1992-10-09 1996-04-23 アモコ・コーポレーション 検定法
US5545528A (en) * 1993-04-15 1996-08-13 Hitachi Chemical Research Center Rapid screening method of gene amplification products in polypropylene plates
WO1994026934A2 (en) * 1993-05-06 1994-11-24 Baxter Diagnostics Inc. Human papillomavirus detection assay
US5550040A (en) * 1993-06-23 1996-08-27 Hoffman-La Roche Inc. Method, reagents and kits for the detection of Neisseria gonorrhoeae
US5601978A (en) * 1993-09-03 1997-02-11 Abbott Laboratories Oligonucleotides and methods for the detection of chlamydia trachomatis
WO1995006753A1 (en) * 1993-09-03 1995-03-09 The United States of America, represented by The Secretary, Department of Health & Human Services Method and compositions for primer specific solid-phase detection of pcr products
FR2716263B1 (fr) * 1994-02-11 1997-01-17 Pasteur Institut Procédé d'alignement de macromolécules par passage d'un ménisque et applications dans un procédé de mise en évidence, séparation et/ou dosage d'une macromolécule dans un échantillon.
US5480783A (en) * 1994-03-31 1996-01-02 The Perkin-Elmer Corporation Method for reducing background signals in DNA replication/detection assays
US6037127A (en) * 1994-03-31 2000-03-14 E. I. Du Pont De Nemours And Company Method for detection of non-denatured nucleic acid fragments
US5547861A (en) 1994-04-18 1996-08-20 Becton, Dickinson And Company Detection of nucleic acid amplification
US7378236B1 (en) 1994-06-17 2008-05-27 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Method for analyzing gene expression patterns
US7323298B1 (en) 1994-06-17 2008-01-29 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Microarray for determining the relative abundances of polynuceotide sequences
US20030026782A1 (en) * 1995-02-07 2003-02-06 Arthur M. Krieg Immunomodulatory oligonucleotides
ATE206764T1 (de) * 1994-07-16 2001-10-15 Roche Diagnostics Gmbh Verfahren zum sensitiven nachweis von nukleinsäuren
US5514551A (en) * 1994-10-14 1996-05-07 Gen-Probe Incorporated Compositions for the detection of Chlamydia trachomatis
US8236493B2 (en) 1994-10-21 2012-08-07 Affymetrix, Inc. Methods of enzymatic discrimination enhancement and surface-bound double-stranded DNA
CA2163393C (en) * 1994-11-30 2003-04-22 Colleen Marie Nycz Amplification and detection of mycobacteria nucleic acids
US6022689A (en) * 1995-04-07 2000-02-08 University Of New Mexico Situ hybridization slide processes
US5989813A (en) * 1995-07-13 1999-11-23 Molecular Innovations, Inc. Detection of amplified nucleic acid sequences using bifunctional haptenization and dyed microparticles
US6027879A (en) * 1995-08-09 2000-02-22 The Regents Of The University Of California Detection and isolation of nucleic acid sequences using a bifunctional hybridization probe
US5800989A (en) * 1995-11-15 1998-09-01 Becton, Dickinson And Company Method for detection of nucleic acid targets by amplification and fluorescence polarization
EP0880598A4 (en) 1996-01-23 2005-02-23 Affymetrix Inc RAPID EVALUATION OF NUCLEIC ACID ABUNDANCE DIFFERENCE, WITH A HIGH-DENSITY OLIGONUCLEOTIDE SYSTEM
US5814490A (en) * 1996-06-11 1998-09-29 Becton, Dickinson And Company Amplification and detection of chlamydia trachomatis nucleic acids
WO1998006435A2 (en) * 1996-08-14 1998-02-19 Vanderbilt University COMPOSITIONS OF ANTICHLAMYDIAL AGENTS FOR THE DIAGNOSIS AND MANAGEMENT OF INFECTION CAUSED BY $i(CHLAMYDIA)
WO1998013527A2 (en) * 1996-09-24 1998-04-02 Rapigene, Inc. Compositions and methods for enhancing hybridization specificity
US6361940B1 (en) 1996-09-24 2002-03-26 Qiagen Genomics, Inc. Compositions and methods for enhancing hybridization and priming specificity
EP0952228A3 (en) * 1996-09-24 1999-12-15 Rapigene, Inc. Compositions and methods for enhancing hybridization specificity
US6143496A (en) 1997-04-17 2000-11-07 Cytonix Corporation Method of sampling, amplifying and quantifying segment of nucleic acid, polymerase chain reaction assembly having nanoliter-sized sample chambers, and method of filling assembly
US6391655B1 (en) 1997-07-30 2002-05-21 Corning Incorporated Oxidized styrenic polymers for DNA binding
US6096501A (en) * 1997-11-04 2000-08-01 Becton Dickinson And Company Assay for Chlamydia trachomatis by amplification and detection of Chlamydia trachomatis crytpic plasmid
DE19811732A1 (de) * 1998-03-18 1999-09-30 November Ag Molekulare Medizin Mikrotiterplatte und Verfahren zum Nachweis von Biomolekülen
US6261769B1 (en) 1998-03-31 2001-07-17 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Intergenic spacer target sequence for detecting and distinguishing Chlamydial species or strains
DE19824900B4 (de) * 1998-06-04 2006-05-04 Roche Diagnostics Gmbh DNA-Nachweis über einen Strangreassoziationskomplex
US6545264B1 (en) 1998-10-30 2003-04-08 Affymetrix, Inc. Systems and methods for high performance scanning
DE19916929A1 (de) * 1999-04-15 2000-10-19 Bayer Ag Ein automatisierbarer Schnelltest zum Nachweis von Krebserkrankungen auf der Basis von Telomerase(hTC) mRNA mit spezifischen Primern und Sonden
US6248537B1 (en) 1999-05-28 2001-06-19 Institut Pasteur Use of the combing process for the identification of DNA origins of replication
FR2803913B1 (fr) 2000-01-13 2002-08-16 Pasteur Sanofi Diagnostics Procede d'immobilisation de reactif(s) affin(s) sur phase solide hydrophobe
US7611869B2 (en) 2000-02-07 2009-11-03 Illumina, Inc. Multiplexed methylation detection methods
US8076063B2 (en) 2000-02-07 2011-12-13 Illumina, Inc. Multiplexed methylation detection methods
US7955794B2 (en) 2000-09-21 2011-06-07 Illumina, Inc. Multiplex nucleic acid reactions
US7582420B2 (en) 2001-07-12 2009-09-01 Illumina, Inc. Multiplex nucleic acid reactions
DK1259643T3 (da) * 2000-02-07 2009-02-23 Illumina Inc Fremgangsmåde til detektion af nukleinsyre ved anvendelse af universel priming
EP1164201A1 (en) * 2000-06-14 2001-12-19 Facultés Universitaires Notre-Dame de la Paix Reverse detection for identification and/or quantification of nucleotide target sequences on biochips
GB0016836D0 (en) 2000-07-07 2000-08-30 Lee Helen Improved dipstick assays (1)
US6682889B1 (en) 2000-11-08 2004-01-27 Becton, Dickinson And Company Amplification and detection of organisms of the Chlamydiaceae family
JP2002176985A (ja) * 2000-12-14 2002-06-25 Hitachi Software Eng Co Ltd Pcr増幅された塩基配列の検出方法及び検出キット
US20030104354A1 (en) * 2001-11-30 2003-06-05 Reliance Life Sciences Private Limited Method and device for the rapid clinical diagnosis of human cytomegalovirus (hCMV) infection in biological samples
CA2467814A1 (en) * 2001-12-03 2003-06-12 Illumina, Inc. Multiplexed methylation detection methods
KR100532664B1 (ko) * 2002-09-09 2005-12-02 주식회사 바이오메드랩 클라미디아 트라코마티스 탐지용 프로브, 이를 포함하는 클라미디아 트라코마티스 탐지용 키트, 및 이를 이용한 클라미디아 트라코마티스의 탐지방법
US7807802B2 (en) 2002-11-12 2010-10-05 Abbott Lab Polynucleotides for the amplification and detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae
JP2004261017A (ja) 2003-02-27 2004-09-24 Arkray Inc クラミジア・トラコマティスの検出方法およびそのためのキット
MXPA05010429A (es) 2003-03-31 2005-11-04 Hoffmann La Roche Composiciones y metodos para detectar ciertos flavivirus que incluyen miembros del serogrupo del virus de la encefalitis japonesa.
US7820030B2 (en) * 2003-04-16 2010-10-26 Handylab, Inc. System and method for electrochemical detection of biological compounds
US7939251B2 (en) 2004-05-06 2011-05-10 Roche Molecular Systems, Inc. SENP1 as a marker for cancer
US7338763B2 (en) 2004-06-02 2008-03-04 Eppendorf Array Technologies S.A. Method and kit for the detection and/or quantification of homologous nucleotide sequences on arrays
US20060134650A1 (en) * 2004-12-21 2006-06-22 Illumina, Inc. Methylation-sensitive restriction enzyme endonuclease method of whole genome methylation analysis
JP2009531464A (ja) 2006-03-29 2009-09-03 メリアル リミテッド 連鎖球菌に対するワクチン
JP2010537637A (ja) 2007-08-27 2010-12-09 アプライド バイオシステムズ インコーポレイテッド Pcrのための方法および組成物
WO2009099037A1 (ja) 2008-02-08 2009-08-13 Wako Pure Chemical Industries, Ltd. クラミドフィラ・キャビエ検出用プライマー及びプローブ、並びにこれを用いたクラミドフィラ・キャビエの検出方法
US8906621B2 (en) * 2009-01-06 2014-12-09 Qimin You Cross priming amplification of target nucleic acids
CN102918155B (zh) 2010-03-23 2015-12-16 和光纯药工业株式会社 沙眼衣原体检测用引物和探针、以及使用该引物和探针的沙眼衣原体的检测方法
AT512416B1 (de) 2012-02-13 2013-10-15 Greiner Bio One Gmbh Anordnung und verfahren zum nachweis von mikroorganismen in einem kulturgefäss
EA028686B1 (ru) * 2014-11-14 2017-12-29 Общество с ограниченной ответственностью "ИнтерЛабСервис" Набор реагентов для выявления днк chlamydia trachomatis и его применение
AU2017290753B2 (en) * 2016-06-30 2021-12-09 Visby Medical, Inc. Devices and methods for nucleic acid extraction
US10323272B1 (en) * 2018-01-31 2019-06-18 Enzo Biochem, Inc. Nucleic acid probes for in situ hybridization

Family Cites Families (26)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4154795A (en) * 1976-07-23 1979-05-15 Dynatech Holdings Limited Microtest plates
US4228237A (en) * 1978-09-21 1980-10-14 Calbiochem-Behring Corp. Methods for the detection and determination of ligands
US4358535A (en) * 1980-12-08 1982-11-09 Board Of Regents Of The University Of Washington Specific DNA probes in diagnostic microbiology
FI63596C (fi) * 1981-10-16 1983-07-11 Orion Yhtymae Oy Mikrobdiagnostiskt foerfarande som grundar sig pao skiktshybridisering av nukleinsyror och vid foerfarandet anvaenda kombinationer av reagenser
US4725388A (en) * 1982-10-12 1988-02-16 Dynatech Laboratories, Inc. Non-fluorescent vessels for holding test samples in fluorescent assays
GB8311905D0 (en) * 1983-04-29 1983-06-02 Cox R A Isolation and detection of nucleotide sequence
FI71768C (fi) * 1984-02-17 1987-02-09 Orion Yhtymae Oy Foerbaettrade nykleinsyrareagenser och foerfarande foer deras framstaellning.
GB8507706D0 (en) * 1985-03-25 1985-05-01 Genetics Int Inc Magnetic nucleic acid sequences
US4683202A (en) * 1985-03-28 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying nucleic acid sequences
US4683195A (en) * 1986-01-30 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying, detecting, and/or-cloning nucleic acid sequences
US4751177A (en) * 1985-06-13 1988-06-14 Amgen Methods and kits for performing nucleic acid hybridization assays
US4797355A (en) * 1985-06-13 1989-01-10 Amgen Inc. Methods for attaching polynucleotides to supports
US4822731A (en) * 1986-01-09 1989-04-18 Cetus Corporation Process for labeling single-stranded nucleic acids and hybridizaiton probes
FI76119C (fi) * 1986-02-27 1988-09-09 Orion Yhtymae Oy Kvantitativ bestaemning av nukleinsyramolekyler och reagensfoerpackning som anvaends vid foerfarandet.
CA1284931C (en) * 1986-03-13 1991-06-18 Henry A. Erlich Process for detecting specific nucleotide variations and genetic polymorphisms present in nucleic acids
CA1301606C (en) * 1986-05-02 1992-05-26 David H. Gillespie Chaotropic method for evaluating nucleic acids in a biological sample
WO1988003957A1 (en) * 1986-11-24 1988-06-02 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes for detection and/or quantitation of non-viral organisms
FR2607518B1 (fr) * 1986-12-01 1989-10-20 Transgene Sa Vecteur viral et adn recombinant codant pour la proteine p25 du virus agent causal du s.i.d.a., culture cellulaire infectee, proteine obtenue, vaccin et anticorps obtenus
AU622104B2 (en) * 1987-03-11 1992-04-02 Sangtec Molecular Diagnostics Ab Method of assaying of nucleic acids, a reagent combination and kit therefore
JPH07107537B2 (ja) * 1987-08-03 1995-11-15 イーストマン コダック カンパニー アビジン−及びビオチン−固定試薬,分析要素並びにその使用法
CA1339351C (en) * 1987-10-15 1997-08-26 Michael S. Urdea Nucleic acid multimers and amplified nucleic acid hybridization assays using same
IT1224253B (it) * 1988-04-08 1990-09-26 Sclavo Spa Oligonucleotidi sintetici utili per la determinazione di chlamydia trachomatis in un campione biologico
ATE173508T1 (de) * 1988-05-20 1998-12-15 Hoffmann La Roche Befestigung von sequenzspezifischen proben
KR920700360A (ko) * 1989-03-22 1992-02-19 하리크 프리드리히 미끄럼 베어링
US5232829A (en) * 1989-09-29 1993-08-03 Hoffmann-La Roche Inc. Detection of chlamydia trachomatis by polymerase chain reaction using biotin labelled lina primers and capture probes
CA2031659A1 (en) * 1990-01-26 1991-07-27 John B. Findlay Water-insoluble reagent, nucleic acid probe, test kit and diagnostic and purification methods

Also Published As

Publication number Publication date
EP0875583A2 (en) 1998-11-04
DE69033387T2 (de) 2000-03-30
IL95800A (en) 1994-10-07
ES2275292T3 (es) 2007-06-01
DK0420260T3 (da) 2000-03-27
JP2719225B2 (ja) 1998-02-25
ATE345398T1 (de) 2006-12-15
CA2026280C (en) 2003-04-15
DE69034232D1 (de) 2006-12-28
AU7280494A (en) 1994-11-24
ATE187499T1 (de) 1999-12-15
BR9004881A (pt) 1991-09-10
DE69033387D1 (de) 2000-01-13
US5232829A (en) 1993-08-03
EP0420260A2 (en) 1991-04-03
EP0420260B1 (en) 1999-12-08
EP0875583B1 (en) 2006-11-15
NZ235463A (en) 1994-03-25
CA2026280A1 (en) 1991-03-30
AU6329090A (en) 1991-04-11
EP0420260A3 (en) 1991-09-18
AU685144B2 (en) 1998-01-15
DK0875583T3 (da) 2007-02-26
IL95800A0 (en) 1991-06-30
EP0875583A3 (en) 1999-02-17
NZ247522A (en) 1994-03-25
ES2140372T3 (es) 2000-03-01
NO904240L (no) 1991-04-02
DE69034232T2 (de) 2007-03-01
JPH03206898A (ja) 1991-09-10
ZA907706B (en) 1991-06-26
NO904240D0 (no) 1990-09-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NO302204B1 (no) Diagnostisk sett for påvisning av nukleinsyresekvenser fra Chlamydia trachomatis
US5858652A (en) Detection and amplification of target nucleic acid sequences
EP0457824B2 (en) Detection of a nucleic acid sequence or a change therein
EP0521111B1 (en) Polynucleotide capture assay employing in vitro amplification
US5858732A (en) Wide dynamic range nucleic acid detection using an aggregate primer series
EP0359789B1 (en) Amplification and detection of nucleic acid sequences
US6100099A (en) Test strip having a diagonal array of capture spots
US7951541B2 (en) Assay kit for use in method of detecting a target nucleic acid
US5547860A (en) Sulphocoumarin-containing nucleotides and their use in processes for detecting nucleic acids
EP0436547B1 (en) Process for rapid nucleic acid detection
US10358675B2 (en) Oligonucleotides for controlling amplification of nucleic acids
US20020182615A1 (en) All in one nucleic acid amplification assay
Dahlen et al. Detection of human immunodeficiency virus type 1 by using the polymerase chain reaction and a time-resolved fluorescence-based hybridization assay
Gudibande et al. Rapid, non-separation electrochemiluminescent DNA hybridization assays for PCR products, using 3′-labelled oligonucleotide probes
US6096501A (en) Assay for Chlamydia trachomatis by amplification and detection of Chlamydia trachomatis crytpic plasmid
EP1426448A1 (en) Method for lowering the effects of sequence variations in a diagnostic hybridization assay, probe for use in the assay and assay
JPH0714359B2 (ja) 修飾核酸の製造方法
US5814490A (en) Amplification and detection of chlamydia trachomatis nucleic acids
WO1990011374A1 (en) Polymerase chain reaction products incorporating reporter moieties and affinity seperation
US6379892B1 (en) Methods, kits and compositions of matter useful for determining Chlamydia pneumoniae
AU723602B2 (en) Biotin-labelled DNA by polymerase chain reaction and detection thereof
IE903415A1 (en) Nucleic acid detection method using unequal primer¹concentrations in polymerase chain reaction
JPH1023894A (ja) 試料中の複数種の核酸を検出する方法
CA2012984A1 (en) Process for rapid nucleic acid detection by incorporating a reporter moiety into amplified target nucleic acid followed by affinity capture

Legal Events

Date Code Title Description
MK1K Patent expired