NO149611B - Fremgangsmaate for isolering og rensning av immunologisk aktivt polyribosyl-ribitolfosfat (prp), det kapsulaere polysakkarid av haemophilus influenzae - Google Patents

Fremgangsmaate for isolering og rensning av immunologisk aktivt polyribosyl-ribitolfosfat (prp), det kapsulaere polysakkarid av haemophilus influenzae Download PDF

Info

Publication number
NO149611B
NO149611B NO783635A NO783635A NO149611B NO 149611 B NO149611 B NO 149611B NO 783635 A NO783635 A NO 783635A NO 783635 A NO783635 A NO 783635A NO 149611 B NO149611 B NO 149611B
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
prp
isolation
haemophilus influenzae
hydroxylapatite
phosphate buffer
Prior art date
Application number
NO783635A
Other languages
English (en)
Other versions
NO149611C (no
NO783635L (no
Inventor
Joseph S C Kuo
Original Assignee
American Cyanamid Co
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from US05/846,466 external-priority patent/US4196192A/en
Priority claimed from US05/846,488 external-priority patent/US4220717A/en
Application filed by American Cyanamid Co filed Critical American Cyanamid Co
Publication of NO783635L publication Critical patent/NO783635L/no
Publication of NO149611B publication Critical patent/NO149611B/no
Publication of NO149611C publication Critical patent/NO149611C/no

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/715Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/099Bordetella
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/102Pasteurellales, e.g. Actinobacillus, Pasteurella; Haemophilus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/70Multivalent vaccine

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

Denne oppfinnelse angår en metode for isolering og rensning av det antigene polysakkarid polyribosylribitol-fosfat (PRP) fra Haemophilus influenzae type b-kulturer.
Det rensede polyribitolfosfat (PRP) fra Haemophilus influenzae type b undersøkes for tiden som et beskyttelses-immunogen. Et aktivt antigent svar hos unge dyr og barn er imidlertid ikke oppnådd. Ifølge den tidligere kjente metode for rensning anvendes etanol og "Cetavolon" (heksadecyltrimetyl-ammoniumbromid). Forurensningene, endotoksiner, og pyrogene stoffer ble fjernet ved anvendelse av kald fenol eller kloroform og t-butanol, som kan resultere i tap av den antigene karakter hos dette polysakkarid.
En ny fremgangsmåte for isolering og rensning av immunologisk aktivt PRP fra Haemophilus influenzae type b er ut-viklet .
Foreliggende fremgangsmåte oppviser klare fordeler i forhold til tidligere kjente metoder, ved at alle forurensninger (nukleinsyrer, proteiner og endotoksiner) fjernes til minst mulige nivå ved behandling med hydroksylapatitt. PRP fremstilt ved den her beskrevne fremgangsmåte, gir et mer høymolekylært polysakkarid enn hva som tidligere er rapportert.
Det er videre av betydning at PRP fremstilt i henhold til denne nye metode i høy grad er immunogent hos varmblodige dyr i motsetning til det PRP som fremstilles i henhold til tidligere kjente metoder.
En fremgangsmåte for fjernelse av forurensninger (proteiner, nukleinsyrer og endotoksiner) i polysakkaridet PRP oppnås ved behandling av det delvis rensede polysakkarid med et fosfatholdig adsorpsjonsmiddel som ikke absorberer polysakkaridet under de angitte betingelser.
(I) Isolering og rensning av polyribosylribitol- fosfat,
det kapsulære polysakkarid av Haemophilus influenzae type b.
Organismer, dyrkningsmedium og kultur
To stammer av Haemophilus influenzae type b anvendes.
Rab-stammen erholdes fra Grace Leidy, Babies Hospital, Columbia University, New York City, New York. CK-stammen ble isolert fra en pasient ved Waterbury Hospital Waterbury, Conn. Organismene får passere gjennom mus flere ganger for å sikre deres virulens.
Organismene isoleres ved autopsi fra hjernevev hos mus, sub-kultivert på enten 3,7%ig hjerne-hjerte-infusjonsmedium (BHI)
(Difco Lab., Detroit, Mich.) eller på 5%ig BHI-agar komplettert med 0,01%ig nikotinamid-adenin-dinukleotid (NAD) (P-L Biochemicals, Milwaukee, Wis.) og l%ig (volum/volum) defibrinert hesteblod (Animal Blood Center, Syracuse, N.Y.), og fordeles derefter i porsjoner på 1 ml på ampuller, lyofiliseres og oppbevares ved -70°C.
Grunnmedium anvendt for dyrkning av organismene er
3,7%ig BHI. Grunnmediet suppleres med 10 mg NAD og 20 mg hemin (Eastman Kodak, Rochester, N.Y.) pr. liter. 1% (volum/volum) defibrinert hesteblod tilsettes pr. 50 ml podekultur. Supple-mentene nyfremstilles og filtreres gjennom en 0,4 5 p Nalgene filterenhet (Nalge Sybron Corp., Rochester, N.Y.) før anvendelse. For dyrkning av organismen i en 14 liters fermentor suppleres mediet ytterligere med 0,5% glukose.'
For å tilberede en kolbe med podeorganismer opptines
1 ml frosset forrådskultur og overføres til 50 ml av det anrikede BHI-mediet supplert med defibrinert hesteblod og NAD. Kulturen dyrkes i 8 timer ved 37°C på en gyroskakeanordning med en hastighet av 150 omdr./minutt. Organismene settes i form av et l%ig podestoff til 500 ml porsjoner av anriket BHI-dyrkningsvæske i 2 liters kolber, som derefter inkuberes ved 37°C med moderat skakning på en gyroskakeanordning i 8 timer (for isolering av PRP) eller 14 timer (som podekulturer).
Fermenteringen av hver sats i en 14 liters fermentor initieres ved aseptisk overføring av 700 ml av podekulturen til 7 liter av den anrikede BHI-dyrkningsvæsken supplert med hemin istedenfor defibrinert hesteblod. Kulturen opprettholdes kontinu-erlig ved 37 - 1°C. Tanken omrøres med en hastighet på 150 omdr./ minutt, og en luftstrøm på 0,25 liter luft pr. liter dyrkningsvæske pr. minutt opprettholdes. Under dyrkningen tilsettes 0,001% av et silikon-antiskummiddel (FD-82, Hodag Chemical Corp.) efter behov. Kulturer dyrkes til bare eksponentiell tilvekst (8-10 x 10 9 levedyktige celler pr. ml), vanligvis ca. 8 timer, hvorefter dyrkningen avsluttes ved at man tilsetter 0,4%ig formaldehyd og oppbevarer kulturene natten over ved 4°C.
Isolering av polyribosylribitol- fosfat ( PRP)
Dyrkningsvæske fremstilt i henhold til det ovenstående sentrifugeres ved 27.000 x g i 30 minutter ved 4°C. Den celle-frie væsken på toppen oppbevares og behandles på følgende måte:
Trinn 1, etanolutfeining
Væsken på toppen i kulturen tilsettes natriumacetat (sluttkonsentrasjon 4%). Oppløsningen innstilles på pH 6,0-6,2, og 44 liter med metanol denaturert etanol tilsettes langsomt under kraftig omrøring ved 4°C. Blandingen innstilles på pH 6,8 med iseddik og oppbevares derefter i 12 timer ved 3°C. Den dannede felningen oppsamles ved dekantering og sentrifugeres derefter for dannelse av urent PRP.
Trinn 2, " Cetavlon" ( heksadecyltrimetylammoniumbromid)- behandling
Felningen fra trinn 1 løses i pyrogenfritt destillert vann og sentrifugeres for å fjerne residuet. Den klare, brune opp-løsning settes derefter langsomt til 100 ml 10%ig vann-oppløsning av "Cetavlon" under blanding (sluttkonsentrasjon 0,5%). Blandingen omrøres i 1 time og sentrifugeres derefter. Felningen av nukleinsyrer og PRP-"Cetavlon"-kompleks blandes med 2 liter 0,3M natriumklorid. Den uklare oppløsningen sentrifugeres for å fjerne uoppløselig materiale så som imklein-"Cetavlon"-salt.
Væsken på toppen fortynnes med en lik volummengde vann, hvorved PRP-"Cetavlon"-saltet utfelles. Blandingen omrøres i 1 time, felningen oppsamles ved sentrifugering og oppløses derefter i 2 liter 0,3M natriumkloridoppløsning.
Trinn 3, etanolutfeining
"Cetavlon" og forurensningene av nukleinsyrer og proteiner fjernes ytterligere ved etanolutfeining (minst to ganger). PRP utfelles i henhold til trinn 1, mens "Cetavlon" oppløses i alkoholoppløsningen. PRP oppsamles ved sentrifugering, løses i 2 liter pyrogenfritt, destillert vann og utfelles derefter igjen som beskrevet ovenfor. Den endelige PRP-feiningen solubiliseres i 20 mM natriumfosfat, pH 6,8.
Trinn 4, hydroksylapatittbehandling
Forurensninger (så som nukleinsyrer, proteiner og endotoksiner) i de delvis rensede PRP-preparater fjernes selektivt ved adsorpsjon på hydroksylapatitt [3-Ca^(P04) 2Ca(OH) ^\ .
Oppfinnelsen bygger på den oppdagelse at polysakkaridet PRP ikke adsorberes av den hydroksylapatittholdige fosfatbuffer (0,02M) med en pH på 6,7-6,9; eller en fosfatbuffer- (0,02M) med
en pH på ca. 5,8; mens derimot forurensningene (så som nukleinsyrer, proteiner og endotoksiner) adsorberes under disse betingelser. Fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen kan utføres satsvis eller i kolonnedrift. Ved satsvis utførelse settes hydroksyl-apatitten til det delvis rensede PRP-preparatet (i 0,02M natriumfosfatbuffer; pH 6,7-6,9). Blandingen blandes omhyggelig ved 2-10°C, og sentrifugeres for å fjerne uønskede faste substanser (adsorpsjonsmiddel og de forurensninger som er adsorbert av adsorpsjonsmidlet). Væsken på toppen underkastes nevnte prosedyre minst ytterligere to ganger. Den dannede oppløsningen filtreres gjennom "Millipore"-filter, dialyseres mot pyrogenfritt destillert vann og lyofiliseres.
Ved kolonnedrift påføres delvis renset PRP i 0,02M natriumfosfatbuffer (pH ca. 5,8) i en kolonne inneholdende adsorpsjonsmidlet hydroksylapatitt, som er bragt til likevekt med 0,02M natriumfosfatbuffer, pH ca. 5,8, og elueres med en trinnvis gradient av natriumfosfatbuffer, pH ca. 5,8 fra 0,02M til 0,05M. Fraksjoner oppsamles og analyseres med hensyn til pentose (og dermed med hensyn til polyribosylribitolfosfat). De fraksjoner som er positive med hensyn til pentose, dialyseres mot pyrogenfritt, destillert vann og lyofiliseres.
Oppfinnelsen skal illustreres nærmere ved hjelp av de følgende eksempler hvor de angitte temperaturer er i °C.
Eksempel 1
2,5 g hydroksylapatitt (f.eks. Bio. gel HTP, Bio-Rad Laboratories, Richmond, California) settes til 250 ml delvis rensede PRP-preparater (efter "Cetavlon"- og etanolbehandlinger)
(inneholdende ca. 1,0 mg PRP/ml) i 20 mM natriumfosfatbuffer,
pH 6,9, og blandes i et iskaldt vannbad (1-4°C) i 1 time. Blandingen sentrifugeres i en Sorvall RC2-B i 30 minutter ved 16.000 x g. Væsken på toppen føres derefter gjennom et 0,65 m milliporefilter og underkastes nevnte prosedyre (hver gang behandlet med 2,5 g hydroksylapatitt) ytterligere to ganger. Den erholdte oppløsning filtreres gjennom 0,65 u og 0,45 m milliporefilter,
dialyseres mot pyrogenfritt, destillert vann og lyofiliseres.
Det lyofiliserte produkt oppviser kraftig immunogen aktivitet
(se nedenfor med hensyn til dyreforsøk med kombinert vaksine)
og inneholder en meget liten mengde forurensninger (så som nukleinsyrer, proteiner og endotoksiner) (se tabell I nedenfor). Ca. 170 mg lyofilisert PRP erholdes. Gjenvinningen av PRP ved denne fremgangsmåte er ca. 70%, beregnet på utgangspolysakkaridet. PRP bør oppbevares under egnede betingelser, f.eks. ved 4° i en eksikator over fosforpentoksyd og silikagel.
E ksempel 2
Delvis renset PRP (300 mg PRP) oppløses i 100 ml 20 mM natriumfosfatbuffer, pH 5,8 (dvs. 3 mg PRP/ml). Denne oppløsning påføres en kolonne ved romtemperatur (5,0 x 45 cm) av hydroksylapatitt (ca. 250 ml lagvolum), som er bragt til likevekt med 20 mM natriumfos fatbuffer, pH 5,8, og elueres med en trinnvis gradient av 20 mM, 50 mM og 100 mM natriumf osf atbuf fer, pH 5,8.
De individuelle fraksjoner (200 ml), eluert med 20 mM og 50 mM natriumfosfatbuffer (pH 5,8), som er positive med hensyn til pentose (pentosebestemmelse i henhold til originalmetoden), oppbevares, dialyseres mot pyrogenfritt, destillert vann og lyofiliseres. Man får ca. 206 mg av det lyofiliserte produkt,
PRP.
Renheten av polysakkaridet, PRP, analyseres ved at man bedømmer i hvilken utstrekning de er forurenset med nukleinsyrer, proteiner og endotoksiner. Proteinkonsentrasjonen bestemmes ifølge Lowry et al. i J. Biol. Chem. 193:265 (1951) med bovinserum-albumin som standard. Nukleinsyren bestemmes ved absorpsjon av PRP-oppløsningen ved 2 60 nm. Absorbansen av 50 yg nukleinsyre
i 1 ml vann i en celle med lysvei 1 cm ansees å være lik 1,0. Molekylstørrelsen bedømmes ved hjelp av "Sepharose" 4B- eller 2B-gelfiltrering på kolonner 1,5 x 90 cm (Pharmacia-Fine Chemicals, Pissataway, N.J.). Fordelingskoeffisienten (Kd) bestemmes fra elueringsmønsteret fremkalt ved originalreaksjonen (Herbert et al, Methods in Microbiology, vol. 5B, 285-291).
For undersøkelse av virkningen av en vaksine som inneholder PRP fra H. influenzae ble fremstilt en kombinasjonsvaksine med B.pertussis-antigener: A. En kombinasjonsvaksine inneholdende PRP fra H. influenzae type b og B. pertussis-antigener fremstilles i henhold til følgende: 140 mg PRP (fremstilt ifølge eksempel 2) oppløses i 350 ml steril,, fosfatbufret natriumkloridoppløsning (PBS) (0,113 g kaliumfosfat, 0,83 g dinatriumfosfat og 8,5 g natriumklorid pr. liter, pH 7,0, inneholdende 0,01% timerosal) og filtreres gjennom et 0,45 y millipore-filter. Denne konsentrerte PRP-oppløsning (400 yg/ml) anvendes for fremstilling av en kombinasjonsvaksine, som består av PRP og B. pertussis-antigener.
150 ml av den konsentrerte PRP-oppløsningen (400 yg/ml) tilsettes 150 ml frisk B. pertussis (stamme 138)-cellesuspensjon i PBS, pH 7,0 (med opacitet 149; op, enhetsceller/ml) for fremstilling av forrådsoppløsningen av den kombinerte vaksine. Denne forrådsoppløsning (300 ml) holdes ved 4° inntil endotoksinnivået av pertussis har sunket (minst 90 dager). Steriliteten av forråds-oppløsningen undersøkes med tioglykolatmedier (ved 32-33°). pH i forrådsoppløsningen efter 90 dagers inkubering kontrolleres og innstilles på pH 7,0 i 1. Sluttproduktet (vaksine) anvendt for dyreforsøk, fremstilles ved fortynning av den kombinerte forråds-oppløsning med PBS, og den inneholder 10 yg PRP og 3,5-op-enheter av pertussisceller/O,5 ml (dose).
B. Forrådsoppløsningen av PRP (400 yg/ml) fremstilt ved at man oppløser 30 mg PRP (fremstilt ifølge eksempel 1) i 75 ml steril, fosfatbufret natriumkloridoppløsning (PBS) og filtreres gjennom et 0,45 y milliporefilter. Til 25 ml av dette konsentrerte PRP settes en like stor volummengde (dvs. 25 ml) frisk B. pertussis (stamme 138)-cellesuspensjon i PBS, pH 7,0 (inneholdende 149 op-enheter celler/ml) for fremstilling av forrådsoppløsningen av den kombinerte vaksine. Denne forrådsoppløsning (50 ml) holdes i minst 90 dager ved 4°. Steriliteten av forrådsoppløsningen undersøkes som angitt ovenfor med tioglykolatmedier. pH i forråds-oppløsningen er 7,0 ± 1. Sluttproduktet (vaksine) anvendt for dyreforsøk fremstilles ved fortynning av den kombinerte forråds-oppløsningen med PBS, og den inneholder 10 yg PRP og 3,7 op-enheter
av pertussisceller/O,5 ml (dose).
C. PRP-forrådsoppløsningen (200 ug/ml) i PBS (pH 7,0) fremstilles som i B. Pertussis-forrådsoppløsningen (inneholdende 75 op-enheter/ml) fremstilles ved fortynning av 25 ml frisk B. pertussis-cellesuspensjon (149 op-enheter/ml) med en like stor volummengde PBS. Begge /forrådsoppløsninger inkuberes separat i 90 dager eller noe lenger ved 4°. Den kombinerte vaksine fremstilles ved at man tar 14 ml PRP-forråds-oppløsning (200 yq/ ml) og 14 ml (avgiftet) forrådsoppløsning av pertussis-antigener (75 op-enheter/ml) og fortynner den med 112 ml PBS (sluttvolum 140 ml). Den ferdige vaksine for dyre-forsøk inneholder 10 Mg PRP og 3,7 op-enneter pertussis/0,5 ml (dose).
Resultatene med hensyn til antistoffsvaret på denne kombinerte vaksine hos unge rotter angis i tabell II.
Sammenligningsforsøk
. I den følgende tabell er det vist at PRP fremstilt
i henhold til oppfinnelsen. Jean kombineres med B. pertussis celler og at den resulterende kombinerte vaksine fremkaller en betydelig større antistoff-reaksjon hos unge individer enn hva tilfellet er med vaksiner inneholdende PRP fremstilt ved en fenol-ekstraksjonsmetode.
Sammenligning av antistoff-reaksjon fremkalt med vaksiner inneholdende PRP fremstilt ved forskjellige fremgangsmåter
Antistoff-speil - 0,15 ug/ml ansees å være beskyttende

Claims (1)

  1. Fremgangsmåte for isolering og rensning av immunologisk aktivt polyribosyl-ribitolfosfat (PRP), det kapsulære polysakkarid av Haemophilus influenzae, efter fermentering av stammer av organismen Haemophilus influenzae type b, isolering av PRP ved etanolutfelling og ytterligere isolering av PRP som heksadecyltrimetyl-ammoniumbromid-kompleks, karakterisert ved at det efter etanolfelling og behandling med heksadecyltrimetyl-ammoniumbromid isolerte PRP renses ved hjelp av hydroksylapatitt enten (a) ved tilsetning av hydroksylapatitt [3 Ca^(P04)2Ca(OH)21 i en 0,02M natriumfosfatbuffer ved en pH fra 6,7 til 6,9,
    blanding ved en temperatur på 2 til 10°C, sentrifugering, fjernelse av væsken på toppen og gjentagelse av den foregående prosess minst ytterligere to ganger, filtrering av væsken på toppen gjennom passende filtere, dialysering mot pyrogenfritt destillert vann og derefter lyofilisering, eller (b) ved kolonnekromatografi i 0,02M natriumfosfatbuffer ved en pH på ca. 5,8 gjennom hydroksylapatitt [3Ca.j (PO^) 2 • Ca (OH) , eluering med en trinnvis gradient av 0,02M og 0,05M natriumfosfat-buf fer ved en pH på ca. 5,8, isolering av fraksjoner ved analyse efter PRP, dialysering av nevnte fraksjoner mot pyrogenfritt, destillert vann og derefter lyofilisering.
NO783635A 1977-10-28 1978-10-27 Fremgangsmaate for isolering og rensning av immunologisk aktivt polyribosyl-ribitolfosfat (prp), det kapsulaere polysakkarid av haemophilus influenzae NO149611C (no)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US05/846,466 US4196192A (en) 1977-10-28 1977-10-28 Combined Haemophilus influenzae type b and pertussis vaccine
US05/846,488 US4220717A (en) 1977-12-22 1977-12-22 Isolation and purification of polyribosyl ribitol phosphate from Haemophilus influenzae type b.

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO783635L NO783635L (no) 1979-05-02
NO149611B true NO149611B (no) 1984-02-13
NO149611C NO149611C (no) 1984-05-23

Family

ID=27126641

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO783635A NO149611C (no) 1977-10-28 1978-10-27 Fremgangsmaate for isolering og rensning av immunologisk aktivt polyribosyl-ribitolfosfat (prp), det kapsulaere polysakkarid av haemophilus influenzae

Country Status (25)

Country Link
JP (1) JPS5480408A (no)
AR (1) AR218932A1 (no)
AU (1) AU520902B2 (no)
BE (1) BE871586A (no)
CA (1) CA1117866A (no)
CH (1) CH649781A5 (no)
DD (1) DD140701A5 (no)
DE (1) DE2845745A1 (no)
DK (1) DK154327C (no)
ES (1) ES474611A1 (no)
FI (1) FI63674C (no)
FR (1) FR2407000B1 (no)
GB (1) GB2007244B (no)
GR (1) GR73991B (no)
HU (1) HU178166B (no)
IE (1) IE47474B1 (no)
IL (1) IL55433A (no)
IT (1) IT1107570B (no)
NL (1) NL7810753A (no)
NO (1) NO149611C (no)
NZ (1) NZ188211A (no)
PH (1) PH15882A (no)
PL (1) PL210545A1 (no)
SE (1) SE430753B (no)
YU (1) YU250878A (no)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BE889979A (fr) * 1981-08-14 1982-02-15 Smith Kline Rit Procede de preparation de polysaccharides bacteriens capsulaires antigeniques purifies, produits obtenus et leur utilisation
CA1209036A (en) * 1982-08-20 1986-08-05 Joseph S.C. Kuo Combined haemophilus influenzae and diphtheria, pertussis, tetanus vaccine
US4744982A (en) * 1982-08-24 1988-05-17 Hunter Kenneth W Human monoclonal antibody reactive with polyribosylribitol phosphate
DE69113564T2 (de) * 1990-08-13 1996-05-30 American Cyanamid Co Faser-Hemagglutinin von Bordetella pertussis als Träger für konjugierten Impfstoff.
WO1993004183A1 (en) * 1991-08-16 1993-03-04 Merck & Co., Inc. Process for converting lipid-containing bacterial capsular polysaccharide into lipid-free polysaccharide

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3395219A (en) * 1964-12-11 1968-07-30 Merck & Co Inc Process for production of pertussis antigen
NO116869B (no) * 1965-01-19 1969-06-02 Merck & Co Inc
US3465078A (en) * 1965-10-21 1969-09-02 Sydney Z Spiesel Method of recovering antigens from bordetella pertussis cells
NL174267B (nl) * 1969-05-20 Roussel Uclaf Verbetering van de werkwijze voor de bereiding van een somatisch antigeen volgens het nederlandse octrooischrift 169754 en werkwijze ter bereiding van een farmaceutisch preparaat.
US3636192A (en) * 1970-01-13 1972-01-18 Us Army Meningococcal polysaccharide vaccines
FR2253499B1 (no) * 1973-12-10 1977-11-04 Fabre Sa Pierre
DE2461439C3 (de) * 1974-12-24 1980-03-20 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Verfahren zur Herstellung eines schützenden Antigens von Bordetella Pertussis sowie jenes enthaltendes Mittel
US3978209A (en) * 1975-03-24 1976-08-31 Merck & Co., Inc. Endotoxin free meningococcus polysaccharides

Also Published As

Publication number Publication date
DK154327C (da) 1989-04-03
DE2845745C2 (no) 1987-10-01
HU178166B (en) 1982-03-28
BE871586A (fr) 1979-04-27
CH649781A5 (de) 1985-06-14
DE2845745A1 (de) 1979-05-10
FI63674C (fi) 1983-08-10
SE430753B (sv) 1983-12-12
SE7811192L (sv) 1979-04-29
GB2007244B (en) 1982-03-31
FI783269A (fi) 1979-04-29
GR73991B (no) 1984-06-06
PL210545A1 (no) 1980-02-25
NZ188211A (en) 1984-09-28
GB2007244A (en) 1979-05-16
YU250878A (en) 1983-12-31
IE782146L (en) 1979-04-28
ES474611A1 (es) 1980-01-16
CA1117866A (en) 1982-02-09
FR2407000B1 (no) 1983-01-21
AR218932A1 (es) 1980-07-15
DD140701A5 (de) 1980-03-26
AU4108178A (en) 1980-05-01
NO149611C (no) 1984-05-23
DK154327B (da) 1988-11-07
FR2407000A1 (no) 1979-05-25
PH15882A (en) 1983-04-13
IT1107570B (it) 1985-11-25
DK479578A (da) 1979-04-29
JPS6231694B2 (no) 1987-07-09
JPS5480408A (en) 1979-06-27
NL7810753A (nl) 1979-05-02
IL55433A0 (en) 1978-10-31
IT7851621A0 (it) 1978-10-24
NO783635L (no) 1979-05-02
IE47474B1 (en) 1984-03-21
FI63674B (fi) 1983-04-29
IL55433A (en) 1982-09-30
AU520902B2 (en) 1982-03-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4220717A (en) Isolation and purification of polyribosyl ribitol phosphate from Haemophilus influenzae type b.
US4196192A (en) Combined Haemophilus influenzae type b and pertussis vaccine
ES2198405T3 (es) Antigenos de superficie de tipo i asociados a staphylococcus epidermis.
Schaffer et al. Purification and properties of poliovirus
JPH0231689A (ja) 百日咳トキシンの精製法
DK155915B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af pertussis-toksoid til anvendelse i vacciner
NO165478B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av antigeniske preparater.
JPS61186328A (ja) 新規錯体
EP0527753A1 (en) CLEANING A PERTUSSIS EXTERIOR MEMBRANE PROTEIN.
EP0407037B1 (en) Process for removing bacterial endotoxin from gram-negative polysaccharides
US4239749A (en) Neisseria gonorrhoeae vaccine
JPS638340A (ja) レトロウイルスを含まぬ免疫グロブリンの製法
EP0175841B1 (en) Method for the production of pertussis component vaccine and combined vaccine of pertussis antigen; diphtheria toxoid and tetanus toxoid
NO149611B (no) Fremgangsmaate for isolering og rensning av immunologisk aktivt polyribosyl-ribitolfosfat (prp), det kapsulaere polysakkarid av haemophilus influenzae
EP0080021B1 (en) Haemophilus influenzae type b and pertussis outer membrane component combined vaccine
KR100266556B1 (ko) 백일해균의 방어성분의 분리방법
NO172188B (no) Fremstilling av pertussis-toksin ved dyrkning av bordetella pertussi
Mason Smith et al. A BALB/c mouse IgA myeloma protein that binds Salmonella flagellar protein
CA1137901A (en) Isolation of capsular polysaccharide of haemophilus influenzae
US3208909A (en) Anaerobic process for production of a gel-adsorbed anthrax immunizing antigen
KR810001317B1 (ko) 혼합백신의 제조방법
AT410636B (de) Verfahren zur herstellung eines impfstoffes
JP4777599B2 (ja) ヒト抗胸腺細胞免疫グロブリンの製造方法
Whitney, E. & Gear Laboratory studies of eye infections in South Africa with special reference to the virus of trachoma
SU1692580A1 (ru) Способ получени тул ремийного антигена