JPWO2019156020A1 - 核酸分子の製造方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、2018年2月9日に、日本に出願された特願2018−21799号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
本発明の一態様にかかる一本鎖RNAの製造方法は、5’末端にリン酸基を有する第1の一本鎖RNAと3’末端に水酸基を有する第2の一本鎖RNAに、国際生化学連合が酵素番号として定めるEC6.5.1.3に分類され、二本鎖ニック修復活性を有するRNAリガーゼを作用させ、前記第1の一本鎖RNAと前記第2の一本鎖RNAとを連結する工程を含む一本鎖RNAの製造方法であって、以下のa)〜g)の特徴を有する製造方法である:
a)前記第1の一本鎖RNAが、5’末端側から順に、X1領域およびZ領域からなる一本鎖RNAであり;
b)前記第2の一本鎖RNAが、5’末端側から順に、X2領域、Y2領域、Lyリンカー領域およびY1領域からなる一本鎖であり;
c)前記X1領域と前記X2領域とが、互いに相補的な、2以上の同数のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列であり;
d)前記Y1領域と前記Y2領域とが、互いに相補的な、2以上の同数のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列であり;
e)前記Z領域が、任意のヌクレオチド数のヌクレオチド配列を含む領域であり;
f)前記Lyリンカー領域がアミノ酸から誘導される原子団を有するリンカー領域であり;
g)前記第1の一本鎖RNAと前記第2の一本鎖RNAとの連結により生成する一本鎖RNAが、5’末端側から、前記X2領域、前記Y2領域、前記Lyリンカー領域、前記Y1領域、前記X1領域および前記Z領域からなる連結一本鎖RNAである。
W2n=X2n+Y2n ・・・(1)
W1n≧X1n+Y1n ・・・(2)
X1n=Y1n ・・・(3)
X1n<Y1n ・・・(4)
X1n>Y1n ・・・(5)
Y1領域のヌクレオチド数(Y1n)、即ちY2領域のヌクレオチド数(Y2n)は、2以上であり、好ましくは3以上であり、より好ましくは4以上である。
X1n=X2n ・・・(6)
Y1n=Y2n ・・・(7)
Z1n≧Z2n ・・・(8)
前記Y12及びY22、並びに、Y’12及びY’22におけるアミノ基で置換されていてもよいアルキル基は、炭素数1〜10が好ましく、炭素数1〜5がより好ましい。アルキル基は、直鎖状であってもよく、分岐鎖状であってもよい。
このようにして、KVP40由来のRNAリガーゼ2を得ることができる。KVP40由来のRNAリガーゼ2としては、配列番号22のアミノ酸配列と95%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるタンパク質であって、二本鎖ニック修復活性を有するRNAリガーゼが使用可能である。
あるいは、本実施形態の製造方法は、非特許文献(Bacteriophage T4 RNA ligase 2 (gp24-1) exemplifies a family of RNA ligases found in all, Proc. Natl. Acad. Sci, 2002, Vol.99, No.20, PP.12709-12714.)に記載の条件に準じて行うこともできる。
具体的には、連結反応後の溶液にエタノールやイソプロピルアルコールなどのRNAに対して溶解性の低い溶媒を加えることでRNAを沈殿させる方法や、フェノール/クロロホルム/イソアミルアルコール(例えば、フェノール/クロロホルム/イソアミルアルコール=25/24/1)の混合溶液を連結反応後の溶液に加え、RNAを水層に抽出する方法が採用される。
連結RNAを精製する方法としては、逆相カラムクロマトグラフィーや陰イオン交換カラムクロマトグラフィー、アフィニティカラムクロマトグラフィー、ゲルろ過カラムクロマトグラフィーなどの公知の方法が挙げられ、これらの方法を適宜組み合わせて用いて、粗生成物から連結したRNAを単離することができる。
標的遺伝子の発現抑制は、例えば、標的遺伝子からの転写産物の生成量の減少、転写産物の活性の減少、標的遺伝子からの翻訳産物の生成量の減少、または翻訳産物の活性の減少等によって確認できる。翻訳産物としてのタンパク質は、例えば、成熟タンパク質、または、プロセシングもしくは翻訳後修飾を受ける前の前駆体タンパク質等があげられる。
1.第1の一本鎖RNAの合成
実施例1の鎖IのRNAとして、以下に示す一本鎖RNA(表2の配列1;配列番号1)を合成した。前記鎖Iは13塩基長からなり、第1の一本鎖RNAに対応する。
鎖I(配列1):5’−pGUGUACUCUGCUU−3’
実施例1の鎖IIのRNAとして、以下に示す一本鎖RNA(表2の配列2;配列番号2,3)を合成した。前記鎖IIは36塩基長からなり、第2の一本鎖RNAに対応する。
鎖II(配列2):5’−GCAGAGUACACACAGCAUAUACCKGGUAUAUGCUGU−3’
次に、第1のRNA鎖と第2のRNA鎖のライゲーション反応を、160units/mL T4 RNAリガーゼ2、50mM Tris−HCl(pH7.5)、2mM MgCl2、1mM DTT、400μM ATPの組成で、反応スケール7.9mLで行った。
5’−GCAGAGUACACACAGCAUAUACCKGGUAUAUGCUGUGUGUACUCUGCUU−3’
具体的には、まず、第1のRNA鎖が5.5μM、第2のRNA鎖が5.0μMとなるよう、500mMTris−HCl(pH7.5)、20mM MgCl2、および10mM DTTを含む4000μMのATP緩衝液(10x緩衝液)790μLおよび注射用蒸留水を含む15mLチューブ内に第1のRNA鎖および第2のRNA鎖を加え、65℃水浴中に10分静置した。その後、T4 RNAリガーゼ2(NewEnglandBioLabs製)を上記の組成と反応スケールになるように加え、25℃で24時間インキュベートした。反応後、反応液を下記表1に記載の条件で、カラムクロマトグラフィーにより精製を行った。得られた画分をそれぞれHPLCにて分析した。純度90%以上の画分を集めて混合した。その結果、純度90%、総収率11%で目的物を得ることができた。ここで、総収率とは、仕込んだRNA鎖の量に対する、ライゲーション反応後の生成物を精製して得られた一本鎖RNAの量の割合である。前記RNAの量のは、波長260nmの紫外線の吸光度に基づき求められる。吸光度が1を示す場合のRNAの濃度を33μg/mLとして求めた値である。得られた試料を質量分析測定によって測定した結果、計算値と合致していることから、目的物が得られていることが確認できた(測定値:15715.2464、理論値:15715.2075)。
(Ly,Lzがプロリン誘導体を含む連結一本鎖RNAの合成)
得られる連結一本鎖RNAは下記に示す(配列16;配列番号19,20)。
5’−AGCAGAGUACACACAGCAUAUACCPGGUAUAUGCUGUGUGUACUCUGCUUCPG−3’
実施例2の鎖IのRNAとして、表3に示す鎖I(配列3)の一本鎖RNA(表2の配列3;配列番号4)を合成した。前記鎖Iは16塩基長からなり、第1の一本鎖RNAに対応する。
実施例2の鎖IIのRNAとして、表3に示す鎖II(配列4)の一本鎖RNA(表2の配列4;配列番号5,6)を合成した。前記鎖IIは37塩基長からなり、第2の一本鎖RNAに対応する。
次に、第1のRNA鎖および第2のRNA鎖のライゲーション反応を、58units/mL T4 RNAリガーゼ2、50mM Tris−HCl(pH7.5)、2mM MgCl2、1mM DTT、400μM ATPの組成で、反応スケール10mLで行った。
以下、実施例3−6において、表3に記載の鎖I(第1の一本鎖RNAに対応)および鎖II(第2の一本鎖RNAに対応)をそれぞれ核酸合成機により合成して用いること以外は、実施例2と同様に、T4 RNA リガーゼ2を用いて反応を行い、反応生成物をカラムクロマトグラフィー精製し、得られた画分をHPLCにより分析した。実施例3−6のそれぞれについて、純度90%以上の画分(前記同様の定義)を集めて混合し、純度及び総収率をそれぞれ求めた。その結果を表2にまとめて示す。
実施例2と同じ連結一本鎖RNA(配列16)を合成するために、表3に示す鎖I(配列13)と鎖II(配列14)とを核酸合成機で合成して用いる以外は実施例2と同様の操作にて実施した。このときの鎖II(配列14)におけるY1領域に対応する領域のヌクレオチド数は1個であった。ライゲーション反応後の反応液をHPLCにて分析したところ、鎖Iと鎖IIのピークには変化が見られず、また、連結一本鎖RNAの溶出位置にはピークが検出されなかったことから、連結反応は進行していないことが確認された。
第1のRNA鎖および第2のRNA鎖として表3に示す鎖I(配列11)および鎖II(配列12)をそれぞれ用いて、第1のRNA鎖および第2のRNA鎖のライゲーション反応を、58units/mL KVP40 RNAリガーゼ2、50mM Tris−HCl(pH7.0)、2mM MgCl2、1mM DTT、400μM ATPの組成で、反応スケール15mLで行った。
得られた画分を表1に示す条件でHPLC分析を行ったのち、純度95%以上で得られたものを混合した。その結果、純度98%、総収率16%にて目的物を得ることができた。
比較例として、実施例2で合成した連結一本鎖RNA(配列16)と同じヌクレオチド配列の一本鎖RNAを、以下の通り、ホスホロアミダイト法に基づき、核酸合成機(商品名NTS M−4MX−E、日本テクノサービス株式会社)を用いて3’側から5’側に向かって合成した。前記合成には、RNAアミダイトとして、国際公開第2013/027843号の実施例2に記載のウリジンEMMアミダイト、実施例3に記載のシチジンEMMアミダイト、実施例4に記載のアデノシンEMMアミダイト、実施例5に記載のグアノシンEMMアミダイト及び、5’リン酸化はChemical Phosphorylation Reagent (Glen Research)を使用し、固相担体として多孔質ガラスを使用し、デブロッキング溶液として高純度トリクロロ酢酸トルエン溶液を使用し、縮合剤として5−ベンジルメルカプト−1H−テトラゾールを使用し、酸化剤としてヨウ素溶液を使用し、キャッピング溶液としてフェノキシ酢酸溶液とN−メチルイミダゾール溶液を使用して行った。固相合成後の固相担体からの切出しと脱保護は、国際公開第2013/027843号に記載の方法に従った。すなわち、アンモニア水溶液とエタノールを加え、しばらく静置したのちに固相担体をろ過し、その後、テトラブチルアンモニウムフルオリドを用いて水酸基の脱保護を行った。得られたRNAを、注射用蒸留水を用いて所望の濃度となるように溶解した。
その後、得られたRNAの粗生成体を表1の条件に従ってカラムクロマトグラフィーで精製した。得られた精製フラクションをそれぞれHPLCによって分析した。そのうち、純度90%以上のフラクションは得られなかった。最も純度の高いフラクションを分析した結果、純度87%、収率5%であった。
Claims (9)
- 5’末端にリン酸基を有する第1の一本鎖RNAと3’末端に水酸基を有する第2の一本鎖RNAに、国際生化学連合が酵素番号として定めるEC6.5.1.3に分類され、二本鎖ニック修復活性を有するRNAリガーゼを作用させ、前記第1の一本鎖RNAと前記第2の一本鎖RNAとを連結する工程を含む一本鎖RNAの製造方法であって、以下のa)〜g)の特徴を有する製造方法:
a)前記第1の一本鎖RNAが、5’末端側から順に、X1領域およびZ領域からなる一本鎖RNAであり;
b)前記第2の一本鎖RNAが、5’末端側から順に、X2領域、Y2領域、Lyリンカー領域およびY1領域からなる一本鎖であり;
c)前記X1領域と前記X2領域とが、互いに相補的な、2以上の同数のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列であり;
d)前記Y1領域と前記Y2領域とが、互いに相補的な、2以上の同数のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列であり;
e)前記Z領域が、任意のヌクレオチド数のヌクレオチド配列を含む領域であり;
f)Lyリンカー領域が、アミノ酸から誘導される原子団を有するリンカー領域であり;
g)前記第1の一本鎖RNAと前記第2の一本鎖RNAとの連結により生成する一本鎖RNAが、5’末端側から順に、前記X2領域、前記Y2領域、前記Lyリンカー領域、前記Y1領域、前記X1領域および前記Z領域からなる連結一本鎖RNAである。 - 前記Z領域が、5’末端側から順に、Z1領域、Lzリンカー領域及びZ2領域からなる領域であり、
前記Lzリンカー領域が、アミノ酸から誘導される原子団を有するリンカー領域であり、
前記Z1領域と前記Z2領域とが、互いに相補的なヌクレオチド配列を含み、 前記第1の一本鎖RNAと前記第2の一本鎖RNAとの連結により生成する一本鎖RNAが、5’末端側から順に、前記X2領域、前記Y2領域、前記Lyリンカー領域、前記Y1領域、前記X1領域および前記Z1領域、前記Lzリンカー領域および前記Z2領域からなる連結一本鎖RNAである、請求項1に記載の製造方法。 - 前記Lyリンカー領域が、下記式(I)で表される二価の基である、請求項1に記載の製造方法。
Y11に結合している末端の酸素原子は、前記Y1領域および前記Y2領域のいずれか一方の領域の末端ヌクレオチドのリン酸エステルのリン原子と結合しており、
Y21に結合している末端の酸素原子は、前記Y1領域および前記Y2領域のY11とは結合していない他方の領域の末端ヌクレオチドのリン酸エステルのリン原子と結合している。) - 前記Lyリンカー領域が、下記式(I)で表される二価の基であり、前記Lzリンカー領域が、下記式(I’)で表される二価の基である、請求項2に記載の製造方法。
Y11に結合している末端の酸素原子は、前記Y1領域および前記Y2領域のいずれか一方の領域の末端ヌクレオチドのリン酸エステルのリン原子と結合しており、
Y21に結合している末端の酸素原子は、前記Y2領域および前記Y1領域のY11とは結合していない他方の領域の末端ヌクレオチドのリン酸エステルのリン原子と結合している。)
Y’11に結合している末端の酸素原子は、前記Z1領域および前記Z2領域のいずれか一方の領域の末端ヌクレオチドのリン酸エステルのリン原子と結合しており、
Y’21に結合している末端の酸素原子は、前記Z2領域および前記Z1領域のY’11とは結合していない他方の領域の末端ヌクレオチドのリン酸エステルのリン原子と結合している。) - 前記X1領域、前記Y1領域および前記Z領域からなるW1領域、および前記X2領域および前記Y2領域からなるW2領域の少なくとも一方に、RNA干渉法の標的となる遺伝子の発現を抑制するヌクレオチド配列を含む、請求項1から5の何れか一項に記載の製造方法。
- 前記RNAリガーゼが、T4バクテリオファージ由来のT4 RNAリガーゼ2、KVP40由来のリガーゼ2、Trypanosoma brucei RNAリガーゼ、Deinococcus radiodurans RNAリガーゼ、またはLeishmania tarentolae RNAリガーゼである、請求項1から6の何れか一項に記載の製造方法。
- 前記RNAリガーゼが、配列番号21、22、または23に記載のアミノ酸配列と95%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるRNAリガーゼである、請求項1から6の何れか一項に記載の製造方法。
- 前記RNAリガーゼが、T4バクテリオファージ由来のT4 RNAリガーゼ2またはKVP40由来のRNAリガーゼ2である、請求項1から6の何れか一項に記載の製造方法。
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