CN111684073B - 核酸分子的制造方法 - Google Patents

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Abstract

单链RNA的制造方法，其包括下述工序：使RNA连接酶作用于在5’末端具有磷酸基的第一单链RNA和在3’末端具有羟基的第二单链RNA，将所述第一单链RNA与所述第二单链RNA连接。第一单链RNA为自5’末端侧起依次包含X1区域及Z区域的单链RNA；第二单链RNA为自5’末端侧起依次包含X2区域、Y2区域、Ly接头区域及Y1区域的单链；X1区域和X2区域为彼此互补的、长度为至少2个核苷酸且核苷酸数目相同的核苷酸序列；Y1区域和Y2区域为彼此互补的、长度为至少2个核苷酸且核苷酸数目相同的核苷酸序列。

Description

核酸分子的制造方法
技术领域
本发明涉及核酸分子的制造方法。
本申请基于2018年2月9日在日本提出申请的日本特愿2018-21799号主张优先权，将其内容并入本文中。
背景技术
专利文献1及2中公开了用于RNA干扰法的单链RNA，作为该化合物的制造方法，使用核酸合成装置通过多步化学反应来制造的方法是已知的。
现有技术文献
专利文献
专利文献1：国际公开第2012/017919号
专利文献2：国际公开第2013/103146号
发明内容
发明所要解决的课题
本发明的课题在于提供单链RNA的简便的制造方法。
用于解决课题的手段
本发明包含以下方式。
本发明的一个方式涉及的单链RNA的制造方法包括下述工序：使下述RNA连接酶作用于在5’末端具有磷酸基的第一单链RNA和在3’末端具有羟基的第二单链RNA，将所述第一单链RNA与所述第二单链RNA连接，所述RNA连接酶是被分类为国际生物化学联合会确定的酶编号EC6.5.1.3、且具有双链切口修复活性的RNA连接酶，所述制造方法具有以下a)～g)的特征：
a)所述第一单链RNA为自5’末端侧起依次包含X1区域及Z区域的单链RNA；
b)所述第二单链RNA为自5’末端侧起依次包含X2区域、Y2区域、Ly接头区域及Y1区域的单链；
c)所述X1区域和所述X2区域为彼此互补的、由2个以上且数目相同的核苷酸组成的核苷酸序列；
d)所述Y1区域和所述Y2区域为彼此互补的、由2个以上且数目相同的核苷酸组成的核苷酸序列；
e)所述Z区域为包含任意核苷酸数目的核苷酸序列的区域；
f)所述Ly接头区域为具有衍生自氨基酸的原子团的接头区域；
g)通过所述第一单链RNA与所述第二单链RNA的连接生成的单链RNA为自5’末端侧起包含所述X2区域、所述Y2区域、所述Ly接头区域、所述Y1区域、所述X1区域及所述Z区域的连接单链RNA。
另外，就本发明的一个方式涉及的单链RNA的制造方法而言，所述制造方法中，所述Z区域为自5’末端侧起依次包含Z1区域、Lz接头区域及Z2区域的区域，所述Lz接头区域为具有衍生自氨基酸的原子团的接头区域，所述Z1区域和所述Z2区域包含彼此互补的核苷酸序列，通过所述第一单链RNA与所述第二单链RNA的连接生成的单链RNA为自5’末端侧起依次包含所述X2区域、所述Y2区域、所述Ly接头区域、所述Y1区域、所述X1区域及所述Z1区域、所述Lz接头区域及Z2区域的连接单链RNA。
另外，就本发明的一个方式涉及的单链RNA的制造方法而言，所述制造方法中，所述Ly接头区域为由下式(I)表示的二价基团。
【化1】
(式(I)中，Y11及Y21各自独立地表示碳原子数为1～20的亚烷基，Y12及Y22各自独立地表示氢原子或可被氨基取代的烷基，或者Y12与Y22于其末端彼此键合而表示碳原子数为3～4的亚烷基，键合于Y11的末端的氧原子与所述Y1区域及所述Y2区域中任一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合，键合于Y21的末端的氧原子与所述Y1区域及所述Y2区域中的未与Y11键合的另一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合。)
另外，就本发明的一个方式涉及的单链RNA的制造方法而言，所述制造方法中，所述Ly接头区域为由下式(I)表示的二价基团，所述Lz接头区域为由下式(I’)表示的二价基团。
【化2】
(式(I)中，Y11及Y21各自独立地表示碳原子数为1～20的亚烷基，Y12及Y22各自独立地表示氢原子或可被氨基取代的烷基，或者Y12与Y22于其末端彼此键合而表示碳原子数为3～4的亚烷基，键合于Y11的末端的氧原子与所述Y1区域及所述Y2区域中任一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合，键合于Y21的末端的氧原子与所述Y2区域及所述Y1区域中的未与Y11键合的另一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合。)
【化3】
(式(I’)中，Y’11及Y’21各自独立地表示碳原子数为1～20的亚烷基，Y’12及Y’22各自独立地表示氢原子或可被氨基取代的烷基，或者Y’12与Y’22于其末端彼此键合而表示碳原子数为3～4的亚烷基，键合于Y’11的末端的氧原子与所述Z1区域及所述Z2区域中任一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合，键合于Y’21的末端的氧原子与所述Z2区域及所述Z1区域中的未与Y’11键合的另一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合。)
另外，就本发明的一个方式涉及的单链RNA的制造方法而言，所述制造方法中，所述Ly接头区域及所述Lz接头区域各自独立地为由下式(II-A)或(II-B)表示的结构的二价基团。
【化4】
(式(II-A)、(II-B)中，n及m各自独立地表示1至20中的任一整数。)
另外，就本发明的一个方式涉及的单链RNA的制造方法而言，所述制造方法中，包含所述X1区域、所述Y1区域及所述Z区域的W1区域、以及包含所述X2区域及所述Y2区域的W2区域中的至少一者中包含下述核苷酸序列，所述核苷酸序列抑制作为RNA干扰法的靶标的基因的表达。
另外，就本发明的一个方式涉及的单链RNA的制造方法而言，所述制造方法中，所述RNA连接酶为来源于T4噬菌体的T4 RNA连接酶2、来源于KVP40的连接酶2、布氏锥虫(Trypanosoma brucei)RNA连接酶、耐辐射异常球菌(Deinococcus radiodurans)RNA连接酶、或蜥蜴利什曼原虫(Leishmania tarentolae)RNA连接酶。
另外，就本发明的一个方式涉及的单链RNA的制造方法而言，所述制造方法中，所述RNA连接酶为包含与序列号21、22、或23所记载的氨基酸序列具有95％以上的同一性的氨基酸序列的RNA连接酶。
另外，就本发明的一个方式涉及的单链RNA的制造方法而言，所述制造方法中，所述RNA连接酶为来源于T4噬菌体的T4 RNA连接酶2或来源于KVP40的RNA连接酶2。
发明效果
根据本发明的制造方法，能够简便地制造单链RNA。
附图说明
[图1]为示出第一单链RNA及第二单链RNA的各区域的结合顺序的一例的示意图。
[图2]为示出制造连接单链RNA的步骤的一例的示意图。
[图3]为示出第一单链RNA及第二单链RNA的各区域的结合顺序的一例的示意图。
[图4]为示出制造连接单链RNA的步骤的一例的示意图。
[图5]示出了实施例1中使用的、第一单链RNA及第二单链RNA、和生成的连接单链RNA。
[图6]示出了实施例2中使用的、第一单链RNA及第二单链RNA、和生成的连接单链RNA。
具体实施方式
本发明的一个实施方式涉及的制造方法为单链RNA的制造方法，其包括下述工序：使下述RNA连接酶作用于在5’末端具有磷酸基的第一单链RNA和在3’末端具有羟基的第二单链RNA，将所述第一单链RNA与所述第二单链RNA连接，所述RNA连接酶是被分类为国际生物化学联合会确定的酶编号EC6.5.1.3、且具有双链切口修复活性的RNA连接酶。通过本实施方式的制造方法得到的连接单链RNA是自5’末端侧起包含X2区域、Y2区域、Ly接头区域、Y1区域、X1区域及Z区域的单链RNA。上述Z区域可以自5’末端侧起包含Z1区域、接头区域Lz及区域Z2，上述连接单链RNA可以是包含X2区域、Y2区域、Ly接头区域、Y1区域、X1区域、Z1区域、Lz接头区域及区域Z2的单链RNA。就上述连接单链RNA而言，包含Y1区域、X1区域和Z区域(或Z1区域)的W1区域、以及包含X2区域和Y2区域的W2区域中的至少一者中可以包含下述序列，所述序列抑制作为RNA干扰法的靶标的基因的表达。
W1区域及W2区域中的任一者或两者可以具有2条以上针对相同靶基因的相同的表达抑制序列，可以具有2条以上针对相同靶标的不同的表达抑制序列，也可以具有2条以上针对不同靶基因的不同的表达抑制序列。W1区域具有2条以上表达抑制序列的情况下，各表达抑制序列的配置位置没有特别限定，可以是X1区域及Y1区域中的任一区域或两者，也可以是兼跨两者的区域。W2区域具有2条以上表达抑制序列的情况下，各表达抑制序列的配置位置可以是X2区域及Y2区域中的任一区域或两者，也可以是兼跨两者的区域。表达抑制序列优选与靶基因的规定区域具有90％以上的互补性，更优选为95％，进一步优选为98％，特别优选为100％。
该连接单链RNA是通过下述工序制造的：使连接酶作用于在5’末端具有磷酸基的第一单链RNA和在3’末端具有羟基的第二单链RNA，将所述第一单链RNA与所述第二单链连接(参见图1至4)。
连接单链RNA在分子内具有互补性的序列部分并列，可在分子内局部地形成双链。连接单链RNA分子如图2所示，X1区域和X2区域包含彼此具有互补性的核苷酸序列，并且Y1区域和Y2区域包含彼此具有互补性的核苷酸序列，在这些具有互补性的序列之间形成双链，Ly及Lz的接头区域根据其长度而呈现环结构。图2及图4仅是示出上述区域的连接顺序及形成双链部的各区域的位置关系的图，例如，各区域的长度、接头区域(Ly及Lz)的形状等不限于这些。
包含Y1区域、X1区域和Z区域(或Z1区域)的W1区域、以及包含X2区域和Y2区域的W2区域中的至少一者可以包含至少一条下述序列，所述序列抑制作为RNA干扰法的靶标的基因的表达。连接单链RNA中，W1区域与W2区域可以完全互补，也可以有1个或多个核苷酸是非互补的，但优选完全互补。上述1个或多个核苷酸为例如为1～3个核苷酸，优选为1个或2个核苷酸。Y1区域具有与整个Y2区域互补的核苷酸序列。Y1区域和Y2区域是彼此完全互补的核苷酸序列，并且是由2个以上且数目相同的核苷酸组成的核苷酸序列。X1区域具有与整个X2区域互补的核苷酸序列。X1区域和X2区域是彼此完全互补的核苷酸序列，并且是由2个以上且数目相同的核苷酸组成的核苷酸序列。本实施方式的制造方法中，Z区域为包含任意数目的核苷酸序列的区域，其并非是必需的序列，可以是核苷酸的数目为0的方式，也可以是包含1个以上核苷酸的方式。Z区域可以是自5’末端起将Z1、Lz及Z2的各区域连接而成的区域。
以下示例各区域的长度，但不限于这些。本说明书中，核苷酸数目的数值范围是例如将属于该范围的正的整数全部公开的范围，作为具体例子，“1～4个核苷酸”的记载表示公开了“1个核苷酸”、“2个核苷酸”、“3个核苷酸”、及“4个核苷酸”的全部(以下相同)。
连接单链RNA分子中，W2区域的核苷酸数目(W2n)、与X2区域的核苷酸数目(X2n)及Y2区域的核苷酸数目(Y2n)之间的关系满足例如下式(1)的条件。W1区域的核苷酸数目(W1n)、与X1区域的核苷酸数目(X1n)及Y1区域的核苷酸数目(Y1n)之间的关系满足例如下式(2)的条件。
W2n＝X2n+Y2n…(1)
W1n≥X1n+Y1n…(2)
连接单链RNA分子中，X1区域的核苷酸数目(X1n)与Y1区域的核苷酸数目(Y1n)的关系没有特别限定，满足例如下式中的任一个条件。
X1n＝Y1n…(3)
X1n＜Y1n…(4)
X1n＞Y1n…(5)
本实施方式的方法中，X1区域的核苷酸数目(X1n)、即X2区域的核苷酸数目(X2n)为2个以上，优选为4个以上，更优选为10个以上。
Y1区域的核苷酸数目(Y1n)、即Y2区域的核苷酸数目(Y2n)为2个以上，优选为3个以上，更优选为4个以上。
Z1区域优选包含与整个Z2区域或Z2区域中的部分区域互补的核苷酸序列。Z1区域与Z2区域可以有1个或多个核苷酸是非互补的，但优选完全互补。
更详细而言，Z2区域优选由比Z1区域短1个以上核苷酸的核苷酸序列组成。这种情况下，Z2区域的核苷酸序列整体与Z1区域中的任意的部分区域的全部核苷酸互补。更优选的是，Z2区域的从5’末端到3’末端的核苷酸序列是与Z1区域的自3’末端的核苷酸开始朝向5’末端的核苷酸序列具有互补性的序列。
连接单链RNA分子中，X1区域的核苷酸数目(X1n)与X2区域的碱基数目(X2n)的关系、Y1区域的核苷酸数目(Y1n)与Y2区域的核苷酸数目(Y2n)的关系、以及Z1区域的核苷酸数目(Z1n)与Z2区域的核苷酸数目(Z2n)的关系分别满足下式(6)、(7)及(8)的条件。
X1n＝X2n…(6)
Y1n＝Y2n…(7)
Z1n≥Z2n…(8)
连接单链RNA的全长(核苷酸的总数)没有特别限定。连接单链RNA中，核苷酸数目的合计(全长的核苷酸数目)的下限典型而言为38，优选为42，更优选为50，进一步优选为51，特别优选为52，其上限典型而言为300，优选为200，更优选为150，进一步优选为100，特别优选为80。连接单链RNA中，不包括接头区域(Ly、Lz)的核苷酸数目的合计的下限典型而言为38，优选为42，更优选为50，进一步优选为51，特别优选为52，上限典型而言为300，优选为200，更优选为150，进一步优选为100，特别优选为80。
连接单链RNA中，Ly及Lz的接头区域的长度没有特别限定。这些接头区域的长度优选为例如X1区域与X2区域可形成双链的长度、或者Y1区域与Y2区域可形成双链的长度。Ly及Lz的各接头区域是具有衍生自氨基酸的原子团的区域。这些接头区域(Ly、Lz)通常是非核苷酸的接头区域。
形成接头区域的主链的原子数目的上限典型而言为100，优选为80，更优选为50。
Ly接头区域为例如由下式(I)表示的二价基团，Lz为例如由下式(I’)表示的二价基团。
【化5】
(式(I)中，Y11及Y21各自独立地表示碳原子数为1～20的亚烷基，Y12及Y22各自独立地表示氢原子或可被氨基取代的烷基，或者Y12与Y22于其末端彼此键合而表示碳原子数为3～4的亚烷基，键合于Y11的末端的氧原子与Y1区域及Y2区域中任一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合，键合于Y21的末端的氧原子与Y1区域及Y2区域中的未与Y11键合的另一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合。)
【化6】
(式(I’)中，Y’11及Y’21各自独立地表示碳原子数为1～20的亚烷基，Y’12及Y’22各自独立地表示氢原子或可被氨基取代的烷基，或者Y’12与Y’22于其末端彼此键合而表示碳原子数为3～4的亚烷基，键合于Y’11的末端的氧原子与Z1区域及Z2区域中任一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合，键合于Y’21的末端的氧原子与Z1区域及Z2区域中的未与Y’11键合的另一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合。)
上述Y11及Y21、以及Y’11及Y’21中的碳原子数为1～20的亚烷基优选碳原子数为1～10，更优选碳原子数为1～5。亚烷基可以是直链状，也可以是支链状。
上述Y12及Y22、以及Y’12及Y’22中的可被氨基取代的烷基优选碳原子数为1～10，更优选碳原子数为1～5。烷基可以是直链状，也可以是支链状。
作为Ly接头及Lz接头的优选例，可以举出由下式(II-A)或(II-B)表示的结构的二价基团。
【化7】
(式(II-A)、(II-B)中，n及m各自独立地表示1至20中的任一整数。)
n及m优选为1～10中的任一整数，更优选为1～5中的任一整数。
优选方式中，Ly接头及Lz接头各自独立地表示式(II-A)或(II-B)中任一者的二价基团。
作为第一单链RNA及第二单链RNA的例子，具体而言，可以示例图5及图6中记载的例子。
本实施方式的制造方法中所实施的连接反应中，使用下述RNA连接酶，所述RNA连接酶是被分类为国际生物化学联合会确定的酶编号EC6.5.1.3、且具有双链切口修复活性的RNA连接酶(以下有时记为“本RNA连接酶”)。作为该RNA连接酶，可以示例例如来源于T4噬菌体的T4 RNA连接酶2。该RNA连接酶2可以自例如(New England BioLabs)购买。此外，作为RNA连接酶，可以示例来源于弧菌噬菌体(vibriophage)KVP40的连接酶2、布氏锥虫RNA连接酶、耐辐射异常球菌RNA连接酶、或蜥蜴利什曼原虫RNA连接酶。该RNA连接酶也可以使用例如通过非专利文献(Structure and Mechanism of RNA Ligase,Structure,Vol.12,PP.327-339.)中记载的方法从各生物中提取及纯化而得到的RNA连接酶。
作为来源于T4噬菌体的T4 RNA连接酶2，也可以使用下述RNA连接酶，所述RNA连接酶是包含与序列号21中记载的氨基酸序列具有95％以上的同一性的氨基酸序列的蛋白，且具有双链切口修复活性。作为该RNA连接酶2，除了序列号21中记载的氨基酸序列的酶以外，还可以示例作为其突变体的T39A、F65A、F66A(参见RNA ligase structures reveal thebasis for RNA specificity and conformational changes that drive ligationforward,Cell.Vol.127,pp.71-84.)等。该RNA连接酶2可以例如基于上述文献的记载，通过使用作为ATCC(注册商标)11303保藏于ATCC(美国模式菌种收集中心，American TypeCulture Collection)的大肠杆菌T4噬菌体(Escherichia coli bacteriophage T4)的方法、PCR等方法来得到。
来源于KVP40的RNA连接酶2可以通过非专利文献(Characterization ofbacteriophage KVP40 and T4 RNA ligase 2,Virology,vol.319,PP.141-151.)中记载的方法获得。具体而言，可以通过例如以下这样的方法获得。即，将从噬菌体KVP40(例如，以保藏编号Go008199保藏于JGI)中提取的DNA之中的开放阅读框293利用限制性内切酶NdeⅠ及BamHⅠ消化后，利用聚合酶链式反应使其扩增。将得到的DNA组入质粒载体pET16b(Novagen)。或者，也可以利用PCR人工合成该DNA序列。此处，通过DNA序列分析，能够得到所期望的突变体。然后，将得到的载体DNA组入E.coli BL21(DE3)，在含有0.1mg/mL氨苄青霉素的LB培养基中培养。添加异丙基-β-硫代半乳糖苷使其成为0.5mM，于37℃培养3小时。之后的操作优选全部于4℃实施。首先，通过离心操作使菌体沉淀，将沉淀物保存于-80℃。向冷冻的菌体添加缓冲溶液(buffer)A[50mM Tris-HCl(pH7.5)，0.2M NaCl，10％蔗糖]。然后，加入溶菌酶和Triton X-100，利用超声波将菌体破碎，使目标物质溶出。然后，利用亲和色谱法、尺寸排阻色谱法等分离目标物质。然后，将得到的水溶液离心过滤，将洗脱液更换为缓冲溶液，由此，可以作为连接酶使用。
如此，能够得到来源于KVP40的RNA连接酶2。作为来源于KVP40的RNA连接酶2，可以使用下述RNA连接酶，所述RNA连接酶是包含与序列号22的氨基酸序列具有95％以上的同一性的氨基酸序列的蛋白，且具有双链切口修复活性。
耐辐射异常球菌RNA连接酶可以通过非专利文献(An RNA Ligase fromDeinococcus radiodurans,J Biol Chem.,Vol.279,No.49,PP.50654-61.)中记载的方法获得。也可以例如从作为ATCC(注册商标)BAA-816保藏于ATCC的生物材料中得到上述连接酶。作为耐辐射异常球菌RNA连接酶，可以使用下述RNA连接酶，所述RNA连接酶是包含与序列号23的氨基酸序列具有95％以上的同一性的氨基酸序列的蛋白，且具有双链切口修复活性。作为该连接酶，具体而言，除了包含序列号23的氨基酸序列的RNA连接酶以外，还可以示例包含在序列号23的RNA连接酶中具有K165A或者E278A的突变的氨基酸序列的RNA连接酶(An RNA Ligase from Deinococcus radiodurans,J Biol Chem.,Vol.279,No.49,PP.50654-61.)。
布氏锥虫RNA连接酶可以通过非专利文献(Assiciation of Two Novel ProteinsTbMP52 and TbMP48 with the Trypanosoma brucei RNA Editing Complex,Vol.21,No.2,PP.380-389.)中记载的方法获得。
蜥蜴利什曼原虫RNA连接酶可以通过非专利文献(The Mitochondrial RNALigase from Leishmania tarentolae Can Join RNA Molecules Bridged by aComplementary RNA,Vol.274,No.34,PP.24289-24296)中记载的方法获得。
使用本RNA连接酶的本实施方式的制造方法的反应条件只要是本RNA连接酶发挥功能的条件即可，没有特别限定，作为一个典型的例子，可以举出下述条件：将第一核酸链、第二核酸链、含有ATP、氯化镁、及DTT的Tris-HCl缓冲液(pH7.5)与纯水混合，向该混合液中加入本RNA连接酶，然后使其于该连接酶发挥功能的温度(例如37℃)反应规定时间(例如1小时)。
或者，本实施方式的制造方法可以基于非专利文献(Bacteriophage T4 RNAligase 2(gp24-1)exemplifies a family of RNA ligases found in all,Proc.Natl.Acad.Sci,2002,Vol.99,No.20,PP.12709-12714.)中记载的条件来实施。
使用了本RNA连接酶的第一单链RNA及第二单链RNA的连接反应中得到的粗产物通常可以通过使用将RNA沉淀、提取及纯化的方法来分离。
具体而言，采用通过向连接反应后的溶液中添加乙醇、异丙醇等对于RNA而言溶解性低的溶剂来使RNA沉淀的方法、将苯酚/氯仿/异戊醇(例如，苯酚/氯仿/异戊醇＝25/24/1)的混合溶液添加至连接反应后的溶液中并将RNA萃取至水层的方法。
作为将连接RNA纯化的方法，可以举出反相柱色谱法、阴离子交换柱色谱法、亲和柱色谱法、凝胶过滤柱色谱法等已知的方法，可以将这些方法适当组合而使用，从粗产物中分离连接的RNA。
第一单链RNA可以利用例如固相合成法来制备。更具体而言，可以基于亚磷酰胺法，使用核酸合成仪(NTS M-4MX-E(NIHON TECHNO SERVICE CO.,LTD制)来制备。亚磷酰胺法是将去保护(deblocking)、偶联、及氧化这三步作为1个循环，并重复该循环直到得到所期望的碱基序列的方法。关于各试剂，例如，可以使用多孔质玻璃作为固相担载体，使用二氯乙酸甲苯溶液作为去保护溶液，使用5-苄基巯基-1H-四唑作为偶联剂，使用碘溶液作为氧化剂，使用乙酸酐溶液和N-甲基咪唑溶液作为封端(capping)溶液来实施。固相合成后的从固相担载体的切出和去保护按照例如国际公开第2013/027843号中记载的方法来实施。即，加入氨水溶液和乙醇，实施碱基部及磷酸基的去保护和从固相担载体的切出后，过滤固相担载体，然后，使用四丁基氟化铵实施2’-羟基的去保护，由此可以制备RNA。
作为该固相合成法中使用的酰胺化物(amidite)，没有特别限定，可以使用例如下述结构式(III-a)中的、R1被叔丁基二甲基甲硅烷基(TBDMS)、双(2-乙酰氧基)甲基(ACE)、(三异丙基硅氧基)甲基(TOM)、(2-氰基乙氧基)乙基(CEE)、(2-氰基乙氧基)甲基(CEM)、对甲苯磺酰基乙氧基甲基(TEM)、(2-氰基乙氧基)甲氧基甲基(EMM)等保护的、TBDMS酰胺化物(TBDMS RNA Amidites，商品名，ChemGenes Corporation)、ACE酰胺化物、TOM酰胺化物、CEE酰胺化物、CEM酰胺化物、TEM酰胺化物(Chakhmakhcheva的综述：Protective Groups inthe Chemical Synthesis of Oligoribonucleotides，Russian Journal of BioorganicChemistry,2013,Vol.39,No.1,pp.1-21.)、EMM酰胺化物(记载于国际公开第2013/027843号)等。
另外，关于Ly接头区域及Lz接头区域，可以基于国际公开第2012/017919号的实施例A4的方法使用下述结构式(III-b)所示的具有脯氨酸骨架的酰胺化物。另外，可以通过使用由下述结构式(III-c)、(III-d)及(III-e)中任一者表示的酰胺化物(参见国际公开第2013/103146号的实施例A1～A3)，同样地使用核酸合成仪来进行制备。
5’末端的5’位的磷酸化可以在固相合成中使用用于5’末端的磷酸化的酰胺化物。用于5’末端的磷酸化的酰胺化物可以使用市售的酰胺化物。另外，通过固相合成，预先合成5’末端的5’位为羟基或被保护的羟基的RNA分子，适当实施去保护后，使用市售的磷酸化剂进行磷酸化，由此可以制备在5’末端具有磷酸基的单链RNA。作为磷酸化剂，由下述结构式(III-f)表示的市售的化学磷酸化试剂(Chemical Phosphorylation Reagent)(GlenResearch)是已知的(专利文献EP0816368)。
【化8】
式(III-a)中，R2表示可被保护基团保护的核酸碱基，R1表示保护基团。
【化9】
【化10】
【化11】
【化12】
【化13】
第二单链RNA可以使用基于固相合成法、即亚磷酰胺法的核酸合成仪来同样地制造。
构成核苷酸的碱基通常为构成核酸、典型而言为RNA的天然的碱基，也可以根据情况而使用非天然的碱基。作为该非天然的碱基，可以示例天然或者非天然的碱基的修饰类似物。
作为碱基的例子，可以举出例如腺嘌呤及鸟嘌呤等嘌呤碱基、胞嘧啶、尿嘧啶及胸腺嘧啶等嘧啶碱基等。除了这些以外，碱基还可以举出肌苷、黄嘌呤、次黄嘌呤、水粉蕈素(nubularine)、异鸟苷(isoguanisine)、杀结核菌素(tubercidine)等。上述碱基可以举出例如：2-氨基腺嘌呤、6-甲基化嘌呤等烷基衍生物；2-丙基化嘌呤等烷基衍生物；5-卤代尿嘧啶及5-卤代胞嘧啶；5-丙炔基尿嘧啶及5-丙炔基胞嘧啶；6-偶氮尿嘧啶、6-偶氮胞嘧啶及6-偶氮胸腺嘧啶；5-尿嘧啶(假尿嘧啶)、4-硫代尿嘧啶、5-卤代尿嘧啶、5-(2-氨基丙基)尿嘧啶、5-氨基烯丙基尿嘧啶；8-卤代、氨基化、硫醇化、硫代烷基化、羟基化及其他的8-取代嘌呤；5-三氟甲基化及其他的5-取代嘧啶；7-甲基鸟嘌呤；5-取代嘧啶；6-氮杂嘧啶；N-2、N-6、及O-6取代嘌呤(包括2-氨基丙基腺嘌呤)；5-丙炔基尿嘧啶及5-丙炔基胞嘧啶；二氢尿嘧啶；3-去氮-5-氮杂胞嘧啶；2-氨基嘌呤；5-烷基尿嘧啶；7-烷基鸟嘌呤；5-烷基胞嘧啶；7-去氮腺嘌呤；N6,N6-二甲基腺嘌呤；2,6-二氨基嘌呤；5-氨基-烯丙基-尿嘧啶；N3-甲基尿嘧啶；取代1,2,4-三唑；2-吡啶酮；5-硝基吲哚；3-硝基吡咯；5-甲氧基尿嘧啶；尿嘧啶-5-氧基乙酸；5-甲氧基羰基甲基尿嘧啶；5-甲基-2-硫代尿嘧啶；5-甲氧基羰基甲基-2-硫代尿嘧啶；5-甲基氨基甲基-2-硫代尿嘧啶；3-(3-氨基-3-羧基丙基)尿嘧啶；3-甲基胞嘧啶；5-甲基胞嘧啶；N4-乙酰基胞嘧啶；2-硫代胞嘧啶；N6-甲基腺嘌呤；N6-异戊基腺嘌呤；2-甲硫基-N6-异戊烯基腺嘌呤；N-甲基鸟嘌呤；O-烷基化碱基等。另外，嘌呤碱基及嘧啶碱基中包括例如美国专利第3,687,808号；“Concise Encyclopedia Of Polymer Science AndEngineering”，858～859页，Kroschwitz J.I.编，John Wiley&Sons，1990；及Englisch等，Angewandte Chemie，International Edition，1991，30卷，p.613中公开的碱基。
通过本实施方式的方法得到的、自5’末端侧起包含X1区域、Y1区域、Ly区域、Y2区域、X2区域及Z区域的单链RNA核酸分子的5’末端与3’末端未连接，还可称为线状单链核酸分子。该单链RNA核酸分子可以例如在体内(in vivo)或体外(in vitro)用于抑制靶基因的表达，可以经由RNA干扰而用于抑制靶基因的表达。所谓“抑制靶基因的表达”表示例如阻遏靶基因的表达。上述抑制的机理没有特别限定，例如，可以是下调或沉默。
靶基因的表达抑制可以基于例如来自靶基因的转录产物的生成量减少、转录产物的活性减少、来自靶基因的翻译产物的生成量减少、或翻译产物的活性减少等来确认。作为翻译产物的蛋白可以举出例如成熟蛋白、或接受加工或翻译后修饰之前的前体蛋白等。
实施例
以下，详细地说明基于本实施方式的实施例，但本发明不限于这些实施例。
[实施例1]
1.第一单链RNA的合成
作为实施例1的链I的RNA，合成了以下所示的单链RNA(表2的序列1；序列号1)。上述链I的长度由13个碱基组成，与第一单链RNA对应。
链I(序列1)：5’-pGUGUACUCUGCUU-3’
上述单链RNA是基于亚磷酰胺法，使用核酸合成仪(商品名为NTS M-4MX-E，NIHONTECHNO SERVICE CO.,LTD)从3’侧向5’侧合成的。上述合成中，作为RNA酰胺化物，使用国际公开第2013/027843号的实施例2中记载的尿苷EMM酰胺化物、实施例3所记载的胞苷EMM酰胺化物、实施例4中记载的腺苷EMM酰胺化物、实施例5中记载的鸟苷EMM酰胺化物，并且，5’磷酸化使用化学磷酸化试剂(Glen Research)，作为固相担载体，使用多孔质玻璃，作为去保护溶液，使用高纯度三氯乙酸甲苯溶液，作为缩合剂，使用5-苄基巯基-1H-四唑，作为氧化剂，使用碘溶液，作为封端溶液，使用苯氧基乙酸溶液和N-甲基咪唑溶液进行了合成。固相合成后的从固相担载体的切出和去保护按照国际公开第2013/027843号中记载的方法。即，加入氨水溶液和乙醇，静置片刻后过滤固相担载体，然后，使用四丁基氟化铵实施羟基的去保护。将得到的RNA利用注射用蒸馏水以成为所期望的浓度的方式溶解。
2.第二单链RNA的合成
作为实施例1的链II的RNA，合成了以下所示的单链RNA(表2的序列2；序列号2、3)。上述链II的长度由36个碱基组成，与第二单链RNA对应。
链II(序列2)：
5’-GCAGAGUACACACAGCAUAUACCKGGUAUAUGCUGU-3’
上述单链RNA是基于亚磷酰胺法，使用核酸合成仪(商品名为NTS M-4MX-E，NIHONTECHNO SERVICE CO.,LTD)合成的。上述合成中，作为RNA酰胺化物，使用了国际公开第2013/027843号的实施例2中记载的尿苷EMM酰胺化物、实施例3中记载的胞苷EMM酰胺化物、实施例4中记载的腺苷EMM酰胺化物及实施例5中记载的鸟苷EMM酰胺化物、以及国际公开第2012/017919号的实施例A3中记载的赖氨酸酰胺化物(Ie)。固相合成后的从固相担载体的切出和去保护按照国际公开第2013/027843号中记载的方法。将得到的RNA利用注射用蒸馏水以成为所期望的浓度的方式溶解。
3.连接反应
然后，基于160单位/mL T4 RNA连接酶2、50mM Tris-HCl(pH7.5)、2mM MgCl2、1mMDTT、400μM ATP的组成，以反应规模7.9mL实施了第一RNA链与第二RNA链的连接反应。
得到的连接单链RNA如下所示(序列15；序列号17、18)。
5’-GCAGAGUACACACAGCAUAUACCKGGUAUAUGCUGUGU GUACUCUGCUU-3’
具体而言，首先，以第一RNA链成为5.5μM、第二RNA链成为5.0μM的方式，向包含含有500mM Tris-HCl(pH7.5)、20mM MgCl2、及10mM DTT的4000μM的ATP缓冲液(10×缓冲液)790μL及注射用蒸馏水的15mL管内加入第一RNA链及第二RNA链，于65℃水浴中静置10分钟。然后，以与上述的组成形成反应规模的方式加入T4 RNA连接酶2(New England BioLabs制)，于25℃孵育24小时。反应后，将反应液在下述表1中记载的条件下利用柱色谱法实施纯化。将得到的组分分别通过HPLC进行分析。收集并混合纯度为90％以上的组分。结果，成功地以纯度90％、总收率11％得到了目标物质。此处，所谓总收率，是指相对于投入的RNA链的量而言的、将连接反应后的生成物纯化而得到的单链RNA的量的比例。上述RNA的量可以基于波长260nm的紫外线的吸光度而求出。其是将吸光度显示为1的情况下的RNA的浓度设为33μg/mL而求得的值。将得到的试样通过质谱测定进行测定，结果与计算值相符，由此可确认得到了目标物质(测定值：15715.2464，理论值：15715.2075)。
[表1]
[实施例2]
(Ly、Lz含有脯氨酸衍生物的连接单链RNA的合成)
得到的连接单链RNA如下所示(序列16；序列号19、20)。
5’-AGCAGAGUACACACAGCAUAUACCPGGUAUAUGCUGUGUGUACUCUGCUUCPG-3’
1.第一单链RNA的合成
作为实施例2的链I的RNA，合成了表3所示的链I(序列3)的单链RNA(表2的序列3；序列号4)。上述链I的长度由16个碱基组成，与第一单链RNA对应。
上述单链RNA是基于亚磷酰胺法，使用核酸合成仪(商品名为NTS M-4MX-E，NIHONTECHNO SERVICE CO.,LTD)合成的。上述合成中，作为RNA酰胺化物，使用了国际公开第2013/027843号的实施例2中记载的尿苷EMM酰胺化物、实施例3中记载的胞苷EMM酰胺化物、实施例4中记载的腺苷EMM酰胺化物及实施例5中记载的鸟苷EMM酰胺化物、以及国际公开第2012/017919号的实施例A3中记载的脯氨酸酰胺化物(Ib)。5’磷酸化使用了化学磷酸化试剂(Glen Research)(以下相同)。固相合成后的从固相担载体的切出和去保护按照国际公开第2013/027843号中记载的方法。将得到的RNA利用注射用蒸馏水以成为所期望的浓度的方式溶解。
2.第二RNA的合成
作为实施例2的链II的RNA，合成了表3所示的链II(序列4)的单链RNA(表2的序列4；序列号5、6)。上述链II的长度由37个碱基组成，与第二单链RNA对应。
就第二单链RNA链的合成而言，去保护之后的操作与第一单链RNA的合成同样地实施。
3.连接反应
然后，基于58单位/mL T4 RNA连接酶2、50mM Tris-HCl(pH7.5)、2mM MgCl2、1mMDTT、400μM ATP的组成，以反应规模10mL实施了第一RNA链与第二RNA链的连接反应。
具体而言，首先，以第一RNA链成为4.4μM、第二RNA链成为4.0μM的方式，向添加含有500mM Tris-HCl(pH7.5)、20mM MgCl2及10mM DTT的4000μM ATP缓冲液(10×缓冲液)0.96mL及注射用蒸馏水而得到的溶液中加入第一RNA链及第二RNA链，于65℃水浴中静置10分钟。然后，以与上述的组成形成反应规模的方式加入T4 RNA连接酶2(New EnglandBioLabs制)，于25℃孵育24小时。反应后，将反应液使用表1中记载的条件进行柱色谱法纯化。将得到的组分通过HPLC进行分析，收集并混合纯度为90％以上的组分(色谱图中相对于检测到的峰的总面积而言，目标物质的峰面积所占比率为90％以上的比例的组分)。结果，成功地以纯度94％、总收率14％得到了目标物质。另外，将得到的试样通过质谱测定进行测定，结果，其与计算值相符，由此可确认得到了目标物质(测定值：17025.4858，理论值：17025.4672)。
[实施例3～6]
以下，实施例3～6中，除了利用核酸合成仪分别合成表3中记载的链I(与第一单链RNA对应)及链II(与第二单链RNA对应)并进行使用以外，与实施例2同样地，使用T4 RNA连接酶2实施反应，将反应生成物用柱色谱法纯化，将得到的组分通过HPLC进行分析。针对实施例3～6中的各实施例，收集并混合纯度为90％以上的组分(定义与上述相同)，分别求出纯度及总收率。将其结果总结示于表2。
[参考例1]
为了合成与实施例2相同的连接单链RNA(序列16)，除了使用核酸合成仪合成表3所示的链I(序列13)和链II(序列14)并进行使用以外，通过与实施例2同样的操作来实施。此时的与链II(序列14)中的Y1区域对应的区域的核苷酸数目为1个。将连接反应后的反应液通过HPLC进行分析，结果，链I和链II的峰未观察到变化，并且，在连接单链RNA的溶出位置处未检测到峰，从而确认了未进行连接反应。
[表2]
实施例及参考例中使用的链I及链II的RNA序列总结示于下表3。
[表3]
[实施例7]
作为第一RNA链及第二RNA链，分别使用表3所示的链I(序列11)及链II(序列12)，基于58单位/mL KVP40 RNA连接酶2、50mM Tris-HCl(pH7.0)、2mM MgCl2、1mM DTT、400μMATP的组成，以反应规模15mL实施了第一RNA链与第二RNA链的连接反应。
以第一RNA链(序列11)成为2.6μM、第二RNA链(序列12)成为2.4μM的方式，向包含含有500mM Tris-HCl(pH7.0)、20mM MgCl2及10mM DTT的4000μM ATP缓冲液(10×缓冲液)166μL及注射用蒸馏水的溶液中加入第一RNA链及第二RNA链，于37℃水浴中静置10分钟。然后，以与上述的组成形成反应规模的方式加入KVP40 RNA连接酶2(ProteinExpress Co.,Ltd.)，于25℃孵育24小时。反应后，向反应液中加入0.2M乙二胺四乙酸钠水溶液1mL，于65℃水浴中加热10分钟，从而使酶失活。直接使用表1的条件通过HPLC进行分析。
连接反应后，第一单链RNA和第二单链RNA减少，观察到保留时间(retentiontime)推迟的新的峰。针对该溶出峰，通过质谱测定来确认分子量，结果，其与连接单链RNA的计算值相符，由此确认了通过连接反应生成了目标连接单链RNA。
将得到的组分在表1所示的条件下实施HPLC分析后，将以纯度95％以上得到的物质混合。结果，成功地以纯度98％、总收率16％得到了目标物质。
[比较例1]
作为比较例，如下所述地基于亚磷酰胺法，使用核酸合成仪(商品名为NTS M-4MX-E，NIHON TECHNO SERVICE CO.,LTD)从3’侧向5’侧合成了与实施例2中合成的连接单链RNA(序列16)相同的核苷酸序列的单链RNA。上述合成中，作为RNA酰胺化物，使用国际公开第2013/027843号的实施例2中记载的尿苷EMM酰胺化物、实施例3中记载的胞苷EMM酰胺化物、实施例4中记载的腺苷EMM酰胺化物、实施例5中记载的鸟苷EMM酰胺化物，并且，5’磷酸化使用化学磷酸化试剂(Glen Research)，作为固相担载体，使用多孔质玻璃，作为去保护溶液，使用高纯度三氯乙酸甲苯溶液，作为缩合剂，使用5-苄基巯基-1H-四唑，作为氧化剂，使用碘溶液，作为封端溶液，使用苯氧基乙酸溶液和N-甲基咪唑溶液进行了合成。固相合成后的从固相担载体的切出和去保护按照国际公开第2013/027843号中记载的方法。即，加入氨水溶液和乙醇，暂时静置后过滤固相担载体，然后，使用四丁基氟化铵实施羟基的去保护。将得到的RNA利用注射用蒸馏水以成为所期望的浓度的方式溶解。
然后，将得到的RNA的粗生成物按照表1的条件通过柱色谱法进行纯化。将得到的纯化级分分别通过HPLC进行分析。级分之中，未能得到纯度为90％以上的级分。对纯度最高的级分进行分析，结果，纯度为87％，收率为5％。
图5示出实施例1中使用的第一单链RNA及第二单链RNA、以及通过上述单链RNA的连接反应生成的连接单链RNA。图6示出实施例2中使用的第一单链RNA及第二单链RNA、以及通过上述单链RNA的连接反应生成的连接单链RNA。序列1～16以及图5及图6中的“A”、“G”、“U”及“C”的各缩写表示如下所示的包含核糖环的RNA的单元结构。
A由下式表示。
【化14】
G由下式表示。
【化15】
C由下式表示。
【化16】
U由下式表示。
【化17】
其中，图5及图6中，RNA链的仅3’侧的末端部分没有磷酸酯部分，核糖的3位为羟基。
序列1～16以及图5及图6中的“P”及“K”的缩写分别表示以下所示的结构的具有衍生自氨基酸的原子团的接头区域的结构。
P由下式表示。
【化18】
K由下式表示。
【化19】
序列1～16以及图5及图6中的“p”的缩写表示核糖环的5’位为磷酸基〔-O-P(＝O)(OH)2〕。
产业上的可利用性
本发明涉及的单链RNA的制造方法可以用作单链RNA的简便的制造方法。

Claims (8)

1.单链RNA的制造方法，其包括下述工序：使下述RNA连接酶作用于在5’末端具有磷酸基的第一单链RNA和在3’末端具有羟基的第二单链RNA，将所述第一单链RNA与所述第二单链RNA连接，所述RNA连接酶是被分类为国际生物化学联合会确定的酶编号EC6.5.1.3、且具有双链切口修复活性的RNA连接酶，所述制造方法具有以下a)～g)的特征：
a)所述第一单链RNA为自5’末端侧起依次包含X1区域及Z区域的单链RNA；
b)所述第二单链RNA为自5’末端侧起依次包含X2区域、Y2区域、Ly接头区域及Y1区域的单链；
c)所述X1区域和所述X2区域为彼此互补的、由2个以上且数目相同的核苷酸组成的核苷酸序列；
d)所述Y1区域和所述Y2区域为彼此互补的、由2个以上且数目相同的核苷酸组成的核苷酸序列；
e)所述Z区域为包含任意核苷酸数目的核苷酸序列的区域，
所述Z区域为自5’末端侧起依次包含Z1区域、Lz接头区域及Z2区域的区域，
所述Lz接头区域为由下式(I’)表示的二价基团；
f)Ly接头区域为由下式(I)表示的二价基团；
g)通过所述第一单链RNA与所述第二单链RNA的连接生成的单链RNA为自5’末端侧起依次包含所述X2区域、所述Y2区域、所述Ly接头区域、所述Y1区域、所述X1区域、所述Z1区域、所述Lz接头区域及所述Z2区域的连接单链RNA，
式(I)中，Y11及Y21各自独立地表示碳原子数为1～20的亚烷基，Y12及Y22各自独立地表示氢原子或可被氨基取代的烷基，或者Y12与Y22于其末端彼此键合而表示碳原子数为3～4的亚烷基，
键合于Y11的末端的氧原子与所述Y1区域及所述Y2区域中任一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合，
键合于Y21的末端的氧原子与所述Y2区域及所述Y1区域中的未与Y11键合的另一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合；
式(I’)中，Y’11及Y’21各自独立地表示碳原子数为1～20的亚烷基，Y’12及Y’22各自独立地表示氢原子或可被氨基取代的烷基，或者Y’12与Y’22于其末端彼此键合而表示碳原子数为3～4的亚烷基，
键合于Y’11的末端的氧原子与所述Z1区域及所述Z2区域中任一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合，
键合于Y’21的末端的氧原子与所述Z2区域及所述Z1区域中的未与Y’11键合的另一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合。
2.如权利要求1所述的制造方法，其中，所述Ly接头区域及所述Lz接头区域各自独立地表示由下式(II-A)或(II-B)表示的结构的二价基团，
式(II-A)、(II-B)中，n及m各自独立地表示1至20中的任一整数。
3.如权利要求1所述的制造方法，其中，包含所述X1区域、所述Y1区域及所述Z区域的W1区域、以及包含所述X2区域及所述Y2区域的W2区域中的至少一者中包含下述核苷酸序列，所述核苷酸序列抑制作为RNA干扰法的靶标的基因的表达。
4.如权利要求1至3中任一项所述的制造方法，其中，所述RNA连接酶为来源于T4噬菌体的T4 RNA连接酶2、来源于KVP40的连接酶2、布氏锥虫RNA连接酶、耐辐射异常球菌RNA连接酶、或蜥蜴利什曼原虫RNA连接酶。
5.如权利要求1至3中任一项所述的制造方法，其中，所述RNA连接酶的氨基酸序列由序列号21、22、或23所示。
6.如权利要求1至3中任一项所述的制造方法，其中，所述RNA连接酶为来源于T4噬菌体的T4 RNA连接酶2或来源于KVP40的RNA连接酶2。
7.如权利要求1～6中任一项中所定义的、具有以下a)～g)的特征的、所述第一单链RNA与所述第二单链RNA的组合：
a)所述第一单链RNA为自5’末端侧起依次包含X1区域及Z区域的单链RNA；
b)所述第二单链RNA为自5’末端侧起依次包含X2区域、Y2区域、Ly接头区域及Y1区域的单链；
c)所述X1区域和所述X2区域为彼此互补的、由2个以上且数目相同的核苷酸组成的核苷酸序列；
d)所述Y1区域和所述Y2区域为彼此互补的、由2个以上且数目相同的核苷酸组成的核苷酸序列；
e)所述Z区域为包含任意核苷酸数目的核苷酸序列的区域，
所述Z区域为自5’末端侧起依次包含Z1区域、Lz接头区域及Z2区域的区域，
所述Lz接头区域为由下式(I’)表示的二价基团；
f)Ly接头区域为由下式(I)表示的二价基团；
g)通过所述第一单链RNA与所述第二单链RNA的连接生成的单链RNA为自5’末端侧起依次包含所述X2区域、所述Y2区域、所述Ly接头区域、所述Y1区域、所述X1区域、所述Z1区域、所述Lz接头区域及所述Z2区域的连接单链RNA，
式(I)中，Y11及Y21各自独立地表示碳原子数为1～20的亚烷基，Y12及Y22各自独立地表示氢原子或可被氨基取代的烷基，或者Y12与Y22于其末端彼此键合而表示碳原子数为3～4的亚烷基，
键合于Y11的末端的氧原子与所述Y1区域及所述Y2区域中任一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合，
键合于Y21的末端的氧原子与所述Y2区域及所述Y1区域中的未与Y11键合的另一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合；
式(I’)中，Y’11及Y’21各自独立地表示碳原子数为1～20的亚烷基，Y’12及Y’22各自独立地表示氢原子或可被氨基取代的烷基，或者Y’12与Y’22于其末端彼此键合而表示碳原子数为3～4的亚烷基，
键合于Y’11的末端的氧原子与所述Z1区域及所述Z2区域中任一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合，
键合于Y’21的末端的氧原子与所述Z2区域及所述Z1区域中的未与Y’11键合的另一区域的末端核苷酸的磷酸酯的磷原子键合。
8.如权利要求7所述的组合，其中，所述第一单链RNA与所述第二单链RNA的组合为选自由下述序列1与序列2的组合、序列3与序列4的组合、序列5与序列6的组合、序列7与序列8的组合、序列9与序列10的组合、及序列11与序列12的组合组成的组的组合，
序列1：pGUGUACUCUGCUU
序列2：GCAGAGUACACACAGCAUAUACCKGGUAUAUGCUGU
序列3：pGUGUACUCUGCUUCPG
序列4：AGCAGAGUACACACAGCAUAUACCPGGUAUAUGCUGU
序列5：pCUGUGUGUACUCUGCUUCPG
序列6：AGCAGAGUACACACAGCAUAUACCPGGUAUAUG
序列7：pUGCUGUGUGUACUCUGCUUCPG
序列8：AGCAGAGUACACACAGCAUAUACCPGGUAUA
序列9：pUAUGCUGUGUGUACUCUGCUUCPG
序列10：AGCAGAGUACACACAGCAUAUACCPGGUA
序列11：pUAUAUGCUGUGUGUACUCUGCUUCPG
序列12：AGCAGAGUACACACAGCAUAUACCPGG
序列1～12中，p表示核糖环的5’位为磷酸基〔-O-P(＝O)(OH)2〕；P表示下述式(P)表示的结构；K表示下述式(K)表示的结构，
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