JPS62126989A - コルテイシウム属担子菌の生産する酵素を用いた澱粉質の無蒸煮糖化法 - Google Patents
コルテイシウム属担子菌の生産する酵素を用いた澱粉質の無蒸煮糖化法Info
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- JPS62126989A JPS62126989A JP60265261A JP26526185A JPS62126989A JP S62126989 A JPS62126989 A JP S62126989A JP 60265261 A JP60265261 A JP 60265261A JP 26526185 A JP26526185 A JP 26526185A JP S62126989 A JPS62126989 A JP S62126989A
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- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
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- C12N9/2408—Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
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- C12N9/2428—Glucan 1,4-alpha-glucosidase (3.2.1.3), i.e. glucoamylase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/20—Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of an exo-1,4 alpha-glucosidase, e.g. dextrose
-
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- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/911—Microorganisms using fungi
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は澱粉質の糖化に関し、さらに詳しくはコルテイ
シウム属担子菌の生産する酵素を用いて澱粉質を無蒸煮
で糖化し、グルコースを生成させる方法に関する。
シウム属担子菌の生産する酵素を用いて澱粉質を無蒸煮
で糖化し、グルコースを生成させる方法に関する。
澱粉質を原料としてグルコースを製造するには従来より
２種のアミラーゼによる２段階反応、すなわち、まず、
＃粉乳を高温で糊化させ、α−アミラーゼ１に８０〜１
２０℃で作用嘔せて液化した後、さらにグルコアミラー
ゼを４５〜６０℃で作用させて糖化する方法が用いられ
ている。
２種のアミラーゼによる２段階反応、すなわち、まず、
＃粉乳を高温で糊化させ、α−アミラーゼ１に８０〜１
２０℃で作用嘔せて液化した後、さらにグルコアミラー
ゼを４５〜６０℃で作用させて糖化する方法が用いられ
ている。
しかしこの方法に、前段の蒸煮工程に多量の熱エネルギ
ーを必要とし、またα−アミラ−ゼとグルコアミラーゼ
の作用温度、作用ｐｉｉが異なるため煩雑な操作が必要
であり、１らに実際に工業的に使用されている３０〜５
０％の高濃度の糊化澱粉は極めて粘度が高いため反応が
均一に進行せず、生産管理上多くの困難を伴っていた。
ーを必要とし、またα−アミラ−ゼとグルコアミラーゼ
の作用温度、作用ｐｉｉが異なるため煩雑な操作が必要
であり、１らに実際に工業的に使用されている３０〜５
０％の高濃度の糊化澱粉は極めて粘度が高いため反応が
均一に進行せず、生産管理上多くの困難を伴っていた。
これらの欠点を克服する目的で澱粉を糊化させることな
く、すなわち無蒸煮で澱粉を直接糖化しようとする試み
がアスペルギルス属（Ａｍｐｅｒｇｉｌｌｕｉ ） 、
リゾノス属（Ｒｈｉｚｏｐｕｍ ）に属する酵素を
利用することを中心に数多く行なわれる様になった。こ
れらの方法は、一段階の反応でグルコースが得られ、ま
た澱粉が３０％以上の高濃度においても反応液は低粘度
を保ち、エネルギーコストおよび操作上の有利性を狙っ
たものである。
く、すなわち無蒸煮で澱粉を直接糖化しようとする試み
がアスペルギルス属（Ａｍｐｅｒｇｉｌｌｕｉ ） 、
リゾノス属（Ｒｈｉｚｏｐｕｍ ）に属する酵素を
利用することを中心に数多く行なわれる様になった。こ
れらの方法は、一段階の反応でグルコースが得られ、ま
た澱粉が３０％以上の高濃度においても反応液は低粘度
を保ち、エネルギーコストおよび操作上の有利性を狙っ
たものである。
しかし、これらの報告で用いられる酵素の多くは、澱粉
が高濃度でるる条件下では作用し難いという欠点を有す
る。例えば上田らの報告によれば、黒麹菌（Ａｍｐｅｒ
ｇｉｌｌｕｉ ａｗａｍｏｒｌ ）〔スターチ（３Ｌａ
ｒｃｈ ／ ３０ｒｋ・）、３３（９）。
が高濃度でるる条件下では作用し難いという欠点を有す
る。例えば上田らの報告によれば、黒麹菌（Ａｍｐｅｒ
ｇｉｌｌｕｉ ａｗａｍｏｒｌ ）〔スターチ（３Ｌａ
ｒｃｈ ／ ３０ｒｋ・）、３３（９）。
３１３（１９８１））やリゾゲス属
（Ｒｈｉｚｏｐｕｍ ｍｐ、） （スターチ（５ｔａｒ
ｃｈ／ｍｔ’ａｒｋａ ） １２７．１２３ （１９７
５） ）では２％濃度の澱粉を糊化するのが限度と考え
られる結果を示している。嘔らに強い無蒸煮澱粉糖化力
を持つとてれている貝沼らにより報告されたカララ・ノ
ｑラドキサ（Ｃｈａｌａｒａｐａｒａｄｏｘａ ） （
澱粉科学、３２（３１，１８９（１９８５）、特開昭５
９−１４０８９６号〕においても５％澱粉が糖化限度で
めｔ）、１０％濃度以上の澱粉の糖化は非常に困難であ
った。
ｃｈ／ｍｔ’ａｒｋａ ） １２７．１２３ （１９７
５） ）では２％濃度の澱粉を糊化するのが限度と考え
られる結果を示している。嘔らに強い無蒸煮澱粉糖化力
を持つとてれている貝沼らにより報告されたカララ・ノ
ｑラドキサ（Ｃｈａｌａｒａｐａｒａｄｏｘａ ） （
澱粉科学、３２（３１，１８９（１９８５）、特開昭５
９−１４０８９６号〕においても５％澱粉が糖化限度で
めｔ）、１０％濃度以上の澱粉の糖化は非常に困難であ
った。
また、澱粉を無蒸煮で糖化する際には反応中の雑菌汚染
に注意しなければならず、なるべく高温、好ましくは４
５〜６０℃で反応を行なう必要があるが、リゾゲス属、
カララ・／Ｑ５１キサ等の酵素は５０℃以上では全く使
用する事ができないという欠点もあった。
に注意しなければならず、なるべく高温、好ましくは４
５〜６０℃で反応を行なう必要があるが、リゾゲス属、
カララ・／Ｑ５１キサ等の酵素は５０℃以上では全く使
用する事ができないという欠点もあった。
更に最近、コルテイシウム・ロル７シイ（Ｃｏｒ口ｅｉ
ｕｍ ｒｏｌｆａ目）ＩＦ０４８７８株の生産する酵素
が澱粉を無蒸煮で糖化する作用を有することが報告され
た〔日本食品工業学会誌、２５（１）、２２（１９７８
））。しかしこの酵素は、１０％トウモロコシ澱粉を無
蒸煮で９０％までしか糖化せず、当該報告者らも述べて
いるように「高濃度澱粉に対して（無蒸煮で）本酵素で
の高い分％Ａ率を目指すのは限界」（前記報告第２７頁
）がめるとてれていた。
ｕｍ ｒｏｌｆａ目）ＩＦ０４８７８株の生産する酵素
が澱粉を無蒸煮で糖化する作用を有することが報告され
た〔日本食品工業学会誌、２５（１）、２２（１９７８
））。しかしこの酵素は、１０％トウモロコシ澱粉を無
蒸煮で９０％までしか糖化せず、当該報告者らも述べて
いるように「高濃度澱粉に対して（無蒸煮で）本酵素で
の高い分％Ａ率を目指すのは限界」（前記報告第２７頁
）がめるとてれていた。
以上の如く澱粉質を工業的に無蒸煮で糖化するための満
足すべき方法はなかった。
足すべき方法はなかった。
そこで本発明者らは、澱粉質を無蒸煮で糖化するための
有用な方法金兄い出すべく種々検討したところ、コルテ
イシウム属に属する菌株の生産する酵素が公知のグルコ
アミラーゼに比して無蒸煮澱粉によく作用し、１０％以
上の高濃度無蒸煮澱粉でもほぼ１００％糖化することが
できる事、かつその作用温度およびｐｔｉが公知の無蒸
煮澱粉分解酵素に比して高温・酸性側にあり、雑菌汚染
防除の面からも有利である事を見い出し、本発明を完成
した。
有用な方法金兄い出すべく種々検討したところ、コルテ
イシウム属に属する菌株の生産する酵素が公知のグルコ
アミラーゼに比して無蒸煮澱粉によく作用し、１０％以
上の高濃度無蒸煮澱粉でもほぼ１００％糖化することが
できる事、かつその作用温度およびｐｔｉが公知の無蒸
煮澱粉分解酵素に比して高温・酸性側にあり、雑菌汚染
防除の面からも有利である事を見い出し、本発明を完成
した。
すなわち、本発明は無蒸煮の澱粉質に、コルテイシウム
・ロルフシイ（ＣｏｒＬｉｃｉｕｍ ｒｏ−１ｆａｌｉ
） ＡＨＵ９６２７またはその変異株の生産する澱粉
質分解酵素を作用嘔せることを特徴とする澱粉質の無蒸
煮糖化法を提供するものである・ 本発明において使用することができる無蒸煮澱粉分解酵
素を生産する菌株、 人ＨＵ９６２７株は次のような
菌学的性質を有する。
・ロルフシイ（ＣｏｒＬｉｃｉｕｍ ｒｏ−１ｆａｌｉ
） ＡＨＵ９６２７またはその変異株の生産する澱粉
質分解酵素を作用嘔せることを特徴とする澱粉質の無蒸
煮糖化法を提供するものである・ 本発明において使用することができる無蒸煮澱粉分解酵
素を生産する菌株、 人ＨＵ９６２７株は次のような
菌学的性質を有する。
（１） 各種培地における生育状態
■ 麦芽エキス寒天培地、オートミール寒天培地での生
育は極めて良好で、３０℃、７日間の培養でコロニーの
直径が１０ｃＩＬａ度に達する。培地表面には羽毛状の
白色菌糸が放射状に生育する。気菌糸の生成もさかんで
、９１シヤーレ中に３００〜５００個穆度の菌核（Ｓｃ
ｌｅｒｏｔｌｍ ）を形成する。培地表面に近接する主
幹をなす菌糸は、直径４．５〜９．０ｐｒ１１と太く、
所々にかすがい連結（Ｃｌｕｍｐｅ０１’ｌ・Ｃｔｉｏ
ｎ ） ｋ生ずるが、これより分枝して生ずる菌糸は次
第に細くなりかすがい連結はみられない。
育は極めて良好で、３０℃、７日間の培養でコロニーの
直径が１０ｃＩＬａ度に達する。培地表面には羽毛状の
白色菌糸が放射状に生育する。気菌糸の生成もさかんで
、９１シヤーレ中に３００〜５００個穆度の菌核（Ｓｃ
ｌｅｒｏｔｌｍ ）を形成する。培地表面に近接する主
幹をなす菌糸は、直径４．５〜９．０ｐｒ１１と太く、
所々にかすがい連結（Ｃｌｕｍｐｅ０１’ｌ・Ｃｔｉｏ
ｎ ） ｋ生ずるが、これより分枝して生ずる菌糸は次
第に細くなりかすがい連結はみられない。
菌核は最初茶褐色の色調を呈するが、次第に黒褐色とな
る。表面は平滑で直径は１〜２ｍｍのほぼ球形を示して
いる。
る。表面は平滑で直径は１〜２ｍｍのほぼ球形を示して
いる。
■ ？テトデキストロース寒天培地での生育は上記２種
の培地に比してかなり劣り、菌糸が放射状に生ずるが気
菌糸および菌核の生成は少ない。
の培地に比してかなり劣り、菌糸が放射状に生ずるが気
菌糸および菌核の生成は少ない。
（２）生理的性質
麦芽エキス寒天培地、オートミール寒天培地または０．
１％酵母エキス含有？テトデキストロース液体培地にお
ける性質を以下に示す。
１％酵母エキス含有？テトデキストロース液体培地にお
ける性質を以下に示す。
■ 生育温度範囲 ５〜５０℃生育至適温度
１５〜３０℃ ■ 生育ｐｉ（範囲 １．５〜８．５生育至
適ＰＨ３，０〜６．０ 以上の性質のうち、菌核の形成およびその形状、麦芽寒
天平板培養における生育状態。
１５〜３０℃ ■ 生育ｐｉ（範囲 １．５〜８．５生育至
適ＰＨ３，０〜６．０ 以上の性質のうち、菌核の形成およびその形状、麦芽寒
天平板培養における生育状態。
特にその菌糸の性状、「かすがい連結」（Ｃ１ａｒｎｐ
ｃｏｎｎ＠ｃｔｌｏｎ ）を形成すること、並びに分
離直後には、トマト茎葉のエキス５０％を加えた寒天培
地上で担子胞子の形成が認められ、担子器は太い沌、棒
形ないし長卵形で、７〜９Ｘ４〜５ ｐｒｎ％担子柄は
長さ２．５〜４．０μｍ、担子胞子は卵形ないし太いｚ
ｆＬ棒形で先端部が細くなっていた（大きさ４．５〜６
．５Ｘ３．５〜４．５μｍ）等の観察結果に基づき、ク
ー。エッチ、トムシュ（Ｋ、ｌ（、Ｄｏｍ＋ｓｅｈ ）
らの「コンベンゾイウム オプ ソイルフンギイ」、ア
カデミツク プレス、ロンドン（Ｃｏｍｐ＠ｎｄｌｕｍ
ｏｆ ５ｏｉｌ Ｆｕｎｇ、Ａｃａｄ＠ｍｌｅ 。
ｃｏｎｎ＠ｃｔｌｏｎ ）を形成すること、並びに分
離直後には、トマト茎葉のエキス５０％を加えた寒天培
地上で担子胞子の形成が認められ、担子器は太い沌、棒
形ないし長卵形で、７〜９Ｘ４〜５ ｐｒｎ％担子柄は
長さ２．５〜４．０μｍ、担子胞子は卵形ないし太いｚ
ｆＬ棒形で先端部が細くなっていた（大きさ４．５〜６
．５Ｘ３．５〜４．５μｍ）等の観察結果に基づき、ク
ー。エッチ、トムシュ（Ｋ、ｌ（、Ｄｏｍ＋ｓｅｈ ）
らの「コンベンゾイウム オプ ソイルフンギイ」、ア
カデミツク プレス、ロンドン（Ｃｏｍｐ＠ｎｄｌｕｍ
ｏｆ ５ｏｉｌ Ｆｕｎｇ、Ａｃａｄ＠ｍｌｅ 。
Ｐｒｅｓｓ、Ｌｏｎｄｏｎ （１９８０） ） 、北島
らの「原色作物病害図説」、第３版、養賢堂、シー、エ
ル、バロン（Ｇ、Ｌ、Ｂａｒｒｏｎ ）の［ザグネラ
オプ ハイフオマイセテス フロムフィル」、ウィリア
ムス アンド ゥイルキンス、バルチモア（Ｔｈｅ Ｇ
ｅｎｅｒａ ｏｆＨｙｐｈｏｍｙｅｅｔＩＩｓ ｆｒｏ
ｍ Ｓｏ口＋Ｗ１１１ ｉ ａｍａ ＆ Ｗｌ ｌｋ
Ｉｎｓ ｌＢａｌｔｉｍｏｒｅ （１９６８） ）ｓ
フイトノＱソロシー （Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇ
ｙ ）＋５１ ＋ １０７〜１２８（１９６１）等によ
って検索し、本菌株は、コルテイシウム・ロルフシイ（
Ｃｏｒｔｉｃｌｕｍｒｏｌｆａｉｉ ）に属するもので
おると同定した。
らの「原色作物病害図説」、第３版、養賢堂、シー、エ
ル、バロン（Ｇ、Ｌ、Ｂａｒｒｏｎ ）の［ザグネラ
オプ ハイフオマイセテス フロムフィル」、ウィリア
ムス アンド ゥイルキンス、バルチモア（Ｔｈｅ Ｇ
ｅｎｅｒａ ｏｆＨｙｐｈｏｍｙｅｅｔＩＩｓ ｆｒｏ
ｍ Ｓｏ口＋Ｗ１１１ ｉ ａｍａ ＆ Ｗｌ ｌｋ
Ｉｎｓ ｌＢａｌｔｉｍｏｒｅ （１９６８） ）ｓ
フイトノＱソロシー （Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇ
ｙ ）＋５１ ＋ １０７〜１２８（１９６１）等によ
って検索し、本菌株は、コルテイシウム・ロルフシイ（
Ｃｏｒｔｉｃｌｕｍｒｏｌｆａｉｉ ）に属するもので
おると同定した。
なお、本菌株は、トマトの茎から分離されたものでるる
か、コルテイシウム・ロル７シイは％「コップコウヤク
タケ」あるいは「白組病菌」の和名を有し、植物病原菌
の１種で。
か、コルテイシウム・ロル７シイは％「コップコウヤク
タケ」あるいは「白組病菌」の和名を有し、植物病原菌
の１種で。
担子菌類に属する。
異名同種として、ペリクラリア・ロルフシイ（Ｐｅ１ｌ
ｉｃｕｌａｒｌａ ｒｏｌｆｍｉｌ ）、ボトリオバ７
ゾウム・ロルフシイ（Ｂｏｔｒｙｏｂａａｉｄｌｕｒｎ
ｒｏｌｆａｉｌ ） 、フルテイシウム・セントリフガ
ム（Ｃｏｒｔｌｃｌｕｍ ｃ＠ｎｔｒｉｆｕｇｕｍ ）
、アナリア０ロルフシイ（Ａｔｈｅｌｉａ ｒｏｌｆｉ
ｉｉ ）などがあり、また本菌株の不完全世代はスクレ
ロテイウム゛０ルフシイ（５ｃｌａｒｏ口ｕｍ ｒｏｌ
ｆａ日）と呼ばれている。
ｉｃｕｌａｒｌａ ｒｏｌｆｍｉｌ ）、ボトリオバ７
ゾウム・ロルフシイ（Ｂｏｔｒｙｏｂａａｉｄｌｕｒｎ
ｒｏｌｆａｉｌ ） 、フルテイシウム・セントリフガ
ム（Ｃｏｒｔｌｃｌｕｍ ｃ＠ｎｔｒｉｆｕｇｕｍ ）
、アナリア０ロルフシイ（Ａｔｈｅｌｉａ ｒｏｌｆｉ
ｉｉ ）などがあり、また本菌株の不完全世代はスクレ
ロテイウム゛０ルフシイ（５ｃｌａｒｏ口ｕｍ ｒｏｌ
ｆａ日）と呼ばれている。
コルテイシウム・ロルフシイに属する本菌株に類似の菌
株としてコルテイシウム・ロルフシイＩＦ０４８７８若
しくはＩＦＯ６１４６が挙げられるが、これらのＩＦＯ
株と本菌株を形態的に比較すると以下の点で相違してい
る。
株としてコルテイシウム・ロルフシイＩＦ０４８７８若
しくはＩＦＯ６１４６が挙げられるが、これらのＩＦＯ
株と本菌株を形態的に比較すると以下の点で相違してい
る。
＆）本菌株の菌核は小粒であるが、均一な大きさのほぼ
球形を示しているのに対１．． ＩＦＯ株はその大き
さに拡がり（０，８〜３．５ ｍｍ ）がめり、変形し
た球状を示す。
球形を示しているのに対１．． ＩＦＯ株はその大き
さに拡がり（０，８〜３．５ ｍｍ ）がめり、変形し
た球状を示す。
ｂ）本菌株の菌核は９ｃ！Ｌシヤーレ中に３００〜５０
０個（平均５〜８個／ ａｎ２ ）程度生成するのに対
し、ＩＦＯ株は１０〜１００個（平均０．２〜２個／ｃ
ｍりと少ない。
０個（平均５〜８個／ ａｎ２ ）程度生成するのに対
し、ＩＦＯ株は１０〜１００個（平均０．２〜２個／ｃ
ｍりと少ない。
以上の特性より、本菌株は新規な菌株と判断される。従
って、本発明者は、本菌株を公知菌株と区別するために
、フルテイシウム・０７１７７４人ＨＵ９６２７ （Ｃ
ｏｒｔｉｅｌｕｍ ｒｏｌｆｓｉｌＡＨＵ９６２７）と
命名し、工業技術院微生物工業技術研究所に受託番号微
工仙菌寄＠８５１４号（ｙｇＲＭｐ−８５１４）として
寄託した。
って、本発明者は、本菌株を公知菌株と区別するために
、フルテイシウム・０７１７７４人ＨＵ９６２７ （Ｃ
ｏｒｔｉｅｌｕｍ ｒｏｌｆｓｉｌＡＨＵ９６２７）と
命名し、工業技術院微生物工業技術研究所に受託番号微
工仙菌寄＠８５１４号（ｙｇＲＭｐ−８５１４）として
寄託した。
本発明に使用可能力無蒸煮澱粉分解酵素（以下本酵素と
称す）を得るには、前記菌株を栄養源含有培地に接種し
、常法に従って培養し、該培養物か３ら採取することに
より行われる。
称す）を得るには、前記菌株を栄養源含有培地に接種し
、常法に従って培養し、該培養物か３ら採取することに
より行われる。
本酵素生産株としては、上記ＡＨυ９６２７株はもとよ
り、その人工変異株あるいは自然変異株であっても本酵
素を生産する能力を有するものであればすべて本発明に
使用することができる。
り、その人工変異株あるいは自然変異株であっても本酵
素を生産する能力を有するものであればすべて本発明に
使用することができる。
上記ＡＨＵ ９６２７株の人工変異株は、例えば紫外線
照射、コバルト６０照射、化学変異誘起剤処理等により
容易に得ることができる。
照射、コバルト６０照射、化学変異誘起剤処理等により
容易に得ることができる。
これらの菌株の培養法としてｔｒｉ、通常の担子菌の培
養法、例えば液体培養、固体培養等が用いられる。炭素
源としては、バレイショ、キャラサバ、米その他の無蒸
煮澱粉や液化澱粉；白糠；皺；犬豆粉：コーンミール等
；マルトース、 ラクトース、シュクロース等の二ｍ
ａ；グルコース、フラクトース、マンノース等の単糖類
；デキス） ＩＪン等が使用可能である。就中、還元糖
が培地中に２（ＩＨｉ／ｍ／以上となると、酵素生産が
抑制てれるので、高濃度での還元糖の蓄積の少ない無蒸
煮のバレイショ澱粉が好適である。
養法、例えば液体培養、固体培養等が用いられる。炭素
源としては、バレイショ、キャラサバ、米その他の無蒸
煮澱粉や液化澱粉；白糠；皺；犬豆粉：コーンミール等
；マルトース、 ラクトース、シュクロース等の二ｍ
ａ；グルコース、フラクトース、マンノース等の単糖類
；デキス） ＩＪン等が使用可能である。就中、還元糖
が培地中に２（ＩＨｉ／ｍ／以上となると、酵素生産が
抑制てれるので、高濃度での還元糖の蓄積の少ない無蒸
煮のバレイショ澱粉が好適である。
窒素源としては、コーンステイーｆ ＩＪシカ−Ｃ８Ｌ
）、 麦Ｆエキス、カゼイン、肉エキス、４１トン、
無機アンモニウム塩等が団用可能であるが、粘質物を生
成しない？リペｆトンが特に有効でるる。
）、 麦Ｆエキス、カゼイン、肉エキス、４１トン、
無機アンモニウム塩等が団用可能であるが、粘質物を生
成しない？リペｆトンが特に有効でるる。
また、 ＫＨ２ＰＯ４、ＭｇＳＯ４、Ｆ ａ ＳＯ４、
ＭｎＳＯ４。
ＭｎＳＯ４。
（ａ Ｃ１１、ＣｏＣ４Ｔｈ ＫＯ２ＮａＣ１，などの
無機塩類や有機微量要素、でらにツイーン４０％ ツイ
ーン８０、ス／Ｑン８０等の界面活性剤を必要に応じて
適宜量を加える事ができる。
無機塩類や有機微量要素、でらにツイーン４０％ ツイ
ーン８０、ス／Ｑン８０等の界面活性剤を必要に応じて
適宜量を加える事ができる。
培養は、上記栄養源等を添加した培地てて、１５〜３０
″Ｃ１好ましくは２７℃付近で行なわれ、５〜１ｏ日間
の培養で充分な酵素の産生が行なわれる。
″Ｃ１好ましくは２７℃付近で行なわれ、５〜１ｏ日間
の培養で充分な酵素の産生が行なわれる。
培養液または抽出液を直接酵素液として用いる事も可能
であるが、培養ｐ液、菌体、培養湯液濃縮物またはこれ
らより硫安、食塩等による塩析；イオン交換タロマドグ
ラフィー；等電点沈澱；溶媒分画；散層りロマトグラフ
イーなどの精製法の単独又は組合せにより得られた部分
精製、ａ製標品も用いる事ができる。
であるが、培養ｐ液、菌体、培養湯液濃縮物またはこれ
らより硫安、食塩等による塩析；イオン交換タロマドグ
ラフィー；等電点沈澱；溶媒分画；散層りロマトグラフ
イーなどの精製法の単独又は組合せにより得られた部分
精製、ａ製標品も用いる事ができる。
得られた本酵素は以下のような酵素学的諸性質を有する
。
。
■ 作用ｐＨ
２，０〜７．０、好適範囲は４．０〜４．５である。
生澱粉では４．０．糊化澱粉でハ４．５が好適である。
安定ｐＨは３．０〜７．５、好ましくは４．０〜５．０
である。
である。
（２）作用温度
０．０５Ｍの酢酸緩衝液（ｐＨ４，５）中での作用温度
は５０〜７０℃、好ましくは６０〜６５℃であるが、安
定性面を考慮すると２０〜６０℃、好ましくは４０〜５
０℃である。
は５０〜７０℃、好ましくは６０〜６５℃であるが、安
定性面を考慮すると２０〜６０℃、好ましくは４０〜５
０℃である。
■ 各種無蒸煮澱粉に対する作用
本酵素を米、小麦、サツマイモ、バレイショ、ワキ７−
コー７、タピオカ、サゴの各澱粉（５％濃度）にｐＨ４
，０，４５℃で作用式せたところ、澱粉の種類によらず
糖化嘔れているのがみられ、高速液タロによる分析から
澱粉のほとんどがグルコースに転換されている事が確認
できた。また糊化澱粉塊化活性に対する生澱粉糖化活性
の比は％ＰＨ％ 反応温度で若干異なるが４０℃で１．
５〜２．５である。
コー７、タピオカ、サゴの各澱粉（５％濃度）にｐＨ４
，０，４５℃で作用式せたところ、澱粉の種類によらず
糖化嘔れているのがみられ、高速液タロによる分析から
澱粉のほとんどがグルコースに転換されている事が確認
できた。また糊化澱粉塊化活性に対する生澱粉糖化活性
の比は％ＰＨ％ 反応温度で若干異なるが４０℃で１．
５〜２．５である。
更に、本酵素と前記のコルテイシウム・ロルフンイＩＦ
０４８７８株の産生ずる酵素（以下ＩＦ０４８７８株酵
素と称す）の酵素学的差異を以下に示す。すなわち、両
酵素の酵素学的差異を明らかにするために、高濃度無蒸
煮澱粉糖化試験を行なった。両株の培養ｇを６０％硫安
塩析により部分精製したものを酵素液とし、３０％トウ
モロコシ澱粉をｐＨ３，０又は４．５；温度３５，４５
，５５℃の各条件で糖化を行なった。その結果を表１に
示す。表中の値は糖化率％を表わす。
０４８７８株の産生ずる酵素（以下ＩＦ０４８７８株酵
素と称す）の酵素学的差異を以下に示す。すなわち、両
酵素の酵素学的差異を明らかにするために、高濃度無蒸
煮澱粉糖化試験を行なった。両株の培養ｇを６０％硫安
塩析により部分精製したものを酵素液とし、３０％トウ
モロコシ澱粉をｐＨ３，０又は４．５；温度３５，４５
，５５℃の各条件で糖化を行なった。その結果を表１に
示す。表中の値は糖化率％を表わす。
以下余白
表１より１本酵素は３５℃、４５℃ではいずれのｐＨに
おいてもほぼ１００％の糖化を、５５℃では９０％の糖
化を示したが、 ＩＦＯ株酵素は３５℃、ＰＨ４，５
で約７０％の糖化を示したが、４５℃、５５℃では４０
〜５０％の糖化がみられたのみでめった。以上の結果か
ら本酵素はＩＦ０４８７８株酵素に比して糖化力が強く
、耐熱耐酸性度が高い新規な酵素である。
おいてもほぼ１００％の糖化を、５５℃では９０％の糖
化を示したが、 ＩＦＯ株酵素は３５℃、ＰＨ４，５
で約７０％の糖化を示したが、４５℃、５５℃では４０
〜５０％の糖化がみられたのみでめった。以上の結果か
ら本酵素はＩＦ０４８７８株酵素に比して糖化力が強く
、耐熱耐酸性度が高い新規な酵素である。
本発明を実施するには、無蒸煮の澱粉質に上記本酵素を
作用嘔せることにより行なわれる。
作用嘔せることにより行なわれる。
本発明において使用式れる澱粉質としては。
澱粉含有植物なら特に限定されないが、米、麦コーン、
ワキシーコーン、バレイクヨ、せ抱、タピオカ、サゴ等
由来の澱粉あるいはこれらの澱粉含有物自体を挙げるこ
とができる。
ワキシーコーン、バレイクヨ、せ抱、タピオカ、サゴ等
由来の澱粉あるいはこれらの澱粉含有物自体を挙げるこ
とができる。
反応は、澱粉質に、該澱粉質を糖化するに光分な量の本
酵素を添加し、本酵素が活性を発揮する条件下で行なわ
れる。すなわち、ｐＨ２，０〜７−Ｏｓ好ましく Ｈ４
，０〜４．５ Ｏ緩衝液中、２０〜６０”Ｃ１好ましく
は４０〜５０℃の温度で行なうのが好ましい。緩衝液と
しては、所望のｐＨ範囲に保てるものであれば特に制限
されないが、酢酸、クエン酸、リンｒＲ，マクイルペイ
ン氏（Ｍｅｌｌｖａｌｎｅ ）、トリス・マレインｔＩ
Ｒ等の緩衝液等が挙げられる。
酵素を添加し、本酵素が活性を発揮する条件下で行なわ
れる。すなわち、ｐＨ２，０〜７−Ｏｓ好ましく Ｈ４
，０〜４．５ Ｏ緩衝液中、２０〜６０”Ｃ１好ましく
は４０〜５０℃の温度で行なうのが好ましい。緩衝液と
しては、所望のｐＨ範囲に保てるものであれば特に制限
されないが、酢酸、クエン酸、リンｒＲ，マクイルペイ
ン氏（Ｍｅｌｌｖａｌｎｅ ）、トリス・マレインｔＩ
Ｒ等の緩衝液等が挙げられる。
反応に用いる本酵素は５本酵素を製造するにあたっての
培養液、菌体抽出液、培養涙液、これらの部分精製品ま
たｒｉ精製標品のうちいずれを使用してもよいが、培ｔ
−Ｐ液の部分精製品が好ましい。ここで、原料澱粉を糖
化するに充分な量を決定するにあたっては、以下の活性
測定法に従って使用する酵素液の活性を予め測定してお
くのが便利である。
培養液、菌体抽出液、培養涙液、これらの部分精製品ま
たｒｉ精製標品のうちいずれを使用してもよいが、培ｔ
−Ｐ液の部分精製品が好ましい。ここで、原料澱粉を糖
化するに充分な量を決定するにあたっては、以下の活性
測定法に従って使用する酵素液の活性を予め測定してお
くのが便利である。
１）無蒸煮澱粉糖化活性測定法
２．５％コメ（ウルチ）＃粉、０．１Ｍ酢酸緩衝液（１
）Ｈ４，５）の条件で酵素を作用させる。
）Ｈ４，５）の条件で酵素を作用させる。
４０℃、１時間反応きせ、反応液中に生成する還元糖を
ＤＮＳ法〔シャーナル オプ バイオロジカル ケミス
トリー（Ｊ、Ｂｌｏｌ、Ｃｈ・ｍ。
ＤＮＳ法〔シャーナル オプ バイオロジカル ケミス
トリー（Ｊ、Ｂｌｏｌ、Ｃｈ・ｍ。
、３１．７１０（１９６７））により定量する。本条件
下で１分間に１μｍｏ ｌｅのグルコースヲ生ずる酵素
量を１単位（ＩＵ）とした。
下で１分間に１μｍｏ ｌｅのグルコースヲ生ずる酵素
量を１単位（ＩＵ）とした。
２）グルコアミラーゼ活性測定法
０．５％可溶性澱粉％０．０５Ｍ酢酸緩衝液（ｐＨ４，
５）の条件で酵素を作用嘔せる。４゜°Ｃ１３０分間の
反応により生成する還元糖をＤＮＳ法により定量し、本
条件下で１■／−のグルコースを生成する酵素量を１単
位（Ｉ ＣＵ ）とした。
５）の条件で酵素を作用嘔せる。４゜°Ｃ１３０分間の
反応により生成する還元糖をＤＮＳ法により定量し、本
条件下で１■／−のグルコースを生成する酵素量を１単
位（Ｉ ＣＵ ）とした。
なお、上記２）の活性は、他のグルコースアミラーゼと
の比較試験の時にのみ使用するものである。
の比較試験の時にのみ使用するものである。
） 本発明方法は、１０％以上の高濃度澱粉質を無蒸
煮で直接糖化でき、反応条件も高温かつ酸性側で可能で
あることから雑菌汚染防除の面からも極めて有用な澱粉
質糊化法でろる。
煮で直接糖化でき、反応条件も高温かつ酸性側で可能で
あることから雑菌汚染防除の面からも極めて有用な澱粉
質糊化法でろる。
更に、アルコール又は有機酸発酵性微生物との併用によ
りアルコール又は有機酸製造においても有用な手段とな
る。
りアルコール又は有機酸製造においても有用な手段とな
る。
〔実施例〕
次に実施例を挙げて本発明を説明する。
実施例１
フルテイシウム・ロル７シイ（Ｃｏｒ口ａｌｕｍｒｏｌ
ｆｓｌｉ ） ＡＨＶ９６２７ （微工仙菌寄第８５１
４号）の菌核を０．１％酵母エキス含有？テトデキスト
ロース寒天培地平板に３個接種する。２７℃、５日間培
養後本グレート２枚を５０−の滅菌水とともにホモジナ
イズする。生産培地（エチレンオキシド別殺菌済バレイ
ショ無蒸煮澱粉４％、？リペグトン３％、硝酸アンモニ
ウム０．３％、硫酸マグネシウム０．１８％、ライ−７
８００，１％、ｐＨ６，０）を１００−含む５００．ｚ
坂ロフラスコに上記ホモジナイズ菌体を３〜５％接種し
、２７°Ｃ１７日間培養する。培参液を濾過して得られ
た培養ｐ液を限外濃縮、透析した標品を酵素液（４４ｕ
／ｒＩＴりとする。
ｆｓｌｉ ） ＡＨＶ９６２７ （微工仙菌寄第８５１
４号）の菌核を０．１％酵母エキス含有？テトデキスト
ロース寒天培地平板に３個接種する。２７℃、５日間培
養後本グレート２枚を５０−の滅菌水とともにホモジナ
イズする。生産培地（エチレンオキシド別殺菌済バレイ
ショ無蒸煮澱粉４％、？リペグトン３％、硝酸アンモニ
ウム０．３％、硫酸マグネシウム０．１８％、ライ−７
８００，１％、ｐＨ６，０）を１００−含む５００．ｚ
坂ロフラスコに上記ホモジナイズ菌体を３〜５％接種し
、２７°Ｃ１７日間培養する。培参液を濾過して得られ
た培養ｐ液を限外濃縮、透析した標品を酵素液（４４ｕ
／ｒＩＴりとする。
米、小麦、ワキシーコーン、りぎ才力、甘へ。
サゴ、バレイショ澱粉を１ｇずつ１００ｍ／容三角フラ
スコに秤量し、０．１Ｍ酢酸緩衝液（ｐＨ４，０）１０
ｍ７、上記酵素液１０−を加え４５℃で反応させＤＮＳ
法により反応液の粘化率を測定したところ、図１に示す
如く米、小麦、ワキシーコーン、タピオカ、せ包、サゴ
澱粉は１２時間で１００％の糖化がみられた。またバレ
イショ澱粉では１２時間で５０％、２４時間で８０％の
糖化がみられた。
スコに秤量し、０．１Ｍ酢酸緩衝液（ｐＨ４，０）１０
ｍ７、上記酵素液１０−を加え４５℃で反応させＤＮＳ
法により反応液の粘化率を測定したところ、図１に示す
如く米、小麦、ワキシーコーン、タピオカ、せ包、サゴ
澱粉は１２時間で１００％の糖化がみられた。またバレ
イショ澱粉では１２時間で５０％、２４時間で８０％の
糖化がみられた。
実施例２
トウモロコシ澱粉を乾物として４０ｇ秤量し、１００−
に定容する。この澱粉液１５１１Ｉｌ、実施例１により
調製した酵素液（２４０ＧＵ／−）Ｚ＊、１Ｍ酢酸緩衝
液（ｐＨ４，５）２ゴを加え全容を２０１ｎｌとし、４
５℃で反応させた。糖化率をＤＮＳ法で定量したところ
図２に示す如く、２４時間で７３％、４８時間で９８％
の糊化がみられた。市販のグルコアミラーゼ製剤につい
て同様に検討したところ。
に定容する。この澱粉液１５１１Ｉｌ、実施例１により
調製した酵素液（２４０ＧＵ／−）Ｚ＊、１Ｍ酢酸緩衝
液（ｐＨ４，５）２ゴを加え全容を２０１ｎｌとし、４
５℃で反応させた。糖化率をＤＮＳ法で定量したところ
図２に示す如く、２４時間で７３％、４８時間で９８％
の糊化がみられた。市販のグルコアミラーゼ製剤につい
て同様に検討したところ。
リグゲス起源のものは４８時間で７２％、アスペルギル
ス起源のものは５８％の糖化率であった。
ス起源のものは５８％の糖化率であった。
実施例３
生カンショを直径１α、厚さ０．５ ｃＩＬの円筒状に
切断したもの４０９を５００ ｍｌ容フラスコに取り、
実施例１により調製した酵素液（２２Ｕ／ｍ／）を１０
０−加え、ｐＨ４，Ｏｓ４０℃で反応きせたとこる％４
８時間でイモの組織はスボンゾ状を呈し、澱粉質がほと
んど糖化嘔れているのが観察され、さらに反応液中に約
９．６９／１００ＷＬｌのグルコースの生成が確認でれ
た。
切断したもの４０９を５００ ｍｌ容フラスコに取り、
実施例１により調製した酵素液（２２Ｕ／ｍ／）を１０
０−加え、ｐＨ４，Ｏｓ４０℃で反応きせたとこる％４
８時間でイモの組織はスボンゾ状を呈し、澱粉質がほと
んど糖化嘔れているのが観察され、さらに反応液中に約
９．６９／１００ＷＬｌのグルコースの生成が確認でれ
た。
実施例４
バレイショ澱粉（局方）を乾物４０ｇ測り、耐熱性α−
アミラーゼを澱粉に対し％０．２重量％＊ Ｎ＆ＣＺ
Ｏ−１９ｈ ｃａ（ｏｈ）、 ０．２ ’ 、０− Ｉ
Ｍ酢酸緩衝液（ｐＨ６，０） １０ｍを加えて１０〇
−に定容し、９５〜１００℃の沸とう水中で１０分間加
熱した恢オートクレーブして４０％澱粉液化液を調整す
る（ＤＥＩ：３．５％）この液化澱粉液１５−１実施例
１と同様に調製した酵素液８ＧＵ／ｆ澱粉ＩＭ酢酸緩衝
液（ｐ）１４．５）２ｍｌを加え全容を２０ｍ／として
４５℃で反応を行なった。その結果４８時間でほぼ１０
０％の糖化がみられた。
アミラーゼを澱粉に対し％０．２重量％＊ Ｎ＆ＣＺ
Ｏ−１９ｈ ｃａ（ｏｈ）、 ０．２ ’ 、０− Ｉ
Ｍ酢酸緩衝液（ｐＨ６，０） １０ｍを加えて１０〇
−に定容し、９５〜１００℃の沸とう水中で１０分間加
熱した恢オートクレーブして４０％澱粉液化液を調整す
る（ＤＥＩ：３．５％）この液化澱粉液１５−１実施例
１と同様に調製した酵素液８ＧＵ／ｆ澱粉ＩＭ酢酸緩衝
液（ｐ）１４．５）２ｍｌを加え全容を２０ｍ／として
４５℃で反応を行なった。その結果４８時間でほぼ１０
０％の糖化がみられた。
図１は、本発明方法（実施例１）によって各種無蒸煮澱
粉を糊化した場合の糖化率と反応時間との関係を示す図
面である。 図２は、実施例２において無蒸煮トウモロコシ澱粉を各
樵酵素を用いて糖化した場合の糖化率と反応時間との関
係を示す図面である。 以上 四 が 餅 ！ 図 ２ ヒ→：本発明方法 ト９ ：リゾジス起源酵素使用 酔４：アスペルギルス起源酵素使用 ６、補正の対象 手続補正１１Ｆ（自発） 昭和６１年 １月 ８１１
粉を糊化した場合の糖化率と反応時間との関係を示す図
面である。 図２は、実施例２において無蒸煮トウモロコシ澱粉を各
樵酵素を用いて糖化した場合の糖化率と反応時間との関
係を示す図面である。 以上 四 が 餅 ！ 図 ２ ヒ→：本発明方法 ト９ ：リゾジス起源酵素使用 酔４：アスペルギルス起源酵素使用 ６、補正の対象 手続補正１１Ｆ（自発） 昭和６１年 １月 ８１１
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １、無蒸煮の澱粉質に、コルテシウム・ロルフシイＡＨ
Ｕ９６２７（Ｃｏｒｔｉｃｉｕｍ ｒｏｌｆｓｉｉ Ａ
ＨＵ９６２７）〔微工研菌寄第８５１４号〕またはその
変異株の生産する澱粉質分解酵素を作用させることを特
徴とする澱粉質の無蒸煮糖化法。 ２、澱粉質分解酵素として、該酵素を含有する培養濾液
画分を使用する特許請求の範囲第１項記載の澱粉質の無
蒸煮糖化法。
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60265261A JPS62126989A (ja) | 1985-11-26 | 1985-11-26 | コルテイシウム属担子菌の生産する酵素を用いた澱粉質の無蒸煮糖化法 |
| US06/866,296 US4727026A (en) | 1985-11-26 | 1986-05-23 | Method for direct saccharification of raw starch using enzyme produced by a basidiomycete belonging to the genus Corticium |
| CA000510292A CA1247032A (en) | 1985-11-26 | 1986-05-29 | Method for direct saccharification of raw starch using enzyme produced by a basidiomycete belonging to the genus corticium |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60265261A JPS62126989A (ja) | 1985-11-26 | 1985-11-26 | コルテイシウム属担子菌の生産する酵素を用いた澱粉質の無蒸煮糖化法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62126989A true JPS62126989A (ja) | 1987-06-09 |
| JPH0568237B2 JPH0568237B2 (ja) | 1993-09-28 |
Family
ID=17414771
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60265261A Granted JPS62126989A (ja) | 1985-11-26 | 1985-11-26 | コルテイシウム属担子菌の生産する酵素を用いた澱粉質の無蒸煮糖化法 |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4727026A (ja) |
| JP (1) | JPS62126989A (ja) |
| CA (1) | CA1247032A (ja) |
Families Citing this family (104)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5604128A (en) * | 1991-08-13 | 1997-02-18 | Sankyo Company, Limited | Isolated cultures of Pestalotiopsis funerea IFO 5427 and Pestalotiopsis negleta FERM BP-3501 |
| EP0528612A3 (en) * | 1991-08-13 | 1993-06-23 | Sankyo Company Limited | Amylase capable of digesting raw starch |
| JP2005523689A (ja) * | 2002-02-08 | 2005-08-11 | ジェネンコー・インターナショナル・インク | 炭素基質からエタノールを生成する方法 |
| RU2315811C2 (ru) * | 2002-02-14 | 2008-01-27 | Новозимс А/С | Способ обработки крахмала |
| AU2004219649A1 (en) * | 2003-03-10 | 2004-09-23 | Broin And Associates, Inc. | Method for producing ethanol using raw starch |
| DE04718914T1 (de) * | 2003-03-10 | 2006-02-23 | Novozymes A/S | Verfahren zur herstellung von alkohol |
| US20050233030A1 (en) * | 2004-03-10 | 2005-10-20 | Broin And Associates, Inc. | Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation |
| CN100506997C (zh) | 2003-05-30 | 2009-07-01 | 诺维信公司 | 酒精产品生产方法 |
| US20060270007A1 (en) * | 2003-06-13 | 2006-11-30 | Nielsen Anders V | Method for producing glucoamylases and their uses |
| US7618795B2 (en) | 2003-06-25 | 2009-11-17 | Novozymes A/S | Starch process |
| DK1675941T3 (da) * | 2003-06-25 | 2013-08-26 | Novozymes As | Polypeptider med alfa-amylaseaktivitet og polynukleotider, der koder for dem |
| JP2007526748A (ja) | 2003-06-25 | 2007-09-20 | ノボザイムス アクティーゼルスカブ | 澱粉加工用酵素 |
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| US20080113418A1 (en) * | 2004-01-16 | 2008-05-15 | Novozymes A/S | Processes for Producing a Fermantation Product |
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| KR101222413B1 (ko) * | 2004-05-27 | 2013-01-16 | 다니스코 유에스 인크. | 아스퍼질러스 가와치 산-안정성 알파 아밀라제의 이종 발현및 입상 전분 가수분해에서의 이용 |
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| WO2006119386A2 (en) * | 2005-05-02 | 2006-11-09 | Broin And Associates, Inc. | Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation |
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| ES2728308T3 (es) | 2006-03-22 | 2019-10-23 | Novozymes North America Inc | Procesos de fermentación |
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| BRPI0713389A2 (pt) | 2006-06-21 | 2012-04-17 | Novozymes North America, Inc. e Novozymes A/S | processo para desengomagem e lavagem combinadas de um tecido engomado, e, composição |
| EP3219804B1 (en) | 2007-04-24 | 2019-07-17 | Novozymes North America, Inc. | Detoxifying pre-treated lignocellulose-containing materials |
| EP2191061B1 (en) | 2007-09-03 | 2013-05-22 | Novozymes A/S | Detoxifying and recycling of washing solution used in pretreatment of lignocellulose-containing materials |
| JP4530057B2 (ja) * | 2008-02-13 | 2010-08-25 | Ｔｄｋ株式会社 | 誘電体粉末の製造方法 |
| WO2009140504A1 (en) * | 2008-05-16 | 2009-11-19 | Novozymes A/S | Polypeptides having alpha-amylase activity and polynucleotides encoding same |
| EP2364363A2 (en) | 2008-06-23 | 2011-09-14 | Novozymes A/S | Processes for producing fermentation products |
| US20110165617A1 (en) | 2008-09-30 | 2011-07-07 | Novozymes North America, Inc. | Enzymatic Hydrolysis Of Pretreated Lignocellulose-Containing Material With Distillers Dried Grains |
| WO2010059413A2 (en) | 2008-11-20 | 2010-05-27 | Novozymes, Inc. | Polypeptides having amylolytic enhancing activity and polynucleotides encoding same |
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