JPS61173780A - 融合遺伝子産物を発現させるための、改良トリプトフアンオペロン誘導体 - Google Patents

融合遺伝子産物を発現させるための、改良トリプトフアンオペロン誘導体

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JPS61173780A
JPS61173780A JP60216080A JP21608085A JPS61173780A JP S61173780 A JPS61173780 A JP S61173780A JP 60216080 A JP60216080 A JP 60216080A JP 21608085 A JP21608085 A JP 21608085A JP S61173780 A JPS61173780 A JP S61173780A
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ジヨージ・ルイス・ロング
ブリジツト・エリザベス・シヨナー
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、短縮された、改良トリプトファンオペロン誘
導体に関するものである。
大腸菌(Esherichia  coli )のトリ
プトファン(trp)オペロンは、事実上、アミノ酸代
謝、オペロンの構造、並びに遺伝子の構造および機能に
関する研究におけるあらゆる場合に用いられできた。こ
れまでにミオザリ(Miozzari )らは、trp
プロモーター−オペレーター、並びに、リーダー配列お
よびtrpE遺伝子の一部を含有しているプラスミドを
組立てたしジャーナル・オブ・ハクテリオロジイ(J、
Bacteriol  )  133 :1457−1
446 (1978))。リーダーペプチドのカルボキ
シ末端部分、リーダー配列の全アテニユエイター領域、
およびtrpEのアミノ末端部分の暗号配列を欠失除去
することにより、融合遺伝子産物であるLEが得られる
。この様な欠失によって得られたtrp  オペロン誘
導体は、LEペプチドと、研究または商業的価値のある
ポリペプチドからなる融合遺伝子産物を生産するのに有
用である。
本発明はミオザリによって組立てられた上記の修飾され
たtrp  オペロンの改良誘導体に関するものである
。本発明の改良誘導体は、LE暗号領域に欠失を生ぜし
めることにより、得られた。充分に特性化された2つの
欠失、即ち、trpLElおよびtrpLE2が特に有
用である。大腸菌内で融合遺伝子産物を発現させるため
に、これらtrpLElおよびtrpLE2のいずれか
を含有する発現ベクターを組立てた、インシユリン様成
長因子工や■の様な、低分子量のタンパク質と融合させ
た場合、これらの改良LEタンパク質は本来のLEタン
パク質がそのまま残存t、L場合に比べて、融合遺伝子
産物内ではるかに小さいフラクションとして存在するこ
とになる。その結果、所望のタンパク質をより多く回収
できることになるので、上記のことは極めて有益である
本発明はまた、インシュリン様成長因子■の遺伝子をコ
ードしている新規なりNA配列およびインシュリン様成
長因子工の遺伝子をコードしている新規な制限フラグメ
ントを提供するものである。
さらCζ、本発明は、前記の各DNA配列を含有してい
る発現ベクターおよび形質転換体をも゛包含する。
本発明は、一般的にヨーロッパ特許公開番号第0036
776A2号(1981年9月30日公開)に関連して
いる。上記の出願では、発現システムとして有用とされ
ていた修飾トリプトファンオペロン(ミオザリら、19
78)を用いたプラスミドが開示された。この発明に係
る欠失により、トリプトファンオペロンの脱抑制が最大
となり、ポリペプチドの発現が高められた。しかしなが
ら、この出願には、本発明で提供する修飾トリプトファ
ンオペロンは開示されていないばかりか、それらのオペ
ロンを、発現ベクターや発現手段を改良するための重要
な要素として利用することについて示唆するものも含ま
れていない。
本発明はまた、大腸菌または近縁生物を用いて合成イン
シュリン様成長因子工およびII(IGF工およびIG
F■)遺伝子配列をクローニングし、発現させる方法を
提供するものである。IGF工およびIGF■の如きソ
マトメジン類は、インビトロ並びにインビボで成長促進
作用を示す、重要な、ヘテロジーニアス(異種)なペプ
チド群である。それらのペプチド群は成長ホルモンの成
長促進作用を仲介するものであって、次の症状の治療;
こ有用と考えられている:即ち短小発育症、骨多孔症、
軟骨の変性、心筋詔よび骨格筋の劣化、損傷、並びにタ
ンパク質および炭水化物代謝異常などである。これまで
、IGF類はヒト血漿から単離し得たが、このヒト血漿
中にはそれらは極(少量しか存在していない。IGFの
機能に関する研究は、利用し得る純化IGFの量が一般
的に不足していたために、極めて制限されてきた。本発
明は、この様な制限を克服するものであり、組換えDN
A技術によってこれらの合成遺伝子をクローニングし、
発現させることにより、これらの重要なタンパク質を大
量生産するのに有効な方法を提供するものである。この
様な理由から、本発明は当該技術の著しい進歩を意味す
るものである。
本明細書中に開示した発明の目的に鑑みて、以下の如く
語句を定義する。
組換えDNAクローニングベクター:1またはそれ以上
のDNAセグメントを付加することができる、または既
に付加された、DNA分子からなる自律的複製可能な、
または組込み可能な物質であって、これにはプラスミド
が含まれるがこれに限定されない。
組換えDNA発現ベクター=1またはそれ以上の転写お
よび翻訳活性化配列が挿入された組換えDNAクローニ
ングベクター。
転写活性配列:DNAのmRNA転写物への転写を指令
し、または転写を与えるDNA配列つ翻訳活性化配列:
 mRNA転写物のペプチドまたはポリペプチドへの翻
訳を与えるDNA配列。
リーダー配列:オペロン中の、転写活性化配列と構造遺
伝子(類)との間のセグメン):lpオペロン中では、
リーダーペプチドをコードしているリーダー配列の部分
TrpLE:)リプトファンオペロンの一部、即ち、プ
ロモーター、オペレーター、並びにリーダーペプチドの
アミノ末端部分の暗号配列およびtrpE のカルボキ
シ末端部分の暗号配列をコードしているDNAセグメン
ト;即ち、trpLEはLEと称される融合遺伝子産物
を発現に導くものである。
機能的ポリペプチド:回収可能な、生物活性を有するヘ
テロローガスなポリペプチドまたはその前駆物質、ヘテ
ロローガスなポリペプチドとホモローガスなポリペプチ
ドの一部または全部から成る回収可能で生物学的に活性
なポリペプチド、あるいはヘテロローガスなポリペプチ
ドと生物学的に非活性のホモローがスなポリペプチドか
ら成る回収可能で、生物学的に非活性な融合ポリペプチ
ドであって、特異的に開裂され得るもの。
制限フラグメント:1または1以上の制限酵素の作用に
よって生じた。あらゆる線状DNA配列。
融合遺伝子生成物:ホモローガスなポリペプチドの一部
または全体と融合している、回収可能な、ヘテロローガ
スなポリペプチド。
レプリコン:組換えDNAクローニングベクターおよび
組換えDNA発現ベクターの複製をコントロールする配
列。
ランチウェイレプリコン:コピー数のコントロール機構
を有していないか、またはその機構を除去することが可
能なレプリコン;その様な喪失によって、該レプリコン
が導入されたDNAの複製は非コントロール下におかれ
、DNAのコピー数は極度に増加することになる。
形質転換:宿主細胞にDNAを導入し一遺伝型を変化さ
せ、その結果、該宿主に変化をもたらすこと。
形質転換体:形質転換を受けた宿主受容細胞。
A R:アンビシリン耐性表現型。
m:カナマイシン耐性表現型。
Eに−BGH:エンテロキナーゼーウシ成長ホルモン配
列。
本発明は、プロモーター−オペレーター/リーダー/ト
リプトファンE遺伝子からなる大腸菌のトリプトファン
オペロンから、リーダーペプチドのカルボキシ末端、リ
ーダー配列のアテニユエイター領域、並びにtrpE遺
伝子の近接領域を除去したトリプトファンオペロンであ
って、約428〜約548デオキシリボヌクレオチド対
の範囲内のリーダー/トリプトファンE遺伝子配列を含
有することを特徴とする短縮された改良トリプトファン
オペロン誘導体を提供するものである。本発明はまた、
上記のDNAを含有する発現ベクターおよび形質転換体
を提供するものである。
既述した如く、本発明は、大腸菌内で様々な機能的ポリ
ペブチを発現させるために用いることができる。大腸菌
内で外来性遺伝子を発現させるためにトリプトファンオ
ペロンの調節領域(rcgulatory  regi
on )を用いることについては、多くの研究者が報告
している。現時点で利用可能なトリプトファンオペロン
を含有しているベクターの大多数が【rPリーダー配列
を含んでいる〔二F77 (Edman )ら、198
1、ネイチャー291:503:ミオザリら、1978
、ジャーナル・オブ・バクテリオロジイ(J、 Bac
teriol、)133 ニー1457 :フレイド(
Kleid)ら、ヨーロッパ特許公開番号第00367
70Ai号:およびゲラ7” /L/ (Gocdde
l )ら、1880、ネイチャー287:411)。こ
れらのベクターは発現系としては実に有用であるが、融
合遺伝子産物中に占めるtrp+7−グー誘導ポリペプ
チドの比率(%)が大きいので、所望のタンパク質を効
率良(生産する能力が制限されている。
本発明に係るtrpLElおよびtrpLE  2配列
はそれぞれ、約428および約548塩基対からなる。
trpLEl暗号鎖のヌクレオチド配列は、式: (、A ATT CACGcT GTG GTG TT
A TGGTCG GTG GTCGCT AGC,G
TG CCC,ACGCGCATCTCG ACT G
CA CGG TGCACCAAT GCT TCT 
GGCGTCAGG (:AG CCAATCGGA 
AGCTGT GGT ATG C,CT GTGCA
G C,TCGTA TAA TCA CC:G CA
T AATTCG AGT C(、CTCA AGG 
CGCACT CCCGTT (:CG GAT AA
T GTT TTT TGCTCCGACATCATA
 ACG GTT CCG GCA AATATT C
TG AAA TGA GCT GTT GACAAT
TAA TCA TCG AACTAG TTA AC
T AGTACG  CAA  GTT  CACGT
A  AAA  AGG  G丁ATCG ACA A
TG AAA GCA ATT TTCGTACTG 
AAA GGT TCA CTG GACAGA GA
TCAT TCT GTT CCG CAG TCG 
GAA GCCGACGAA ACCCGT AACA
AA GCCCGCGC丁GTA  CTG  CGC
GCT  ATT  GCCACCGCG CAT C
AT GCA CAG GAA TTCで示され、tr
pLE  2暗号鎖のヌクレオチド配列は式: %式% : : (式中、Aはデオキシアデニル、Gはデオキシグアニル
、Cはデオキシシチジル、モしてTはチミジルを表す) で示される。
上記の配列は、trpLEのLE暗号配列中の様々な領
域を内部から欠失させることにより、組立てられた。そ
の様な欠失は、以後の、所望のタンパク質の暗号遺伝子
とのライゲーションに際し、翻訳解読相が変化すること
のない様に行なわれたつLE配列の内部領域を欠失させ
ることにより、本発明に係るtrpLElおよびtrp
 L E 2配列と境を接するEcoRl 制限部位(
複数)を、以後のライゲーションのために無傷のまま残
存させた5 EcoR1部位が望ましくない場合には、
前記のtrpLElおよびtrpLE2配列を、ライゲ
ーションを容易にするためlζ常法通り修飾することも
できる。本明細書に示したtrpLE 1  およびt
rp L E 2  配列以外にも、所望の解読相を保
持して内部欠失を行うことができ、これJこよって本発
明の範囲内に含まれる種々のtrpLE配列を組立てる
ことができる。これらの配列を、ヌクレオチドの付加、
欠失または置換によって修飾し、その性質を変化させた
り、種々の特異的(ユニーク)な、または付加的な制限
部位を与えることもできる。当業者はヌクレオチドの化
学および遺伝暗号を理、解しているので、どのヌクレオ
チドが交換可能であり、特定の目的にとってどの欅な]
:)NA修飾法が望ましいかを知っている。
本明細書中で述べる欠失により、著しく短縮されたLE
ポリペプチドが得られるので、宿主が費やす総エネルギ
ー量およびアミノ酸前駆体の数を減することができ、細
胞経済および細胞効率を向へ さいポリペプチドを所望する場合には、非常に便利であ
る。当業者ならば知っていることであるが、直接的な発
現法で小さいポリペプチドを得ることは極めて来電であ
る:それ故、所望のタンパク質の回収率を高めるために
は、融合タンパク質を利用した発現系がしばしば好まし
い。LEIおよびLE2はその有用性と適応性が相まっ
て、より大きい発現成果達成の機会を与えることになる
。非常に短かいペプチドの場合には、trpLE2に含
まれている配列の様に、やや中程度の長さのLE暗号配
列の方がtrpLElに含まれている配列の様に極端に
短かいLE暗号配列よりも好ましい。
例えば、30アミノ酸から成る極めて短かいポリペプチ
ドであるインシュリンB鎖の発現効果は、trpElと
の融合の場合よりも、trPE゛2との融合の場合の方
が大きい。また、ある場合には、融合遺伝子産物のサイ
ズを小さくシ、複雑さを軽減することにより、所望のタ
ンパク質の最終的な精製が容易になる。
本発明のtrpLE配列はまた、融合遺伝子産物の化学
組成、並びにアミノ酸配列に変化をもたらすことによっ
ても寄与するところがある。例えば、trpLEl配列
にはシスティンコドンか含まれていないことから、LE
1ペプチド内(こは、確実に、内部ジスルフィド結合が
生成しないことになる。
また、trpLEl中には1個、trpLE2中には2
個しかメチオニンコドンが存在していないことから、融
合遺伝子産物の臭化シアン開裂によって生成するタンパ
ク質フラグメントの量が非改良型のtrpLEを用いた
場合に比べて少ないので、分離しなLすればならないタ
ンパク質の量が少なくてすみ;、精製にとって極めて有
利とな不。他方、既知のtrpLE配列中には7個のメ
チオニンコドンが含まれているので、融合遺伝子の臭化
シアン開裂後の精製は困電であり、時間を要することに
なる、 trp LE lまたはtrPLE2 Xクレオチド配
列のいずれかを含有している発現ベクターが組立てられ
た。上記の配列を、ウシ成長ホルモン、プロインシュリ
ン、インシュリンA鎖またはB鎖、並びにIGFIおよ
びIGFfi等の短かいタンパク質を大腸菌内で発現さ
せるために、これらタンパク質の暗号遺伝子と、個別に
融合させる。即ち、本発明は、ヘテロローガスなポリペ
プチド産物を大腸菌およびその近縁種内で発現させるた
めの組換えDNA発現ベクターであって、 a)トリプトファンオペロンのプロモーター−オペレー
ターおよび短縮されたリーダー暗号配列、b)ヘテロロ
ーガスなポリペプチドの構造遺伝子をコードしているヌ
クレオチド配列であって、トリプトファンプロモーター
−オペレーターおよび短縮されたリーダー暗号配列の下
流に位置しており、翻訳解読相内にあるヌクレオチド配
列、および C)該ベクターで形質転換された微生物内で、該ベクタ
ーを複製し、それを選択せしめるための、レプリコンお
よび選択マーカー からなるベクターを包含するものである。
本発明のベクターは、所望のタンパク質を発現させる上
で、極めて有用である。J本発明に係るtrpLElま
たはtrpLE2と所望のタンパク質の暗号遺伝子とを
融合させることにより、該所望のタンパク質の生産率を
高めることができる。細菌細胞内に有限量の生産物が蓄
積されるときには、その結果は明らかである。即ち、望
ましくない生産物(LEタンパク質)の量が減少され、
結果的に所望のタンパク質の量が増加することになる。
この様に、本発明のtrpLElおよびtrpLE2配
列を使用する本発明のベクターは、特に、商業上望まし
いタンパク質の土竜に用いるのに非常に優れたものであ
る。
発現ベクターpcZ20f;i約11kbであり、tr
pLElをコードしている遺伝子配列、IGFIの合成
遺伝子、およびランナウェイレプリコンを含有している
。プラスミドpLEBGH2は約6kbであり、trp
LE2をコードしている遺伝子配列、およびエンテロキ
ナーゼ結合ウシ成長ホルモン(EK−bGH)  をコ
ードしている遺伝子配列とを含有している。プラスミド
pcZ20およびpLEBGH2はそtL!:れ大腸f
MK12 RV308/pcZ20  および大腸菌K
 12 RRl /pLEBC,H2から単離すること
ができる。これらの菌株は/−ザン、リージョナル・リ
サーチ・ラボラトリイ、ペオリア、イリノイス6160
4に寄託され、そのストックカルチャーコレクションの
一部を構成しており、これらプラスミドの供給源および
保管体として寄託番号NRRL B−15881および
B−15882の下、誰でも入手し得る菌株である。プ
ラスミドpCZ20およびPLAH2の△ 詳しい制限サイトおよび機能を表わす地図をそれぞれ添
付の第1図および第2図に示す。本出願の目的に鑑みて
、第1図および以後の図面は全て等縮尺で描かれていな
い。
組立ての便宜と容易性から、プラスミドpCZ20から
〜0.43 kbEcoR工trpLEl含有制限フラ
グメントを単離し、多数のプラスミド誘導体の組立てに
おける8発物質として用いた。例えば、プラスミドpL
EBGHlを組立てるには。
まず最初にプラスミドpLEBGH2をEcoRI制限
酵素で消化し、trpLE2配列を含有する〜0.55
 kb EcoRJ制限フラグメントから〜5.5kb
EcoRI  制限フラグメント(EK−BGHポリペ
プチドおよび大腸菌レプリコンの暗号遺伝子を含有する
)を分離する。次いで、trpLEl配列を含有してい
る〜0.43 kb E co RI制限?ラグメント
を〜5.5 kb Ecoλ工制限フラグメントとライ
ゲートさせ、プラスミドpLEBGH1を組立てる。ま
た、trpLElおよび(rpLE2を個別に、大腸菌
レプリコン、機能的な抗生物質耐性遺伝子、および合成
されたIGFn暗号遺伝子とライゲートさせることによ
り、それぞれプラスミドplGF201およびplGF
202を得る゛。
プラスミドpIGF201およびplGF202は、そ
れぞれ、trpLElおよびtrpLE2のコントロー
ル下で、lGF■ポリペプチドを発現させるために組立
てられた。本発明以前にはIGF■の暗号遺伝子のヌク
レオチド配列は単離されておらず、また、同定されてい
なかったので、合成遺伝子を組立てた。IGFI遺伝子
の暗号領域の合成は、IGF]iが配列: Ala Tyr Arg Pro Ser Glu T
hr Leu CysGly Gly Glu Leu
 Val  Asp Thr Leu GlnPhe 
Val  Cys Gly Asp Arg Gly 
Phe TyrPhe Ser Arg Pro Al
a Ser Arg Val  SerArg Arg
 Ser Arg Gly Ile Val にlu 
GIuCys Cys Phe Arg Ser Cy
s Asp Leu AlaLeu Leu Glu 
Thr Tyr Cys Ala Thr Pr。
Ala Lys Ser Glu で示される67アミノ酸からなっているという知見〔例
えば、ブランデル(Blundell )ら、ネイチャ
ー287:781−787(1980)参照〕を得て完
成された。
上記のアミノ酸配列から、数多くの特異で、これまで知
られていない判定基準に基づいて対応する合成遺伝子配
列を考案すると共に、−緒−こしたときIC,FIJを
コードしている合成遺伝子を形成する様、オリゴヌクレ
オチドフラグメントを合成したつ合成フラグメントを、
予め定めておいた段階でハイブリダイズし、ライゲート
してICFB遺伝子の2つの部分を組立てた。これらの
2部分をプラスミドp B R322にクローンし、プ
ラスミドpBR322DNAのみで両側を囲まれている
、完全な長さのIGF■遺伝Tを生産した。次にtrp
LE1含有フラグメントおよびtrpLE2含有フラグ
メントをIGF:[含有pBR322ベクターに挿入し
、大腸菌および近縁種内での該遺伝子の発現を最大限に
高めた。IGFfiを含有する融合遺伝子産物は、大腸
菌内で発現した。
上記アミノ酸配列および遺伝子暗号の同義性により、I
GFIをコードしている多数のヌクレオチド配列を予測
することができる。これら、多数の、可能性を有する配
列から適当な配列を見出し、決定するには、幾つかの従
来未知の基準を採用した。まず、配列中に使用するトリ
ヌクレオチドコドンを、大腸菌fこ受は入れられる、あ
るいは好まれることが知られているものから選んだ。第
2番目には、分子の末端番こ異なる制限酵素認識部位を
配し、プラスミド内Cζ所望の方向性で挿入することが
できるようにした。更に、プラスミドpBR322の如
き良く理解されているクローニングベクター類を用い得
る様に部位を選出することにした、実際icハ、Eco
RIおよびRam HI 認2部位を選び、IGFli
暗号配列の5′および3′末端に、それぞれを導入した
。第3番目に、遺伝子を特性化し、要すれば、突然変異
誘発を行なうためにこの遺伝子を特異的に分離すること
ができる様、一連の制限エンドヌクレアーゼ′mm部位
を分子に沿って計画的に配した。特に、遺伝子の中央位
置にPst1部位を導入した。この制限酵素認識部位の
設置により、分子の2つの部分を段階的に(insta
ges )クローンすることができるようになった。第
4番目に、細菌細胞内で完全に発現されたタンパク質は
融合産物の形をとっているために、その様な融合産物か
ら、IGFII部分を切り雇す手段が備えられているこ
とが望ましい。そこで、1GFliアミノ末端に対応す
る遺伝子の末端付近にアミノ酸メチオニンを指定するコ
ドンを導入することにより、融合タンパク質の該位置に
メチオニンを存在せしめ、臭化シアン開裂における基質
として役立てる様にした。第5番目に、通読翻訳(7e
ad −througb translation )
を避けるために、遺伝子の末端に2個の終止コドンを配
した。
合成IGFIJ遺伝)の特に好ましい暗号領域として、
式: %式% : (式中、Aはデオキシアデニル、Gはデオキシアデニル
、Cはデオキシシチジル、モしてTはチミジルを表す) で示される配列を選択した。
本発明に係る、大腸菌内で機能的なポリペプチドを発現
させるためのベクターは、著しい技術的進歩を意味する
ものである。前記のtrpLElおよびtrpLEZ 
DNA配列を、大腸菌および近縁の生物内であらゆるポ
リペプチド暗号遺伝子を普遍的に発現させる目的で用い
ることができる。後述する実施例では、本発明の特殊な
態様のみが示され、記述されているのであり、多(の変
形が可能である。例えば、本発明の機能性にとって、特
定の配列の選択は臨界的でなく、本発明の用途は、特定
のポリペプチド暗号遺伝子に限定されるべきではない。
機能的なポリペプチドの暗号遺伝子を、本明細書中で例
示したEK−BGH,IGFi、IGFI、インシュリ
ンA鎖、インシュリンB鎖およびプロインシュリン等の
暗号遺伝子の代りとすることができる。その様な暗号配
列には、ヒト成長ホルモン、ヒトプレ成長ホルモン、ブ
タ成長ホルモン、哺乳動物成長ホルモン、鳥類成長ホル
モン、成長ホルモン放出因子、ヒトプレプロインシュリ
ン、ヒトおよび非ヒトインターフェロン、ウィルス抗原
、ウロキナーゼ、組織プラスミノーゲン活性化因子、イ
ンターロイキンII、あらゆるペプチドホルモン、あら
ゆる酵素、あるいは、研究上、または商業上の価値を有
する事実止金てのポリペプチドをコードしている配列が
含まれ゛るが、これらに限定されるものではない。
本発明のベクターは、特定の大腸菌プラスミドから得た
特殊なレプリコンの使用に限定されない。
本明細書で例示したベクターの大多数に含まれるレプリ
コンはプラスミドpBR322に由来しているが、例え
ば、プラスミドpBR324(ポリt< −F、(Bo
l 1var 、 F、 )ジーン(Gene)  4
 :121(1978))、pBR325[ソベロンX
、(Soveron、 X、)ジーン9:287(19
80)〕、プラスミl’pKN402 (ウーリ7(U
hlin)ら、ジーン6 : 91−106 (197
9)3等からも新規なベクターの組立てのために、′大
腸゛菌レプリコン含有フラグメントを得ることができる
当業者ならば、これら、またはその他の大腸菌レプリコ
ン含有フラグメントをライゲーションすることにより、
本発明の範囲内に含まれるベクターが得られるというこ
とを理解し得るであろう。
本発明の発現ベクターは例えば、大腸菌、大腸11に1
2、大腸菌に12 RV308 、大腸菌に12大腸菌
に12RR1、大腸菌に12MM294グラム陰性原核
生物からなる広範囲シこ及ぶ宿主生物に適用し得る。本
発明の全ての態様が有用であるが、幾つかのベクター、
および形質転換体が好ましい。
好マシイヘクターハ、pCZ20 、 PLEBGHI
 、 PLEBGH2。
pIGF201.pIGF202.PIALEI、PL
ALE2゜pIBLEI 、pIBLE2 、pPIL
EIおよびpPILE2である。好ましい形質転換体に
は、大A!菌に12RV308/pCZ2o、大腸菌に
12  RV308/pLEBGH2,大腸菌に12 
RV308/pLEBGH1゜大腸菌に12 RV30
8/plGF201.大腸菌に12RV308/P I
GF202 、 大腸菌に12 MM294/plGF
201.大腸菌に12MM294/pIGF202゜大
腸菌に12 RV308/plALEl、大腸菌に12
RV308/plBLE2. お、及び大腸菌に12 
RV308/pPILEl  カー含まれる。更に、上
記の好ましい群の内、プラミFpcz20.pLEBG
H1。
plGF201 およびpIBLE2、並びに形質転換
体大腸1iK12RV308/pCZ20、大腸菌に1
2 RV308/PLEBGHI、大腸菌に12RV3
08/plGF201  お、lび大M菌に12RV3
08/plBLE2 が特に好ましい。
以下に実施例を挙げ、本発明を更に詳しく説明する。本
発明を組立てるための説明および実際の手法を適宜記載
した。
IJ1図はプ5 x i l’ pCZ20 (10,
7kb)ノ制限サイトおよび機能地図である。
1N2図はプラスミドpLEBGH2(6,0kl))
の制限サイトおよび機能地図である。
第3図はプラスミドplGF201(4,6kb)の制
限サイトおよび機能地図である。
第4図はプラスミドP IGF202 (4,8kb)
の制限サイトおよび機能地図である。
第5図はプラスミドpIALE1(4,8kb)の制限
サイトおよび機能地図である。
第6図はプラスミドplBLE2(5,Okb )の制
限サイトおよび機能地図である。
第7図はプラスミドpPILEl(5,Ikb)の制限
サイトおよび機能地図である。
第8図はIGF■融合生産物を含有している細胞タンパ
ク質のポリアクリルアミドゲル電気泳動fこよる解析像
を撮影した写真の模写図である。
実施例1  大腸!IRV308/pcZ20(7)f
i4およびプラスミドpCZ20の単離 A、大腸菌RV308/pCZ20(7)培養カナマイ
シン硫酸塩50βg/−を含有するTYブロス(トリプ
トン10g、酵母エキス5g、およびNaC15gを1
!中に含有させて調製)100−ニ大場菌RV308/
pcZ20 (NRRLB−15881)  の培養物
を接種し、20〜25℃番こおいて、振盪しながら、〜
16時間インキュベートした。次いで、培養物100−
を50μg/mtのカナマイシンを含んだTVブロス9
00−の入ったフラスコに移した。次いで、この希釈さ
れた培養物を37℃において振盪しながら2−3時間イ
ンキユヘートシタ。インキュベーション温度37℃にお
いて、プラスミドのコピー数が高くなる、B、プラスミ
ドpCZ20の単離 遠心(10,000rPm X  S分間、4℃)して
細胞をペレット化し、このペレットを、25mMトリス
−HCl(pH8)、IQmMEDTAおよび50mM
グルコースを含有し、リゾチーム2w9/−を補充した
溶液20−に懸濁した細胞を氷上で15分間インキュベ
ートした後、1%SDSおよび0゜2 N NaOHを
含有する溶液40−を加えて混合した。完全に細胞が溶
菌した後、冷却した5MNa0Ac(pH4,8)30
−を加えて混合し、得られた溶液を氷上で1時間インキ
ュベートした。次いでこの溶液を2o、ooorpmで
30分間遠心した。遠芯後、ペレットを捨て、上清に3
容量の冷たい無水エタノールを加えた。得られた混合物
を一70℃で10〜20分間冷却した後、10.00 
Orpmで10分間遠心し、DNAをペレット化した。
このDNAペレットをTEバッファー(13mMトリフ
、−HClpH7,5および] mM EDTA ) 
10−に懸濁し、次いで、5キ/−のRNA5eA 溶
液0.1 rnlと、2500単位/−のRNA5eT
溶液10μjを加えた。RNA5e  を溶液中1こ混
合した後、得られた混液を65℃で20分間インキュベ
ートした。次いで、CsC130g  を加え、TEバ
ッファーを用いて総容量を38−に調節した。
エチジウムプロミド2−を加え、次いで、プラス・  
ミドDNAのバンドを得るために、垂直ローター内で、
49.OOOrpmにおいて17時間、超遠心処理を行
った。
遠心用チューブからプラスミドバンドを除去し、インプ
ロパツール(CsC/およびH20飽和)でエチジウム
プロミドを抽出した後、TEバッファーに対して透析す
ることにより、CsC1を除去した。得られたプラスミ
ドpcZ20 DNAを濃度1μg/−でTEバッファ
ーに懸濁し、−20℃で保存した。プラスミドpCZ2
0  の制限サイトおよび機能地図を添付の第1図に示
す。
実施例2 プラスミドpCZ20からの、trpLEl
をコードしている〜Q、43kbEcoR工制限フラグ
メントの単離 上で得たプラスミドpCZ20DNA 約30μ!(3
0μg) ヲ10X EcoR工z<777−(1,5
Mトリx−HCI(pH7,2>、5 Q QmM N
aclおよび10mMジチオトレイトール)10μl。
EC0RI  制瀝酵素2μ!(〜60単位)および水
58μlの混合物に加えた。混合後、37℃の水浴中で
1時間反応させ、次いで、この溶液を1%アガロースゲ
ル上で、所望の〜0.43kbEc。
R4フラグメントが他の消化産物から明確に分離するま
で、電気泳動させた。このゲルをエチジウムプロミドの
希釈液(0,5μg/−)中で染め、染色されたゲル番
こ長波長のUV光を照射することにより、電気泳動した
DNAを観察した。所望のフラグメントの位置決めを行
ってから、ゲルに示さい間隙(スリット)を形成し、こ
の間隙にシライヒヤ−(5chleicher )およ
びシュエル(Schuell )〔ケーン(Keene
 )、NH03431)のN、A−45DEAE膜を置
いた。再度電気泳動すると、DNAはこのDEAE膜と
、非共有結合的に結合した。
このDEAE膜に所望のフラグメントが結合して後、護
膜を取り除き、低塩バッファー(150mMHzCI、
Q、1mMEDTAおよび2QmMトリスーHC/pH
8)で洗浄した。次いで、膜を小さいチューブに入れ、
高塩バッファー(IMNaCISQ、1mM EDTA
および20 mM )リス−HC/(PH8))に浸漬
し、65℃で1時間インキュベートすることにより、D
NAをDEAEペーパーから除いた。インキュベーショ
ン後、インキュベーションバッファーを集め、膜を高塩
バッファーで洗った。この洗液とインキュベーションバ
ッファーを一緒にプールし、所望の1)NAフラグメン
、トを回収するのに用いた。
高塩DNA溶液の容量を調節してN z Cl濃度を0
.25Mにした後、3倍量の冷却した無水エタノールを
加えた。得られた溶液を混合し、−70℃で10〜20
分間放置した。今後、この溶液を15、OOOrPm 
 で15分間遠心した。残留塩類を除くためにもう一回
沈殿させた後、DNAベレットをエタノールで洗浄し、
乾燥してTEバッファー20μlに懸濁すると、この懸
濁液は所望のtrp LEI暗号EcoR工制限フラグ
メント〜0.25Mgを含有していた。
実施例3  大M菌RV308/pLEBGH2cr)
培養およびプラスミドPLEBGH2の単離A、大腸菌
F1..V308/PLEBHG2 の培養アンピシリ
ン50μg/−およびトリプトファンZooμg/−を
含有するTYloo、nlに大腸菌RV308/pLE
BGH’2(NλRL B−15882)を接種し、次
いで、振盪しながら37℃で16時間インキュベートし
た。次いでこの培養物を、アンピシリン50μg/ml
およびトリプトファン100μg/、ntを含有するT
Yブロスで1jに希釈し、s s o nmにおける光
学的密度が〜0.5吸収単吸収水すまでインキュベーシ
ョンを続けた。
この密度に達した時点で、ウリジン(uridine)
1gをフラスコ内(こ加えた。このウリジンと細胞を1
5分間インキュベーションした後、クロラムフェニコー
ル170■を加えた。振盪しながら、37℃で、培養物
をさらに〜16時間インキュベーションした。ある種の
大腸菌プラスミドを増幅するためにウリジンおよびクロ
ラムフェニコールを加える方法は良く知られている。
B、プラスミドp L E B G H2の単離実質上
、実施例IBの方法に従い、上記の培養物からプラスミ
ドPLEBGH2を単離した。得られたプラスミドPL
EBGH2を濃度lμg/μlでTEバッファーに懸濁
し、−20℃で保存した。プラスミドp LEBC;H
2の制限サイトおよび機能地図を添付の茅2図に示す。
実施例4 プラスミドpLEBGH2のEcoRi消化 実質上、実施例2の方法に従い、プラスミドpLEBG
H2DNA (実施例3で調製)約3゜μlをEco 
R1消化に付し、制限処理産物を単離した。2個のEc
o Rlフラグメントを単離し、精製した: 即ち、1)trpLE2配列をコードしている〜0゜5
5 kbEcoR工7ラグメント;および2) EK−
BGH,pBR322レプリコンおよびβ−ラクタマー
ゼ遺伝子をコードしている〜5.5kbEcoRJフラ
グメントである。trpLE2暗号フラグメント約0.
65μgを得、これをTΣ20ttlに懸濁し、他方、
〜5.5kbフラグメント約6.5μgを得、これをホ
スファターゼバッファー(10mMトリス−HCl (
pi(8’) 、1 mM MgCl2およびQ、Q 
l mM ZnC/2)  100 /J/ icM濁
した。
実施例5 大腸菌RV3Qg/pLEBGI(1(7)
組立て A、プラスミドpLEBGH1の組立てホスファターゼ
バッファーに懸濁した〜5.5kbEcoR工 制限フ
ラグメント(実施例4で調製)を65℃で5分間インキ
ュベートした後、分生の腸から得たアルカリ性ホスファ
ターゼ1μl (ベーリンガー・マンハイム、7単位)
を加゛えて“混合し、65℃で更に5分間インキュベー
ションした。
さらに60℃で30分間インキュベーションした後、反
応混合物をフェノール:CHCl3(50:50)で1
回、CHCl3で1回抽出した。抽出後、反応混合物を
Na0ACQ、3 Mにし、3容量のエタノールを加え
、溶液を混合して一70℃に冷却した後、遠心し、ホス
ファターゼ処理されたフラグメントをペレット化した。
得られたDNAペレットをTEバッファー25μlに懸
濁したところ、この忍濁液は、プラスミドpLEBGH
2のホスファターゼ処理された(脱りん酸化された)〜
5゜5kbEcoRJ制限フラグメント〜5μgを含有
していた。
ホスファターゼ処理された〜5.5 kb Eco R
エフラグメント約1μgを実施例2で得た、trpLE
Iをコードしている精製〜(143kb Eco Rl
フラグメント4 at、 5 mMATP 2 at 
、  10mMジチオトレイトール2μ!、  IOX
リガーゼバッファー(660mM)リス−HCjPH8
および60 mM MgCr2 ) 2 All 、水
8μlおよびT4DNAリガーゼ1μ!にューイングラ
ンド・バイオラボ、800単位)と混合した。この反応
混合物を20℃で2時間インキュベートした。次いで、
このライゲートされたDNAを大腸菌に12RV308
の形質転換に用いた。
B、  大腸1K12  RV308/PLEBGH1
f7)m立て 1、凍結された、コンピテントな大腸菌K 12Rv3
08 および大腸菌に12MM294の調製大腸菌に1
2 RV 30B (NRRLtS−15624)およ
び大腸菌に12 MM2 g 4 (NRRLB −1
5625)を、それぞれ、5tnlのTYブロスに接種
し、得られた培養物を振盪下、37℃で一夜インキユベ
ートした。この−夜培養物をTYブロスで終容量1!に
希釈すると、各培養物の光学的密度の読みは6000m
において〜0.1吸収単位を示した。600 nrnに
おける光学的密度が0.55〜0.65吸収単位の範囲
に達するまで37℃において°振盪しながらインキュベ
ーションを行い、その後、遠心して細胞を集めた。  
 ゛ −各細胞ペレットを個別に、冷却した5QmMC
aC/2500−に懸濁し、得られた混合物を氷上で1
5−30分間インキュベートした。次いで遠心して細胞
を集め、得られたペレットを冷却した5 0 mM C
aCl2中の20%グリセリン溶液2〇−中に懸濁した
。次いで、この細胞懸濁液をあらかじめ冷却しておいた
チューブ内に0.2−づつ加え、即座に一70℃にし、
その温度で保存した。
この方法で調製した細胞は1年間、生長能力を保持して
おり、形質転換に適合性を有している。
2.形質転換 コンピテントな大腸菌に12RV308  細胞の入っ
ているチューブ一本を一70℃の保存状態から取り出し
、解凍して実施例5AのDNAとライゲートさせた。こ
の細胞−DNA混合物を氷上で1時間インキュベートし
た。次いで細胞を集め、上清を捨て、ペレットを、トリ
プトファン100μg/−を補充したTYブロス0,5
−に懸濁した。
37℃で30分間インキュベートした後、アンピシリン
50μg/−およびトリプトファン100μg/−を補
充したTY平板上にプレートした。
これらの平板を37℃で一夜インキユベートした。
3、分析 実施例5Aで調製したライゲーション産物は所望のプラ
スミドpLEBGH1とその他の望ましくないプラスミ
ドの両方を含有しているので、どの形質転換体中にプラ
スミドpLEBGHlが存在しているかを決定するため
に、各形質転換体を分析した。
プラスミドpLEBGH1の全DNA配列は予測され得
るので、反応産物がプラスミドpLEBGH1について
予測されるものであるか否かを調べるために、形質転換
された大腸菌細胞から単離したプラスミドDNAを様々
な異った制限酵素類で開裂させ、電気泳動とゲル分析法
にかけた。形質転換体によって発現されたタンパク質を
トリプトファンの非存在下で分析し、LEl−EK−B
GH(38,000ダルトン)の生産に基づき、所望の
形質癲換体を同定した。LEl−EK−BGHおよびL
E2−Eに−BGHはいずれもpBR322DNAがコ
ードしているタンパク質を含んでいる。
この様な方法で、大腸菌に12RV308/pLEBC
H1形質転換体を同定し、単離した。
実施例6° IGF■をコードしているDNAの組立て IGFX遺伝子の暗号領域の合成は次の一般的な方法に
従って行われた:A)改良ホスホトリエステル法により
、それぞれ9〜15デオキシリポスクレオチドを含有し
ている38個の一本鎖デオキシリボヌクレオチドを合成
する:B)38個の一本鎖デオキシリボヌクレオチドの
内、幾つかをりん酸化する;C)一連のアニーリングお
よびライゲーション反応を行い、それぞれ、遺伝子の暗
号領域の約半分を構成している2個の2本鎖DNA分子
を形成する。
上で形成した2個のフラグメントを最終的にプラスミド
pBR322に挿入してIGFI暗号配列の全てを含む
一本鎖DNA分子を組立てた(実施例7)。次に、上記
のA−Cの工程を詳しく説明する。
A、一本MDNAフラグメントの合成 シウング(Hs iung )  らの改良ホスホトリ
エステル法〔ヌクレイツク・アシッズ・リサーチ(Nu
cleic Ac1ds Re5earch ) 11
 : 3227  (1983))により、以下の表1
に列記した38個のデオキシリボヌクレオチドを合成し
た。また、良く知られた、−重鎖フラグメントの合成に
適した様々なりNA合成装置を利用したう 表1 1  AATTCATGGCT    112    
 TATCGACCGTCT          12
3  GC;CGGCGAACTΩ   124  A
AC,CCACC;GT    105  GTTGA
CACTCTG    125  CGCCGCAAA
CGA    127  GCTTCTACTTC11 8TCTCGTCCGG    10 9     CT丁CTCGTGTτ丁       
  12IQ  CTAGACGTTC10 11TCGTC,GCAT     912  CGT
TGAAGAATG    1213  TCTTGC
GACCTG    1214  CAGTTCGTT
TGC1215GCTCTGCTGG    1016
     AAACTTACTGC1117GCTAC
TCCTGCT    1218AAATCTGAAT
AATAG   1519  CGATAAGCCAT
G    1220  GTTTCAGACC,GT 
   1221  CAACCAGTTCGC1222
ACTGCAGAGTGT    1223  CTG
CTTCCGCIQ 24  GGCGACCGTG    l。
25  GAGAGAAGTAG    1126  
GAAGCCGGACIQ 27  CTAGAAACACGA    1228 
 ACGAGAACGT    10表 1 (つづき
) 2g    AACGAT(、CC9 30AAGCAGCATTCTTC1431TCGCA
AGAGCGG        1232    CA
GAGCCAGG          1033   
 AAGTTTCCAG          1034
    AGTAGCGCAGT         1
135    AGATTTAGCAGG      
  1236    GATCCTATTATTC13
37GAAACTCTGTGC12 38CGCCGCACAGA         11B
、りん酸化 上記のオリゴヌクレオチドの各々を薄層クロマトグラフ
ィーおよび逆相高速液体クロマトグラフィーで精製した
後、表1に示した38の一重鎖DNAフラグメントの内
、幾つかをシウングらの方法(1983)に従ってりん
酸化し、ライゲーションおよびIGFI遺伝子暗号DN
Aフラグメントの組立てを容易にした。このりん酸化反
応に機微の(r−32p)−ATPを用いたので、幾つ
かのフラグメントの5′末端には132P”の表示が付
されている。
C,アニーリングおよびライゲーションフラグメント1
,2,3,19,20,21゜37および38をアニー
リングし、ライゲートす     ′ることにより、二
本鎖DNA (Duplex ) 工:を組立てた。
フラグメント5,14.24,22.6および4をアニ
ーJJ、ングし、ライゲートすること番こより、二本鎖
DNA■: 5’  32P−GTTGACACTCTC;CAGT
TCGTTT−3’HO−TGTGAGACGTGAA
GCAAA−■ を組立てた。
フラグメント7.8.9,25.26および27をアニ
ーリングし1、ライゲートすることにより、二本鎖DN
A[: を組立てた。
次いで、二本鎖DNA分子、■、■および■を混合し、
T4DNAIJガーゼで処理して一方の末端にEcoR
ニオ−バーラップ(重複)を、他方の末端齋こxba■
オーバーラツプを有する二本鎖分子を形成した。このラ
イゲーション反応で得た、二本鎖DNA工、■および■
を含有する生産物を10%ポリアクリルアミドゲルを用
いて精製したところ、これは、IGFU暗号領域の約1
/2 を構成していた。
同様にして、残りのIGF]i暗号領域も合成した。即
ち、フラグメント10,11,12.28゜29および
30をアニーリングし、ライゲートすることにより、二
本鎖DNA  l’%r:11+11111 −CTTCTTAC(1;ACGAA−P 5’を組立
てた。
フラグメント23,13,15,16,31゜32.3
.3および34をアニー、llングし、ライゲートする
こと畜こより、二本鎖DNAV :を組立てた。
フラグメント17.18.35および36をアニーリン
グし、ライゲートすることにより、二本鎖DNAVI: を組立てた。
次いで、二本鎖DNA分子■、■および■をライゲート
シ、IGFIJ暗号領域の残余部分を形成させた。この
ライゲーションにより、一方の末端にXba Iオーバ
ーラツプを、他方の末端にB@mH1オーバーラツプを
有するDNA分子が生産された。このライゲーション産
物を10%ポリアクリルアミドゲルを用いて精製した。
実施例7 プラスミドpIGF201  およびpIG
F202の組立て A、プラスミドp IGF2の組立て 5μgのpBR322をTEバッファー5μl+C溶カ
L、10 X Bam H1バツフアー(1,5MNa
C!、60mM )リス−HCj pH7,9、60r
nM MgC/2および1”77m1Bsk )2fi
!。
Ram HI 制限酵素1μl(〜10単位)および水
12μlを加え、静かに混合した後、37℃で2時間イ
ンキュベートした。インキュベーション後、BamHI
消化DNAを沈殿させ、次いで、10XEco Rエハ
ッフ7−2 ttl 、 EcoRI制限酵素1μ!(
〜10単位)および水17μlに懸濁した。静かに混合
した後、反応混合物を37℃で2時間インキュベートし
た。
このEcoR工消化およびBamH工消化デシスミドP
龜322をフェノール−CHCl3 (50:50)で
1回抽出し、次いで、CHCl ’3単独で抽出した。
この混合物をNa0ALQ0.3 Mにし、2゜5〜3
容量のエタノールを加えて混合し、−70℃に冷却し、
遠心することにより、DNAの沈殿を得た。得られたD
NAペレットはEcoR工消化デシびBamHI消化プ
ラスミドpBR322DNA−5μgで構成されていた
。このDNAをTEバッファー25μlに懸濁した後、
実施例6で調製した合成IGF■暗号遺伝子フラグメン
トとのライゲーションに使用するため、−20℃で保存
した。
EcoRI  消化およびB1mH工消化デシスミドp
BR3221μEを、実施例6で調製した。Ec。
R1−Xba工、IGFIr暗号フラグメントおよびX
ba ニー Bamt(I、IGF II暗号フラグメ
ント(1ピコモルづつ)に加えた。実質上、実施例5の
ライゲーション法1こ従い、DNA分子をライゲートシ
た。このライゲートしたDNAを用い、実質上、実施例
5の形質転換法に従って大腸菌RV308を形質転換し
た。所望の形質転換体を、それらに予測されるアンピシ
リン耐性およびテトラサイタリン感受性表現型、並びに
そのプラスミドDNAの分析に基づき、同定した。こう
して同定された形質転換体は、所望の大腸菌RV308
/pIGF2を構成していた。実質上、実施例3と同様
にしてプラスミドp I G F 2を調製し、精製し
た。
B、プラスミドpIGF2の消化および脱りん酸化 5μjの単離プラスミドpIGF2を、実質上、実施例
4と同様多こして全XSOμm+こおいて、EcoRI
 により、消化した。得られたEcoR4消化プラスミ
ドp IGF2を遠心してペレット化し、実質上、実施
例5Aの方法に従い、このペレットをホスファターゼバ
ッファー100μjに懸濁し、次いで子牛の腸から得た
アルカリ性ホスファターゼで処理した。酵素ホスファタ
ーゼを除去した後、脱りん酸化されたEcoR工消化デ
シスミドpIGF2をTEバッファー25μjに懸濁し
、−乏O℃で保存した。
C,ライゲーションおよび形質転換 1μlの脱りん酸化EcoR工消化プラスミドp IG
F 2を実施例2で単離したtrpLEl暗号化Eco
R4制限フラグメント4μlに加え、実質上、実施例5
Aと同様多こしてライゲートさせた。
ライゲートされたDNAは所望のプラスミドpIGF2
01を構成していた。trpLE1暗号化EcoRエ 
フラグメントの代りに実施例4で調製したtrpLE 
2暗号化EcoR工制限フラグメント4μlを使用し、
同様の方法でプラスミドPICF202を組立てた。
プラスミドp I CF 201およびplGF202
を構成する、これらのライゲートされたDNAの各々を
用いて、実質上、実施例5B2の形質転換法に従い、大
腸菌KA!RV308および大腸菌に12MM294の
両者を形質転換した。所望の形ain体、大腸IWK1
2RV308/pIGF201、大腸菌に12MM29
4/p IGF201、大腸菌に12RV3 os/p
 IGF202諮!び大腸菌に12MM294/P I
GF202を、それらのプラスミドDNAの分析、並び
Sこトリプトファン非存在下でのタンパク質の産性に基
づき、同定した。
実施例8 インシュリンA鎖発現ベクター、インシュリ
ン°B鎖発現ベクターおよびプロインシュリン発現ベク
ターの組立て A、構造遺伝子の単離 1、インシュリンA鎖構造遺伝子の単離インシュリンA
鎖構造遺伝子は、プラスミドPIAIから得られた:こ
のプラスミドの組立てはゲラ7” ル(Gocddel
 )  らにより開示されている〔フロシーディンゲス
・オブ・ザ・ナショナル・アカデミイ・オブ・サイエン
スイズ(Proc。
Na t 1・ Sci・’)USA 76 : 10
6(1979)〕。プラスミドpIAl約50μgを実
質上、実施例7Aと同様にしてBamHIおよびEco
RIで消化し、ポリアクリルアミドゲル電気泳動並びに
電気溶離によって所望の〜0.425kbインシュリン
A鎖構造遺伝子含有EcoRI−BamHI制限フ)グ
メントを単離した。所望のフラグメン) 約0.5μg
を得、これをTEバッファー2“5μjに懸濁し、−2
0”Cで保存した。
2、インシュリンB鎖構造遺伝子の単離インシュリンB
鎖構造遺伝Tは、プラスミドPIBlから得られた:こ
のプラスミドの組立ては、ゲラデルら(1979)によ
って開示されている。
プラスミドpIg1約50μgを、実質上、実施例7A
と同様にしてBamHIおよびEcoRIで消化し、ポ
リアクリルアミドゲル電気泳動差引こ電気溶離によって
所望の〜0.4531kbインシュリンB鎖#造遺伝子
含有EcoRI−BamHI制限フラグメントを単離し
た。所望の7ラグメント約0.5μgを得、これをTE
バッファー2511Cc!!、濁し、−20℃で保存し
た、3、 プロインシュリン構造遺伝子の単離プロイン
シュリン構造遺伝子は、プラスミドPHI7△4△1か
ら得られた:このプラスミドの組立ては、ヨーロッパ特
許出願公開番号第105608AI号(1984年4月
18日公開)の実施例2および実施例41こ開示されて
いる。プラスミドpHl7△4Δ1約50μgを、実質
上、実施例7Aと同stcしてBamHIおよびEco
RIで消化し、ポリアクリルアミドゲル電気泳動並びに
電気溶離によって所望の〜0.705kbプロインシュ
リン構造遺伝T含有EcoRニーBamHr制限フラグ
メントを単離した。所望のフラグメント約0.5μgを
得、これをTEバッファー25μlに懸濁し、−20’
Cで保存した。
B、ライゲーション 実質上、実施例5Aの方法に従って以下のライゲーショ
ンを行った。実施例8Aで単離した3種類の構造遺伝子
のそれぞれについて、ErpLElおよびtrPLE2
誘導体を組立てるためfζ6つの’Aる5イ’y’−ジ
ョンを行った。各ライ)f −’iジョン合物中には次
のものが含まれる:実施例7Aで調製したEcoRJ 
消化およびBamHI消化プラスミドpBR322DN
A1μl:実施例2および4で調製したtrp LE 
1暗号化EcoR4制限フラグメントまたはLrpLE
2暗号化EC0RI制限フラ°グメント4μl :実施
例8Aで単離したEco RI −BamH工構造遺伝
子暗号化制限シラグメントの内、いずれか1つ、4μ!
。 この様にして得られたプラスミドp I ALE 
lおよヒPIALE2はそれぞれ、trpLEl−イン
シュリンA鎖およびtrpLE2−インシュリンA鎖で
示される各誘導体遺伝子を;プラスミドp I BLE
lおよびpIBLE2はそれぞれ、trpLEl−イン
シュリンB鎖およびtrp L E 2−インシュリン
B鎖で示される各誘導体遺伝子を;そしてプラスミドp
PILElおよびpPILE2はそれぞれ、trpLE
l−プロインシュリンおよびtrpLE2−プロインシ
ュリンで示される各遺伝子誘導体を含有している。
C9形質転換 実質上、実施例5B2の方法に従い、実施例8Bで得た
6個のライゲーション産物の各々を用いて大腸菌に12
  RV308を形質転換した。所望の形質転換体を、
そのアンピシリン耐性およびテトラサイクリン感受性表
現型、並びに形質転換体のプラスミドDNAに関する分
析に基づいて同定した。
実施例9 細胞エキスの調製および分析A、細胞培養 トリプトファンおよびアンピシリンを100μg1mt
づつ補充したTY培地中で、大腸菌に12RV 308
/pIGF201、大腸菌に12 RV308/pIG
F202、大MIIK12 RV 308/pIGF2
03、大腸菌に12 MM294/plGF201、大
腸菌に12 MM294/pIGF202および大腸菌
に12MM294/P IGF203の一夜培養物を調
製した。プラスミドpIGF203はIGF■構造遺伝
子の先端部分の解読相内に改良されていないt rp 
L E配列を有していることを除き、他の全てにおいて
プラスミドplG’F201およびpIGF202  
と同じである。これらの−夜培養物を、s s o n
mにおける光学的密度が〜4.5吸収単位になるまで増
殖させた。これら−夜培養物をM9培♂(トリプトファ
ンは加えず)で希釈した;即ち、各−夜培養物毎に、指
数増殖期の早期お°よび定常期早期において起こってい
るタンパク質の細胞内での合成を観察するために、°い
くつかの希釈操作を行った。こうして、明確に区別され
る12個の培養物を調製した。次いで、これらの培養物
を37℃で4−8時間インキュベートした。
4M9培地は水1/中に下記の成分を含む:Na2HP
O4,7H2010g 、  にH2PO43g。
NaC10,5g、およびNH4G71 g、  この
培地に以下の物質を補充した; I MMg 5044
00μl。
IMCaCj240111. 20%カザミノ酸12.
5−140%グルコース12.5d、および10η/−
アンピシリン。
B、細胞エキス(抽出物)の調製 トリプトファンの非存在下において、培養物を様々な時
間、増殖させた。次いで、各培養物から1−をとり、5
5 Q nmにおける光学的密度を測定し、遠心して細
胞を収獲した。
得られた細胞ベレットを、細胞収穫前(遠心前)と同様
に測定したとき、光学的密度が20吸収曜位/−を示す
様な懸濁液を得るのに充分な量の充填(loading
 )バッファー(0,125M)リス−HCl% pH
6,8,2%SDS、33%グリセリン、o、oos%
ブロムフェノールブルー、および6M尿素)に懸濁した
。試料を5−10分間沸騰させた後、各試料7μlづつ
を5DS−ポリアクリルアミドゲル(SDS−PAC,
E)に充填し、次いで、ブロモフェノールブルーがゲル
の下端に達するまで、〜5QmAの電流により、電気泳
動させたう このゲルを、以下の組成からなるフェアーバンクの染料
A (F@1rbank’s A st@in )によ
り、−夜、染色した:クーマシー(Coomassie
 )ブリリアンドブIレー0.5g、インプロパツール
25〇−1氷酢酸100−1および水650−6次いで
、ゲルを以下の組成からなるフェアーバンクの染料Bで
3−4時間染色した:クーマシー・ブリリアントブルー
0.05gインプロパツール100−1氷酢酸100−
および水800−0次いで10%酢酸中でゲルの過剰の
染色を脱色し、写真撮影した。。
細胞を収獲する前のs s o nmにおける光学的密
度を表■に示す。染色したゲルの写真像を添付の第8図
に示す。
表  ■ RV308/PICF201   1   0.65 
   4.5RV30a/PICF202 2 0.4
8 4.5RV30a/PICF203 3 0.51
 6.0RV30a/PICF201 4 2.9  
8.0RV30a/pIGF202   5   2.
3     8.0RV30a/PICF203 6 
0.80 8.0MM294/pIGF201 7 0
.67 4.5MM294/PICF202   8 
  0.46    4.5閘294/plCF203
   9   0.27    6.0MM294/p
IGF201  10   2.4    8.0■句
94/plGF202  11   1.9    8
.0MM294/pIGF203  12   0.6
     8.0レーン13(第8図)の試料にはバイ
オ・ラット社(Bio −Rad、 32 ndおよび
グリッツイン(Griffin )、リッチモンド(R
i chmond ) 、CA94804)供給の低分
子量タンパク質標準品(Low Mo1eculer 
 Weight  Protein 5tandard
s)が含有されている。
表IIIζ示したデータから、プラスミドpIGF20
3を含有する細胞は、プラスミドplGF201 また
はpIGF202  を含有する細胞のいずれよりも増
殖が遅いことが分る。即ち、短縮されたtrpLE配列
の存在および発現による大腸mK12MM294 およ
び大腸1!1K12 RV30817)増殖遅延効果は
、未改良のtrpLE  の存在および発現によるそれ
よりも軽度である。第8図の7〜12レーンは、大腸菌
に12MM294内においで、未改良trpLEよりも
trpLElおよびt rp LE2の方がIGFl[
を多量に産生させ、蓄積さ、貨ることを示している。発
酵の分野では、細胞の増殖速度、生産物の合成および生
産物の蓄積の全てが重要な因子である。上記の事実は、
trpLEl−IGFliまたはtrpLE2−IGF
l[融合ポリペプチドを発現する細胞の増殖速度が、未
改良trpLE−IGF]i融合ポリペプチドを発現す
る細胞のそれよりも早いことを証明するものであり、本
発明に係る誘導体が改良された性質を有することを支持
している。その上、融合遺伝子産物を生産するために大
腸菌に12MM294  に対してtrpLElまたは
trpLE2を用いた場合、未改良trpLEを用いた
場合よりも、所望の生産物が全細胞タンパク質中1こ占
める割合(%)が大きくなるのである。
【図面の簡単な説明】 第1図はプラスミドpCZ20の制限サイトおよび機能
地図の模式図、第2図はプラスミドPLEBGH2の制
限サイトおよび機能地図の模式図、第3図はプラスミド
pIGF201の制限サイトおよび機能地図の模式図、
第4図はプラスミドPICF202の制限サイトおよび
機能地図の模式図、第5図はプラスミドplALE1の
制限サイトおよび機能地図の模式図、第6図はプラスミ
ドplBLE2の制限サイトおよび機能地図の模式図、
第7図はプラスミドpPILElの制限サイトおよび機
能地図の模式図、第8図はIC,FBI融合産物を含有
している細胞タンパク質のポリアクリルアミドゲル電気
泳動による解析像の写真の模写図である。 特許出願人 イーライ・リリー・アンド・カン/ずニー 代 理 人 弁理士 青白 葆(外1名)FIG、l F1a11 FIG、2 FIG、3 vull FIG、4 vull FIG、5 Pvull FIG、6 FIG、7 Pvull 1        ■

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1、プロモーター−オペレーター/リーダー/トリプト
    フアンE遺伝子からなる大腸菌のトリプトフアンオペロ
    ンから、リーダーペプチドのカルボキシ末端をコードし
    ている配列、リーダー配列のアテニユエイター領域、並
    びにtrpE遺伝子の近接領域を除去したトリプトフア
    ンオペロンであつて、約428〜約548デオキシリボ
    ヌクレオチド対の範囲内に含まれるリーダー/トリプト
    フアンE遺伝子配列を含有することを特徴とする短縮さ
    れた改良トリプトフアンオペロン誘導体。 2、リーダー/トリプトフアンE遺伝子配列が約428
    デオキシリボヌクレオチド対の範囲内に含まれる第1項
    記載の誘導体。 3、該遺伝子がtrpLE1である第2項記載の誘導体
    。 4、リーダー/トリプトフアンE遺伝子配列が約548
    デオキシリボヌクレオチド対の範囲内に含まれる第1項
    記載の誘導体。 5、該遺伝子配列がtrpLE2である第3項記載の誘
    導体。 6、組換えDNA発現ベクターであつて、 a)トリプトフアンプロモーター−オペレーターおよび
    約428〜約548ヌクレオチドの範囲内に含まれるリ
    ーダー/トリプトフアンE遺伝子;b)発現のため、a
    )の下流であつて、翻訳解読相内に位置した、ヘテロロ
    ーガスポリペプチドをコードしている構造遺伝子;およ
    び、 c)該ベクターで形質転換された微生物内で該ベクター
    を複製させ、さらに選択するためのレプリコンおよび選
    択マーカー を含有するベクター。 7、プラスミドである第6項記載のベクター。 8、レプリコンおよび選択マーカーが、ベクターを大腸
    菌内で複製させ、選択することができるものである、第
    6項または第7項記載のベクター。 9、選択マーカーが抗生物質耐性を付与するものである
    、第6、7または8項記載のベクター。 10、レプリコンおよび耐性付与選択マーカーがプラス
    ミドpBR322、pBR325、pBR324または
    pBR402のいずれかに由来するものである第9項記
    載のベクター。 11、構造遺伝子が、インシユリン様成長因子 I 、イ
    ンシユリン様成長因子II、ウシ成長ホルモン、ヒト成長
    ホルモン、ヒトプレ成長ホルモン、ブタ成長ホルモン、
    哺乳類成長ホルモン、鳥類成長ホルモン、ヒトインシユ
    リンA鎖、ヒトインシユリンB鎖、ヒトプロインシユリ
    ン、ヒトプレプロインシユリン、インターフエロン、ウ
    ロキナーゼ、ヒト組織プラスミノーゲン活性化因子、成
    長ホルモン放出因子またはインターロイキンIIをコード
    している第6〜10項のいずれかに記載のベクター。 12、構造遺伝子が、発現のために、約428〜約54
    8ヌクレオチド対のリーダー/トリプトフアンE遺伝子
    配列のすぐ下流に隣接し、かつその翻訳解読相内に位置
    していることを特徴とする第11項記載のベクター。 13、構造遺伝子が、式: 【遺伝子配列があります】 (式中、Aはデオキシアデニル、Gはデオキシグアニル
    、CはデオキシシチジルそしてTはチミジルを表す) で示されるヌクレオチド配列を有するインシユリン様成
    長因子II構造遺伝子である第11項または12項記載の
    ベクター。 14、リーダー/トリプトフアンE遺伝子配列がtrp
    LE1である第11項または12項記載のベクター。 15、リーダー/トリプトフアンE遺伝子配列がtrp
    LE2である第11項または12項記載のベクター。 16、プラスミドLEBGH1である第14項記載のベ
    クター。 17、プラスミドLEBGH2である第15項記載のベ
    クター。 18、プラスミドpCZ20、pIALE1、pIBL
    E1またはpPILE1である第14項記載のベクター
    。 19、プラスミドpIALE2、pIBLE2またはp
    PILE2である第15項記載のベクター。 20、プラスミドpIGF201である第13項または
    第14項記載のベクター。 21、プラスミドpIGF202である第13項または
    第15項記載のベクター。 22、構造遺伝子が、プラスミドpCZ20の〜230
    bpEcoR I −BamH I 制限フラグメント中に含
    まれているインシユリン様成長因子 I 遺伝子からなる
    ことを特徴とする第6〜12項のいずれかに記載のベク
    ター。 23、大腸菌R/R′(ここに、RはK12、K12R
    V308、K12HB101、K12C600Rk−M
    k−、K12RR1、またはK12MM294であり、
    R′は第6項〜22項のいずれかに記載のベクターを表
    す)で示される形質転換された宿主細胞。
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