JPS602187A - 免疫学的方法による転移性細胞活性の測定法 - Google Patents
免疫学的方法による転移性細胞活性の測定法Info
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- JPS602187A JPS602187A JP59101622A JP10162284A JPS602187A JP S602187 A JPS602187 A JP S602187A JP 59101622 A JP59101622 A JP 59101622A JP 10162284 A JP10162284 A JP 10162284A JP S602187 A JPS602187 A JP S602187A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
ナールあるいはポリクロナール抗体を用いてその細胞の
■型コラグナーゼの免疫学的測定をすることにより証明
する転移性細胞活性の測定法に関する。また本発明によ
れば、標識づけされたあるいは標識づけされていない前
記酵素抗原に対するポリクローナルあるいはモノクロー
ナル抗体からなる組成物に関する。
■型コラグナーゼの免疫学的測定をすることにより証明
する転移性細胞活性の測定法に関する。また本発明によ
れば、標識づけされたあるいは標識づけされていない前
記酵素抗原に対するポリクローナルあるいはモノクロー
ナル抗体からなる組成物に関する。
悪性細胞の一つの主要な特性は浸潤と転移体の形成であ
る。したがって浸潤過程の早期発見と予防は臨床上重要
な意味をもつ。転移の成立は複雑であり、もとの腫瘍を
離れ近接した組織に浸潤しリンパ系あるいは循環系経路
に浸透し、そこから離れた組織の管壁に付着したままそ
の管壁を透過して管壁粗織に浸潤し、最終的にそこで増
殖して転移コ〇二一をつくる。
る。したがって浸潤過程の早期発見と予防は臨床上重要
な意味をもつ。転移の成立は複雑であり、もとの腫瘍を
離れ近接した組織に浸潤しリンパ系あるいは循環系経路
に浸透し、そこから離れた組織の管壁に付着したままそ
の管壁を透過して管壁粗織に浸潤し、最終的にそこで増
殖して転移コ〇二一をつくる。
その転移中の腫瘍細胞はその内転移過程で数カ所で基底
膜を穿通しなくてはならない。基底膜は細胞外マトリッ
クスで、それはタフで連続したシートを形成し、またそ
れは上皮と内皮柔組織を間質結合組織から分離している
。これらの構造はコラーゲン(■型)成分と糖タンパク
質(proteog 1yca11)、ラミニン、フィ
ブロネクチン、エンタフチン(entactin)など
の非コラーゲン成分からなっている。基底膜は腫瘍細胞
に対して強力な障壁となり、またそれ6え転移過程にお
いて基底膜の分解は重要な段階である。この過程は現在
ではタンパク分解酵素により促進されると考えられてい
る。フラズミノーゲン活性化因子、カテプシンBとDの
ようなタンパク分解酵素や糖タンパク分解酵素の増大が
、腫瘍細胞組織抽出物や培養腫瘍細胞の培養液中に見出
される。そしてこれらの酵素は細胞の浸潤力測定検査の
確実な指標とみなされている。しかしながら、それらの
酵素が分泌されることと悪性細胞の浸潤性との関係につ
いては確立されていない。事実、プラスミノゲン活性化
因子は浸潤性をもたない多くの細胞種によっても生産さ
れる。さらに前記のタンパク分解酵素■型コラーゲンを
分解しないので腫瘍細胞が基底膜を穿通するのに充分な
手段とはならない。
膜を穿通しなくてはならない。基底膜は細胞外マトリッ
クスで、それはタフで連続したシートを形成し、またそ
れは上皮と内皮柔組織を間質結合組織から分離している
。これらの構造はコラーゲン(■型)成分と糖タンパク
質(proteog 1yca11)、ラミニン、フィ
ブロネクチン、エンタフチン(entactin)など
の非コラーゲン成分からなっている。基底膜は腫瘍細胞
に対して強力な障壁となり、またそれ6え転移過程にお
いて基底膜の分解は重要な段階である。この過程は現在
ではタンパク分解酵素により促進されると考えられてい
る。フラズミノーゲン活性化因子、カテプシンBとDの
ようなタンパク分解酵素や糖タンパク分解酵素の増大が
、腫瘍細胞組織抽出物や培養腫瘍細胞の培養液中に見出
される。そしてこれらの酵素は細胞の浸潤力測定検査の
確実な指標とみなされている。しかしながら、それらの
酵素が分泌されることと悪性細胞の浸潤性との関係につ
いては確立されていない。事実、プラスミノゲン活性化
因子は浸潤性をもたない多くの細胞種によっても生産さ
れる。さらに前記のタンパク分解酵素■型コラーゲンを
分解しないので腫瘍細胞が基底膜を穿通するのに充分な
手段とはならない。
本発明者らは腫瘍細胞が中性プロテアーゼを分泌するこ
とを証明し、そしてそのプロテアーゼが■型コラーゲン
を特異的に分解し、そしてその酵素をネズミの腫瘍細胞
から(Liotta etat、、 Natl、 ca
nce、r In5t、、58.1427〜1431゜
1977: Liotta et al、、Proc、
Natl、 Acad。
とを証明し、そしてそのプロテアーゼが■型コラーゲン
を特異的に分解し、そしてその酵素をネズミの腫瘍細胞
から(Liotta etat、、 Natl、 ca
nce、r In5t、、58.1427〜1431゜
1977: Liotta et al、、Proc、
Natl、 Acad。
Sci、、76.2268〜2272,1978;5a
lo et al、、TheJournal ofBi
ological Chemistry、258.30
58〜3063、1983.)と同様に人間の培養腫瘍
細胞からも単離精製する方法を開発した。
lo et al、、TheJournal ofBi
ological Chemistry、258.30
58〜3063、1983.)と同様に人間の培養腫瘍
細胞からも単離精製する方法を開発した。
本発明者らはその酵素(以下、■型コラゲナーゼという
)の活性が腫瘍m胞浸潤力と関係することを示した(L
iotta et al、Nature 284,67
〜68.1980)。
)の活性が腫瘍m胞浸潤力と関係することを示した(L
iotta et al、Nature 284,67
〜68.1980)。
このように■型コラゲナーゼ酵素抗原は大きな臨床的価
値をもつ。しかしながら■型コラゲナーゼ活性の測定、
は、体液などの生体液、組織抽出液中あるいは組織切片
ではそのような試料中に含まれる多量のプロテアーゼ阻
害因子のために達成されない。
値をもつ。しかしながら■型コラゲナーゼ活性の測定、
は、体液などの生体液、組織抽出液中あるいは組織切片
ではそのような試料中に含まれる多量のプロテアーゼ阻
害因子のために達成されない。
本発明の目的は、体液、組織抽出液、臓器や細胞の培養
液や培養物などの生物試料中の■型コラゲナーゼ酵素抗
原を免疫学的に測定することにより、転移性細胞活性を
有する悪性腫瘍細胞を検出する方法を提供するとにある
。
液や培養物などの生物試料中の■型コラゲナーゼ酵素抗
原を免疫学的に測定することにより、転移性細胞活性を
有する悪性腫瘍細胞を検出する方法を提供するとにある
。
本発明の別の目的は、標識づけされたもしくは標識づけ
されていない高純度の■型コラゲナーゼ酵素抗原および
前記のIV型コラゲナーゼ酵素抗原に対する標識づけさ
れたもしくは標識づけされていないポリクローナルまた
はモノクローナル抗体からなる組成物を提供することに
ある。
されていない高純度の■型コラゲナーゼ酵素抗原および
前記のIV型コラゲナーゼ酵素抗原に対する標識づけさ
れたもしくは標識づけされていないポリクローナルまた
はモノクローナル抗体からなる組成物を提供することに
ある。
基底膜穿通性の細胞からの■型コラゲナーゼ酵素抗原の
精製と測定は、本発明の実現にとって絶対的な重要性が
ある。本発明者らはIV型コラゲナーゼを発見し、また
この抗原の精製と特徴づけを行なった(Liotta
et at、、 J、NaH,Cancer In5t
、、58.1472〜1431,1977;Liott
a et at、。
精製と測定は、本発明の実現にとって絶対的な重要性が
ある。本発明者らはIV型コラゲナーゼを発見し、また
この抗原の精製と特徴づけを行なった(Liotta
et at、、 J、NaH,Cancer In5t
、、58.1472〜1431,1977;Liott
a et at、。
Proc、Natl、Acad、 Sci、、76.2
268〜2272.1978;5alo et at、
、’rhe Journal of Biologic
alChemistry、258.3058〜3063
,1983;5alo et al、。
268〜2272.1978;5alo et at、
、’rhe Journal of Biologic
alChemistry、258.3058〜3063
,1983;5alo et al、。
J、Btol、 Chem、 1983) 、 IV型
コラゲナーゼ活性の測定のために、放射性同位体で標識
した■型コラーゲンが基質として用いられる。なおこの
基質は本発明者らの開発した方法にしたがって・調整さ
れル(TrylJgvason et al、、 Bi
ochemistry19.1284〜1289.19
80)。この活性分析は、精製過程の多段階における精
製度を知るために必要である。この方法により、血清を
含まない器官あるいは細胞培養液中のコラゲナーゼ活性
を測ることができる。
コラゲナーゼ活性の測定のために、放射性同位体で標識
した■型コラーゲンが基質として用いられる。なおこの
基質は本発明者らの開発した方法にしたがって・調整さ
れル(TrylJgvason et al、、 Bi
ochemistry19.1284〜1289.19
80)。この活性分析は、精製過程の多段階における精
製度を知るために必要である。この方法により、血清を
含まない器官あるいは細胞培養液中のコラゲナーゼ活性
を測ることができる。
■型コラゲナーゼ酵素は血清なしの悪性腫瘍組織の培養
液あるいは培養悪性細胞の培養液よりえることができる
。組織片あるいは細胞は普通5日間試験管培養し培養液
を日ごとに集める。
液あるいは培養悪性細胞の培養液よりえることができる
。組織片あるいは細胞は普通5日間試験管培養し培養液
を日ごとに集める。
■型コラゲナーゼを含むタンパク画分を硫安で沈澱させ
、そして以下に例示した実施例におけるように数段のク
ロマトグラフィーカラムを通す。
、そして以下に例示した実施例におけるように数段のク
ロマトグラフィーカラムを通す。
精製した■型コラゲナーゼ抗原は分子量約70.000
でゲル電気泳動法で調べたとき分子量62 、000と
68,000の2つのポリペプチド鎖を含む。
でゲル電気泳動法で調べたとき分子量62 、000と
68,000の2つのポリペプチド鎖を含む。
■型コラゲナーゼ酵素抗原は最大活性をうるためにタン
パク分解性の活性化を必要とし、最適りHは7.4であ
る。■型コラゲナーゼ酵素抗原は、金属(イオン)依存
性でカルシウムをその活性のために必要とする。その酵
素抗原は特異的で腫瘍組織”中のコラーゲン、■型、■
型または■型、あるいは他の基底膜成分あるいはカゼイ
ンは分解しない。
パク分解性の活性化を必要とし、最適りHは7.4であ
る。■型コラゲナーゼ酵素抗原は、金属(イオン)依存
性でカルシウムをその活性のために必要とする。その酵
素抗原は特異的で腫瘍組織”中のコラーゲン、■型、■
型または■型、あるいは他の基底膜成分あるいはカゼイ
ンは分解しない。
■型コラゲナーゼ酵素抗原の分離と精製により、前記の
酵素抗原に対する特異的抗体の生産が可能になる。これ
らの抗体の精製は、体液、組織抽出液組織片、細胞ある
いは器官培養物、培養液などの生体試料中での■型コラ
ゲナーゼの定性的定量的測定による転移性細胞活性の高
感度な免疫学的検出法の開発を可能にする。
酵素抗原に対する特異的抗体の生産が可能になる。これ
らの抗体の精製は、体液、組織抽出液組織片、細胞ある
いは器官培養物、培養液などの生体試料中での■型コラ
ゲナーゼの定性的定量的測定による転移性細胞活性の高
感度な免疫学的検出法の開発を可能にする。
抗血清のモノクローナル抗体と同様、ポリクロ−ナル抗
体の調整を、すでに確立している方法で行なうことがで
きる。抗血清の調整はウサギあるいはギニアビッグのよ
うな実験動物に、数回にわたって精製した■型コラゲナ
ーゼを皮下に注射し、そして適当な器官がすぎたあとそ
の動物から血清をぬきとればよい。当業者によく知られ
ている酵素免疫法(ELISA)、ウェスタンイムノブ
ロッティング法や免疫染色法などの技術により特異的抗
体がそのぬきとった抗血清中に存在することを試験する
。
体の調整を、すでに確立している方法で行なうことがで
きる。抗血清の調整はウサギあるいはギニアビッグのよ
うな実験動物に、数回にわたって精製した■型コラゲナ
ーゼを皮下に注射し、そして適当な器官がすぎたあとそ
の動物から血清をぬきとればよい。当業者によく知られ
ている酵素免疫法(ELISA)、ウェスタンイムノブ
ロッティング法や免疫染色法などの技術により特異的抗
体がそのぬきとった抗血清中に存在することを試験する
。
抗血清はマウス■型コラゲナーゼ抗原に対して本発明者
らが開発した方法により生産されている。これらの抗血
清はイムノブロッティング、ELISAそして免疫ケイ
先決により示されるように、マウスの抗原と反応する。
らが開発した方法により生産されている。これらの抗血
清はイムノブロッティング、ELISAそして免疫ケイ
先決により示されるように、マウスの抗原と反応する。
従来の抗血清の調整をするためには、■型コラゲナーゼ
酵素抗原は高度に精製されておりかつ単一のタンパク質
でなければならない。ウサギやギニアピッッグを用いて
従来の抗血清を生産するために、充分量かつ絶対的に純
粋なヒトの■型コラゲナーゼ抗原をうろことはきわめて
むづかしい。この問題を克服するべく我々はモノクロー
ナル抗体を調整するためにケーラー(にoehler)
とミルスティン(Hi 1stein) (Natur
e。
酵素抗原は高度に精製されておりかつ単一のタンパク質
でなければならない。ウサギやギニアピッッグを用いて
従来の抗血清を生産するために、充分量かつ絶対的に純
粋なヒトの■型コラゲナーゼ抗原をうろことはきわめて
むづかしい。この問題を克服するべく我々はモノクロー
ナル抗体を調整するためにケーラー(にoehler)
とミルスティン(Hi 1stein) (Natur
e。
256.476.1975)の方法を用いている。この
方法の利点は、抗原が絶対的に純粋である必要はない。
方法の利点は、抗原が絶対的に純粋である必要はない。
なぜなら、試験管条件下で特異的抗体をつくる細胞のク
ローン(ハイブリッド)を選抜するからである。
ローン(ハイブリッド)を選抜するからである。
前記ケーラーとミルスティンの方法にしたがって、10
0μ9のヒトの線維芽腫瘍の細胞の培養液より分離して
高度に精製した■型コラゲナーゼを2回にわたってBA
LB/Cマウスに皮下注射し免疫化した。6週間後抗血
清をELISA法により試験した。えられた結果が満足
のいくものであれば適当量の■型コラゲナーゼ抗原をそ
のマウスに与え、もう一度免疫化した。2匹の免疫化し
たマウスよりえた膵臓とマウスのミエローマ細胞(N8
−1)とを融合させ、そして常法によりミクロカルチャ
ートレイ上で培養した。453穴のうち46穴が、EL
ISA法により抗体に対して陽性であった。
0μ9のヒトの線維芽腫瘍の細胞の培養液より分離して
高度に精製した■型コラゲナーゼを2回にわたってBA
LB/Cマウスに皮下注射し免疫化した。6週間後抗血
清をELISA法により試験した。えられた結果が満足
のいくものであれば適当量の■型コラゲナーゼ抗原をそ
のマウスに与え、もう一度免疫化した。2匹の免疫化し
たマウスよりえた膵臓とマウスのミエローマ細胞(N8
−1)とを融合させ、そして常法によりミクロカルチャ
ートレイ上で培養した。453穴のうち46穴が、EL
ISA法により抗体に対して陽性であった。
この方法により、10個の適当な雑種細胞系統がみつか
った。これらの10個の雑種系統は悪性のヒトの線雑芽
腫瘍と悪性の肺肉腫5ttviに高度に陽性である一方
、普通ヒトの皮膚の細胞とはわずかにしか反応しなかっ
た。これら10個の雑種系統のうちから3個のもつとも
高い力価をもつ系統を、希釈法により試験管中でクロー
ニングするためおよびモノクローナル抗体産生のため選
抜した。このようにして産生、分離そして精製される■
型コラゲナーゼ抗原に対するポリクローナルやモノクロ
ーナル抗体は、適当な放射性同位体、酵素あるいはケイ
光標識などの当業者によく知られた方法で標識化するこ
とができる。
った。これらの10個の雑種系統は悪性のヒトの線雑芽
腫瘍と悪性の肺肉腫5ttviに高度に陽性である一方
、普通ヒトの皮膚の細胞とはわずかにしか反応しなかっ
た。これら10個の雑種系統のうちから3個のもつとも
高い力価をもつ系統を、希釈法により試験管中でクロー
ニングするためおよびモノクローナル抗体産生のため選
抜した。このようにして産生、分離そして精製される■
型コラゲナーゼ抗原に対するポリクローナルやモノクロ
ーナル抗体は、適当な放射性同位体、酵素あるいはケイ
光標識などの当業者によく知られた方法で標識化するこ
とができる。
これらのポリクローナルやモノクローナル抗体そして■
型コラゲナーゼ抗原、そしてさらにそれらは標識化ある
いは標識化せずに適当な固体担体につけることができ、
また本発明の一部を形成する免疫学的方法にも用いられ
る。
型コラゲナーゼ抗原、そしてさらにそれらは標識化ある
いは標識化せずに適当な固体担体につけることができ、
また本発明の一部を形成する免疫学的方法にも用いられ
る。
本発明における転移性細胞活性をもった悪性細胞の検出
法によれば、標識つきあるいは標識なし、結合あるいは
非結合、ポリクローナルあるいはモノクローナル抗体組
成物および標識つきあるいは標識なし、結合あるいは非
結合のIV型コラゲナーゼ酵素抗原組成物の補助により
、従来の免疫学的手法を用いて、■型コラゲナーゼ酵素
抗原の組織抽出液、組織切片などの生物試料中における
存在が測定される。
法によれば、標識つきあるいは標識なし、結合あるいは
非結合、ポリクローナルあるいはモノクローナル抗体組
成物および標識つきあるいは標識なし、結合あるいは非
結合のIV型コラゲナーゼ酵素抗原組成物の補助により
、従来の免疫学的手法を用いて、■型コラゲナーゼ酵素
抗原の組織抽出液、組織切片などの生物試料中における
存在が測定される。
その免疫学的方法において、ウサギの抗血清が■型コラ
ゲナーゼ抗原の分析に用いられた。
ゲナーゼ抗原の分析に用いられた。
ウェスタンイムノブロッティングによる証明によると抗
血清は分子量62K(62,000)と68K(68,
000)の領域を染色した。その領域は精製した■型コ
ラゲナーゼ酵素抗原に対応する。さらにその抗血清はヒ
ト肺ガンと正常肺組織の免疫学的染色に使われた。組織
の凍結切片ははじめにウサギ抗血清とインキュベートさ
れ、次いでFITC−共役の抗ラビットIgGとインキ
ュベートされた。10個の正常組織試料からはどれから
もケイ光は検出されなかった。すなわちそれらは■型コ
ラゲナーゼ抗原を含んでいなかった。
血清は分子量62K(62,000)と68K(68,
000)の領域を染色した。その領域は精製した■型コ
ラゲナーゼ酵素抗原に対応する。さらにその抗血清はヒ
ト肺ガンと正常肺組織の免疫学的染色に使われた。組織
の凍結切片ははじめにウサギ抗血清とインキュベートさ
れ、次いでFITC−共役の抗ラビットIgGとインキ
ュベートされた。10個の正常組織試料からはどれから
もケイ光は検出されなかった。すなわちそれらは■型コ
ラゲナーゼ抗原を含んでいなかった。
一方25個の肺ガン組織試料では25個すべてが腫瘍の
境界領域において強いケイ光を発した。従って本発明に
おける免疫学的方法は、組織中における悪性細胞の存在
を検出することができ、また染色領域は必ず腫瘍の境界
領域にあったので、■型コラゲナーゼ抗原が浸潤細胞に
多いことは明らかである。
境界領域において強いケイ光を発した。従って本発明に
おける免疫学的方法は、組織中における悪性細胞の存在
を検出することができ、また染色領域は必ず腫瘍の境界
領域にあったので、■型コラゲナーゼ抗原が浸潤細胞に
多いことは明らかである。
マウス雑種クローンより産生されたIV型コラゲナーゼ
酵素抗原に対する抗体は、培養細胞の免疫学的染色に用
いられた。用いた細胞は、ヒトの線維肉腫(HT−10
80) 、肺肉腫ml胞(t4cF−7)とヒト正常皮
膚線維芽細胞であった。細胞を微量力価検定用プレート
上で培養したあと、抗体と反応させた。そのプレートを
洗い、ビオチン化した馬の抗マウスIgG/IgMとイ
ンキュベートし、洗った。そのあとアビジン−ビオチン
−パーオキシダーゼ試薬を細胞についたマウス免疫グロ
ブリン−抗マウス免疫グロブリンコンプレックスに着色
するために加えた。結果は、悪性HT−1080とHC
F−7細胞は染色されたが、正常の皮膚11i11[芽
細胞は染色されなかった。このようにヒトIV型コラゲ
ナーゼに対するモノクローナル抗体は■型コラゲナーゼ
酵素抗原を含む悪性細胞と前記酵素抗原を含まない正常
細胞とを区別するために用いることができる。
酵素抗原に対する抗体は、培養細胞の免疫学的染色に用
いられた。用いた細胞は、ヒトの線維肉腫(HT−10
80) 、肺肉腫ml胞(t4cF−7)とヒト正常皮
膚線維芽細胞であった。細胞を微量力価検定用プレート
上で培養したあと、抗体と反応させた。そのプレートを
洗い、ビオチン化した馬の抗マウスIgG/IgMとイ
ンキュベートし、洗った。そのあとアビジン−ビオチン
−パーオキシダーゼ試薬を細胞についたマウス免疫グロ
ブリン−抗マウス免疫グロブリンコンプレックスに着色
するために加えた。結果は、悪性HT−1080とHC
F−7細胞は染色されたが、正常の皮膚11i11[芽
細胞は染色されなかった。このようにヒトIV型コラゲ
ナーゼに対するモノクローナル抗体は■型コラゲナーゼ
酵素抗原を含む悪性細胞と前記酵素抗原を含まない正常
細胞とを区別するために用いることができる。
つぎに実施例をあげて本発明を説明するが、本発明はか
かる実施例のみに限定されるものではない。
かる実施例のみに限定されるものではない。
実施例1
[IV型コラゲナーゼ抗原の単離]
マウスの■型コラゲナーゼの調製のために転移性PIT
腫瘍をC57131/6Jマウス中に増殖させる。約2
週間の増殖のあとその増殖した腫瘍を摘出し細断し血清
なしのRPHI−1640培地中で器管培養として5日
間培養する。その培地を日毎集め硫安(25〜60%飽
和)でタンパク質を沈澱させる。その沈澱を酵素用緩衝
液(0,05HTris−HCd 、 pH7,4,0
,2HNa C6’t、 108 Ca C1! 2
)にとかし、はとんどの酵素活性が吸着されるコンカナ
バリンAアガロースカラムに通す。その結合活性体を1
Hα−メチルマンノサイドで溶出しIV型コラーゲンア
ガロースカラムに通す。カラムに結合させるコラーゲン
は腫瘍の増殖するEH8基底膜マトリックスから抽出し
精製する。
腫瘍をC57131/6Jマウス中に増殖させる。約2
週間の増殖のあとその増殖した腫瘍を摘出し細断し血清
なしのRPHI−1640培地中で器管培養として5日
間培養する。その培地を日毎集め硫安(25〜60%飽
和)でタンパク質を沈澱させる。その沈澱を酵素用緩衝
液(0,05HTris−HCd 、 pH7,4,0
,2HNa C6’t、 108 Ca C1! 2
)にとかし、はとんどの酵素活性が吸着されるコンカナ
バリンAアガロースカラムに通す。その結合活性体を1
Hα−メチルマンノサイドで溶出しIV型コラーゲンア
ガロースカラムに通す。カラムに結合させるコラーゲン
は腫瘍の増殖するEH8基底膜マトリックスから抽出し
精製する。
またそのコラーゲンは完全な■型コラーゲン鎖(分子量
185にと175K)を含む。酵素によるコラーゲン−
アガロースの分解をさけるため、カラムに流す緩衝液か
らCaC/zを除いておく。結合した酵素活性は1Hの
Na C6または50%のエチレングリコールを含む緩
衝液でカラムから溶出する。その■型コラゲナーゼの最
終的な精製は、たとえばバイオ−ゲルA (Bio−G
el A)0.5mのような分子ふるいにより行なわれ
る。その分子ふるいの中で■型コラゲナーゼは約ieo
、oooの分子量として移動する。このようにして精製
した酵素は分子量68にと62にの2本のベプタイド鎖
をもつ。
185にと175K)を含む。酵素によるコラーゲン−
アガロースの分解をさけるため、カラムに流す緩衝液か
らCaC/zを除いておく。結合した酵素活性は1Hの
Na C6または50%のエチレングリコールを含む緩
衝液でカラムから溶出する。その■型コラゲナーゼの最
終的な精製は、たとえばバイオ−ゲルA (Bio−G
el A)0.5mのような分子ふるいにより行なわれ
る。その分子ふるいの中で■型コラゲナーゼは約ieo
、oooの分子量として移動する。このようにして精製
した酵素は分子量68にと62にの2本のベプタイド鎖
をもつ。
ヒトの■型コラゲナーゼ活性は血清なし・の培地で培養
したヒト線維芽肉腫細胞(HT−1080)からマウス
の場合と同じようにして調製される。
したヒト線維芽肉腫細胞(HT−1080)からマウス
の場合と同じようにして調製される。
その線維芽肉腫細胞は10%仔牛血清中に胎児のコンフ
リユエンシー(conf Iuency)を含むデュル
ベコス(Du l beccos )によるイーグルの
改変培地(OMEN)中でローラーボトルを使って培養
し、ついで血清をぬいた培地に移して培養される。培養
液は日毎に5日間にわたって集める。
リユエンシー(conf Iuency)を含むデュル
ベコス(Du l beccos )によるイーグルの
改変培地(OMEN)中でローラーボトルを使って培養
し、ついで血清をぬいた培地に移して培養される。培養
液は日毎に5日間にわたって集める。
実施例2
[マウス■型コラゲナーゼに対する抗血清の調製]
抗原(100〜200μg)をリン酸緩衝された生理食
塩水(PBS)と70インド(Freund)の完全ア
ジュバントの等量混合液を用いてマウスの皮下に注射す
る。そして4週間後に今度は70インドの不完全アジュ
バントを用いて抗体をもう一度注射する。そのあと追加
注射を3週間ごとに2回行なう。最後の追加注射のあと
3週間して血液をぬき、その血清を特異性と力価につい
てELISA 、ウェスタンブロッティング、そして免
疫染色法により検査する。
塩水(PBS)と70インド(Freund)の完全ア
ジュバントの等量混合液を用いてマウスの皮下に注射す
る。そして4週間後に今度は70インドの不完全アジュ
バントを用いて抗体をもう一度注射する。そのあと追加
注射を3週間ごとに2回行なう。最後の追加注射のあと
3週間して血液をぬき、その血清を特異性と力価につい
てELISA 、ウェスタンブロッティング、そして免
疫染色法により検査する。
実施例3
[モノクローナル抗体の調製と分析コ
完全70インドアジュバント中の部分精製した旧−10
80酵素100μ9を用いてBALB/Cマウスを免疫
化する。そして3週間の間をおき、50μ9の抗原を用
いて2回にわたりさらに免疫化する。抗血清の力価を最
後の注射から3週間後にELISAにより分析検査した
とき、結果墨満足であれば(希釈≦1:500)、その
動物に50μqの抗原をさらに静脈注射する。ケーラー
とミルスティン(tlature 、256.696.
1975)による方法で4日後に雑種化を行なう。
80酵素100μ9を用いてBALB/Cマウスを免疫
化する。そして3週間の間をおき、50μ9の抗原を用
いて2回にわたりさらに免疫化する。抗血清の力価を最
後の注射から3週間後にELISAにより分析検査した
とき、結果墨満足であれば(希釈≦1:500)、その
動物に50μqの抗原をさらに静脈注射する。ケーラー
とミルスティン(tlature 、256.696.
1975)による方法で4日後に雑種化を行なう。
2匹のマウスよりとった免疫化したnmm胞をMS−1
あるいは対応するミエローマ細胞と融合させ、融合した
細胞は96個の穴をもつ微量力価検定板に1つの穴当り
約2 X 105細胞を植え、マウスのマクロファージ
をフィーダーセルとした( 6 X 103個)。i胞
は■^■の選択培地(10−4Mヒボクサンチン、10
−78アミノペチン、1.6X105 Mと20%FC
8を含む叶EH)中で3〜4週間培養する。この培地は
ハイブリッド細胞だけを成育させる。ELISA法によ
り細胞の抗体産生を検定する。通常的10%の穴が陽性
である。
あるいは対応するミエローマ細胞と融合させ、融合した
細胞は96個の穴をもつ微量力価検定板に1つの穴当り
約2 X 105細胞を植え、マウスのマクロファージ
をフィーダーセルとした( 6 X 103個)。i胞
は■^■の選択培地(10−4Mヒボクサンチン、10
−78アミノペチン、1.6X105 Mと20%FC
8を含む叶EH)中で3〜4週間培養する。この培地は
ハイブリッド細胞だけを成育させる。ELISA法によ
り細胞の抗体産生を検定する。通常的10%の穴が陽性
である。
抗体の特異性はウェスタンブロッティング法と免疫染色
法で調べる。
法で調べる。
96穴の微量力価検定プレートを用いてELISA法を
行なう。約50〜100μ9の抗原を各穴に入れて乾燥
させる。50μ、001%FC8で30分間インキュベ
ートし、抗原のフリーの結合座位を41さいたのち、そ
の穴をPBSで洗う。次に抗血清としてハイブリッドの
上清を各穴(50μjりに加えてインキュベートする。
行なう。約50〜100μ9の抗原を各穴に入れて乾燥
させる。50μ、001%FC8で30分間インキュベ
ートし、抗原のフリーの結合座位を41さいたのち、そ
の穴をPBSで洗う。次に抗血清としてハイブリッドの
上清を各穴(50μjりに加えてインキュベートする。
PBSにより洗ったのち、50μmのビオチン化した馬
の抗マウスIgGの1%FC8を含む溶液を加え30分
間インキュベートしたのち、PBSで洗う。そのあとア
ビジン−ビオチン−パーオキシダーゼ試薬を加えてイン
キュベートする。さらにそのあとそのパーオキシダーゼ
の基質(o、oi%0−ダイアニシン、0.01%H2
0,を含むPBS)を加え、生じたかつ色をティタテツ
クマルチスキャン分光光度計で測る。
の抗マウスIgGの1%FC8を含む溶液を加え30分
間インキュベートしたのち、PBSで洗う。そのあとア
ビジン−ビオチン−パーオキシダーゼ試薬を加えてイン
キュベートする。さらにそのあとそのパーオキシダーゼ
の基質(o、oi%0−ダイアニシン、0.01%H2
0,を含むPBS)を加え、生じたかつ色をティタテツ
クマルチスキャン分光光度計で測る。
ウェスタンブロッティング法は、抗体が正確にどのポリ
ペプチド鎖と反応したかを示すので、よりすぐれた抗体
の分析法である。抗原また(ま抗原を含むタンパク質混
合物は、はじめに10%ドデシル硫酸ナトリウム−ポリ
アクリルアミドゲル電気泳動で分離したのち、ニトロセ
ルロース股上に水平に塗抹し、0.1への電流で1夜間
展開する。次にそのニトロセルロース膜をヘパリントル
イジンブルーの染色液で染色する。タンパク質を含むニ
トロセルロース膜片を切り出し、エタノール50%と酢
酸8%と水42%よりなる溶液で脱染色する。ELIS
A法で用いたと同様)方法でそのニトロセルロース切片
の免疫染色を行なう。活性抗原はその抗体に対してのみ
力翫っ色に発色するが、しかしもし抗体が抗原の3次構
造に対してつくられているなら、ゲル電気泳動中に抗原
タンパクが変性しているので、結果が陰性となることが
あることに注意しなげればならない。
ペプチド鎖と反応したかを示すので、よりすぐれた抗体
の分析法である。抗原また(ま抗原を含むタンパク質混
合物は、はじめに10%ドデシル硫酸ナトリウム−ポリ
アクリルアミドゲル電気泳動で分離したのち、ニトロセ
ルロース股上に水平に塗抹し、0.1への電流で1夜間
展開する。次にそのニトロセルロース膜をヘパリントル
イジンブルーの染色液で染色する。タンパク質を含むニ
トロセルロース膜片を切り出し、エタノール50%と酢
酸8%と水42%よりなる溶液で脱染色する。ELIS
A法で用いたと同様)方法でそのニトロセルロース切片
の免疫染色を行なう。活性抗原はその抗体に対してのみ
力翫っ色に発色するが、しかしもし抗体が抗原の3次構
造に対してつくられているなら、ゲル電気泳動中に抗原
タンパクが変性しているので、結果が陰性となることが
あることに注意しなげればならない。
実施例4
[■型コラゲナーゼの免疫染色コ
マウスの精製したW型コラゲナーゼに対するウサギの抗
血清をヒトの正常肺組織および悪性肺ガン組織中での■
型コラゲナーゼの分布を明らかにした。10個の正常肺
組織および25個の肺ガン組織の試料の凍結切片(5μ
■厚)を1%FC8であらかじめインキュベートしたあ
とPBSで洗った。そのあと1:50希釈の抗血清を前
記試料とインキュベートし、PBSで洗った。さらにそ
れらの切片をFITC−共役の山羊の抗ウサギ血清とと
もに4℃で1夜間放置したのちPBSで洗った。切片の
ケイ光を調べたところ、どの正常組織試料も染色されず
、一方ガン組織試料25例すべてに明瞭なケイ光が観察
された。ケイ光染色は浸潤腫瘍部の周縁前面がもつとも
強かった。また腫瘍組織中の10〜80%の細胞が染色
された。
血清をヒトの正常肺組織および悪性肺ガン組織中での■
型コラゲナーゼの分布を明らかにした。10個の正常肺
組織および25個の肺ガン組織の試料の凍結切片(5μ
■厚)を1%FC8であらかじめインキュベートしたあ
とPBSで洗った。そのあと1:50希釈の抗血清を前
記試料とインキュベートし、PBSで洗った。さらにそ
れらの切片をFITC−共役の山羊の抗ウサギ血清とと
もに4℃で1夜間放置したのちPBSで洗った。切片の
ケイ光を調べたところ、どの正常組織試料も染色されず
、一方ガン組織試料25例すべてに明瞭なケイ光が観察
された。ケイ光染色は浸潤腫瘍部の周縁前面がもつとも
強かった。また腫瘍組織中の10〜80%の細胞が染色
された。
ヒトHT−1080肉種I8胞の■型コラゲナーゼに対
するモノクローナル抗体を、培養したHT−1080細
胞、ヒト悪性肺肉腫(MCF−7)およびヒト皮膚線維
芽細胞の染色に用いた。それらの細胞はカバーグラス上
に細胞が限界まで増える手前まで培養し、そしてメタノ
ールで一20℃にて10分間で固定した。それらの細胞
は次にあらかじめ1%FC3でインキュベートしたあと
PBSで洗った。ついでマウスの抗体と2時間インキュ
ベートしたあと洗った。その後ビオチン化した馬の抗マ
ウスIgGと30分間インキュベートしたのち洗い、さ
らにアビジン−ビオチン−パーオキシダーゼ試薬でイン
キュベートした。最後に、それらの細胞試料をパーオキ
シダーゼの基質とインキュベートした。その抗体は、悪
性のHT−1080とHCF−7細胞を明瞭に染色し、
一方線維芽細胞においては陰性であった。
するモノクローナル抗体を、培養したHT−1080細
胞、ヒト悪性肺肉腫(MCF−7)およびヒト皮膚線維
芽細胞の染色に用いた。それらの細胞はカバーグラス上
に細胞が限界まで増える手前まで培養し、そしてメタノ
ールで一20℃にて10分間で固定した。それらの細胞
は次にあらかじめ1%FC3でインキュベートしたあと
PBSで洗った。ついでマウスの抗体と2時間インキュ
ベートしたあと洗った。その後ビオチン化した馬の抗マ
ウスIgGと30分間インキュベートしたのち洗い、さ
らにアビジン−ビオチン−パーオキシダーゼ試薬でイン
キュベートした。最後に、それらの細胞試料をパーオキ
シダーゼの基質とインキュベートした。その抗体は、悪
性のHT−1080とHCF−7細胞を明瞭に染色し、
一方線維芽細胞においては陰性であった。
この免疫染色の例から明らかなごとく、■型コラゲナー
ゼに対する抗体は浸潤性をもった悪性腫瘍細胞を検知す
ることができる。
ゼに対する抗体は浸潤性をもった悪性腫瘍細胞を検知す
ることができる。
アメリカ合衆国20817メリーラ
ンド州ベセスダ・ソノマ・ロー
ド5621
■出 願 人 ランス・アレン・リオツタアメリカ合衆
国20817メリーラ ンド州ベセスダ・ソノマ・ロー ド5621
国20817メリーラ ンド州ベセスダ・ソノマ・ロー ド5621
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 転移性活性を有する腫瘍細胞の検出に有用な基底膜
コラーゲン分解酵素。 2 酵素がメタルプロプアーゼであり、基質が■型コラ
ーゲンである特許請求の範囲第1項記載の基底膜分解酵
素。 3 ゲル電気泳動法により測定した分子量が約62.0
00および68,000である2つのポリペプチド鎖よ
りなる分子量約70,000の精製された■型コラゲナ
ーゼ酵素抗原を含む特許請求の範囲第1項記載の基底膜
分解酵素。 4 精製された■型コラゲナーゼ酵素抗原が適当な標識
で標識づけされている特許請求の範囲第1項、第2項ま
たは第3項記載の基底膜分解酵素。 5 ■型コラゲナーゼ酵素抗原に対して特異的な抗体よ
りなる転移性細胞活性を有する腫瘍細胞の検出に有用な
抗体組成物。 6 精製された■型コラゲナーゼ酵素抗原があらかじめ
接種された動物の血清から採集される抗血清を含む特許
請求の範囲第5項記載の抗体組成物。 7 ■型コラゲナーゼ酵素抗原に対するモノクローナル
抗体を含む特許請求の範囲第5項記載の抗体組成物。 8 抗体が適当な標識で標識づけ□されている特許請求
の範囲第5項、第6項または第7項記載の抗体組成物。 9 抗体が適当な固体担体に結合されている特許請求の
範囲第5項、第6項、第7項または第8項記載の抗体組
成物。 10 ■型コラゲナーゼ酵素抗原に対する抗体の助けに
より、生物学的試料中の■型コラゲナーゼ酵素抗原を測
定することからなる転移性細胞活性を有する腫瘍細胞の
検出に有用な免疫学的方法。 11 抗体が適当な標識で標識づけされている特許請求
の範囲第10項記載の方法。 12 抗体が適当な固体担体に結合されている特許請求
の範囲第10項記載の方法。 13 標識づけされたIV型フロラゲナーゼ酵素抗原該
抗原に対する抗体とを用いる競合的イムノアッセイの助
けにより、IVVコラゲナーゼ酵素抗原を測定すること
からなる転移性細胞活性を有する腫瘍細胞の検出に有用
な免疫学的方法。 14 IV型コラゲナーげ酵素抗原が適当な固体担体に
結合されている特許請求の範囲第13項記載の方法。 15 (a)組織切片または細胞を■型コラゲナーゼ酵
素抗原に対して特異的な第1の抗体とインキュベートし
、 (b)該酵素抗原に第1の抗体を結合させ、ついで (C)第1の抗体に結合して生物的試料中に■型コラゲ
ナーゼ酵素抗原の存在を示す標識づけされた第2の抗体
を第1の抗体に加えることからなる生物的試料中のIV
Vコラゲナーゼ酵素抗原の測定により、転移性1llp
IA活性を有する腫瘍細胞の検出に有用な免疫染色法。 1G (a)生物的被験試料の存在下に、標識づけされ
たIVVコラゲナーゼ酵素抗原を該抗原に対して特異的
な第1の抗体とインキュベートし、 (b)反応を進め、第1の抗体に対して試料中の■型コ
ラゲナーゼ酵素抗原と標識づけされた■型コラゲナーゼ
酵素抗原とを競合させ、(C)形成された抗原−抗体コ
ンプレックスを分離し、ついで (d)該コンプレックス中または上澄液中の標識づけさ
れた■型コラゲナーゼ酵素抗原の量を測定する ことからなる生物的試料中のIVVコラゲナーゼ酵素抗
原の測定により、転移性細胞活性を有する腫瘍細胞の検
出に有用な免疫学的方法。 17 (a)生物的試料と共にIVVコラゲナーゼ酵素
抗原に対する抗体をインキュベートし、(b)試料中の
IVVコラゲナーゼ酵素抗原を抗体に結合させ、 (C)該IVVコラゲナーゼ酵素抗原の異なるサイトに
結合する第2の標識づけされた抗体を加え、ついで (d) IVVコラゲナーゼ酵素抗原に結合することの
できなかった標識づけされた抗体の量を測定する ことからなる生物的試料中のIVVコラゲナーゼ酵素抗
原の測定により、転移性細胞活性を有する腫瘍細胞の検
出に有用な免疫学的方法。 18 IVVコラゲナーゼ酵素抗原に対する抗体を適当
な固体担体に固定し、該抗体の助けにより精製すること
を特徴とするIVVコラゲナーゼ酵素抗原の精製法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US06/496,230 US4677058A (en) | 1983-05-19 | 1983-05-19 | Detecting malignant cells with monoclonal antibodies specific to type IV collagenase enzyme |
US496230 | 1983-05-19 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS602187A true JPS602187A (ja) | 1985-01-08 |
Family
ID=23971775
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59101622A Pending JPS602187A (ja) | 1983-05-19 | 1984-05-18 | 免疫学的方法による転移性細胞活性の測定法 |
Country Status (26)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4677058A (ja) |
JP (1) | JPS602187A (ja) |
AU (1) | AU2808784A (ja) |
BE (1) | BE899663A (ja) |
CA (1) | CA1230052A (ja) |
CH (1) | CH668838A5 (ja) |
DD (1) | DD251208A5 (ja) |
DE (1) | DE3418625A1 (ja) |
DK (1) | DK243184A (ja) |
ES (1) | ES8605904A1 (ja) |
FI (1) | FI841897A (ja) |
FR (1) | FR2546302B1 (ja) |
GB (1) | GB2142030B (ja) |
HU (1) | HU195004B (ja) |
IL (1) | IL71802A0 (ja) |
IT (1) | IT1175842B (ja) |
LU (1) | LU85366A1 (ja) |
NL (1) | NL8401616A (ja) |
NO (1) | NO841993L (ja) |
NZ (1) | NZ208108A (ja) |
PL (1) | PL247745A1 (ja) |
PT (1) | PT78610B (ja) |
RO (1) | RO92427A (ja) |
SE (1) | SE8402703L (ja) |
YU (1) | YU86984A (ja) |
ZA (1) | ZA843539B (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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JPH0734014B2 (ja) * | 1990-01-26 | 1995-04-12 | アメリカ合衆国 | コラーゲナーゼを定量的に測定するための方法 |
Families Citing this family (13)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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