JPS59166866A - 分析方法 - Google Patents

分析方法

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JPS59166866A
JPS59166866A JP59034134A JP3413484A JPS59166866A JP S59166866 A JPS59166866 A JP S59166866A JP 59034134 A JP59034134 A JP 59034134A JP 3413484 A JP3413484 A JP 3413484A JP S59166866 A JPS59166866 A JP S59166866A
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    • G01N33/74Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving hormones or other non-cytokine intercellular protein regulatory factors such as growth factors, including receptors to hormones and growth factors

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は試料およびラベル付き試薬を含有する反応混合
物を形成せしめ、試料中のアナライトの1によって決る
割合で二つの形の間に試薬を分割するように混合物を培
養することによって試料中のアナライト(analyt
e ) iこ対する分析を行なう方法番こ関する。かか
る分析には良く知られている免疫分析、ワンサイト免疫
測定分析(one−site immunometri
c assayJ、ツーサイト(またはガントウィッチ
)免疫測定分析(two−site immunome
tric assay )および凝集反応分析(agg
lutination assay )を含む0不均質
分析においては、ラベル付き試薬の二つの形を分離する
ことが必要である、かくして一つの量または濃度が他に
よって妨害されることなく測定できる。種々な分離方法
が使用されており、これには沈澱、沈降、濾過、遠心分
離および傾瀉を含む。本発明はラベル付き試薬の二つの
形を分離する別の方法に関する。
ジエイ・エル・ギーゲル等はC工in、Chem、28
/9゜1984頁〜1898頁(19g2年)に放射状
分配免疫分析を発表しており、こnはアナライトに対す
る抗体を(第二抗体によって)ガラス繊維戸紙の中心点
で非移動性番こしている。アナライトを含有する試料を
、アナライトの酵素ラベル付は変種(version 
)での培養後、スポットに付与している。次に洗浄溶液
をスポットに付与し、非移動性にされた抗体に結合さn
なかったラベル付き試薬の部分をスポットから移動させ
ている。洗浄溶液は酵素の基質を含有する。最後にスポ
ットに残った酵素濃度を螢光11材□ 料の生成速度によって測定する。酵素は自動操作番こ良
く適合されるが次の如き多くの弱点を有している: (1)意図するそnぞれ異なる分析に対し別々のセット
のP紙を必要とする。
(11)非移動性にさnた抗体を用いp紙の副整に注意
を払わなければならない、何故なら反応性抗体の瞳は均
一番こ分布し、一つのP紙から他の戸紙へと同じでなけ
ればならない。
+1111同時にF紙に一つより多くの試薬を加えるこ
とができない。各試薬の添加後火の試薬の添加前に培養
期間を行なわなけnばならない。
さもないと第一の試薬は続く試薬の添加≦こよって不移
動性番こされた抗体から洗い出されてしまう。
tlV)特に高温で行なうとき培養期間中にP紙が乾燥
するのを防ぐ予防策を講じなけわばならない。
本発明はこnらの欠点を克服することにある。
本発明は試料中のアナライトの分析を行なう方法を提供
することにあり、この方法はクロマトグラフィ媒体を用
意し、一部が上記媒体に移動性である形で存在し、一部
が上記媒体に非移動性である形で存在するラベル付試薬
を含有する反応混合物を形成し、二つの形の割合を試料
中のアナライトの艮によって決定し、反応混合物をクロ
マトグラフィ媒体上のスポットに付与し、ラベル付き試
薬の移動性の形をスポットから移動させ、その後ラベル
付試薬の移動性および非移動性の形の一つまたは両者を
測定することからなる。
本発明方法によnば水性媒体中の他の所望の試薬とアナ
ライトを含有する試料の反応混合物を形成し、培養し、
所望によってそ21.を数段階で行なう。次いで反応が
完了したときまたは所望時間続けたとき、反応混合物の
全部または一部をクロマトグラフィ媒体上のスポットに
付与する。媒体上で非移動性である種はスポットで残り
、移動性の種はそこから移動し去る。所望によってはス
ポットに好適な溶媒を続いて付与することによって移動
を助けることができる。
好適な溶媒は非移動仕種でなく移動仲種をクロマトグラ
フィ媒体を通って移動される溶媒である。水性液体の使
用が好ましいが、エタノールの如き有機液体も使用可能
である。所望によってC1溶媒は、クロマトグラフィ媒
体中でラベル付き試薬を非移動性にす、るようラベル付
き試薬の形の一つを沈淑させるよう番こ選択してもよい
ラベル付試薬の移動性の形の移動が充分な程度に生じた
とき、ラベル付き試薬の移動性または非移動性の形の何
れかが他から妨害されることなく測定できる。好ましく
は移動性の形のラベル付き試薬を少なくともQ、 5 
QTn移動させる。
スポットに残った非移動性の形のラベル付き試薬を測定
するのが好ましい。
本発明方法においては、通常の分析に使用できる任意の
ラベルを使用できる。最も普通の群のラベルは放射性原
子、酵素、および螢光および発光材料である。
使用するクロマトグラフィ媒体は、ラベル付き試薬が分
配さ2′シた二つの形か異なる移動性を有する媒体であ
り、か(すると一つの形を他の形から物理的に分離でき
る。一つの形か媒体で実質的に非移動性、好ましくは完
全に非移動性である、しかし僅かな移動性は必ずしも本
発明方法を無効にすることはない。媒体はカラムの形で
あるとよく、ラベル付き試薬の移動性の形はそれに沿っ
て移動させる。好ましくは媒体はシート、例えばクロマ
トグラフィ紙の形である、そして反応混合物をその上番
こスポットで付与し、移動性の形のラベル付き試薬をス
ポットから放射状に移動させる。媒体が紙の詰物または
材料のブロックの形であるとき、(イ動件の形のラベル
付試薬は詰物またはブロック中に移動せしめられ、その
表面から消失する。或いは一枚の紙または他のクロマト
グラフィ媒体を反応混合物中に浸漬する、このとき移動
性の形のラベル付き試薬は上方へ移動せしめられる。或
いは一つの形が磁性的に官応性であるとき、外部磁界を
適用することによってそれは非移動性にすることができ
、一方非磁性の形のものは移動性のまま残る。
クロマトグラフィ手段によってラベル付き試薬の結合さ
れた形および結合されない形の分離を有利に行なうこと
のできるそれ自体良く知られた各種の分析がある。
(al二重抗体例。 競争分析において、試料中のアナ
ライト、およびアナライトのラベル付き変種をアナライ
トに対する特定結合剤の限定量と競争反応させる。アナ
ライトが抗原体またはハプテンであるとき、特定結合剤
は一般にその連合した抗体である。アナライト/特定結
合剤錯体は特定結合剤に抗体(第二抗体)の添加により
不溶性にされる。特定結合剤はアナライトおよびラベル
付きアナライトで培養する前、培養中または培養後節二
抗体と反応してもよい。
反応混合物をクロマトグラフィ媒体上のスポットに付与
したとき、二重抗体錯体はスポットに近く残り、一方非
結合ラベル付き試薬は続いて適当な溶媒を付与すること
によってスポットから除去される。
fb1粒状固体相。 抗体納会ラベル付き試薬および非
結合ラベル付き試薬間の区別は叫々方法(a目こよって
達成するのが困難である。これは高分子量のアナライm
lこ対するプtつかの競争分析でそうである、或いは免
投測定分析系を使用するとき更に重要である。かかる場
合、アナライトに対する特定結合剤は粒状固体相に結合
させるとよい、粒状固体相は、クロマトグラフィ媒体上
のスポットに付与したとき、粒子カ続いて付与した溶媒
の影J下に著しい程度に移動しないように選択する。好
適な粒状材料は市場で入手でき、それらに試薬を結合さ
せる方法は良く知られている。続いて付与する溶媒は非
結合ラベル付き試薬をスポットから移動し去るようにす
る。
本発明のこの応用は競争分析例えば免投分析に好適であ
る、しかし特に試料中のアナライトが過剰の非移動性に
さnた特定結合剤に結合せしめらn、アナライトJこ対
するラベル付き特定結合剤がアナライトの空の結合位置
に結合せしめられているツーザイト免疫測定分析に好適
である。良く知らnているように試料中のアナライトは
、二つの特定結合剤(一つは非移動性にされ、他はラベ
ル付けされている)で、何れかの順序でまたは同時に培
養できる。非移動性にさnた材料に結合されたラベル付
き試薬の;孟は試料中のアナライトの量番こ正比例する
(cl凝集反応。 凝集の終点は肉眼および器械使用に
よる多くの方法で評価できる。しかしながら低凝集度で
は、少数のa果物は非凝集粒子の大きな背景によって不
明瞭になることがあり、判別困難にし、分析の感度を低
下させる。本発明方法を使用すると、クロマトグラフィ
媒体上のスポットに付与したとき、凝集した粒子はスポ
ット近くに残り、一方非凝集粒子は適当な溶媒tCよっ
て除去されるように粒子特性を選択することかできる。
螢光または着色粒子を用いることによって、非凝集粒子
の不存在−ドスポットで凝集粒子を検出(肉眼または器
械測定嘉こよって)ことができる。この方法で、感度が
改良さてしる。凝集した粒子は、米国特許第43327
88号に記載されている如く、固定化合物を用いること
番こより非凝集粒子からクロマトグラフィにより分離す
る前に安定化することができる。
凝集反応≦こラベル付き粒子を使用することは知られて
おり、例えば米国特許第3853987号および第43
32788号に記載されている。
しかしクロマトグラフィによるラベルの二つの形の分離
は教示されていない。
下記実施例は本発明を示す。
実施例 l 〔方法[alを示す〕 チロキシンの放射線免疫分析 1、下記試薬を一連の試験管中で一緒に室温で45分間
培養した。
20μlのヒト血清中のチロキシンの標準溶液。
50μjの好適な緩衝剤中の1′5エラベル付きチロキ
シン。
50μlのトリス/NaC1緩衝剤中で稀釈した羊抗チ
ロキシン血清(γ−グロブリン画分)。
2.5%PEG 6000を含有するトリス/NaC1
緩衝剤中で稀釈したろば抗羊γ−グロブリン血清100
μlを各試験管に加え、室温で更に5分培養した。
3、各試験管中の反応iM台物から100μl容ノ■を
取り、周辺で支持された直径2.5 c!mのガラス繊
維フィルター盤(ワットマンGF/D)の中心に徐々に
付与した。
4、トリス/NaC1緩衝剤400μE容着を次いで各
フィルター盤の中心に徐々に付与した。
5、フィルター盤の中心に残っている放射能を。
盤の中心部分のみがカウンターに曝露されるよつgこ規
準させたγ−シンチレーションカウンターを用いて測定
した。
チロキシン標準   盤の中心に残っている0    
           73.32         
     45.36              2
9.312          16.0 25              8.7実施例 2 〔方法fblを示す〕 1、ホスフェート緩衝剤中で適当量の羊抗チロキシン血
清(γ−グロブリン画分)およびろば抗羊γ−グロブリ
ン血清を混合し、室温で一夜培養して抗体錯体の懸濁液
を形成した。
2、下記試薬を一連の試験管内で室温で2時間−緒に培
養した。
100μlのヒト血清中のチロキシンの標準溶液。
200μlのβ−ガラクトシダーゼに抱合させホスフェ
ートg@剤で稀釈したチロキシン。
400μlの上述した第二抗体錯体の懸濁液。
3、各試験からの反応混合物50μ!容量をガラス繊t
ag<ワットマンOF/D)の中心に徐々に付与した。
4、1 ’Iff / ml ノ牛血清アルフミン、9
 ’W / ml 0)NaC1および10n+Mの塩
化マグネシウム示含有すルホスフエートM m AIJ
中の0NPG (オルンニトロフェニルガラクトシド)
の20mM溶液400μl容量を各フィルター盤の中心
に徐々に付与した。
5、盤の中心で黄色スポットの強度を肉眼で測定する前
に室温で5分間盤を放置した。
0              +++2      
  +++ 6              ++ 12          + 25          春色ナシ 実施例 3 〔方法(口を示す〕 チロキシンの放射線免疫分析 1、一連の試験管内で下記試薬を室温で45分間−線番
こ培養した。
20μlのヒト血清中のチロキシンの標準溶液。
50μlの好適な緩衝剤中の1251−ラベル付きチロ
キシン。
100μlの羊抗チロキシン血渭で被覆したポリビニル
トルエンラテックス粒子(直径2.1μうの懸濁液。
2、各試験管中の反応混合物から100μl容1を取り
出し、2.5cmのプレフィルタ−盤(ミリボア)の中
心に徐々に付与した。
3、各フィルター盤の中心にトリス/NaC1緩衝剤の
400μl容量を徐々に付与し、盤の中心に残った放射
能を実施例1に記載した如く測定した。
チロキシン標準      盤の中心に残ったQ   
          93.72          
  52.2 6            33.7 12           17.0 25           15.3 実施例 4 〔方法(Uを示す〕 ヒト胎盤ラクトゲンに対する免疫放射能測定分立 1、一連の試験管内で一ド記試薬を室温で30分−緒に
培養した。
120μlのヒト血清中のヒト胎盤ラクトゲン(HPL
 )の標準溶液。
300μlの羊抗HPL血清で被覆したポリスチレンラ
テックス粒子(0,8μ直径)の懸濁液。
300μlの125■でラベル付けした1iPLに対す
る羊抗体の溶液。
2、各試験管中の反応混合物から100μl容量を取り
、2.5cmプレフィルタ−盤(ミリポア)の中心に徐
々番こ付与した。
3、500μl容量のトリス/NaCIJffi衝剤を
各フィルター盤の中心番こ徐々番こ付与し、盤の中心に
残った放射能を実施例itこ記載した如く測定した。
HPL標準     盤の中心に残った( nl/1t
tl)      放射能彊01.8 0.14            9.50.54  
          23.11.07       
    29.23.3             4
2.59.98            45.9実施
例 5 〔方法fblを示す〕 7エリチンの免疫酵素測定分析 1、下記試薬を一連の試験管内で一緒に室温で45分培
養した。
200μlのホスフェート緩衝剤中のフェリチンの標準
溶液。
100μlの羊抗フェリチン血清で被覆したポリスチレ
ンラテックス粒子(直径0.8μ)の懸濁液。
200μlの山葵ペルオキシダーゼに抱合したフェリチ
ンに対する羊抗体の溶液。
2、各試験管中の反応混合物から100μl容量を取り
、2.5mプレフィルタ−盤(ミリボア)の中心に徐々
ζこ付与した。
3、テトラメチルベンチジン、過酸化水素およびトリト
ン100を含有するpus、oの0.2Mアセテート緩
衝剤500μl容量を各フィルター盤の中心に徐々に付
与した。
4、各盤の中心で青色スポットの強度の肉眼による測定
の前≦こ各盤を5分間放置した。色の強度は、フェリチ
ンの標準濃度がゼロから2000ng/g/まで上昇す
るに従って増大した。肉眼での検知限界は30nf/l
tl フェリチンであった。
実施例 6 〔方法(clを示す〕 工、下記試薬を一緒lこ室温で1時間培養した。
20μjpホスフエート緩衝剤中のフェリチンの標準溶
液。
20μlの羊抗フェリチン血清で被覆したポリスチレン
ラテックス粒子(ローダミン螢光染料を含有する直径1
.2μ)の懸濁液。
2、ホスフェート緩衝した食塩水(1%V/V )中の
グルタルアルデヒドの溶液40ttlを各反応試験管に
加え、更に15分室温で培科した。
3、ゆるやかに攪拌後、各反応混合物50μlを2.5
側ガラス繊維盤(ワットマンGF/D)の中心に徐々に
付与した。
4、各ガラス繊維盤の中心にホスフェート緩衝した食塩
水400μl容量を徐々に付与した。
5、次に盤を紫外線の下で観察し、各盤の中心での赤色
螢光スポットの強度を測定した。フェリチンの標準濃度
の上昇に従い螢光の強度は増大した。肉眼による検知限
界は15n9/肩l フェリチンであった。
ン 英国パツキンガムシャイア・ウ エンドオーヴアー・ペリイ、ス トリート39 0発 明 者 マルコルム・ロバート・サマーズ 英国パツキンガムシャイア・ア イルズバリイ・ストラフ・マン デヴイル・ヒューエンデン拳グ リーン21 手続補正書(1) 小牲え沫 3、補正をする者 事1′1との関係  ン¥九″rか、々々/、典中年輔
←刊判 4、代理人 /、神゛l・(J本 乙^(1−i尖句(口陣

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1、 クロマトグラフィ媒体を用意し、一部を上記媒体
    上で移動性の形で、一部を上記媒体上で非移動性の形で
    存在するラベル付き試薬を含有する反応混合物を形成し
    、二つの形の割合は試料中のアナライトの量で決定し、
    クロマトグラフィ媒体上のスポットに反応混合物を適用
    し、ラベル付き試薬の移動性の形をスポットから移動せ
    しめ、その後ラベル付き試薬の移動性の形および非移動
    性の形の一つまたは両者を測定することを特徴とする試
    料中のアナライトの分析を行なう方法。 2、 クロマトグラフィ媒体がシートの形であり、反応
    混合物をシート上のスポットに付与し、ラベル付き試薬
    の移動性の形をスポットから放射状に移動させる特許請
    求の範囲第1項記載の方法。 3、移動を、移動仕種(非移動他種でない)をクロマト
    グラフィ媒体を通って移動させる溶媒をスポットに続い
    て付与することによって助長する特許請求の範囲第1項
    または第2項記載の方法。 4、溶媒が水性液体である特許請求の範囲第3項記載の
    方法。 5、試料中のアナライトおよびアナライトのラベル付き
    変種を限定量のアナライトに対する特定結合剤との反応
    に競争させて反応混合物を形成させ、アナライト/特定
    結合剤錯体を特徴とする特許請求の範囲第1項〜第4項
    の何nか一つに記載の方法。 6、 アナライト/特定結合剤錯体を、特定結合剤とそ
    の抗体との反応によって不溶性にし、上記反応をアナラ
    イトおよびラベル付きアナライトで培養する前、培養中
    または培養後に行なう特許請求の範囲第1項記載の方法
    。 7、反応混合物を試料中のアナライトを過剰の非移動性
    にされた特定結合剤に結合させることによって形成し、
    アナライトに対するラベル付き特定結合剤をアナライト
    の空結合位置番こ結合させる特許請求の範囲第1項〜第
    4項の何nか一つに記載の方法。 8、特定結合剤が粒状固体相Sこ結合させることにより
    非移性にさnた特許請求の範囲第5項または第7項記載
    の方法。 9、反応混合物を、アナライトを含有する試料をアナラ
    イトに対する特定結合剤を担持するラベル付き粒子で培
    養すること番こより形成し、これによってアナライトを
    粒子の凝集を生せしめる特許請求の範囲第1項〜第4項
    の何れか一つ番こ記載の方法。
JP59034134A 1983-02-24 1984-02-23 分析方法 Granted JPS59166866A (ja)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB838305197A GB8305197D0 (en) 1983-02-24 1983-02-24 Assay methods
GB8305197 1983-02-24

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPS59166866A true JPS59166866A (ja) 1984-09-20
JPH0562302B2 JPH0562302B2 (ja) 1993-09-08

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ID=10538561

Family Applications (1)

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JP59034134A Granted JPS59166866A (ja) 1983-02-24 1984-02-23 分析方法

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US (1) US4666863A (ja)
EP (1) EP0120602B1 (ja)
JP (1) JPS59166866A (ja)
DE (1) DE3480953D1 (ja)
GB (1) GB8305197D0 (ja)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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