JPS59125892A - トリプトフアンオペロン遺伝子を持つ溶原性フア−ジ、これを溶原化したトリプトフアン生産性枯草菌及びその利用 - Google Patents
トリプトフアンオペロン遺伝子を持つ溶原性フア−ジ、これを溶原化したトリプトフアン生産性枯草菌及びその利用Info
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- JPS59125892A JPS59125892A JP57227964A JP22796482A JPS59125892A JP S59125892 A JPS59125892 A JP S59125892A JP 57227964 A JP57227964 A JP 57227964A JP 22796482 A JP22796482 A JP 22796482A JP S59125892 A JPS59125892 A JP S59125892A
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- tryptophan
- bacillus subtilis
- trp
- phage
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
- C12N15/52—Genes encoding for enzymes or proenzymes
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は改善された高生産性をもってL −) リプト
ファンを生産することのできる従来文献未記載のトリプ
トファン生産性枯草菌(バチルス・ズブチリス)、該枯
草菌の造成に有用な溶原性ファーソ、更には、該トリプ
トファン生産性枯草歯を用いて改善された高生産性をも
ってL −トリプトファンを製造できる醗酵法L−トリ
プトファンの製法に関する。
ファンを生産することのできる従来文献未記載のトリプ
トファン生産性枯草菌(バチルス・ズブチリス)、該枯
草菌の造成に有用な溶原性ファーソ、更には、該トリプ
トファン生産性枯草歯を用いて改善された高生産性をも
ってL −トリプトファンを製造できる醗酵法L−トリ
プトファンの製法に関する。
従来、L−トリプトファンの生産全調整する遺伝情報を
遺伝子操作で組み込んだプラスミドを有する大腸菌及び
それを用いる醗酵法L−トリプトファンの製法に関する
提案が知られている(例えば、特開昭57−71397
号%特開昭57−80398号)。
遺伝子操作で組み込んだプラスミドを有する大腸菌及び
それを用いる醗酵法L−トリプトファンの製法に関する
提案が知られている(例えば、特開昭57−71397
号%特開昭57−80398号)。
よく仰られているように、このような造成プラスミドは
一般に不安定であって、培養中に失われていくため、そ
の安定化手法が確立されない限り実用性に制約を受ける
というトラブルがある。こレニ対して、染色体DNAに
L−に−リプトファン生産の遺伝情報を組み込むことが
できれば、上記のような制約から解放されることが予期
される。
一般に不安定であって、培養中に失われていくため、そ
の安定化手法が確立されない限り実用性に制約を受ける
というトラブルがある。こレニ対して、染色体DNAに
L−に−リプトファン生産の遺伝情報を組み込むことが
できれば、上記のような制約から解放されることが予期
される。
本発明者等は、後者のタイプの染色体DNAを持つL
−ト17プトフアン生産性枯草菌を造成すべく研究を行
ってきた。
−ト17プトフアン生産性枯草菌を造成すべく研究を行
ってきた。
その結果、従来、枯草菌のトリプトファンオペロンの一
部遺伝子をクローニングしたという記載はあったが(例
えば、 KoM、 Kgggintt、 P、r’E。
部遺伝子をクローニングしたという記載はあったが(例
えば、 KoM、 Kgggintt、 P、r’E。
Lovstt、 and E、 J、 Dwvall、
Proc、 Natl。
Proc、 Natl。
Acad、 Sci、 USAI 75 、14
23−1427(1978)、全遺伝子すなわちトリプ
トファンオペロンをクローニングした実例は知られてい
なかったにも拘わらず、本発明者等の研究によれば、L
−トリフ’)ファン生産性枯草菌のトリプトファンオペ
ロンのクローニングが可能であり、斯くてトリプトファ
ンオペロン(全遺伝子)を持つ清涼件ファーソを造成す
ることが可能であることを発見し且つその造成に成功し
た。
23−1427(1978)、全遺伝子すなわちトリプ
トファンオペロンをクローニングした実例は知られてい
なかったにも拘わらず、本発明者等の研究によれば、L
−トリフ’)ファン生産性枯草菌のトリプトファンオペ
ロンのクローニングが可能であり、斯くてトリプトファ
ンオペロン(全遺伝子)を持つ清涼件ファーソを造成す
ることが可能であることを発見し且つその造成に成功し
た。
更に、本発明者等は、該トリプトファンオペロン遺伝子
を持つ清涼住ファージを利用して、L−トリシトファン
生産性枯草菌の染色体DNA上に。
を持つ清涼住ファージを利用して、L−トリシトファン
生産性枯草菌の染色体DNA上に。
該菌が本来保有していたトリプトファンオペロンに加え
て、追加のトリプト7アンオペロンヲ新たに導入可能で
あることを発見し且つその造成に成功した。
て、追加のトリプト7アンオペロンヲ新たに導入可能で
あることを発見し且つその造成に成功した。
斯して、本発明者等の研究によれば、トリプトファン合
成に対するトリプトファンによる阻害が解除チiしたト
リプトファンオペロン分食なくトモ2ケ有する染色体D
NAf持っL−トリプトファン生産性枯草菌(バチルス
・ズブチリス)を造成できることが発見され且つその造
成に成功した。
成に対するトリプトファンによる阻害が解除チiしたト
リプトファンオペロン分食なくトモ2ケ有する染色体D
NAf持っL−トリプトファン生産性枯草菌(バチルス
・ズブチリス)を造成できることが発見され且つその造
成に成功した。
そして、この新しいL−トリプトファン生産性枯草−を
ハ」いて改善された^生産性ケもって7.−)リプトフ
ァンを工菓的に有利に製造できることを知った。
ハ」いて改善された^生産性ケもって7.−)リプトフ
ァンを工菓的に有利に製造できることを知った。
従って、本発明の目的は、上記の新しいL−)リプトノ
アン生産性枯草菌及び該酌の造成に有用な溶原性ファー
ソゲ提供するにある。
アン生産性枯草菌及び該酌の造成に有用な溶原性ファー
ソゲ提供するにある。
本発明の他の目的は、上記の新しいL −トリシトファ
ン生産性枯草菌金用いて改善された筒中産性ケもってL
−トリプトファンを製造できる醗酵法L−)リプトファ
ンの製法を提供するにある。
ン生産性枯草菌金用いて改善された筒中産性ケもってL
−トリプトファンを製造できる醗酵法L−)リプトファ
ンの製法を提供するにある。
本発明の上記目的及び更に多くの他の目的ならびに利点
は、以下の記載から一層明らかとなるでろろう。
は、以下の記載から一層明らかとなるでろろう。
本発明のトリプトファン合成に対するトリプトファンに
よる阻害が解除さf′したトリプトファンオペロン(以
下、TRP−FTRと略記することがある)を少なくと
も2ケ有する染色体DNAを持つL −) IJブトフ
ァン生産性枯草菌(バチルス・ズブチリス)の造成に用
いるTRP−FTR分有する染色体DNA2組みこんだ
清涼性ファージは。
よる阻害が解除さf′したトリプトファンオペロン(以
下、TRP−FTRと略記することがある)を少なくと
も2ケ有する染色体DNAを持つL −) IJブトフ
ァン生産性枯草菌(バチルス・ズブチリス)の造成に用
いるTRP−FTR分有する染色体DNA2組みこんだ
清涼性ファージは。
該染色体DNAを持つ形質導入ファージであって、該枯
草菌に溶原化し且つ該枯草菌が本来をするトリプトファ
ン合成に対するトリプトファンによる阻害が解除された
トリプトファンオペロンTRPFTRと同様なL−)リ
プトファン生産能を発現可能とする浴涼性ファージであ
る。
草菌に溶原化し且つ該枯草菌が本来をするトリプトファ
ン合成に対するトリプトファンによる阻害が解除された
トリプトファンオペロンTRPFTRと同様なL−)リ
プトファン生産能を発現可能とする浴涼性ファージであ
る。
この1’ 7t’ P −Fi” R分有する染色体D
NA金持つ清涼性ファーヅは、囲えば、河村らの方法C
Kawarn、ura、 F、 、 5aito、 H
o、 and Ikgda。
NA金持つ清涼性ファーヅは、囲えば、河村らの方法C
Kawarn、ura、 F、 、 5aito、 H
o、 and Ikgda。
Y、:Ggng、 5+8#(1979)〕’r、利用
して造成することができる。
して造成することができる。
たとえは、ERIの如きif;fJ限酵累で切断されO
たT 11 P −F T Rf有する染色体D H’
Aを持つ枯草菌の染色体DNA断片、例えは、51!
’TC5−フロロトリプトファン)耐性のトリプトファ
ン生産性枯草菌の染色体DNA断片と、同様にして切断
された枯草菌の清涼性ファーゾのDNA断片。
Aを持つ枯草菌の染色体DNA断片、例えは、51!
’TC5−フロロトリプトファン)耐性のトリプトファ
ン生産性枯草菌の染色体DNA断片と、同様にして切断
された枯草菌の清涼性ファーゾのDNA断片。
例えは、ファージl18、ファージφ、。6.ファージ
5PO2の如き枯草菌の清涼性ファーヅのDNA断片と
を、たとえばT4 リガーゼの如きDNAりが一ゼを用
いて連結し、斯くて形成された連結DNAを上記溢血性
ファー=、7を廖原化しているトリプトファン要求性(
trp )枯草丙申に形質転換してトリプトファン非要
求性(trp )形質転換体を得、これを培養してファ
ージを6ガ発し、このファージをtrp−枯草菌中に形
質導入してtrp 形質導入体を形成し、次いで、該
tro?形質導入体を培養してtrp”3F’p質導入
フアーヅを誘発し、7“RP−FTRを]1する染色体
DNA′ff:持つことを確認して造成することができ
る。
5PO2の如き枯草菌の清涼性ファーヅのDNA断片と
を、たとえばT4 リガーゼの如きDNAりが一ゼを用
いて連結し、斯くて形成された連結DNAを上記溢血性
ファー=、7を廖原化しているトリプトファン要求性(
trp )枯草丙申に形質転換してトリプトファン非要
求性(trp )形質転換体を得、これを培養してファ
ージを6ガ発し、このファージをtrp−枯草菌中に形
質導入してtrp 形質導入体を形成し、次いで、該
tro?形質導入体を培養してtrp”3F’p質導入
フアーヅを誘発し、7“RP−FTRを]1する染色体
DNA′ff:持つことを確認して造成することができ
る。
上記のTRP−FTRf有する染色体DNAを持つ溶原
性ファーゾ造成手法の一態様について更に詳しく例示す
る。
性ファーゾ造成手法の一態様について更に詳しく例示す
る。
たとえば、sFT耐性トリグトファン生産性枯草枯草染
色体DNA断片及びファージρ、1の清涼性ファーソの
染色体DNA断片は、以下の如き手法で得ることができ
る。sFT耐性トリプトファン生産性枯草菌の染色体D
NAは、a a −m k卵白リゾチーム(1nv/m
l )で細胞壁を分解し、プロテイナーゼff(100
μ97m1)および5DS(11M / V Iソヂイ
ウムドデシルスルフエイト)処理1父フエノール抽出に
工りイ(Iることができる。
色体DNA断片及びファージρ、1の清涼性ファーソの
染色体DNA断片は、以下の如き手法で得ることができ
る。sFT耐性トリプトファン生産性枯草菌の染色体D
NAは、a a −m k卵白リゾチーム(1nv/m
l )で細胞壁を分解し、プロテイナーゼff(100
μ97m1)および5DS(11M / V Iソヂイ
ウムドデシルスルフエイト)処理1父フエノール抽出に
工りイ(Iることができる。
ファージ、S’llのDNAは上記法からりゾチーム処
理全省略して得らiする。これらのDH’Aの断片は制
限酵素(例えばE、oRl)処理によって得ることがで
きる。
理全省略して得らiする。これらのDH’Aの断片は制
限酵素(例えばE、oRl)処理によって得ることがで
きる。
1り)1えは、上述のようにして得ることのできる5F
’T耐性トリプトフアン生産性枯草菌の染色体DNA断
片とファージρ11の溶原性ファーヅのDNAし1片と
の連結は、以下の如き手法で行うことができる。枯草圃
采色体DNA断片とファージ511DNA断片全混合し
、1rnMATP、10tn M M gCl、、10
rrtM DTT−s Orn、M Tris−1
1CI pH7,8を含む反応液中、T4DNAリガ
ーゼによって14℃1晩処理して連結することができる
。
’T耐性トリプトフアン生産性枯草菌の染色体DNA断
片とファージρ11の溶原性ファーヅのDNAし1片と
の連結は、以下の如き手法で行うことができる。枯草圃
采色体DNA断片とファージ511DNA断片全混合し
、1rnMATP、10tn M M gCl、、10
rrtM DTT−s Orn、M Tris−1
1CI pH7,8を含む反応液中、T4DNAリガ
ーゼによって14℃1晩処理して連結することができる
。
上述のようにして得ることのできる連結DNAを、ファ
ージρ3.を溶原化しているtrp−枯草菌中に形質転
換してtpr十枯草菌形仙転換体を得る手法は、以下の
ようにして行うことができる。ファーヅρ羞、を溶原化
している枯草菌SDKO531trpC21guA8
(pH1)k、CI培地で37℃4時間培養後(、’I
I培地に2倍に希釈してDNAを加え1時間培養後、ト
リプトファンを含まないCI寒天培地に塗布し、37℃
2日間培養してtrp十枯草菌形質転換体を得ることが
できる。
ージρ3.を溶原化しているtrp−枯草菌中に形質転
換してtpr十枯草菌形仙転換体を得る手法は、以下の
ようにして行うことができる。ファーヅρ羞、を溶原化
している枯草菌SDKO531trpC21guA8
(pH1)k、CI培地で37℃4時間培養後(、’I
I培地に2倍に希釈してDNAを加え1時間培養後、ト
リプトファンを含まないCI寒天培地に塗布し、37℃
2日間培養してtrp十枯草菌形質転換体を得ることが
できる。
史に、上述のようにして得ることのできるt rp+形
質転快体の培養によるファージの誘発及び斯くて得られ
たファージのtrp枯草菌中への形質導入によるtrp
+形質導入体の形成は、以下の如き手法で行うことがで
きる。tγp+形質転換体の100コロニーを集め、3
7°CL培地で培養し、マイトマイシンC処理によって
ファージを誘発してm菌P2i、を傅、遠心操作によっ
て除1罰後045μmミリポアフイルタ−によシ生菌を
除く。5DR0531trpC,−1tguA@菌をL
培地で培養し上述のようにして得ることのできる無菌的
なファージl@菌液と混合して感染させ30分間吸層さ
せ、トリプトファンを含まないCI寒天培地双によって
37℃2日間培養してtrp+形質導入体を得ることが
できる。
質転快体の培養によるファージの誘発及び斯くて得られ
たファージのtrp枯草菌中への形質導入によるtrp
+形質導入体の形成は、以下の如き手法で行うことがで
きる。tγp+形質転換体の100コロニーを集め、3
7°CL培地で培養し、マイトマイシンC処理によって
ファージを誘発してm菌P2i、を傅、遠心操作によっ
て除1罰後045μmミリポアフイルタ−によシ生菌を
除く。5DR0531trpC,−1tguA@菌をL
培地で培養し上述のようにして得ることのできる無菌的
なファージl@菌液と混合して感染させ30分間吸層さ
せ、トリプトファンを含まないCI寒天培地双によって
37℃2日間培養してtrp+形質導入体を得ることが
できる。
たとえば、上述のように得ることのできるtrp+形質
導入体を培養してファージを紳発する手法及びTEP−
FTRを有する染色体DNAを持つ清涼性ファージの確
嵯、取得は例えば以下の如き手法で行うことができる。
導入体を培養してファージを紳発する手法及びTEP−
FTRを有する染色体DNAを持つ清涼性ファージの確
嵯、取得は例えば以下の如き手法で行うことができる。
trp+形質導入体の単一コロニーをL培地で37℃培
養してマイトマイシンCにより一発し、フィルター濾過
により無菌的ファージ溶菌液を得る。当該溶菌液中のT
RP−FTEを組み込んだtrp形質導入ファージの確
認ハトリプトファンオペロンのA、B、C,D。
養してマイトマイシンCにより一発し、フィルター濾過
により無菌的ファージ溶菌液を得る。当該溶菌液中のT
RP−FTEを組み込んだtrp形質導入ファージの確
認ハトリプトファンオペロンのA、B、C,D。
Eシス−トロンにそれぞれ変異を持つ枯草菌を宿主とし
て夫々のtrp+形質導入体ヲ得ることで行うことがで
きる。
て夫々のtrp+形質導入体ヲ得ることで行うことがで
きる。
上述のようにして造成できる本発明のトリプトファン合
成に対するトリプトファンによる阻害が解除されたトリ
プトファンオペロンT RP −FTRを有する染色体
DNAを持つ浴涼性ファージの一例として、後記芙施例
1,4に記載した枯草菌5DP−11及び5DP−12
は、工業技術院微生物工業技術研究庚の寄託受託拒否通
知書(通知着量:57微富文第1415号及び1691
号)を受けた。該T RP −F T R?有する染色
体DNAを持つ浴涼性ファージ枯草園ファージ81)P
−11及び5DP−1’lは、昭和電工株式会社生化学
研究所に保管されている。
成に対するトリプトファンによる阻害が解除されたトリ
プトファンオペロンT RP −FTRを有する染色体
DNAを持つ浴涼性ファージの一例として、後記芙施例
1,4に記載した枯草菌5DP−11及び5DP−12
は、工業技術院微生物工業技術研究庚の寄託受託拒否通
知書(通知着量:57微富文第1415号及び1691
号)を受けた。該T RP −F T R?有する染色
体DNAを持つ浴涼性ファージ枯草園ファージ81)P
−11及び5DP−1’lは、昭和電工株式会社生化学
研究所に保管されている。
該溶原性ファーヅの性質は以下のとおりである。
両ファージ5DP=11.5DP−12ともにファージ
DNA中に枯草菌トリプトファンオペロン全体のDNA
が組み込捷れており、それ故トリプトファンオペロン中
の谷シストロンに変異ヲ持つトリプトファン要求性株を
tcp十形袈導入する。
DNA中に枯草菌トリプトファンオペロン全体のDNA
が組み込捷れており、それ故トリプトファンオペロン中
の谷シストロンに変異ヲ持つトリプトファン要求性株を
tcp十形袈導入する。
さらにり、i s B 遺伝子をも含むことが枯草7
his+ BをhisB 形朋転換することで示された。プラーク
形成能については5DP−11については不明であるが
5DP−12はグラーク形成しない。
his+ BをhisB 形朋転換することで示された。プラーク
形成能については5DP−11については不明であるが
5DP−12はグラーク形成しない。
トリシトファン合成に対するトリプトファンによる阻害
が解除されたトリプトファンオペロンT RP −F’
i’ Rf少なくとも2ケ有する栄色体DNAf持つ
本発明のZ、−)リプトラアン生産性枯草菌(バチルス
・ズブチリス)は、栄養培地たとえば寒天栄養培地上、
前述の如きTIIP−FTEを有する染色体DI’JA
を持つ溶原性ファーソの共存下に、1’ RP −F1
’ Rを有する染色体DNAを持つ枯草菌たとえばsF
T耐性のトリシトファン生産性枯草菌を培養し、培地に
形成されたtrp+形質導入体溶原菌(TRP−F−T
Rf有する染色体DNAf持つ清涼性ファージが溶原化
されたTEP−FTRを少なくとも2ケ有する染色体D
NAを持つL−トリプトファン生産性枯草菌)を採取し
、採取した該清涼菌を通商な栄養培地たとえは寒天栄養
培地上で純粋分離(singlecolony 1so
lation) L、、上記TRP−FTRを有する朶
色体DNAを持つ枯草菌が本来持っていたTRP−FT
Rを有するほかに、上記清涼性ファージからの追加のT
RP−FTRf有する染色体DNAを持つことを確認す
ることによυ造成できる。
が解除されたトリプトファンオペロンT RP −F’
i’ Rf少なくとも2ケ有する栄色体DNAf持つ
本発明のZ、−)リプトラアン生産性枯草菌(バチルス
・ズブチリス)は、栄養培地たとえば寒天栄養培地上、
前述の如きTIIP−FTEを有する染色体DI’JA
を持つ溶原性ファーソの共存下に、1’ RP −F1
’ Rを有する染色体DNAを持つ枯草菌たとえばsF
T耐性のトリシトファン生産性枯草菌を培養し、培地に
形成されたtrp+形質導入体溶原菌(TRP−F−T
Rf有する染色体DNAf持つ清涼性ファージが溶原化
されたTEP−FTRを少なくとも2ケ有する染色体D
NAを持つL−トリプトファン生産性枯草菌)を採取し
、採取した該清涼菌を通商な栄養培地たとえは寒天栄養
培地上で純粋分離(singlecolony 1so
lation) L、、上記TRP−FTRを有する朶
色体DNAを持つ枯草菌が本来持っていたTRP−FT
Rを有するほかに、上記清涼性ファージからの追加のT
RP−FTRf有する染色体DNAを持つことを確認す
ることによυ造成できる。
上記清涼自の形成は、たとえば以下の如き手法で行うこ
とができる。trp+形質導入ファージ枯草菌ファージ
5DP−11に感受性な5FT耐性のトリプトファン生
理性枯草菌26F150株にtrp+rp+入ファージ
5DP−ILを感染させ、ファージρ1.に抵抗性とな
った26F1sOのtrp+形仙、導入ファーソ溶原誦
を得る。トリプトファン生産能の商いtrp+1杉質導
入体質導入体ppmのアンスラニル酸ヲ含むCt培地(
トリプトファンを除く)で37℃、10時間培養し、培
地中ノドリフトファンを高速液体クロマトグラフィーで
検定することで行った。得られた26F150にtrp
力杉質纒入ファーソが溶原化した株からマイトマイシン
C誘発によりtrp+形儒導形体導入体することで、2
6F15o中trp+形質導入フアーゾが溶原化してい
ることが確認され、当該体中に少なくとも2ケのTRP
−FTRが存在することが確認された。
とができる。trp+形質導入ファージ枯草菌ファージ
5DP−11に感受性な5FT耐性のトリプトファン生
理性枯草菌26F150株にtrp+rp+入ファージ
5DP−ILを感染させ、ファージρ1.に抵抗性とな
った26F1sOのtrp+形仙、導入ファーソ溶原誦
を得る。トリプトファン生産能の商いtrp+1杉質導
入体質導入体ppmのアンスラニル酸ヲ含むCt培地(
トリプトファンを除く)で37℃、10時間培養し、培
地中ノドリフトファンを高速液体クロマトグラフィーで
検定することで行った。得られた26F150にtrp
力杉質纒入ファーソが溶原化した株からマイトマイシン
C誘発によりtrp+形儒導形体導入体することで、2
6F15o中trp+形質導入フアーゾが溶原化してい
ることが確認され、当該体中に少なくとも2ケのTRP
−FTRが存在することが確認された。
上述のようにして造成できる本発明のトリプトファン合
成に対するトリプトファンによる阻Jが解除されたトリ
プトファンオペロンを少なくトモ2ケ有する染色体DN
A2持つL−トリプトファン生産性枯草菌の一例として
、後記実施例2に記載したl々チルス・ズブチリス5D
−11(26Fx50+48)及び実施例4に記載した
バチルス・ズブチリス5D−12*は、工業技術院微生
物工業研究所の寄託拒否通知書(通知省号;57微を文
箱1414号及び1692号)を受けた。
成に対するトリプトファンによる阻Jが解除されたトリ
プトファンオペロンを少なくトモ2ケ有する染色体DN
A2持つL−トリプトファン生産性枯草菌の一例として
、後記実施例2に記載したl々チルス・ズブチリス5D
−11(26Fx50+48)及び実施例4に記載した
バチルス・ズブチリス5D−12*は、工業技術院微生
物工業研究所の寄託拒否通知書(通知省号;57微を文
箱1414号及び1692号)を受けた。
該Tl1P−FTRを少なくとも2ケ有する染色体DN
Aを持つL−トリプトファン生産性枯草菌バチルス・ズ
ブチリス5D−Ll及びsn−12は、昭和電工株式会
社生化学研究所に保管されている。
Aを持つL−トリプトファン生産性枯草菌バチルス・ズ
ブチリス5D−Ll及びsn−12は、昭和電工株式会
社生化学研究所に保管されている。
該L−1−リプトファン生産性枯草菌の性質は以下のと
おりである。栄養要求性がなく、合成培地で増殖可能で
あシ、少なくとも2ケのトリプトファンオペロンを含む
。
おりである。栄養要求性がなく、合成培地で増殖可能で
あシ、少なくとも2ケのトリプトファンオペロンを含む
。
本発明に於て、、TRP−FTRを2ケを超えて有する
染色体DNAf持つL−トリプトファン生産性枯草菌は
、たとえば、以下のようにして造成することができる。
染色体DNAf持つL−トリプトファン生産性枯草菌は
、たとえば、以下のようにして造成することができる。
たとえば26.F150#48株にρ1.以外の清涼性
ファーヅφ1o、あるいは5PO2のtr錯形質導入フ
ァーソを感染させることにより造成することができる。
ファーヅφ1o、あるいは5PO2のtr錯形質導入フ
ァーソを感染させることにより造成することができる。
φ、。、 、5PO2のtrp十形質導入ファージはρ
1□の方法に準じて十 行うことができる。^いtrp形質能のあるファージ溶
薗゛液を濃縮によって得、高重複感染度(mrblti
plicity of infgction、 MO1
か5以上)で感染することにより一種のファニソの重複
溶原化(msLtiplg lysoggnizati
on’)によりT RP −P’ T Rを2ケを超え
て有する枯草菌を得ることかできる。
1□の方法に準じて十 行うことができる。^いtrp形質能のあるファージ溶
薗゛液を濃縮によって得、高重複感染度(mrblti
plicity of infgction、 MO1
か5以上)で感染することにより一種のファニソの重複
溶原化(msLtiplg lysoggnizati
on’)によりT RP −P’ T Rを2ケを超え
て有する枯草菌を得ることかできる。
本発明によれば、上述のようにして造成できるTRP−
F’TRq少なくとも2ケ有する染色体DNAを持つL
−トリプトファン生産性枯草菌を利用して、改善され
た筒中産性をもって、造成プラスミドの場合のような不
安定なトラブルを伴うことなしに、工業的に有利にL−
トリプトファンを製造することができる。
F’TRq少なくとも2ケ有する染色体DNAを持つL
−トリプトファン生産性枯草菌を利用して、改善され
た筒中産性をもって、造成プラスミドの場合のような不
安定なトラブルを伴うことなしに、工業的に有利にL−
トリプトファンを製造することができる。
斯くて、本幀明によれば、トリプトファン合成に対する
トリプトファンによる阻害が解除されたトリプトファン
オペロンを少なくとも2り°宿する染色体DNAf持つ
L −) +7プトフアン生産性枯草鋼(バチルス・ズ
ブチリス)を、培地中に培養し、形成された培養培地か
らL −トIJブトファンを採取することを特徴とする
醗酵法L−)リプトファンの製法が提供できる。
トリプトファンによる阻害が解除されたトリプトファン
オペロンを少なくとも2り°宿する染色体DNAf持つ
L −) +7プトフアン生産性枯草鋼(バチルス・ズ
ブチリス)を、培地中に培養し、形成された培養培地か
らL −トIJブトファンを採取することを特徴とする
醗酵法L−)リプトファンの製法が提供できる。
上記製法は1本発明のT 11 P −FT Rを少な
くとも2ケ有する染色体DNA−q持つL−ト+Jブト
ファン生産性枯単菌を・1丈用するほかは、それ自体公
知のL−トリプトファン生産性枯草菌ヲ用いる醗酵法L
−トリプトファンの公知製法に準じて行なうことができ
る。
くとも2ケ有する染色体DNA−q持つL−ト+Jブト
ファン生産性枯単菌を・1丈用するほかは、それ自体公
知のL−トリプトファン生産性枯草菌ヲ用いる醗酵法L
−トリプトファンの公知製法に準じて行なうことができ
る。
利用する栄養培地としては、炭素源、窒素源、ミネラル
、などを含有する公知培地が利用できる。
、などを含有する公知培地が利用できる。
炭素源の例としては、グ、ルコース、フラクトース、シ
ュクロース、りが−ス、酢酸、エタノール、グリセリン
などを例示でき、又、窒素源の例としては、ペプトン、
肉エキス、酵母エキス、コーンステイープリカー等の有
機窒紫、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸ナ
トリウム等の無機窒素などを例示できる。更に、ミネラ
ルの例としては。
ュクロース、りが−ス、酢酸、エタノール、グリセリン
などを例示でき、又、窒素源の例としては、ペプトン、
肉エキス、酵母エキス、コーンステイープリカー等の有
機窒紫、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸ナ
トリウム等の無機窒素などを例示できる。更に、ミネラ
ルの例としては。
カルシウム塩、ナトリウムりんば塩、カリウムりん酸塩
、マンガン、鉄、亜鉛、銅、コバルト、モリブデン、す
んなどを例示できる。他の添加剤としてアンスラニル酸
を例示でき、本発明においては、アンスラニル絃含有培
地の利用が必要である。
、マンガン、鉄、亜鉛、銅、コバルト、モリブデン、す
んなどを例示できる。他の添加剤としてアンスラニル酸
を例示でき、本発明においては、アンスラニル絃含有培
地の利用が必要である。
その1史用重は適宜に選択できるが、例えば1時間あた
り1g7itの如き使用敏を例示することができる。
り1g7itの如き使用敏を例示することができる。
培養条件及び培養培地からのL −) リプトファンの
採取法も公知の条件を採用でき、たとえば。
採取法も公知の条件を採用でき、たとえば。
約65〜約&0のpH条件、たとえば、約35〜約37
℃の温度条件、たとえば約30〜約36時間の培養期間
を例示することができる。
℃の温度条件、たとえば約30〜約36時間の培養期間
を例示することができる。
培養後、培養液中のL −) リプトファンは、たとえ
ばイオン交換樹脂に吸着恢、アンモニア水で溶出し、濃
縮などの手法により、採取することができる。
ばイオン交換樹脂に吸着恢、アンモニア水で溶出し、濃
縮などの手法により、採取することができる。
以下、実施例によシ本発明実施の数態様について更に詳
しく説明する。
しく説明する。
実施例1
トリプトファン合成に対するトリプトファンによる阻害
が解除されたトリプト7アンオペロンヲ有する染色体D
NAを持つ清涼性ファーソ。
が解除されたトリプト7アンオペロンヲ有する染色体D
NAを持つ清涼性ファーソ。
(t) sFT耐性トリプトファン生産性枯草菌株の
分離。
分離。
ドリフトファン生産性枯草画法(バチルス・ズブチリス
IAM1026株)を2oopi/m13の二トロソグ
アニソンで処理したのち、5−70ロトリプ)777(
5FT)toooμF/mlを含む合成培地(K、HP
o、 1.4%、Kli、PO40,6%。
IAM1026株)を2oopi/m13の二トロソグ
アニソンで処理したのち、5−70ロトリプ)777(
5FT)toooμF/mlを含む合成培地(K、HP
o、 1.4%、Kli、PO40,6%。
C)vH,)、80. o、 2%、クエン酸ナトリウ
ム・Wρ0.1%、 Mg5O,・TH,05m、M、
グルコース1%、カザミノM0.02%、寒天1.5
% )に、プレート当り約1061βiの細胞をひろげ
て、37℃で1晩培養した。この方法により5FT耐注
バチルス・ズブチリスIAM1026株の約100株を
独立に分離した。得られた耐性株を、それぞ1+−11
0m/!の上記合成培地から淋天を除き200μ9 /
mlのアントラニル酸を含む培地に、37℃で24時
間培養し、培養液中のトリプトファンを尚速液体クロマ
トグラフィーで測定して最もトリプトファン生産性の良
いsFT耐性トリシトファン生産性枯草枯草26 p’
150株を分離採取した。
ム・Wρ0.1%、 Mg5O,・TH,05m、M、
グルコース1%、カザミノM0.02%、寒天1.5
% )に、プレート当り約1061βiの細胞をひろげ
て、37℃で1晩培養した。この方法により5FT耐注
バチルス・ズブチリスIAM1026株の約100株を
独立に分離した。得られた耐性株を、それぞ1+−11
0m/!の上記合成培地から淋天を除き200μ9 /
mlのアントラニル酸を含む培地に、37℃で24時
間培養し、培養液中のトリプトファンを尚速液体クロマ
トグラフィーで測定して最もトリプトファン生産性の良
いsFT耐性トリシトファン生産性枯草枯草26 p’
150株を分離採取した。
(215k’ 1’剛性トリプトフアン生産性枯RL菌
の染色体DNAのtvb製。
の染色体DNAのtvb製。
上記(1)で得られた26F150株を100m1のL
−培地(8,9バクトドリプトン、4.!i’酵母菌抽
出物、4gNaC1を11の水に溶解)に5時間培養し
たのち集菌し、菌体を20 mlの緩衝液(50mM
Tr i s −RCl 、 0.4 M NaCl、
10 mMEDTA、pH9,0)に懸濁し、リゾチ
ーム1〜/ ml ’fr 冷加して37℃で10分間
放置したのち。
−培地(8,9バクトドリプトン、4.!i’酵母菌抽
出物、4gNaC1を11の水に溶解)に5時間培養し
たのち集菌し、菌体を20 mlの緩衝液(50mM
Tr i s −RCl 、 0.4 M NaCl、
10 mMEDTA、pH9,0)に懸濁し、リゾチ
ーム1〜/ ml ’fr 冷加して37℃で10分間
放置したのち。
sns (リゾイウムドデシルスルフエイト)1%を〃
口えて溶菌する。次いで、常法に従って1等量の水で飽
和したフェノールを加え9000回転10分間の遠心処
理して2層に分け、上層のDISIAを2倍電のエタノ
ール(95%)加えることにより沈澱させ精製して、
5FT耐性トリプトファン表 生産性枯草菌26F150株の精製した染色体DNA約
500μg全得た。
口えて溶菌する。次いで、常法に従って1等量の水で飽
和したフェノールを加え9000回転10分間の遠心処
理して2層に分け、上層のDISIAを2倍電のエタノ
ール(95%)加えることにより沈澱させ精製して、
5FT耐性トリプトファン表 生産性枯草菌26F150株の精製した染色体DNA約
500μg全得た。
(3) 枯草菌の清涼住ファージDNAの調製。
枯草菌の清涼性ファーヅρ11(バチルス・ズブチリス
、1)K0531(ρ1.)株)を、500罰のL−培
地を収容した21答三角フラスコで37℃で振盪培髪し
た。菌体濃度が10 ’ /ml(0゜D、、わが0.
1)に達した時にマイトマイシンCf1μm77m1添
加して更に10分間振盪培養をつづけた。
、1)K0531(ρ1.)株)を、500罰のL−培
地を収容した21答三角フラスコで37℃で振盪培髪し
た。菌体濃度が10 ’ /ml(0゜D、、わが0.
1)に達した時にマイトマイシンCf1μm77m1添
加して更に10分間振盪培養をつづけた。
培#物中の菌体を遠心分離により集めて新しいL−培地
500Mに懸濁し、37℃で菌体が浴解するまで撮盪培
養したのち、遠心分離により上澄液を集めた。この上澄
液にポリエチレングリコール10%および0.5Mとな
るように# a Cl f加えて、4℃に一晩放直した
。
500Mに懸濁し、37℃で菌体が浴解するまで撮盪培
養したのち、遠心分離により上澄液を集めた。この上澄
液にポリエチレングリコール10%および0.5Mとな
るように# a Cl f加えて、4℃に一晩放直した
。
一晩放置波、5oooτ、p、η4.10分間の条件で
遠心分離して沈澱物を集め、これを5−の緩衝液(10
mu Tris・HCl、0.15 M NaCL、1
0 mM MgC12)に溶かし、これをCsC1(塩
化セシウム20%w/w 〜45 q6w/w )の密
度勾配遠心にかけてファージρ、1区分を得た。得られ
たファージ4,1区分を同じ緩衝液を用いて透析してC
sC1を除き、次いで、常法に従って、5DS(1チ)
、フェノール処理によってDNAを精製して、枯草菌溶
原住ファーソρ、1の精製した染色体D N’ A約2
mgを得た。
遠心分離して沈澱物を集め、これを5−の緩衝液(10
mu Tris・HCl、0.15 M NaCL、1
0 mM MgC12)に溶かし、これをCsC1(塩
化セシウム20%w/w 〜45 q6w/w )の密
度勾配遠心にかけてファージρ、1区分を得た。得られ
たファージ4,1区分を同じ緩衝液を用いて透析してC
sC1を除き、次いで、常法に従って、5DS(1チ)
、フェノール処理によってDNAを精製して、枯草菌溶
原住ファーソρ、1の精製した染色体D N’ A約2
mgを得た。
(41t2)で得た染色体DNA及び(3)で得たDN
Aの断片の調製。
Aの断片の調製。
上記(2)で得た26F150株の染色体DNAの10
μgと上記(3)で得た枯草両温原性ファージρ1゜の
DNA10μliとを反応液(100mMTris−H
CL(pii7.5 )、50M NaC1,10rr
LMMQCI、 、 100μI/ゴウシ血清アルブミ
ン)中で、50ユニツトの制限酵素E、oR1の存在下
に37℃で1時間反応させた。その後、65℃で5分間
加熱処理して制限酵4E、oR1を失活させて反応を停
止させた。
μgと上記(3)で得た枯草両温原性ファージρ1゜の
DNA10μliとを反応液(100mMTris−H
CL(pii7.5 )、50M NaC1,10rr
LMMQCI、 、 100μI/ゴウシ血清アルブミ
ン)中で、50ユニツトの制限酵素E、oR1の存在下
に37℃で1時間反応させた。その後、65℃で5分間
加熱処理して制限酵4E、oR1を失活させて反応を停
止させた。
(5)枯単困采色体D N A (2)断片とファージ
DNA(3)断片の連結処理。
DNA(3)断片の連結処理。
上記(5)で形成きれた26F150.1木の染色体D
NA断片及びファージρ1.のD’NA断片を含有する
E、olビI反応液に、ATPCアデノシン−3−りん
敵)1 mM、DTT (ヅチオスレイトール)10m
M及びT、すif −セ1 vrLit f )Ju工
て全量を200μlとし、15℃で18時間反応させた
。
NA断片及びファージρ1.のD’NA断片を含有する
E、olビI反応液に、ATPCアデノシン−3−りん
敵)1 mM、DTT (ヅチオスレイトール)10m
M及びT、すif −セ1 vrLit f )Ju工
て全量を200μlとし、15℃で18時間反応させた
。
(6)連結DNAのtrp−枯草劇中への形質転換によ
るtrp形賞導入体の形成。
るtrp形賞導入体の形成。
枯阜凶溶原性ファーソρ11(バチルス・ズブチリxS
DK0531 trpC,、Igu A、(p、、)
k)e、5WLeoc−を培地(K、HPo、 1.4
%、KH,Po、 0.6 %、 (A’A)tS
Oi O82チ、クエン酸ナトリウム・2H,00,1
%、M Q S O,・rH,Osm M 、グA/
コー ス0.5%、カザミノ酸0.02%、ロイシン5
0μI/扉l、メチオニン50μ、F /m)で、菌体
増殖を示すO−D、6Qの増加が止まる壕で、37°C
で振袖培養した。集菌後、とi″Lを10ゴのC−n培
地(C−1培地のカザミノばとアミノ酸を1/10とし
た培地)に懸濁し、この自体懸濁液0.1 mlに上記
(5)で得た連結処理したDNA液を加え、37℃で3
0分間振盪した。この液を緩衝液(10mMTris−
HCI 7yH7,4,0,15A(NaC1)で10
倍に希釈して選択用プレートにプレート当り0.1フづ
つスプレッダ−を用いて塗布+ し、37°Cで24時間放城してtrp形質導入体約1
0000ケが得られた。
DK0531 trpC,、Igu A、(p、、)
k)e、5WLeoc−を培地(K、HPo、 1.4
%、KH,Po、 0.6 %、 (A’A)tS
Oi O82チ、クエン酸ナトリウム・2H,00,1
%、M Q S O,・rH,Osm M 、グA/
コー ス0.5%、カザミノ酸0.02%、ロイシン5
0μI/扉l、メチオニン50μ、F /m)で、菌体
増殖を示すO−D、6Qの増加が止まる壕で、37°C
で振袖培養した。集菌後、とi″Lを10ゴのC−n培
地(C−1培地のカザミノばとアミノ酸を1/10とし
た培地)に懸濁し、この自体懸濁液0.1 mlに上記
(5)で得た連結処理したDNA液を加え、37℃で3
0分間振盪した。この液を緩衝液(10mMTris−
HCI 7yH7,4,0,15A(NaC1)で10
倍に希釈して選択用プレートにプレート当り0.1フづ
つスプレッダ−を用いて塗布+ し、37°Cで24時間放城してtrp形質導入体約1
0000ケが得られた。
(7) T RP −F T Rを有する染色体DN
Aを持つm原性ンアージの確認及び選択。
Aを持つm原性ンアージの確認及び選択。
上記(6)で得られたtrp+形質転換体を100ケす
つ100コロニーに集め、5 mlのL−培地に懸γ助
した。これをO,−D、、6゜が0.05となるように
L−培地で1b°釈したのち、37°Cで振盪培養し、
0 、− J)、 neoが0.1になった時にマイト
マイシンC015μl/ / ml?加え更に約lO分
間振舖した。この液を400 Or、 p、η−110
分間の条件で遠心処理に賦して果鉋し、この細体を新し
い培地に懸Yllnl、、37℃で3時間振盪培養して
磐田させた。
つ100コロニーに集め、5 mlのL−培地に懸γ助
した。これをO,−D、、6゜が0.05となるように
L−培地で1b°釈したのち、37°Cで振盪培養し、
0 、− J)、 neoが0.1になった時にマイト
マイシンC015μl/ / ml?加え更に約lO分
間振舖した。この液を400 Or、 p、η−110
分間の条件で遠心処理に賦して果鉋し、この細体を新し
い培地に懸Yllnl、、37℃で3時間振盪培養して
磐田させた。
溶菌液を無菌的にミリポアフィルタ−(0,45μ)に
;1a t、て生菌を除去し、この生白1を除去した溶
菌7rりを希釈緩衝g、(10mM Tris HHC
l pH7,4,0,15& NaC1,10mM
MgC1,)で10°〜107に希釈した。これらの希
釈液0.1mlと、宿主菌としてバチルス・ズブチリス
5DK0531−TrpC株をL−培地にO,−D、6
.。
;1a t、て生菌を除去し、この生白1を除去した溶
菌7rりを希釈緩衝g、(10mM Tris HHC
l pH7,4,0,15& NaC1,10mM
MgC1,)で10°〜107に希釈した。これらの希
釈液0.1mlと、宿主菌としてバチルス・ズブチリス
5DK0531−TrpC株をL−培地にO,−D、6
.。
が0,1となるまで培養したもの0.1Mとを、37℃
30分反応させ、C−r培地から要求アミノ酸であるト
リプトファンを除きかつ1.5弼となるように寒天を加
えた平板培地にスプレッダ−で塗布し、37℃1晩培養
してトリプトファン非要求性となったm−Ctτp十形
質転換株)を得た。単一の集落を単離し上に述べたごと
くマイトマイシンCでファージを誘発して#菌液を得た
。これら溶菌液のプラーク形成能とトリプトファンオペ
ロン中に突然変異をもつトリプトファン要求株であるt
rp A、trpB、 trpC,trpD、 t
rpB株を受容菌としてのtrp形質導入能を調べる。
30分反応させ、C−r培地から要求アミノ酸であるト
リプトファンを除きかつ1.5弼となるように寒天を加
えた平板培地にスプレッダ−で塗布し、37℃1晩培養
してトリプトファン非要求性となったm−Ctτp十形
質転換株)を得た。単一の集落を単離し上に述べたごと
くマイトマイシンCでファージを誘発して#菌液を得た
。これら溶菌液のプラーク形成能とトリプトファンオペ
ロン中に突然変異をもつトリプトファン要求株であるt
rp A、trpB、 trpC,trpD、 t
rpB株を受容菌としてのtrp形質導入能を調べる。
その結果、trp A Ntrp E株に対して全てだ
trp+形質導入能が認められた溶菌液を提供した株が
、TRP−FTRを有する染色体DNAを持つ清涼性フ
ァーソと確認1選択される。
trp+形質導入能が認められた溶菌液を提供した株が
、TRP−FTRを有する染色体DNAを持つ清涼性フ
ァーソと確認1選択される。
得られた本発明のTRP−FTRを有する染色体DNA
を持つ清涼性ファーソは、枯草菌ファージ5np−11
と老台された。
を持つ清涼性ファーソは、枯草菌ファージ5np−11
と老台された。
実施例2
ドリフトファン合成に対するトリプトファンによる阻害
が解除されたトリプトファンオペロンf少なくとも2ケ
有する染色体DNAを持つL−トリフ’)ファン生産性
枯草菌(バチルス・ズブチリス)。
が解除されたトリプトファンオペロンf少なくとも2ケ
有する染色体DNAを持つL−トリフ’)ファン生産性
枯草菌(バチルス・ズブチリス)。
実)J1!+1り111のfl)で得られた5FT耐性
トリプトファン生産性枯草賄株バチルス・ズブチリス2
6F’150株を宿主田とし、実施例1で得られた7°
RP−F′I′R分有するDNA′f持つ溶原住ファー
ソ5DP−11を用いて1’lビP−FTRを少々くと
も2ケ有する染色体DNAを持つL−トリブトファン生
産性枯草m′f;r造成した。267”150株をL培
地(バク)llグトン811/11、酵母菌抽出ζクツ
4 & / l、 NaC;l 41 / l )で培
養しOoD、、6゜が0.1 (10” cell/
ml )となった所で3500回転/分10分間の遠心
処理により集菌し緩衝液(10mM Tris −HC
l pH7,4のg、 15 NaCt。
トリプトファン生産性枯草賄株バチルス・ズブチリス2
6F’150株を宿主田とし、実施例1で得られた7°
RP−F′I′R分有するDNA′f持つ溶原住ファー
ソ5DP−11を用いて1’lビP−FTRを少々くと
も2ケ有する染色体DNAを持つL−トリブトファン生
産性枯草m′f;r造成した。267”150株をL培
地(バク)llグトン811/11、酵母菌抽出ζクツ
4 & / l、 NaC;l 41 / l )で培
養しOoD、、6゜が0.1 (10” cell/
ml )となった所で3500回転/分10分間の遠心
処理により集菌し緩衝液(10mM Tris −HC
l pH7,4のg、 15 NaCt。
1 ’097ZA/ MgCす)に2倍の函度に懸濁す
る。その0. I NLlと実施例1で述べたTJI−
tP−FTノンを有するDNAを持つ溶涼性ファーソP
1−1溶菌液o、i m’ トfk合し30分間37°
Cで成層させ10”のρ1.クリアープラーク形成粒子
を加え実施例1に示したC−を合成寒天培地にひろげた
。37℃1晩培養後出現したコロニーをL寒天培地(L
培地に1.5チとなるように寒天を加える。)上で単一
コロニー化によって純化した。このようにして得fc、
26 F 150 株のファージρ11による隘原菌
からtrp形質導入ρ11によって浴涼化された株f:
200μ、lit / rneのアンスラニル酸を加え
アきノ酸を除いたC−1培地で37℃10時間培養して
その培地中のトリプトファンを、−・、速液体クロマト
グラフィーにより検定することにより26 F 150
株の生産するトリプトファン粛と比較して166倍の蓄
積を示すものとして選んだ。さらに実施例1に示した方
法によりこの賄のマイトマイシンC誘発佐の溶菌液にt
rp+形質能が検出され、trp+形a導入ファーソρ
、1が溶原化されていることが僅認された。
る。その0. I NLlと実施例1で述べたTJI−
tP−FTノンを有するDNAを持つ溶涼性ファーソP
1−1溶菌液o、i m’ トfk合し30分間37°
Cで成層させ10”のρ1.クリアープラーク形成粒子
を加え実施例1に示したC−を合成寒天培地にひろげた
。37℃1晩培養後出現したコロニーをL寒天培地(L
培地に1.5チとなるように寒天を加える。)上で単一
コロニー化によって純化した。このようにして得fc、
26 F 150 株のファージρ11による隘原菌
からtrp形質導入ρ11によって浴涼化された株f:
200μ、lit / rneのアンスラニル酸を加え
アきノ酸を除いたC−1培地で37℃10時間培養して
その培地中のトリプトファンを、−・、速液体クロマト
グラフィーにより検定することにより26 F 150
株の生産するトリプトファン粛と比較して166倍の蓄
積を示すものとして選んだ。さらに実施例1に示した方
法によりこの賄のマイトマイシンC誘発佐の溶菌液にt
rp+形質能が検出され、trp+形a導入ファーソρ
、1が溶原化されていることが僅認された。
得られた本発明の7’ A’ P −F’ T R全2
ケ有する81S色体D N A f持つL −トIJブ
トファン生産性枯Jul&ま、・ぐチルス・ズブチリス
5D−11(26F150 # 48 )と温合された
。
ケ有する81S色体D N A f持つL −トIJブ
トファン生産性枯Jul&ま、・ぐチルス・ズブチリス
5D−11(26F150 # 48 )と温合された
。
実/&列3及び比較例1
醗酵法L −トリプトファンの!L′l造。
Mil夾h11I抄02でイ好られた本発明L−トリプ
トファン生産性枯草田株バチルス・ズブチリス5D−1
1(26F150+48)、及びその親株の5FT耐性
トリプトファン生産性枯草肯株バチルス・ズブチリス2
6F150株の夫々を中いて、醗酵法b −ト+)ブト
ファンの製造f何った。
トファン生産性枯草田株バチルス・ズブチリス5D−1
1(26F150+48)、及びその親株の5FT耐性
トリプトファン生産性枯草肯株バチルス・ズブチリス2
6F150株の夫々を中いて、醗酵法b −ト+)ブト
ファンの製造f何った。
実−一一一一一−4
夫々の菌株を径2.4crILの試験管中のNB原原料
斜面培地ュートリエント・プロス101//71゜寒天
15&/、/)に37℃1晩前培養し51Jツヤ−ファ
ーメンタ−中21の合成培地(NαH,PO4・2B、
011.411/It、に、1iPo、 12.2 f
j/11゜(NH+ )25O46,Oy/ l、 C
a G l ! 0.1 p pm−MnS04−4−
61i、010 ppm、F g So、 −rH,0
1pprn、さらに微量金属塩としてZrr、SO,・
’IE、00、88 g/ l、 G us 04・5
11tOO0399/ A’ −CoSO,・’IB’
、OO,481//L Nax、MO,・2 H,00
,05,9/IJ、1J8PO,o、 o s l!/
IIを含む溶液を5mノ/l加える)に植−した。アン
モニア水によ1)pHを6.8〜7.0に調節し磐存酸
素1ハ約’Ipptnに制御した。0.D、、、oが3
以上となった時点で7%W / Vのアンスラニル酸溶
液を1時間あたり約11711の割り合いで加え、以後
培地中にアンスラニル酸が検出されない程度に加え続け
30時間35℃で培養した。L−トリプトファンの培地
中のW+’ 積te!を尚速液体クロマトグラフィーで
>ii 量1゜た結果26 F’ 150により9.0
1/11.一方26p”150#48によっては13.
’16g/11のL−トリプトファンが蓄積された。
斜面培地ュートリエント・プロス101//71゜寒天
15&/、/)に37℃1晩前培養し51Jツヤ−ファ
ーメンタ−中21の合成培地(NαH,PO4・2B、
011.411/It、に、1iPo、 12.2 f
j/11゜(NH+ )25O46,Oy/ l、 C
a G l ! 0.1 p pm−MnS04−4−
61i、010 ppm、F g So、 −rH,0
1pprn、さらに微量金属塩としてZrr、SO,・
’IE、00、88 g/ l、 G us 04・5
11tOO0399/ A’ −CoSO,・’IB’
、OO,481//L Nax、MO,・2 H,00
,05,9/IJ、1J8PO,o、 o s l!/
IIを含む溶液を5mノ/l加える)に植−した。アン
モニア水によ1)pHを6.8〜7.0に調節し磐存酸
素1ハ約’Ipptnに制御した。0.D、、、oが3
以上となった時点で7%W / Vのアンスラニル酸溶
液を1時間あたり約11711の割り合いで加え、以後
培地中にアンスラニル酸が検出されない程度に加え続け
30時間35℃で培養した。L−トリプトファンの培地
中のW+’ 積te!を尚速液体クロマトグラフィーで
>ii 量1゜た結果26 F’ 150により9.0
1/11.一方26p”150#48によっては13.
’16g/11のL−トリプトファンが蓄積された。
実施例4
7’ 11 P −F’ T 11を少々くとも3ケ有
する染色体1)HAを持っL −) IJブトファン生
産性枯枯草。
する染色体1)HAを持っL −) IJブトファン生
産性枯枯草。
実施9i13で得た26F’−150#4B株に実施?
l11の方法によりρ11のかわシにφ105 ’l’
:用いて得た清涼化ファーヅφtellのtrp+形質
導入ファージ5l)P−12を得た。実施例2の方法で
ρ11のかわりにφ+os k用いてtrp+形質導入
ファー−/に1−1によって清涼化芒れた株を得た。こ
れらの菌株中に二柚類のtrp+形質導入ファーヅ5D
P−11と5DP−12が浴涼化していることがこれら
の菌株がρ1.とφLol+のファージに対して抵抗性
を示す(i両温n1ty)ことにより確認された。
l11の方法によりρ11のかわシにφ105 ’l’
:用いて得た清涼化ファーヅφtellのtrp+形質
導入ファージ5l)P−12を得た。実施例2の方法で
ρ11のかわりにφ+os k用いてtrp+形質導入
ファー−/に1−1によって清涼化芒れた株を得た。こ
れらの菌株中に二柚類のtrp+形質導入ファーヅ5D
P−11と5DP−12が浴涼化していることがこれら
の菌株がρ1.とφLol+のファージに対して抵抗性
を示す(i両温n1ty)ことにより確認された。
特許出願人 昭和電工株式会社
東京都大田区多摩川2丁目24番
25号昭和電工株式会社生化学研
究所内
0発 明 者 崎元和範
東京都大田区多摩川2丁目24番
25号昭和電工株式会社生化学研
究所内
0発 明 者 安田悦子
東京都太田区多摩川2丁目24番
25号昭和電工株式会社生化学研
究所内
0発 明 者 高橋薫
東京都大田区多摩川2丁目24番
25号昭和電工株式会社生化学研
究所内
0発 明 者 赤柴健夫
東京都大田区多摩川2丁目24番
25号昭和電工株式会社生化学研
究所内
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、トリプトファン合成に対するトリプトファンによる
阻害が解除されたトリプトファンオペロンを少なくとも
2ケ有する染色体DNAを持つL−トリプトファン生産
性枯草菌(バチルス・ズブチリス)。 z トリプトファン合成に対するトリプトファンによる
阻害が解除されたトリプトファンオペロンを少なくとも
2ケ有する染色体DNAを持つL−トリプトファン生産
性枯草菌(バチルス・ズブチリス)を、培地中に培養し
、形成された培養培地からL−トリプトファンを採取す
ることを特徴とする醗酵法り一トリプトファンの製法。 3、該培地にアントラニルばを共存させて培養を行うこ
とを特徴とする特許請求の範囲82項記載の製法。 4、トリプトファン合成に対するトリプトファンによる
阻害が解除されたトリプトファンオペロンを有する染色
体DNAを持つ溶原性ファージ。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57227964A JPS59125892A (ja) | 1982-12-30 | 1982-12-30 | トリプトフアンオペロン遺伝子を持つ溶原性フア−ジ、これを溶原化したトリプトフアン生産性枯草菌及びその利用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57227964A JPS59125892A (ja) | 1982-12-30 | 1982-12-30 | トリプトフアンオペロン遺伝子を持つ溶原性フア−ジ、これを溶原化したトリプトフアン生産性枯草菌及びその利用 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS59125892A true JPS59125892A (ja) | 1984-07-20 |
Family
ID=16869013
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP57227964A Pending JPS59125892A (ja) | 1982-12-30 | 1982-12-30 | トリプトフアンオペロン遺伝子を持つ溶原性フア−ジ、これを溶原化したトリプトフアン生産性枯草菌及びその利用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS59125892A (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6185184A (ja) * | 1984-10-04 | 1986-04-30 | Showa Denko Kk | 形質転換によるl−トリプトフアン生産性微生物及びl−トリプトフアン製造法 |
JPS6188873A (ja) * | 1984-10-05 | 1986-05-07 | Showa Denko Kk | 形質転換菌及びl−トリプトフアンの製造法 |
JPS6196990A (ja) * | 1984-10-19 | 1986-05-15 | Ajinomoto Co Inc | L−トリプトフアンの製造法 |
-
1982
- 1982-12-30 JP JP57227964A patent/JPS59125892A/ja active Pending
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6185184A (ja) * | 1984-10-04 | 1986-04-30 | Showa Denko Kk | 形質転換によるl−トリプトフアン生産性微生物及びl−トリプトフアン製造法 |
JPS6188873A (ja) * | 1984-10-05 | 1986-05-07 | Showa Denko Kk | 形質転換菌及びl−トリプトフアンの製造法 |
JPS6196990A (ja) * | 1984-10-19 | 1986-05-15 | Ajinomoto Co Inc | L−トリプトフアンの製造法 |
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