JPS5835679B2 - コウソハンノウノ ジツシホウホウ - Google Patents
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、酵素反応の実施方法に関し、さらに詳しくは
、微孔性膜の微孔に架橋させた不溶性酵素を用いる酵素
反応の実施方法に関する。
、微孔性膜の微孔に架橋させた不溶性酵素を用いる酵素
反応の実施方法に関する。
酵素反応において不溶性酵素を用いることの利点は、基
質溶液の水流(こ連続的(こ酵素を接触作用させ、この
触媒反応で得られた生成物から酵素を分離する必要を除
くことを可能にする点にある。
質溶液の水流(こ連続的(こ酵素を接触作用させ、この
触媒反応で得られた生成物から酵素を分離する必要を除
くことを可能にする点にある。
酵素反応の実施に際して不溶性酵素を用いるこ゛とは公
知である。
知である。
たとえば、以下のような公知の方法が使用されている。
1、不溶性酵素粒子をタンク中Oこ撹拌しながら懸濁し
、排出した液をろ過器に通ずる。
、排出した液をろ過器に通ずる。
2、不溶性酵素粒子をカラム中(こ充填し、これに連続
的に基質溶液を通す。
的に基質溶液を通す。
両系とも種々のグループによって研究され、多くの場合
、粒子内および粒子周囲の非撹拌層から生ずる拡散制限
が認められた。
、粒子内および粒子周囲の非撹拌層から生ずる拡散制限
が認められた。
この制限は、基質の拡散速度が低く、かつ酵素反応速度
が高いときに1す1す重要になる。
が高いときに1す1す重要になる。
すなわち、この拡散制限が不溶性酵素粒子の効率を低下
させ、場合によっては潜在活性のごく一部しか利用され
ない。
させ、場合によっては潜在活性のごく一部しか利用され
ない。
したがって、この公知方法の不利益を回避した。
不溶性酵素による酵素反応の実施方法の発見が望まれて
きたのである。
きたのである。
本発明は、酵素反応(こより化学的(こ変換すべき基質
の水溶液に圧力を適用し、上記水溶液は圧力差(こよっ
て架橋酵素膜中を通過させ、得られた溶液生成物を公知
方法によって分離することを特徴とする酵素反応の実施
方法を発見し完成されたものである。
の水溶液に圧力を適用し、上記水溶液は圧力差(こよっ
て架橋酵素膜中を通過させ、得られた溶液生成物を公知
方法によって分離することを特徴とする酵素反応の実施
方法を発見し完成されたものである。
この場合、架橋酵素膜としては、微孔性でその微孔中に
酵素が二官能性カップリング剤によって架橋されている
架橋酵素膜を用いる。
酵素が二官能性カップリング剤によって架橋されている
架橋酵素膜を用いる。
本発明(こおけろ水溶液とは、酵素反応が行われるに必
要な十分の量の水を含んでいる溶液を意味する。
要な十分の量の水を含んでいる溶液を意味する。
基質が水に十分溶解しないような場合lこは、他の溶媒
、たとえばエタノールを加える必要がある。
、たとえばエタノールを加える必要がある。
しかしながら、通常、溶媒は少なくとも5゜φの水より
なるものである。
なるものである。
本発明の方法において用いられるものと類似の酵素膜は
、これまでにも製造されたことがあり文献(こ記載され
ている。
、これまでにも製造されたことがあり文献(こ記載され
ている。
たとえば、Qo l dma nら:5dience
150,758−760(1965)およびAY r
ame a sら: DO81,915,970号であ
る。
150,758−760(1965)およびAY r
ame a sら: DO81,915,970号であ
る。
しかしながら、これらの記述は、拡散条件下(こ釦ける
生物学的膜およびこの種の膜の微小環境の調製および研
究を目的としたものであり、本発明の方法およびそれに
より達成される優れた効果については全く述べられてい
ないし、示唆もない。
生物学的膜およびこの種の膜の微小環境の調製および研
究を目的としたものであり、本発明の方法およびそれに
より達成される優れた効果については全く述べられてい
ないし、示唆もない。
その他の関連ある記述としては、英国特許第1,183
,260号がある。
,260号がある。
これは、不溶性酵素ならびにその製法釦よび使用法を目
的としたものであって、さらに詳しくは、不溶性支持体
に化学的に結合させた酵素を用いて酵素反応を実施する
方法に関するものである。
的としたものであって、さらに詳しくは、不溶性支持体
に化学的に結合させた酵素を用いて酵素反応を実施する
方法に関するものである。
この特許においては、特にQoldmanらの記述lこ
言及し、その教示を検討した結果、酵素反応を実施する
(こあたり、膜にとりつけた架橋酵素を用いる試みは実
用的でないと結論し、膜に直接補原子価(covale
nt )結合した酵素が選択されているのである。
言及し、その教示を検討した結果、酵素反応を実施する
(こあたり、膜にとりつけた架橋酵素を用いる試みは実
用的でないと結論し、膜に直接補原子価(covale
nt )結合した酵素が選択されているのである。
上記特許の教示訃よび結論に反し、本発明の酵素反応実
施方法が、不溶性酵素粒子または補原子価結合させた酵
素膜の使用に基づく上記方法に比べて多くの利点を有す
ることを発見し完成されたものである。
施方法が、不溶性酵素粒子または補原子価結合させた酵
素膜の使用に基づく上記方法に比べて多くの利点を有す
ることを発見し完成されたものである。
大部分の従来技術における非流動性酵素反応装置の設計
は、酵素粒子Gこ基づいたもので、この場合、拡散抵抗
が重要な関係をもってくる。
は、酵素粒子Gこ基づいたもので、この場合、拡散抵抗
が重要な関係をもってくる。
可溶性酵素の場合と異なり、マトリックス支持酵素は不
均一な環境で作用し、全酵素過程に5つの別個のステッ
プが存在する。
均一な環境で作用し、全酵素過程に5つの別個のステッ
プが存在する。
すなわち、■)全体相から担体表面への基質の拡散(外
部拡散) 2)担体表面から酵素の支配範囲への基質の輸送(内部
拡散) 3)酵素に触媒された基質の変換 4)酵素の充填された微孔内部から粒子表面への生成物
の輸送 5)粒子表面から全体相への生成物の拡散である。
部拡散) 2)担体表面から酵素の支配範囲への基質の輸送(内部
拡散) 3)酵素に触媒された基質の変換 4)酵素の充填された微孔内部から粒子表面への生成物
の輸送 5)粒子表面から全体相への生成物の拡散である。
ステップ1お−よび5は、マトリックス支持酵素表面の
周辺に存在する停滞層からの外部もしくは全体への拡散
効果である。
周辺に存在する停滞層からの外部もしくは全体への拡散
効果である。
この領域を通じての基質の輸送は主として分子拡散によ
るものであり、これが拡散抵抗となる。
るものであり、これが拡散抵抗となる。
全体相への拡散制限は、小充填カラムの場合、また酵素
膜の場合(こ認められる。
膜の場合(こ認められる。
高分子量基質の場合Gこは、その低拡散率のために、拡
散障害がさらに著しく作用する。
散障害がさらに著しく作用する。
すなわち、結合パパイン、フィチン釦よびキモトリプシ
ンをカゼインに作用させる場合、低分子量基質にたいし
ての活性Gこ比し、活性の低下が認められる。
ンをカゼインに作用させる場合、低分子量基質にたいし
ての活性Gこ比し、活性の低下が認められる。
ステップ2釦よび4は内部もしくは微孔拡散効果である
。
。
これは、非流動性酵素の大部分は微孔性担体マトリック
スの内部に結合していて、基質捷たは生成物が酵素の反
応部位に到達しまたことから離れるためOこは狭い酵素
含有微孔内部を内部へまたは外部へ拡散しなければなら
ないこと(こよる。
スの内部に結合していて、基質捷たは生成物が酵素の反
応部位に到達しまたことから離れるためOこは狭い酵素
含有微孔内部を内部へまたは外部へ拡散しなければなら
ないこと(こよる。
多くの場合、これらの内部拡散抵抗が酵素の表示触媒活
性を低下させる。
性を低下させる。
たとえば、微孔担体に補原子価結合させたエノラーゼは
、その一部分のみが担体表面近くに存在して活性を現わ
すため、潜在活性の4分の1の活性を示す(こすぎない
。
、その一部分のみが担体表面近くに存在して活性を現わ
すため、潜在活性の4分の1の活性を示す(こすぎない
。
内部拡散の制限は、反応生成物の微小環境からの拡散が
遅い故に、生成阻害をも増大させる。
遅い故に、生成阻害をも増大させる。
これは、蛋白分解酵素によるアミノ酸エステル氷解の場
合に観察されている。
合に観察されている。
酵素反応によって生成する水素イオンが、全体のpHに
比し部分的pHを低下させ、その結果pH活性曲線にし
たがった活性の変移を生ずる。
比し部分的pHを低下させ、その結果pH活性曲線にし
たがった活性の変移を生ずる。
このようなpH活性変動の例は、パパイン、トリプシン
、キモトリプシン釦よびグルコースオキシダーゼの場合
に観察される。
、キモトリプシン釦よびグルコースオキシダーゼの場合
に観察される。
上述のように、本発明によれば、微孔壁が架橋酵素分子
の層によって被覆された微孔性膜を通して加圧ろ過を行
う酵素反応器を用いること(こより、上述の拡散制限の
問題は、すべてではないにしてもかなりの部分が解決さ
れたのである。
の層によって被覆された微孔性膜を通して加圧ろ過を行
う酵素反応器を用いること(こより、上述の拡散制限の
問題は、すべてではないにしてもかなりの部分が解決さ
れたのである。
基質の微孔への流入は、圧力勾配によって調整される。
酵素Gこ触媒される変換は微孔内部で起こり、生成物は
その生成に応じて除去される。
その生成に応じて除去される。
孔径の小さい微孔性膜を用いるときは、上述の過程にち
・ける拡散に基づくステップは完全に消失する。
・ける拡散に基づくステップは完全に消失する。
基質は圧力勾配によって強制的に微孔内(こ流入させら
れるので、外部非撹拌層は存在しない。
れるので、外部非撹拌層は存在しない。
また、微孔の半径が小さいので、微孔内部拡散の問題も
無視できる。
無視できる。
上述の加圧導入式酵素膜反応器では、外部釦よび内部物
質輸送制限の問題がないので、すなわち、a)反応過程
は拡散によって調整されるのではなく、機械的に調整さ
れる。
質輸送制限の問題がないので、すなわち、a)反応過程
は拡散によって調整されるのではなく、機械的に調整さ
れる。
b)酵素が粒子に結合している場合は、微孔内拡散制限
のために、反応は粒子表面のみに制限されることが多い
のにたいし、膜の微孔壁に結合した酵素は、はるかに効
率よく触媒反応に利用される、 ことから、生物学的効率が増大する。
のために、反応は粒子表面のみに制限されることが多い
のにたいし、膜の微孔壁に結合した酵素は、はるかに効
率よく触媒反応に利用される、 ことから、生物学的効率が増大する。
さらに、微孔壁表面と微孔容量の比は大きく(径O11
μの微孔の場合2・105)、その結果、微孔中の部分
酵素濃度は著しく高くなる。
μの微孔の場合2・105)、その結果、微孔中の部分
酵素濃度は著しく高くなる。
微孔が同一の直線シリンダーであり、酵素分子が微孔壁
を一分子層で覆っているものと仮定すると、酵素濃度は
つぎのように計算できる。
を一分子層で覆っているものと仮定すると、酵素濃度は
つぎのように計算できる。
微孔サイズ0.1μの膜における酵素濃度は0.6μM
/Ceとなる。
/Ceとなる。
これをη表示にすると、分子量25.000(すなわち
、キモトリプシンの場合)の酵素では15■μとなる。
、キモトリプシンの場合)の酵素では15■μとなる。
この高濃度局在は基質の高度検車を生む。
本発明の架橋酵素膜を用いた場合には、英国特許第1,
183,260号における補原子価結合酵素膜に比し、
さらに以下の利点が得られる。
183,260号における補原子価結合酵素膜に比し、
さらに以下の利点が得られる。
1、膜の負荷能、すなわち膜の単位量により不溶化され
る架橋酵素量が大きい。
る架橋酵素量が大きい。
酵素分子は微孔表面上lこ緊密に接した層を形成し、微
孔中にきわめて高い酵素の部分的濃度が達成される。
孔中にきわめて高い酵素の部分的濃度が達成される。
2、膜中での酵素の三次元構造がマ) IJラックス強
度を増大させ、本発明の方法においてはしばしば生ずる
押しつぶし外力に対する膜の抵抗性が増す。
度を増大させ、本発明の方法においてはしばしば生ずる
押しつぶし外力に対する膜の抵抗性が増す。
3、架橋酵素は、補原子価結合させた酵素に比して熱変
性に安定であり、長期に保存できる。
性に安定であり、長期に保存できる。
さらに、酵素分子を不活性蛋白に架橋することにより、
マトリックスへの架橋による安定効果に周囲の不活性蛋
白による保護効果を加えることができる。
マトリックスへの架橋による安定効果に周囲の不活性蛋
白による保護効果を加えることができる。
4、予め生成した膜の内部への酵素の架橋は、般的な非
特異的方法で実施することが可能で、どのマトリックス
、どの酵素にも適用できる。
特異的方法で実施することが可能で、どのマトリックス
、どの酵素にも適用できる。
膜上に活性部分を形成する必要はなく、適当な二官能性
反応剤を要するのみである。
反応剤を要するのみである。
すなわち、本発明の方法は大きな進歩をもたらすもので
あり、酵素反応の実施に多くの利点を与えるものである
ことは、特に評価さるべきである。
あり、酵素反応の実施に多くの利点を与えるものである
ことは、特に評価さるべきである。
本発明の他の態様として、本発明の方法に使用する架橋
酵素膜製造の至適方法をも包含する。
酵素膜製造の至適方法をも包含する。
すなわち、本発明は、酵素溶液を膜の微孔中に圧入し、
ついでこの酵素負荷膜を二官能性架橋剤溶液中に浸漬す
ることにより、上述の本発明酵素反応実施方法に使用す
るに特に適した架橋酵素膜の製法の提供をも目的とする
ものである。
ついでこの酵素負荷膜を二官能性架橋剤溶液中に浸漬す
ることにより、上述の本発明酵素反応実施方法に使用す
るに特に適した架橋酵素膜の製法の提供をも目的とする
ものである。
GoldmanおよびAvrameaSは、いずれも酵
素膜を拡散法によって製造しているが、この方法は不満
足なものであって、この拡散法の不利な点を改善した酵
素膜の新しい製法の発見が望1れていた。
素膜を拡散法によって製造しているが、この方法は不満
足なものであって、この拡散法の不利な点を改善した酵
素膜の新しい製法の発見が望1れていた。
多くの研究の結果、膜微孔内に酵素分子を導入するのに
圧力を用いると、膜の負荷能の調整が容易になり、公知
の拡散法に比し負荷能を増大させうろことが明らかにさ
れたのである。
圧力を用いると、膜の負荷能の調整が容易になり、公知
の拡散法に比し負荷能を増大させうろことが明らかにさ
れたのである。
しかも、この方法(こより、製造は容易かつ迅速に行わ
れるようになった。
れるようになった。
さらに、特に有利な点は酵素膜の大量生産が可能となっ
たことである。
たことである。
さらに詳細(こ説明すれば、膜をとり、この膜の微孔中
に、圧力差を用い、たとえば圧力セル中で酵素溶液を強
制的fこ導入する。
に、圧力差を用い、たとえば圧力セル中で酵素溶液を強
制的fこ導入する。
かくして膜の微孔lこ酵素溶液が充填されるが、ついで
この酵素負荷膜を二官能性架橋剤溶液中に浸漬する。
この酵素負荷膜を二官能性架橋剤溶液中に浸漬する。
この方法によって、架橋酵素膜が製造できる。
圧力は、膜を通じての酵素溶液の流速が、約0.05な
いし約0.5 cA/ruin・crrtとなるような
圧力を用いるのが好ましい。
いし約0.5 cA/ruin・crrtとなるような
圧力を用いるのが好ましい。
酵素溶液の濃度は1−10■/Ct、 pHは5−9と
するのが好ましい。
するのが好ましい。
酵素浴Ifこは、また、不活性蛋白、たとえばアルブミ
ンを添加してもよい。
ンを添加してもよい。
この蛋白は、不安定な酵素を不活性化から保護する。
さらに、上記溶液には、可逆性阻害剤または架橋剤と反
応する基を含1ない基質を添加することが好捷しい。
応する基を含1ない基質を添加することが好捷しい。
膜の架橋剤への浸漬は、約1−30℃で約1−10時間
を要する。
を要する。
ついで、結合しなかった酵素および架橋剤を除去するた
め、膜を加圧ろ過セル中で洗浄するのが有利である。
め、膜を加圧ろ過セル中で洗浄するのが有利である。
遊離アルデヒド、またその他の活性基は、グリシンある
いはその他の適当な保護剤で保護することもできる。
いはその他の適当な保護剤で保護することもできる。
使用する膜は、限外ろ過またはミクロろ過の範囲の細孔
サイズ、すなわち、0.01−10ミクロン、好1しく
は約0.025ないし0.5ミクロンの細孔サイズをも
った任意の予め形成された膜、たとえばセルロースアセ
テート、セルローストリアセテート、セルロースナイト
レート、混合エステルセルロース、ナイロン、多電解質
コンプレックスなどの膜でよい。
サイズ、すなわち、0.01−10ミクロン、好1しく
は約0.025ないし0.5ミクロンの細孔サイズをも
った任意の予め形成された膜、たとえばセルロースアセ
テート、セルローストリアセテート、セルロースナイト
レート、混合エステルセルロース、ナイロン、多電解質
コンプレックスなどの膜でよい。
適当な架橋剤としては、たとえば、ジアルデヒドたとえ
ばゲルタールアルデヒド、ジオキソベンチジン、ヘキサ
メチレンジイソシアネート、■。
ばゲルタールアルデヒド、ジオキソベンチジン、ヘキサ
メチレンジイソシアネート、■。
5−ジフルオロ−2,4−ジニトロベンゼン、NyN−
へキサメチレンビスヨードアセトアミドなどを挙げるこ
とができる。
へキサメチレンビスヨードアセトアミドなどを挙げるこ
とができる。
酵素は、動物性のものでも植物性のものでもよい。
例としてはこ氷解酵素たとえばキモトリプシン、トリプ
シン、アミラーゼ、カルボキシペプチダーゼ、アミノア
シラーゼトよびカルボキシペプチダーゼ、酸化酵素たと
えばグルコースオキシダーゼ、カララーゼ、アルコール
デヒドロゲナーゼ釦よびパーオキシダーゼ、アミダーゼ
たとえばウレアーゼ、アスパラギナーゼ、アルカリホス
ファターゼなどを挙げることができる。
シン、アミラーゼ、カルボキシペプチダーゼ、アミノア
シラーゼトよびカルボキシペプチダーゼ、酸化酵素たと
えばグルコースオキシダーゼ、カララーゼ、アルコール
デヒドロゲナーゼ釦よびパーオキシダーゼ、アミダーゼ
たとえばウレアーゼ、アスパラギナーゼ、アルカリホス
ファターゼなどを挙げることができる。
阻害剤を用いる場合、この阻害剤は各酵素に特異的なも
のである。
のである。
すなわち、たとえばゲルコールオキシダーゼを保護する
にはグルコースを用い、キモトリプシンを保護するには
β−フェニルプロピオネートを用いるなどである。
にはグルコースを用い、キモトリプシンを保護するには
β−フェニルプロピオネートを用いるなどである。
上述のように、本発明の酵素反応実施方法は、酵素反応
により化学的に変換すべき基質の水溶液を、圧力差によ
って架橋酵素膜中に流入させるものであって、酵素反応
を行うに適当な任意の酵素が酵素膜の部分として利用で
きる。
により化学的に変換すべき基質の水溶液を、圧力差によ
って架橋酵素膜中に流入させるものであって、酵素反応
を行うに適当な任意の酵素が酵素膜の部分として利用で
きる。
すなわち、酵素反応fこよって実施できる任意の反応を
、本発明の方法は、N−4たはO−アシルアミノ酸のラ
セミ混合物の分割に利用できる。
、本発明の方法は、N−4たはO−アシルアミノ酸のラ
セミ混合物の分割に利用できる。
この場合、この混合物を、一方の異性体を水解してL−
1たはDの光学的に純粋なアミノ酸と水解されない異性
体のD−4たはL−アシルアミノ酸との混合物を与える
ような適当な酵素膜に通じ、ついでこの混合物を公知方
法によ−って分離する。
1たはDの光学的に純粋なアミノ酸と水解されない異性
体のD−4たはL−アシルアミノ酸との混合物を与える
ような適当な酵素膜に通じ、ついでこの混合物を公知方
法によ−って分離する。
また、酵素としてグルコースオキシダーゼを用い、グル
コースをグルクロン酸に酸化することもできる。
コースをグルクロン酸に酸化することもできる。
さらQこ、尿素を分解するためのウレアーゼを利用する
こともできる。
こともできる。
その他、過酸化物を分解するため(こ、カタラーゼを利
用することも可能である。
用することも可能である。
酵素反応を実施するのに必要な圧力は、酵素膜、基質の
濃度、所望の変換率および/または所望の反応速度によ
って決する。
濃度、所望の変換率および/または所望の反応速度によ
って決する。
しかしながら、使用する反応原料訟よび必要な結果によ
って指定された各酵素反応について至適の圧力差を決定
することは容易である。
って指定された各酵素反応について至適の圧力差を決定
することは容易である。
たとえば、特定の架橋酵素膜については、圧力を増加さ
せると、反応速度が上昇するとともに変換率は低下し、
至適結果はそれによって調整できる。
せると、反応速度が上昇するとともに変換率は低下し、
至適結果はそれによって調整できる。
実際(こは、この圧力差は約0.05ないし約10気圧
の範囲であり、約0.05ないし約5気圧が好ましいこ
とが明らかにされている。
の範囲であり、約0.05ないし約5気圧が好ましいこ
とが明らかにされている。
この圧力差は、基質溶液(こ直接圧力を加えても、また
架橋酵素膜の反対側を減圧Gこ維持することによっても
得られることは当然である。
架橋酵素膜の反対側を減圧Gこ維持することによっても
得られることは当然である。
つぎに、本発明を以下の実施例に釦いて特定の好ましい
態様を参照して説明するが、この実施例は、本発明を特
定の態様に限定するものではなく、本発明は、特許請求
の範囲に定義された発明の範囲内に包含されるすべての
変更、改変、均等物を含むものである。
態様を参照して説明するが、この実施例は、本発明を特
定の態様に限定するものではなく、本発明は、特許請求
の範囲に定義された発明の範囲内に包含されるすべての
変更、改変、均等物を含むものである。
すなわち、以下の好ましい態様を挙げた実施例は、本発
明を実施を容易するためのものであって、示した特定例
は本発明の好ましい態様の例を挙げ、詳細に説明するた
めの目的でのみ挙げられたものであり、本発明のもつと
も有用と考えられる点、操作の記述ならびに本発明の原
理および概念の理解を容易にすると思われる点を掲げた
ものである。
明を実施を容易するためのものであって、示した特定例
は本発明の好ましい態様の例を挙げ、詳細に説明するた
めの目的でのみ挙げられたものであり、本発明のもつと
も有用と考えられる点、操作の記述ならびに本発明の原
理および概念の理解を容易にすると思われる点を掲げた
ものである。
以下の実施例から明らかなように、数種の架橋酵素膜が
製造され、6膜について、加圧下膜を通じての基質液相
の連続的流入を含め、種々の液相流人条件が検討されて
いる。
製造され、6膜について、加圧下膜を通じての基質液相
の連続的流入を含め、種々の液相流人条件が検討されて
いる。
さらに、6膜について、基質のバッチ中での膜の振動撹
拌を含めたバッチ条件での結果も検討した。
拌を含めたバッチ条件での結果も検討した。
後者の場合、架橋酵素膜は粒子結合酵素と同様な挙動を
とるものであることがわかる。
とるものであることがわかる。
バッチ条件むよび液相流人条件下にむける同程度の変換
にたいする反応速度を各場合について比較した結果、バ
ッチ条件に比し液相流人条件に釦いて高い値が得られて
いる。
にたいする反応速度を各場合について比較した結果、バ
ッチ条件に比し液相流人条件に釦いて高い値が得られて
いる。
この速度の差は、一方では基質の移動4こより拡散制限
がないこと、他方ではこの制限が存在することにより生
ずるものである。
がないこと、他方ではこの制限が存在することにより生
ずるものである。
液相流入条件下では、基質は膜中に強制的に流入し、微
孔内の非流動酵素分子に容易に接触する。
孔内の非流動酵素分子に容易に接触する。
一方、バッチ条件では。基質は、1ず膜表面に沿って形
成された非撹拌層を通って、つぎに膜の微孔内へと、膜
中Gこ拡散しなければならない。
成された非撹拌層を通って、つぎに膜の微孔内へと、膜
中Gこ拡散しなければならない。
液相流人条件下でバッチ条件下より反応速度が増大する
のは拡散制限がないことによるものであって、この2つ
の速度の比、すなわち実施例中に速度比として記述した
VF/ VBは流入条件下に酵素を利用した場合の効率
の上昇を定量的(こ示すものである。
のは拡散制限がないことによるものであって、この2つ
の速度の比、すなわち実施例中に速度比として記述した
VF/ VBは流入条件下に酵素を利用した場合の効率
の上昇を定量的(こ示すものである。
例I
キモl−’Jプシン膜の製造および分析
0、5 M IJン酸塩緩衝液pH7,0中にキモI−
IJプシンむよび阻害剤としてβ−フェニルプロピオネ
ート(1ct:中、キモトリプシン67%hよび阻害剤
77n?)を含有するキモトリプシン溶液を、加圧下(
0,1気圧)、微孔サイズ約0.1μのセルローストリ
アセテート膜(特許)に通ずる。
IJプシンむよび阻害剤としてβ−フェニルプロピオネ
ート(1ct:中、キモトリプシン67%hよび阻害剤
77n?)を含有するキモトリプシン溶液を、加圧下(
0,1気圧)、微孔サイズ約0.1μのセルローストリ
アセテート膜(特許)に通ずる。
膜を水で軽く洗浄し、1時間、ゲルタールジアルデヒド
溶液(2,5%)に浸漬する。
溶液(2,5%)に浸漬する。
ついで、これを圧力セル中にとり、水、10 ’NHC
t(酵素−阻害剤コンプレックスを分解するため)釦よ
び緩衝液で、洗液中に紫外部吸収pよび酵素活性が認め
られなくなる昔で洗浄する。
t(酵素−阻害剤コンプレックスを分解するため)釦よ
び緩衝液で、洗液中に紫外部吸収pよび酵素活性が認め
られなくなる昔で洗浄する。
ついで、基質として、30%EtOH−70%CaC7
2(0,05M )含有Tris緩衝液、pH7,8(
0,05M)中N−ベンゾイルーLチロシンエチルエス
テル(BTEE)、CaCJ、2(0,05M)含有T
ris緩衝液pH’7.8 (0,05M)中N−アセ
チルトリプトファンメチルエステル、およびCaCl2
(0,05M )含有Tris緩衝液pH7,8(0
,05M)中N−アセチルーDL−フェニルアラニンエ
チルエステルを用い、膜の酵素活性を試験する。
2(0,05M )含有Tris緩衝液、pH7,8(
0,05M)中N−ベンゾイルーLチロシンエチルエス
テル(BTEE)、CaCJ、2(0,05M)含有T
ris緩衝液pH’7.8 (0,05M)中N−アセ
チルトリプトファンメチルエステル、およびCaCl2
(0,05M )含有Tris緩衝液pH7,8(0
,05M)中N−アセチルーDL−フェニルアラニンエ
チルエステルを用い、膜の酵素活性を試験する。
基質は26℃Oこ耘いて種々の圧力で膜内に導入し、溶
出液中に生成した生成物を測定する。
出液中に生成した生成物を測定する。
つぎに、膜をバッチ条件下lこ分析する。
すなわち、膜を基質のバッチとともに振動撹拌する。
結果、および同一変換率が得られる液相流人条件ち゛よ
びバッチ条件の反応速度比を以下の表(こ示した。
びバッチ条件の反応速度比を以下の表(こ示した。
表中、欄および列の見出しおよび略号の意味は次の通り
である。
である。
P−膜前後の圧力差
Q=流入速度
V−反応速度
倒一基質の生成物への変換率
バッチ−酵素反応をバッチ条件で実施
速度比=液相流人条件下0反応速度
バッチ条件下の反応速度
上記表から明らかなように、本発明の方法を用いた場合
、変換率75多、50φ、90%および46咎の値が得
られ、同一の基質濃度、同一の膜によりバッチ法で処理
した場合Qこ比し、それぞれ15 、6 、13j、−
よび6倍の反応速度が達成される。
、変換率75多、50φ、90%および46咎の値が得
られ、同一の基質濃度、同一の膜によりバッチ法で処理
した場合Qこ比し、それぞれ15 、6 、13j、−
よび6倍の反応速度が達成される。
例2
トリプシン膜の製造および分析
0、05 M CaCl2中トリプシン溶液(IcC中
5η)を、0.1気圧の圧力で、微孔サイズ約0.1μ
のセルローストリアセテート膜に通ずる。
5η)を、0.1気圧の圧力で、微孔サイズ約0.1μ
のセルローストリアセテート膜に通ずる。
ついで、膜を軽く水洗し、つぎに、0.1M−NaOH
でpHを7にした2、5多グルクールアルデヒド溶液中
に室温で1時間浸漬させる。
でpHを7にした2、5多グルクールアルデヒド溶液中
に室温で1時間浸漬させる。
ついで、膜を限外ろ過セル中にとり、水および緩衝液(
リン酸塩、pH7,0)で、紫外部吸収訃よび酵素活性
が洗液中に認められなくなる1で洗浄する。
リン酸塩、pH7,0)で、紫外部吸収訃よび酵素活性
が洗液中に認められなくなる1で洗浄する。
基質として、CaC12(0,01M )含有’I’r
is緩衝液pH8,0(0,05M )中N−ベンゾイ
ルアルギニンエチルエステルおよヒcac12(0,0
1M )含有Tris緩衝液pH8,0(0,05M)
中N−ベンゾイル−D、 L−リジンエチルエステル
を用いて、膜の活性を分析する。
is緩衝液pH8,0(0,05M )中N−ベンゾイ
ルアルギニンエチルエステルおよヒcac12(0,0
1M )含有Tris緩衝液pH8,0(0,05M)
中N−ベンゾイル−D、 L−リジンエチルエステル
を用いて、膜の活性を分析する。
基質は加圧下、26℃で膜を通過させ、溶出液中に生成
した生成物の量を測定する。
した生成物の量を測定する。
膜はバッチ条件下に釦いても、すなわち、基質のバッチ
とともに振動撹拌下に処理したものについても分析した
。
とともに振動撹拌下に処理したものについても分析した
。
同一変換率が得られる液相流人およびバッチ条件下に訃
ける速度比を計算する。
ける速度比を計算する。
結果を表4および5/lこ示す。例3
カルボキシペプチダーゼ−B膜の製%よび分析LiC1
(10多W/V)中カルボキシペプチダーゼ13 (l
cr:中3.3 ynq )溶液を、加圧下(0,1
気圧)、ミクロろ過膜(Mi l l i pore
MF −GS 。
(10多W/V)中カルボキシペプチダーゼ13 (l
cr:中3.3 ynq )溶液を、加圧下(0,1
気圧)、ミクロろ過膜(Mi l l i pore
MF −GS 。
微孔サイズ0.02μ)lこ通ずる。
膜を軽く洗浄し。ゲルタールアルデヒド架橋液(2,5
%、 pH7,0)に室温で1時間浸漬する。
%、 pH7,0)に室温で1時間浸漬する。
ついで膜を限外ろ過セルにとり、水卦よびベロナール緩
衝液(0,05M。
衝液(0,05M。
pH7,0)により、紫外部吸収および酵素活性が洗液
中に認められなくなる1で洗浄する。
中に認められなくなる1で洗浄する。
前例と同様(こして、液相流人条件およびバッチ条件下
の膜の活性を分析し、速度比を計算する。
の膜の活性を分析し、速度比を計算する。
用いた基質は、NaC1(0,1M )含有Tris緩
衝液pH7,6(0,03M)中N−ヒプリルアルギニ
ンである。
衝液pH7,6(0,03M)中N−ヒプリルアルギニ
ンである。
結果を表6に示す。
例4
カタラーゼ膜の製造トよび分析
NaC1(1%)含有リン酸塩緩衝1pH7,0(0,
05M)中カタラーゼ(lCx中3111g)溶液をミ
クロろ過膜(Mi l l i pore MF−GS
、微孔サイズ0.22μ)(こ通ずる。
05M)中カタラーゼ(lCx中3111g)溶液をミ
クロろ過膜(Mi l l i pore MF−GS
、微孔サイズ0.22μ)(こ通ずる。
膜を軽く洗浄し、リン酸塩緩衝液pH7,0(0,05
M)中ゲルタールアルデヒド溶液(2,5%)中に2時
間浸漬する。
M)中ゲルタールアルデヒド溶液(2,5%)中に2時
間浸漬する。
ついで膜を、限外ろ過セル中加圧下、水および10φN
aC1により、紫外部吸収および酵素活性が洗液中に認
められなくなる1で洗浄する。
aC1により、紫外部吸収および酵素活性が洗液中に認
められなくなる1で洗浄する。
次(こ、例1と同様lこして液相流人条件むよびバンチ
条件下、リン酸塩緩衝液(0,05M)中退酸化水素(
0,035M)溶液を用いて、膜の活性を分析する。
条件下、リン酸塩緩衝液(0,05M)中退酸化水素(
0,035M)溶液を用いて、膜の活性を分析する。
液相流入むよびバッチ条件下同じ変換率を与える速度比
を計算する。
を計算する。
結果を表7に示す。例5
グルコースオキシダーゼ膜の製造および分析グルコース
(1係)含有0.05MIJン酸塩緩衝液pH6中グル
コースオキシダーセ゛(1cr:中5■)溶液をMi
I l 1pore膜(HA−MP、微孔サイズ0.4
5μ)の微孔中(こ圧入する。
(1係)含有0.05MIJン酸塩緩衝液pH6中グル
コースオキシダーセ゛(1cr:中5■)溶液をMi
I l 1pore膜(HA−MP、微孔サイズ0.4
5μ)の微孔中(こ圧入する。
ついで、膜を、ゲルタールアルデヒド溶液(2,5%)
中、室温に2時間浸漬する。
中、室温に2時間浸漬する。
つぎ(こ水勢よびリン酸塩緩衝液pH6,8により、紫
外部吸収および酵素活性が洗液中に認められなくなる昔
で洗浄する。
外部吸収および酵素活性が洗液中に認められなくなる昔
で洗浄する。
この膜にリン酸塩緩衝液pH6,0(0,05M)中5
饅グルコース溶液を通じ、溶出洛中に生成したH2O2
量を測定して、膜を試験する。
饅グルコース溶液を通じ、溶出洛中に生成したH2O2
量を測定して、膜を試験する。
結果を、バッチ条件下の同一反応と比較する。
結果を表8に示す。
例6
ウレアーゼ膜の製造および分析
10’−3MEDTA含有0.02Mリン酸塩緩衝液p
H7中、ウレアーゼ(1α中3my)溶液を微孔サイズ
0.2pの膜(Gelman−Metrcel TCM
200)中に圧入する。
H7中、ウレアーゼ(1α中3my)溶液を微孔サイズ
0.2pの膜(Gelman−Metrcel TCM
200)中に圧入する。
ついで、膜を水勢よびリン酸塩緩衝液で洗液中(こ紫外
部吸収釦よび酵素活性が認められなくなる1で洗浄する
。
部吸収釦よび酵素活性が認められなくなる1で洗浄する
。
次に、例1に記載したと同様にして、液相流入卦よびバ
ッチ条件下、EDTA(10−3M)含有リン酸塩緩衝
液pH7,0(0,1M )中0.3多尿素溶液(こよ
り膜の活性を分析する。
ッチ条件下、EDTA(10−3M)含有リン酸塩緩衝
液pH7,0(0,1M )中0.3多尿素溶液(こよ
り膜の活性を分析する。
結果を表9に示す。例7
各種微孔径のキモl−IJプシン膜の製造および分析0
.05MIJン酸塩緩衝1pH7、O中、阻害剤として
β−フェニルプロピオネートを含有するキモトリプシン
溶液(lCr:中、キモトリプシン3.37119およ
び阻害剤7mg)を、加圧下Qこ、各種微孔サイズ 1)0.025μM (VS −MF−Mi I I
i po re )2)0.1 7JM(VC−MF
−Millipore)3)0.22 1M (GS−
MF−Mi I l i po r e )のMill
ipore膜を通ずる。
.05MIJン酸塩緩衝1pH7、O中、阻害剤として
β−フェニルプロピオネートを含有するキモトリプシン
溶液(lCr:中、キモトリプシン3.37119およ
び阻害剤7mg)を、加圧下Qこ、各種微孔サイズ 1)0.025μM (VS −MF−Mi I I
i po re )2)0.1 7JM(VC−MF
−Millipore)3)0.22 1M (GS−
MF−Mi I l i po r e )のMill
ipore膜を通ずる。
酵素溶液を通じ膜を負荷するに用いる圧力差は、それぞ
れ約0.4気圧:0,1気圧釦よび0.02気圧である
。
れ約0.4気圧:0,1気圧釦よび0.02気圧である
。
膜を軽く洗浄し、0.05MIJン酸塩緩衝液pH7,
0,中、グルタールアールデヒド溶液(2,5多)に浸
漬する。
0,中、グルタールアールデヒド溶液(2,5多)に浸
漬する。
2時間後、膜を圧力セル中にかき、HCI 10−3M
(酵素−阻害剤コンプレックスを分解するため)むよび
緩衝液で、洗液中をこ紫外部吸収むよび酵素活性が認め
られなくなる1で洗浄する。
(酵素−阻害剤コンプレックスを分解するため)むよび
緩衝液で、洗液中をこ紫外部吸収むよび酵素活性が認め
られなくなる1で洗浄する。
ついで、30 % EtOH−70% Tris緩衝液
pH7,8(0,05M)中N−ベンゾイルチロシンエ
チルエステル(2,5・10−”M)溶液を加圧下(こ
通じ、溶出液中に生成した生成物の量を測定して、膜の
活性を分析する。
pH7,8(0,05M)中N−ベンゾイルチロシンエ
チルエステル(2,5・10−”M)溶液を加圧下(こ
通じ、溶出液中に生成した生成物の量を測定して、膜の
活性を分析する。
膜は、バッチ条件でも、すなわち、バッチの基質と振動
の撹拌下に処理しても試験し、同じ変換率が得られる肢
相流入釦よび条件での速度比を計算する。
の撹拌下に処理しても試験し、同じ変換率が得られる肢
相流入釦よび条件での速度比を計算する。
結果を表10(こ示す。
例8
非セルロース物質のキモI−IJプシン膜の製造および
分析 0.05M’Jン酸塩緩衝液pH7,0中β−フェニル
プロピオネート含有キモトリプシン溶液(1cr:中キ
モトリプシン3rIlf!bよび阻害剤7η)を以下の
非セルロース性物質で製造した膜(こ通ずる。
分析 0.05M’Jン酸塩緩衝液pH7,0中β−フェニル
プロピオネート含有キモトリプシン溶液(1cr:中キ
モトリプシン3rIlf!bよび阻害剤7η)を以下の
非セルロース性物質で製造した膜(こ通ずる。
a)不活性合成非セルロースポリマー
*
*
Am1con製1)iaflo限外ろ過膜XM 300
(分子量:約300,000) b)ポリカルボネートnucleopore膜(微孔径
0.4μ、厚さ11μ) 膜を軽く洗浄し、2時間ゲルタールアルデヒド溶液(2
,5%)中に浸漬する。
(分子量:約300,000) b)ポリカルボネートnucleopore膜(微孔径
0.4μ、厚さ11μ) 膜を軽く洗浄し、2時間ゲルタールアルデヒド溶液(2
,5%)中に浸漬する。
ついで洗浄し、例1に記載したと同様にしてBTEE(
2,5・10−3M)で試験する。
2,5・10−3M)で試験する。
結果を表11(こ示す。本発明が前述の例示的態様に限
定されるものでなく、その本質から逸脱することなくそ
の他の特定の態様をとることが可能であることは、本技
術分野(こむいては自明のとむりである。
定されるものでなく、その本質から逸脱することなくそ
の他の特定の態様をとることが可能であることは、本技
術分野(こむいては自明のとむりである。
したがって、上述の態様はあらゆる点で例示的なもので
あり、限定的なものではないことに留意すべきである。
あり、限定的なものではないことに留意すべきである。
本発明の解釈(こ際しては、上述の例示的記載を参照す
べきではなく、本発明の範囲内に包含されるすべての改
変を包含するものとして記述された特許請求の範囲の記
述によるべきである。
べきではなく、本発明の範囲内に包含されるすべての改
変を包含するものとして記述された特許請求の範囲の記
述によるべきである。
Claims (1)
- 1 酵素反応により化学的に変換すべき基質の水溶液に
圧力を適用し、上記水溶族は圧力差によって架橋酵素膜
中を通過させ、得られた溶液生成物を公知方法によって
分離することを特徴とし、上記架橋酵素膜としては、微
孔性でその微孔中に酵素が二官能性カップリング剤(こ
よって架橋されている架橋酵素膜を用いる酵素反応の実
施方法。
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
IL46178A IL46178A (en) | 1974-12-03 | 1974-12-03 | Method for the performance of enzymatic reactions |
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Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5182786A JPS5182786A (en) | 1976-07-20 |
JPS5835679B2 true JPS5835679B2 (ja) | 1983-08-04 |
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Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
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BE (1) | BE836187A (ja) |
CH (1) | CH615933A5 (ja) |
DE (1) | DE2553649A1 (ja) |
FR (1) | FR2293489A1 (ja) |
GB (1) | GB1527360A (ja) |
IL (1) | IL46178A (ja) |
NL (1) | NL7513281A (ja) |
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JPS5534072A (en) * | 1978-09-03 | 1980-03-10 | Kyoto Daiichi Kagaku:Kk | Dialysis membrane bearing fixed enzyme and automatic analysis using the same |
DE2930070A1 (de) * | 1979-07-25 | 1981-02-19 | Biotechnolog Forschung Gmbh | Verfahren zur kontinuierlichen enzymatischen umwandlung von wasserloeslichen alpha -ketocarbonsaeuren in die entsprechenden aminosaeuren |
DE2930087A1 (de) * | 1979-07-25 | 1981-02-26 | Biotechnolog Forschung Gmbh | Verfahren zur kontinuierlichen enzymatischen umwandlung von wasserloeslichen alpha -ketocarbonsaeuren in die entsprechenden alpha -hydroxycarbonsaeuren |
CA1185881A (en) * | 1982-02-01 | 1985-04-23 | Jacques Degelaen | ENZYMATIC PROCESS FOR THE DETERMINATION OF .beta.-LACTAM ANTIBIOTICS |
FR2567133A1 (fr) * | 1984-07-06 | 1986-01-10 | Inst Nat Sante Rech Med | Procede de fixation de molecules, notamment biologiques, sur un support et filtres obtenus |
US5177242A (en) * | 1991-12-17 | 1993-01-05 | Fmc Corporation | Process for preparing optically active cyanohydrins with enzymes |
DE102004032671A1 (de) * | 2004-07-02 | 2006-02-02 | Hahn-Meitner-Institut Berlin Gmbh | Niedertemperatur-Brennstoffzelle mit einer Hybridmembran und Verfahren zur Herstellung |
DE102008004725A1 (de) * | 2008-01-16 | 2009-07-23 | Evonik Goldschmidt Gmbh | Verfahren zur heterogenkatalysierten Herstellung von Carbonsäurederivaten |
DE102008004726A1 (de) | 2008-01-16 | 2009-07-23 | Evonik Goldschmidt Gmbh | Verfahren zur enzymatischen Herstellung von Carbonsäureestern |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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FR1604982A (en) * | 1968-03-29 | 1972-06-26 | Active protein product - with polymeric carrier |
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1974
- 1974-12-03 IL IL46178A patent/IL46178A/xx unknown
-
1975
- 1975-11-12 GB GB46800/75A patent/GB1527360A/en not_active Expired
- 1975-11-13 NL NL7513281A patent/NL7513281A/xx not_active Application Discontinuation
- 1975-11-19 SE SE7512987A patent/SE427471B/xx unknown
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