JPH024276B2 - - Google Patents
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- JPH024276B2 JPH024276B2 JP54075483A JP7548379A JPH024276B2 JP H024276 B2 JPH024276 B2 JP H024276B2 JP 54075483 A JP54075483 A JP 54075483A JP 7548379 A JP7548379 A JP 7548379A JP H024276 B2 JPH024276 B2 JP H024276B2
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- dna
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
- C12N15/52—Genes encoding for enzymes or proenzymes
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
- C12N1/205—Bacterial isolates
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
- C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
- C12P13/22—Tryptophan; Tyrosine; Phenylalanine; 3,4-Dihydroxyphenylalanine
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- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
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- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
- C12R2001/185—Escherichia
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
この発明は発酵法によるL−フエニールアラニ
ンの製造法に関するものである。 発酵法によるL−フエニールアラニンの製造法
については、いくつかの人工変異株を用いる方法
が知られている。 これに対し本発明者らは、デオキシリボ核酸
(以下DNA)と記す)供与菌としてエシエリヒア
属のフエニールアラニンアナログに耐性を有する
変異株を選択し、これにより、L−フエニールア
ラニンの合成に関与する遺伝情報を有するDNA
を抽出し、ついでこのL−フエニールアラニンの
合成に関与する遺伝情報を有するDNAを組み込
んだベクターを得、これをエシエリヒア属の微生
物に導入することに成功した。 本発明の微生物を用いることによつて、従来の
突然変異株を用いる方法に比べて、極めて高い収
率でL−フエニールアラニンを生産できる。 エシエリヒア属のフエニールアラニンアナログ
に耐性を有する変異株は通常の人工変異操作をエ
シエリヒア属の微生物に施すことにより得られ
る。 本発明でいうフエニールアラニンアナログとは
エシエリヒア属の微生物の増殖を抑制するが、こ
の抑制はL−フエニールアラニンによつて部分的
又は全体的に解除されるようなものをいう。例え
ばo−,m−又はp−フルオロフエニールアラニ
ン,o−,m−又はp−アミノフエニールアラニ
ン,β−フエニールアラニン,シクロヘキシルア
ラニン,α−アミノ−β−フエニール−エタンス
ルホン酸,o−,m−又はp−クロロフエニール
アラニン,o−,m−又はp−ブロモフエニール
アラニン,β−2−チエニールアラニン,β−3
−チエニールアラニン,β−2−フリルアラニ
ン,β−2−ピロールアラニン,1−シクロペン
テン−1−アラニン,1−シクロヘキセン−1−
アラニン,2−アミノ−4−メチル−4−ヘキセ
ン酸,s−(1,2−ジクロロビニル)−システイ
ン,β−4−ピリジルアラニン,β−2−ピリジ
ルアラニン,β−4−ピラゾルアラニン,p−ニ
トロフエニールアラニン等がある。 本発明のDNA供与菌として、前記フエニール
アナログ耐性変異株のほかに更に5−F−トリプ
トフアン等のトリプトフアンアナログ耐性,2−
チエニールアラニン耐性、チロシン要求性を有す
る菌等が使用できる。 これらDNA供与菌より染色体DNAを常法によ
り抽出し、常法により制限エンドヌクレアーゼで
処理し、同様に処理したベクターとして用いるプ
ラスミドもしくはフアージのDNAと混和し、リ
ガーゼによつて連結せしめる。染色体DNAにつ
いてのこの操作を浅く、すなわち部分分解で止ま
るようにすれば、多くの制限酵素が本実験の目的
に有効である。一方、ターミナルトランスフエラ
ーゼを用いて、染色体DNA断片と開裂したベク
ターDNAとに、デオキシアデニル酸とチミジル
酸もしくはデオキシグアニル酸とデオキシシチジ
ル酸とをそれぞれ付加し、混和したのちリガーゼ
で連絡せしめる方法も利用しうる。 ベクターDNAとしてはColE1の系統,pSC101
の系統,pBR322の系統,R6Kの系統,入フアー
ジの系統など通常用いられる全てのものが採用さ
れうる。 以上のようにして得た染色体DNA断片とベク
ターの結合物を形質転換法によつてエシエリヒア
属の菌体に入れ、遺伝形質として安定するまで短
時間増殖せしめたのち、所望の染色体上の遺伝形
質もしくは、ベクターのもつ形質もしくはそれら
両者を併せもつ菌のクローンを選択的に生育せし
める培地を用いて、所望の形質転換株を得る。こ
のとき用いるDNAの受容菌としては、エシエリ
ヒア属の菌ならば特に支障なく用いられ、カイー
1776等のEK−2ランクのものも使用可能である。
生産性を向上させるためには、チロシン、トリプ
トフアン、イソロイシン、メチオニン、ヒスチジ
ン、アルギニン、プロリン、ロイシン、リジン、
スレオニン、セリン、アデニン、グアニン、キサ
ンチン等の要求性、チロシンアナログ耐性、トリ
プトフアンアナログ耐性、ヒスチジンアナログ耐
性、サルフア剤耐性、等の性質を単独に付与する
か、又は二つ以上組み合わせた性質を付与するの
がよい。尚、これらの要求性耐性は当然DNA供
与菌についても付与されていた方が望ましい場合
が多い。 かくして得られたL−フエニールアラニン生産
菌を培養する方法は、従来のL−フエニールアラ
ニン生産菌の培養方法と特に変らない。即ち、培
地としては、炭素源、窒素源、無機イオン更に必
要に応じアミノ酸、ビタミン等の有機微量栄養素
を含有する通常のものである。 炭素源としては、グルコース、シユクロース、
ラクトース等及びこれらを含有する澱粉加水分解
液、糖蜜、ホエイ等が用いられる。窒素源として
は、アンモニアガス、アンモニア水、アンモニウ
ム塩その他が使用できる。 培地にフマル酸、クエン酸、酢酸、グルコン
酸、酒石酸、リンゴ酸等の有機酸を添加すればよ
り好ましい結果が得られる場合が多い。 培養は好気的条件下で培地のPH及び温度を適宜
調節しつつ、実質的にL−フエニールアラニンの
生成蓄積が停止するまで行われる。 かくして培養液中には著量のL−フエニールア
ラニンが生成蓄積される。培養液よりL−フエニ
ールアラニンを採取するには通常の方法が適用で
きる。 本発明の微生物を用いることにより、従来知ら
れているエシエリヒア・コリーのL−フエニール
アラニン生産菌を用いる場合に比べ、L−フエニ
ールアラニンの生成収率が高いばかりでなく、更
にL−フエニールアラニン以外のアミノ酸の副生
量が極めて少なく、L−フエニールアラニンの分
離・採取の際に好都合である。 実施例 1 (1) フエニールアラニン過剰生産能を遺伝情報に
もつた染色体DNAの調製 AJ11380株(K−12株(ATCC 10798)より
誘導したP−フルオロフエニルアラニン耐性
株)を1のL培地(ペプトン1%,酵母エキ
ス0.5%,グルコース0.1%,NaCI0.5%,PH7.2
に調整)中37℃で約3時間振盪培養を行い、対
数増殖期の菌体を集菌後、フエノール法による
通常のDNA抽出法によつて染色体DNAを抽出
精製し、最終5.0mgを得た。 (2) ベクターDNAの調製 ベクターとしてアンピシリン耐性、テトラサ
イクリン耐性プラスミドの1種、BR322の
DNAを次のようにして調製した。まず、
BR322をプラスミドとして保有するエシエリ
ヒア・コリーK−12株の1種を1のグルコー
ス・カザミノ酸・無機塩培地(グルコース2
g,NH4CI 1g,Na2HPO4 6g,KH2PO4
3g,NaCI 5g,MgSO4・7H2O 0.1g,
CaCI2・2H2O 0.015g,カザミノ酸20gを1
の水に溶解後、PH7.2に調整したものを基本培
地として用い、これにL−トリプトフアン 0.05g,チミン0.05g,サイアミン(塩酸
塩)100μgを添加)に接種し、37℃で対数後
期まで培養したのち170μg/mlのクロラムフ
エニコールを添加し、更に培養した。 クロラムフエニコール添加後、16時間目に集菌
し、リゾチーム・SDS処理によつて溶菌させ、
30000g、1時間の超遠心により上清を得た。
これよりプラスミドDNAを濃縮後、セシウム
クロライド−エチジウムブロマイド平衝密度勾
配遠心法によつて最終550μgのpBR322プラス
ミドDNAを分画採取した。 (3) 染色体DNA断片のベクターへの挿入 (1)で得た染色体DNA10μgを取り、制限エ
ンドヌクレアーゼEcoRI、PstI、Hind、
BamHIをそれぞれ与え、37℃で5分、10分、
20分、30分、60分反応させ、DNA鎖を種々の
程度に切断した。(2)で得たベクターDNAの場
合は60分反応させ、完全に切断せしめた。65
℃、5分の熱処理後、両反応液を混合し、
ATR及びジチオスレイトール存在下、T4フア
ージ由来のDNAリガーゼによつて10℃、24時
間DNA鎖の連結反応を行つた。65℃、5分の
熱処理後、反応液に2倍容のエタノールを加え
て連結反応終了後のDNAを沈澱採取した。 (4) フエニールアラニン過剰生産遺伝子を担つた
プラスミドによる形質転換 エシエリヒア・コリKー12株からニトロソグ
アニジン変異処理によつて誘導したフエニール
アラニン要求株No.123株をL培地10mlに接種し、
37℃で振盪培養を行い対数増殖期中期まで生育
させた後集菌し、これを氷冷下0.1MMgCI2、
0.1MCaCI2各溶液に順次懸濁させることによつ
ていわゆるコンピテントな(DNA取り込み能
を有する)細胞を調製した。このコンピテント
細胞懸濁液に、(3)で得たDNA(フエニールアラ
ニン過剰生産遺伝子を担つたプラスミドDNA
が含まれる)の溶解液を加えて氷冷下30分反応
させ、直ちに42℃、2分のヒートシヨツクを与
えた後、再び氷冷下に30分放置してDNAを細
胞内に取り込ませた。次に、この細胞懸濁液の
一定量を新たなL培地に接種し、37℃、3時間
振盪培養を行つて形質転換反応を完了させた
後、集菌洗滌し、再懸濁液を最少培地プレート
(グルコース2g、(NH4)2SO4 1g、
K2HPO4 7g、KH2PO4 2g、MgSO4・
7H2O 0.01g、クエン酸ナトリウム0.5gを1
の水に溶解し、PH7.2に調整したものを基最
少培地とし、これに寒天2%を加えて殺菌した
固形培地)に塗抹し、37℃で3時間培養した。
生じたコロニーを釣菌し、そのアンピシリン
(50μg/ml)及びテトラサイクリン(5μg/
ml)の耐性度を、固形L培地で検定した。さら
にフエニルアラニン過剰生産能を有する菌株を
採取するためにフエニルアラニン要求性変異株
No.123全面に塗布した最小培地平板上に上記コ
ロニーを移植した。フエニルアラニン分泌コロ
ニーの周囲にはフエニルアラニン要求性菌が生
育するのでハローが観察され容易に過剰生産菌
を識別することができた。少くとも一種の上記
抗生物質に耐性を有し、かつフエニールアラニ
ンの過剰生産能を有するコロニーを目的とする
形質転換株として純化し、保存した。 (5) 新規フエニールアラニン生産株によるL−フ
エニールアラニンの生産 (4)で得られた菌株のうち、AJ 11379(FERM
−P 5043)を、DNA供与菌であるAJ 11380
と比較して、L−フエニールアラニンの発酵生
産を検定した結果を第1表に示す。 培養方法は、下記培地組成を20mlずつ500ml
容フラスコに分注し、これに第1表に示す微生
物を1白金耳植えつけ、31℃で72時間培養し
た。培養液の遠心上清中のL−フエニールアラ
ニンはバイオアツセイ法で定量した。
ンの製造法に関するものである。 発酵法によるL−フエニールアラニンの製造法
については、いくつかの人工変異株を用いる方法
が知られている。 これに対し本発明者らは、デオキシリボ核酸
(以下DNA)と記す)供与菌としてエシエリヒア
属のフエニールアラニンアナログに耐性を有する
変異株を選択し、これにより、L−フエニールア
ラニンの合成に関与する遺伝情報を有するDNA
を抽出し、ついでこのL−フエニールアラニンの
合成に関与する遺伝情報を有するDNAを組み込
んだベクターを得、これをエシエリヒア属の微生
物に導入することに成功した。 本発明の微生物を用いることによつて、従来の
突然変異株を用いる方法に比べて、極めて高い収
率でL−フエニールアラニンを生産できる。 エシエリヒア属のフエニールアラニンアナログ
に耐性を有する変異株は通常の人工変異操作をエ
シエリヒア属の微生物に施すことにより得られ
る。 本発明でいうフエニールアラニンアナログとは
エシエリヒア属の微生物の増殖を抑制するが、こ
の抑制はL−フエニールアラニンによつて部分的
又は全体的に解除されるようなものをいう。例え
ばo−,m−又はp−フルオロフエニールアラニ
ン,o−,m−又はp−アミノフエニールアラニ
ン,β−フエニールアラニン,シクロヘキシルア
ラニン,α−アミノ−β−フエニール−エタンス
ルホン酸,o−,m−又はp−クロロフエニール
アラニン,o−,m−又はp−ブロモフエニール
アラニン,β−2−チエニールアラニン,β−3
−チエニールアラニン,β−2−フリルアラニ
ン,β−2−ピロールアラニン,1−シクロペン
テン−1−アラニン,1−シクロヘキセン−1−
アラニン,2−アミノ−4−メチル−4−ヘキセ
ン酸,s−(1,2−ジクロロビニル)−システイ
ン,β−4−ピリジルアラニン,β−2−ピリジ
ルアラニン,β−4−ピラゾルアラニン,p−ニ
トロフエニールアラニン等がある。 本発明のDNA供与菌として、前記フエニール
アナログ耐性変異株のほかに更に5−F−トリプ
トフアン等のトリプトフアンアナログ耐性,2−
チエニールアラニン耐性、チロシン要求性を有す
る菌等が使用できる。 これらDNA供与菌より染色体DNAを常法によ
り抽出し、常法により制限エンドヌクレアーゼで
処理し、同様に処理したベクターとして用いるプ
ラスミドもしくはフアージのDNAと混和し、リ
ガーゼによつて連結せしめる。染色体DNAにつ
いてのこの操作を浅く、すなわち部分分解で止ま
るようにすれば、多くの制限酵素が本実験の目的
に有効である。一方、ターミナルトランスフエラ
ーゼを用いて、染色体DNA断片と開裂したベク
ターDNAとに、デオキシアデニル酸とチミジル
酸もしくはデオキシグアニル酸とデオキシシチジ
ル酸とをそれぞれ付加し、混和したのちリガーゼ
で連絡せしめる方法も利用しうる。 ベクターDNAとしてはColE1の系統,pSC101
の系統,pBR322の系統,R6Kの系統,入フアー
ジの系統など通常用いられる全てのものが採用さ
れうる。 以上のようにして得た染色体DNA断片とベク
ターの結合物を形質転換法によつてエシエリヒア
属の菌体に入れ、遺伝形質として安定するまで短
時間増殖せしめたのち、所望の染色体上の遺伝形
質もしくは、ベクターのもつ形質もしくはそれら
両者を併せもつ菌のクローンを選択的に生育せし
める培地を用いて、所望の形質転換株を得る。こ
のとき用いるDNAの受容菌としては、エシエリ
ヒア属の菌ならば特に支障なく用いられ、カイー
1776等のEK−2ランクのものも使用可能である。
生産性を向上させるためには、チロシン、トリプ
トフアン、イソロイシン、メチオニン、ヒスチジ
ン、アルギニン、プロリン、ロイシン、リジン、
スレオニン、セリン、アデニン、グアニン、キサ
ンチン等の要求性、チロシンアナログ耐性、トリ
プトフアンアナログ耐性、ヒスチジンアナログ耐
性、サルフア剤耐性、等の性質を単独に付与する
か、又は二つ以上組み合わせた性質を付与するの
がよい。尚、これらの要求性耐性は当然DNA供
与菌についても付与されていた方が望ましい場合
が多い。 かくして得られたL−フエニールアラニン生産
菌を培養する方法は、従来のL−フエニールアラ
ニン生産菌の培養方法と特に変らない。即ち、培
地としては、炭素源、窒素源、無機イオン更に必
要に応じアミノ酸、ビタミン等の有機微量栄養素
を含有する通常のものである。 炭素源としては、グルコース、シユクロース、
ラクトース等及びこれらを含有する澱粉加水分解
液、糖蜜、ホエイ等が用いられる。窒素源として
は、アンモニアガス、アンモニア水、アンモニウ
ム塩その他が使用できる。 培地にフマル酸、クエン酸、酢酸、グルコン
酸、酒石酸、リンゴ酸等の有機酸を添加すればよ
り好ましい結果が得られる場合が多い。 培養は好気的条件下で培地のPH及び温度を適宜
調節しつつ、実質的にL−フエニールアラニンの
生成蓄積が停止するまで行われる。 かくして培養液中には著量のL−フエニールア
ラニンが生成蓄積される。培養液よりL−フエニ
ールアラニンを採取するには通常の方法が適用で
きる。 本発明の微生物を用いることにより、従来知ら
れているエシエリヒア・コリーのL−フエニール
アラニン生産菌を用いる場合に比べ、L−フエニ
ールアラニンの生成収率が高いばかりでなく、更
にL−フエニールアラニン以外のアミノ酸の副生
量が極めて少なく、L−フエニールアラニンの分
離・採取の際に好都合である。 実施例 1 (1) フエニールアラニン過剰生産能を遺伝情報に
もつた染色体DNAの調製 AJ11380株(K−12株(ATCC 10798)より
誘導したP−フルオロフエニルアラニン耐性
株)を1のL培地(ペプトン1%,酵母エキ
ス0.5%,グルコース0.1%,NaCI0.5%,PH7.2
に調整)中37℃で約3時間振盪培養を行い、対
数増殖期の菌体を集菌後、フエノール法による
通常のDNA抽出法によつて染色体DNAを抽出
精製し、最終5.0mgを得た。 (2) ベクターDNAの調製 ベクターとしてアンピシリン耐性、テトラサ
イクリン耐性プラスミドの1種、BR322の
DNAを次のようにして調製した。まず、
BR322をプラスミドとして保有するエシエリ
ヒア・コリーK−12株の1種を1のグルコー
ス・カザミノ酸・無機塩培地(グルコース2
g,NH4CI 1g,Na2HPO4 6g,KH2PO4
3g,NaCI 5g,MgSO4・7H2O 0.1g,
CaCI2・2H2O 0.015g,カザミノ酸20gを1
の水に溶解後、PH7.2に調整したものを基本培
地として用い、これにL−トリプトフアン 0.05g,チミン0.05g,サイアミン(塩酸
塩)100μgを添加)に接種し、37℃で対数後
期まで培養したのち170μg/mlのクロラムフ
エニコールを添加し、更に培養した。 クロラムフエニコール添加後、16時間目に集菌
し、リゾチーム・SDS処理によつて溶菌させ、
30000g、1時間の超遠心により上清を得た。
これよりプラスミドDNAを濃縮後、セシウム
クロライド−エチジウムブロマイド平衝密度勾
配遠心法によつて最終550μgのpBR322プラス
ミドDNAを分画採取した。 (3) 染色体DNA断片のベクターへの挿入 (1)で得た染色体DNA10μgを取り、制限エ
ンドヌクレアーゼEcoRI、PstI、Hind、
BamHIをそれぞれ与え、37℃で5分、10分、
20分、30分、60分反応させ、DNA鎖を種々の
程度に切断した。(2)で得たベクターDNAの場
合は60分反応させ、完全に切断せしめた。65
℃、5分の熱処理後、両反応液を混合し、
ATR及びジチオスレイトール存在下、T4フア
ージ由来のDNAリガーゼによつて10℃、24時
間DNA鎖の連結反応を行つた。65℃、5分の
熱処理後、反応液に2倍容のエタノールを加え
て連結反応終了後のDNAを沈澱採取した。 (4) フエニールアラニン過剰生産遺伝子を担つた
プラスミドによる形質転換 エシエリヒア・コリKー12株からニトロソグ
アニジン変異処理によつて誘導したフエニール
アラニン要求株No.123株をL培地10mlに接種し、
37℃で振盪培養を行い対数増殖期中期まで生育
させた後集菌し、これを氷冷下0.1MMgCI2、
0.1MCaCI2各溶液に順次懸濁させることによつ
ていわゆるコンピテントな(DNA取り込み能
を有する)細胞を調製した。このコンピテント
細胞懸濁液に、(3)で得たDNA(フエニールアラ
ニン過剰生産遺伝子を担つたプラスミドDNA
が含まれる)の溶解液を加えて氷冷下30分反応
させ、直ちに42℃、2分のヒートシヨツクを与
えた後、再び氷冷下に30分放置してDNAを細
胞内に取り込ませた。次に、この細胞懸濁液の
一定量を新たなL培地に接種し、37℃、3時間
振盪培養を行つて形質転換反応を完了させた
後、集菌洗滌し、再懸濁液を最少培地プレート
(グルコース2g、(NH4)2SO4 1g、
K2HPO4 7g、KH2PO4 2g、MgSO4・
7H2O 0.01g、クエン酸ナトリウム0.5gを1
の水に溶解し、PH7.2に調整したものを基最
少培地とし、これに寒天2%を加えて殺菌した
固形培地)に塗抹し、37℃で3時間培養した。
生じたコロニーを釣菌し、そのアンピシリン
(50μg/ml)及びテトラサイクリン(5μg/
ml)の耐性度を、固形L培地で検定した。さら
にフエニルアラニン過剰生産能を有する菌株を
採取するためにフエニルアラニン要求性変異株
No.123全面に塗布した最小培地平板上に上記コ
ロニーを移植した。フエニルアラニン分泌コロ
ニーの周囲にはフエニルアラニン要求性菌が生
育するのでハローが観察され容易に過剰生産菌
を識別することができた。少くとも一種の上記
抗生物質に耐性を有し、かつフエニールアラニ
ンの過剰生産能を有するコロニーを目的とする
形質転換株として純化し、保存した。 (5) 新規フエニールアラニン生産株によるL−フ
エニールアラニンの生産 (4)で得られた菌株のうち、AJ 11379(FERM
−P 5043)を、DNA供与菌であるAJ 11380
と比較して、L−フエニールアラニンの発酵生
産を検定した結果を第1表に示す。 培養方法は、下記培地組成を20mlずつ500ml
容フラスコに分注し、これに第1表に示す微生
物を1白金耳植えつけ、31℃で72時間培養し
た。培養液の遠心上清中のL−フエニールアラ
ニンはバイオアツセイ法で定量した。
【表】
培地組成:
グルコース5g/dl、硫酸アンモニウム2.5
g/dl、リン酸第一カリ0.2g/dl、硫酸マグ
ネシウム・7水塩0.1g/dl、酵母エキス0.1
g/dl、サイアミン・塩酸塩1000γ/、
FeSO4・7H201mg/dl、MnSO4・4H2O1mg/
dl、炭酸カルシウム2.5g/dl(別殺菌)、PH
7・0。
g/dl、リン酸第一カリ0.2g/dl、硫酸マグ
ネシウム・7水塩0.1g/dl、酵母エキス0.1
g/dl、サイアミン・塩酸塩1000γ/、
FeSO4・7H201mg/dl、MnSO4・4H2O1mg/
dl、炭酸カルシウム2.5g/dl(別殺菌)、PH
7・0。
Claims (1)
- 1 エシエリヒア属のフエニールアラニンアナロ
グに耐性を有する変異株より得たL−フエニール
アラニンの合成に関与する遺伝情報を担うデオキ
シリボ核酸を組み込んだベクターを、エシエリヒ
ア属の微生物に含有せしめたL−フエニールアラ
ニン生産性微生物を培養し、培養液中に蓄積した
L−フエニールアラニンを採取することを特徴と
するL−フエニールアラニンの製造法。
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| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP7548379A JPS561890A (en) | 1979-06-15 | 1979-06-15 | Preparation of l-phenylalanine by fermentation |
| GB8018160A GB2053906B (en) | 1979-06-15 | 1980-06-03 | Producing l-phenlalanine by fermentation |
| DE19803022257 DE3022257A1 (de) | 1979-06-15 | 1980-06-13 | Verfahren zur fermentativen herstellung von l-phenylalanin |
| FR8013220A FR2459286A1 (fr) | 1979-06-15 | 1980-06-13 | Procede pour produire de la l-phenylalanine par fermentation |
| US06/159,477 US4407952A (en) | 1979-06-15 | 1980-06-16 | Method for producing L-phenylalanine by fermentation |
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|---|---|---|---|
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